KR20100036052A - 월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물 - Google Patents

Abstract

본 발명은 월계수 잎에서 추출한 코스투놀라이드 (costunolide), 디하이드로코스투스락톤 (dehydrocostuslactone), 스피라폴라이드 (spirafolide), 레이노신 (reynosin) 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드 (3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분 물질들의 전 처리로 H₂O₂와 Dopamine에 의한 세포사멸이 억제되었고, 이로 인한 세포 내 ROS 생성이 억제되는 효과가 되었으며, Dopamine에 의한 염색체 응축이나 DNA 절편 등 세포사멸의 특징이 줄어드는 효과가 있고, 또한, Dopamine을 처리한 실험군에서는 Active caspase-3와 а-synuclein 단백질의 양이 증가하였는데 월계수 단일성분물질의 동시 처리는 Active caspase-3와 а-synuclein의 과발현을 감소하고, SH-SY5Y cell과 흰쥐 대뇌피질 일차배양 신경세포에서 Dopamine으로 유도된 세포사멸에 대해 월계수 단일성분물질이 신경세포 손실에 대해 보호 및 회복할 수 있어 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물에 관한 것이다.

Description

월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물{Composition for the treatment and/or prevention of Parkinson's disease and neurological brain disease by using other compounds from Laurus nobilis leaves extracts}

본 발명은 월계수의 잎에서 추출된 단일성분물질이 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것으로, 보다 상세하게는 코스투놀라이드 (costunolide), 디하이드로코스투스락톤 (dehydrocostuslactone), 스피라폴라이드 (spirafolide), 레이노신 (reynosin) 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12, 6α-olide)의 월계수 (Laurus nobilis)의 잎에서 얻은 단일성분물질들의 산화적 스트레스와 도파민유도성 신경세포 사멸에 대한 효과와 파킨슨병과 신경세포 손실에 뇌의 신경보호효과가 제공하는 월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물에 관한 것이다.

노인성 치매, 파킨슨병 등의 퇴행성 신경계 뇌 질환은 신경세포 손상과 소실 로 이어지는 세포죽음이 그 궁극적 원인이 되고 있다. 예를 들면 노인성 치매의 경우 기억, 인지 등에 관여하는 대뇌피질, 해마 등에서 신경세포들이 소실됨으로써 기억상실을 포함한 주 증상들이 나타나는 것으로 여겨지고 있다. 비슷하게 파킨슨병의 경우에는 중뇌의 흑색질에 있는 도파민성 신경세포들이 선택적으로 소실됨으로써 운동기능조직에 관여하는 기저핵의 기능 이상을 초래하여 운동기능 장애를 유발하게 된다. [Jankovic J, Stacy M, Goetz CG, Pappert EJ editors, Textbook of clinical neurology. Philadelphia: WB Saunders Company,(1999) 655-656; Niimi Y, Ieda T, Hirayama M, Koike Y, Sobue G, Hasegawa Y, et al. Clinical and physiological characteristics of autonomic failure with Parkinson’s disease. Clin Autonom Res 9, (1999)139-144; T.M. Dawson, V.L. Dawson, Molecular pathways of neurodegeneration in Parkinson’s disease. Science, 302 (2003) 819-822.]

신경세포의 죽음에 관여하는 산화적 스트레스의 ROS 에는 nitric oxide, nitrogen dioxide, peroxyl, superoxide(O2-), hydroxyl, alkoxyl등이 있으며 이러한 ROS는 생체 세포내 DNA, 세포 구성 단백질, 지질 등에 비가역적인 손상을 줌으로써[Valko M, Leibfritz D, Moncol J, Cronin MT, Mazur M, Telser J. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. Int J Biochem Cell Biol. 39, (2007):44-84.] 노화는 물론 암을 비롯하여 뇌졸중, 신경 독성 등의 뇌질환과 심장질환, 동맥경화, 염증, 류마티스, 자가 면역질환 등의 각종 질병을 일으키는 원인이 되고[Solov'eva EI, Mironova OP, Baranova OA, Bekman EM, Aseichev AV, Fedin AI, Azizova OA. The free-radical processes and antioxidant therapy in brain ischemia.Zh Nevrol Psikhiatr Im S S Korsakova. 108, (2008) 37-42; Castillo J, Rama R, Davalos A. Nitric oxide-related brain damage in acute ischemic stroke.Stroke. 31, (2000) 852-7; Reeve AK, Krishnan KJ, Turnbull DM. Age related mitochondrial degenerative disorders in humans. Biotechnol J. 3, (2008) 750-6; Puddu P, Puddu GM, Cravero E, Rosati M, Muscari A. The molecular sources of reactive oxygen species in hypertension. Blood Press. 17,(2008) 70-7] 특히 뇌세포에서 ROS 가 다량 생성되면 그로 인한 산화적 스트레스가 세포 내 미토콘드리아의 구조와 기능에 변화를 일으킴으로써 파킨슨병, 알츠하이머와 같은 퇴행성 뇌질환을 일으키게 된다.[Knott AB, Perkins G, Schwarzenbacher R, Bossy-Wetzel E. Mitochondrial fragmentation in neurodegeneration. Nat Rev Neurosci. 9, (2008) 505-18.]

세포 자멸사 (Apoptosis) 는 외부의 물리적인 자극에 의해 수동적인 죽음을 맞이하는 necrosis (세포괴사)와는 달리 다세포 생물체의 정상적인 발달과 개체의 항상성 유지, 손상된 세포를 원활히 제거하기 위한 극히 정상적인 세포자연사 과정이라 볼 수 있다. 세포 자멸사는 다양한 경로를 통해 유인되는데, 이 중에서 내인성 경로 (미토콘드리아)는 caspase 활성으로 진행되며 caspase-3는 세포 자멸사의 강력한 작동효소이다. Apoptosis에서 caspase-3는 세포 내 과발현 시킬 경우 apoptosis가 유도되며, caspase-3 활성 억제제를 사용하면 apoptosis 억제가 유도되는 등 apoptosis에서 중추적인 역할을 한다.[Earnshaw WC, Martins LM, Kaufmann SH. Mammalian caspases: Structure, activation, substrates, and functions during apoptosis. Annu Rev Biochem. 68, (1999) 383-424; Uehara T, Kikuchi Y, Nomura Y. Caspase activation accompanying cytochrome c release from mitochondria is possibly involved in nitric oxide-induced neuronal apoptosis in sh-sy5y cells. J Neurochem. 72, (1999) 196-205] Apoptosis는 특징적으로 핵 내에서의 염색사 응축, 핵 분절이나 DNA fragmentation 등과 같은 특이한 변화를 동반한다.[Figueroa S, Oset-Gasque MJ, Arce C, Martinez-Honduvilla CJ, Gonzalez MP. Mitochondrial involvement in nitric oxide-induced cellular death in cortical neurons in culture. J Neurosci Res. 83, (2006) 441-449]

