KR20130139506A - 프로바이오틱 활성을 갖는 신규 락토바실러스 속 균주 및 이를 이용한 발효홍삼 제조방법 - Google Patents
프로바이오틱 활성을 갖는 신규 락토바실러스 속 균주 및 이를 이용한 발효홍삼 제조방법 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 프로바이오틱 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 속 균주 및 이를 이용한 발효홍삼 제조방법에 관한 것으로, 구체적으로 유아분변에서 분리한 프로바이오틱 활성을 갖는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 유산균주는 유의적인 항균력, 내산성 및 내담즙성을 나타내며, 상기 유산균주를 이용하여 홍삼을 발효시킨 결과, 발효홍삼의 항산화능 및 유용 사포닌 생성능이 현저히 증가하는 효과를 나타내므로, 상기 균주는 다양한 홍삼제품의 개발 및 건강식품용 조성물의 소재로 유용하게 사용될 수 있다.
Description
본 발명은 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 또는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 유산균주 및 상기 균주를 이용한 발효홍삼 제조방법에 관한 것이다.
인삼(Panax ginseng C.A. Meyer)은 오래전부터 사용되어 온 가장 중요한 한방 약용식물로 동북아시아에서 주로 보기약(補氣藥)으로 사용되어 왔다. 인삼은 약리 효능이 우수하며, 재배조건이 까다롭기 때문에 수확량이 적어서 고가의 영약으로 취급되어 왔으나, 수삼은 수분함량이 70% 내외로 그대로 저장하거나 운반하면 부패 및 손상되기 쉽기 때문에 우리나라에서는 장기저장, 유통, 품질안정화 등의 목적으로 홍삼 및 백삼 제조방법이 일찍부터 발달하였다.
홍삼의 약리효능으로는 기억력 및 학습 효능 개선작용, 항암 활성 및 면역 기능 조절작용, 항당뇨작용, 간 기능 항진 작용 및 독성물질 해독작용, 심혈관 장해개선 및 항동맥 경화작용, 콜레스테롤 개선작용, 항스트레스 및 항피로작용 등이 알려져 있으며, 또한 홍삼에는 백삼에는 존재하지 않는 -Rh2, -Rs1, -Rs2, -Rs1 등의 진세노사이드와 사포닌, 말톨(maltol), 글리세로갈락토지질(glycerogalacto lipid), 글리코실디글리세라이드(glycosyldiglyceride) 등의 홍삼 고유의 생리활성물질이 존재하는 것으로 알려져 있다.
발효인삼 및 발효홍삼 기술은 인삼 또는 홍삼을 미생물 발효 또는 효소 반응을 통해 인삼의 대표적인 생리활성물질인 진세노사이드를 보다 생리활성이 높고 체내 흡수가 용이한 형태로 전환시키는 것으로 이러한 생물전환에 있어서 미생물 균주의 개발이 가장 핵심이 되는 기술이다. 발효인삼 및 발효홍삼은 주로 식품 등 인체 섭취를 용도로 하기 때문에 대부분 식품에 활용 가능한 미생물 위주로 개발되고 있다. 즉, 유산균(낙농유산균, 김치유산균, 비피더스균 등)을 이용한 경우가 가장 많으며, 그 외에 바실러스(고초균, 청국장 발효균), 초산균, 누룩 곰팡이, 효모, 식용 버섯균사체 등 다양한 방법이 개발되었다. 그러나 대표적으로 상용화되고 있는 발효인삼 및 발효홍삼에는 대부분 그 안전성이나 기호성 측면에서 가장 안전한 유산균을 이용하고 있다(구안산업, 웅진 등).
미생물을 이용한 방법 이외에도 미생물 발효의 궁극적인 작용 원리가 되는 효소를 직접 사용하는 효소반응 방법도 개발되고 있다. 즉, 진세노사이드 생물전환의 기본원리는 포도당 등이 결합되어 있는 배당체 구조의 화합물을 당과의 결합을 잘라내는 반응에 의해 비배당체로 전환하는 것으로서, 글루코시다제(glucosidase) 등 관련된 당결합 가수분해효소를 사용할 수 있으며, 식품보다는 의약 및 화장품을 주요 목표로 하고 있다.
한편, 프로바이오틱(probiotic)을 이용한 발효홍삼 소재는 홍삼을 프로바이오틱에 의해 발효 가공한 또 다른 건강기능식품 소재로서, 다양한 형태의 건강기능식품의 원료 및 소재로서 응용될 수 있다. 또한, 프로바이오틱 발효홍삼 소재는 발효유 등 건강기능성 음료 제조 기술에 이용할 수 있고, 일반식품, 특수용도식품, 건강기능식품, 건강보조식품 등 다양한 종류의 식음료 산업에서 응용될 수 있다. 나아가 프로바이오틱 발효홍삼 소재는 그 기능성의 우수성에 따라 추출물 및 유효활성성분을 활용하여 천연물 의약품 소재로도 활용 가능하다.
기술적 측면에서는 프로바이오틱에 의한 발효홍삼 소재 개발을 통해 기존의 방법에 비해 보다 체계적인 고기능성 발효홍삼 기술의 확보에 기여할 수 있다. 또한, 안전성이 확보된 유산균 프로바이오틱 이용으로 보다 안전성이 높고 식품응용성이 향상된 발효홍삼기술을 확보할 수 있다. 더불어, 세계적으로 독창적이고 우수한 홍삼 제조기술에도 불구하고 현재 취약한 홍삼 응용제품화 기술력 확보에 기여할 수 있다.
한편, 발효홍삼에 대한 기술로써, 대한민국 등록특허 제10-0618171호에는 인삼사포닌 분해물을 함유하는 발효홍삼 및 이의 제조방법이 개시되어 있고, 대한민국 등록특허 제10-0606241호에는 항당뇨의 효과가 증가된 홍삼청국장 제조방법이 개시되어 있으며, 대한민국 등록특허 제10-0597853호에는 홍삼 추출액을 이용한 청국장의 제조법이 개시되어 있다. 또한, 대한민국 출원번호 제10-2005-0069032호에는 유산균을 이용한 발효홍삼 조성물 및 이의 제조방법이 개시되어 있고, 대한민국 출원번호 제10-2005-0094311호에는 김치 유산균을 이용한 발효인삼 또는 발효홍삼의 제조방법이 개시되어 있다. 그러나 신규한 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 락토바실러스 속 균주인, 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 균주 또는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 균주를 이용하여 생리활성 물질이 강화된 발효홍삼을 제조하는 방법에 대해서는 알려진바 없다.
이에 본 발명자들은 홍삼 발효능과 프로바이오틱 특성을 동시에 가진 유산균주를 탐색하고, 이를 이용한 발효홍삼 소재를 개발하기 위해 노력한 결과, 유아분변에서 분리한 프로바이오틱 활성을 갖는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 유산균주가 유의적인 항균력, 내산성 및 내담즙성를 나타내며, 상기 유산균주를 이용하여 홍삼을 발효시킨 결과, 발효홍삼의 항산화능 및 유용 사포닌 생성능이 현저히 증가하는 효과가 있음을 확인함으로써, 상기 균주는 다양한 홍삼제품의 개발 및 건강식품용 조성물의 소재로 유용하게 이용될 수 있음을 밝힘으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 프로바이오틱 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 유산균주 및 이를 이용한 발효홍삼 제조방법을 제공하기 위한 것이다.
