KR20140096470A - 연안 갯벌에서 분리 동정한 균주 및 이를 이용한 갯벌 유기물 정화제 - Google Patents
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Abstract
본 발명에서는 연안 갯벌에서 농화배양을 통해 엔도설판 및 유기물 분해능이 매우 우수한 미생물 (균주명 EDB 2)를 분리하여 그 특성을 분석하였다. EDB2 균주에 대한 생리생화학적 및 유전학적 특성을 분석한 결과 Rhodococcus pvridinivorans와 99%의 높은 상동성을 보였다. 균주 EDB-2는 호기성, 그람 양성, 막대형이며, 핑크빛을 띠고 있다. 생장가능 온도는 20℃~45℃, 최적온도는 약 20℃~42℃로 생장 온도 범위가 비교적 넓은 것으로 나타났다. Casein과 cellulose 가수분해능력은 없지만 DNA, agar, starch 그리고 tween의 분해 능력이 있는 것으로 나타나 지질 분해능이 우수하여 지질로 오염된 환경 정화에 응용가능성 높은 것으로 나타났다. Acetoin, urease, α-glucosidase, β-glucosidase, mannitol, malate, alkaline phosphate, esterase lipase, leucine arylamidase, trypsin, acid phosphate, esculin, sorbitol 양성을 보였다.
Description
본 발명은 유기물질로 오염된 갯벌의 생물학적 환경정화 전략을 마련하기 위해, 주요 갯벌 오염물질중의 하나인 엔도설판 및 합성폐수 (펩톤과 글루코오스 비율 8:2) 분해능을 가지고 있는 연안갯벌 유래의 염분내성이 있는 신규 균주 및 이를 이용한 유기물 정화제에 관한 것이다.
엔도설판은 1956년 독일에서 개발된 유기염소계 살충제로서 티오단(Thiodan), 시클로단(Cyclodan), 말릭스(Malix), 지오릭스(Thiolix) 등 여러 상품명으로 알려져 있다. 엔도설판은 소화중독성 살충제로서, 담배, 뽕나무, 배추 등의 작물에 사용되는데, 엔도설판의 2006년 국내생산량은 229톤이며, 2006년 출하량은 원제기준으로 506톤이다. 우리나라에서는 2004년 12월 농약관리법상 엔도설판의 식용작물에 대한 사용을 전면 금지하였으며, 담배, 뽕나무, 토양해충방제 등에만 사용하도록 하였으나, 식용작물에도 여전히 상당량이 사용되고 있어서 전국적인 모니터링 결과 검출되고 있다. 또한 엔도설판은 환경부의 유해화학물질관리법에 의해 제조, 수입 또는 사용금지물질로 지정관리되고 있다.
엔도설판은 가격이 저렴하고 효과가 뛰어나 해충방제를 목적으로, 고독성임에도 불구하고 생산농가에서 사용되어 왔다. 엔도설판은 매우 낮은 농도에서도 담수어종에 상당한 독성을 나타낼 뿐만 아니라 내분계 교란물질로써 인간이나 동물의 호르몬계에 저해를 일으킬 수 있어 위험성이 높다. 그럼에도 불구하고 엔도설판은 최근 까지 우리나라와 미국에서 최근까지 해충 방제용으로 광범위하게 사용되어 온 유기염소계 살충제로 주요한 환경오염의 주요 물질 중의 하나이다.
엔도설판은 급성독성의 고독성 농약으로 특히 어독성이 매우 큰 어독성 1급 농약이다. 앤도설판은 상당히 안정한 화합물로서 자연계에서 태양빛에 의해 분해되지 않으며, 토양에서의 반감기는 최소 6개월에서 최고 9년까지로 잔류성이 매우 강하다. 따라서 농경지에 살포된 후 잔류한 엔도설판이 지하수, 하천 및 연안으로 유입되어 오랜 시간 잔류하며 생태계에 영향을 미칠 수 있다.
엔도설판은 비록 우리나라에서는 식용작물에 사용이 금지되었으나, 미국을 비롯한 여러 나라에서 여전히 사용되고 있어서, 호주, 뉴질랜드로부터 수입한 육우에서 엔도설판이 검출되어 검역당국으로부터 전량 폐기된 예가 있다. 엔도설판은 또한 환경에서 장거리 이동하는 것으로 알려져 사하라 사막, 심지어는 북극에서도 발견된다고 보고된다. 엔도설판의 생물적 분해에 대한 연구 논문은 소수에 지나지 않고 그 내용 또한 극히 제한적이어서 현장에 응용할만한 연구가 시급한 실정이다. 국내에서 endosulfan계 농약은 2008-2009년도 출하량 기준으로 가장 많이 사용되어왔던 농약중의 하나였다(도 1).
최근 육상의 오염물질이 바다로 유입되면서 연안 갯벌은 엔도설판 및 합성폐수 등의 유기물질로 오염되고 있다. 본 발명에서는 이러한, 연안 갯벌의 생물학적 환경정화 전략을 마련하기 위해, 엔도설판을 탄소 및 에너지원으로 이용하는 미생물을 연안 갯벌에서 농화배양을 통해 엔도설판 및 유기물 분해능이 매우 우수한 미생물 (균주명 EDB2)를 분리하여 그 특성을 분석함으로서 분리된 균주를 이용한 연안 갯벌 유기물 정화제를 제공한다.