파킨슨병(Parkinson's disease)은 두 번째로 흔한 퇴행성 신경 뇌 질환으로 65세 이상 인구의 1%, 85세 이상 인구에서는 5%정도로 발병한다. 특징적인 임상적 증상으로는 지속적 떨림, 경직, 서동, 자세 불안정을 수반하며 특히 일부 환자들에서 알츠하이머병 혹은 루게릭병이 동반되기도 하여 파킨슨병과 알츠하이머병간의 공통적인 병리 기작이 암시되어 있다.13[Orly W, Silvia M, Tamar A, Moussa B H, Neurological mechanisms of green tea polyphenols in Alzheimer's and Parkinson's diseases. The Journal of Nutritional Biochemistry, 15(2004) 506-516.] 파킨슨병의 병리적 소견은 흑색 치밀부(substantia nigra pars compactra)의 도파민성 신경세포의 손실과 세포 내 단백질 축적체인 루이소체(LB)의 형성이며[Inamdar N, Arulmozhi D, Tandon A, Bodhankar S, Parkinson's disease: genetics and beyond. Neuropharmacol, 5(2007)99-113; Kordower JH, Chu Y, Hauser RA, Freeman TB, Olanow CW, Lewy body-like pathology in long-term embryonic nigral transplants in Parkinson's disease. Nat Med. 14, (2008) 504-6; Stoessl J, Potential therapeutic targets for Parkinson's disease. Expert Opin Ther Targets, 12(2008)425-36. Review.] α-synuclein 단백은 파킨슨병의 병리적 표식자인 루이소체를 구성하는 주요 성분임이 밝혀졌다.[Spillantini MG, Schmidt ML, Lee VM, Trojanowski JQ,Jakes R, Goedert M, Alpha-synuclein in Lewy bodies. Nature 388(1997)839-840; Xu J, Kao SY, Lee FJ, Song W, Jin LW, Yankner BA,Dopamine-dependent neurotoxicity of alpha-synuclein: a mechanism for selective neurode generation in Parkinson disease. Nat Med, 8(2002)600-606]

도파민(Dopamine, C₈H₁₁NO₂)은 뇌신경 세포들 간에 어떠한 신호를 전달하기 위해 분비되는 신경전달물질 중에 하나이며, 중뇌의 복측에 위치해 있는 흑색질 부위에서 생성된다. 뇌의 많은 기능을 포함하는 중요한 행동과 역할에 영향을 준다. 특히 운동 조절이나 호르몬 조절, 감정, 동기 부여, 욕망, 쾌락, 의욕, 수면, 인식, 학습 등에 영향을 미친다.

Dopamine 분비 조절에 이상이 발생하면 사람에게 다양한 질환이 발생한다. Dopamine의 분비가 과다하거나 활발하면 조울증이나 정신 분열증 (Schizophrenia)을 일으키며, Dopamine의 분비가 줄어들 경우 우울증(Clinical depression)을 일으킨다. 위에서 언급한 바와 같이 Dopamine을 생성하는 신경세포가 손상되면 운동장 애를 일으켜 파킨슨병(PD)을 유발한다.[Ronald D, Arjan B, Jos Prickaerts, Modeling Parkinson’s Disease in Rats: An Evaluation of 6-OHDA Lesions of the Nigrostriatal Pathway. Experimental Neurology 175. (2002) 303-317; Anthony E, Andres M, Parkinson’s disease second of two parts. The New England Journal of Medicine 339. (1998) 1130-1143.]

현재로서는 파킨슨병의 치료법이 없고, 단지 Dopamine 전구물질인 L-dopa 혹은 Dopamine 수용체 촉진제가 증상 호전제로 알려져 있으며, 이러한 약물치료 약물들도 지속적인 도파민성 신경의 손실을 막아내지 못해 결국은 5~6년 내에 그 효과도 급격히 감소하며 운동장애를 포함하는 부작용이 증가하여 병의 후기에는 on-off 현상으로 알려진 L-dopa의 문제들이 급격히 증대되어 발병 후 10~15년 후에 사망에 이르게 된다.[Vautier S, Milane A, Fernandez C, Buyse M, Chacun H, Farinotti R, Interactions between antiparkinsonian drugs and ABCB1/P-glycoprotein at the blood-brain barrier in a rat brain endothelial cell model. Neurosci Lett. 442(2008)19-23.] 따라서 파킨슨병의 정확한 분자 병리 기작에 의거해 병의 진행과정을 늦추거나 막을 수 있는 신경보호 치료제 개발이 시급한 실정이다.

본 연구에서는 월계수(Laurus nobilis) 잎의 단일성분물질들을 이용하였다. 일반적으로 월계수 잎은 향신료나 간간히 민간 약재로 이용되고 있다. 현재 문헌에 보고된 바에 의하면 월계수 잎의 추출물은 혈중 알코올 농도의 저하, lipopolysaccharide (LPS)에 의해 활성화된 nitric oxide(NO) 생성 억제 활성 등의 생물학적 활성이 보고되어 있다. [Yoshikawa M, Shimoda H, Uemura T, Morikawa T, Kawahara Y, Matsuda H, Alcohol absorption inhibitors from bay leaf (Laurus nobilis): structure-requirements of sesquiterpenes for the activity. Bioorg Med Chem 8(2000) 2071-7; Jung JH, Ha JY, Min KR, Shibata F, Nakagawa H, Kang SS, Chang IM, Kim Y, Reynosin from Sassurea lappa as inhibitor on CINC-1 induction in LPS- stimulated NRK-52E cells. Planta Med.5(1998) 454-5.] 하지만 뇌 관련 질환의 신경세포의 보호에는 연구된 바 없으며 파킨슨병 동물모델 실험에도 역시 처음이다.

따라서 월계수의 산화적 스트레스와 도파민유도성 신경세포사멸의 보호기전과 동물 모델에서의 도파민성 신경세포의 손실 후 치료효과를 통해 파킨슨병에 보호와 치료효과는 물론 파킨슨병과 공통적인 병리 기작을 갖는 알츠하이머병 혹은 루게릭 병과 Dopamine이 관여하는 조울증이나 정신 분열증, 우울증에 효과를 기대할 수 있으며 신경세포들이 소실됨으로써 발생하는 노인성 치매, 기억력 상실에 효과를 기대할 수 있다.

본 발명은 상기와 같은 문제점을 해결하기 위해 안출된 것으로서, 그 목적은 신경세포의 사멸에 대한 보호 효과 및 파킨슨 동물 모델의 도파민손실에 대한 치료효과로 월계수 잎에서 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤 (dehydrocostuslactone), 스피라폴라이드(spirafolide), 레이노신(reynosin) 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15),11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분 물질이 효과가 있음을 증명하여 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병을 비롯한 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물을 제공하는데 있다.

상기의 목적을 달성하기 위한 본 발명의 제 1 특징에 따르면, 월계수 잎의 hexane층에서 분리된 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤 (dehydro- costuslactone) 또는 스피라폴라이드(spirafolide), 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15),11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1, 4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분물질; 월계수 잎의 chloroform층에서 분리된 레이노신(reynosin)의 단일성분물질을 함유하는 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물을 제공하는데 있다.

