KR102143887B1 - Toso 활성을 조절하기 위한 방법 및 조성물 - Google Patents

Abstract

본 발명은 더욱이 Toso 단백질의 활성을 조절하기 위한 방법 및 조성물에 대한 것이다. 본 발명은 더욱이 가용성 Toso 단백질을 포함하는 조성물을 사용하여 염증화, 자가면역 질환, 및 암과 연계된 질환의 치료를 포괄한다.

Description

Toso 활성을 조절하기 위한 방법 및 조성물{METHODS AND COMPOSITIONS FOR MODULATING TOSO ACTIVITY}

출원에 관련된 상호 참조

본 출원은 2012년 3월 16일자 출원된 미국의 가출원 번호 61/612,183호, 2012년 5월 11일자 출원된 미국의 가출원 번호 61/646,143호 및 2012년 11월 29일자 출원된 미국의 가출원 번호 61/731,428호에 대한 우선권을 청구하고, 이들의 내용은 모든 목적을 위해 이들의 전체로서 본 명세서에 참고로 명백하게 합체된다.

토소(Toso) 또는 Faim3 (Fas 세포자멸 유도 분자 3)은 Fas-유도 세포자멸 세포사의 매개자로서 T 세포 백혈병의 라인인 주르카트(Jurkat) 세포에서 레트로바이러스의 과발현 스크린을 통해 근원적으로 특징 되는 단일 멤브레인 스패닝 세포 표면 수용체(single membrane spanning cell surface receptor)이다(문헌 「Hitoshi, Y., et al., Toso, a cell surface, specific regulator of Fas-induced apoptosis in T cells. Immunity, 1998. 8(4): p. 461-71」 참고). 계속된 연구는 Toso가 IgM에 대한 포착하기 어려운 수용체라는 것을 제시하였다. Toso의 발현은 또한 특별하게 만성 림프구성 백혈병 또는 CLL의 침투성 형태와 연관성이 있는 것으로 여겨진다.

치료적 표적으로서 Toso의 사용을 동정하기 위해 생체 내에서 Toso의 역할의 특정화에 대한 필요 및 Toso에 결합 및/또는 그의 활성을 조절할 수 있는 제제를 포함하는 조성물에 대한 필요가 있다.

발명의 요약

따라서, 본 발명은 Toso의 활성을 조절하고 그리고 Toso가 연루되어 진 질병 및 장애를 치료하기 위한 방법 및 조성물을 제공한다.

일 측면에 있어서, 본 발명은 대상자에서서 자가면역 장애를 치료하는 방법을 제공하는 것으로, 이 방법은 치료적으로 유효한 양의 가용성 Toso 단백질을 함유하는 조성물로 대상물을 치료하는 단계를 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 자가면역 장애는 제한 없이 류마티스 관절염, 다발성 경화증, 루푸스 또는 I 형 당뇨병이다.

부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 대상자에서서 II 형 당뇨병을 치료하는 방법을 제공하는 것으로, 이 방법은 치료적으로 유효한 양의 가용성 Toso 단백질을 함유하는 조성물로 대상물을 치료하는 단계를 포함한다.

일 측면에 있어서, 본 발명은 대상자에서서 천식을 치료하는 방법을 제공하는 것으로, 이 방법은 치료적으로 유효한 양의 가용성 Toso 단백질을 함유하는 조성물로 대상물을 치료하는 단계를 포함한다.

부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 서열번호: 5 또는 6의 아미노산 서열 또는 이의 절편이나 결손 변이체를 가지는 가용성 폴리펩티드를 대상자에 투여함에 의해 그 대상자에서서 당뇨병, 천식, 다발성 경화증, 또는 류마티스 관절염을 치료하는 방법을 제공한다. 부가적인 측면에 있어서, 대상자에서 Toso 활성은 대상자에서서 감소한다. 더욱이 부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 서열번호 1-25의 어느 하나 또는 그 이상의 아미노산 서열을 포함하는 가용성 폴리펩티드를 투여함에 의해 대상자에서서 당뇨병, 천식, 다발성 경화증, 또는 류마티스 관절염을 치료하는 방법을 제공한다.

더욱이 부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 본 발명은 대상자에서서 암, 알레르기, COPD, 과-IgM 증후군, 루푸스, 또는 호중구증가증-관련 장애를 치료하는 방법을 제공하는 것으로, 이 방법은 치료적으로 유효한 양의 가용성 Toso 단백질을 함유하는 조성물로 대상물을 치료하는 단계를 포함한다.

부가적인 실시형태 있어서 그리고 상기의 어느 하나에 따라, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 인간의 Toso 아이소형인 NP_005440.1의 아미노산 잔기 아미노산 P21 내지 G251을 포함한다(모든 목적을 위해 그리고 특별하게는 Toso의 세포질 외의 도메인에 관련된 모든 개시를 위해 그 전체로서 여기에 합체되는, 문헌 「Shima et al., Int. Immunol., 2010」 참고).

더욱 부가적인 실시형태 있어서 그리고 상기의 어느 하나에 따라, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 인간의 Toso 단백질의 세포질 외의 도메인을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명에 있어서 용도의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 7의 아미노산 잔기 18-253을 포함한다.

더욱 부가적인 실시형태 있어서 그리고 상기의 어느 하나에 따르면, 본 발명의 방법에서 사용된 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 5 또는 6에 따른 아미노산 서열을 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 5 또는 6에 적어도 90% 서열 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 5 또는 6의 결손 변이체를 포함한다. 여전히 부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 하나에 따르면, 본 발명의 방법에서 사용된 가용성 Toso 단백질은 서열번호 1-25의 어느 하나 또는 그 이상의 아미노산 서열을 포함한다.

부가적인 실시형태 있어서 그리고 상기의 어느 하나에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 다량체이다. 더 부가적인 실시형태 있어서, 다량체는 6 개의 단량체로 구성된다. 더 부가적인 실시형태 있어서, 다량체의 Toso 단백질의 각 단량체는 서열번호: 6에 따른 서열을 포함한다.

부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 멤브레인-결합 Toso 수용체를 포함하는 세포에 가용성 Toso 폴리펩티드를 적용하는 것을 포함하는 Toso 활성을 억제하기 위한 방법을 제공한다.

더 부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 서열번호: 5 또는 서열번호: 6의 폴리펩티드를 포함하는 조성물을 제공한다. 하나의 실시형태에 있어서, 그 조성물은 Toso 활성을 저해한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 폴리펩티드는 다량체이다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 다량체는 6 개의 단량체를 포함하고, 여기서 각 단량체는 서열번호: 6에 따른 서열을 포함한다.

부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 여기에 개시된 단백질의 어느 하나에 따른 가용성 Toso 단백질을 인코딩하는 분리된 핵산을 제공한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 여기에 기술된 어떤 단백질에 따른 가용성 Toso 단백질을 인코딩하는 분리된 핵산을 발현하는 숙주 세포를 제공한다.

부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 인간 Toso 단백질의 세포질 외 도메인, Fc 영역 및 다중화 태그를 포함하는 융합 단백질을 제공한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 세포질 외의 도메인은 인간 Toso 단백질의 아미노산 21-251을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 다중화 태그는 서열번호: 4를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 영역은 서열번호: 3을 포함한다.

부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 상기에 기술된 융합 단백질을 인코딩하는 분리된 핵산을 제공한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 상기에 기술된 융합 단백질을 인코딩하는 핵산을 포함하는 숙주세포를 제공한다.

부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 서열번호 8-24에 또는 서열번호: 7의 아미노산 잔기 18-251을 포함하는 폴리펩티드 영역에 적어도 90% 서열 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 분리된 가용성 폴리펩티드를 제공한다.

부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 여기에 기술된 가용성 Toso 단백질의 어느 하나를 인코딩하는 폴리펩티드를 생산하기 위한 방법을 제공하는 것으로, 이 방법은 상기 폴리펩티드를 인코딩하는 핵산을 포함하는 세포를 제공하는 단계를 포함하고, 상기 세포는 상기 폴리펩티드의 발현에 적절한 조건 하에서 배양된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 여기에 기술된 가용성 Toso 단백질의 어느 하나를 인코딩하는 핵산을 제공한다.