상기 목적을 해결하기 위하여, 본 발명은 수탁번호 KCCM11237P로 기탁된 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 균주를 제공한다.
또한, 본 발명은 수탁번호 KCCM11238P로 기탁된 프로바이오틱 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 균주를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 균주, 또는 이의 배양액을 포함하는 홍삼 발효용 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주 및 락토바실러스 가세리 3B2 균주, 또는 이의 배양액을 홍삼에 접종하는 단계를 포함하는 진세노사이드(ginsenoside) 함량을 증가시키는 발효홍삼의 제조방법을 제공한다.
아울러, 본 발명은 본 발명의 제조방법으로 제조된 발효홍삼을 제공한다.
본 발명의 유아분변에서 분리한 프로바이오틱 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 유산균주는 유의적인 항균력, 내산성 및 내담즙성을 나타내며, 상기 유산균주를 이용하여 홍삼을 발효시킨 결과, 발효홍삼의 항산화능 및 유용 사포닌 생성능이 현저히 증가하는 효과를 나타내므로, 상기 균주는 다양한 홍삼제품의 개발 및 건강식품용 조성물의 소재로 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 유아분변에서 분리한 유산균주 중 홍삼 발효능을 가진 균주를 확인한 도이다.
도 2는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 균주의 PCR 산물을 가지고 전기영동을 수행하여 유전자의 증폭 여부를 확인한 도이다:
A: 락토바실러스 가세리 3B2 균주; 및
B: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주.
도 3은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주의 16S rDNA 염기서열을 나타낸 도이다:
A: 락토바실러스 가세리 3B2 16S rDNA 염기서열; 및
B: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 16S rDNA 염기서열.
도 4는 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주를 홍삼 배지에 접종한 후, pH 변화를 확인한 도이다.
도 5는 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주를 홍삼 배지에 접종한 후, 생균수의 변화를 확인한 도이다.
도 6은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 베타-글루코시다제(β-glucosidase) 활성을 확인한 도이다.
도 7은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 항균 활성을 확인한 도이다:
A: 리스테리아 모노사이토제네스 KCTC 3710(Listeria monocytogenes KCTC 3710);
B: 살모넬라 엔테리카 속 엔테리카 KCTC 1926(Salmonella enterica subsp . enterica KCTC 1926);
C: 스타필로코커스 아우레우스 KCCM 12256(Staphylococcus aureus KCCM 12256);
1: 대조군;
2: 락토바실러스 가세리 3B2 균주의 배양액 원액 처리군;
3: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주의 배양액 원액 처리군;
4: 락토바실러스 가세리 3B2 균주의 배양액 중화 상등액 처리군(pH 7); 및
5: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주의 배양액 중화 상등액 처리군(pH 7).
도 8은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 내산성을 확인한 도이다.
도 9는 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 내담즙성을 확인한 도이다.
도 10은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼의 TLC(Thin layer chromatography) 분석 결과를 나타낸 도이다:
S: 진세노사이드 스탠다드;
C: 10% 홍삼 배지
1: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주로 발효시킨 홍삼; 및
2: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼.
도 11은 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 4종의 효소제제(수미자임 AC(sumizyme AC), 사이토라제 PCL5(cytolase PCL5), 라피다아제 C80MAX(rapidase C80MAX), 로하멘트 CL(rohament CL))로 발효시킨 홍삼의 TLC 분석 결과를 나타낸 도이다:
S: 진세노사이드 스탠다드;
C: 10% 홍삼 배지;
1: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 수미자임 AC로 발효시킨 홍삼;
2: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼;
3: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 라피다아제 C80MAX로 발효시킨 홍삼;
4: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 로하멘트 CL로 발효시킨 홍삼;
5: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 수미자임 AC로 발효시킨 홍삼;
6: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼;
7: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 라피다아제 C80MAX로 발효시킨 홍삼; 및
8: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 로하멘트 CL로 발효시킨 홍삼.
도 12는 Rb1의 효소에 의한 생물전환(bioconversion) 과정을 나타낸 도이다.
도 13은 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼의 HPLC 분석 결과를 나타낸 도이다:
A: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼; 및
B: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼.
도 14는 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼의 DPPH 라디칼 소거 활성을 확인한 도이다.
10% RG: 10% 홍삼 배지;
3B2: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주로 발효시킨 홍삼;
SFB1: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼;
3B2+cyt: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼;
SFB1+cyt: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼; 및
ascorbic acid: 아스코르비산 (비교군)
도 2는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 균주의 PCR 산물을 가지고 전기영동을 수행하여 유전자의 증폭 여부를 확인한 도이다:
A: 락토바실러스 가세리 3B2 균주; 및
B: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주.
도 3은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주의 16S rDNA 염기서열을 나타낸 도이다:
A: 락토바실러스 가세리 3B2 16S rDNA 염기서열; 및
B: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 16S rDNA 염기서열.
도 4는 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주를 홍삼 배지에 접종한 후, pH 변화를 확인한 도이다.
도 5는 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주를 홍삼 배지에 접종한 후, 생균수의 변화를 확인한 도이다.
도 6은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 베타-글루코시다제(β-glucosidase) 활성을 확인한 도이다.
도 7은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 항균 활성을 확인한 도이다:
A: 리스테리아 모노사이토제네스 KCTC 3710(Listeria monocytogenes KCTC 3710);
B: 살모넬라 엔테리카 속 엔테리카 KCTC 1926(Salmonella enterica subsp . enterica KCTC 1926);
C: 스타필로코커스 아우레우스 KCCM 12256(Staphylococcus aureus KCCM 12256);
1: 대조군;
2: 락토바실러스 가세리 3B2 균주의 배양액 원액 처리군;
3: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주의 배양액 원액 처리군;
4: 락토바실러스 가세리 3B2 균주의 배양액 중화 상등액 처리군(pH 7); 및
5: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주의 배양액 중화 상등액 처리군(pH 7).
도 8은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 내산성을 확인한 도이다.
도 9는 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 각각의 균주의 내담즙성을 확인한 도이다.
도 10은 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼의 TLC(Thin layer chromatography) 분석 결과를 나타낸 도이다:
S: 진세노사이드 스탠다드;
C: 10% 홍삼 배지
1: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주로 발효시킨 홍삼; 및
2: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼.
