KR102319352B1 - Nonhormonal Method for Masculinization of Chum Salmon - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to a method for inducing masculinization of a chum salmon capable of inducing masculinization through water temperature control and differentiation of food sources after hatching without using sex hormones. The method according to the present invention increases a male proportion to 85% or more by managing fish culture at high temperature of 15℃ or higher at a time when having an egg yolk after hatching the chum salmon; increases the male proportion to 95% or more by supplying seonji and lecithin at high water temperature after eating raw food in an early stage of hatching; artificially increases the male proportion by suppressing conversion of male sex hormones of the chum salmon to magnetic hormones through control of water temperature and feed supply instead of using the sex hormones; massively produces PDRN, which is a genetic fragment for industrialization, at a low cost by securing many semen and testes of males; and is used in a field of food and medicine without restrictions.

Description

첨연어의 수컷화 비율을 높이는 비호르몬적 방법{Nonhormonal Method for Masculinization of Chum Salmon}Nonhormonal Method for Masculinization of Chum Salmon

본 발명은 첨연어의 수컷화를 유도하기 위한 방법으로서, 성 호르몬을 사용하지 않고 부화 이후 수온조절과 먹이공급원의 차별화를 통하여 수컷화를 유도하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for inducing maleization of juvenile salmon, without using sex hormones, and to a method of inducing maleization through regulation of water temperature after hatching and differentiation of food sources.

어류의 성(gender) 조절은 수십 년 동안 연구된 분야로서 주로 에스트라디올(estradiol)과 테스토스테론(testosterone)의 양 조절에 의한 방법을 적용하고 있으나, 식품·의약품 산업분야에서 이러한 성호르몬(sex hormone)을 사용하여 인위적으로 성을 조절하는 것은 식품안전 면에서 바람직하지 않다.Gender control in fish has been studied for several decades, and the method is mainly applied by controlling the amount of estradiol and testosterone. It is undesirable in terms of food safety to artificially control sex using

무지개송어의 성 조절은 대부분 염색체(chromosome)의 조절에 의한 방법을 사용하고 있으며, 수컷의 정액을 자외선 처리하여 정자가 가진 X 또는 Y 염색체의 활성을 없애서 알이 가지고 있는 X 염색체의 분열을 고압 또는 고온처리로 조절하여 XX 염색체를 갖는 암컷을 만들거나, 또는 알이 가진 X 염색체를 비활성화한 후 정자의 X 또는 Y 염색체의 분열을 조절하여 XX 또는 YY 염색체를 갖는 개체들을 만들어 YY 염색체를 갖는 슈퍼수컷(어떻게 교배를 시켜도 XY 염색체를 갖는 수컷을 만드는 수컷)으로 수정시키는 방법으로 100 % 수컷을 만드는 방법을 사용한다.Most of the sex control of rainbow trout uses a method by controlling chromosomes, and UV treatment of male semen to abolish X or Y chromosome activity in sperm to prevent the division of X chromosome in eggs by high pressure or high pressure. High-temperature treatment to make females with XX chromosomes, or inactivate the X chromosomes of eggs and control the division of X or Y chromosomes of sperm to create individuals with XX or YY chromosomes, and super males with YY chromosomes (However, the method of making 100% males is used as a method of fertilization to males that produce males with XY chromosomes no matter how they are bred.

연어(Oncorhynchus keta)는 식용을 목적으로 양식한 사례가 드물지만 무지개송어(Oncorhynchus mykiss)의 경우 수컷이 산란기 성숙도에 따라 폐사율이 높다는 문제로 인해서 전암컷 또는 염색체 조절에 의한 3배체 무성숙개체들을 생산하여 식용을 목적으로 하는 개체군으로 양식하고 있다.Salmon ( Oncorhynchus keta ) is rarely farmed for food, but in the case of rainbow trout ( Oncorhynchus mykiss ), males have a high mortality rate depending on the maturity of the spawning season. They are farmed in populations intended for human consumption.

식품이나 의약품의 제조에 있어서 성호르몬의 사용은 환자들에게만 허용되고 처방되지 않는 성호르몬 제재의 사용은 엄격히 규제되고 있으며, 이에 따라 수산양식업계에서는 수산용 인간융모성성선자극호르몬(human chorionic gonadotropin, hCG)을 개발하여 산란촉진을 위해 사용하나, 기타 여포자극호르몬(follicle stimulating hormone, FSH), 황체형성호르몬(luteinizing hormone, LH), 테스토스테론(testosterone), 에스트로겐(estrogen) 등의 호르몬 제재는 식품분야에서 허용되지 않는다.The use of sex hormones in the manufacture of food or medicine is permitted only for patients, and the use of non-prescribed sex hormone preparations is strictly regulated. Accordingly, in the aquaculture industry, human chorionic gonadotropin ( hCG) was developed and used to promote spawning, but other hormone preparations such as follicle stimulating hormone (FSH), luteinizing hormone (LH), testosterone and estrogen are used in the food sector. not allowed in