도 1은 Toso^-/- 마우스에서 염증에 관련된 데이터를 도시한다. 도 1A는 디지털 캘리퍼를 사용하여 복사뼈 두께에 있어서의 변화에 의해 평가된 것으로 관절 염증의 평가를 나타낸다. 도 1B는 가시적 부종과 운동성에 기초된 각 관절에 대한 질병 심각성 점수를 나타낸다. 도 1C는 소속 림프절에서 림프구 개체군의 유동 혈구 계산 분석을 나타낸다.
도 2는 Toso^-/- 및 야생형 마우스 상에 OVA 유도 천식 모델로부터의 데이터를 나타낸다. 도 2A는 천식 모델의 유도의 개략적인 도식이다. 도 2B는 DifQuik 염색에 의해 분석된 것으로 기관지폐포성 공간 안으로 호산구 이동에 대한 데이터를 나타낸다. 도 2C는 슬라이드 당 적어도 200 백혈구를 함유하는 것으로 정량된 호산구에 대한 데이터이다
도 3A 내지 3C는 ELISA에 의해 분석된 것으로 BALF 내에 OVA 유도 T_H2 시토킨 IL-4, IL-5 및 IL-13에 대한 데이터를 나타낸다. 도 3D는 BALF 내에 호산구를 끄는 C-C 케모카인인 에오탁신에 대한 데이터를 나타낸다. 도 3E는 평활근 세포에서 TNFα 처리에 대한 반응으로 생산된 에오탁신의 준위를 나타낸다.
도 4는 Toso^-/- 마우스에서 IgE에 대한 데이터를 나타낸다. 도 4A 및 4B는 Toso^-/- 마우스에서 전체 및 특이적 IgE 준위를 나타내고, 도 4C는 야생형과 Toso^-/- 마우스 사이의 IgG1 준위를 나타낸다.
도 5는 야생형 대조군에 비교된 Toso^-/- 마우스의 Penh 값을 나타낸다.
도 6은 야생형 및 Toso^-/- 마우스에서 MOG-유도 모델에서 EAE 스코어를 나타낸다
도 7A는 Toso^-/- 및 야생형 수지상 세포가 미리 기관지 내로 삽착된 분무된 OVA에 반응하여 야생형 동물의 기관지 폐포 세척액에서의 시토킨 생산에 대한 데이터를 나타낸다. 도 7B는 MOG_{35 -55} 적하 Toso^-/- 수지상 세포로 배양된 2d2 마우스로부터 유래된 T 세포의 증식을 나타낸다. 도 7C는 GP 적하 Toso^-/- 및 야생형 수지상 세포가 정맥 내로 주입된 RIP-GP 동물에서의 혈당 준위 및 GP 펩티드 적하 야생형 및 Toso^-/- 수지상 세포가 주입된 RIP-GP 마우스의 카플란-메이어 플롯을 도시한다. RIP-GP 마우스는 랫트 인슐린 프로모터(RIP)의 조절 하에 림프구성 맥락 수막염 바이러스(LCMV)로부터 주요 글리코프로테인(GP)을 발현하는 마우스로 - 이런 마우스는 혈청 글루코스의 증가된 준위에 의해 분석된 것으로서 당뇨병을 전개한다.
도 8a는 Toso 가용성 수용체의 개략적인 도해이다. 도 8b는 가용성 수용체에 대한 ELISA 데이터를 나타낸다. 도 8c는 웨스턴 블럿(도 8 ci) 및 쿠마시 블루 염색(Coomassie Blue staining; 도 8 cii)에 의해 Toso 가용성 수용체의 분비 확인 데이터를 도시한다. 도 8d는 유관세포에 대한 Toso 가용성 수용체의 결합 데이터를 나타낸다. 도 8e는 Toso-Fc가 비장에서 CD11c+MHChi 성숙 수지상 세포, CD4+ T 세포 및 B220+ B 세포에 대해 가장 유의성 있게 결합한 것을 나타내는 부가적인 데이터를 도시한다. 도 8f는 플레이트 결합 인간 IgM에 결합하는 Toso-Fc의 ELISA 결과를 나타낸다. 도 8g는 매일 50 μg의 Toso-Fc로 치료된 마우스에서 정상적인 체증 증가를 나타낸다.
도 9a는 OVA 유도 천식의 뮤어라인 모델에 대한 치료 프로토콜의 개략적인 도해이다. 도 9b는 BALF 내에 Th2 시토킨에 대한 데이터를 나타내고, 도 9c는 BALF 내에서 세포충실성 데이터를 나타내며, 이는 질병의 심각성의 두 가지 측정이다.
도 10은 본 발명의 구현 예의 서열을 제공하는 것으로, 가용성 Toso 단백질(도 10A), IL-2 시그날 서열(도 10B), Fc 도메인(도 10C) 및 육중화 태그(도 10D)의 서열을 포함한다.
도 11A는 가용성 수용체의 다중체의 형태의 발현을 허용하는 헥사메릭 태그를 포함하는 가용성 Toso 단백질의 구현 예의 서열을 제공한다. 도 11B는 인간 Toso 단백질인, NP_005440.1 (서열번호: 7)의 서열을 제공한다.
도 12는 과립구에서 Toso 발현을 나타낸다. a: RNA는 야생형(WT) 및 Toso^-/- 마우스의 비장 및 간으로부터 분리되었다. Toso RNA는 RT-PCR을 사용하여 분석되었고 18S RNA 당 발현으로 표시되었다(n = 4). b: C57BL/6 마우스 및 Toso^-/- 마우스로부터의 유관세포가 CD19 (B 세포) 및 CD3 (T 세포)에 대해 염색되었고 랫트 항-마우스 Toso 항체 또는 이소타입 대조군으로 함께 염색되었다. 회색 영역은 이소타입 대조군을 나타내고, 굵은 선은 항 Toso 항체로 염색을 나타낸다. CD19 양성 세포 (B 세포) 및 CD3 양성 세포 (T 세포)의 하나의 대표적인 히스토그램이 도시되었다. c: C57BL/6 마우스 및 Toso^-/- 마우스로부터의 유관세포 및 혈액 백혈구가 랫트 항-마우스 Toso 항체 또는 이소타입 대조군과 함께 Gr1에 대해 염색되었다. 회색 영역은 이소타입 대조군을 나타내고, 굵은 선은 Toso로 염색을 나타낸다. Gr1 양성 세포의 하나의 대표적인 히스토그램이 도시되었다. d: 야생형 및 Toso^-/- 마우스로부터 혈액 백혈구가 전방 및 사이드 스캐터에 의해 과립구 및 림프구에 대해 분석되어 졌다. ㎕ 당 백혈구가 도시되었다(n = 4). e: 림프구는 CD4 T 세포 (CD3⁺ CD8^- 세포) CD8 T 세포 (CD3⁺ CD8⁺ 세포) 및 B 세포 (B220⁺ 세포, n = 4)에 대해 분석되었다. f: 야생형 및 Toso^-/- 마우스로부터 비장 중량이 분석되었다(n = 4). g: 비장 림프구는 CD4 T 세포 (CD3⁺ CD8^- 세포) CD8 T 세포 (CD3⁺ CD8⁺ 세포) 및 B 세포 (B220⁺ 세포, n = 4)에 대해 분석되었다.
도 13은 활성화에 대한 임계점이 Toso 결핍 마우스의 과립구에서 낮아진다는 것을 나타낸다. 13a: 야생형 또는 Toso^-/- 마우스로부터의 혈액이 37℃에서 30분 동안 다른 농도의 fMLP로 배양되었다. 과립구의 활성화는 방법에서 기술된 바와 같이 ROS 생성(Dihydrorhodamine staining) 및 탈과립(side-scatter)에 의해 평가되었다. 과립구 상에 게이트된 세포의 하나의 대표적인 도트 플롯이 도시되었다. 게이트는 활성화된 과립구 상에 설정되었다. 활성화된 과립구의 백분율이 주어졌다(n = 6). 13b: WT 및 Toso^-/- 마우스로부터의 혈액이 다른 농도의 TNF-α로 배양되었다. 활성화된 과립구의 백분율이 주어졌다(n = 6). 13c: WT 및 Toso^-/- 마우스로부터의 혈액이 다른 농도의 림포폴리사카라이드로 배양되었다. 활성화된 과립구의 백분율이 주어졌다(n = 6). 13d: WT 및 Toso^-/- 마우스로부터의 혈액이 다른 농도의 GM-CSF (상등액 형성 X63O 세포의 백분위로 주어짐)로 배양되었다. 활성화된 과립구의 백분율이 주어졌다(n = 6). 13e: 야생형 및 Toso^-/- 마우스로부터의 혈액이 10% GM-CSF 상등액 또는 500 ng/ml LPS로 맑게 되었다. 30분 후, 세포는 2μM fMLP로 15분 동안 자극되었다. 활성화된 과립구의 백분율이 주어졌다 (n = 6). 13f: WT 및 Toso^-/- 마우스로부터의 혈액이 다른 온도에서 30분 동안 배양되었다. 탈과립화는 사이드 스캐터를 사용하여 측정되었다. 탈-과립된 세포의 백분율이 주어졌다(n = 6).
도 14는 과립구에서 활성화 임계값이 본질적으로 조절되어 지는 것을 나타낸다. C57BL/6 야생형 마우스는 방법에서 기술된 바와 같이 CD45 유전자 (CD45.1, 그룹 1), Toso^-/- 마우스(CD45.2, 그룹 2) 또는 야생형(CD45.1) 골수와 Toso^-/- 골수 세포 (CD45.2, 그룹 3)의 1:1 혼합물에서 점 돌연변이를 수반하는 골수 형성 야생형 마우스로 조사되고 그리고 재구성된다. 골수 이식 30일 후, 말초 혈액이 fMLP로 자극되고 활성화된 과립구에 대해 분석된다. 14a: Gr1에 대해 게이트되고 CD45.1, CD45.2 및 디하이드로로다민(ROS)로 염색된 세포의 대표적인 FACS 플롯이 도시되었다. 14b: 과립구의 백분율이 골수 키메라의 세 다른 그룹에 대해 정량되었다(n = 8). 14c: 도 3a에서의 게이트에 따른 사이드 스캐터 및 ROS 생성에 의해 측정된 활성화된 과립구의 백분율이 분석되었다(n = 8). 14d: 사이드 스캐터 및 디하이드로로다민의 평균 형광 강도가 전체 및 활성화된 과립구에 대해 분석되었다(n = 8).
도 15는 Toso 결핍 마우스에서 리스테리아의 손상된 조절을 나타낸다. 15a: Toso^-/- 마우스 및 상응하는 야생형 마우스가 1x10⁴ CFU의 리스테리아로 접종되어 진다. 생존이 모니터되어 졌다(n = 8 - 15). 15b: Toso^-/- 마우스 및 상응하는 야생형 마우스가 1x10⁴ CFU의 리스테리아로 접종되어 진다. 과립구 활성화(ROS 형성)가 접종 후 혈액 과립구 d0 및 d2에서 측정되었다(n = 4 - 5). 15c: WT 및 Toso^-/- 마우스가 1x10⁶ CFU의 리스테리아로 접종되어 진다. 미엘로퍼옥시다제가 천연 WT 마우스의 혈청에서 분석되었고, 그리고 리스테리아는 접종 6시간 후 WT 및 Toso^-/- 마우스를 감염했다(n = 4). 15d: Toso^-/- 마우스 및 상응하는 WT 마우스가 1x10⁶ CFU의 리스테리아 모노사이트제니스로 접종되어 진다. 간 조직학이 20시간 이후에 분석되었다. 하나의 대표적인 슬라이드가 도시되었다(n = 4). 스케일 바 = 50㎛. 15e: Toso^-/- 마우스 및 상응하는 WT 마우스가 1x10⁴ CFU의 리스테리아로 접종되어 진다. 일일 후, ROS 생성이 비장와 간의 과립구에서 측정되었다(n = 3). f: Toso^-/- 마우스 및 상응하는 WT 마우스가 1x10⁴ CFU의 리스테리아로 접종되어 진다. 접종 3일 및 4일 후, 리스테리아 역가가 비장, 간 및 뇌에서 분석되었다(n = 6).
도 16은 CD11b 및 CD18의 발현이 Toso에 의해 영향을 받는 것을 나타낸다. 16a: Toso^-/- 마우스 및 상응하는 WT 마우스로부터 혈액 과립구가 포르말린에 고정되고 그런 다음 CD11a, CD11b 및 CD18에 대해 염색되었다. 평균 형광 발현이 도시되었다(n = 6). p 값은 쌍의 스튜던트 t 테스트로부터 유도된다. 16b: 야생형 및 Toso^-/- 마우스로부터 혈액이 다른 농도의 GM-CSF 및 LPS로 자극되었다. 과립구 상에 CD11b에 대한 평균 형광 발현이 도시되었다(n = 6). 16c: Cd11b ^-/- 마우스 및 상응하는 야생형 마우스로부터 혈액 과립구가 2μM fMLP로 또는 2μM fMLP에 부가하여 40% GM-CSF 상등액으로 자극되었다. CD11b 및 CD18에 대한 평균 형광 강도가 제공되었다(n = 4). 16d: Cd11b ^-/- 마우스 및 상응하는 야생형 마우스로부터 혈액 과립구가 2μM fMLP로 또는 2μM fMLP에 부가하여 40% GM-CSF 상등액으로 자극되었다. 활성화된 과립구의 백분율이 제공되었다(n = 4). ROS 염색의 평균 형광 강도가 전체 과립구뿐만 아니라 활성화된 과립구에 대해 주어졌다(n = 4).
도 17은 Toso^-/- 과립구 내 세포자멸를 나타낸다. Toso^-/- - 로부터 혈액이 GM-CSF (10%)로 그리고 없이 37℃에서 배양되었다. 세포자멸는 한 시간 및 일곱 시간 후에 아넥신 V 및 7AAD로 평가되었다(n = 4).
도 18은 Toso^-/- 마우스의 감염 후 리스테리움 박터라에미아를 나타낸다. Toso^-/- - 및 상응하는 야생형 마우스가 1x10⁶ CFU의 리스테리아 모노사이토제네스로 감염되어 진다. 혈액 리스테리아 역가는 감염 1 및 20시간 후 분석되었다(n = 4).
도 19는 높은 지방 다이어트의 시작 후 야생형 및 Toso^-/- 마우스로부터의 데이터를 나타낸다. 도 19A는 5주령에서 시작한 높은 지방 다이어트의 시작 이래로 모니터된 야생형 및 Toso^-/- 웅성 마우스의 체중을 나타낸다. 도 19B는 높은 지방 다이어트 14주 후에 두 세트의 마우스에서 음식 섭취의 평가를 나타낸다.
도 20A는 높은 지방 다이어트의 시작 후 야생형 및 Toso^-/- 마우스로부터 글루코스 내성 시험으로부터의 데이터를 나타낸다. 도 20B는 동일한 세트의 마우스로부터 인슐린 내성 시험으로부터의 데이터를 나타낸다.
도 21은 정규식(비-높은 지방) 다이어트에서 모니터된 야생형 및 Toso^-/- 마우스가 유사한 수준의 글루코스 내성(도 21A) 및 인슐린 내성(도 21B)을 나타내는 것을 설명하는 데이터를 나타낸다.
도 22는 가용성 Toso 단백질로 야생형 마우스의 치료 전(도 22A) 및 치료 후(도 22B) 글루코스 내성에 대한 데이터를 나타낸다.
도 23은 가용성 Toso 단백질로 치료된 마우스(Toso-Fc - 폐쇄된 사각형)에 비교된 PBS로 치료된 마우스(폐쇄된 원)에서의 EAE 임상적 점수를 나타낸다.
도 24A는 대조 담체로 치료된 마우스(폐쇄된 원) 및 가용성 Toso 단백질로 치료된 마우스(Toso-Fc - 개방된 사각형)에서의 부가 관절염 점수를 비교하는 관절염 마우스 모델에서의 데이터를 나타낸다. 도 24B는 대조군(담체 - 폐쇄된 원)에 비교된 것으로 Toso-Fc 치료된 마우스(Toso-Fc - 개방된 사각형)에서의 관절염의 발생 백분율을 비교하는 관절염 마우스 모델로부터의 데이터를 나타낸다.
도 25는 Toso-Fc로 치료된 유관세포에서 콜라겐에 대해 감소된 증식 반응을 나타낸다.
도 26은 대조군(담체 - 폐쇄된 원)에 비교된 것으로 관절염 마우스 모델에서 가용성 Toso 단백질의 치료적 효과(Toso-Fc - 개방된 사각형)를 나타낸다.
도 27a 내지 c는 본 발명의 가용성 Toso 단백질의 다른 구현 예의 서열을 제공한다.
발명의 상세한 설명
본 발명의 실행은 달리 지시되어 있지 않는다면, 이 기술분야의 기능 내로 되는 유기 화학, 중합체 기술, 분자 생물학(재조합 기술 포함), 세포 생물학, 생화학, 및 면역학의 통상적인 기술 및 상세한 서술을 사용할 수 있다. 이러한 통상적인 기술은 중합체 어레이 합성, 혼성화, 결찰, 파지 디스플레이, 및 라벨을 사용하는 혼성화의 검출을 포함한다. 적절한 기술의 특정한 설명은 참고로 여기 아래의 예를 들 수 있다. 그러나, 다른 동등한 통상적인 과정이 물론 또한 사용되어 질 수 있다. 이러한 통상적인 기술 및 상세한 설명은 모든 목적을 위해 이들의 전체로서 여기에 참고로 합체되는, 「Genome Analysis : A Laboratory Manual Series (Vols. I-IV), Using Antibodies: A Laboratory Manual , Cells : A Laboratory Manual , PCR Primer : A Laboratory Manual , and Molecular Cloning : A Laboratory Manual (모두 콜드 스프링 하버 라버라토리 출판(Cold Spring Harbor Laboratory Press)사 제작)」과 같은 표준 실험실 매뉴얼, 문헌 「 Stryer, L. (1995) Biochemistry (4th Ed.) Freeman, New York, Gait, " Oligonucleotide Synthesis : A Practical Approach " 1984, IRL Press, London, Nelson and Cox (2000), Lehninger , Principles of Biochemistry 3^rd Ed., W. H. Freeman Pub., New York, N.Y. 및 Berg et al. (2002) Biochemistry, 5^th Ed., W. H. Freeman Pub., New York, N.Y.」에서 찾을 수 있다.
여기 및 첨부된 청구범위에서 사용된 것으로, 단수 형태는 내용상 명확하게 달리 지시하지 않는 한 복수 지시대상을 포함한다는 것을 주의하시오. 따라서, 예를 들어, "폴리머라제"에 대한 참고는 하나의 제제 또는 이러한 제제의 혼합물에 대한 것이고, "방법"에 대한 참고는 이 기술의 통상인에게 알려진 동등한 단계 및 방법들 따위에 대한 참고를 포함한다.
달리 정의되어 지지 않는다면, 여기서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어는 본 발명이 속하는 기술분야의 통상인에 의해 일반적으로 이해되어 지는 것과 동일한 의미를 가진다. 여기서 언급된 모든 공보들은 공보에 개시되고 여기서 개시된 발명과 연계되어 사용되는, 기술되고 개시된 장비, 조성물, 제형 및 방법론의 목적으로 참고로 여기에 합체된다.
값의 범위가 제공되어 지는 경우, 그 범위의 상한 및 하한과 그 기술된 범위 안의 기타 기술된 또는 개재하는 값 사이서, 내용이 명확하게 달리 지시하지 않는다면 하한의 단위의 십분의 일까지, 각각의 사이에 있는 값은 본 발명의 내로 포함되는 것으로 이해된다. 보다 적은 범위에 독립적으로 포함되어 질 수 있는 이들 보다 적은 범위의 상한 및 하한은 또한, 기술된 범위 내의 어떤 특징적으로 배제된 범위로 되는, 본 발명의 내로 포함되어 진다. 기술된 범위가 한계의 하나 또는 양자를 포함하는 경우, 이들 포함된 한계의 양자를 배제하는 범위는 또한 본 발명 내로 포함된다.
다음의 상세한 설명에 있어서, 다수의 특정한 상세는 본 발명의 보다 완전한 이해를 제공하기 위해 제시된다. 그러나, 본 발명이 이들 특정한 상세의 하나 또는 그 이상 없이 실행될 수 있다는 것이 이 기술분야의 통상인에게 명백할 것이다. 다른 예로, 이 기술 분야의 통상인에게 잘 알려진 특징 및 절차는 본 발명을 불분명하게 하는 것을 피하기 위해 기술되지 않았다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "포함하는"은 조성물 및 방법이 언급된 요소를 포함하지만 다른 것을 배제하지 않는 것을 의미하는 것으로 의도된다. 조성물 및 방법을 제한하기 위해 사용될 때 "필수적으로 구성되는"은 조성물이나 방법에 필수적인 중요성의 다른 요소를 배제하는 것을 의미한다. "구성하는"은 청구된 조성물 및 실질적인 방법 단계에 대한 기타 구성성분의 흔적 요소 이상을 배제하는 것을 의미할 것이다. 이들 전환 용의의 각각에 의해 한정된 실시형태는 본 발명의 범주 내로 된다. 따라서, 방법 및 조성물은 부가적인 단계 및 구성분은 부가적인 단계 및 구성분 (포함하는) 또는 대안적으로 중요성 없는 포함하는 단계 및 조성물(필수적으로 구성하는) 또는 대안적으로 단지 기술된 방법 단계나 조성물(구성하는)을 포함할 수 있는 것으로 의도된다.
범위를 포함하는 모든 숫자적 지정, 즉 pH, 온도, 시간, 농도 및 분자량은 0.1의 증가에 의해 (　+　) 또는 (　-　)로 변하는 근사값이다. 이것은 비록 항상 명시적으로 기술되지 않더라도 모든 숫자적 지정이 용어 "약"에 의해 선행되어 지는 것으로 이해된다. 용어 "약"은 또한 "X ＋ 0.1" 또는 "X －0.1"과 같이 "X"의 미세한 증감에 부가하여 정확한 값 "X"를 포함한다. 또한, 비록 항상 명확하게 기술되지 않더라도, 여기에 기술된 시약이 단지 예시적인 것이고 그리고 이러한 것의 등가물이 이 기술분야에 공지되어있다고 이해된다.