본 발명은 유기물질로 오염된 갯벌의 생물학적 환경정화 전략을 마련하기 위해, 주요 갯벌 오염물질중의 하나인 엔도설판 및 합성폐수 (펩톤과 글루코오스 비율 8:2) 분해능을 가지고 있는 연안 갯벌 유래의 균주 및 유기물로 오염된 환경을 정화하는데 유용하게 쓰일 수 있을 유기물 정화제를 제공하고자 하는 것이다.
본 발명에서는 연안 갯벌에서 엔도설판을 탄소 및 에너지원으로 이용하는 미생물을 분리하기 위하여 10ppm 농도의 엔도설판이 함유된 25 ml BM 배지인 무기영양배지를 준비한 후 해수 시료 또는 연안 토양시료를 5%씩 접종하여 실온(10 ~ 20oC)에서 농화배양을 실시하였다. 농화배양을 통해 분리된 단일균주를 사용하여 10ppm의 엔도설판을 단일 탄소원 및 에너지원으로 첨가한 BM배지에서 분해능을 HPLC를 이용하여 분석하고, 그 중 분해능이 우수한 균주를 선별하였다.
엔도설판 농화배양액에서 분리한 6균주를 16S rRNA 염기서열에 기초하여 동정한 결과, 5개 속 6종으로 에치니콜라 비에트남엔시스(Echinicola vietnamensis ), 로도코커스 피리디노보란스( Rhodococcus pyridinivorans ), 루에게리아 모빌리스( Ruegeria mobilis ), 탈라소비우스 겔라티노보란스( Thalassobius gelatinovorus ), 탈라소피라 테피디필라( Thalassospira tepidiphila ), 테나바쿨룸 아입타세( Tenacibaculum aiptasiae ) 로 조사되었다.
본 발명에서 조사된 농화배양액을 구성하는 이들 각각의 미생물에 대한 엔도설판 분해능을 실시한 결과, 엔도설판 분해능이 가장 우수한 것으로 평가되는 균주 Rhodococcus sp. EDB2를 선별하여 생리, 생화학, 유전학적 특성을 분석하였다.
엔도설판 농화배양액으로부터 순수분리한 각 균주를 단일탄소원 및 에너지원으로 엔도설판이 포함된 고체배지와 액체배지에서 엔도설판 분해능을 측정한 결과, EDB2는 매우 잘 성장하였다. HPLC 분석을 위해 5ppm 농도로 엔도설판을 처리하여 EDB2에 의한 엔도설판 분해능을 측정한 결과, 배양 후 7일 만에 약 85%의 엔도설판 분해능을 나타내어, 엔도설판 분해능이 매우 뛰어난 균주로 확인되었다.
엔도설판을 탄소 및 에너지원으로 이용하는 미생물로서 연안 갯벌에서 분리된 균주들은 염분내성이 있고 엔도설판 및 유기물 있으므로 육상의 농약사용에 의해 엔도설판 등의 유기물로 오염된 갯벌 환경을 정화하는데 유용하게 쓰일 수 있을 것이다.
도 1은 엔도설판의 화학구조 및 국내 출하량을 나타낸다.
도 2는 농화배양에 의한 엔도설판 분해 미생물의 분리 과정을 나타낸다.
도 3은 갯벌에서 동정 분리한 로도코커스 피리디노보란스 EDB2 (Rhodococcus pyridinovorans EDB2) 균주의 16S rDNA 서열을 나타낸다.
도 4는 16S rRNA 서열에 의한 EDB2의 계통관계 분석결과를 나타낸다.
도 5는 API 20 E에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 6은 API 20 NE에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 7은 API CHB/E에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 8은 API ZYM에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 9은 고체 및 액체 배지에서 앤도설판을 이용할 수 있는 균주 EDB-2의 순수배양결과를 나타낸다.
도 10 HPLC에 의한 균주 EDB2의 엔도설판 분해능 시험결과를 나타낸다.
도 11은 갯벌 유래 EDB2 균주를 이용하여 제조된 미생물제제의 예를 나타낸다.
도 2는 농화배양에 의한 엔도설판 분해 미생물의 분리 과정을 나타낸다.
도 3은 갯벌에서 동정 분리한 로도코커스 피리디노보란스 EDB2 (Rhodococcus pyridinovorans EDB2) 균주의 16S rDNA 서열을 나타낸다.
도 4는 16S rRNA 서열에 의한 EDB2의 계통관계 분석결과를 나타낸다.
도 5는 API 20 E에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 6은 API 20 NE에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 7은 API CHB/E에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 8은 API ZYM에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
도 9은 고체 및 액체 배지에서 앤도설판을 이용할 수 있는 균주 EDB-2의 순수배양결과를 나타낸다.
도 10 HPLC에 의한 균주 EDB2의 엔도설판 분해능 시험결과를 나타낸다.
도 11은 갯벌 유래 EDB2 균주를 이용하여 제조된 미생물제제의 예를 나타낸다.
본 발명은 연안 갯벌과 해수를 엔도설판 농화배양액에 접종하고 농화배양하여 분리 동정된 기탁번호: KACC91762P의 균주로부터 선택되는 염분 내성이 있고, 온도 25 내지 42℃, pH5 내지 pH10에서 생장하며, 엔도설판, 단백질, 탄수화물, 지질 및 계면활성제등의 유기물 분해능이 있는 연안 갯벌 유래, 염분내성이 있는 로도코커스 피리디노보란스(Rhodococcus pvridinivorans) EDB2 균주를 제공함에 특징이 있다.