도 11은 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 4종의 효소제제(수미자임 AC(sumizyme AC), 사이토라제 PCL5(cytolase PCL5), 라피다아제 C80MAX(rapidase C80MAX), 로하멘트 CL(rohament CL))로 발효시킨 홍삼의 TLC 분석 결과를 나타낸 도이다:
S: 진세노사이드 스탠다드;
C: 10% 홍삼 배지;
1: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 수미자임 AC로 발효시킨 홍삼;
2: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼;
3: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 라피다아제 C80MAX로 발효시킨 홍삼;
4: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 로하멘트 CL로 발효시킨 홍삼;
5: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 수미자임 AC로 발효시킨 홍삼;
6: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼;
7: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 라피다아제 C80MAX로 발효시킨 홍삼; 및
8: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 로하멘트 CL로 발효시킨 홍삼.
도 12는 Rb1의 효소에 의한 생물전환(bioconversion) 과정을 나타낸 도이다.
도 13은 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼의 HPLC 분석 결과를 나타낸 도이다:
A: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼; 및
B: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼.
도 14는 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼의 DPPH 라디칼 소거 활성을 확인한 도이다.
10% RG: 10% 홍삼 배지;
3B2: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주로 발효시킨 홍삼;
SFB1: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼;
3B2+cyt: 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼;
SFB1+cyt: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 및 사이토라제 PCL5로 발효시킨 홍삼; 및
ascorbic acid: 아스코르비산 (비교군)
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명은 수탁번호 KCCM11237P로 기탁된 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 균주를 제공한다.
또한, 본 발명은 수탁번호 KCCM11238P로 기탁된 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 신규한 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 균주를 제공한다.
상기 균주는 유아분변에서 분리한 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
상기 균주는 사포닌 생물전환능, 항균력, 내산성 및 내담즙성을 가지는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
상기 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주는 서열번호 3으로 기재되는 16S rDNA 염기서열을 가지는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
상기 락토바실러스 가세리 3B2 균주는 서열번호 4로 기재되는 16S rDNA 염기서열을 가지는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
본 발명의 구체적인 실시예에서, 본 발명자들은 유아분변에서 홍삼 발효능과 프로바이오틱(probiotic) 균주로써 기능성을 가진 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주를 선별한 후(도 1 참조), 생화학적(도 2 참조) 및 유전학적 분리동정 방법(도 3 참조)을 이용하여 상기 유산균주를 확인하였고, 이를 한국미생물보존센터에 2011년 12월 22일자로 기탁하였다(락토바실러스 가세리 3B2 수탁번호: KCCM11238P; 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 수탁번호: KCCM11237P).
또한, 본 발명자들은 상기 유산균주의 홍삼발효능을 확인하기 위하여, 10% 홍삼배지에 상기 각각의 유산균주를 접종한 후, 생육 정도를 확인 및 베타-글루코시다제(β-glucosidase) 활성을 측정한 결과, 본 발명의 유산 균주는 유의적인 홍삼 발효능을 가지는 것을 확인하였다(도 4 내지 도 6 참조).
또한, 본 발명자들은 상기 유아분변에서 분리한 유산균주의 프로바이오틱 활성을 확인하기 위하여, 상기 균주의 항균활성, pH 조건에 따른 내산성 및 담즙산에 대한 내성을 측정한 결과, 유의적인 내산성, 내담즙성 및 병원성 세균에 대한 항균력을 나타내는 것을 확인하였다(도 7 내지 도 9 참조).
따라서, 본 발명의 유아분변에서 분리한 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주는 유의적인 홍삼 발효능 및 프로바이오틱 활성을 동시에 나타내므로 건강식품용 조성물의 소재로 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명은 락토바실러스 플란타룸 SFB1 또는 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주, 또는 이의 배양액을 포함하는 홍삼 발효용 조성물을 제공한다.
상기 조성물은 사이토라제 PCL5(cytolase PCL5) 효소를 추가적으로 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
본 발명의 구체적인 실시예에서, 본 발명자들은 상기 2종의 유산균주의 유용사포닌 전환능력은 일차적으로 베타-글루코시다제 효소 활성을 확인함으로써 확인하였으나(도 6 참조), 효소를 생성하는 균주라 하더라도 생성된 효소의 활성이 없거나, 미량 생성되어 유용 사포닌으로 전환되는 정도가 낮을 수 있으므로, 상기 유산균주로 발효시킨 홍삼의 TLC(Thin layer chromatography) 분석을 수행한 결과, 매우 적은 양의 화합물 K가 전환됨을 확인하였다(도 10 참조). 따라서, 유산균주와 함께 홍삼을 발효시킬 때 유용 사포닌의 전환을 더 증가시키기 위한 효소제제를 탐색한 결과, 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5 효소를 처리한 발효홍삼(도 11 라인 2 및 6)에서 화합물 K가 생성된 것을 확인하였다(도 11 내지 도 12, 표 3 및 표 4 참조). 따라서, 발효홍삼 제조시 본 발명의 유산균주와 더불어 효소제제인 사이토라제 PCL5 효소를 사용하여 유용 사포닌 성분을 증가시킬 수 있음을 확인하였다.
또한, 본 발명자들인 상기 2종의 유산균주 및 사이토라제 PCL5 효소로 발효시킨 홍삼의 생리활성을 탐색하기 위하여, 항산화 활성 실험을 수행한 결과, 본 발명의 유산균주, 또는 본 발명의 유산균주 및 사이토라제 PCL5 효소로 발효시킨 홍삼의 항산화능이 발효시키지 않은 홍삼보다 유의적인 항산화활성을 나타내는 것을 확인하였다(도 13 참조).
따라서, 본 발명의 락토바실러스 플란타룸 SFB1 또는 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주, 또는 이의 배양액을 포함하는 홍삼 발효용 조성물은 발효홍삼의 항산화능 및 유용 사포닌 생성능을 현저히 증가시키므로, 다양한 홍삼제품의 개발에 유용하게 사용될 수 있다.
상기 락토바실러스 플란타룸 SFB1 또는 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주의 배양액에는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 또는 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주가 생산하는 다양한 물질들이 포함되어 있어 홍삼 발효용 조성물에 유효성분으로 포함되었을 때, 상기 유산균주를 포함한 조성물과 동일한 효과를 나타낼 수 있다.
본 발명의 조성물은 상기 유효 성분 외에 통상적인 약학적 담체 및 부형제를 추가로 포함할 수 있으며, 이러한 조성물은 통상적인 프로바이오틱 조성물 제조방법에 따라 열건조 또는 동결-건조하여 생균제 형태로 제조하여 이용할 수 있다.
본 발명의 조성물은 조성물 총 중량에 대해, 유효성분이 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주 또는 락토바실러스 가세리 3B2 균주, 또는 이 둘의 혼합 균주인 경우에는 이를 각각 105 내지 1012 cfu/g, 바람직하게는 107 내지 1011 cfu/g의 함량으로 포함할 수 있고, 유효성분이 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주 또는 락토바실러스 가세리 3B2 균주 또는 이 둘의 혼합 균주의 배양액인 경우 이를 각각 106 내지 1012 ㎖/g, 바람직하게는 107 내지 1011 ㎖/g의 함량으로 포함할 수 있다.