"조성물"은 제제 또는 화합물를 포함하는 어떠한 기질을 포함할 수 있고 그리고 또한 담체, 즉 어쥬번트, 희석제, 결합제, 안정화제, 완충액, 염, 친지질성 용매, 보존제, 어쥬번트 등과 같은 비활성(예를 들어, 검출할 수 있는 제제 또는 라벨) 또는 활성인 화합물이나 조성물을 포함하는 제제나 화합물 및 기타 기질의 조합을 포괄하는 것으로 의도된다. 담체는 또한 1-99.99 중량% 또는 부피 %의 단독으로 또는 조합으로 되는 것을 포함하여 단일로 또는 조합으로 존재할 수 있는, 약학적인 부형제 및 부가적 단백질, 펩티드 아미노산, 지질, 및 탄수화물(즉, 모노사카라이드, 디-, 트리-, 테트라- 및 올리고사카라이드를 포함하는 당; 알다톨, 알도닉 산, 에스테르화 당 등과 같이 유도당; 및 폴리사카라이드 또는 당 중합체)을 포함한다. 예시적인 단백 부형제는 인간 혈청 알부민 (HSA)과 같은 혈청 알부민, 재조합 인간 알부민 (rHA), 젤라틴, 카제인 등을 포함한다. 또한 완충 능으로 작용할 수 있는 대표적인 아미노산/항체 구성분은 알라닌, 글리신, 아르기닌, 베타인, 히스티딘, 글루탐산, 아스파르트 산, 시스테인, 리신, 류신, 이소류신, 발린, 메티오닌, 페닐알라닌, 아스파르탐 등을 포함한다. 탄수화물 부형제는 또한 본 발명의 범위 내로 되고, 그의 예는 여기에 한정되지 않지만, 플럭토스, 말토스, 갈락토스, 글루코스, D-만노스, 소르보스 등과 같은 단당류; 락토스, 슈크로스, 트레할로스, 셀로비오스 등과 같은 이당류; 라피노오스, 멜레지토스, 말토덱스트린, 덱스트란, 녹말과 같은 다당류; 및 만니톨, 자일리톨, 말티톨, 락티톨, 자일리톨, 소르비톨 (글루시톨) 및 미오이노시톨과 같은 알디톨을 포함한다.
용어 생물학적으로 조화할 수 있는 담체 또는 배지와 상호 교환적으로 사용될 수 있는 용어 약학적으로 허용될 수 있는 담체(또는 배지)는 치료적으로 투여되어 지는 세포 및 기타 제제와 조화할 수 있을 뿐 아니라, 음향 의학적 판단의 범위 내에서, 과도한 독성, 자극, 알레르기 반응, 또는 합리적인 이익/위험 비율에 상응하는 기타 합병증 없이 인간 및 동물의 조직과 접촉하여 사용하기에 적합한 시약, 세포, 화합물, 물질, 조성물 및/또는 복용 형태를 언급한다. 본 발명에서 사용하기에 적절한 약학적으로 허용될 수 있는 담체는 액체, 반고체 (예를 들어, 겔) 및 고체 물질 (예를 들어, 이 기술에서 공지되어 있으며 본 상세한 설명에서 기술된 것으로 세포 골격과 매트리스, 튜브 시트 및 기타 이러한 물질)을 포함한다. 이들 반고체 및 고체 물질은 체내에서 분해에 저항하도록 디자인될 수 있거나(비-생체분해성) 또는 이들은 체내에서 분해하도록 디자인될 수 있다(생체분해성, 생체침식성). 생체분해성 물질은 더욱이 생체침식성 또는 생체흡수성일 수 있는데, 즉 이것은 체액 안으로 용해되고 그리고 흡수될 수 있거나(수용성 임플란트는 일 예임) 또는 다른 물질로 전환에 의해 또는 자연적 경로를 통한 분해 또는 제거에 의해 분해되고 긍극적으로 신체로부터 제거된다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "환자" 또는 "대상자"는 동물, 포유류 또는 더욱이는 인간 환자를 의도한다. 단지 상세한 설명의 목적을 위해, 포유류는 여기에 한정되는 것은 아니지만 인간, 유인원, 쥐과, 소과, 말과, 돼지과 또는 양과를 포함한다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "올리고뉴클레오티드" 또는 "포리뉴틀레오티드"는 데옥시리보핵산, 리보핵산 또는 이들의 조합으로 구성된 짧은 폴리머를 언급한다. 올리고뉴클레오티드는 길이에 있어서 일반적으로 적어도 약 10, 15, 20, 25, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100 또는 그 이상의 뉴클레오티드이다. 올리고뉴클레오티드는 프라이머로 또는 프로브로 사용되어 질 수 있다.
용어 "아미노산"은 자연적으로 발생하는 그리고 합성적인 아미노산뿐 아니라 자연적으로 발생한 아미노산에 유사한 방식으로 작용하는 아미노산 아날로그 및 아미노산 모방체를 언급한다. 자연적으로 발생한 아미노산은 유전적 코드에 의해 인코드되는 것뿐만 아니라 후에 변이된 이들 아미노산, 즉 하이드록시프롤린, γ-카르복시글루타메이트 및 O-포스포세린이다. 아미노산 아날로그는 자연적으로 발생한 아미노산과 같은 기본적인 화학적 구조, 즉 수소, 카르복실기, 아미노기 및 R 기에 결합한 α 탄소를 가지는 화합물, 즉 호모세린, 노르류신, 메티오닌 술폭시드, 메티오닌 메틸 술포늄을 언급한다. 이러한 아날로그는 변형된 R 기(즉, 노르류신) 또는 변형된 펩티드 골격을 가지지만, 그러나 자연적으로 발생한 아미노산과 같은 기본적인 화학적 구조를 보유한다. 아미노산 모방체는 아미노산의 일반적인 화학적 구조와 다른 구조를 가지지만, 그러나 자연적으로 발생한 아미노산에 유사한 방식으로 작용하는 화학적 화합물을 언급한다.
여기서 사용된 것으로 용어 "분리된"은 다른 물질로부터 실질적으로 유리된, 즉 70%, 또는 80%, 또는 85%, 또는 90%, 또는 95%, 또는 98% 이상인 분자 또는 생물학적 또는 세포질의 물질을 언급한다. 일 측면에 있어서, 용어 "분리된"은 다른 DNA 또는 RNA, 또는 단백질 또는 폴리펩티드 또는 세포 또는 세포질의 세포기관, 또는 조직이나 장기로부터 각각 분리된 DNA 또는 RNA와 같은 핵산, 또는 단백질 또는 폴리펩티드 또는 세포 또는 세포질의 세포기관, 또는 조직이나 장기를 언급하는 것으로, 자연적 근원에 존재하고 그의 천연 또는 자연적 상태에 존재하는 경우 물질의 조작이 달성할 수 없는 결과, 즉 재조합 복제 또는 돌연변이에 의한 조작을 달성하게 한다. 용어 "분리된"은 또한 재조합 DNA 기술, 또는 화학적 절차에 의해 생산될 때 세포질의 물질, 바이러스성 물질, 또는 배양 배지 또는 화학적으로 합성되어 질 때 기타 화학물질이 실질적으로 없는 핵산 또는 펩티드를 언급한다. 더욱이, "분리된 핵산"은 절편으로 자연적으로 발생하지 않고 그리고 자연 상태에서 발견되지 않는 핵산 절편을 포함하는 것으로 의미되어 진다. 용어 "분리된"은 또한 여기서는 다른 세포질 단백질로부터 분리된 폴리펩티드를 언급하기 위해 사용되고 그리고 예를 들어, 70%, 또는 80%, 또는 85%, 또는 90%, 또는 95%, 98%, 또는 99% 이상의 순도로 정제되고 재조합된 폴리펩티드를 포괄하는 것으로 의도된다. 용어 "분리된"은 또한 여기서는 다른 세포 또는 조직으로부터 분리된 세포 또는 조직을 언급하기 위해 사용되고 그리고 배양되고 조작된 세포 또는 조직을 포괄하는 것으로 의도된다.
용어 "재조합" 핵산은 정상적으로 함께 발생하지 않는 둘 또는 그 이상의 서열을 조합함에 의해 창제되는 인공적인 핵산을 언급한다. 일 실시형태에 있어서, 이것은 항생제 내성과 같은 특정한 목적을 위해 다른 특성을 변형하거나 코딩하기 위해 박테리아의 플라스미드와 같은 존재하는 유기체의 DNA 안으로 관련 DNA의 도입을 통해 창제된다. "재조합" 폴리펩티드는 재조합 핵산으로부터 유래된 폴리펩티드이다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "프로모터"는 유전자의 직접적 전사에 충분한 핵산 서열을 언급한다. 또한, 세포 타입 특이성, 조직 특이성에 대해 조절할 수 있거나 또는 외부의 신호 또는 제제에 의해 유도할 수 있는 프로모터 의존성 유전자 발현을 부여하기에 충분한 이들 프로모터 요소는 본 발명에 포함된다.
일 실시형태에 있어서, 프로모터는 유도할 수 있는 프로모터이거나 개별 프로모터이다. 유도할 수 있는 프로모터는 온도 또는 광과 같은 화학적 또는 물리적 조건에 의해 작동될 수 있다. 화학적 프로모터의 예는, 제한 없이, 알코올-조절, 테트라사이클린-조절, 스테로이드-조절, 메탈-조절 및 병인-관련 프로모터를 포함한다. 개별 프로모터의 예는, 예를 들어 문헌 「Wolfe et al. Molecular Endocrinology 16(3): 435-49」에서 찾아볼 수 있다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "조절 인자"는 유전자의 전사를 조절할 수 있는 핵산 서열을 언급한다. 조절 인자의 비-제한적인 예는 프로모터, 인핸서, 실런서, 폴리-아데닐화 신호, 전사 말단 서열을 포함한다. 조절 인자는 원래 유전자의 5' 또는 3' 영역이나 인트론 내에 존재할 수 있다.
다양한 단백질이 또한 이들의 인간 단백질 및 코딩 서열에 대해 이들의 유전자은행 기탁 번호(GenBank Accession Numbers)로 여기에 개시되어 진다. 그러나, 단백질은 개시된 유전자은행 기탁번호에 의해 대표된 아미노산 서열을 가지는 인간-유래 단백질에 한정되지 않고, 기타 동물, 특별히 온혈 동물(예를 들어, 랫트, 기니피그, 마우스, 닭, 토끼, 돼지, 양, 소, 원숭이 등)로부터 유래된 아미노산 서열을 가진다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "Toso", "FAIM3" 또는 "Fas 세포자멸 억제 분자 3"는 유전자은행 기탁번호 NP_001135945 (인간 이소형 b), NP_001180267 (인간 이소형 c), NP_005440 (인간 이소형 a), NP_081252 (마우스) 또는 NP_001014843 (랫트)의 어떤 및 모든 버젼을 포함하는, 어떤 대표적인 Toso 서열에 실질적으로 동일한 아미노산 서열을 갖는 단백질을 언급한다. 적절한 cDNA 인코딩 Toso는 유전자은행 기탁번호 NM_001142473, NM_001193338, NM_005449, NM_026976, 및 NM_001014843으로 제공된다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "Toso의 생물학적 활성" 또는 "Toso 활성"은 완전한 길이의 원래 Toso 단백질과 연계된 어떤 생물학적 활성을 언급한다. 몇몇 실시형태에 있어서, Toso의 생물학적 활성은 IgM 항체에 결합하는 것에 대한 것이다. 부가적인 실시형태에 있어서, Toso의 생물학적 활성은 CD11b 또는 CD18 활성을 저해하는 것에 대한 것이다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, Toso의 생물학적 활성은 과립구의 활성 임계값을 증가하는 것에 대한 것이다. 활성 임계값은 골수로부터 활성화된 과립구의 수에 의해 측정되어 질 수 있다. 부가적인 실시형태에 있어서, Toso의 생물학적 활성은 수지상 세포의 활성화 및 T 세포에 대해 항원을 나타내는 이들의 능력을 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, Toso의 생물학적 활성은 세포자멸의 저해 또는 TNF 신호화의 고양을 포함한다. 몇몇 실시형태에 있어서, Toso 생물학적 활성은 유전자은행 기탁번호 No. NP_001135945, NP_001180267, NP_005440, NP_081252 또는 NP_001014843의 어떤 것 및 모든 버젼을 포함하여 이들 기탁번호에 의해 나타난 아미노산 서열을 갖는 단백질의 활성에 동등하다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "CD11b", "ITGAM" 또는 "ITGAM 인테그린, 알파 M(보완 구성분 3 수용체 3 서브유니트)"는 유전자은행 기탁번호 NP_000623의 대표적인 CD11b 서열에 실질적으로 동일한 아미노산 서열을 갖는 단백질을 언급한다. 적절한 cDNA 인코딩 CD11b은 유전자은행 기탁번호 NM_000632로 제공된다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "CD11b의 생물학적 활성"은 완전한 길이의 원래 CD11b 단백질과 연계된 어떤 생물학적 활성을 언급한다. 일 실시형태에 있어서, CD11b의 생물학적 활성은 류코사이트-특이적 인테그린을 형성하기 위해 베타 2 사슬(ITGB2)과 조합하는 것을 언급한다. 적절한 실시형태에 있어서, CD11b의 생물학적 활성은 유전자은행 기탁번호 NP_000623에 의해 대표된 아미노산 서열을 갖는 단백질의 활성과 동등하다. 전사적 활성의 측정은 면역조직학, 레포터 어세이 또는 RT-PCR와 같은 어떤 공지된 방법을 사용하여 수행될 수 있다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "CD18", "ITGB2" 또는 "ITGB2 인테그린, 베타 2(보완 구성분 3 수용체 3 및 4 서브유니트)"는 유전자은행 기탁번호 NP_000202의 대표적인 CD18 서열에 실질적으로 동일한 아미노산 서열을 갖는 단백질을 언급한다. 적절한 cDNA 인코딩 CD18은 유전자은행 기탁번호 NM_000211로 제공된다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "치료하는"은 질병 또는 장애의 적어도 하나의 부작용이나 증상을 감소하거나, 완화하거나, 되돌리거나 또는 예방함에 의해 환자의 증상을 개선하는 목적을 위해 약학적 조성물을 투여하는 것을 언급한다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "예방하는"은 여전히 질환의 증상을 나타내지는 않지만 질환에 대해 증가된 민감성을 갖는 대상자를 동정하고 그리고 본 개시사항의 원리에 따른 처방을 투여하는 것을 언급한다. 예방적인 처방은 민감성 대상자가 후에 징후를 나타내는 가능성을 감소하거나 또는 예방적 처방의 부재에 있어서 보다 질환 발현이 늦추어 지거나 또는 진행이 보다 서서히 되는 것을 위해 디자인된다. 대상자는, 예를 들어 질환 또는 기타 퇴행적인 뇌 장애의 가족력을 동정함에 의해, 질환 또는 질환에 대한 민감성을 나타내는 하나 또는 그 이상의 진단적 마커를 포함하거나 또는 가지는 어떤 적절함 방법에 의해 질환을 전개하는 증가된 가능성을 가지는 것으로 동정되어 질 수 있다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "샘플" 또는 "시험 샘플"은 어떠한 핵산 함유 액체 또는 고형 물질을 언급한다. 적절한 실시형태에 있어서, 시험 샘플은 동물, 가장 바람직하기로는 인간으로부터의 조직 샘플이나 배양 내의 세포와 같은 생물학적 근원(예를 들어, "생물학적 샘플")으로부터 얻어진다.
여기서 사용된 것으로, 단백질이나 폴리펩티드에 관해 언급할 때 용어 "실질적으로 동등한"은 참고 아미노산 서열에 적어도 80%, 85%, 90%, 95%, 또는 99% 서열 동일성을 가지는 것을 의미한다. 비교의 길이는 바람직하기로는 폴리펩티드나 단백질의 전체 길이이지만, 일반적으로 적어도 10, 15, 20, 25, 30, 40, 50, 60, 80, 또는 100 또는 그 이상의 인접하는 아미노산이다. "실질적으로 동등한" 핵산은 참고 핵산 서열에 적어도 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 서열 동일성을 가지는 것이다. 비교의 길이는 바람직하기로는 핵산의 전체 길이이지만, 일반적으로 적어도 20 뉴클레오티드, 30 뉴클레오티드, 40 뉴클레오티드, 50 뉴클레오티드, 75 뉴클레오티드, 100 뉴클레오티드, 125 뉴클레오티드, 또는 그 이상이다.
여기서 사용된 것으로, "아미노산 치환체" 또는 "치환체"는 시작하는 폴피펩티드 서열의 특정한 위치에서의 다른 아미노산으로 아미노산의 대체를 언급한다. 예를 들어, 치환체 M23Y는 위치 23에서의 메티오닌이 티로신으로 대체되어 진 변형체 폴리펩티드를 언급한다.
단백질 또는 핵산의 "생물학적으로 동등한"은 아미노산이나 핵산 서열에 의해 단백질이나 핵산에 실질적으로 동일하거나 또는 동등한 생물학적 활성을 가지는 단백질이나 핵산을 언급한다.
여기서 사용된 것으로, "유효한 양"은 환자에게 의학적인 이점을 제공하기에 충분한 빈도로 전달되어 지는 화합물(예를 들어 Toso 단백질 또는 이의 생물학적 활성 절편)의 양을 언급한다. 일 실시형태에 있어서, 단백질의 유효한 양은 질환의 증상을 치료하거나 개선하기에 충분한 양이다.
세포의 개체군은 표현형 및/또는 유전자형에서 동등한(클론) 또는 비-동등한 일 세포 이상의 집합을 의도한다.
"실질적으로 동종의"는 약 50% 이상, 또는 대안적으로는 약 60% 이상, 또는 대안적으로는 약 70% 이상, 또는 대안적으로는 약 75% 이상, 또는 대안적으로는 약 80% 이상, 또는 대안적으로는 약 85% 이상, 또는 대안적으로는 약 90% 이상, 또는 대안적으로는 약 95% 이상의 세포가 동일하거나 또는 유사한 표현형인 세포의 개체군을 기술한다. 표현형은 미리-선택된 세포 표면 마커 또는 기타 마커에 의해 결정되어 질 수 있다.
용어 자가 전이, 자가 이식, 자가이식 등은 세포 제공자가 또한 세포 대체 치료의 수용자인 치료를 언급한다. 용어 동종 전이, 동종 이식, 동종이식 등은 세포 제공자가 세포 대체 치료의 수용자와 같은 종이지만 동일한 개체가 아닌 치료를 언급한다. 제공자의 세포가 수용자와 매치되는 조직적합성을 가지는 세포 전이는 때로는 상승적 전이로 언급되어 진다. 용어 이종 전이, 이종 이식, 이종이식 등은 세포 제공자가 세포 대체 치료의 수용자와 다른 종인 치료를 언급한다.
여기서 사용된 것으로, "항체"는 전체 항체 및 어떤 항원 결합 절편 또는 이의 단일 사슬을 포함한다. 따라서, 용어 "항체"는 적어도 일 부분의 이뮤노글로불린 분자를 포함하는 분자 함유 단백질 또는 펩티드를 포함한다. 이들의 예는 여기에 한정되는 것은 아니지만, 중사슬 또는 경사슬의 상보성 결정 영역(CDR) 또는 이의 리간드 결합 부분, 중사슬 또는 경사슬 가변 영역, 중사슬 또는 경사슬 불변 영역, 프레임워크 (FR) 영역 또는 그 일부, 또는 적어도 일 부분의 결합 단백질을 포함한다. 일반적으로, 용어 "항체"는 여기에 한정되는 것은 아니지만, CH1, CH2, CH3 및 CL을 포함하는 적어도 하나의 불변 영역을 포함하는 폴리펩티드를 포함한다. 본 발명에서 사용이 밝혀진 항체는 전통적인 항체뿐만 아니라 항체 유도체, 절편 및 모방체를 포함하여 여기에 개시된 것과 같은 다수의 포맷을 취할 수 있다.
항체는 폴리크로날 또는 모노크로날일 수 있고 그리고 적절한 생물학적 근원, 예를 들어 뮤어라인, 랫트, 양 및 개로부터 분리되어 질 수 있다
모노크로날 항체는 세포의 단일 클론이나 하이브리도마에 의해 생산된 항체이고 그리고 따라서 항체의 단일 순수 동종 타입이다.
하이브리도마는 항체-생산 림프구와 비-항체 생산 암세포, 통상적으로 미엘로마 또는 림포마의 융합으로부터 실험실에서 생산된 세포이다.