이때, 본 발명의 부가적인 특징에 따르면, 상기 코스투놀라이드 (costunolide)은 실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F5)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매로 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻고, 그 후 6번 분획(Q003H-F5-6)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 7개 분획하여 그 중 2번 분획하여 순수한 코스투놀라이드(costunolide)를 분리하고, 상기 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone)은 실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F5)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매로 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻고, 그 후 5번 분획(Q003H-F5-5)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 15개 분획하여 그 중 8번 분획하여 순수한 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone)을 분리하고, 상기 스피라폴라이드(spirafolide)은 실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F5)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매로 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻고, 그 후 4번 분획 (Q003H-F5-4)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 13개 분획을 하여 그 중 9번 분획에서 순수한 스피라폴라이드(spirafolide)를 분리하고, 상기 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15),11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1, 4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)은 실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F7)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 17개의 분획을 얻고, 그 후 7번 분획(Q003H-F7-7)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 5개 분획을 하여 그 중 11번 분획에서 순수한 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12, 6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)을 추출하는 것이 바람직하다.

또한, 본 발명의 부가적인 특징에 따르면, 상기 레이노신(reynosin)는 실리카겔 상에서 클로로포름층(Q003C-F2, 9.78g)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하는 단계; TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 메탄올 용매를 증가하면서 7개의 분획을 얻고, 그 후 6번 분획(Q003C -F2-6)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하는 단계; 및 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 20개 분획을 하여 그 중 8번 분획에서 레이노신(reynosin)을 추출하는 것이 바람직하다.

또한, 본 발명의 부가적인 특징에 따르면, 월계수 잎의 hexane층에서 분리된 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone) 또는 스피라폴라이드(spirafolide), 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분물질 또는 월계수 잎의 chloroform층에서 분리된 레이노신(reynosin)의 단일성분물질의 유효성분을 통상의 약제학적으로 허용가능한 담체와 혼합하여 이루어지는 것이 바람직하다.

또한, 본 발명의 부가적인 특징에 따르면, 약제학적으로 사용되는 제제 형태가 산제, 과립제, 정제, 캅셀제, 액제, 주사제 중에서 선택된 어느 하나로 구성되는 것이 바람직하다.

월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물은 월계수 잎에서 추출한 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydrocostuslactone), 스피라폴라이드(spirafolide), 레이노신(reynosin) 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분 물질들의 전 처리로 H₂O₂와 Dopamine에 의한 세포사멸이 억제되었고, 이로 인한 세포 내 ROS 생성이 억제되었으며, Dopamine에 의한 염색체 응축이나 DNA 절편 등 세포사멸의 특징이 줄어드는 효과가 있다.

또한, Dopamine을 처리한 실험 군에서는 Active caspase-3와 а-synuclein 단백질의 양이 증가하였는데 월계수 단일성분물질의 동시 처리는 Active caspase-3와 а-synuclein의 과발현을 감소하고, SH-SY5Y cell과 흰쥐 대뇌피질 일차배양 신경세포에서 Dopamine으로 유도된 세포사멸에 대해 월계수 단일성분물질이 신경세포 손실에 대해 보호 및 회복할 수 있어 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물의 유효성분으로 이용될 수 있다.

상기한 목적을 달성하기 위해서, 본 발명은 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물에 이용될 수 있는 물질로서 월계수 잎에서 추출된 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤 (dehydrocostuslactone), 스피라폴라이드(spirafolide), 레이노신(reynosin) 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15),11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분 물질을 유효성분으로 함유하는 것을 특징으로 한다.

이하, 본 발명을 보다 구체적으로 설명한다.

본 발명의 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물은 총중량에 대하여 월계수 잎의 단일성분물질이 0.5~ 50 중량％로 포함한다.

본 발명은 상기 월계수의 단일성분물질은 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydrocostuslactone), 스피라폴라이드(spirafolide), 레이노신(reynosin) 또는 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15),11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olide) 물질중 어느 하나의 단일물질을 선택적으로 사용할 수 있는 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물을 제공한다.

본 발명의 월계수의 단일성분물질을 포함하는 조성물은 약학적 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더 포함할 수 있다.

본 발명의 상기 조성물을 약제학적으로 사용되는 제제 형태가 산제, 과립제, 정제, 캅셀제, 액제, 주사제 중에서 선택된 어느 하나인 뇌신경 세포보호 및 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물을 제공한다.

이하, 본 발명을 실시예들을 통하여 보다 구체적으로 설명하지만, 본 발명이 이에 의해서 한정되는 것은 아니고, 당업자에 의해서 용이하게 실시될 수 있는 삽입, 삭제 및 수정 등의 변형 등도 본 발명의 범위 내에 포함된다.

실험예

시료의 조제

월계수 잎의 hexane층에서 분리된 단일성분물질인 코스투놀라이드 (costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone), 스피라폴라이드 (spirafolide), 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 분리방법은 첨부된 도 1a에 도시되어 있고, chloroform층에서 분리된 단일성분물질인 레이노신 (reynosin)은 도 1b에 도시되어 있다.

먼저, 첨부된 도 1a을 참조하여 월계수 잎의 hexane층에서 단일성분물질의 분리방법을 살펴보면, 코스투놀라이드(costunolide)는 실리카겔 상에서 헥산층 (Q003H-F5)을 크로마토그래피 했고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하였고, 분획은 TLC로 조정하면 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻었다. 그 후 6번 분획(Q003H-F5-6)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리를 시작하였다. 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 7개 분획을 하였고 그 중 2번 분획에서 순수한 코스투놀라이드(costunolide)를 얻을 수 있다.

또한, 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone)의 분리 방법은 상기 코스투놀라이드(costunolide)의 분리 방법과 같은 방법으로 14개의 분획을 얻었다. 그 후 5번 분획(Q003H-F5-5)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리를 시작하였다. 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 15개 분획을 하였고 그 중 8번 분획에서 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone)을 얻을 수 있다.

같은 방법으로 스피라폴라이드 (spirafolide)은 상기 코스투놀라이드 (costunolide)의 분리 방법과 같은 방법으로 14개의 분획을 얻었다. 그 후 4번 분획(Q003H-F5-4)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리를 시작하였다. 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 13개 분획을 하였고 그 중 9번 분획에서 스피라폴라이드(spirafolide)를 얻었다

마지막으로, 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드 (3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 분리방법을 살펴보면, 3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olide는 실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F7)을 크로마토그래피 했고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하였고, 분획은 TLC로 조정하였고 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 17개의 분획을 얻었다. 그 후 7번 분획(Q003H-F7-7)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리를 시작하였다. 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 5개 분획을 하였고 그중 11번 분획에서 순수한 3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olide 을 얻을 수 있다.

그리고, 첨부된 도 1b을 참조하여 월계수 잎의 chloroform층에서 분리된 단일성분물질인 레이노신(reynosin)의 분리방법을 살펴보면, 실리카겔 상에서 클로로포름층(Q003C-F2, 9.78g)을 크로마토그래피 했고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하였고, 분획은 TLC로 조정하였고 에틸아세테이트와 메탄올 용매를 증가하면서 7개의 분획을 얻었다. 그 후 6번 분획(Q003C-F2-6)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리를 시작하였다. 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 20개 분획을 하였고 그 중 8번 분획에서 순수한 A compound, 즉 레이노신(reynosin)을 얻을 수 있다.

상기의 절차에 의해 본 발명에 따른 월계수 단일성분물질 코스투놀라이드 (costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone), 스피라폴라이드 (spirafolide), 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide), 레이노신(reynosin)의 화학구조식은 첨부된 도 2a 내지 도 2e와 같이 나타난다.