그러나 살아있는 생물의 사육환경을 바꿔서 성을 조절하는 등 자연스럽게 체내에서 성호르몬의 양적변화를 유도하는 경우 인위적인 성호르몬 사용의 제한요인에서 벗어날 수 있으며, 예를 들어 유전적인 성(수정 당시)을 생식세포의 발달 전에 수온조절과 같은 환경인자에 의한 조절(환경적인 성)로 시도하고 있는데, 금붕어나 틸라피아에서는 구체적인 연구가 진행되었으나, 연어과, 특히 연어(Oncorhynchus keta)의 경우 극히 일부에서 한계수온을 제시하고 있을 뿐 상용화할 수 있는 기술 수준에는 미치지 못하고 있다.However, if you naturally induce quantitative changes in sex hormones in the body, such as by changing the breeding environment of living organisms to control sex, you can escape from the limiting factors of artificial sex hormone use, for example, genetic sex (at the time of fertilization) there trying to control (environmental resistance) due to environmental factors such as temperature regulation before development, and the goldfish or tilapia although progress has specific studies, salmonids, in particular, presents a limit temperature in a fraction if the salmon (Oncorhynchus keta) However, it does not reach the level of technology that can be commercialized.

한국등록특허공보 제1805034호(삼배체 무지개 송어 수정란의 제조 방법)Korean Patent Publication No. 1805034 (Manufacturing method of fertilized egg of triploid rainbow trout) 한국등록특허공보 제1892109호(레트로졸 또는 아나스트로졸을 포함하는 주사용 조성물)Korean Patent Publication No. 1892109 (Injectable composition containing letrozole or anastrozole)

권오남, 아다찌신지, 2009. 베스테르 철갑상어 치어 성전환을 위한 17α-methyltestosterone과 estradiol-17β 경구투여 효과. 한국수산과학회 42, 585-590.Ohnam Kwon, Shinji Adachi, 2009. Effect of oral administration of 17α-methyltestosterone and estradiol-17β for sex reassignment of bester sturgeon fry. Korean Society of Fisheries Science 42, 585-590. Baker IJ, Solar II and Donaldson EM, 1988. Masculinization of chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) by immersion treatments using 17α-methyltestosterone around the time of hatching. Aquaculture 72, 359-367.Baker IJ, Solar II and Donaldson EM, 1988. Masculinization of chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) by immersion treatments using 17α-methyltestosterone around the time of hatching. Aquaculture 72, 359-367. 김동수, 정창화, 김인배, 전암컷 3배체 무지개송어의 유도. 한국유전학회 15, 213-218.Dongsoo Kim, Changhwa Jeong, Inbae Kim, Induction of female triploid rainbow trout. Korean Genetic Society 15, 213-218. Baroiller JF, D’Cotta H and Wessels S, 2009. Tilapia sex determination: Where tmeperature and genetics meet. CBP A 15, 30-38.Baroiller JF, D’Cotta H and Wessels S, 2009. Tilapia sex determination: Where tmeperature and genetics meet. CBP A 15, 30-38. Long BJ, Jelovac D, Handratta V, Thiantanawat A, MacPherson, Ragaz J, Goloubeva OG and Brodie AM, 2004. Therapeutic strategies using the aromatase inhibitor letrozole and tamoxifen in an breat cancer model. J Natl Cance Inst 96, 456-465.Long BJ, Jelovac D, Handratta V, Thiantanawat A, MacPherson, Ragaz J, Golouubeva OG and Brodie AM, 2004. Therapeutic strategies using the aromatase inhibitor letrozole and tamoxifen in an breat cancer model. J Natl Cance Inst 96, 456-465.

본 발명은 상기의 문제를 해결하기 위한 것으로서, 성 호르몬을 사용하지 않고 사육환경을 바꿔서 자연스럽게 첨연어의 수컷화를 유도할 수 있는 방법을 제공하는 것이다.The present invention is to solve the above problem, and to provide a method for naturally inducing maleization of the salmon by changing the breeding environment without using sex hormones.

상기 과제를 해결하기 위하여, 본 발명은 첨연어의 성숙란과 정액을 이용하여 수온 12 ℃ 이하에서 수정 및 부화시킨 후, 상기 부화된 자어를 부화 8~12 일 이후부터 수온 15 ℃ 이상에서 양식하고, 부화 18~22 일 이후부터 수온 10~15 ℃에서 양식하며, 상기 부화 13~17 일 이후부터 25~35 일 동안 생먹이를 공급하고, 생먹이 공급 이후 생먹이 공급을 중단하고 3~4 개월 동안 선지, 레시틴 또는 이들의 혼합물을 매일 어체중량의 1~5 중량%의 양으로 사료와 함께 공급하는 과정으로 이루어지는, 첨연어의 수컷화 비율을 높이는 비호르몬적 방법을 제공한다.In order to solve the above problem, the present invention is to fertilize and hatch at a water temperature of 12 ℃ or less using mature eggs and semen of cumulus salmon, and then culture the hatched larvae at a water temperature of 15 ℃ or more from 8 to 12 days after hatching, After 18~22 days of hatching, culture at 10~15 ℃ of water temperature, supply live feed for 25~35 days after 13~17 days of hatching, stop supplying live feed after supplying live feed, and seonji, lecithin for 3~4 months Alternatively, it provides a non-hormonal method for increasing the maleing ratio of sardines, comprising the process of supplying a mixture thereof together with feed in an amount of 1 to 5% by weight of the fish body weight every day.