여기서 사용된 것으로 용어 "인간 항체"는 인간의 생식계열 이뮤노글로불린 서열로부터 유래된 가변 및 불변 영역을 갖는 항체를 포함하는 것을 의도한다. 본 발명의 인간 항체는 인간 생식계열 이뮤노글로불린 서열에 의해 인코드되지 않은 아미노산 잔기를 포함할 수 있다(즉, 생체 외에서 랜덤하게 또는 사이트-특이적 돌연변이 유발 또는 생체 내에서 체세포 돌연변이에 의해 도입된 돌연변이). 그러나, 여기서 사용된 것으로, 용어 "인간 항체"는 마우스와 같은 다른 포유류 종의 생식계열로부터 유래된 CDR 서열이 인간 프레임워크 서열 상에 이식되어 진 항체를 포함하는 것으로 의도되지 않는다. 따라서, 여기서 사용된 것으로, 용어 "인간 항체"는 실질적으로 모든 부분의 단백질(예를 들어, CDR, 프레임워크, C_L, C_H 도메인(예를 들어, C_H1, C_H2, C_H3), 힌지, (VL, VH))이 단지 미세한 서열 변화 또는 변형을 갖는 인간에 있어 실질적으로 비-면역원성인 항체를 언급한다. 유사하게, 항체 지정된 영장류(원숭이, 원숭이, 침팬지 등), 설치류(마우스, 랫트, 토끼, 기니아 피그, 햄스터 등) 및 다른 포유류는 종, 서브-속, 속, 서브-과, 과특이적 항체를 지정한다. 더욱이, 키메르 항체는 상기의 어떠한 조합을 포함한다. 이러한 변화 또는 변형은 임의적으로 그리고 바람직하기로는 비-변형된 항체에 대해 인간 또는 다른 종에서 면역원성을 보유하거나 또는 감소한다. 따라서, 인간 항체는 키메르 또는 인간화 항체로부터 구별된다. 인간 항체는 기능적으로 재배열된 인간 이뮤노글로불린(예를 들어 중사슬 및/또는 경사슬) 유전자를 발현할 수 있는 비-인간 동물 또는 원핵 또는 진핵 세포 에 의해 생성되어 질 수 있다는 것이 지적되어 진다. 더욱이, 인간 항체가 단일 사슬 항체일 때, 이것은 원래의 인간 항체에서 발견되지 않는 링커 펩티드를 포함할 수 있다. 예를 들어, Fv는 중사슬의 가변 영역 및 경사슬의 가변 영역을 연결하는 두 개 내지 약 여덟 개의 글리신 또는 기타 아미노산 잔기와 같은 링커 펩티드를 포함할 수 있다. 이러한 링커 펩티드는 인간 유래의 것으로 간주된다.
여기서 사용된 것으로, 인간 항체는 만일 항체가, 예를 들어 인간 이뮤노글로불린 유전자를 담지하는 형질전환 마우스를 면역화함에 의해, 또는 인간 이뮤노글로불린 유전자 라이브러리를 스크리닝함에 의해 인간 이뮤노글로불린 서열을 사용하는 시스템으로부터 얻어진다면, 특정한 생식계열 서열 "로부터 유래" 된다. 인간 생식계열 이뮤노글로불린 서열 "로부터 유래"된 인간 항체는 인간 생식계열 이뮤노글로불린의 아미노산 서열에 대해 인간 항체의 아미노산 서열을 비교함에 이해 이와 같은 것으로 동정되어 질 수 있다. 선택된 인간 항체는 전형적으로 인간 생식계열 이뮤노글로불린 유전자에 의해 인코드된 아미노산 서열에 아미노산 서열이 적어도 90% 동일하고 그리고 다른 종(예를 들어, 뮤어라인 생식계열 서열)의 생식계열 이뮤노글로불린 아미노산 서열에 비교될 때 인간과 같은 인간 항체를 확인하는 아미노산 잔기를 함유한다. 어떤 경우에 있어서, 인간 항체는 생식계열 이뮤노글로불린 유전자에 의해 인코딩된 아미노산 서열에 대해 아미노산 서열에 있어서 적어도 95%, 또는 더욱이는 적어도 96%, 97%, 98%, 또는 99% 동일할 수 있다. 전형적으로, 특정한 인간 생식계열 서열로부터 유래된 인간항체는 인간 생식계열 이뮤노글로불린 유전자에 의해 인코딩된 아미노산 서열와 10 아미노산 차이보다 많지 않게 나타날 것이다. 어떠한 경우에 있어서, 인간 항체는 생식계열 이뮤노글로불린 유전자에 의해 인코딩된 아미노산 서열와 5보다 많지 않은, 또는 더욱이는 4, 3, 2, 또는 1보다 많지 않은 아미노산 차이를 나타낼 것이다.
여기서 사용된 것으로 용어 "재조합 인간 항체"는 인간 이뮤노글로불린 유전자에 대해 형질 전환 또는 트랜스크로모솜인 동물(예를 들어, 마우스)로부터 분리된 항체, 또는 이들로부터 제조된 하이브리도마, 항체를 발현하기 위해 변형된 숙주 세포로부터, 예를 들어 트랜스펙토마로부터 분리된 항체, 재조합, 조합 인간 항체 라이브러리로부터 분리된 항체 및 기타 DNA 서열에 인간 이뮤노글로불린 유전자 서열의 스플라이싱을 포함하는 어떤 다른 수단에 의해 제조, 발현, 창제 또는 분리된 항체와 같은, 재조합 수단에 의해 제조, 발현, 창제 또는 분리된 모든 인간 항체를 포함한다. 이러한 재조합 인간 항체는 인간 생식계열 이뮤노글로불린 서열로부터 유래된 가변 및 불변 영역을 가진다. 그러나, 어떤 실시형태에 있어서, 이러한 재조합 인간 항체는 생체 외에서 돌연변이 유발이 될 수 있고(또는 인간 Ig 서열에 대해 형질전환된 동물일 때, 생체 내에서 체세포 돌연변이 유발) 따라서 재조합 항체의 VH 및 VL 영역의 아미노산 서열은, 인간 생식계열 VH 및 VL 서열로부터 유래되고 관련되면서, 생체 내에서 인간 항체 생식계열 레파토리 내에서 자연적으로 존재할 수 없는 서열이다. 이들 항체를 제조하기 위한 방법은 여기에 기술된다.
여기서 사용된 것으로 "이소타입"은 이들의 불변 영역의 화학적 및 항원 특징에 의해 정의된 이뮤노글로불린의 어떤 서브클래스를 의미한다. 치료적 항체는 또한 이소타입의 하이브리드 및/또는 서브클래스를 포함할 수 있는 것으로 이해되어야 한다.
여기서 사용된 것으로 용어 "폴리크로날 항체" 또는 "폴리크로날 항체 조성물"은 다른 B-세포 계열로부터 유래된 항체의 제조에 대해 언급한다. 이들은 특정한 항원에 대해 분비된 이뮤노글로불린 분자의 혼합물로, 각각은 다른 에피토프를 인지한다.
여기서 사용된 것으로 용어 "모노크로날 항체" 또는 "모노크로날 항체 조성물"은 단일 분자 조성물의 항체 분자의 제조에 대해 언급한다. 모노크로날 항체 조성물은 특정한 에피토프에 대해 단일 결합 특이성 및 친화도를 나타낸다.
여기서 사용된 것으로, 용어 "라벨"은 검출되어 지는 조성물, 예를 들어 N-말단 히스티딘 태그 (N-His), 자력적으로 활성인 이소토프, 예를 들어 ¹¹⁵Sn, ¹¹⁷Sn 및 ¹¹⁹Sn, ¹³C 및 ¹⁵N과 같은 비-방사성 이소토프, "라벨된" 조성물을 발생하기 위해 항체와 같은 폴리펩티드 또는 단백질에 직접적으로 또는 간접적으로 컨쥬게이트된 직접적으로 또는 간접적으로 검출할 수 있는 화합물 또는 조성물을 의도한다. 이 용어는 또한 녹색 형광 단백질(GFP) 등과 같이, 삽입된 서열의 발현에 대한 신호를 제공하는 폴리뉴클레오티드에 컨쥬게이트된 서열을 포함한다. 라벨은 그 자체로 검출할 수 있는 것이거나(예를 들어, 방사선 동위원소 라벨 또는 형광 라벨), 또는 효소적 라벨의 경우에 있어, 검출할 수 있는 기질 화합물 또는 조성물의 화학적 변이를 촉매할 수 있다. 라벨은 소규모 검출에 적합할 수 있거나 초고속 스크리닝에 적합할 수 있다. 이와 같이, 적절한 라벨은 여기에 한정되는 것은 아니지만, 자력적으로 활성인 이소토프, 비-방사성 이소토프, 방사성 동위 원소, 형광 색소, 화학 발광 화합물, 염료, 및 효소를 포함하는 단백질을 포함한다. 라벨은 간단하게 검출되어 질 수 있거나 이것은 정량되어 질 수 있다. 간단하게 검출되어 지는 반응은 일반적으로 그의 존재가 단순하게 확인되어 지는 반응을 포함하고, 반면 정량되어 지는 반응은 일반적으로 강도, 분극 및/또는 다른 특성과 같은 정량할 수 있는(예를 들어, 숫적으로 보고할 수 있는) 값을 갖는 반응을 포함한다. 발광 또는 형광 분석에 있어서, 검출할 수 있는 반응이 결합에 실질적으로 포함된 분석 구성분과 연계된 발광단 또는 형광단을 사용하여 직접적으로 발생되어 질 수 있거나, 다른 (예를 들어 리포터 또는 인디케이터) 구성분과 연계된 발광단 또는 형광단을 사용하여 간접적으로 발생되어 질 수 있다.
신호를 생산하는 발광 라벨의 예는 여기에 한정되는 것은 아니만, 생물 발광 및 화학 발광을 포함한다. 검출할 수 있는 발광 반응은 일반적으로 발광 신호에서의 변화 또는 발생을 포함한다. 발광성으로 라벨링 분석 구성분을 위한 적절한 방법 및 발광단은 이 기술분야에 공지되어 있고, 예를 들어 문헌 「Haugland, Richard P. (1996) Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals (6^th ed.)」에 기술되어 있다. 발광 프로브의 예는 여기에 한정되는 것은 아니만, 에쿼린 및 루시페라제를 포함한다.
적절한 형광 라벨의 예는 여기에 한정되는 것은 아니만, 플루오레세인, 로다민, 테트라메틸로다민, 에오신, 에리쓰로신, 쿠마린, 메틸-쿠마린, 피렌, 말라카이트 그린, 스틸벤, 루시퍼 옐로우, Cascade Blue^TM, 및 텍사스 레드를 포함한다. 다른 적절한 광학적 염료는 문헌 「Haugland, Richard P. (1996) Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals (6^th ed.)」에 기술되어 있다.
다른 측면에 있어서, 형광 라벨은 세포 표면 마커와 같이 세포 또는 조직의 표면이나 안에 존재하는 세포질의 구성분에 공유결합 부착을 용이하게 하도록 작용한다. 여기에 한정되는 것을 아니지만, 적절한 작용기는 이소티오시아네이트 기, 아미노기, 할로아세틸 기, 말레이미드류, 숙신이미딜 에스테르류, 및 술포닐 할라이드류를 포함하여, 이들의 모두는 제이 분자에 형광 라벨을 부착하기 위해 사용될 수 있다. 형광 라벨의 작용기의 선택은 링커, 제제, 마커 또는 제이 라벨링 제제의 하나에 대한 부착 사이트에 의존할 것이다.
비록 본 발명은 주로 특정한 실시형태를 참고로 하여 기술되어 졌지만, 다른 실시형태가 본 개시사항을 읽음에 의해 이 기술분야의 통상인에게 명백할 것이라는 것이 또한 상상되고, 그리고 이러한 실시형태는 본 발명의 방법 내에 포함되어 지는 것으로 의도된다.
I. 발명의 개요
본 발명은 Toso 단백질(이는 또한 여기서 "Toso" 또는 "Toso 수용체" 또는 "Faim3" 또는 "FCMR"으로 언급됨)의 활성을 조절하는 방법 및 조성물에 대한 것이다. 일부 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법 및 조성물은 Toso 단백질의 활성을 증가한다. 다른 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법 및 조성물은 Toso 단백질의 활성을 억제한다. 일부 실시형태에 있어서, Toso 단백질의 활성을 조절하는 조성물은 Toso 단백질 또는 Toso 단백질의 리간드에 결합하는 제제를 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 조성물 가용성 Toso 단백질을 포함한다. 여기서 부가적인 상세한 설명에서 기술되어 지는 바와 같이, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 Toso 수용체의 세포질 외의 도메인의 전부 또는 일부를 포함한다. 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 더욱이 단일 펩티드 및/또는 Fc 도메인을 포함할 수 있다. 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 하나 또는 그 이상의 아미노산 치환체를 포함하는 변형체 및 결손 변형체 (전체 세포질 외의 도메인의 하나 또는 그 이상의 아미노산이 검출되어 지는 변형체)를 함유하는 Toso 단백질의 변형 세포질 외의 도메인을 더 포함할 수 있다.
본 발명은 더욱이 대상물에 가용성 Toso 단백질(또는 이들의 변형체)를 투여함에 의해 장애 및 질환을 치료하는 방법에 대한 것이다. 여기서 부가적인 상세한 설명에서 기술되어 지는 바와 같이, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 제한 없이 자가면역 장애(제한 없이 타입 1 또는 타입 2 당뇨병, 다발성 경화증, 또는 류마티스 관절염), 천식, 알레르기, 만성 폐쇄성 폐질환("COPD"), 하이퍼-IgM 증후군, CLL, 루푸스, 또는 호중구-관련 장애(제한 없이, 호중구 감소증, 중증 선천성 호중구 감소증, 순환 호중구 감소증, 항체 매개 호중구 감소증, 망상 형성 부전, 백혈구 부착 결핍증, 유사 골수 증식성 질환, 만성 골수성 백혈병, 유사 한냉 두드러기 및 백혈구, 및 만성 육아종성 질환)로부터 고통을 당하는 대상자를 치료하기 위해 사용되어 질 수 있다.
II . 가용성 Toso 단백질
본 발명의 조성물은 Toso 활성을 조절하는 제제를 포함한다. 아래에 더욱 상세하게 기술되는 바와 같이, 이러한 조성물은 Toso 단백질의 가용성 형태를 제한 없이 포함한다.
본 발명의 가용성 Toso 단백질(또한 여기서 "가용성 Toso 수용체", "Toso-Fc" 및 "가용성 Toso 폴리펩티드"로 상호 교환적으로 언급됨)은 Toso 수용체의 세포질 외의 도메인의 전부 또는 일 부분을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 신호 도메인 및/또는 Fc 도메인을 포함한다. 여기서 부가적인 상세한 설명에서 기술되어 지는 바와 같이, 가용성 Toso 단백질의 이들 구성분은 본 발명의 가용성 Toso 단백질을 제공하기 위해 부가적인 구성분 및/또는 변형으로 어떤 방법으로 조합되어 질 수 있거나 또는 이들 없이 될 수 있다.
일 측면에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 Toso의 세포질 외의 도메인을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 인간 Toso 이소폼 a의 세포질 외의 도메인을 포함한다. 인간 Toso의 세포질 외의 도메인은 인간 Toso 이소폼 a인 NP_005440.1의 아미노산 P21 내지 G251에 걸쳐 있는 것으로 예측된다(모든 목적을 위해 그리고 특히는 Toso의 세포질 외의 도메인에 관련된 모든 교시를 위해 그의 전체로서 여기에 합체되는, 문헌 「Shima et al., Int. Immunol., 2010」 참고). 명확화를 위해, 여기 언급의 대부분은 인간 Toso 단백질의 세포질 외의 도메인의 모두 또는 일 부분을 포함하는 가용성 Toso 단백질에 대한 것이다. 그러나, 어떤 종으로부터 Toso 단백질의 세포질 외의 도메인은 여기서의 상세한 설명에 따른 가용성 Toso 단백질을 생산하기 위해 사용되어 질 수 있다고 인식될 것이고, 그리고 여기서 기술된 인간 Toso 단백질의 영역에 상응하는 다른 종으로부터의 Toso 단백질의 영역을 동정하는 것은 이 기술분야의 통상인의 능력 내로 될 것이다.
일 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 도 10에 도시된 서열번호: 1에 따른 세포질 외의 도메인 서열을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 1에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 가진다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 1 내에 1-75, 2-70, 3-65, 4-60, 5-55, 6-50, 7-45, 8-40, 9-35, 10-30, 11-25, 12-20, 13-15, 5-20, 6-18, 8-16, 10-14 아미노산 치환체를 갖는 폴리펩티드를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 1 내에 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30 아미노산 치환체를 갖는 폴리펩티드를 포함한다.
일 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 도 27에 도시된 서열번호: 8에 따른 세포질 외의 도메인 서열을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 가진다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8 내에 1-75, 2-70, 3-65, 4-60, 5-55, 6-50, 7-45, 8-40, 9-35, 10-30, 11-25, 12-20, 13-15, 5-20, 6-18, 8-16, 10-14 아미노산 치환체를 갖는 폴리펩티드를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8 내에 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30 아미노산 치환체를 갖는 폴리펩티드를 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 7의 아미노산 18 내지 253을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 7의 아미노산 21 내지 253을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 7의 아미노산 21 내지 251을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 7로부터 다음 영역의 아미노산의 어느 것을 포함한다: 1-255, 5-245, 10-235, 15-225, 20-215, 25-205, 30-195, 35-185, 40-175, 45-165, 50-155, 45-145, 40-135, 35-125, 30-115, 35-105, 40-95, 45-85, 50-75, 55-65. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 7의 아미노산 18 내지 253 또는 21 내지 253에 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 도 27에 도시된 서열번호: 8의 전부 또는 일 부분을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8의 아미노산 1-231, 6-221, 11-211, 16-201, 21-191, 26-181, 31-171, 36-161, 41-151, 46-141, 51-131, 56-121, 61-111, 66-101, 71-91, 76-81을 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8의 아미노산 영역 1-231, 6-221, 11-211, 16-201, 21-191, 26-181, 31-171, 36-161, 41-151, 46-141, 51-131, 56-121, 61-111, 66-101, 71-91, 76-81에 대해 적어도 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 서열 동일성을 갖는 폴리펩티드를 포함한다.
더 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 8, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 및 23의 어느 하나를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 8, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 및 23에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 갖는 서열을 포함한다. 이들 서열은 Toso 수용체의 세포질 외의 도메인의 결손 변형체를 포함한다.