세포 배양과 처리

인간 신경아세포종 SH-SY5Y cell (ATCC no. CRL-2266)은 10 % fetal bovine serum(Gibco-BRL, USA) 및 antibiotics (Sigma-Aldrich, USA)가 함유된 dulbecco’s modified eagle’s medium (Sigma-Aldrich, USA) 배지 하에서 배양하였다. 배양기는 37℃ 온도를 유지했고 95% 공기와 5% CO₂가 혼합된 기체가 계속 공급되어 세포 배양의 적절한 조건을 갖추었다. 세포는 6-well plate에 3x10⁵ cells/well로 배양하였다. Dopamine의 농도는 세포 생존율을 평가한 후 600μM로 결정하였으며 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, 3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide, reynosin의 (dissolved in dimethyl sulfoxide (DMSO, Sigma-Aldrich, USA), final concentration 0.25%)은 Dopamine (Sigma-Aldrich, USA) 처리 24시간 전에 선행하여 월계수 단일성분물질들의 효과를 비교 관찰하였다.

일차 배양한 대뇌피질 신경세포

대뇌피질 일차배양 신경세포는 임신 18일의 암컷 흰쥐를 이용하였으며, 쥐 배자로부터 뇌를 적출한 후, 뇌막을 조심스럽게 제거하고 대뇌피질을 분리하였다. 끝의 크기를 줄인 파스퇴르 파이펫을 사용하여 개개 세포로 분리한 다음 PM (plating medium; Eagle’s minimum essential medium (Sigma-Aldrich, USA), 5% FBS, 5% horse serum, 2 M glutamine, and 20mM glucose )에 희석하여 plating 전에 미리 100㎕/㎖ poly-L-lysine과 4㎕/㎖ laminin (Sigma-Aldrich, USA)을 이용하 여 코팅해둔 6-well plate에 세포를 분주한 후, 5% CO₂, 37℃로 유지되는 세포배양기에서 배양하였다. 7일째에 성상세포(astrocyte)가 단일 층으로 자란 후 교세포(glia)의 과다분열을 억제하기 위해 10μM cytosine β-D-arabinofuranoside (Sigma-Aldrich, USA)를 처리한 GM (growth medium; Eagle’s minimum essential medium, 5% horse serum, 2mM glutamine, and 20mM glucose)으로 갈아주었다. 일주일에 2번씩 GM을 갈아주면서 신경세포가 자라도록 하였다.

Dopamine의 농도는 세포 생존율을 평가한 후 300μM로 결정하였으며, 월계수 Hexane층의 단일성분물질인 costunolide와 Chloroform층의 단일성분물질인 reynosin(dissolved in DMSO, final concentration 0.25%)은 Dopamine 처리 24시간 전에 선행하여 효과를 관찰하였다.

세포내 ROS 측정

SH-SY5Y 세포 내 ROS의 양은 형광 probe인 DCFDA (2′ 7′-dichlorofluorescin diacetate, Sigma-Aldrich, USA)를 사용하여 측정 하였다. 배양한 세포에 costunolide와 dehydrocostuslactone을 농도별로 Dopamine 500μＭ과 동시에 처리하고 4시간 후 배양액에 DCF-DA를 well 당 최종농도가 40μＭ이 되도록 처리하여 30분간 배양하였다. 반응 후 형성된 세포 내과 산화물은 excitation 파장 485nm, emission 파장 530nm에서 fluorescence를 측정하였다.

DAPI 염색을 통한 핵의 관찰

Apoptosis에 의한 SH-SY5Y cell의 형태적 변화를 관찰하기 위하여 costunolide 와 reynosin 및 Dopamine을 처리한 세포들을 PBS 세척하고, 4% 포르말린 용액으로 상온에서 고정시킨 후, 0.1% triton-X 용액을 10분간 가하였다. 그 후 형광 염색 물질인 DAPI를 1㎍/㎖의 농도로 30분간 암실에서 염색하였다. 핵의 형태를 관찰하기 위해 형광 현미경(Eclipse TE 200, Nikon, Japan)을 이용하여 정상군과 비교하였다.

유세포 분석

DNA content에 미친 영향을 알아보기 위해 유세포 분석을 실시하였다. 채취한 세포를 PBS로 3회 세척하였고 차가운 70% 에탄올로 -20℃에서 1일 고정시킨 후 1000 rpm에서 5분간 원심 분리하여 PBS로 씻어 주었다. 그 후 40㎍/㎖의 Propidium Iodide (PI, Sigma-Aldrich, USA)로 4℃에서 30분간 염색하고 유세포 분석기 (FACS, Coulter EPICS XL, USA)로 측정하였다. Apoptosis 세포는 PI 염색 강도가 감소하여 일반세포와 비교할 수 있었다. 생존율로부터 반수치 영향농도(EC₅₀)의 값을 table curve 프로그램을 이용하여 계산하였다.

Annexin Ⅴ-PI 염색

배양 종료 후 well에 trypsin-EDTA(SIGMA, USA)용액을 처리하고 차가운 PBS 를 이용하여 세포를 모았다. 모아진 세포는 반응 용액 200μℓ에 다시 부유시키고 Annexin Ⅴ-PI 염색용 kit(Bender Medsytem, Austria)를 이용하여 염색하였다. Annexin Ⅴ-FITC항체와 PI용액을 10μℓ씩 첨가하고 15분간 반응하였다. 반응 후에는 유세포 분석기를 이용하여 Dopamine에 의한 세포사멸이 후기 Apoptosis로 진행됨을 확인하였고 이에 costunolide와 reynosin의 세포 사멸에 대한 보호효과 정도를 측정하였다.

Western blot 분석

SH-SY5Y cell을 배양한 후, PBS 세척을 하고 PRO-PREP protein solution (Intron biotechnology, Korea)를 이용하여 총세포 단백질을 추출하였으며 protein assay solution(Intron biotechnology, Korea)을 이용하여 단백질 농도를 측정하였다. 10㎕/lane의 세포단백질을 SDS-polyacrylamide gel에서 전기영동 시킨 후 PVDF membrane(Amersham Pharmacia Biotech, UK)으로 transfer 시키고, 이 membrane을 5% skim milk in tris buffered-0.1% tween 20 (TBST)으로 실온에서 2시간 동안 blocking 시켰다. 그 다음 일차 항체(ａ-synuclein; abcam, UK, cleaved caspase-3; Cell signaling technology, USA, b-actin; Santa cruz biotechnology, CA)와 4℃에서 24시간 반응시키고 TBST로 세척한 후 이차 항체 (anti-rabbit or anti-mouse HRP-conjugated IgG; Chemicon, USA)와 실온에서 1시간 반응시켰다. 세척 후 이미지 분석기 LAS1000(Fuji photo film, Japan)으로 분석하였다. 모든 western blot 분석은 3회 반복 실험하였다.