이때, 상기 수정 및 부화시키는 수온은 10~12 ℃인 것이 바람직하고, 상기 부화 8~12 일 이후의 수온은 15~18 ℃인 것이 바람직하다.In this case, the water temperature for fertilization and incubation is preferably 10 to 12 ℃, and the water temperature after 8 to 12 days of incubation is preferably 15 to 18 ℃.

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본 발명에 따른 방법은 첨연어의 부화 후 난황을 달고 있는 시기에 15 ℃ 이상의 고수온에서 양식관리하여 수컷의 비율을 85 % 이상으로 높이고, 부화 초기에는 생먹이를 먹이고 이후 고수온에서 선지와 레시틴을 공급하여 수컷의 비율을 95 % 이상으로 높일 수 있다.The method according to the present invention raises the proportion of males to 85% or more by managing the aquaculture at high temperature of 15 ℃ or higher during the period when the yolk is added after hatching of the juvenile salmon. The proportion of males can be increased to more than 95%.

또한, 성 호르몬을 사용하는 대신에 수온과 사료 공급의 조절을 통하여 첨연어의 웅성호르몬이 자성호르몬으로 변환되는 것을 억제하여 인위적으로 수컷의 비율을 높일 수 있으므로, 수컷의 정액 및 정소를 최대한 많이 확보 가능하여 산업화를 위한 유전자 단편인 PDRN을 저비용으로 대량 생산할 수 있고 식품·의약품 분야에서 제약없이 사용할 수 있다.In addition, instead of using sex hormones, it is possible to artificially increase the ratio of males by inhibiting the conversion of male hormones into female hormones through control of water temperature and feed supply, so as to secure as much of the male semen and testes as possible. It is possible to mass-produce PDRN, a gene fragment for industrialization, at low cost, and can be used without restrictions in the food and pharmaceutical fields.

도 1과 도 2는 첨연어 수정란의 수온별 발안율과 평균발안시간을 나타낸 그래프이다.
도 3 내지 도 5는 첨연어 수정란의 수온별 부화율, 첫 부화일 및 부화기간을 나타낸 그래프이다.
도 6은 생식소 압착법으로 확인되는 암수 생식소의 현미경 관찰 모습을 보여주는 사진이다.
도 7은 첨연어 자치어의 수온별 수컷화 비율을 나타낸 그래프이다.
도 8과 도 9는 12 ℃에서 수정/부화된 자치어를 고수온(15.6℃)에 노출시킨 시기별 및 기간별 수컷화 비율을 나타낸 그래프이다.
도 10 내지 도 12는 난황 흡수 이후 첨연어 치어에게 공급된 추가먹이원의 차이에 따른 수컷화 비율(12 ℃/15.6 ℃) 및 생존율을 나타낸 그래프이다.
1 and 2 are graphs showing the fertilization rate and average fertilization time for each water temperature of fertilized salmonid eggs.
3 to 5 are graphs showing the hatching rate, first hatching date, and hatching period by water temperature of fertilized salmonid eggs.
6 is a photograph showing a microscopic observation of the male and female gonads confirmed by the gonad compression method.
7 is a graph showing the maleization ratio for each water temperature of juvenile salmon.
8 and 9 are graphs showing the maleing ratio by period and period in which fertilized/hatched larvae were exposed to high temperature (15.6 °C) at 12 °C.
10 to 12 are graphs showing the maleing ratio (12 ℃ / 15.6 ℃) and the survival rate according to the difference in the additional food source supplied to the juvenile salmon after yolk absorption.

연어과 어류의 수컷은 최근 각광받는 바이오 소재인 폴리데옥시리보뉴클레오티드(polydeoxyribonucleotide, PDRN)와 폴리뉴클레오티드(polynucleotide, PN)를 생산하기 위한 생물소재로 인식되고 있다.Males of salmonid fish are recognized as biomaterials for producing polydeoxyribonucleotide (PDRN) and polynucleotide (PN), which are recently spotlighted biomaterials.

PDRN은 생물체 내의 조직재생(anagenesis) 활성물질에 존재하고, 세포성장 활성제로서 인대, 힘줄, 피부 등 인체조직의 재생과 염증완화에 효과가 있으며, 인체의 태반 속에 극소량 들어있는 물질이나 윤리적 문제와 의약품 생산성 등의 어려움으로 인하여 어류의 PDRN이 대안으로 제시되었다.PDRN exists in tissue regeneration (anagenesis) active substances in living organisms, and as a cell growth activator, it is effective in the regeneration and inflammation relief of human tissues such as ligaments, tendons, and skin. Due to difficulties in productivity, etc., fish PDRN was suggested as an alternative.