또한, 본 발명은 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주 또는 락토바실러스 가세리 3B2 균주 및 이의 배양액을 홍삼에 접종하는 단계를 포함하는 진세노사이드(ginsenoside) 함량을 증가시키는 발효홍삼의 제조방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 제조방법으로 제조된 발효홍삼을 제공한다.
상기 제조방법에 있어서, 사이토라제 PCL5 효소를 추가적으로 홍삼에 접종하는 단계를 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
상기 발효홍삼은 항산화활성이 증가되는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
상기 진세노사이드는 화합물 K인 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.
본 발명의 락토바실러스 플란타룸 SFB1 균주 및 락토바실러스 가세리 3B2 균주로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 균주 및 이의 배양액을 홍삼에 접종하는 단계를 포함하는 제조방법으로 제조된 발효홍삼은 발효홍삼의 항산화능 및 유용 사포닌 생성능을 현저히 증가시키므로, 다양한 홍삼제품의 개발에 유용하게 사용될 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예 및 실험예에 의해 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예 및 실험예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예 및 실험예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<
실시예
1> 발효홍삼의 제조를 위한
유산균주의
분리
발효홍삼 제조를 위한 최적의 발효능력을 가지는 유산균주를 선발하기 위하여 강원도 원주 및 춘천 소재 산후조리원에서 유아분변 샘플을 채취하여 홍삼 발효능을 가진 유산균주를 분리하였다.
구체적으로, 유아분변 샘플을 1 g 채취한 후, 0.85% NaOH 용액에 순차적으로 십진 희석한 다음, MRS 아가(agar)에 도말하여 37℃에서 24시간 동안 배양한 후, 콜로니 형태 및 그람 염색을 통해 1차적으로 유산균주을 분리하였다. 그런 다음, 홍삼 발효능을 가진 유산균을 스크리닝하기 위해 유산균 콜로니를 Senthil 등의 방법을 변형하여 기존 MRS 배지에 에스쿨린(esculin) 및 페릭 암모늄 시트레이트(ferric ammonium citrate)를 첨가하여 제조한 MRS-에스쿨린 아가(MRS-esculin agar)(표 1)에 접종한 뒤, 37℃에서 24시간 동안 배양한 이후 콜로니 주변에 검은색 환의 생성 유무를 확인하였다. 검은색 환이 생성될 경우 베타-글루코시다제(β-glucosidase) 효소 활성이 있고 홍삼 사포닌 중 특히 유용한 사포닌인 화합물(compound K)로 전환능이 있다고 판단하여 홍삼 발효능을 가진 균주로 선발하였다.
그 결과, 도 1에 나타낸 바와 같이, 베타-글루코시다제 효소 활성을 가진 유산균주 중 월등한 홍삼 발효능을 보인 분리 균주 3B2 및 SFB1을 선택하여 하기 발효홍삼 제조를 위한 유산균주로 사용하였다(도 1).
| 함유(Content) | 양(Amount)(g/L) |
| 덱스트로오스(Dextrose) | 20 |
| 프로테아제 펩톤(Protease peptone) | 10 |
| 쇠고기 추출물(Beef extract) | 10 |
| 효모 추출물(Yeast extract) | 5 |
| 아세트산나트륨(Sodium acetate) | 5 |
| 암모늄사이트레이트(ammonium citrate) | 2 |
| 폴리소르베이트80(Polysorbate 80) | 1 |
| 마그네슘 설페이트(Magnesium sulfate) | 0.1 |
| 망간 설페이트(Manganase sulfate) | 0.05 |
| 아가(Agar) | 15 |
| 에스쿨린(esculin) | 1 |
| 페릭 암모늄 시트레이트 (ferric ammonium citrate) |
0.05 |
<
실시예
2>
유산균주의
동정
<2-1>
당이용성을
통한 균주의 동정
상기 <실시예 1>에서 분리한 균주를 동정하기 위하여, API 50 CH 키트(kit)를 이용하여 당이용성을 확인하였다.
구체적으로, 상기 <실시예 1>에서 분리한 3B2 및 SFB1 균주를 각각 MRS 아가에 접종하여 37℃에서 24시간 동안 배양한 다음 형성된 콜로니를 무균적으로 취하여 API 50CHL 배지(Bio Meriex Co., Lyon, France)에 현탁하고, 상기 현탁액을 API 50 CH 스트립(strip)에 분주하여 37℃에서 48시간 동안 배양한 후 각각의 당이용 패턴을 확인한 후(표 2), 각 균주별 생화학적 결과로 Bergey와 MacFaddin의 방법에 준하여 유산균 동정을 실시하였다.
그 결과, 표 2에 나타낸 바와 같이 당이용성 패턴, 및 Bergey와 MacFaddin의 방법에 의하여, 3B2는 락토바실러스 가세리(Lactobacillus gasseri) 및 SFB1은 락토바실러스 플란타룸(Lactobacillus plantarum)인 것을 확인하였다(표 2).
| 탄소원(Carbonsource) | 3B2 (+:양성 및 -:음성) |
SFB1 (+:양성 및 -:음성) |
| 대조군(control) | - | - |
| 글리세롤(Glycerol) | - | - |
| 에리스리톨(Erythritol) | - | - |
| D-아라비노스(D-Arabinose) | - | - |
| L-아라비노스(L-Arabinose) | - | + |
| 리보오스(Ribose) | - | + |
| D-자일로오스(D-Xylose) | - | - |
| L-자일로오스(L-Xylose) | - | - |
| 아도니톨(Adonitol | - | - |
| 메틸-자일로사으드(Methyl-xyloside) | - | - |
| 갈락토스(Galactose) | + | + |
| D-글루코스(D-Glucose) | + | + |
| D-푸룩토스(D-Fructose) | + | + |
| D-마노스(D-Mannose) | + | + |
| L-소르보스(L-Sorbose) | - | - |
| 람노오스(Rhamnose) | - | - |
| 덜시톨(Dulcitol) | - | - |
| 이노사톨(Inositol) | - | - |
| 마니톨(Mannitol) | - | + |
| 솔비톨(Sorbitol) | - | + |
| 메틸-D-만노사이드(Methyl-D-mannoside) | - | + |
| 메틸-D-글루코시드(Methyl-D-glucoside) | - | - |
| N-아세틸 글루코사민(N-acetyl glucosamine) | - | + |
| 아미그달린(Amygdaline) | - | - |
| 알부틴(Arbutine) | + | + |
| 에스쿨린(Esculine) | + | - |
| 살리신(Salicine) | + | + |
| 셀로비오스(Cellobiose) | + | + |
| 말토오스(Maltose) | + | + |
| 락토오스(Lactose) | + | + |
| 멜리비오스(Melibiose) | - | - |
| 사카로스(Saccharose) | + | + |
| 트레할로스(Trehalose) | + | + |
| 이눌린(Inuline) | - | - |
| 멜레지토스(Melezitose) | - | + |
| D-라피노오스(D-Raffinose) | - | - |
| 애미던(Amidon) | - | - |
| 글리코겐(Glycogen) | - | - |
| 자일리톨(Xylitol) | - | - |
| 겐티오비오스(Gentiobiose) | + | + |
| D-튜라노스(D-Turanose) | + | + |
| D-락소오스(D-Lyxose) | - | - |
| D-타가토오스(D-Tagatose) | - | - |
| D-푸코오스(D-Fucose) | - | - |
| L-푸코오스(L-Fucose) | - | - |
| D-아라비톨(D-Arabitol) | - | - |
| L-아라비톨(L-Arabitol) | - | - |
| 글루코네이트(Gluconate) | - | + |
| 3-코테-글루코네이트(3-Kote-gluconate) | - | - |
| 5-케토-글루코네이트(5-Keto-gluconate) | - | - |
<2-2> 16S
rDNA
시퀀싱(
sequencing
)을 통한 균주의 동정
상기 <실시예 1>에서 분리한 3B2 및 SFB1 균주를 유전학적으로 동정하기 위해 16S rDNA 분석을 수행하였다.