더욱 부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 Toso 단백질의 전체 세포질 외의 도메인의 결손 변형체를 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질의 구성분인 결손 변형체는 다음의 아미노산의 하나 또는 그 이상이 서열번호:8로부터 결손된 폴리펩티드를 포함한다: 1-21, 1-35, 1-87, 1-21 및 211-231의 양 영역, 211-231, 154-231, 105-231, 및 93-231. 부가적인 예시적 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질의 구성분인 결손 변형체는 다음의 아미노산 영역의 하나 또는 그 이상이 결손된 서열번호:8에 따른 폴리펩티드에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%의 서열 동일성을 갖는 폴리펩티드를 포함한다: 1-21, 1-35, 1-87, 1-21 및 211-231의 양 영역, 211-231, 154-231, 105-231, 및 93-231.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 Toso 수용체의 리간드에 결합하는 영역을 포함하는 세포질 외의 도메인 구성분을 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 IgM에 결합하는 세포질 외의 도메인 구성분을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8의 아미노산 35 내지 87을 포함한다. 부가적 예시적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 8의 아미노산 25-100, 29-95, 33-90, 37-85, 41-80, 45-75, 49-70, 53-65, 또는 57-60을 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 상기에 기술된 바와 같이 세포질 외의 도메인 구성분을 포함하고, 신호 서열을 더 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 신호 서열은 숙주 세포로부터 분비를 고양한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 신호 서열은 사카로마이세스 세레비지애로부터 IL-2 신호 서열, α-메이팅 팩터 프리-서열, 아스퍼길러스 니거로부터 α-아밀라제 신호 서열, 아스퍼길러스 아와모리로부터 글루코아밀라제 신호 서열, 호모 사피엔스로부터 혈청 알부민 신호 서열, 클루이베롬시에스 맥시아너스로부터 인슐리나제 신호 서열, 사카로마이세스 세레비지애로부터 인버타제 신호 서열, 사카로마이세스 세레비지애로부터 킬러 단백질 신호 서열, 갈러스 갈러스로부터 리소자임 신호 서열로부터 선택된 몇몇을 제한 없이 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 신호 서열은 도 10에 도시된 서열번호: 2에 따른 서열을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 신호 서열은 서열번호: 2에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 갖는 서열을 포함한다. 특정한 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1, 8, 9, 11, 13, 15, 17, 21 및 23 또는 서열번호: 2에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 동일성을 갖는 서열와 또는 서열번호: 2와 융합 단백질로서 이들 서열의 변형체의 어느 하나를 포함한다.
부가적인 측면에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 Toso 수용체 및 Fc 도메인의 세포질 외의 도메인을 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 인간 Toso 단백질의 이소폼 A와 Fc 도메인의 세포질 외의 도메인을 포함하는 융합 단백질이다. 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 Fc 도메인 없는 단백질에 비하여 단백질의 반감기를 고양하는 어떠한 도메인을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 Fc 도메인 없는 단백질에 비하여 단백질의 약동학적 프로필을 개선하는 어떠한 도메인을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 C-말단에서 인간 IgG1로부터 유래된 것으로, 더 부가적인 실시형태에 있어서, 항체-의존성 및 보체 의존성 세포독성을 감소하거나 제거하는 돌연변이를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 이러한 돌연변이는 단독으로 또는 조합으로 다음의 돌연변이의 하나 또는 그 이상을 포함한다: E233P; L234V; L235A; ΔG236; A327G; A330S; P331S. 더 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 도 10에 도시된 서열번호: 3에 따른 서열을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 서열번호: 3에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
더욱 예시적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 세포질 외의 도메인 구성분 및 Fc 도메인 구성분 양자를 포함하는 융합 단백질을 포함한다. 더욱 부가적 예시적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1, 8, 9, 11, 13, 15, 17, 21 및 23, 또는 서열번호: 3로, 또는 서열번호: 3에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 동일성을 갖는 서열로 융합 단백질과 같은 이들 서열의 변형체를 포함한다.
일 측면에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 세포질 외 Toso 도메인, 신호 서열 및 Fc 도메인을 포함한다 - 이들 구성분의 각각은 어떠한 조합으로 이들 구성분의 상기 기술된 버젼의 어느 것을 포함할 수 있다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 도 8에 도시된 서열번호: 5에 따른 서열을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호: 5에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 서열 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 세포질 외의 도메인 구성분, 신호 서열, 및 Fc 도메인을 포함하는 서열번호 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22 및 24의 어느 하나에 따른 서열을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 서열번호 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22 및 24의 어느 하나에 대해 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100%의 서열 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
부가적인 측면에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 Toso 세포질 외의 도메인 구성분과 Fc 도메인 사이, Toso 세포질 외의 도메인 구성분과 신호 서열 사이, 또는 Toso 세포질 외의 도메인 구성분과 Fc 도메인 그리고 Toso 세포질 외의 도메인 구성분과 신호 서열 양자 사이에 링커를 더 포함할 수 있다. 예시적인 실시형태에 있어서, 이러한 링커는 아미노산 링커, 폴리머 링커, 또는 두 아미노산 서열을 함께 연결하기에 유효하게 되는 이 기술분야에 공지된 다른 링커일 수 있다. 더 예시적인 실시형태에 있어서, 링커는 아미노산 링커이다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 링커는 아미노산 서열: ISAMVRS (서열번호: 25)이다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 링커는 1, 2, 3, 4, 5, 또는 6 아미노산 치환체를 함유하는 서열번호: 25의 변형체이다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질의 변형체는 서열번호 5, 6, 또는 8-24를 포함하는, 여기서 기술된 어느 가용성 Toso 단백질의 아미노산 서열의 변이를 통하여 만들어 질 수 있다. 이러한 변이는 이 기술분야에서 알려진 기술, 예를 들어 부위-특이적 돌연변이 유발 또는 PCR 기반 돌연변이 유발을 사용하여 달성될 수 있다. 이러한 기술은 예를 들어, 그 각각이 모든 목적을 위해 그리고 특히는 단백질 변형체 형성에 관련된 모든 교시를 위해 그의 전체로서 참고로 합체되는, 문헌 「Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, Plainview, N.Y., 1989」 및 「Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, N.Y., 1989」에 기술되어 있다.
더욱 부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 단량체 또는 다량체 형태일 수 있고, 여기서 다량체의 각 단량체는 단일 세포질 외의 도메인 서열을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 또는 그 이상 단량체의 다량체이다. 특정한 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 6 개의 단량체의 다량체이다. 부가적인 실시형태에 있어서, 육량체 Toso 다량체는 육량체화 태그를 포함하는 모노머로 형성된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 육량체화 태그는, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 육량체화 및 기타 육량체화 태그에 관련된 모든 교시를 위해 참고로 여기에 합체되는, 문헌 「Hirano et al., Blood (2006)」에 기술된 바와 같이 인간 IgA 알파 중사슬 불변 영역으로부터 21 아미노산 테일 피스를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 육량체화 태그는 도 10에 도시된 서열번호: 4에 따른 서열을 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 단백질의 하나 또는 그 이상의 관능 특성을 개변하도록 변형된다. 예시적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 화학적으로 변형된다. 예를 들어, 가용성 Toso 단백질은 생체 내에서 그의 안정성을 개선하기 위하여 및/또는 그의 약동학적 프로필을 개변하기 위하여 하나 또는 그 이상의 중합체가 변형될 수 있다. 이러한 중합체는, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 중합체에 단백질을 연결하는 것에 관련된 모든 교시를 위해 참고로 모두 여기에 합체되는, 미국 특허번호 4,640,835; 4,496,689; 4,301,144; 4,670,417; 4,791,192; 또는 4,179,337에서 제시된 방식으로, 하나 또는 그 이상의 다양한 비단백질성 중합체, 예를 들면 폴리에틸렌 글리콜, 폴리프로필렌 글리콜, 또는 폴리옥시알킬렌을 제한 없이 포함한다.
본 발명의 범주 내에 포함되어 지는 Toso 가용성 단백질의 변형은 상기에 기술된 가용성 Toso 단백질과 어떤 서열에 따른 Toso 폴리펩티드의 표적화된 아미노산 잔기를 Toso 폴리펩티드의 선택된 사이드 체인이나 N- 또는 C-말단 잔기와 반응할 수 있는 유기 유도체화 제제로 반응하는 것을 포함한다. 일반적으로 사용된 가교제는, 예를 들어 1,1-비스(디아조아세틸)-2-페닐에탄, 글루타르알데하이드, N-하이드록시숙신이미드 에스테르, 예를 들어 4-아지도살리실 산, 호모 이관능성 이미도에스테르를 갖는 에스테르류로, 3,3'-디티오비스(숙신이미딜프로피오네이트)와 같은 디숙신이미딜 에스테르, 비스-N-말레이미도-1,8-옥탄과 같은 이관능성 말레이미드 및 메틸-3-[(p-아지도페닐)디티오]프로피오이미데이트와 같은 제제를 포함하는 것을 포함한다.
다른 변형은 각각 상응하는 글루타르닐 및 아스파르틸 잔기에 대해 글루타미닐 및 아스파라기닐 잔기의 탈아미드화, 프롤린 및 라이신의 수산화, 세릴 또는 트레오닐 잔기의 수산기의 인산화, 라이신, 아르시닌, 및 히스티딘 측쇄의 "-아미노 기의 메틸화[T. E. Creighton, Proteins; Structure and Molecular Properties, W. H. Freeman & Co., San Francisco, pp. 79-86 (1983)], N-말단 아민의 아세틸화 및 C-말단 카르복실 기의 아미드화를 포함한다.
본 발명의 범주 내로 포함되는 가용성 Toso 단백질의 또 다른 타입의 변형은 폴리펩티드의 천연 글리코실화 패턴을 개변하는 것을 포함한다. "천연 글리코실화 패턴을 개변하는 것"은 여기에서 목적을 위해, 천연 서열 Toso 폴리펩티드에서 발견된 하나 또는 그 이상의 탄화수수 부분 결손 및/또는 천연 서열 Toso 폴리펩티드에 존재하지 않는 하나 또는 그 이상의 글리코실화 사이트 부가를 의미하기 위한 것으로 의도된다.
Toso 가용성 단백질에 글리코실화 사이트의 부가는 그의 아미노산 서열을 개변함에 의해 달성될 수 있다. 이 개변은, 예를 들어 천연 서열 가용성 Toso 단백질(O-연결된 글리코실화 사이트에 대해)에 하나 또는 그 이상의 세린이나 트레오닌 잔기의 부가 또는 이에 의한 치환에 의해 될 수 있다. 가용성 Toso 단백질 아미노산 서열은 임의적으로 DNA 준위에서의 변화를 통해, 특히는 코돈이 발생되도록 원하는 아미노산 안으로 전사하는 미리 선택된 염기에 Toso 가용성 단백질을 인코딩하는 DNA를 변이함에 의해 개변될 수 있다.
Toso 가용성 단백질 상에 다수의 탄수화물 부분을 증가하는 다른 수단은 폴리펩티드에 글리코사이드류의 화학적 또는 효소적 커플링에 의한 것이다. 이러한 방법은 이 기술 분야에서, 예를 들어 모든 목적을 위해 그리고 특히는 단백질 상에 탄수화물 부분을 개변하는 것에 관련된 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 모두 여기에 합체되는, 1987년 9월11일 공고된 WO 87/05330 및 문헌 「Aplin and Wriston, CRC Crit. Rev. Biochem., pp. 259-306 (1981)」에 기술되어 있다.
가용성 Toso 단백질 상에 존재하는 탄수화물의 제거는 글리코실화에 대한 표적으로 작용하는 아미노산 잔기에 대해 인코딩하는 코돈의 변이적 치환에 의해 또는 화학적으로나 효소적으로 달성될 수 있다. 화학적 탈글리코실화 기술은 이 기술분야에 공지되어 있고 그리고 예를 들어, 문헌「Hakimuddin, et al., Arch. Biochem. Biophys., 259:52 (1987)」 및 「Edge, et al., Anal. Biochem., 118:131 (1981)」에 의해 기술되어 진다. 폴리펩티드 상에서 탄수화물 부분의 효소적 단리는, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 단백질 상에 탄수화물 부분을 개변하는 것에 관련된 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 모두 여기에 합체되는, 문헌 「Thotakura, et al., Meth. Enzymol., 138:350 (1987)」에 의해 기술된 바와 같이 다양한 엔도- 및 엑소-글리코시다제의 사용에 의해 달성될 수 있다.
본 발명의 가용성 Toso 단백질은 또한 다른 이형 폴리펩티드 또는 아미노산 서열에 융합된 단백질을 포함하는 키메르 분자를 형성하는 방식으로 변형될 수 있다. 일 실시형태에 있어서, 이러한 키메르 분자는 항-태그 항체가 선택적으로 결합할 수 있는 에피토프를 제공하는 태그 폴리펩티드로 가용성 Toso 폴리펩티드의 융합을 포함한다. 이 에피토프 태그는 일반적으로 Toso 폴리펩티드의 아미노- 또는 카르복실-말단에 위치된다. Toso 폴리펩티드의 이러한 에피토프-태그된 형태의 존재는 태그 폴리펩티드에 대한 항체를 사용하여 검출될 수 있다. 또한 에피토프 태그의 제공은 Toso 폴리펩티드가 에피토프 태그에 결합하는 다른 타입의 친화 매트릭스 또는 항-태그 항체를 사용하여 친화도 정제에 의해 쉽게 정제되는 것을 가능하게 한다. 대안적인 실시형태에 있어서, 키메르 분자는 이뮤노글로불린이나 특정한 영역의 이뮤노글로불린으로 Toso 폴리펩티드의 융합을 포함할 수 있다. 키메르 분자의 이가의 형태에 대해, 이러한 융합은 GST 융합 또는 IgG 분자의 Fc일 수 있다.
다양한 태그 폴리펩티드들 및 이들 각각의 항체들은 이 기술분야에 잘 알려져 있다. 예로 폴리-히스티딘(poly-his) 또는 폴리-히스티딘-글리신(poly-his-gly) 태그; flu HA 태그 폴리펩티드 및 그의 항체 12CA5 [Field, et al., Mol. Cell Biol., 8:2159-2165 (1988)]; c-myc 태그 및 여기에 대한 8F9, 3C7, 6E10, G4, B7, 및 9E10 항체 [Evan, et al., Molecular and Cellular Biology, 5:3610-3616 (1985)]; 및 단순 포진 바이러스 당단백질 D (gD) 태그 및 그의 항체 [Paborsky, et al., Protein Engineering, 3(6):547-553 (1990)]를 포함한다. 다른 태그 폴리펩티드는 Flag-펩티드 [Hopp, et al., BioTechnology, 6:1204-1210 (1988)]; KT3 에피토프 펩티드 [Martin, et al., Science, 255:192-194 (1992)]; 튜불린 에피토프 펩티드 [Skinner, et al., J. Biol. Chem., 266:15163-15166 (1991)]; 및 T7 유전자 10 단백질 펩티드 태그 [Lutz-Freyermuth, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87;6393-6397 (1990)]를 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 세포 침투성 펩티드와 융합된다.
부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 하나 또는 그 이상의 가용성 Toso 단백질뿐만 아니라 핵산을 포함하는 숙주 세포를 인코딩하는 이러한 핵산을 포괄한다. 어떤 실시형태에 있어서, 본 발명에 따라 사용된 숙주 세포는 제한 없이 HEK293F, HEK298T, Cos7, HeLa, 및 CHO-DHFR 결핍 세포를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 무-혈청 현탁액에서 성장하도록 변형된 세포 라인에서 안정적으로 발현된다.