어류 중에서 연어와 송어의 정액 및 정소는 핵산 함유량이 높고 DNA 조합이 인체와 96 % 이상 일치하여 그 활용도가 매우 높으며, PDRN은 이들의 DNA를 의료용, 건강기능식, 화장품 등으로 활용하는 소재로서 사용되고 전세계의 시장 규모가 매우 크다.Among fish, semen and testis of salmon and trout have a high nucleic acid content and their DNA combination is 96% or more identical to that of the human body, so their utilization is very high. The global market is very large.

그런데 첨연어는 자연에서 나는 것 이외에 양식으로써의 가치가 떨어지기 때문에 인위적인 양식은 하지 않고 있으며, 무지개송어의 수컷은 부화 후 2년째 성성숙을 하여 정자를 만들어 내기 시작하는데 산란기가 되어야 정액 채취가 가능하나 산란기의 수컷은 먹이활동이 적어지고 성성숙에 많은 에너지를 쓰기 때문에 체형이 마르고 야위어가면서 폐사가 많다.However, since the value as a culture other than those produced in nature decreases, artificial culture is not carried out, and the male of rainbow trout matures to sexual maturity 2 years after hatching and begins to produce sperm. Males in the spawning season have fewer feeding activities and use a lot of energy for sexual maturity, so they die a lot as their body gets thinner and thinner.

국내에서 생산되는 연어는 수출국에서 자국 내 사업과 자원 관리, 타국(수입국)의 유전자원 교란을 막기 위하여 대부분 삼배체 또는 불임처리되어 국내로 들어오는 개체들이며, 이로 인하여 PDRN은 국내외적으로 생산량이 한정되어 높은 가격수준을 형성하고 있다.Most of the salmon produced in Korea are triploid or sterilized to prevent disruption of domestic business and resource management and genetic resources in other countries (importing countries) in the exporting country. forming the price level.

본 발명은 첨연어의 수컷을 효율적으로 생산하여 고급 의료소재인 PDRN 원료를 저비용으로 확보할 수 있는 방안을 제시하며, 첨연어의 부화 이후 수온 처리와 먹이공급원의 차별화를 통하여 수컷화를 유도한다.The present invention proposes a method for efficiently producing males of juvenile salmon to secure high-quality medical material, PDRN raw material, at low cost, and induces maleization through water temperature treatment after hatching and differentiation of food sources.

이를 위하여, 첨연어의 부화 후 양식 수온을 15 ℃ 이상으로 유지하여 부화 후 웅성(雄性)호르몬에서 자성(雌性)호르몬으로 변환시키는 아로마타아제(aromatase)를 억제함으로써 어류 내 자성호르몬의 양을 줄여서 자연스럽게 수컷의 비율을 높인다.To this end, by reducing the amount of female hormones in fish by inhibiting aromatase, which converts male hormones to female hormones after hatching, by maintaining the culture water temperature above 15 °C after hatching. Naturally increase the proportion of males.

연어(Oncorhynchus keta)의 경우 수정 이후 부화 및 부화자어까지 10 ℃에서 양식 관리하는 것이 생존율을 확보하기 위한 통상적인 방법이었으나, 수컷화를 위해서 난황 달린 부화 자어의 아로마타아제 활성을 억제하기 위해서 15 ℃ 이상의 수온에서 관리하는 것이 수컷 유도율을 효과적으로 높일 수 있다.In the case of salmon ( Oncorhynchus keta ), aquaculture management at 10 ° C after fertilization until hatching and hatching was a common method to secure survival, but 15 ° C to inhibit the aromatase activity of hatched larvae with yolk for maleing. Management at a higher water temperature can effectively increase the male induction rate.

이와 더불어, 수온조절에 의해 확보된 수컷 위주의 집단에서 좀 더 수컷의 비율을 높이기 위하여 생먹이 공급 이후 3~4 개월 동안 먹이로서 선지(cattle blood plasma)와 레시틴(lecithin)을 추가공급하여 아로마타아제 저해제(aromatase inhibitor)의 역할을 하는 레트로졸(letrozole)을 공급함으로써 자성호르몬의 양을 줄여 자연스럽게 수컷의 비율을 높인다.In addition, in order to increase the proportion of males in the male-dominated group secured by water temperature control, kettle blood plasma and lecithin are additionally supplied as food for 3 to 4 months after the supply of live feed to produce aromatase. By supplying letrozole, which acts as an aromatase inhibitor, the amount of sex hormones is reduced and the proportion of males is naturally increased.

선지와 레시틴은 아로마타아제 저해제의 역할을 하는 레트르졸을 함유하고 있고 레시틴으로서 난황레시틴(yolk sac lecithin)을 사용할 수 있으며, 레트르졸은 웅성호르몬인 테스토스테론이 자성호르몬인 에스트로겐으로 변환되는 생화학적 경로에 관여하는 방향화효소인 아로마타아제의 활성을 저해하여 부화 자어의 수컷화 비율을 높일 수 있다.Glands and lecithin contain letrzole, which acts as an aromatase inhibitor, and yolk sac lecithin can be used as lecithin. By inhibiting the activity of aromatase, which is an aromatase involved in