또한 본 발명은 상기 균주 배양물을 유효성분으로 함유하는 연안 갯벌 정화용 미생물 제제 및 상기 균주를 사용하여 연안 갯벌에 퇴적된 엔도설판, 단백질, 탄수화물, 지질 및 계면활성제 중에 선택되는 어느 하나 이상의 유기물을 분해시키는 방법을 제공한다.
본 발명에서 동정된 연안 갯벌 유래 로도코커스 피리디노보란스(Rhodococcus pvridinivorans) EDB2 균주는 호기성, 그람 양성, 막대형이며, 핑크빛을 띠고 있다. 생장가능 온도는 20℃~45℃, 최적온도는 약 20℃~42℃로 생장 온도 범위가 비교적 넓은 것으로 나타났다. Casein과 cellulose 가수분해능력은 없지만 DNA, agar, starch 그리고 tween의 분해 능력이 있는 것으로 나타나 지질 분해능이 우수하여 지질로 오염된 환경 정화에 응용가능성 높은 것으로 나타났다.
이에 본 발명자들은 상기 분리 및 동정된 본 발명의 균주를 2012년 11월 22일자로 국립농업과학원 농업유전자원센터(KACC)에 기탁하여 기탁번호 KACC91762P를 부여받았다.
이하 엔도설판 등의 유기물 분해능이 우수한 연안 갯벌 유래의 규주의 동정방법 및 생물 화학적 특성에 대하여 다음에서 실시 예를 중심으로 설명한다.
1. 연안 갯벌로부터의 균주 분리 동정
1.1.
엔도설판
및 유기물 분해 균주 분리 및 배양 조건
엔도설판을 탄소 및 에너지원으로 이용하는 미생물을 분리하기 위하여 10ppm 농도의 엔도설판이 함유된 25 ml BM 배지 (1 M phosphate buffer 10 ml, MgSO4·7H2O 0.25 g, CaCl2·2H2O 0.02 g, FeSO4·7H2O 0.02 g, (NH4)2SO4 2.38 g, sea salt 30 g, 증류수 990 ml)인 무기영양배지를 준비한 후 해수 시료 또는 연안 토양시료를 5%씩 접종하였다. 농화배양은 실온(10 ~ 20oC)에서 이루어졌고, 1주일 간격으로 3회에 걸쳐 1 ml의 배양액을 새로운 배지에 접종하여 계대배양을 지속하였다 (도 2). 다양한 엔도설판 분해미생물을 분리하기 위하여 새로운 시료를 사용하여 5회에 걸쳐 위에 언급한 것과 같은 방법으로 별도의 농화배양을 실시하였다.
엔도설판의 경우 7일간 배양한 후, 배양액 1 mL를 새로운 각 배지에 접종하고 같은 조건에서 2차, 3차 배양하는 과정을 반복하여 농화배양을 실시하였다. 합성폐수 분해능은 엔도설판 분해미생물을 대상으로 조사하였기 때문에 별도로 농화배양을 실시하지 않았다. 합성폐수의 분해능은 엔도설판을 분해하는 미생물을 대상으로 합성폐수 10,000ppm이 포함된 BM배지에 접종한 후 시험하였다.
농화배양을 통해 분리된 단일균주를 사용하여 10ppm의 엔도설판을 단일 탄소원 및 에너지원으로 첨가한 BM배지에서 분해능을 HPLC를 이용하여 분석하고, 그 중 분해능이 우수한 균주를 선별하였다.
1.2.
Total
genomic
DNA
분리와 정제
각 균주를 50 mL의 LB 배지에 접종하고 30℃에서 180 rpm으로 24시간 동안 배양한 후 원심분리 (6,300 ×g, 10 min, 4℃)하여 세포를 수확하였다. 회수된 배양세포를 5 mL TES buffer [0.1 M Tris-HCl (pH 7.0), 0.01 M EDTA, 1 M NaCl]로 재현탁하고, lysozyme (10 mg/mL)을 200㎕ 첨가하여 37℃에서 15분간 반응시켰다. 10% SDS를 100㎕ 첨가하고, 물리적인 DNA 절단을 방지하기 위하여 천천히 섞어준 후 50㎕ proteinase K (20㎎/㎖)와 5㎕ RNase를 첨가하여 37℃에서 30분간 반응시켰다.
5㎖ TES buffer를 더 첨가형 10㎖의 phenol을 첨가하여 잘 섞어주었다. 원심부분리를 통하여 얻어진 상징액을 취하여 새로운 tube로 옮긴 후 동량의 phenol/choroform/isoamyl alcohol로 2회, chlorofrom으로 1회 처리하였다. 상징액을 취하여 새로운 tube로 옮긴 후 1/10 volume의 3M sodium acetate(PH.54)와 2-3 volume의 100% ethanol을 첨가하여 30분간 실온에서 방치하였다.