부가적인 측면에 있어서, 본 발명의 조성물은 약학적으로 허용될 수 있는 담체 및 부가제와 함께 여기에서 기술된 어떤 가용성 Toso 단백질을 포함할 수 있다. 여기서 사용된 것으로, "약학적으로 허용될 수 있는 담체"는, 컨쥬게이트와 조합될 때, 컨쥬게이트의 활성을 보유하고 대상자의 면역계와 비-반응성인 어떤 물질을 포함한다. 예는, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 인산염 완충 식염수, 물, 오일/물 에멀젼과 같은 에멀젼, 및 각종 유형의 습윤제와 같은 표준 약학적 담체를 포함한다. 다른 담체는 또한 멸균수, 코팅된 타블렛을 포함하는 타블렛 및 캡슐을 포함할 수 있다. 전형적으로 이러한 담체는 전분, 밀크, 당, 어떤 타입의 클레이, 젤라틴, 스테아르 산 또는 이의 염, 마그네슘 또는 칼슘 스테아레이트, 활석, 식물성 지방 또는 오일, 검, 글리콜 또는 기타 공지된 부형제와 같은 부형제를 함유한다. 이러한 담체는 또한 향 및 부가제 또는 기타 구성성분을 포함할 수 있다. 이러한 담체를 포함하는 조성물은 잘 알려진 통상적인 방법에 의해 제형화된다.
III . Toso에 대한 항체
일 측면에 있어서, 본 발명은 Toso 단백질에 결합하는 항체를 제공한다. 일부 실시형태에 있어서, 본 발명의 항체는 Toso 활성을 증가한다. 다른 실시형태에 있어서, 본 발명의 항체는 Toso 활성을 감소한다.
항체를 제조하는 방법은 이 기술분야에 일반적으로 알려져 있다. 예를 들어, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 Toso 단백질에 대한 항체에 관련된 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 모두 여기에 합체되는, 미국 특허번호 6,727,350호는 Toso에 대한 항체를 개시한다.
본 발명의 항체는 아래에 정의된 바와 같이 폴리크로날 항체, 모노크로날 항체, 키메르 항체, 인간화 항체 또는 이의 유도체나 절편일 수 있다. 일 측면에 있어서, 절편은 항체의 CDR을 포함하거나, 대안적으로 필수적으로 이로 구성되거나, 또는 더욱이 이로 구성된다. 일 측면에 있어서, 본 발명의 항체는 검출될 수 있도록 라벨되어 지거나, 이것에 컨쥬게이트된 검출할 수 있는 라벨을 더 포함한다. 또한 본 발명의 모노크로날 항체를 생산하는 하이브리도마 세포 라인이 제공된다. 상기 실시형태의 하나 또는 그 이상을 포함하는 조성물이 여기서 더 제공된다.
또한 항체 및 담체를 포함하는 조성물이 제공된다. 더욱이 항체의 생물학적 활성 절편 또는 항체 절편을 포함하는 조성물이 제공된다. 적절한 담체는 상기에 정의되어 진다.
더욱이 항체 및 항체에 특이적으로 결합한 폴리펩티드를 포함하거나, 대안적으로 필수적으로 이로 구성되거나, 또는 더욱이 대안적으로 이로 구성된 항체-펩티드 복합체가 제공된다. 일 측면에 있어서, 폴리펩티드는 그에 대해 항체가 발생하는 키메르 폴리펩티드이다.
본 발명은 또한 본 발명의 치료적 방법에 유용한 Toso와 복합체를 특이적으로 형성할 수 있는 항체를 제공한다. 본 발명의 항체는 여기에 한정되는 것은 아니지만 마우스, 랫트, 및 토끼 또는 인간 항체를 포함한다. 항체는 세포 배양에, 파지 내에, 또는 여기에 한정되는 것은 아니지만 소, 토끼, 염소, 마우스, 랫트, 햄스터, 기니아 피그, 양, 개, 고양이, 원숭이, 침팬지, 유인원 등을 포함하는 다양한 동물에서 생산되어 질 수 있다. 항체는 또한 치료적 폴리펩티드를 동정하고 정제하는데 유용하다.
본 발명은 또한 상기에 기술된 항체 및 이 항체에 특이적으로 결합한 폴리펩티드를 포함하거나, 대안적으로 필수적으로 이로 구성되거나, 또는 더욱이 대안적으로 이로 구성된 항체-펩티드 복합체를 제공한다. 일 측면에 있어서, 폴리펩티드는 이에 대해 항체가 발생하는 폴리펩티드이다. 일 측면에 있어서 항체-펩티드 복합체는 분리된 복합체이다. 부가적인 측면에 있어서, 복합체의 항체는, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 여기에 기술된 폴리크로날 항체, 모노크로날 항체, 인간화 항체 또는 항체 유도체이다. 항체-펩티드 복합체의 항체 또는 펩티드의 어느 하나 또는 양자는 검출할 수 있도록 라벨될 수 있거나 더욱이 이것에 컨쥬게이트된 검출할 수 있는 라벨을 포함한다. 일 측면에 있어서, 본 발명의 항체-펩티드 복합체는 진단적 또는 스크리닝 분석에 있어 대조군으로 또는 참고 샘플로 사용될 수 있다.
본 발명의 폴리크로날 항체는 이 기술분야에 알려지고 문헌에 잘-기술된 통상적인 기술을 사용하여 생산되어 질 수 있다. 몇몇 방법론이 폴리크로날 항체의 생산에 대해 존재한다. 예를 들어, 폴리크로날 항체는, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 닭, 염소, 기니 피그, 햄스터, 말, 라마스, 마우스, 랫트, 및 토끼와 같은 적절한 포유류의 면역화에 의해 전형적으로 생산된다. 항원은 이 항원에 특이적인 IgG 이뮤노글로불린을 생산하기 위해 B-림프구를 유도하는 포유류 안으로 주입된다. 이 IgG는 포유류의 혈청으로부터 정제된다. 다양한 이 방법론은 어쥬번트, 투여의 경로 및 위치, 동물의 최적의 생산 및 인도적 치료를 위한 사이트 당 주입 부피 및 동물 당 사이트의 수의 변경을 포함한다. 예를 들어, 어쥬번트는 전형적으로 항원에 대한 면역반응을 개선하거나 고양하기 위해 사용되어 진다. 대부분의 어쥬번트는 주입 사이트 항원 저장소를 제공하여, 드레이닝 림프절 안으로 항원의 느린 방출을 가능하게 한다. 다른 어쥬번트는 넓은 표면 영역 및 면역자극성 분자에 걸쳐 단백질 항원 분자의 농도를 증진하는 계면활성제를 포함한다. 폴리크로날 항체 생성을 위한 어쥬번트의 비-제한적인 예는 프로인트 어쥬번트, Ribi 어쥬번트 시스템 및 타이터맥스를 포함한다. 폴리크로날 항체는, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체에 관련된 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 모두 여기에 합체되는, 미국 특허번호 7,279,559; 7,119,179; 7,060,800; 6,709,659; 6,656,746; 6,322,788; 5,686,073; 및 5,670,153에 기술된 방법을 사용하여 발생될 수 있다.
본 발명 의 모노크로날 항체는 이 기술분야에 알려지고 문헌에 잘-기술된 통상적인 하이브리도마 기술을 사용하여 생산될 수 있다. 예를 들어, 하이브리도마는 적절한 불사 세포 라인(예를 들어, 여기에 한정되는 것은 아니지만, Sp2/0, Sp2/0-AG14, NSO, NS1, NS2, AE-1, L.5, >243, P3X63Ag8.653, Sp2 SA3, Sp2 MAI, Sp2 SS1, Sp2 SA5, U397, MLA 144, ACT IV, MOLT4, DA-1, JURKAT, WEHI, K-562, COS, RAJI, NIH 3T3, HL-60, MLA 144, NAMAIWA, NEURO 2A, CHO, PerC.6, YB2/O와 같은 미엘로마 세포 라인) 등, 또는 헤테로미에로마, 이의 융합 제품, 또는 이들로부터 유래된 어떤 세포나 융합 세포, 또는 이 기술분야에 알려진 것과 같은 어떤 다른 적절한 세포 라인(예를 들어, www.atcc.org, www.lifetech.com. 참고, 지난 2007년 11월 26일 등에 접속)을, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 분리된 또는 복제 비장, 말초 혈액, 림프, 편도선, 또는 다른 면역 또는 B 세포 함유 세포, 또는 중사슬 또는 경사슬 불변 또는 가변 또는 프레임워크나 CDR 서열을 발현하는 다른 세포, 내인성으로 또는 이종 핵산, 재조합체 또는 내인성으로, 바이러스, 박테리아, 조류, 원핵 생물, 양서류, 곤충, 파충류, 물고기, 포유 동물, 설치류, 말, 양과, 염소, 양, 영장류, 진핵 생물, 게놈 DNA, cDNA, rDNA, 미토콘드리아 DNA 또는 RNA, 엽록체 DNA 또는 RNA, hnRNA, mRNA, tRNA, 싱글, 이중 또는 삼중 꼬임, 하이브리드된 것 등과 이들의 조합과 같은 항체 생산 세포와 융합함에 의해 생산된다. 항체 생산 세포는 또한 대상 항원으로 면역화되어 지는 인간 또는 기타 적절한 동물의 말초 혈액, 또는 바람직하게 비장 또는 림프절로부터 얻어질 수 있다. 어떤 다른 적절한 숙주 세포는 또한 본 발명의 항체, 이의 특정환된 절편 또는 변형체를 인코딩하는 핵산을 이종- 또는 내인성 발현을 하기 위해 사용되어 질 수 있다. 융합된 세포(하이브리도마) 또는 재조합 세포는 선택적인 배양 조건 또는 다른 적절한 공지된 방법을 사용하여 분리될 수 있고, 희석을 제한하거나 세포를 분류함에 의해 또는 기타 공지된 방법에 의해 복제될 수 있다.
일 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 항체는 다중 항원성 펩티드 (MAP) 시스템을 사용하여 생성되어 질 수 있다. MAP 시스템은 대상 항원 펩티드가 표준 고체-상 화학을 사용하여 그 위에 조립될 수 있는 셋 또는 일곱의 방사상 분지 라이신 잔기의 펩티딜 코어를 이용한다. 이 라이신 코어는 일반적으로 전체 분자량의 10%보다 적게 계산되는 내부 코어에 의존하여 펩티드 에피토프의 약 4 내지 8 복제를 담지하는 MAP를 생성한다. 이 MAP 시스템은 컨쥬게이션을 위한 담체 단백질을 필요로 하지 않는다. MAP 내의 항원성 에피토프의 다중 복제의 조밀한 팩킹 및 높은 몰 비율이 강한 면역성 반응을 생성하는 것으로 밝혀졌다. 이 방법은 미국 특허 번호 5,229,490에 개시되어 있고, 그리고 모든 목적을 위해 그리고 특히는 MAP 시스템에 관련된 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체된다.
필수 특이성의 항체를 생산하거나 분리하는 다른 적절한 방법이, 이 기술분야에 알려진 방법을 사용하여, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 펩티드 또는 단백질 라이브러리(예를 들어, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 박테리오파지, 리보솜, 올리고뉴클레오티드, RNA, cDNA 등 디스플레이 라이브러리; 예를 들어 Cambridge Antibody Technologies (Cambridgeshire, UK), MorphoSys (Martinsreid/Planegg, Del.), Biovation (Aberdeen, Scotland, UK), BioInvent (Lund, Sweden)와 같은 다양한 상업적 공급업체로부터 이용할 수 있는 것과 같은 것)로부터 재조합 항체를 선택하는 방법을 포함하여 사용될 수 있다. 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체에 관련된 방법에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체되는 미국 특허번호 4,704,692; 5,723,323; 5,763,192; 5,814,476; 5,817,483; 5,824,514; 5,976,862 참고. 대안적인 방법은 이 기술분야에 알려진 및/또는 여기서 기술된 바와 같이 인간 항체의 레파토리를 생산할 수 있는 형질 전환 동물의 면역화(예를 들어, SCID 마우스, Nguyen et al. (1997) Microbiol. Immunol. 41:901-907; Sandhu et al. (1996) Crit. Rev. Biotechnol. 16:95-118; Eren et al. (1998) Immunol. 93:154-161)에 의존한다. 이러한 기술은 여기에 한정되는 것은 아니지만 리보좀 디스플레이 (Hanes et al. (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:4937-4942; Hanes et al. (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95:14130-14135); 단일 세포 항체 생산 기술 (예를 들어, 선택된 림프구 항체 방법 ("SLAM") (미국 특허 번호 5,627,052, Wen et al. (1987) J. Immunol. 17:887-892; Babcook et al. (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:7843-7848); 젤 마이크로 액적 및 유세포 분석기 (Powell et al. (1990) Biotechnol. 8:333-337; One Cell Systems, (Cambridge, Mass); Gray et al. (1995) J. Imm. Meth. 182:155-163; 및 Kenny et al. (1995) Bio. Technol. 13:787-790); B-세포 셀렉션 (Steenbakkers et al. (1994) Molec. Biol. Reports 19:125-134)을 포함하고, 이들은 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체 생성을 위한 방법에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체된다.
본 발명의 항체 유도체는 또한 염소, 소, 말, 양 등과 같이 이들의 밀크에 이러한 항체를 생산하는 형질전환 동물 또는 포유류를 제공하는 것과 같이 적절한 숙주에 본 발명의 항체를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 전달함에 의해 제조되어 질 수 있다. 이들 방법은 이 기술분야에 알려지고 그리고 예를 들어 미국 특허번호 5,827,690; 5,849,992; 4,873,316; 5,849,992; 5,994,616; 5,565,362; 및 5,304,489에 기술되어 있고, 이는 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체 생성에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체된다.
용어 "항체 유도체"는 항체 또는 절편의 선형 폴리펩티드 서열에 후-전사적 변형을 포함한다. 예를 들어, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체의 변형에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체된, 미국 특허번호 6,602,684　B1은 고양된 Fc-매개 세포질 독성과 이렇게 생성된 당 단백질을 갖는, 이뮤노글로불린의 Fc 영역에 동등한 영역을 포함하는 전 항체 분자, 항체 절편 또는 융합 단백질을 포함한 항체의 변이된 글리콜-형의 발생을 위한 방법을 기술한다.
항체 유도체는 또한 이러한 항체, 이들로부터 배양된 세포 내에 또는 식물 부분에 특정화된 부분이나 변형체를 생산하는 형질 전환 식물 및 배양된 식물 세포(예를 들어, 여기에 한정되는 것은 아니지만 담배, 옥수수 및 개구리밥)를 제공하기 위해 본 발명의 폴리뉴클레오티드를 전달함에 의해 제조될 수 있다. 예를 들어, 문헌 「 Cramer et al. (1999) Curr. Top. Microbol. Immunol. 240:95-118」 및 여시에 인용된 참고문헌들은, 예를 들어 유도 가능한 프로모터를 사용하여 많은 양의 재조합 단백질을 발현하는 형질 전환 담배 잎의 생산을 기술한다. 형질 전환 옥수수는 다른 재조합 시스템에서 생산되거나 자연 유래로부터 정제된 것에 동등한 생물학적 활성으로, 상업적 생산 수준으로 포유동물의 단백질을 발현하기 위해 사용되어 졌다. 예를 들어, 문헌 「Hood et al. (1999) Adv. Exp. Med. Biol. 464:127-147」 및 여기에 인용된 참고문헌 참고. 항체 유도체는 또한 담배 종자 및 감자 괴경을 포함하는 단일 사슬 항체(scFv's)와 같은 항체 절편을 포함하는 형질 전환 식물 종자로부터 다량으로 생산되어 졌다. 예를 들어, 문헌 「Conrad et al. (1998) Plant Mol. Biol. 38:101-109」 및 여기에 인용된 참고문헌 참고. 따라서, 본 발명의 항체는 또한 공지된 방법에 따라, 형질 전환 식물을 사용하여 생산되어 질 수 있다.
항체 유도체는 또한, 예를 들어 면역성을 변형하거나, 또는 결합, 친화도, 온-속도, 오프-속도, 친화력, 특이성, 반감기, 또는 다른 적절한 특성을 감소, 고양 또는 변형하기 위해 외인성 서열을 부가함에 의해 생산되어 질 수 있다. 일반적으로 비-인간 또는 인간 CDR 서열의 일부 또는 전부는 가변 및 불변 영역의 비-인간 서열이 인간 또는 기타 아미노산으로 대체되면서 유지된다.
일반적으로, CDR 잔기(항체 절편의 예)는 항원 결합력에 영향을 미치는 것에 직접적으로 그리고 가장 실질적으로 포함된다. 본 발명의 항체의 인간화 또는 조작은 여기에 한정되는 것은 아니지만, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체의 인간화 또는 조작에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체되는, 미국 특허번호 5,723,323; 5,976,862; 5,824,514; 5,817,483; 5,814,476; 5,763,192; 5,723,323; 5,766,886; 5,714,352; 6,204,023; 6,180,370; 5,693,762; 5,530,101; 5,585,089; 5,225,539; 및 4,816,567에 기술된 것과 같은 어떤 공지된 방법을 사용하여 수행되어 질 수 있다.
인간 항체를 부분적에서 전체적으로 만들기 위한 기술은 이 기술분야에 알려져 있고 그리고 이러한 기술이 사용될 수 있다. 일 실시형태에 따르면, 전체적 인간 항체 서열은 인간 중사슬 및 경사슬 항체 유전자를 발현하도록 조작된 형질 전환 마루스에서 제작된다. 다른 류의 항체를 생산할 수 있는 이러한 형질 전환 마우스의 다중 스트레인이 제작되었다. 원하는 항체를 생산하는 형질 전환 마우스로부터 B 세포가 원하는 하체의 연속적인 생성을 위한 하이브리도마 세포 라인을 만들기 위해 융합되어 질 수 있다(예를 들어, 문헌 「Russel et al. (2000) Infection and Immunity 68(4):1820-1826; Gallo et al. (2000) European J. of Immun. 30:534-540; Green (1999) J. of Immun. Methods 231:11-23; Yang et al. (1999A) J. of Leukocyte Biology 66:401-410; Yang (1999B) Cancer Research 59(6):1236-1243; Jakobovits (1998) Advanced Drug Delivery Reviews 31:33-42; Green & Jakobovits (1998) J. Exp. Med. 188(3):483-495; Jakobovits (1998) Exp. Opin. Invest. Drugs 7(4):607-614; Tsuda et al. (1997) Genomics 42:413-421; Sherman-Gold (1997) Genetic Engineering News 17(14); Mendez et al. (1997) Nature Genetics 15:146-156; Jakobovits (1996) Weir's Handbook of Experimental Immunology, The Integrated Immune System Vol. IV, 194.1-194.7; Jakobovits (1995) Current Opinion in Biotechnology 6:561-566; Mendez et al. (1995) Genomics 26:294-307; Jakobovits (1994) Current Biology 4(8):761-763; Arbones et al. (1994) Immunity 1(4):247-260; Jakobovits (1993) Nature 362(6417):255-258; Jakobovits et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90(6):2551-2555」 및 미국 특허번호 6,075,181 참고).