구체적으로, 첨연어의 부화 관리과정에서 생존율을 확보하기 위해서 12 ℃ 이하, 바람직하게는 10~12 ℃의 수온에서 관리하는 것이 바람직하고, 수컷화 비율을 높이기 위해서 부화 이후 15 ℃ 이상, 바람직하게는 15~18 ℃의 수온에서 양식 관리하는 것이 수컷 비율을 85 % 이상으로 높일 수 있으며, 이에 더하여 선지와 레시틴을 어체중 1~5 중량%의 비율로 3-4개월 동안 먹이와 별도로 추가 공급하여 95 % 이상의 수컷 집단을 얻을 수 있다.Specifically, in order to secure the survival rate in the hatching management process of the freshwater salmon, it is preferable to manage it at a water temperature of 12 ° C or less, preferably 10 to 12 ° C, and 15 ° C or more after hatching, preferably to increase the maleing ratio Aquaculture management at a water temperature of 15 to 18 ℃ can increase the male ratio to more than 85%, and in addition, additionally supply glandular fat and lecithin at a ratio of 1 to 5% by weight of fish body weight for 3-4 months separately from food 95 More than % male populations can be obtained.

좀 더 구체적으로, 첨연어의 성숙란과 정액을 채취한 후 12 ℃ 이하, 바람직하게는 10~12 ℃의 수온에서 수정 및 부화시키고, 부화된 자어를 이 온도에서 계속 양식하다가 부화 후 8~12 일째 이후부터 15 ℃ 이상, 바람직하게는 15~18 ℃의 고수온에 노출시키면 수컷 비율을 효과적으로 높일 수 있다.More specifically, after collecting the mature eggs and semen of the salmon, fertilization and incubation at a water temperature of 12 ° C or less, preferably 10 to 12 ° C. From then on, when exposed to a high temperature of 15 ° C. or more, preferably 15 to 18 ° C., the male ratio can be effectively increased.

또한, 부화 후 8~12 일째 이후부터 18~22 일째까지의 사이에만 고수온에 노출시켜도 환경적인 영향에 의해 수컷의 비율이 높아지며, 이와 같이 첨연어의 양식장 수온을 일정 기간만 고수온으로 유지하여도 수컷 비율을 높일 수 있으므로, 수온이 높을 경우 부화 후 8~12 일째 이후부터 첨연어가 성어가 될 때까지 수온을 계속해서 15 ℃ 이상 유지하고, 수온이 낮을 경우 부화 후 8~12 일째 이후부터 수온을 15 ℃ 이상 유지한 후 18~22 일째 이후부터는 수온을 낮추는 것이 바람직하며, 수온 20 ℃ 이상에서는 생존율에 악영향을 주므로 양어장 사육수의 특성에 맞추어 13 ℃ 전후로 사육하고, 바람직하게는 10~15 ℃로 유지함으로써 수온 유지에 소요되는 에너지 비용을 절감할 수 있다.In addition, even when exposed to high temperature only from the 8th to 12th days after hatching to the 18th to 22nd days after hatching, the proportion of males increases due to environmental influences. As the ratio can be increased, if the water temperature is high, keep the water temperature above 15℃ from the 8th to 12th day after hatching until the freshwater salmon becomes an adult fish. It is desirable to lower the water temperature from the 18th to 22nd days after maintaining 15 °C or higher, and since the water temperature above 20 °C adversely affects the survival rate, breed at around 13 °C according to the characteristics of the fish farm water, preferably at 10-15 °C. By maintaining the water temperature, it is possible to reduce the energy cost required to maintain the water temperature.

더불어, 부화 후 13~17 일째 이후부터, 즉 자어가 80 % 이상 난황을 흡수한 후 부상하는 시기에 맞추어 입크기에 맞는 생먹이를 공급하고, 생먹이 공급 25~35 일째 이후부터 생먹이 공급을 중단하고 3~4 개월 동안 치어용 사료를 공급하면서 선지와 레시틴을 매일 어체중량의 1~5 중량%의 양으로 추가공급하면 고수온 처리에 의해 높아진 수컷화 비율을 더욱 높일 수 있다.In addition, from the 13th to the 17th day after hatching, that is, after the larvae have absorbed more than 80% of the egg yolk, supply raw food suitable for the size of the mouth, and stop the supply of live food from the 25th to 35th days after the hatchling 3 If feed for fry for ~4 months and supplementary supply of glandular fat and lecithin in an amount of 1~5% by weight of fish body weight every day, the maleing ratio increased by high temperature treatment can be further increased.

또한, 선지와 레시틴을 각각 공급하는 것보다 이들을 혼합하여 공급하는 것이 수컷화 비율을 높이는 데 효과적이고, 선지와 레시틴의 공급시 수온을 15 ℃ 이상 유지하면 수컷화 비율을 좀 더 효과적으로 높일 수 있다.In addition, it is effective to increase the maleization ratio by supplying a mixture of the gland and lecithin rather than separately supplying the gland and lecithin.