원심분리 후 상징액을 버리고, 70% ethanol을 처리하여 염류를 씻어낸 후, 다시한번 원심분리하였다. 상징액을 버리고 공기 중에서 ethanol을 제거한 후, 침전물 500㎕의 멸균수에 녹여 다음 실험에 사용하였다. 0.8% agarose gel에 전기영동을 실시하여 DNA band를 확인한 후 UV-spectrophotometer (여 800, Beckman Coulter, Fullerton, USA)를 이용하여 정량하였다. Total DNA의 정제를 위해 crude DNA를 10㎖ cesium chloride용액에서 녹인 후 ethidium bromide를 첨가하여 102,200um membrane filter를 이용하여 30분간 투석하여 DNA 용액을 회수하여 농축한 후 특정 유전자의 증폭 또는 클로닝을 위한 시료를 사용하였다.
1.3.
농화배양(enrichment culture)에
의한
엔도설판
분해 미생물 분리 결과
엔도설판 농화배양액에서 분리한 6균주는 5개 속 6종으로 에치니콜라 비에트남엔시스(Echinicola vietnamensis), 로도코커스 피리디노보란스( Rhodococcus pyridinivorans ), 루에게리아 모빌리스( Ruegeria mobilis ), 탈라소비우스 겔라티노보란스( Thalassobius gelatinovorus ), 탈라소피라 테피디필라( Thalassospira tepidiphila ), 테나바쿨룸 아입타세( Tenacibaculum aiptasiae ) 등 이었다.
본 발명에서 분리한 균주 EDA5는 아직 보고되지 않은 신속 (new genus)일 가능성이 매우 높은 균주로, 16S RNA 염기서열 기준으로 가장 높은 유연관계를 가지는 균은 Echinicola vietnamensis KMM 6221T로 단지 92.2%의 상동성을 나타내었다 (표 1). 또한 균주 EDA2와 EDSW1도 신종 (new species)을 가능성이 매우 높은 것으로 사료된다. 본 발명에서는 농화배양액을 구성하는 이들 각각의 미생물에 대한 앤도설판 분해능을 실시한 결과 가장 분해능이 우수한 균주 Rhodococcus sp. EDB2를 선별하여 보다 그 특성을 분석하였다.
Strain | Closese Relatives | Similarity (%) | Diff/Total nt |
EDA2 | Thalassobius gelatinovorus IAM 12617T | 96.9 | 42/1360 |
EDA3 | Ruegeria mobilis NBRC 101030T | 98.8 | 16/1361 |
EDA5 | Echinicola vietnamensis KMM 6221T | 92.2 | 110/1414 |
EDB2 | Rhodococcus pyridinivorans PDB9T | 99.0 | 14/1428 |
EDSW1 | Tenacibaculum aiptasiae a4T | 97.6 | 33/1394 |
EDSW2 | Thalassospira tepidiphila 1-1BT | 98.4 | 22/1380 |
1.4. 16S
rRNA
유전자 염기서열 및 계통관계 분석
세균의 16S rDNA 염기서열 분석은 분리 균주들을 액체 배지에서 30℃에서 2일-3일 동안 배양한 후 이로부터 추출된 chromosomal DNA를 PCR 반응의 주형으로, 프라이머는 Eub27F : 5' -AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG- 3'와 Eub1522R : 5' -AAG GAG GTG ATC CAR CCG CA- 3'로 이루어진 한 세트가 사용하였다.
PCR 반응은 GeneAmp PCR System 9700 (Applied Biosystems, CT)를 사용하여 수행하였고, 반응 조건은 95℃에서 5분간 초기 열처리를 한 후, 95℃에서 1분, 55℃에서 1분, 72℃에서 1분씩 30번 반복하여 마지막에는 72℃에서 1분간 처리한 후 4℃에서 보관하였다. 증폭된 DNA는 1.0% agarose gel에서 전기영동한 후 gel extraction kit(SolGent사)에 의해 회수되었다. 회수된 DNA는 pGEM-T easy vector(Promega, Madison, Wisconsin)에 ligation한 후 E. coli JM109에 형질전환하였다. 형질전환된 클론의 플라스미드 DNA를 분리한 후 promoter primer나 SP6 promoter primer를 이용하여 ABI 377 자동염기서열 분석기(Applied Biosystem, Foster, USA)에서 양방향으로 DNA sequencing을 수행하였다.
결정된 염기서열은 Ribosomal Database Project-Ⅱ(http://rdp.cme.msu.edu) GenBankhttp://ncbi.nlm.nih.gov)의 database를 이용하여 분석하였다. 염기서열이 결정된 미생물의 계통관계는 EZtaxon을 이용하여 type 균주들의 16S rNA 염기서열과의 관계를 나타내었다.
1.5.
엔도설판
분해균주
EDB2
의 16S
rRNA
유전자 분석 결과
도 3은 분리한 로도코커스 피리디노보란스 PDB9 (Rhodococcus pyridinovorans EDB2) 균주의 16S rDNA 서열을 나타낸다. 도 4은 16S rRNA 서열에 의한 EDB2의 계통관계 분석결과를 나타낸다. 16S rDNA 염기서열에 기초한 분자계통분류학적 분석에서 균주 EDB2로 명명된 균주는 계통학적으로Rhodococcus 속에 포함되었다. Rhodococcus 속에 속하며 biphenyl 분해능이 있는 R. pyridinivorans와 99.6%, R. rhodochrous와 98.5%의 염기서열 유사도를 보여주어, 균주 EDB2를 R. pyridinivorans EDB2로 명명하였다 (도 3). 균주 EDB-2와 가장 높은 상동성을 나타내는 R. pyridinivorans R04는 독성이 매우 강한 방향족 화합물인 biphenyl을 분해하는 것으로 알려져 있으며, R. sp. WTZ-R2는 Di(2-ethylhexyl)phthalate (DEHP)를 매우 효과적으로 제거할 능력이 있는 것으로 밝혀졌다.