구체적으로, 각각의 분리균주의 콜로니 샘플의 16S rDNA 증폭을 위하여 유산균용 프라이머인 정방향 프로이머(forward primer) 27F(5'-agagtttgatccctcag-3';서열번호: 1) 및 역방향 프라이머(reverse primer) 1492R(5'-ggttaccttgttacgactt-3';서열번호 2)을 사용하여 처음 사이클은 95℃에서 15분, 30 사이클은 95℃에서 20초, 50℃에서 40초, 72℃에서 1분 30초, 마지막 사이클은 72℃에서 5분 및 4℃에서 10분의 조건으로 PCR(Polymerase chain reaction)을 수행하였으며, PCR 산물은 증폭된 유전자(gene)의 크기를 전기영동을 통해 1차적으로 확인한 후(도 2), (주)마크로젠에 시퀸싱 분석을 의뢰하였으며 NCBI 진뱅크(genebank)를 통한 시퀀싱 분석을 수행하였다.
그 결과, 도 3에 나타낸 바와 같이, SFB1의 16S rDNA 염기서열은 서열번호 3으로 기재되는 염기서열을 갖는 것을 확인하였고, 3B2의 16S rDNA 염기서열은 서열번호 4로 기재되는 염기서열을 갖는 것을 확인하였다(도 3).
또한, 상기 각각의 염기서열을 진뱅크 블라스트(Blast)를 이용하여 분석한 결과, 3B2는 상동성 99%의 신규한 락토바실러스 가세리(Lactobacillus gasseri)로 동정되었고, SFB1은 상동성 97%의 락토바실러스 플란타룸(Lactobacillus plantarum)으로 동정되었다. 따라서, 동정 결과를 바탕으로, 상기 유산균을 각각 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2), 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1)으로 명명하고, 한국미생물보존센터에 2011년 12월 22일자로 기탁하였다:
락토바실러스 플란타룸 SFB1 수탁번호: KCCM11237P; 및
락토바실러스 가세리 3B2 수탁번호: KCCM11238P.
<
실험예
1>
유아분변에서
분리한
유산균주의
홍삼
발효능
확인
상기 <실시예 1>에서 분리한 각각의 유산균주의 홍삼 발효능을 확인하기 위하여, 상기 <실시예 1>에서 분리한 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산 균주를 각각 MRS 브로스(broth)에 접종하여 37℃에서 24시간 동안 배양한 다음, 상기 배양액 1%를 10% 홍삼배지에 접종하여 각각의 유산균주의 생육 정도 및 pH를 확인하였다.
구체적으로, 10% 홍삼배지는 국내산 홍삼농축액(Nutrex, 68°Brix)을 정제수에 10% 첨가하여 혼합한 후, 85℃에서 15분간 살균하여 사용하였다. 10% 홍삼배지 제조에 이용한 홍삼농축액은 진세노사이드 Rg1과 Rb1의 합이 4mg/g 이상, 조사포닌 70 mg/g 이상의 제품을 ABF Global(한국)에서 구매하여 이용하였다. 유산균 발효홍삼 배양액의 수소 이온농도는 pH 미터(Orion 3 star plus, Thermo Fisher Scientific Inc., 미국)를 이용하여 측정하였다.
그 결과, 도 4 및 도 5에 나타낸 바와 같이, 10% 홍삼배지의 초기 pH는 약 pH4.5이며 각각 균주를 접종하여 24시간 배양하여 3시간 간격으로 측정한 결과, 락토바실러스 가세리 3B2는 pH4.28, 락토바실러스 플란타룸 SFB1은 pH3.89까지 홍삼배지의 pH를 감소시키는 것으로 나타났다(도 4). 또한, 락토바실러스 플란타룸 SFB1은 생균수가 시간에 따라 증가되는 양상을 보였으며, 락토바실러스 가세리 3B2는 15시간 배양 생균수가 최고치에 달했다가 이후 감소하는 경향을 나타냈다(도 5).
<
실험예
2>
유아분변에서
분리한
유산균주의
베타-
글루코시다제
(β-
glucosidase
) 활성 확인
상기 <실시예 1>에서 분리한 각각의 유산균주의 홍삼 발효능을 추가로 확인하기 위하여, 당결합 가수분해효소인 베타-글루코시다제(β-glucosidase) 활성을 측정하였다.
구체적으로, 상기 <실시예 1>에서 분리한 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주를 MRS 브로스에 접종하여 37℃에서 24시간 배양한 후 배양액을 원심분리(6,000×g, 5분)하여 균체가 제거된 상등액을 효소액으로 사용하였다. 250 ㎕의 10 mM ρ-니트로페닐-β-D-글루코피라노사이드(ρ-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside)(Sigma-Aldrich, 미국) 기질용액에 상기 상등액 50 ㎕와 증류수 200 ㎕를 첨가하여 20분간 반응시킨 후 0.5 M Na3CO3용액 500 ㎕를 첨가하여 반응을 중지시킨 다음 450 nm의 파장에서 흡광도를 측정하여 베타-글루코시다제 활성을 측정하였다.
그 결과, 도 6에 나타낸 바와 같이, 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 모두 대조군으로 사용된 10% 홍삼배지에 비해 높은 흡광도를 보였으며, 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 보다는 락토바실러스 가세리 3B2가 더 높은 베타-글루코시다제 효소 활성을 나타내는 것을 확인하였다(도 6).
<
실험예
3>
유아분변에서
분리한
유산균주의
프로바이오틱
활성 확인
<3-1>
유아분변에서
분리한
유산균주의
항균 활성 확인
상기 <실시예 1>에서 분리한 각각의 유산균주의 항균활성을 페이퍼 디스크 한천 확산법(Paper disk agar diffusion method)을 이용하여 확인하였다.