또한, 수온을 15 ℃ 이상으로 유지하고 선지와 레시틴을 추가공급하여도 첨연어의 생존율이 85 % 이상을 나타내며, 따라서 상기와 같이 수온과 사료 공급의 조절을 통하여 첨연어의 수컷화 비율을 증가시키는 방법이 첨연어 수컷의 산란기 폐사율에 악영향을 미치지 않는다.In addition, even when the water temperature is maintained at 15 ℃ or higher and the sardines and lecithin are additionally supplied, the survival rate of juvenile salmon is 85% or more. The method did not adversely affect the spawning mortality rate of juvenile males.

이하, 본 발명을 하기의 실시예에 의거하여 좀 더 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on the following examples.

단, 하기의 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐, 본 발명이 하기 실시예에 의해 한정되는 것이 아니고, 본 발명의 기술적 사상을 벗어나지 않는 범위 내에서 치환 및 균등한 타 실시예로 변경할 수 있음은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 명백할 것이다.However, the following examples are only for illustrating the present invention, and the present invention is not limited by the following examples, and can be replaced with other examples that are substituted and equivalent within the scope without departing from the technical spirit of the present invention. It will be apparent to those of ordinary skill in the art to which the present invention pertains.

<실시예 1> 수온별 발안(發眼)에서 부화<Example 1> Incubation in the eyes of each water temperature

자연산 첨연어의 암컷과 수컷으로부터 알과 정액을 채취한 후 수온 10, 12, 15 및 18 ℃에 수용하여 수정란을 발생시켰으며, 발안율은 10 ℃에서 85 %로 유의적으로 높게 조사되었고 18 ℃에서 10 %로 유의적으로 낮게 나타났으며(도 1), 발안까지의 기간은 10 ℃에서 25 일이 소요되었고 18 ℃에서 가장 짧은 15 일이 소요되었다(도 2).Eggs and semen were collected from females and males of wild-caught freshwater salmon, and fertilized eggs were generated by accommodating them at water temperatures of 10, 12, 15 and 18 °C. was significantly lower at 10% (FIG. 1), and the period to induction was 25 days at 10 °C and the shortest 15 days at 18 °C (FIG. 2).

첨연어의 수정란부터 지속적으로 노출된 수온별 부화율은 10 ℃에서 65 %로 유의적으로 가장 높게 나타났고, 18 ℃에서는 3 %로 유의적으로 가장 낮았으며(도 3), 부화한 자어는 10 ℃에서 수정 이후 52 일째 관찰되었으며, 18 ℃에서 유의적으로 가장 짧은 29 일째 관찰되었다(도 4).The hatching rate by water temperature continuously exposed from the fertilized egg of juvenile salmon was significantly highest at 65% at 10 °C, and the lowest at 18 °C (3%) (Fig. 3), and hatched larvae at 10 °C. was observed at 52 days after fertilization, and at 18 °C, the shortest significantly observed at 29 days (Fig. 4).

부화기간은 10 ℃에서 52 일째에서 78 일째까지 26 일 동안 부화하였으며, 18 ℃에서는 29 일째부터 37 일째까지 총 8 일 동안 부화하였다(도 5).Incubation period was incubated for 26 days from the 52nd day to the 78th day at 10 °C, and incubated for a total of 8 days from the 29th day to the 37th day at 18 °C (FIG. 5).

<실시예 2> 고수온에 노출된 자치어의 수컷화 비율<Example 2> Maleization ratio of carnivores exposed to high temperature

부화된 자치어들의 먹이는 초기 냉동 코페포드와 이후 치어용 사료(송어 치어 사료 1, 2호, 우성사료, 한국)를 공급하였고, 수온별로 양식 관리된 치어의 생식소를 적취하여 슬라이드에 올려서 압착법으로 생식소의 알과 정자를 현미경 상에서 확인하여 암수를 구분하였다(도 6).For the food of hatched brood fish, the initial frozen copepod and feed for fry (trout fry feed No. 1 and 2, dominance feed, Korea) were supplied. Males and females were distinguished by checking the eggs and sperm of

10 ℃와 12 ℃에서 양식된 자치어들의 수컷비율은 각각 48 %와 49 %로 유의적으로 낮았으며, 15 ℃와 18 ℃에서 양식된 자치어들에서는 각각 83 %와 85 %의 유의적으로 높은 수컷화 비율을 보였다(도 7).The male ratios of brood fish cultured at 10 °C and 12 °C were significantly low at 48% and 49%, respectively, and significantly higher maleization of 83% and 85%, respectively, in broodstock cultured at 15 °C and 18 °C. ratio (Fig. 7).

12 ℃의 수온에서 수정 및 부화 관리한 자치어를 15.6 ℃의 고수온에 노출시켜 수컷화 비율의 변화를 관찰하였으며, 고수온에 노출시키기 시작한 시기별로 보면 부화 직후와 5 일째부터 고온에 노출시켰을 경우의 수컷화 비율은 49~51 %로 유의적인 차이를 보이지 않았으나 10 일째부터 노출시킨 경우 88 %의 높은 수컷화 비율을 나타내었고, 15 일째부터 노출시킨 경우는 72 %로 나타나 10 일째부터의 결과보다는 낮으나 0~5 일 및 20 일 이후부터 노출시킨 경우보다 높은 수컷화 비율을 보였다(도 8).The change in the maleing ratio was observed by exposing the broccoli fertilized and hatched at a water temperature of 12 ℃ to a high temperature of 15.6 ℃. When looking at the time of exposure to high temperature, maleization was observed immediately after hatching and when exposed to high temperature from the 5th day. The ratio did not show a significant difference at 49~51%, but when exposed from the 10th day, it showed a high maleization rate of 88%, and when exposed from the 15th day, it was 72%, which is lower than the result from the 10th day, but 0~ It showed a higher maleization rate than the case of exposure after 5 days and 20 days (FIG. 8).