따라서 본 발명에서 분리한 균주 R. pyridinivorans EDB2는 갯벌을 오염시키는 난분해성인 다양한 방향족 및 지방족 화합물을 제거하는데 활용할 수 있을 것으로 기대됨에 따라 다음에서 갯벌을 오염시키는 난분해성인 다양한 방향족 및 지방족 화합물을 제거에 대한 특성을 조사하였다.
2. 연안 갯벌에서 동정한
규주의
환경조건별 생장 특성
2.1. 환경 조건별 균주 생장 시험
본 발명에서는 온도, PH, 염도 등 세 가지 환경 조건을 달리하여 균주의 생장 여부를 조사하였다. 균 생장의 적정 온도 범위를 정하기 위해 균주를 LB 배지에 접종한 후 4℃, 20℃, 30℃, 37, 42℃, 45℃에서 배양하였으며, 30℃이하는 LB 고체 배지에, 40℃부터는 LB 액체 배지에 균주를 접종한 후 수조(water bath)에서 배양하면서 생장 여부를 관찰하였다.
균 생장의 적정 염도범위는 sodium chloride를 이용하여 LB 배지의 염도를 0%, 1%, 2%, 3%, 4%, 5%, 6%, 7%로 조정하였고, 균 생장의 적정 pH 범위는 NaOH와 HCl을 이용하여 LB 배지의 pH를 pH3에서 pH11까지 pH1 단위로 조정하여 사용하였다. 균주의 생장 여부는 균주 접종 후 각 균주의 적정 생장 온도에서 5일간 배양하면서 생장여부를 확인하였다.
가.
EDB2
의
배지생장
시험 결과
균주 EDB2가 어떤 배지에서 생장할 수 있는 지를 분석하기 위하여, marine agar (MA), Luria-Bertani (LB), nutrient agar (NA), R2A, tryptic soy broth (TSA) 등 5개의 다른 배지를 사용하여 분석한 결과, 시험한 모든 배지에서 잘 생장하는 것으로 나타났다 (표 2).
Medium | MA | LB | NA | R2A | TSA |
EDB2 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ |
나. 온도가 균주 EDB2의 생장에 미치는 영향
균주 EDB2가 생장할 수 있는 온도 범위를 조사하기 위하여, 4℃에서 45℃ 범위에서 생장여부를 조사하였다. 균주 EDB2는 25℃에서 42℃ 범위에서 생장하는 것으로 나타났다(표 3).
Temp (℃) | 4 | 10 | 25 | 30 | 37 | 42 | 45 |
EDB2 | - | - | +++ | +++ | +++ | +++ | - |
다. pH가 균주 EDB2의 생장에 미치는 영향
균주 EDB2가 생장할 수 있는 pH 범위를 조사하기 위하여, pH4에서 pH11 범위에서 생장여부를 조사하였다. 균주 EDB2는 pH5에서 pH10 범위에서 생장하는 것으로 나타났다(표 4).
pH | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 |
EDB2 | - | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | - |
라. 염도가 균주 EDB2의 생장에 미치는 영향
균주 EDB2가 생장할 수 있는 염분도의 범위를 결정하기 위하여 0-12% Zobell sea salts가 포함된 배지에서 균주 EDB2의 생장 여부를 관찰하였다. 균주 EDB2는 염분이 없이도 성장하였으나, 10% 이상의 염분도에서는 생장하지 않았다 (표 5).
Salinity (%) | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
EDB2 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ |
3.
갯지렁이에서
동정한
신규주의
생리, 생화학적 특성
3.1. 세균의 형태적, 생리, 생화학적 특성 분석
세균의 형태적, 생리적 특성을 보기 위해 균주들을 sea salts가 첨가된 LBSS 고체배지에 접종하여 25℃에서 배양하였다. 먼저 5-7일 동안 배양하면서 형성되는 단일 콜로니의 형태, 색깔, 크기를 관찰하였으며, 균주의 형태와 크기는 광학 현미경과 주사전자현미경을 이용하여 관찰하였다. 전자현미경 관찰 시, 배양된 세균을 4% glutaraldehyde로 2시간 동안 고정시킨 후 50mM phosphate 완충용액 (pH 7.2)을 이용하여 세적하였다.
그리고 2% osmium tetroxide 용액에 1시간 고정한 후 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100% 에탄올로 탈수시킨 후 동결건조 시켰다. 이 후 ion sputter를 이용하여 gold coating을 한 후 전자현미경을 이용하여 관찰하였다. 균주의 운동성은 0.4%의 agar를 포함시킨 semisolid 배지에서 확인하였고, 산소 대사와 관계된 oxidase는 Oxidase Reagent Kit(BioMㅹrieux)를 이용하여 콜로니 색의 변화로 분석하였다. Catelase는 3% 과산수소를 균체에 떨어뜨려 거품이 발생 유, 무로 판단하였다.