구체적으로, 피검 균주로는 살모넬라 엔테리카 속 엔테리카 KCTC 1926(Salmonella enterica subsp . enterica KCTC 1926), 리스테리아 모노사이토제네스 KCTC 3710(Listeria monocytogenes KCTC 3710) 및 스타필로코커스 아우레우스 KCCM 12256(Staphylococcus aureus KCCM 12256)의 3종의 병원성 미생물을 분양받아 각각 TSB 배지(tryptic soy broth)(Oxoid, 영국)에 접종한 뒤 37℃에서 24시간 배양하여 사용하였다. 분리 유산균 배양액은 MRS 브로스에 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주를 접종하여 37℃에서 48시간 배양한 다음 45 ㎛ 실린지 필터(syringe filter)로 여과한 원액과 배양액을 pH 7.0으로 맞춘 중화 상등액을 45 ㎛ 실린지 필터로 여과한 여액을 각각 샘플로 사용하였다. 각 피검 균주를 트립틱 소이 소프트 아가(tryptic soy soft agar)에 접종하여 미리 만들어 둔 트립틱 소이 아가 플레이트(tryptic soy agar plate)에 부어 30분간 굳힌 다음, 멸균한 페이퍼 디스크(paper disk)를 올려 각 샘플 50㎕를 적가하였고, 각 피검균주의 배양 조건에 맞춰 배양한 후 클린 존(clear zone)의 형성 여부를 확인하였다.
그 결과, 도 7에 나타낸 바와 같이, 유산균 배양액에 대하여 원액과 중화 상등액을 각각 사용하여 항균력을 확인하였으나, 중화 상등액에 대한 항균력은 거의 없는 것으로 나타났고, 원액에 대한 항균력은 일부 나타나는 것으로 확인되었다(도 7). 구체적으로, 살모넬라 엔테리카 속 엔테리카에 대한 항균력은 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 락토바실러스 가세리 3B2 원액에서 모두 나타났으나, 다른 두 병원성 미생물에 대한 항균력은 락토바실러스 가세리 3B2의 원액 처리군에서만 나타나는 것을 확인하였다.
<3-2>
유아분변에서
분리한
유산균주의
내산성
확인
상기 <실시예 1>에서 분리한 각각의 유산균주의 pH 조건에 따른 내산성을 측정하였다.
구체적으로, 상기 <실시예 1>에서 분리한 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주를 각각 MRS 브로스에 접종하여 37℃에서 24시간 배양하고, 상기 배양액을 1N-HCl로 보정하여 만든 pH2.0, pH3.0, pH4.0의 MRS 브로스에 각각 2%씩 접종하여 37℃에서 0, 1, 2, 4 및 6시간 동안 배양하였다. 그런 다음, 각 시간별 배양 샘플을 0.85% NaOH 용액에 십진 희석하고, 상기 희석액을 1 ml 채취하여 MRS 아가에 접종한 다음, 37℃에서 24시간 배양하여 생성된 콜로니를 계수하여 각각의 산성 pH에 대한 내성을 확인하였다.
그 결과, 도 8에 나타낸 바와 같이 락토바실러스 가세리 3B2 및 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 모두 강산성인 pH3.0 조건에서 4시간 이상 균이 생존하는 것을 확인하였고, 특히 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주는 pH4.0 조건에서는 오히려 생균수가 늘어나는 것을 확인하였다(도 8).
<3-3>
유아분변에서
분리한
유산균주의
내담즙성
확인
상기 <실시예 1>에서 분리한 각각의 유산균주의 담즙산에 대한 내성을 측정하였다.
구체적으로, 상기 <실시예 1>에서 분리한 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주를 MRS 브로스에 접종하여 37℃에서 24시간 배양하고, 상기 배양액을 0.1%, 0.2%, 0.3% 담즙산(oxgall bile salt)을 첨가한 MRS 브로스에 각각 2%씩 접종하여 37℃에서 0, 1, 2, 4 및 6시간 배양하였으며, 각 시간별 배양 샘플을 0.85% NaOH 용액에 십진 희석하고, 상기 희석액을 1 ml 채취하여 MRS 아가에 접종한 다음, 37℃에서 24시간 배양하여 생성된 콜로니를 계수하여 각각의 조건에 따른 내성을 확인하였다.
그 결과, 도 9에 나타낸 바와 같이 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주 모두 시간이 지남에 따라 생균수가 증가하는 양상을 보였다. 특히 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주는 시간에 따라 대조군(담즙산 미첨가군)과 각 조건별 생균수가 큰 차이를 보이지 않았다. 따라서, 본 발명의 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주는 담즙산에 대한 내성이 강한 것을 확인하였다(도 9).
<
실험예
4> 유산균
발효홍삼의
유용사포닌 증강을 위한 효소제제의 탐색
상기 <실시예 1>에서 분리한 각각의 유산균주의 유용사포닌 전환능력은 일차적으로 상기 <실시예 1>에서 분리한 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주의 베타-글루코시다제 효소 활성을 확인함으로써 확인하였으나, 효소를 생성하는 균주라 하더라도 생성된 효소의 활성이 없거나, 미량 생성되어 유용 사포닌으로 전환되는 정도가 낮을 수 있으므로, 상기 유산균주로 발효시킨 홍삼의 TLC(Thin layer chromatography) 분석을 수행하였다.
그 결과, 도 10에 나타낸 바와 같이 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주로 발효시킨 홍삼의 TLC 분석 결과 매우 적은 양의 화합물 K가 전환됨을 확인하였다(도 10).
<4-1>
발효홍삼
사포닌의
TLC
분석
본 발명의 유산균주와 함께 홍삼을 발효시킬 때 유용 사포닌의 전환을 더 증가시키기 위해 효소제제를 첨가하였고, 4종의 효소제제(수미자임 AC(sumizyme AC), 사이토라제 PCL5(cytolase PCL5), 라피다아제 C80MAX(rapidase C80MAX), 로하멘트 CL(rohament CL))를 각각 균주와 함께 사용법에 명시된 방법으로 사용하였다. 그런 다음, 본 발명의 유산균주 및 상기 효소 발효홍삼의 유용 사포닌을 분석하기 위해 1차적으로 하기 TLC 분석을 수행한 이후 같은 샘플을 강원대학교에 의뢰하여 하기 HPLC 분석을 수행하였다.
구체적으로 10% 홍삼배지에 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 상기 4종의 효소를 각각 접종하여 37℃에서 24시간 배양한 배양액을 원심분리(6,000×g, 5 분)하여 균체를 제거한 다음, 상등액 500 ㎕와 n-부탄올(n-butanol) 500 ㎕를 혼합하여 원심분리(6,000×g, 5 분)한 상등액을 샘플로 사용한다. 그런 다음, 상기 상등액과 진세노사이드 Rb1, Rg1, Rg3 및 화합물 K 스탠다드를 TLC 플레이트(plate)에 점적한 다음, TLC 혼합 용매(n-부탄올 : 아세틸 아세테이트(ethyl acetate) : 물(H2O) = 5 : 1 : 4, upper phase)를 TLC 플레이트에 전개시키고 TLC 플레이트를 말린 후, 10% 황산 용액으로 발색시켜 사포닌 성분을 분석하였으며, 대조군으로는 발효시키지 않은 10% 홍삼 배지의 사포닌 성분을 분석하였다.