또한, 12 ℃의 수온에서 수정 및 부화 관리한 자치어를 15.6 ℃의 고수온에 5 일 동안 노출시켰다가 13 ℃의 수온에서 먹이공급을 하면서 양식한 경우의 고수온 노출기간별 수컷화 비율을 확인하였다.In addition, the maleing ratio for each period of exposure to high temperature was confirmed in the case of fertilization and hatching management at 12 ℃ water temperature, exposed to high temperature of 15.6 ℃ for 5 days, and then cultured while feeding at 13 ℃ water temperature.

부화 후 0~5 일째의 기간 동안 고수온을 노출시킨 경우와 5~10 일째에 고수온에 노출시킨 경우는 49~51 %로서, 20~25 일째 노출시킨 경우와 함께 유의적으로 낮은 수컷화 비율을 보인 반면에, 10~15 일째 고수온에 노출시킨 경우 89 %의 가장 높은 수컷화 비율을 보였고 15~20 일째 고수온에 노출시킨 경우 75 %의 높은 수컷화 비율을 보였다(도 9).When exposed to high temperature during 0-5 days after hatching and when exposed to high temperature on 5-10 days after hatching, 49-51%, showing a significantly lower maleing rate together with exposure on 20-25 days On the other hand, exposure to high temperature on the 10th to 15th days showed the highest maleization rate of 89%, and exposure to high temperature on the 15th to 20th days showed a high maleization rate of 75% (FIG. 9).

<실시예 3> 자치어의 추가 먹이원 공급에 따른 수컷화 비율<Example 3> Maleization ratio according to the supply of additional food sources of larvae

산란, 부화 및 성장 전 과정을 12 ℃의 수온에서 양식한 경우와, 12 ℃의 수온에서 산란 및 부화시킨 후 15.6 ℃의 수온에서 성장시킨 경우로 구분하여 추가 먹이원을 공급하고 수컷화 비율을 관찰하였다.The whole process of spawning, hatching, and growth is divided into the case of cultured at 12 ℃ water temperature and the case of spawning and hatching at 12 ℃ water temperature and then grown at 15.6 ℃ water temperature, supply additional food sources and observe the maleing ratio. did.

첨연어 자치어에 부상 직전부터 냉동 코페포트(생먹이)를 먹이로 공급하고 생먹이 공급 25-35일째부터 생먹이 공급을 중단한 후 3~4 개월 동안 치어용 사료(송어 치어 사료 1, 2호, 우성사료, 한국) 또는 테스토스테론이 10 ppm 도말 처리된 치어용 사료(T 10 ppm)를 공급하였으며, 치어용 사료 공급시 신선 선지 및 난황레시틴을 추가 공급하였다.Frozen copepot (live food) is supplied to the freshwater salmon right before injury, and live feed is stopped from the 25th to 35th day of the live feed. , Korea) or testosterone smear-treated fry (T 10 ppm) was supplied, and fresh wire and egg yolk lecithin were additionally supplied when feeding fry.

모든 실험용 치어는 1×1 m 그물망에 100 마리씩 수용하였고, 냉동 코페포드는 어체 중량의 6 %를 09:00와 16:00 시간대로 나눠서 각각 3 %씩 매일 2회 공급하였으며, 사료(치어용 사료 또는 테스토스테론 10 ppm 도말 사료) 또한 9:00와 16:00 시간대에 각각 어체 중량의 1.5 %씩 2회 공급하였다.All experimental fry were housed in a 1×1 m net by 100, and frozen copepods were divided into 6% of the weight of the fish at 09:00 and 16:00, and 3% each was supplied twice daily, and feed (fry for fry) Or testosterone 10 ppm smear feed) was also supplied twice at 9:00 and 16:00, each 1.5% of the body weight.

치어용 사료와 함께 신선 선지를 매일 1회 어체 중량의 2 %의 양으로 먹이통에 넣어서 먹게 하였고, 난황레시틴은 매일 1회 신선 선지와 같은 중량으로 물에 뿌려서 섭취할 수 있도록 하였으며, 또한 신선 선지와 난황레시틴을 각각 어체 중량의 1 %씩 혼합한 복합공급구 2 %를 매일 1회 공급하였다.It was eaten in an amount of 2% of the weight of the fish body once a day along with the feed for the fry, and the fresh scallops were put into the feeding box, and the egg yolk lecithin was sprinkled on water once a day at the same weight as the fresh spears for consumption. 2% of the compound feed port in which egg yolk lecithin was mixed with 1% of each fish body weight was supplied once a day.