기타 분리 균주의 생리, 생화학적 특성은 여러 가지 API kit(BioMㅹrieux)를 하용하였으며, API 20E, APL 20NE, API 50CHB, 그리고 API ZYM kit를 동시에 이용하여 균주의 특성을 조사하였다. 이때 균주는 LBSS 고체배지를 이용하여 25℃에서 2일-3일간 배양하였으며, 성장된 균체는 멸균된 3% sea salt 용액에 현탁하여 제조회사의 지시에 따라 수행하였다. 주요 조사 항목으로는 nitrate 환원반응, esterase(C4), esterase lipase(C8), leucine arylamidase, acid phosphatase, naphtol-AS-Bi-phosphohydrolase, glucose acidification, gelatin 액화, arginine dihydrolase, urease, β-glucosidase, β-galactosidase, alkalin phosphatase, lipase(C14) 등이 효소활성 유무, indole 생성 여부 등을 들 수 있다. 또한 탄소원 mannitol, gluconate, malate, citrate, glucose, arabinose, mammose, N-acetyl-glucosamine, maltose, caprate, adipate, phenyl-acetate 등의 동화 여부 등에 대하여 조사하였다.
도 5는 API 20 E에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타내고, 도 6는 API 20 NE에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타내며, 도 7은 API CHB/E에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다. 또한 도 8은 API ZYM에 의한 EDB2의 생화학적 특성 분석결과를 나타낸다.
가. API 20 E에 의한 EDB2 생화학적 특성 분석 결과
균주 EDB2의 생화학적 특성을 API 20 E kit의 20 가지 기질을 사용하여 분석한 결과, 균주 EDB2는 urease를 갖고 있어 urea를 이용하였고, Voges-Proskauer 시험을 통해 당을 발효하여 acetoin을 생산할 수 있는 능력이 있음을 확인하였다. 여러 당 기질을 사용하여 산화-발효 실험 결과 시험한 9개 기질 (amygdalin, arabinose, glucose, inositol, mannitol, melibiose, rhamnose, sorbitol, sucrose)을 사용하였을 때 모두 산화나 발효 반응을 나타내지 않았다 (도 5).
나. API 20 NE에 의한 EDB2 생화학적 특성 분석 결과
균주 EDB2의 생화학적 특성을 API 20 NE kit의 20 가지 기질을 사용하여 분석한 결과, 균주 EDB2는 nitrate reduction 능력을 갖고 있으며, PNPG를 기질로 하였을 때 β-galactosidae 양성 반응을 나타내었다. Mannitol과 malate 이용능이 있었다(도 6).
다. API CHB/E에 의한 EDB2 생화학적 특성 분석 결과
균주 EDB2의 생화학적 특성을 API CHB/E kit의 48 가지 기질을 사용하여 분석한 결과, 균주 EDB2는 sorbitol과 esculin 양성 반응을 나타내었고, 나머지 기질에 대해서는 음성반응을 보였다(도 7).
라.
API
ZYM
에 의한
EDB2
생화학적 특성 분석 결과
균주 EDB2의 생화학적 특성을 API ZYM kit의 20 종류의 효소능을 측정한 결과, 균주 EDB2는 alkaline phosphatase, esterase lipase, leucine arylamidase, trypsin, acid phosphatase, α-glucosidase, 그리고 β-glucosidase 효소를 갖고 있음이 밝혀졌다(도 8).
4. 연안갯벌에서 동정한 균주의
엔도설판
정화용 제제로의 응용
도 9은 고체 및 액체 배지에서 앤도설판을 이용할 수 있는 균주 EDB-2의 순수배양결과를 나타내고 도 10 HPLC에 의한 균주 EDB2의 엔도설판 분해능 시험결과를 나타낸다.
4.1. 고분자 물질 분해 효소 활성 시험
고분자 유기물질 분해능을 시험하기 위해 셀룰로오스, 녹말, 카세인, 그리고 Tween80이 포함된 LB 고체 배지에 본 발명에서 분리하여 선별한 균주들을 접종한 후, 이들 고분자 물질 분해에 관련된 효소, cellulase, amylase, protease, 그리고 lipase 활성이 있는지에 대해 조사하였다. 균주의 셀룰로오스 분해능은 접종 후 30℃에서 3일 배양 후 congo red로 30분간 염색 후 1M NaCl을 이용하여 5분간 탈색하여 형성된 투명환으로, 녹말 분해는 iodine으로 30분 염색 후 1M NaCl로 5분간 탈색하여 형성된 투명환으로 판단하였다.
카세인과 Tween80은 각각 2일, 3일 배양하여 별다른 염색과정을 거치지 않고 육안으로 관찰된 투명환으로 분해능을 확인하였다. Alkaline protease 활성은 0.5% 농도의 Hammerstan casein (Merck)을 이용하여 100mM Tris- -HCl buffer (pH 10.0)에서 결정하였다 (Joo et al., 2002). 효소활성의 1 Unit는 표준 분석 조건하에서 50℃에서 분당 1g의 티로신을 방출하는 효소의 양으로 정의 된다.
가. EDB2의 고분자 유기물 분해능 시험
균주 EDB2에 의한 유기물 분해능 시험을 실시한 결과, 균주 EDB2는 지질과 탄수화물 분해능이 우수한 것으로 조사되었으며, 핵산분해 효소에 대한 활성도 높은 것으로 나타났다 (표 6).