파킨슨병 동물실험모델 제작

몸무게가 대략 250 g의 수컷 Sprague-Dawley 흰쥐 (Samtako, Korea) 36마리를 5마리 이상씩 6군으로 나누어 사용하였다. 수컷 흰쥐를 ketamine 50mg/kg과 xylene 10mg/kg 혼합용액을 복강 주사하여 마취, 실험을 시행하였으며 초기 파킨슨병의 진행 정도에 해당하는 70~80% 뇌의 흑색질 부위의 도파민성 세포 소실을 만들기 위해 6-OHDA를 뇌의 직접 주사하는 수술방법을 사용했다. 6-OHDA는 ascorbic acid를 0.2%(w/v) 섞은 생리 식염수 1μl당 5.0μg으로 녹여 사용하였고 이를 500μℓ씩 차광한 상태에서 냉동 보관한 후 필요에 따라 하나씩 녹여서 사용하였다. 수컷 쥐를 동물용 뇌정위 고정수술틀(stereotaxic, Daejong, Korea)에 머리를 incisor bar를 이용하여 고정하였다. 두피에 약 10~15mm의 수직으로 절개를 하고 정수리점(bregma)을 기준으로 후방 4.9mm, 좌측방 1.8mm 되는 곳에 드릴로 구멍을 뚫고 그 부위에 10μl 용량의 Hamilton syringe(Daejong, Korea) 주사침을 경막으로부터 7.8mm 깊이로 수직 주사 후 분당 1μl의 속도로 총 4μl의 6-OHDA을 주입하였다. 주입 후 15분을 기다린 후 서서히 주사침을 제거시키고 두피를 봉합하였다. 정상 대조군은 6-OHDA를 녹인 용매인 ascorbic acid를 0.2%(w/v) 넣은 생리 식염수를 같은 수술 부위에 주사하는 것 이외에 모든 마취와 수술 과정을 파킨슨병 유발 실험군과 동일하게 진행하였다.

약물투여

reynosin을 1% EtOH (Sigma-Aldrich, USA)에 녹인 후 파킨슨 동물모델 수술 1시간 후 1회 용량별로 복강 투여하였다. 대조군은 1% EtOH만 복강 투여하였다.

도파민성 신경세포의 면역조직화학염색

쥐를 ether로 마취한 후 흉벽을 제거하고 왼쪽 심실에서 대동맥 방향으로 주사 바늘을 삽입하였다. 그 다음 오른쪽 심방 위를 가위로 절단한 뒤 연동펌프를 이용하여 0.9% 생리식염수를 관류시켜 혈액을 제거하였다. 그리고 나서 4% 포르말린 용액을 200㎖ 관류시켜 고정하였다. 제거된 뇌는 4℃에서 하루 동안 4% 포르말린 용액에 후 고정을 시행한 다음 4℃에서 30% sucrose (Sigma-Aldrich, USA) 용액 에 뇌가 가라앉을 때까지 방치하였다. 적출된 뇌를 microtome (Leica, Germany)를 이용하여 -25℃에서 10㎛의 두께로 잘랐다.

도파민성 신경세포의 양을 확인하기 위하여 절편이 부착된 슬라이드를 실온에서 건조 후, PBS로 10분간 3회 세척 후 3% H₂O₂로 20분간 내인성 과산화효소의 활성도를 없애고, 다시 PBS로 3차례 세척하였다. 실온에서 normal blocking serum으로 1시간 배양하여 비특이적 반응을 제거한 후, 일차 Tyrosine Hydroxylase 항체(mouse anti-TH antibody, 1:1000, Chemicon, USA)를 4℃에서 18~24시간 배양하였다. PBS세척 후 이차 항체로 1시간 실온에서 배양한 후 세척하고 Vectastain ABC kit (Vector Lab., USA)와 Diaminobenzidined (DAB) (Vector Labortories, CA) 용액으로 5~10분간 발색하여 alcohol, xylene(DC chemical, Korea)으로 탈수 과정 을 거친 후 Permount (Shandon, USA)로 cover slide(Muto-Glass, Japan)를 덮어 400 배율의 광학현미경(Olympus, Japan)으로 관찰하였다.

TH 면역염색에 있어서 각 농도군 별로 1마리당 5~6개의 중뇌 흑색질 부위 절편을 취한 후 흑색질에서 6-OHDA를 주입하지 않은 좌측의 TH -염색 양성에 신경세포에 대한 병변 측의 도파민성 신경세포의 평균 숫자를 퍼센트로 계산하여 각각의 대조군과 reynosin 약물 처리군을 비교하였다.

통계적 처리

모든 측정값은 평균값±표준오차로 표시하였고, 각 실험군과의 통계학적 분석은 Sigma Plot 8.02 프로그램을 이용하여 t-test를 실시하였다. P < 0.05를 통계적으로 유의한 것으로 간주하였다.

실험 결과 1

SH-SY5Y cell의 세포 생존율에 대한 월계수 단일성분 물질들의 영향

SH-SY5Y cell에 월계수 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin 단일성분물질들을 다양한 농도로 처리한 48시간 후 FACs analysis로 시료의 독성을 확인한 결과, 첨부된 도 3a 내지 도 3d에서 도시된 바와 같이 월계수 단일성분물질 모두 25μＭ의 농도까지 세포 생존율에 어떠한 영향도 끼치지 않았다. 단, 더 높은 농도에서는 단일성분물질 모두 세포 독성을 나타내었다.

SH-SY5Y cell의 산화적 스트레스(H₂O₂)에 대한 월계수 단일성분불질들의 영향

산화적 스트레스와 관련된 H₂O₂를 월계수 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin 단일성분물질들을 처리하고 24시간 뒤에 처리한 세포를 추출하여 apoptosis를 확인하기 위해 PI를 이용한 염색을 시행하여 첨부된 도 4a 내지 도 4d에서 제시된 바와 같이 SH-SY5Y cell에서의 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin 각각의 H₂O₂에 대한 세포생존율의 결과는 정상 대조군에서는 8.75%만이 apoptosis를 나타내는 반면, H₂O₂를 처리한 대조군은 55.57%의 apoptosis를 보였다. 반면 가장 효과가 좋았던 reynosin은 0.08, 0.4, 2μＭ을 전처리한 경우 각각 23.43, 22.04, 16.16%로 apopsosis를 감소하였다

세포 내 ROS 측정

SH-SY5Y cell에 Dopamine을 처리하여 생성되는 과산화물에 대한 costunolide, dehydrocostuslactone 각각의 과산화물 발생 억제효과를 확인한 결과 도 5a 내지 도 5b에서 도시된 바와 같이 Dopamine의 처리 후 SH-SY5Y 세포 내 ROS의 양은 Dopamine을 처리하지 않은 대조군에 비해 1.8배로 증가함을 확인하였고 배양한 세포에 costunolide와 dehydrocostuslactone을 농도별로 Dopamine과 동시에 처리한 실험군은 이를 농도 의존성 있게 감소시키는 것을 확인할 수 있었다. 특히 dehydrocostuslactone 은 2μＭ에서 1.2배까지 감소시킴으로 세포 내 과 발생되는 산화물을 억제하는 효과가 있음을 뛰어남을 확인하였다.

SH-SY5Y cell의 Dopamine에 대한 월계수 단일성분물질들의 영향

SH-SY5Y cell에 월계수 단일성분물질인 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin, 3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olide의 Dopamine에 대한 효과를 확인하기 위해, SH-SY5Y cell에 월계수 각 단일성분물질들을 농도별로 처리한 24시간 후 600μM Dopamine을 처리하고 FACs analysis(유세포 분석)를 실시하였더니, 도 6a 내지 6b에서 도시된 바와 같이 월계수의 모든 단일성분물질들이 농도 의존적으로 세포 생존율을 증가시켰으며, [표 1]에 도시된 바와 같이 reynosin EC₅₀ 값이 1.4±0.13μＭ로 가장 효과가 있었다.