그 결과, 도 11에 나타낸 바와 같이 대조군과 비교했을 때 본 발명의 유산균주 및 상기 효소 처리군의 진세노사이드 Rb1의 농도가 약간 흐려지는 것을 확인하였으며, 특히 각 균주와 사이토라제 PCL5 효소를 처리하여 발효시킨 홍삼의 사포닌에서는 진세노사이드 Rb1과 Rg1의 농도가 매우 낮은 것을 확인하였다(도 11). Rb1의 효소에 의한 생물전환(bioconversion) 과정에서 최종산물은 유용 사포닌 성분인 화합물 K로 알려져 있다(도 12).
도 11에서 나타낸 바와 같이 TLC 결과에서 화합물 K의 밴드가 검출되지 않았으나 홍삼 배지에서 24시간 동안 발효시킨 결과로 미량으로 생성되어 나타나지 않았거나, Rb1의 생물전환 과정 중 중간산물만이 생성되어 화합물 K가 생성되지 않았을 가능성이 있었다. 따라서 화합물 K의 미량 생성 가능성을 확인하기 위해 같은 샘플을 사용하여 하기 HPLC 분석을 수행하였고, 각 조건의 사포닌 조성을 확인하였다.
<4-2>
발효홍삼
사포닌의
HPLC
분석
상기 <실시예 1>에서 분리한 유산균주 및 상기 실험예 <4-1>의 4종의 효소로 발효시킨 홍삼의 유용사포닌인 화합물 K의 생성 여부를 확인하기 위하여, HPLC(LC-20A, Shimadzu Corp., Japan) 분석을 수행하였다.
구체적으로, 10% 홍삼배지에 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 상기 4종의 효소를 각각 접종하여 37℃에서 24시간 배양한 배양액을 시료로 사용하였고, 시료에 함유되어 있는 진세노사이드는 스탠다드 진세노사이드(compound K Chengdu Cogon Bio-tech Co., 중국)와 보존 시간(retention time)을 비교하여 분석하였다. 분석용 컬럼은 Kinetex 컬럼(column)(Phenomenex, 미국, 2.6 ㎛, 100 × 4.6 mm)을 사용하였다. 분석에 이용한 이동상 A는 물(water)을 이용하였으며, 이동상 B는 아세토니트릴(acetonitrile)을 이용하였다. 진세노사이드 분석은 30분간 컬럼을 통해 나오는 화합물을 203 nm에서 모니터링하며 분석을 실시하였다. 이동용매의 용출속도는 1.0 mL/min, 오븐(oven)의 온도는 40℃로 유지하였으며, 시료는 0.45 ㎛ 실린지 필터(syringe filter)(Advantec, 일본)로 여과하여 HPLC에 주입하여 분석하였다. 진세노사이드 정량분석을 위하여 각 진세노사이드를 농도별 표준 커브(standard curve)를 작성하였으며, 내부 표준(internal standard)으로 Digoxin(Sigma- Aldrich, 미국)을 이용하였다. 또한, HPLC 수행 조건에서 화합물 K 스탠다드의 보존 시간은 22.226분의 피크(peak)로 확인되었다.
그 결과, 도 13에 나타낸 바와 같이, 다른 샘플에서는 모두 화합물 K가 생성되지 않았으나 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5 효소를 처리한 발효홍삼(도 11 라인 2, 6)에서 화합물 K가 생성된 것을 확인하였다(도 13). 락토바실러스 가세리 3B2 및 사이토라제 PCL5 효소 처리군은 9.0mg/L의 화합물 K 함량을 나타내었고, 락토바실러스 플란타룸 SFB1과 사이토라제 PCL5 효소 처리군은 7.3mg/L의 화합물 K 함량을 나타내었다(표 3 및 표 4). 따라서 발효홍삼 제조시 본 발명의 유산균주와 더불어 효소제제인 사이토라제 PCL5 효소를 사용하여 유용 사포닌 성분을 증가시킬 수 있음을 확인하였다(도 13, 표 3 및 표 4).
| mg/L | Rg1 | Re | Rf | Rg2 | Rh1 |
| 대조군 | 303.0 | 413.6 | 264.2 | 331.2 | 289.7 |
| 3B2 | 363.5 | 155.2 | 49.9 | 33.3 | 49.4 |
| SFB1 | 343.7 | 135.6 | 54.1 | 33.4 | 52.1 |
대조군: 10% 홍삼배지; 3B2: 10% 홍삼배지에 락토바실러스 가세리 3B2 및 사이토라제 PCL5 효소 처리군; SFB1: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 사이토라제 PCL5 효소 처리군.
| mg/L | Rb1 | Rb2 | Rb3 | Rc | Rd | Rg3 | C-K a | Rh2 |
| 대조군 | 1726.6 | 737.7 | 207.0 | 845.0 | 764.8 | 477.5 | - | 120.6 |
| 3B2 | 12.8 | 33.4 | 10.3 | - | 109.0 | 15.5 | 9.0 | 4.7 |
| SFB1 | 7.3 | 24.3 | 7.0 | - | 100.8 | 12.9 | 7.3 | 3.9 |
대조군: 10% 홍삼배지; 3B2: 10% 홍삼배지에 락토바실러스 가세리 3B2 및 사이토라제 PCL5 효소 처리군; SFB1: 락토바실러스 플란타룸 SFB1 및 사이토라제 PCL5 효소 처리군.
<4-3>
발효홍삼의
항산화 활성 확인
상기 <실시예 1>에서 분리한 유산균주 및 사이토라제 PCL5 효소로 발효시킨 홍삼의 생리활성을 탐색하기 위하여, 항산화 활성 실험을 수행하였다.
구체적으로, 항산화활성은 Stoilova 등의 방법을 변형하여 DPPH 라디칼 소거활성을 수행하였으며, DPPH(1,1-diphenyl-2-picryl-hydrazyl)에 대한 전자공여능(electron donating ability)으로 발효홍삼액에 대한 환원력을 측정하였다. 락토바실러스 가세리 3B2 또는 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주, 및 사이토라제 PCL5 효소를 사용하여 발효시킨 홍삼의 농도를 설정하여 농도별 시료와 150 ㎛ DPPH용액을 각각 100 ㎕씩 채취하여 혼합한 후 암소에서 30분간 반응시킨 반응액을 490 nm에서 흡광도를 측정하였다. Blank는 에탄올과 150 ㎛ DPPH용액을 각각 100 ㎕씩 채취하여 혼합한 후 암소에서 30분간 반응시킨 반응액이며, 빈 시료(empty sample)는 에탄올과 시료를 각각 100 ㎕씩 채취하여 혼합한 후 암소에서 30분간 반 시킨 반응액으로 490nm에서 흡광도를 측정하였다. 비교군으로 아스코르비산(ascorbic acid)를 사용하였으며 DPPH 라디칼 소거활성은 하기 [수학식 1]로 계산하였다.