본 발명의 항체는 또한 키메르 항체를 창제하기 위해 변형될 수 있다. 키메르 항체는 다양한 영역의 항체 중사슬 및 경사슬이 하나의 종 이상으로부터의 DNA에 의해 코드되어 진 것이다. 예를 들어, 미국 특허번호 4,816,567 참고.
대안적으로, 본 발명의 항체는 또한 베니어드(veneered) 항체를 창제하기 위해 변형될 수 있다. 베니어드 항체는 일 종의 항체의 외부 아미노산 잔기가 제이의 종의 것으로 적절하게 대체되거나 또는 "베니어드"되어 제일 종의 항체가 제이 종에서 면역원성으로 되지 않을 것이고 이에 의해 항체의 면역원성을 감소하는 것이다. 단백질의 항원성은 일차적으로 그의 표면의 특성에 의존하기 때문에, 항체의 면역원성은 다른 포유동물 종 항체에서 통상적으로 발견되는 것과 다른 노출된 잔기를 대체함에 의해 감소되어 질 수 있다. 이 외부 잔기의 적절한 대체는 내부의 도메인에 대하여, 또는 내부도메인 접촉에 대해 거의 또는 전혀 영향을 가지지 않아야 한다. 따라서, 리간드 결합 특성은 가변성 영역 프레임워크 잔기에 한정되는 개변의 결과로서 영향을 받지 않아야 한다. 이 프로세스는 항체의 단지 외부 표면 또는 피부가 개변되고, 지지 잔기는 방해받지 않고 남아 있기 때문에 "베니어링(veneering)"으로 언급되어 진다.
"베니어링"에 대한 절차는 문헌 「Kabat et al. (1987) Sequences of Proteins of Immunological Interest, 4th ed., Bethesda, Md., National Institutes of Health」, 이 데이터베이스에 대한 업데이트 및 다른 접근할 수 있는 미국과 외국 데이터베이스(핵산 및 단백질 양자)에 의해 수집된 인간 가변 영역에 대한 이용할 수 있는 서열 데이터의 사용을 구성한다. 베니어드 항체를 생산하기 위해 사용된 방법의 비-제한적인 예는 EP 519596; 미국 특허번호 6,797,492를 포함하고; 그리고 문헌 「 Padlan et al. (1991) Mol. Immunol. 28(4-5):489-498」에 기술되었다.
용어 "항체 유도체"는 또한 두 항원-결합 사이트를 갖는 소 항체 절편인 "항체"를 포함하고, 여기서 절편은 동일한 폴리펩티드 사슬 내 경사슬 가변 영역(VL)에 연결된 중사슬 가변 영역(VH)을 포함한다. (예를 들어, EP 404,097; WO 93/11161; 및 문헌 「 Hollinger et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:6444-6448」 참고.) 동일한 사슬 상에 두 도메인 사이에 페어링을 가능하게 하기에 너무 짧은 링커를 사용함에 의해, 이 도메인은 다른 사슬의 상보적 도메인과 짝을 이루도록 되어 두 항원-결합 사이트를 만든다. (또한, 모 항원의 초가변성 영역 안으로 삽입된 하나 또는 그 이상의 아미노산을 가지는 항체 변이체 및 항원에 대해 모 항체의 결합 친화도보다 적어도 약 두 배 짧은 표적 항원에 대해 결합 친화도를 개시하는, Chen 등의 미국 특허번호 6,632,926 참고.)
용어 "항체 유도체"는 더욱이 "선형 항체"를 포함한다. 선형 항체를 제작하기 위한 절차는 이 기술분야에 알려져 있고 그리고 문헌 「Zapata et al. (1995) Protein Eng. 8(10):1057-1062」에 기술되어 있다. 간략하게, 이들 항체는 한 쌍의 항원 결합 영역을 형성하는 한 쌍의 탠덤 Fd 세그먼트 (V_H -C_H 1-VH -C_H1)를 포함한다. 선형 항체는 비스페시픽 또는 모노스페시픽일 수 있다.
본 발명의 항체는 여기에 한정되는 것은 아니지만, 단백질 A 정제, 암모늄 설페이트 또는 에탄올 침전, 산 추출, 음이온 또는 양이온 교환 크로마토그래피, 포스포셀룰로스 크로마토 그래피, 소수성 상호작용 크로마토그래피, 어피니티 크로마토그래피, 히드록실아파타이트 크로마토그래피 및 렉틴 크로마토그래피를 포함하는 공지된 방법에 의해 재조합 세포 배양으로부터 회수되고 정제될 수 있다. 고성능 액체 크로마토그래피("HPLC")가 또한 정제를 위해 사용될 수 있다.
본 발명의 항체는 자연적으로 정제된 제품, 화학적 합성 절차의 제품, 및 예를 들어, 효모, 고등 식물, 곤충 및 포유동물의 세포를 포함하는 진핵 생물, 또는 대안적으로 상술 한 바와 같은 원핵 생물 세포로부터 재조합 기술에 의해 생산된 제품을 포함한다.
시험되어 지는 모노크로날 항체가 단백질 또는 폴리펩티드와 결합한다면, 시험되는 항체 및 본 발명의 하이브리도마에 의해 생상된 항체는 동등하다. 과도한 실험 없이, 시험되어 지는 항체가 모노크로날 항체가 정상적으로 반응하는 단백질 또는 폴리펩티드와 결합하는 것으로부터 본 발명의 모노크로날 항체를 방지하는가를 결정함에 의해 본 발명의 모노크로날 항체와 동일한 특이성을 가지는가를 결정하는 것이 또한 가능하다. 만일 시험되어 지는 항체가 본 발명의 모노크로날 항체에 의해 결합에서의 감소에 의해 나타난 바와 같이 본 발명의 모노크로날 항체와 경쟁한다면, 두 항체가 동일하거나 밀접하게 관련된 에피토프에 결합하는 것으로 보인다. 대안적으로, 정상적으로 반응하는 단백질과 본 발명의 모노크로날 항체를 미리-배양할 수 있고, 그리고 시험되어 지는 모노크로날 항체가 항원에 결합하는 그의 능력이 저해되어 지는가를 결정할 수 있다. 만일 시험되어 지는 모노크로날 항체가 저해되어 진다면, 모든 가능성에서, 이것은 본 발명의 모노크로날 항체와 동일하거나 밀접하게 관련된 에피토프 특이성을 가진다.
용어 "항체"는 또한 모든 이소타입의 항체를 포함하도록 의도된다. 모노크로날 항체의 특정한 이소타입은 초기의 융합으로부터 선택함에 의해 직접적으로 제조될 수 있거나 또는 이차적으로, 문헌 「Steplewski et　al. (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:8653 또는 Spira et　al. (1984) J. Immunol. Methods 74:307」에 기술된 절차를 사용하여 클래스 스위치 변형체를 분리하기 위한 sib 셀렉션 기술을 사용함에 의해 다른 이소타입의 모노크로날 항체를 분비하는 모 하이브리도마로부터 제조될 수 있다.
본 발명의 모노크로날 항체의 특이성을 갖는 모노크로날 항체를 분비하는 다른 하이브리도마의 분리는 또한 항-유전자형 항체를 생산함에 의해 이 기술분야의 통상인에 의해 달성되어 질 수 있다. 문헌 「Herlyn et　al. (1986) Science 232:100」. 항-유전자형 항체는 대상 하이브리도마에 의해 생산된 모노크로날 항체 상에 존재하는 유일한 결정인자를 인지하는 항체이다.
두 하이브리도마의 모노크로날 항체 사이의 유전자형 동일성은 두 모노크로날 항체가 동일한 에피토프 결정인자의 이들의 인식에 대해 동일하다는 것을 입증한다. 따라서, 모노크로날 항체 상에 에피토프 결정인자에 대한 항체를 사용함에 의해, 동일한 에피토프 특이성의 모노크로날 항체를 발현하는 다른 하이브리도마를 동정하는 것이 가능하다.
또한 에피토프를 모방하는 모노크로날 항체를 생산하기 위한 항-유전자형 기술을 사용하는 것이 가능하다. 예를 들어, 제일 모노크로날 항체를 위해 제작된 항-유전자형의 모노크로날 항체는 제일 모노크로날 항체에 의해 결합된 에피토프의 거울 상인 초가변성 영역 안에 결합 도메인을 가질 것이다. 따라서, 이 예에 있어서, 항-유전자형의 모노크로날 항체는 이들 항체의 생산을 위한 면역화를 위해 사용될 수 있다.
본 발명의 어떤 측면에 있어서, 이것은 검출할 수 있도록 또는 치료적으로 항체를 라벨링하기에 유용할 것이다. 이들 제제에 항체를 컨쥬게이트하는 방법은 이 기술분야에 알려져 있다. 단지 설명의 목적을 위해, 항체는 방사성 원자, 발색단, 형광 물질 등과 같은 검출할 수 있는 부분으로 표식되어 질 수 있다. 이러한 표식된 항체는 생체 내에서나 분리된 시험 샘플 내에서 진단적 기술을 위해 사용될 수 있다.
저분자량 합텐에 항체의 커플링은 분석에 있어서 하체의 민감성을 증가할 수 있다. 이 합텐은 그런 다음 제이 반응의 수단에 의해 특이적으로 검출될 수 있다. 예를 들어, 특이적 항-합텐 항체와 반응할 수 있는, 아비딘, 또는 니트로페놀, 피리독살, 및 형광과 반응하는 비오틴과 같은 합텐을 사용하는 것이 일반적이다. 부가로 문헌 「Harlow & Lane (1988)」 참고.
본 발명의 항체는 또한 많은 다른 담체에 결합할 수 있다. 따라서, 본 발명은 또한 활성 또는 비활성으로 항체 및 기타 기질을 함유하는 조성물을 제공한다. 잘 알려진 담체의 예는 글라스, 폴리스티렌, 폴리프로필렌, 폴리에틸렌, 덱스트란, 나일론, 아밀라제, 천연 및 변성 셀룰로스, 폴리아크릴아미드, 아가로스 및 마그네타이트를 포함한다. 담체의 특성은 본 발명의 목적을 위해 가용성이거나 불용성일 수 있다. 이 기술분야의 통상인은 모노크로날 항체를 결합하기 위한 다른 적절한 담체를 알거나 또는 일상적인 실험을 사용하여 이를 확인할 수 있을 것이다.
어떤 실시형태에 있어서, 본 발명의 항체는 돌연변이 없는 항체에 비하여 항체의 약동학적 특성을 개선하는 불변 영역에 돌연변이를 포함한다. 이러한 항체는 어떤 실시형태에 있어서는 C-말단에 인간 IgG1로부터 유래된 Fc 도메인을 포함하여, 더 부가적인 실시형태에 있어서는 항체-의존성 및 보체 의존성 세포독성을 감소하거나 제거하는 돌연변이를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 이러한 돌연변이는 단일로 또는 어떤 조합으로 다음의 돌연변이의 어느 하나 또는 그 이상을 포함한다: E233P; L234V; L235A; ΔG236; A327G; A330S; P331S. 더 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 도 10에 도시된 바와 같은 서열번호: 3에 따른 서열을 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, Fc 도메인은 서열번호: 3에 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 및 100% 동일성의 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
부가적인 실시형태에 있어서, 하나 또는 그 이상의 아미노산 변이가 항체의 하나 또는 그 이상의 CDR에 만들어 진다. 일반적으로, 단지 1 또는 2 또는 3 아미노산이 어떤 단일 CDR에 치환되고, 그리고 일반적으로 4, 5, 6, 7, 8, 9 또는 10으로부터 그 이하 변화가 일 세트의 CDR 내에 만들어 진다. 그러나, 어떤 CDR 내에 무 치환, 1, 2 또는 3 치환의 어떤 조합이 독립적으로 그리고 임의적으로 어떤 다른 치환과 조합될 수 있다는 것으로 인식되어야 한다.
몇몇 경우에 있어서, CDR 내 아미노산 변이는 "친화력 증가"로 언급되어 진다. "증가된 친호력" 항체는 개변을 진행하지 않은 모 항체에 비하여 항원에 대한 항체의 친화력에 있어 개선을 초래하는 하나 또는 그 이상의 CDR 내에 하나 또는 그 이상의 이런 개변을 갖는 것이다. 몇몇 경우에 있어서, 비록 희귀하지만, 그의 항원에 대하여 항체의 친화력을 감소하는 것이 바람직할 수 있으나, 이것이 일반적으로 바람직하지는 않다.
친화력 증가는 "모" 항체에 비교하여 적어도 약 10% 내지 50-100-150% 또는 그 이상, 또는 1 내지 5배로 항원에 대한 항체의 결합 친화력을 증가하기 위해 수행될 수 있다. 바람직한 친화력 증가 항체는 표적 항원에 대해 나노몰 또 더욱이는 피코몰의 친화력을 가진다. 친화력 증가 항체는 공지된 절차에 의해 생산되어 진다. 예를 들어, 가변 중사슬(VH)과 가변 경사슬(VL) 도메인 혼성에 의해 친화력 증가를 기술하는 문헌 「Marks et al., 1992, Biotechnology 10:779-783」 참고. CDR 및/또는 프레임워크 잔기의 무작위 돌연변이 유발은, 예를 들어, 문헌 「Barbas, et al. 1994, Proc. Nat. Acad. Sci, USA 91:3809-3813; Shier et al., 1995, Gene 169:147-155; Yelton et al., 1995, J. Immunol. 155:1994-2004; Jackson et al., 1995, J. Immunol. 154(7):3310-9; 및 Hawkins et al, 1992, J. Mol. Biol. 226:889-896」에 기술되어 있다.
대안적으로, 아미노산 변이는 "사일런트(silent)"인, 즉 항원에 대해 항체의 친화력을 유의성 있게 개변하지 않는 본 발명의 항체의 하나 또는 그 이상의 CDR 안에 만들 수 있다. 이들은 (본 발명의 항체를 인코딩하는 핵산에 대해 수행될 수 있는 것과 같은) 발현을 최적화하는 것을 포함하는 다수의 이유로 만들어 질 수 있다
따라서, 변이체 CDR 및 항체는 CDR 및 본 발명의 항체의 정의 내에 포함된다; 즉, 본 발명의 항체는 Ab79 및 Ab19의 CDR의 하나 또는 그 이상에 아미노산 변이를 포함할 수 있다. 부가하여, 아래에 설명되는 것과 같이, 아미노산 변이는 또한 프레임워크 및 불변 영역을 포함하는 어떤 CDR 외부 영역에서 독립적으로 그리고 선택적으로 만들어질 수 있다.
일부 실시형태에 있어서, 본 발명의 항체는 항체-약물 컨쥬게이트(ADCs)를 형성하기 위해 약물과 컨쥬게이트 된다. 일반적으로, ADCs는 종양학 적용에 사용되고, 여기서 세포독성 또는 세포억제 제제의 국부적 전달을 위한 항체-약물 컨쥬게이트의 사용은, 유효성을 높이고, 독성을 낮추는 등을 가능하게 할 수 있는, 종양에 대한 약물 부분의 표적화된 전달을 허용한다. 이 기술의 개요는, 그 전부가 모든 목적을 위해 그리고 특히는 항체 약물 컨쥬게이트에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 여기에 합체하는, 문헌 「Ducry et al., Bioconjugate Chem., 21:5-13 (2010), Carter et al., Cancer J. 14(3):154 (2008) and Senter, Current Opin. Chem. Biol. 13:235-244 (2009)」에 제공된다.
따라서, 일부 실시형태에 있어서, 본 발명은 약물에 컨쥬게이트된 Toso 항체를 제공한다. 일반적으로, 컨쥬게이션은 항체에 공유결합 부착에 의해 수행되고 그리고 (이 기술분야에 알려진 바와 같이, 표적 사이트에서 프로테아제에 의해 단리에 민감성으로 또는 그렇지 않게 디자인될 수 있는) 일반적으로 링커, 때로는 펩티드 결합에 의존한다. 부가하여, 상기에 기술된 바와 같이, 링커-약물 단위 (LU-D)의 결합은 항체 내 시스테인에 부착에 의해 수행될 수 있다. 이 기술분야에서 통상인에 의해 인식되는 바와 같이, 항체 당 다수의 약물 부위가 반응의 조건에 의존하여 변화할 수 있고, 1:1 내지 10:1의 약물:항체로 변할 수 있다. 이 기술분야에서 통상인에 의해 인식되는 바와 같이, 실질적인 수는 평균이다.
ADC의 약물은, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 화학 요법제, 성장 억제제, 독소(예를 들어, 박테리아, 곰팡이, 식물 또는 동물 유래의 효소학적으로 활성인 독소 또는 이들의 절편)와 같은 세포 독성 제제를 포함하는 다수의 제제일 수 있고, 또는 방사성 동위 원소(즉, 라디오컨쥬게이트)가 제공된다. 다른 실시형태에 있어서, 본 발명은 더욱이 ADCs를 사용하는 방법을 제공한다.
본 발명의 항체-약물 컨쥬게이트에 사용하기 위한 약물은 세포 독성 약물, 특히는 암 치료를 위해 사용되는 것을 포함한다. 이러한 약물은 일반적으로 DNA 손상 제제, 항-대사 물질, 천연 제품 및 이들의 유사화합물을 포함한다. 세포독성 제제의 예시적인 류는 디하이드로폴레이트 리덕타제 및 티미딜레이트 신타제 저해제와 같은 효소 저해제, DNA 인터칼레이터, DNA 단리제, 토포이소머라제 억제제, 약물의 안트라사이클린 계열, 빈카 약물, 미토마이신, 블레오마이신, 세포 독성 뉴클레오시드, 약물의 프테리딘 계열, 디이넨, 포도필로톡신, 돌라스타틴, 메이탄시노이드, 분화 유도제 및 탁솔을 포함한다.
이들 유의 구성분은 예를 들어, 메토트렉세이트, 메토프테린, 디클로로메토트렉세이트, 5-플루오로우라실, 6-머캅토퓨린, 시토신, 아라비노시드, 멜팔란, 류로신, 류로시데인, 액티노마이신, 다우노루비신, 독소루비신, 미토마이신 C, 마이 토마이신 A, 카미노마이신, 아미노프테린, 탈릴소마이신, 에토포시드나 에토포시드 포스페이트와 같은 포도필로톡신 및 포도필로톡신 유도체, 빈블라스틴, 빈크리스틴, 탁솔을 포함하는 탁산류, 탁소텔 레티노 산, 부티르산, N8-아세틸 스페르미딘, 캄프토테신, 칼리키아마이신, 캄프토텍신, 마이탄시노이드 (DM1 포함), 모노메틸라우리스타틴 E (MMAE), 모노메틸라우리스타틴 F (MMAF), 및 마이탄시노이드 (DM4) 및 이들의 유사화합물을 포함한다.
독소는 항체-독소 컨쥬게이트로서 사용될 수 있고 그리고 디프테리아 독소와 같은 박테리아 독소, 리신과 같은 식물 독소, 겔다나마이신(Mandler et al (2000) J. Nat. Cancer Inst. 92(19):1573-1581; Mandler et al (2000) Bioorganic & Med. Chem. Letters 10:1025-1028; Mandler et al (2002) Bioconjugate Chem. 13:786-791), 마이탄시노이드(EP 1391213; Liu et al., (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:8618-8623) 및 칼리키아마이신(Lode et al (1998) Cancer Res. 58:2928; Hinman et al (1993) Cancer Res. 53:3336-3342)과 같은 소분자 독소를 포함한다. 독소는 튜불린 결합, DNA 결합, 또는 토포이소머라제 저해를 포함하는 메카니즘에 의해 그의 세포 독성 및 세포 억제 효과를 발휘할 수 있다.
Toso 항체 및 독소 활성을 가지는 마이탄시노이드, 돌라스타틴, 아우리스타틴, 트리콜테센, 칼리키아마이신 및 CC1065 그리고 이들 독소의 유도체의 컨쥬게이트가 고려되어 진다.
상기의 어느 것에 따르면, 본 발명의 항체를 위해 만들어질 수 있는 다른 타입의 변이는 글리코실화에서의 개변이다. 또 다른 실시형태에 있어서, 여기에 개시된 항체는 하나 또는 그 이상의 조작된 글리코형을 포함하도록 변이될 수 있다. 여기에서 사용된 것으로 "조작된 글리코형"은 탄수화물 조성물이 모 항체의 것과 화학적으로 다른, 항체에 공유결합으로 부착된 상기 탄수화물 조성물을 의미하는 것으로 된다. 조작된 글리코형은 여기에 한정되는 것은 아니지만, 이펙터 작용을 고영하거나 감소하는 것을 포함하여, 다양한 목적을 위해 유용할 수 있다. 조작된 글리코형의 예시적인 형태는 잠정적으로 FcγRIIIa 수용체에 단단하게 결합하는 것을 통해 ADCC 기능에서의 증가와 상호관련되는 것으로 여겨지는, 아푸코실화이다. 이런 맥락에서, "아푸코실화"는 숙주 세포에서 생산된 항체의 대부분이 실질적으로 푸코스가 없는 것을 의미하고, 즉 생성된 항체의 90-95-98%가 항체의 탄수화물 부분의 구성분(일반적으로 Fc 영역 내 N297에 부착됨)으로서 인식할 수 있는 푸코스를 가지지 않는다. 기능적으로 정의된 아푸코실화된 항체는 일반적으로 FcγRIIIa 수용체에 대해 적어도 50% 또는 그 이상의 친화력을 나타낸다.