즉, 첨부된 도 6a 내지 도 6b에서 나타난 바와 같이 월계수 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin, 3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olideEthanol의 단일성분들을 각각 농도별로 전 처리한 후 Dopamine을 처리하여 세포생존율을 50%로 생존시킨 물질의 효과 농도 (EC₅₀)를 확인한 결과 reynosin이 1.4±0.13 μＭ으로 세포 생존율이 증가하였다.

[표1]월계수 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin, 3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olideEthanol의 EC₅₀ [μＭ]

sample	EC50 [μＭ]
costunolide	7.3±0.9
dehydrocostuslactone	34.0±1.1
spirafolide	5.7±0.9
3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olide	16.7±0.3
reynosin	1.4±0.1

또한, 월계수 단일성분물질 costunolide을 농도별로 처리 뒤 Dopamine을 처리한 세포를 추출하여 apoptosis를 확인하기 위해 PI를 이용한 염색을 시행하였다. 그 결과 도 7에 도시된 바와 같이 정상 대조군에서는 2.37%만이 세포사멸(apoptosis)를 나타내는 반면, Dopamine을 처리한 대조군은 72.88％의 apoptosis를 보였다. 월계수 단일성분물질 costunolide을 4, 0.8, 0.16㎍/㎖을 전처리한 경우 각각 62.51, 43.82, 34.38%로 세포사멸(apopsosis)를 감소시켰다.

SH-SY5Y cell에서 후기apoptosis 진행에 월계수 reynosin의 영향

SH-SY5Y cell에서 Dopamine에 의한 후기 apoptosis로 진행유발에 reynosin이 어떤 영향을 주는지 확인하기 위해 Annexin Ⅴ-PI 염색하였다. 그 결과 첨부된 도 8에 도시된 바와 같이 정상 대조군에서는 7.56% 만이 후기 apoptosis로 진행된 반면, Dopamine만 처리한 실험군은 후기 apoptosis로 67.35% 진행이 되었고 월계수 reynosin을 0.08, 0.4, 2 Ｍ을 처리한 실험군은 농도 의존성 있게 후기 apoptosis가 진행되는 것을 줄여주는 것을 알 수 있었다.

일차 배양한 대뇌피질 신경세포에서의 형태적 변화에 대한 월계수 reynosin의 영향

DAPI 염색에서 reynosin을 농도별로 전 처리한 실험군과 Dopmaine만 처리한 실험군과 비교하였을 때, Dopamine만 처리한 실험군에서 apoptosis의 특징적인 응축된 핵과 분절된 핵(도 9에서 화살표 표시)을 많이 관찰할 수 있었다.

첨부된 도 9에 제시된 바와 같이 일차 배양한 대뇌피질의 신경세포에 월계수 reynosin을 전 처리한 24시간 후 300μM Dopamine을 처리하였더니 4μＭ의 농도에서 크게 세포 사멸을 막는 것으로 나타났다. DAPI 염색에서 정상 대조군과 비교하였을 때, Dopamine만 처리한 실험군에서 apoptosis의 특징적인 응축된 핵과 분절된 핵을 많이 관찰할 수 있었다.

즉, 월계수 reynosin을 전 처리한 실험군에서는 Dopamine만 처리한 실험군에 비해서 응축된 핵의 세포 수가 감소하고 정상 대조군과 같은 형태를 나타내었다.

SH-SY5Y cell의 caspase-3 활성화에 대한 월계수 단일물질의 영향

첨부된 도 10에서 SH-SY5Y cell에 600μM Dopamine을 시간별로 처리한 후 Caspase-3 활성화를 확인한 결과를 Western blotting으로 분석하여 평가한 결과, 처리 24시간 후 가장 많이 활성화됨을 관찰할 수 있었다.

상기 도 10의 결과를 기초로 costunolide를 전처리하고 Dopamine에 의해 가장 활성화가 진행되는 24시간 후 Caspase-3 활성화 감소 정도를 Western blotting으로 분석한 결과 도 11a에 도시된 바와 같이 costunolide의 전처리에 의해 농도 의존적으로 활성화의 증가를 막는 것으로 나타나고, 월계수 단일성분물질들은 caspase-3의 활성을 막음으로써 Dopamine에 의한 세포 apoptosis를 막음을 알 수 있다.

또한, 도 11a의 절차와 같이 spirafolide를 전처리하고 Dopamine에 의해 가장 활성화가 진행되는 24시간 후 Caspase-3 활성화 감소 정도를 Western blotting으로 분석한 결과는 도 11b와 같이 spirafolide의 전처리에 의해 농도 의존적으로 활성화의 증가를 막는 것으로 나타나고, 월계수 단일성분물질들은 caspase-3의 활성을 막음으로써 Dopamine에 의한 세포 apoptosis를 막음을 알 수 있다.

SH-SY5Y cell에서 월계수 단일성분물질들의 a-synuclein 과발현에 미치는 영향

첨부된 도 12에서 SH-SY5Y cell에 Dopamine을 600μM 투여한 후 단백질을 시간대별로 추출하여 a-synuclein의 단백질의 발현 양을 western blot 분석을 수행하여 시간 변화에 따른 Dopamine에 대한 과발현에 정도를 확인한 결과 a-synuclein의 단백질의 과발현은 9시간부터 15시간까지 시간 의존적으로 증가하였고 특히 15시간에 특징적으로 증가하였다.

또한, 월계수 reynosin과 dehydrocostuslactone의 a-synuclein의 단백질 과발현에 미치는 영향을 평가하기 위해, 첨부된 도 13과 같이 월계수 reynosin과 dehydrocostuslactone 각각을 Dopamine을 600μM과 같이 15시간 동안 처리한 후 a-synuclein 단백질의 발현 정도를 western blot 분석하여 Dopamine이 a-synuclein 단백질 발현에 영향을 준 15시간 대를 기준으로 살펴본 결과, 월계수 reynosin과 dehydrocostuslactone은 농도 의존적으로 a-synuclein 단백질 과발현을 막는 효과가 있었다.

월계수 reynosin의 흰쥐 뇌의 흑색질 부위의 TH-양성반응 세포에 대한 영향

상기의 결과에 따라 월계수 reynosin의 흰쥐 뇌의 흑색질 부위의 TH-양성반응 세포를 확인하기 위해 Tyrosine Hydroxylase 항체로 TH-양성반응 신경세포의 소실 정도와 보호 정도를 Vectastain ABC 와 DAB 용액으로 염색하여 측정한 결과, 첨부된 도 14 내지 도 15에 도시된 바와 같이 sham, positive control인 apomorphine 처리군, 파킨슨병 유도군과 월계수 reynosin 투여 실험군의 Tyrosine Hydroxylase양성반응 신경세포를 조직 면역 염색한 결과와 그 결과를 광학현미경으로 확인하면 파킨슨병 유발 동물군에서는 흑색질 부위에서 현격하게 감소하였던 다수의 Tyrosine Hydroxylase 양성세포를 현재 효과가 있다고 보고되어 있는 Apomorphine에 비해서 reynosin 실험군에서 효과가 더 좋았으며 농도 의존적으로 그 수가 유의성 있게 증가함을 또한 관찰할 수 있었다.(도 15 참조)

즉, 하기에 [표 2]에 도시된 흰쥐의 뇌 흑색질 부위의 TH 양성적인 신경세포를 조직면역염색을 실험군 별로 정량화한 표와 같이 월계수 분획물들이 뇌 신경세포 손상에 미치는 영향을 확인하기 위해 흰쥐의 흑색질 부위에 6-OHDA를 직접 주사하는 수술방법을 사용했다. 뇌정위 고정틀에서 파킨슨병 동물모델 수술 후 7일 뒤 흑색질 부위의 도파민성 신경세포의 손상 정도를 조직면역염색을 통해 관찰하였 다.