Salinity (%) | Starch (1%) |
DNase | CM/ Cellulose |
Casein (1%) |
Tween | |||
20 | 40 | 60 | 80 | |||||
EDB2 | +++ | +++ | - | - | + | +++ | +++ | ++ |
나. 순수 배양된 단일 미생물에 대한 유기물 분해능 평가 및 우수 미생물 선별
농화배양을 통해 분리된 단일균주를 사용하여 10ppm의 엔도설판을 단일 탄소원 및 에너지원으로 첨가한 BM배지에서 분해능을 조사하고, 그 중 분해능이 매우 우수한 균주를 선별하였다. 엔도설판 농화배양액으로부터 순수분리한 각 균주를 단일탄소원 및 에너지원으로 엔도설판이 포함된 고체배지와 액체배지에서 엔도설판 분해능을 측정한 결과, EDB2는 매우 잘 성장하였으며, HPLC 분석을 통해 엔도설판 분해능이 매우 뛰어난 균주로 확인되었다 (도 9, 도 10).
HPLC 분석을 위해 5ppm 농도로 엔도설판을 처리하여 EDB2에 의한 엔도설판 분해능을 측정한 결과, 배양 후 7일 만에 약 85%의 엔도설판 분해능을 나타내었다. 엔도설판 분해능이 가장 우수한 것으로 평가되는 균주 EDB2를 첫 번째 시험균주로 선정하여 동정을 실시하고 생리, 생화학, 유전학적 특성을 조사하는데 사용하였다.
다. 신규 균주의 갯벌 정화용 제제로의 응용
16S rRNA 염기서열 분석결과, EDB2는 Rhodococcus속에 포함되는 종으로 밝혀졌다. 앞에서 설명한 바와 같이, Rhodococcus 속은 다른 생물에 의하여 쉽게 분해될 수 없는 난분해성 물질을 제거하는데 탁월한 능력이 있으며, 오염물질로 오염된 환경을 생물학적으로 처리하는데 가장 유망한 그룹 중의 하나로 여겨지고 있다. Rhodococcus 속에 의하여 분해되는 난분해성 물질에는 지방족과 방향족 탄화수소, 산화물, 할로겐 화합물 등 다양한 범위의 화합물이 있다.
이들 화합물의 대부분은 난분해성으로 독성을 가진 복잡한 합성 분자들로 미국 환경보호청(EPA) 제1 오염물질 목록(USEPA, 1996)과 독성물질 및 질병 등록청의 위험물질의 제 1목록(ATSDR, 1997)에 포함되어 있다. 환경 생명공학에서 Rhodococcus의 중요성은 매우 강조되어 왔으며 오염물질을 분해하는데 있어 주로 생물 촉매로서 이들 속의 역할에 대해 많은 논의가 이루어져왔다. 따라서 Rhodococcus는 환경복원에 적합한 기구로서 균주 혹은 그들이 생산하는 효소가 활용될 수 있을 것으로 여겨지고 있다.
본 발명의 갯벌로부터 동정된 새로운 균주 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2, 기탁번호: KACC91762P)를 액체 배양액에 접종하여 온도 25℃ 내지 42℃, pH5 내지 pH10에서 1-2일간 배양하였으며, 배양단계에서 얻은 결과물 일부를 액상 미생물제제로, 남은 일부를 무균적으로 건조시키고, 건조단계 후 얻어진 결과물을 무균적으로 분쇄하는 단계를 거쳐 분말형태의 미생물제제로 제조하였다. 도 11은 갯벌 유래 EDB2 균주를 이용하여 제조된 미생물제제의 예를 나타낸다.
액상제조물의 경우는 색상조절을 위한 부형제로서 식용색소 등이 첨가될 수 있고, 저장성 개선을 위한 부형제로서 비타민 C등이 첨가될 수 있으며, 효소능력 활성화를 위한 부형제로서 Tween80등이 첨가될 수 있다. 고체분말용의 경우는 발효용 부형제로서 미강, 탈지강, 당밀 등이 부가적으로 첨가되고, 저장성 개선용 부형제로서 규산염 등이 첨가 가능하다.
이와 같이 갯벌에서 분리한 새로운 균주 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2, 기탁번호: KACC91762P)에 의한 엔도설판 분해능이 확인됨에 따라 엔도설판 등 독성이 강한 물질로 오염된 연안 갯벌을 복원하는데 매우 유용하게 활용할 수 있을 것으로 사료된다.
연안 갯벌과 해수를 엔도설판 농화배양액에 접종, 배양하여 분리한 본 발명의 연안 갯벌유래 미생물은 호기성, 그람 양성, 막대형이며, 핑크빛을 띠고 있다. 생장가능 온도는 20℃~45℃, 최적온도는 약 20℃~42℃로 생장 온도 범위가 비교적 넓은 것으로 나타났다. Casein과 cellulose 가수분해능력은 없지만 DNA, agar, starch 그리고 tween의 분해 능력이 있는 것으로 나타나 지질 분해능이 우수하여 엔도설판 등의 화합물들을 광범위하게 생분해할 수 있어, 2차 환경오염을 일으키지 않고 효율적으로 연안 갯벌의 오염된 환경을 정화하는데 유용하게 활용할 수 있을 것이다.