난황흡수 후 4 개월째에 치어의 생식소를 절취하여 암수를 선별하였으며, 12 ℃에서 양식한 경우 대조구(추가 먹이원 없이 냉동 코페포드와 사료를 공급한 경우)에서 48 %의 수컷비율을 보였고, 테스토스테론 10 ppm 사료를 공급한 경우에는 92 %의 높은 수컷화 비율을 보였으며, 치어용 사료와 함께 선지와 레시틴을 각각 공급한 경우 78~82 %의 수컷화 비율을 보였고, 신선 선지와 레시틴을 함께 공급한 경우에는 95 %의 높은 수컷화 비율을 보였다(도 10).At 4 months after yolk absorption, the gonads of the fry were removed and males and females were screened, and when cultured at 12 °C, the male ratio was 48% in the control group (frozen copepods and feed without additional food sources), and testosterone. When 10 ppm feed was supplied, a high maleization rate of 92% was shown, and when pigeon fat and lecithin were supplied together with fry feed, respectively, the maleization ratio was 78~82%, and fresh fish fat and lecithin were supplied together. In one case, it showed a high maleization rate of 95% (FIG. 10).

그리고 부화 직후 15.6 ℃에서 양식한 경우, 대조구에서 82.5 %를 보였고, 테스토스테론 10 ppm 사료구에서는 95.5 %의 높은 수컷화 비율을 보인 반면에, 선지와 레시틴을 각각 추가 공급한 경우 88.3 %까지 증가하는 경향은 있었으나 유의적인 차이는 없었으며, 선지와 레시틴을 혼합한 공급구에서는 96.3 %로 유의적으로 높은 수컷화 비율을 보였다(도 11).And when cultured at 15.6 ℃ immediately after hatching, it was 82.5% in the control group, and high maleing ratio of 95.5% in the testosterone 10 ppm feed group, whereas when the glandular fat and lecithin were additionally supplied, it increased to 88.3%. was present, but there was no significant difference, and in the supply group mixed with glandular gland and lecithin, it showed a significantly high maleization ratio (96.3%) (FIG. 11).

또한, 12 ℃의 수온에서 산란 및 부화시킨 후 15.6 ℃의 수온에서 성장시킨 경우의 생존율을 보면, 대조구, 신선 선지, 레시틴 및 혼합 공급구에서는 86~88 %의 높은 생존율을 보였으나 테스토스테론 10 ppm 사료를 공급한 경우에는 79 %로 낮아져, 테스토스테론의 공급이 치어의 생존율에 부정적인 영향을 미침을 알 수 있다(도 12).In addition, when looking at the survival rate when spawned and hatched at a water temperature of 12 ℃ and grown at a water temperature of 15.6 ℃, the control group, fresh wire, lecithin and mixed feed showed a high survival rate of 86~88%, but testosterone 10 ppm feed It is lowered to 79% in the case of supplying , it can be seen that the supply of testosterone has a negative effect on the survival rate of the fry (Fig. 12).

Claims (7)

첨연어의 성숙란과 정액을 이용하여 수온 12 ℃ 이하에서 수정 및 부화시킨 후, 부화된 자어를 부화 8~12 일 이후부터 수온 15 ℃ 이상에서 양식하고, 부화 18~22 일 이후부터 수온 10~15 ℃에서 양식하며,
부화 13~17 일 이후부터 25~35 일 동안 생먹이를 공급하고, 생먹이 공급 이후 생먹이 공급을 중단하고 3~4 개월 동안 선지, 레시틴 또는 이들의 혼합물을 매일 어체중량의 1~5 중량%의 양으로 사료와 함께 공급하는 과정으로 이루어지는, 첨연어의 수컷화 비율을 높이는 비호르몬적 방법.
After fertilization and incubation at a water temperature of 12 ℃ or less using matured eggs and semen, hatched larvae are cultured at a water temperature of 15 ℃ or higher from 8 to 12 days after hatching, and from 18 to 22 days after hatching, a water temperature of 10 to 15 cultured at ℃,
From 13 to 17 days after hatching, feed live feed for 25 to 35 days, stop feeding live feed after supplying live feed, and for 3 to 4 months, take saliva, lecithin, or a mixture thereof in an amount of 1 to 5% by weight of the fish body weight every day. A non-hormonal method of increasing the maleing ratio of sardines, comprising the process of feeding them together with feed.
청구항 1에 있어서,
상기 수정 및 부화시키는 수온은 10~12 ℃인 것을 특징으로 하는, 첨연어의 수컷화 비율을 높이는 비호르몬적 방법.
The method according to claim 1,
The fertilization and hatching water temperature is a non-hormonal method of increasing the maleization rate of salmon, characterized in that 10 ~ 12 ℃.
청구항 1에 있어서,
상기 부화 8~12 일 이후의 수온은 15~18 ℃인 것을 특징으로 하는, 첨연어의 수컷화 비율을 높이는 비호르몬적 방법.
The method according to claim 1,
The non-hormonal method of increasing the maleization rate of chum salmon, characterized in that the water temperature after 8 to 12 days of hatching is 15 to 18 ℃.
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