대조군은 파킨슨병 동물모델 1시간 후에 vehicle을 복강 투여하였고 실험군은 월계수 reynosin을 0.02, 1, 0.5mg/kg 용량으로 복강 투여하였다.

염색 결과, 뇌에 흑색질 부위에 6-OHDA를 직접 주사한 실험 군은 주사한 뇌의 반구는 주사하지 않은 쪽의 뇌에 비해 Dopamine을 생성시켜주는 Tyrosine Hydroxylase의 양이 현저하게 줄어드는 것을 확인하였다.

또한, 한쪽 반구에 6-OHDA를 주사하여 도파민성 신경세포를 손실시킨 흰쥐에 수술 1시간 후 월계수 reynosin을 복강 투여한 실험 군에서는 Tyrosine Hydroxylase의 양이 농도 의존성 있게 증가함을 보여 도파민성 신경세포의 손실에 월계수 reynosin 단일물질이 신경세포 손실을 회복하는 효과가 있음을 확인할 수 있었다.

[표 2]

	SN
Sham+Vehicle(n=5)	86.5±9.0
6-OHDA+Apomorphine(n=5)	67.2±5.7
6-OHDA+Vehicle(n=9)	29.3±7.1
6-OHDA+ reynosin 0.02mg/kg(n=5)	41.4±7.9
6-OHDA+ reynosin 0.1mg/kg(n=5)	49.29±12.5
6-OHDA+ reynosin 0.5mg/kg(n=6)	84.56±3.9

[표 2]는 흰쥐의 뇌 흑색질 부위의 TH 양성적인 신경세포를 조직면역염색을 실험군 별로 정량화한 표

실험결과 2

산화적 스트레스와 과도한 Dopamine의 처리는 신경세포의 독성이 있으며 뇌조직의 신경세포를 손상시키는 것으로 알려져 왔다. 특히 이로 인한 세포 내 ROS의 발생이 신경세포의 apoptosis와 뇌 조직에서의 손실은 중요한 역할을 하며 실험을 통해 SH-SY5Y cell 에서 H₂O₂ 200μM 과 Dopamine 600μM이 그리고 일차 배양한 대뇌피질 신경세포에는 Dopamine 300μM이 사멸을 일으키는 것으로 밝혀졌다.

월계수 단일성분물질들은 산화적 스트레스에 관여하는 H₂O₂와 Dopamine에 의한 세포 내 과산화물 생성에 의한 SH-SY5Y cell과 일차 배양한 대뇌피질 신경세포의 사멸에 대해 보호효과를 나타내었다.

FACS analysis(도 4a, 4b, 4c, 4d, 5a, 5b, 6a, 6b, 7 참조) 와 Annexin Ⅴ-PI 염색을 이용한 후기 세포 자멸사 염색 (도 8 참조), DAPI를 이용한 핵 응축과 분절염색 (도 9)을 통해 월계수 월계수 잎의 hexane층에서 분리된 단일성분물질인 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, 3α-acetoxyeudesma-1, 4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide와 chloroform층에서 분리된 단일성분물질인 reynosin이 산화적 스트레스와 도파민유도성 세포사멸에 대해 보호 효과가 있음이 나타났다.

그리고 DNA 분절과 세포 자멸사를 유도하는 중요한 단백질인 caspase-3는 Dopamine에 의해 활성화 되었는데(도 10 참조) 월계수 단일성분물질들과의 동시처리는 caspase-3의 활성화를 감소시켰다(도 11a, 11b 참조). 또한 파킨슨병 임상환 자들에게서 발견되는 파킨슨병의 병리적 소견인 루이소체를 구성하고 있는 주요 단백질인 а-synuclein은 Dopamine에 의해 그 발현 양이 증가하게 되는데(도 12 참조) 이 과발현되는 а-synuclein 단백질을 월계수의 단일성분물질들이 모두 감소 시킴(도 13a, 13b 참조)을 확인함으로 특히 파킨슨병에 주요 병인이 되는 이 기전에 보호 및 치료의 효과가 있음을 밝혔다.

또한 흰쥐 뇌의 흑색질 부위에 선택적으로 도파민성 신경세포를 손실시킨 파킨슨병 동물실험 결과에서 월계수 chloroform층에서 분리된 단일성분물질인 reynosin이 Dopamine을 생성하게 하는 효소인 Tyrosine Hydroxylase의 감소된 양을 다시 증가시키는 것으로서 도파민이 효현제로 알려진 Apoorphine보다 낮은 농도에서 도파민성 신경세포의 손실에 치료에 월등한 효과가 있음을 나타내었다. (도 14, 15 참조)

이상의 결과로부터 월계수의 단일성분물질은 산화적 스트레스와 도파민유도성 신경세포 사멸에 뇌의 선택적 도파민성 신경세포를 손실시킨 파킨슨병 동물모델에 기존의 약물보다 신경보호 및 치료의 효과 모두 좋음을 규명하였다.

하기에 본 발명에 따른 신경세포 사멸 및 파킨슨병 예방 및 보호를 위한 약학조성물의 제제예를 설명하나 본 발명은 이를 한정하고자 함이 아닌 단지 구체적으로 설명하고자 함이다.

제제예 1. 산제의 제조

약전 제제총칙중 산제의 제조방법에 따라 1 포당 하기의 성분 함량으로 제조 한다.

월계수 분획물 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ300 mg

유당 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ100 mg

탈크 ㆍㆍ ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 10 mg

제제예 2. 정제의 제조

약전 제제총칙중 정제의 제조방법에 따라 1정 당 하기의 성분 함량으로 제조한다.

월계수 분획물 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 300 mg

옥수수전분 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 100 mg

유당 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 100 mg

스테아린산 마그네슘ㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 2 mg

제제예 3. 캅셀제의 제조

약전 제제 총칙중 캅셀제의 제조방법에 따라 1 캅셀당 하기의 성분 함량으로 제조한다.

월계수 분획물ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 300 mg

옥수수전분 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 100 mg

유당 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 100 mg

스테아린산 마그네슘ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 2 mg

제제예 4. 주사제의 제조

약전 제제 총칙중 주사제의 제조방법에 따라 1 앰플당(2㎖) 하기의 성분 함량으로 제조한다.

월계수 분획물ㆍㆍㆍㆍ ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 300 mg

주사용 멸균 증류수 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 적량

pH 조절제 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 적량

제제예 5. 액제의 제조

약전 제제 총칙중 액제제의 제조방법에 따라 액제 100㎖당 하기의 성분 함량으로 제조한다.