<110> Chonnam National University
<120> A novel microorganism Rhodococcus pyridinovorans EDB2 degrading
aromatic compounds
<130> P1320130127004
<160> 1
<170> KopatentIn 2.0
<210> 1
<211> 1429
<212> RNA
<213> Rhodococcus pyridinivorans EDB2
<400> 1
cggggggtgg cgcgtgctac catgcagtcg aacgatgaag cccagcttgc tgggtggatt 60
agtggcgaac gggtgagtaa cacgtgggtg atctgccctg cactctggga taagcctggg 120
aaactgggtc taataccgga tatgacctcg ggatgcatgt tctggggtgg aaagtttttc 180
ggtgcaggat gagcccgcgg cctatcagct tgttggtggg gtaatggcct accaaggcga 240
cgacgggtag ccggcctgag agggcgaccg gccacactgg gactgagaca cggcccagac 300
tcctacggga ggcagcagtg gggaatattg cacaatgggc gcaagcctga tgcagcgacg 360
ccgcgtgagg gatgacggcc ttcgggttgt aaacctcttt cacccatgac gaagcgcaag 420
tgacggtagt gggagaagaa gcaccggcca actacgtgcc agcagccgcg gtaatacgta 480
gggtgcgagc gttgtccgga attactgggc gtaaagagct cgtaggcggt ttgtcgcgtc 540
gtctgtgaaa tcccgcagct caactgcggg cttgcaggcg atacgggcag actcgagtac 600
tgcaggggag actggaattc ctggtgtagc ggtgaaatgc gcagatatca ggaggaacac 660
cggtggcgaa ggcgggtctc tgggcagtaa ctgacgctga ggagcgaaag cgtgggtagc 720
gaacaggatt agataccctg gtagtccacg ccgtaaacgg tgggcgctag gtgtgggttt 780
ccttccacgg gatccgtgcc gtagccaacg cattaagcgc cacgcctggg gagtacggcc 840
gcaaggctaa aactcaaagg aattgacggg ggcccgcaca agcggcggag catgtggatt 900
aattcgatgc aacgcgaaga accttacctg ggtttgacat gtaccggacg actgcagaga 960
tgtggtttcc cttgtgggcc ggtagacagg tggtgcatgg ctgtcgtcag ctcgtgtcgt 1020
gagatgttgg gttaagtccc gcaacgagcg caacccttgt cctgtgttgc cagcacgtga 1080
tggtggggac tcgcaggaga ctgccggggt caactcggag gaaggtgggg acgacgtcaa 1140
gtcatcatgc cccttatgtc cagggcttca cacatgctac aatggtcggt acagagggct 1200
gcgataccgt gaggtggagc gaatccctta aagccggtct cagttcggat cggggtctgc 1260
aactcgaccc cgtgaagtcg gagtcgctag taatcgcaga tcagcaacgc tgcggtgaat 1320
acgttcccgg gccttgtaca caccgcccgt cacgtcatga aagtcggtaa cacccgaagc 1380
cggtggccta accccttgtg ggagggagcc gtcgaatgtg atcgtaccc 1429
Claims (14)
- 염분 내성이 있고 유기물 분해능이 있는 연안 갯벌에서 동정되는 것을 특징으로 하는 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2.
- 제1항에 있어서, 서열번호 1로 기재된 16S rRNA의 염기서열을 갖는 것을 특징으로 하는 로도코커스 피리디노보란스 EDB2.
- 제1항에 있어서, 수탁번호가 KACC91762P인 것을 특징으로 하는 로도코커스 피리디노란스 EDB2.
- 제1항에 있어서 유기물은 엔도설판, 단백질, 탄수화물, 지질 및 계면활성제 중에 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 연안 갯벌 유래 새로운 균주 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2.
- 로도코커스 피리디노보란스 EDB2, 수탁번호 KACC91762P를 배양하여 얻은 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 제5항에 있어서 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2를 온도 25℃ 내지 42℃에서 배양하는 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 제5항에 있어서 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2를 pH5 내지 pH10에서 배양하는 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 제5항 내지 제7항 중의 어느 한 항의 제조 방법으로 배양하여 얻은 액상제조물에 색상조절을 위한 부형제 또는 저장성 개선을 위한 부형제 또는 효소능력 활성화를 위한 부형제 중에서 선택되는 어느 하나의 물질이 부가적으로 첨가된 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 제5항 내지 제8항 중의 어느 한 항의 제조 방법으로 배양하여 얻은 결과물을 무균적으로 건조시키는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 제9항에 있어서 상기 건조단계 후 얻어진 결과물을 무균적으로 분쇄하는 단계를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 제10항에 있어서 분쇄된 미생물제제에 발효용 부형제 또는 저장성 개선용 부형제 중에서 선택되는 어느 하나의 물질이 부가적으로 첨가된 것을 특징으로 하는 갯벌 정화용 미생물 정화제의 제조방법.
- 연안 갯벌로부터 동정된 염분 내성이 있고, 유기물 분해능이 있는 로도코커스 피리디니보란스(Rhodococcus pyridinivorans) EDB2 균주의 배양물을 유효성분으로 함유하는 연안 갯벌 정화용 미생물 제제.
- 제12항의 연안 갯벌 정화용 미생물 제제를 갯벌에 살포하여 갯벌에 퇴적된 유기물을 분해시키는 연안 갯벌정화 방법.
- 제13항의 유기물은 엔도설판, 단백질, 탄수화물, 지질 및 계면활성제 중에 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 연안 갯벌정화 방법.
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