그 결과, 도 14에 나타낸 바와 같이 본 발명의 유산균주, 또는 본 발명의 유산균주 및 사이토라제 PCL5 효소로 발효시킨 홍삼의 항산화능이 발효시키지 않은 홍삼보다 유의적인 항산화활성을 나타내는 것을 확인하였다. 균주별로는 락토바실러스 가세리 3B2 유산균주가 락토바실러스 플란타룸 SFB1 유산균주보다 좋은 항산화능을 나타내었으며, 균주로만 발효시킨 처리군보다 균주와 효소를 같이 처리한 실험군의 항산화능이 더 좋은 것을 확인하였다(도 14).
A: 시료의 흡광도;
B: Blank의 흡광도; 및
C: 빈 시료의 흡광도.
<110> Seuol F&B Co., Ltd
<120> Novel Lactobacillus sp. strain in probioic activation and method
of producing of fermented red ginseng using the same
<130> DP201200067
<160> 4
<170> KopatentIn 1.71
<210> 1
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> forward primer 27F
<400> 1
agagtttgat ccctcag 17
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> reverse primer 1492R
<400> 2
ggttaccttg ttacgactt 19
<210> 3
<211> 900
<212> DNA
<213> Lacobacillus plantarum SFB1
<400> 3
gcttattagc tttctgctaa gcacatgcag tcgtaccgag cgttcatagc catattgatt 60
ggtgcttgca tcatgattta catttgagtg agtggcgaac tggtgagtaa cacgtgggaa 120
acctgcccag aagcggggga taacacctgg aaacagatgc taataccgca taacaacttg 180
gaccgcatgg tccgagtttg aaagatggct tcggctatca cttttggatg gtcccgcggc 240
gtattagcta gatggtgggg taacggctca ccatggcaat gatacgtagc cgacctgaga 300
gggtaatcgg ccacattggg actgagacac ggcccaaact cctacgggag gcagcagtag 360
ggaatcttcc acaatggacg aaagtctgat ggagcaacgc cgcgtgagtg aagaagggtt 420
tcggctcgta aaactctgtt gttaaagaag aacatatctg agagtaactg ttcaggtatt 480
gacggtattt aaccagaaag ccacggctaa ctacgtgcca gcagccgcgg taatacgtag 540
gtggcaagcg ttgtccggat ttattgggcg taaagcgagc gcaggcggtt ttttaagtct 600
gatgtgaaag ccttcggctc aaccgaagaa gtgcatcgga aactgggaaa cttgagtgca 660
gaagaggaca gtggaactcc atgtgtagcg gtgaaatgcg tagatatatg gaagaacacc 720
agtggcgaag gcggctgtct ggtctgtaac tgacgctgag gctcgaaagt atgggtagca 780
aacaggatta gataccctgg tagtccatac cgtaaacgat gaatgctaag tgttggaggg 840
tttccgccct tcagtgctgc agctaacgca ttaagcattc cgcctgggga gtacggccgc 900
900
<210> 4
<211> 943
<212> DNA
<213> Lactobacillus gasseri 3B2
<400> 4
gncaggcanc ctcncatgca gtcgnncnag ntngccatag atgaatttgg tgcttgcacc 60
aaatgaaact agatacaagc gagcggcgga cgggtgagta acacgtgggt aacctgccca 120
agagactggg ataacacctg gaaacagatg ctaataccgg ataacaacac tagacgcatg 180
tctagagttt aaaagatggt tctgctatca ctcttggatg gacctgcggt gcattagcta 240
gttggtaagg taacggctta ccaaggcaat gatgcatagc cgagttgaga gactgatcgg 300
ccacattggg actgagacac ggcccaaact cctacgggag gcagcagtag ggaatcttcc 360
acaatggacg caagtctgat ggagcaacgc cgcgtgagtg aagaagggtt tcggctcgta 420
aagctctgtt ggtagtgaag aaagatagag gtagtaactg gcctttattt gacggtaatt 480
acttagaaag tcacggctaa ctacgtgcca gcagccgcgg taatacgtag gtggcaagcg 540
ttgtccggat ttattgggcg taaagcgagt gcaggcggtt caataagtct gatgtgaaag 600
ccttcggctc aaccggagaa ttgcatcaga aactgttgaa cttgagtgca gaagaggaga 660
gtggaactcc atgtgtagcg gtggaatgcg tagatatatg gaagaacacc agtggcgaag 720
gcggctctct ggtctgcaac tgacgctgag gctcgaaagc atgggtagcg aacaggatta 780
gataccctgg tagtccatgc cgtaaacgat gagtgctaag tgttgggagg tttccgcctc 840
tcagtgctgc agctaacgca ttaagcactc cgcctgggga gtacgaccgc aaggttgaaa 900
ctcaaggaat tgacgggggc ccgcacaagc ggtggagcat gtg 943
Claims (12)
- 수탁번호 KCCM11237P로 기탁된 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 락토바실러스 플란타룸 SFB1(Lactobacillus plantarum SFB1) 균주.
- 수탁번호 KCCM11238P로 기탁된 프로바이오틱(probiotic) 활성을 갖는 락토바실러스 가세리 3B2(Lactobacillus gasseri 3B2) 균주.
- 제 1항에 있어서, 상기 균주는 서열번호 3으로 기재되는 16S rDNA 염기서열을 가지는 것을 특징으로 하는 균주.
- 제 2항에 있어서, 상기 균주는 서열번호 4로 기재되는 16S rDNA 염기서열을 가지는 것을 특징으로 하는 균주.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 균주는 사포닌 생물전환능, 항균력, 내산성 및 내담즙성을 가지는 것을 특징으로 하는 균주.
- 제 1항 또는 제 2항의 균주, 또는 이의 배양액을 포함하는 홍삼 발효용 조성물.
- 제 6항에 있어서, 상기 조성물은 사이토라제 PCL5(cytolase PCL5) 효소를 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 홍삼 발효용 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항의 균주, 또는 이의 배양액을 홍삼에 접종하는 단계를 포함하는 진세노사이드(ginsenoside) 함량이 증가된 발효홍삼의 제조방법.
- 제 8항에 있어서, 사이토라제 PCL5 효소를 추가적으로 접종하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 진세노사이드 함량이 증가된 발효홍삼의 제조방법.
- 제 8항에 있어서, 상기 발효홍삼은 항산화 활성이 증가되는 것을 특징으로 하는 진세노사이드 함량이 증가된 발효홍삼의 제조방법.
- 제 8항에 있어서, 상기 진세노사이드는 화합물 K(Compound K)인 것을 특징으로 하는 진세노사이드 함량이 증가된 발효홍삼의 제조방법.
- 제 8항의 제조방법으로 제조된 발효홍삼.
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-
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|---|---|---|---|
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| AMND | Amendment | ||
| E902 | Notification of reason for refusal | ||
| AMND | Amendment | ||
| E601 | Decision to refuse application | ||
| X091 | Application refused [patent] | ||
| A107 | Divisional application of patent | ||
| AMND | Amendment | ||
| X701 | Decision to grant (after re-examination) | ||
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