월계수 분획물ㆍㆍㆍㆍ ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 1 g

이성화당ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 10 g

만니톨 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 5 g

정제수 ㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍㆍ 적량

상기 조성비는 비교적 약제 제조에 적합한 성분을 바람직한 실시예로 혼합 조성하였지만 수요계층이나, 사용 용도 등에 따라서 그 배합비를 임의로 변형 실시할 수 있다.

도 1a 본 발명에 따른 월계수 잎의 Hexane층의 단일성분물질인 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, 3α-acetoxyeudesma-1,4(15),11(13)-trien-12,6α-olide의 분리방법을 도시한 모식도

도 1b는 본 발명에 따른 월계수 잎의 Chloroform층의 reynosin의 분리방법을 도시한 모식도

도 2a 내지 도 2e는 본 발명에 따른 월계수 단일성분물질들 3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13) -trien-12,6α-olide, costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin 각각의 화학구조식

도 3a 내지 도 3d는 SH-SY5Y cell에 대한 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin 각각의 세포독성 결과를 도시한 그래프

도 4a 내지 도 4d는 SH-SY5Y cell에서의 costunolide, dehydrocostuslactone, spirafolide, reynosin 각각의 H₂O₂에 대한 세포생존율의 결과를 도시한 그래프

도 5a 내지 도 5b는 SH-SY5Y cell에 Dopamine을 처리하여 생성되는 과산화물에 대한 costunolide, dehydrocostuslactone 각각의 과산화물 발생 억제효과를 도시한 그래프

도 6a 내지 도 6b는 월계수 costunolide, reynosin 각각의 Dopamine에 대한 세포 생존율의 결과를 도시한 그래프

도 7은 costunolide를 처리한 뒤 Dopamine을 처리한 세포를 추출하여 PI를 이용한 염색을 시행하여 세포 자멸사율(Apoptosis)을 확인한 그림

도 8은 reynosin을 농도별로 전 처리한 실험군과 Dopmaine만 처리한 실험군의 Annexin Ⅴ-PI 염색을 통한 세포 후기 apoptosis로의 진행확인과 그에 대한 농도 별 보호 효과를 나타낸 그림

도 9는 reynosin을 농도별로 전 처리한 실험군과 Dopmaine만 처리한 실험군의 DAPI 염색을 통한 세포 내 핵의 응축과 분절의 형태학적 특징을 나타낸 그림

도 10은 Dopamine을 시간별로 처리한 후 Caspase-3 활성화를 확인한 결과를 Western blotting으로 분석한 결과

도 11a는 도 10의 결과를 토대로 costunolide를 전처리하고 Dopamine에 의해 가장 활성화가 진행되는 24시간 후 Caspase-3 활성화 감소 정도를 Western blotting으로 분석한 결과

도 11b는 도 10의 결과를 토대로 spirafolide를 전처리하고 Dopamine에 의해 가장 활성화가 진행되는 24시간 후 Caspase-3 활성화 감소 정도를 Western blotting으로 분석한 결과

도 12는 SH-SY5Y cell에 Dopamine 600μM을 투여한 후 단백질을 시간대별로 추출하여 a-synuclein 단백질의 발현 양을 western blot으로 확인한 그림

도 13a 내지 도 13b는 SH-SY5Y cell에 Dopamine과 reynosin을 농도별로 동시 처리한 15시간 후 단백질을 추출하여 a-synuclein 단백질의 발현을 확인한 그림

도 14는 sham, positive control인 apomorphine 처리군, 파킨슨병 유도군과 월계수 reynosin 투여 실험군의 Tyrosine Hydroxylase양성반응 신경세포를 조직 면역 염색한 결과를 정량한 그림

도 15는 sham, 파킨슨병 유도군, reynosin의 농도별 투여 군들의 Tyrosine- Hydroxylase 양성반응 신경세포를 조직 면역 염색한 결과를 광학현미경으로 측정한 사진

Claims (5)

1. 월계수 잎의 hexane층에서 분리된 코스투놀라이드(costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone) 또는 스피라폴라이드(spirafolide), 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드 (3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분물질;

   월계수 잎의 chloroform층에서 분리된 레이노신(reynosin)의 단일성분물질을 함유하는 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물.
2. 제 1 항에 있어서,

   상기 코스투놀라이드(costunolide)은

   실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F5)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매로 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻고, 그 후 6번 분획(Q003H-F5-6)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 7개 분획하여 그 중 2번 분획하여 순수한 코스투놀라이드 (costunolide)를 분리하고,

   상기 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone)은

   실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F5)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테 이트 혼합 용매로 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻고, 그 후 5번 분획(Q003H-F5-5)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 15개 분획하여 그 중 8번 분획하여 순수한 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone)을 분리하고,

   상기 스피라폴라이드(spirafolide)은

   실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F5)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매로 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 14개의 분획을 얻고, 그 후 4번 분획(Q003H-F5-4)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 13개 분획을 하여 그 중 9번 분획에서 순수한 스피라폴라이드(spirafolide)를 분리하고,

   상기 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드 (3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)은

   실리카겔 상에서 헥산층(Q003H-F7)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하고, TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매를 증가하면서 17개의 분획을 얻고, 그 후 7번 분획(Q003H-F7-7)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하여 에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 5개 분획을 하여 그 중 11번 분획에서 순수한 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3 α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)을 추출하는 것을 특징으로 하는 월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물
3. 제 1 항에 있어서,

   상기 레이노신(reynosin)는

   실리카겔 상에서 클로로포름층(Q003C-F2, 9.78g)을 크로마토그래피하고 헥산과 에틸아세테이트 혼합 용매를 사용하여 용해 분리하는 단계;

   TLC로 분획 조정하여 에틸아세테이트와 메탄올 용매를 증가하면서 7개의 분획을 얻고, 그 후 6번 분획(Q003C-F2-6)을 normal phase의 실리카 칼럼을 이용하여 HPLC에 의해 분리하는 단계; 및

   에틸아세테이트와 헥산 혼합용매로 용해 분리하여 총 20개 분획을 하여 그 중 8번 분획에서 레이노신(reynosin)을 추출하는 것을 특징으로 하는 월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물
4. 제 1 항에 따른 월계수 잎의 hexane층에서 분리된 코스투놀라이드 (costunolide), 디하이드로코스투스락톤(dehydro- costuslactone) 또는 스피라폴라 이드(spirafolide), 3알파-아세톡시유데스마-1,4(15), 11(13)-트리엔-12,6알파- 올라이드(3α-acetoxyeudesma-1,4(15), 11(13)-trien-12,6α-olide)의 단일성분물질 또는 월계수 잎의 chloroform층에서 분리된 레이노신(reynosin)의 단일성분물질의 유효성분을 통상의 약제학적으로 허용가능한 담체와 혼합하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물
5. 제 4 항에 있어서,

   약제학적으로 사용되는 제제 형태가 산제, 과립제, 정제, 캅셀제, 액제, 주사제 중에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 특징으로 하는 월계수 잎의 단일성분 추출물을 함유한 파킨슨병과 퇴행성 신경계 뇌질환의 예방 및 치료용 조성물.

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