조작된 글리코형은 이 기술분야에 알려진 다양한 방법(전부가 모든 목적을 위해 그리고 특히는 조작된 글리코형에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 참고로 합체하는, 문헌 「Umana et al., 1999, Nat Biotechnol 17:176-180; Davies et al., 2001, Biotechnol Bioeng 74:288-294; Shields et al., 2002, J Biol Chem 277:26733-26740; Shinkawa et al., 2003, J Biol Chem 278:3466-3473」; 미국특허번호 6,602,684; 미국 특허 시리얼 번호 10/277,370; 미국 특허 시리얼 번호 10/113,929; PCT WO 00/61739A1; PCT WO 01/29246A1; PCT WO 02/31140A1; PCT WO 02/30954A1)에 의해 생성되어 질 수 있다. 이들 기술의 대부분은 예를 들어 조작되거나 또는 그렇지 않은 다양한 장기 또는 세포 라인(예를 들어, Lec-13 CHO 세포 또는 랫트 하이브리도마 YB2/0 세포)에서 IgG를 발현함에 의해, 글리코실화 경로(예를 들어, FUT8 [α1,6-푸코실트랜스퍼라제] 및/또는 β1-4-N-아세틸글루코스아미닐트랜스퍼라제 III [GnTIII])에 포함된 효소를 조절함에 의해, 또는 IgG가 발현된 후에 탄수화물(들)을 변이함에 의해 Fc 영역에 공유결합으로 부착된 올리고사카라이드류를 푸코실화 및/또는 절단의 준위를 조절하는 것에 기초된다. 예를 들어, 시애틀 제네틱스(Seattle Genetics)의 "당 조작 항체" 또는 "SEA 기술"은 생산 과정에서 푸코실화를 억제하는 변이된 사카라이드류를 부가함에 의해 작용한다; 예를 들어, 그의 전체로 참고로 여기에 합체되는 20090317869 참고. 조작된 글리코형은 전형적으로 다른 탄수화물 또는 올리고사카라이드를 언급하고; 따라서 항체는 조작된 글리코형을 포함할 수 있다.
대안적으로, 조작된 글리코 형은 다른 탄수화물 또는 올리고사카라이드를 포함하는 변이체에 대한 것일 수 있다. 이 기술분야에 알려진 바와 같이, 글리코실화 패턴은 단백질이 생산되어 지는 숙주 세포나 장기, 또는 단백질의 서열(예를 들어, 아래에 기술된, 특정한 글리코실화 아미노산 잔기의 존재 또는 부재) 양자에 의존할 수 있다. 특정한 발현 시스템은 이 기술분야에 알려져 있고 여기에 기술되어 진다.
폴리펩티드의 글리코실화는 전형적으로 N-연결 또는 O-연결의 어느 것이다. N-연결은 아스파라긴 잔기의 측쇄에 탄화수소 부분의 부착에 대한 것이다. X가 프롤린을 제외한 어떤 아미노산인, 트리-펩티드 서열 아스파라긴-X-세린 및 아스파라긴-X-트레오닌은 아스파라긴 측쇄에 탄수화물 부분의 효소적 부착을 위한 인식 서열이다. 따라서, 이들의 폴리펩티드 내에 이들 트리-펩티드 서열의 어느 하나의 존재는 잠재적인 글리코실화 사이트를 만든다. O-연결 글리코실화는, 5-하이드록시프롤린 또는 5-히드록시리신이 또한 사용될 수 있지만, 가장 일반적으로 세린 또는 트레오닌인 하이드록시 아미노산에 당 N-아세틸갈락토사민, 갈락토스, 또는 자일 로스의 하나의 부착을 언급한다.
항체 (또는 상기에 기술된 가용성 Toso 단백질과 같은 어떤 다른 폴리펩티드)에 글리코실화 사이트의 부가는 통상적으로 아미노산 서열이 상기 기술된 트리-펩티드 서열 (N-연결 글리코실화 사이트에 대해)의 하나 또는 그 이상을 함유하도록 아미노산 서열을 개변함에 의해 성취된다. 이 개변은 또한 출발 서열의 하나 또는 그 이상의 세린이나 트레오닌 잔기(O-연결 글리코실화 사이트)의 부가, 또는 이들에 의한 치환에 의해 될 수 있다. 편의를 위해, 항체 아미노산 서열은 바람직하기로는 DNA 수준에서의 변경을 통해, 특히는 원하는 아미노산 안으로 전사될 코돈이 발생되도록 미리 선택된 염기에 표적 폴리펩티드를 인코딩하는 DNA를 변이함에 의해 개변된다.
항체 또는 기타 단백질 상에 탄수화물 부분의 수를 증가하는 다른 수단은 단백질의 글리코시드의 화학적 또는 효소적 커플링에 의한 것이다. 이들 절차는 이들이 N- 및 O-연결 글리코실화에 대해 글리코실화 능력을 가지는 숙주 세포 안에 단백질의 생산을 필요로 하지 않는 점에 이점이 있다. 사용된 커플링 모드에 의존하여, 당은 (a) 아르기닌 및 히스티딘, (b) 유리 카르복실 기, (c) 시스테인의 것과 같은 유리 설프하이드릴 기, (d) 세린, 트레오닌 또는 하이드록시프롤린의 것과 같은 유리 하이드록실 기, (e) 페닐알라닌, 티로신 또는 트립토판의 것과 같은 방향족 잔기, 또는 (f) 글루타민의 아미드 기에 부착될 수 있다. 이들 방법은 WO 87/05330 및 문헌 「Aplin and Wriston, 1981, CRC Crit. Rev. Biochem., pp. 259-306」에 기술되어 있고, 양자는 전체적으로 모든 목적을 위해 그리고 특히는 단백질에 탄수화물 부분을 커플링하는 것에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 여기에 참고로 합체한다.
출발 항체 상에 존재하는 탄수화물 부분의 제거(예를 들어, 후-전사적으로)는 화학적으로 또는 효소적으로 달성될 수 있다. 화학적 탈글리코실화는 화합물 트리플루오로에탄 술폰산 또는 등가 화합물에 단백질의 노출을 요한다. 이 처리는 폴리펩티드를 그대로 남기면서, 연결 당(N-아세틸글루코사민 또는 N-아세틸갈락토사민)을 제외한 대부분 또는 모든 상의 단리를 초래한다. 화학적 탈글리코실화는 문헌 「Hakimuddin et al., 1987, Arch. Biochem. Biophys. 259:52 및 Edge et al., 1981, Anal. Biochem. 118:131」에 기술되어 있고, 양자는 전체적으로 참고로 합체한다. 폴리펩티드 상의 탄수화물 부분의 효소적 단리는, 전체적으로 참고로 합체된 문헌 「Thotakura et al., 1987, Meth. Enzymol. 138:350」에 기술된 바와 같이 다양한 엔도- 및 엑소-글리코시다제의 사용에 의해 달성될 수 있다. 잠정적 글리코실화 사이트에서의 글리코실화는 전체적으로 참고로 합체된 문헌 「Duskin et al., 1982, J. Biol. Chem. 257:3105」에 기술된 바와 같이 화합물 투니카마이신의 사용에 의해 방지될 수 있다. 투니카마이신은 단백질-N-글리코시드 연결의 형성을 차단한다.
항체의 또 다른 타입의 공유결합 변형은, 모든 목적을 위해 그리고 특히는 폴리머에 항체를 연결하는 것에 관한 모든 교시를 위해 모두 전체적으로 참고로 합체한, 예를 들어, Nektar Therapeutics 사로부터의 2005-2006 PEG 카달로그(Nektar 웹사이트로부터 이용할 수 있음), 미국 특허번호 4,640,835; 4,496,689; 4,301,144; 4,670,417; 4,791,192 또는 4,179,337에서 제시된 방식으로, 여기에 한정되는 것은 아니지만, 폴리에틸렌 글리콜, 폴리프로필렌 글리콜 또는 폴리옥시알킬렌과 같은 다양한 폴리올을 포함하는 다양한 비단백질성 폴리머에 항체를 연결하는 것을 포함한다. 부가하여, 이 기술분야에 알려진 바와 같이, 아미노산 치환은 PEG와 같은 폴리머의 부가를 용이하게 하기 위해 항체 내의 다양한 위치에서 될 수 있다. 예를 들어, 전체적으로 참고로 합체하는 미국 특허공보 2005/0114037A1 참고.
본 발명은 더욱이 본 발명의 Toso 항체룰 인코딩하는 핵산을 포함한다, 중사슬 및 경사슬 불변 영역 양자가 항체에 포함되어 지는 경우, 일반적으로 이들은 각각을 인코딩하는 핵산을 사용하여 만들어져, 항체의 테트라머 구조를 생성하기 위해 표준 숙주 세포 (예를 들어, CHO 세포, 등) 안에 조합된다. 만일 단지 하나의 불변 영역만이 만들어 진다면, 단지 단일 핵산만이 사용될 것이다.
본 발명에 따라 사용된 항체의 제형은 원하는 정도의 순도를 갖는 항체를 임의적으로 약학적으로 허용될 수 있는 담체, 부형제 또는 안정화제(Remington's Pharmaceutical Sciences 16th edition, Osol, A. Ed. [1980])와 혼합함에 의해 동결된 제형 또는 수성 용액의 형태로 저장을 위해 제조될 수 있다. 허용될 수 있는 담체, 부형제 또는 안정화제는 채용된 복용량 및 농도에서 수취인에게 비독성이고, 포스페이트, 시트레이트 및 기타 유기산과 같은 완충액; 아스코르브산 및 메티오닌을 포함하는 항산화제; 보존제(옥타데실디메틸벤질 암모늄 클로라이드; 헥사메토늄 클로라이드; 벤즈알코늄 클로라이드, 벤즈에토늄 클로라이드; 페놀, 부틸 또는 벤질 알콜; 메틸 또는 프로필 파라벤과 같은 알킬 파라벤; 카테콜; 레조르시놀; 시클로헥산; 3-펜탄; 및 m-크레졸); 저 분자량 (약 10 잔기 이하) 폴리펩티드; 혈청 알부민, 젤라틴, 또는 면역 글로불린과 같은 단백질; 폴리비닐피롤리돈과 같은 친수성 중합체; 글리신, 글루타민, 아스파라긴, 히스티딘, 아르기닌 또는 라이신과 같은 아미노산; 글루코스, 만노스 또는 덱스트린을 포함한 단당류, 이당류, 및 다른 탄수화물; EDTA와 같은 킬레이트 제; 슈크로스, 만니톨, 트레할로스 또는 소르비톨과 같은 당류; 나트륨과 같은 염-형성 카운터-이온; 금속 착화합물 (예를 들어, 아연-단백질 복합체); 및/또는 TWEEN™, PLURONICS™, 또는 폴리에틸렌 글리콜 (PEG)와 같은 비-이온성 계면 활성제를 포함한다.
본 발명의 제형은 또한 치료되어 지는 특정한 징후에 필요한 하나의 활성 화합물 이상, 바람직하기로는 상호 부정적으로 작용하지 않는 보충적인 활성을 갖는 것을 또한 함유할 수 있다. 예를 들어, 다른 특이성을 갖는 항체를 제공하는 것이 바람직할 것이다. 대안적으로, 또는 부가하여, 이 조성물은 세포독성 제제, 시토킨, 성장 억제제 및/또는 소분자 안타고니스트를 포함할 수 있다. 이러한 분자는 적절하게는 의도된 목적에 유효한 양으로 조합하여 존재된다.
활성 분자는 또한 각각 콜로이드 성 약물 전달계(예를 들어, 리포좀, 알부민 미소구, 마이크로에멀젼, 나노-입자 및 나노캡슐) 또는 매크로에멀젼에서, 예를 들어, 하이드록시메틸셀룰로즈 또는 젤라틴-마이크로캡슐 및 폴리-(메틸메타실레이트) 마이크로캡슐과 같은, 계면 중합에 의한 또는 코아세르베이션 기술 등에 의해 제조된 마이크로캡슐 안에 포획될 수 있다. 이러한 기술은 문헌 「Remington's Pharmaceutical Sciences 16th edition, Osol, A. Ed. (1980)」에 기술되어 졌다.
생체 내에서 투여를 위해 사용되어 지는 제형은 멸균되거나 거의 그렇게 되어야 한다. 이것은 멸균 여과 멤브레인을 통한 여과에 의해 쉽게 성취된다.
서방형 제제가 제조될 수 있다. 서방형 제제의 적절한 예는 매트리스가 성형된 물질의 형태, 예를 들어 필름 또는 마이크로캡슐인, 항체를 함유하는 고형 소수성 중합체의 반투과성 매트리스를 포함한다. 서방형 매트리스의 예는 폴리에스테르, 하이드로 겔 (예를 들어, 폴리(2-하이드록시에틸-메타크릴레이트), 또는 폴리(비닐알코올)), 폴리락티드 (미국 특허번호 3,773,919), L-글루탐산 및 감마 에틸-L-글루타메이트, 비-분해성 에틸렌-비닐 아세테이트, LUPRON DEPOT^®와 같은 분해성 락트산-글리콜 산 공중합체(락트산-글리콜 산 공중합체 및 류프롤리드 아세테이트로 구성된 주사 가능한 마이크로스피어), 및 폴리-D-(-)-3-하이드록시부티르산을 포함한다. 에틸렌-비닐 아세테이트 및 락트산-글리콜 산과 같은 중합체가 100일에 걸쳐 분자의 방출을 가능하게 하지만, 어떤 하이드로겔은 보다 짧은 시간 동안 단백질을 방출한다.
캡슐에 싸여 진 항체는 장시간 동안 체내에 잔존할 때, 이들은 37℃에서 수분에 노출의 결과로 변성 또는 응집될 수 있어, 생물학적 활성의 상실 및 면역원성에서의 가능한 변화를 초래한다. 포함된 메카니즘에 의존하는 안정화를 위한 이성적인 전략이 고안될 수 있다. 예를 들어, 만일 응집 메카니즘이 티오-디설파이드 상호교환을 통해 분자 간 S--S 결합되는 것으로 나타나면, 안정화는 설프히드릴 잔기를 변형, 산성 용액으로부터 동결건조, 수분 함량 조절, 적절한 첨가제를 사용, 및 특정 중합체 매트릭스 조성물을 전개함에 의해 달성될 수 있다 .
IV . Toso 활성을 조정하는 방법
일 측면에 있어서, 본 발명은 Toso 활성을 조절하는 방법에 대한 것이다. 일 실시형태에 있어서, Toso 활성을 조절하는 방법은 Toso 활성을 억제하는 것을 포함한다. 다른 실시형태에 있어서, Toso 활성을 조절하는 방법은 Toso 활성을 증가하는 것을 포함한다.
일부 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법은 직접적으로 Toso 활성을 조절하는 것을 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 이러한 방법은 항체와 같은 Toso에 결합하는 제제를 적용하는 것을 포함한다.
다른 실시형태에 있어서, Toso 활성은, 예를 들어 Toso의 동족 리간드를 결합함에 의해 직접적으로 조절된다. 예시적인 실시형태에 있어서, Toso 활성은 가용성 Toso 단백질을 투여함에 의해 조절된다.
부가적인 실시형태에 있어서, Toso 활성은 메카니즘의 조합, 예를 들어 Toso의 동족 리간드를 결합하는 제제를 포함하는 조성물과 조합하여 Toso에 결합하는 제제를 포함하는 조성물을 투여함에 의해 조절된다. 예시적인 실시형태에 있어서, 이러한 조합은 제한 없이 Toso 항체 및 가용성 Toso 단백질을 포함할 수 있다.
인식되는 바와 같이, Toso 활성을 조절하는 방법은 서열번호 1-25의 어떤 하나 또는 그 이상뿐만 아니라 여기에 기술된 것과 같은 이들의 어떤 변이체 또는 변형을 포함하는, 어떤 조합으로 여기에서 기술된 어떤 조성물의 사용을 포함할 수 있다.
V. 질환을 치료하는 방법
일 측면에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명은 제한 없이 Toso에 대한 가용성 Toso 단백질 또는 항체를 포함하는 Toso 활성을 조절하는 조성물로 대상물의 필요에 따라 대상물을 치료함에 의해 질환을 치료하는 방법을 제공한다.
특정한 실시형태에 있어서 그리고 상기의 어느 것에 따르면, 본 발명은 가용성 Toso 단백질을 포함하는 조성물로 대상물의 필요에 따라 대상물을 치료함에 의해 질환을 치료하는 방법을 제공한다. 이론에 의해 제한됨이 없이, 가용성 Toso 단백질이 이들 질환에 대해 효과적 치료로 되는 하나의 잠정적인 메카니즘을 통해 Toso 활성을 조절한다. 어떤 실시형태에 있어서, 본 발명에 따른 질환을 치료하는 방법은 서열번호s: 1-25의 하나 또는 그 이상 또는 이들의 변이체를 포함하는 가용성 Toso 단백질을 포함하는, 여기에 기술된 어떤 가용성 Toso 단백질의 치료적으로 유효한 양을 투여하는 것을 포함한다. 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병, 다발성 경화증, 천식, 및 암을 포함하는 질환을 치료하기 위해 사용된 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나에 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 폴리펩티드를 포함한다. 이러한 폴리펩티드는 여기에 기술된 어떤 질환의 치료를 위해 화학적 변형을 포함하는, 여기에 기술된 방법에 따라 더욱 변이될 수 있다.
부가적인 측면에 있어서, 본 발명은 대상물에 가용성 Toso 단백질(또는 이의 변이체)를 투여함에 의해 질환 및 질병을 치료하는 방법에 대한 것이다. 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 제한 없이; 자가면역 질환(제한 없이, 제1형 당뇨병, 다발성 경화증, 또는 류마티스성 관절염을 포함함), 제2형 당뇨병, 천식, 알레르기 만성 폐쇄성 폐 질환("COPD"), 하이퍼-IgM 증후군, 루푸스, 암, 또는 호중구-관련 장애(제한 없이, 호중구 감소증, 중증 선천성 호중구 감소증, 순환 호중구 감소증, 항체 매개 호중구 감소증, 망상 형성 부전, 백혈구 부착 결핍증, 유사 골수 증식성 질환, 만성 골수성 백혈병, 유사 한냉 두드러기 및 백혈구, 및 만성 육아종성 질환)로부터 고통을 당하는 대상자를 치료하기 위해 사용될 수 있다. 인식되어 지는 바와 같이, 여기서 기술된 어떤 가용성 Toso 단백질이 단독으로 또는 조합하여 이들 질환 또는 질병을 치료하기 위해 사용될 수 있다.
부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질의 약학적으로 허용될 수 있는 양이 여기에 기술된 어떤 질환을 치료하기 위해 대상자의 필요에 따라 대상자에게 투여된다. 일부 실시형태에 있어서, 대상자에게 투여되어 지는 가용성 Toso 단백질은 세포질 외의 Toso 도메인 및/또는 도메인 및/또는 신호 서열 및/또는 유연성 링커를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나에 따른 서열을 포함한다. 서열번호:1-25의 어느 하나의 조합이 또한 여기에 기술된 어떤 질환을 치료하기 위해, 폴리펩티드와 별도로 또는 융합 단백질과 함께 사용될 수 있다. 이러한 폴리펩티드는 또한, 이러한 질환을 치료하기 위해 여기 상세한 설명에 따라, 화학적으로 변이되는 것을 포함하여, 더 변이될 수 있다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 어떤 질환을 치료하기 위해 사용된 가용성 Toso 단백질은 도 8에 도시된 바와 같은 서열번호: 5를 포함하는 서열을 가진다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 어떤 질환을 치료하기 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 가진다. 부가적인 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 어떤 질환을 치료하기 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 약 75-99%, 80-98%, 85-97%, 90-96%, 91-99%, 92-98%, 93-97%, 94-96% 동일성을 갖는 서열을 가진다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 어떤 질환을 치료하기 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 또는 20 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1-30, 2-25, 3-20, 4-15, 5-10, 6-9, 7-8 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더 예시적인 실시형태에 있어서, 약 12.1, 12.2, 12.3, 12.4, 12.5, 12.6, 12.7, 12.8, 12.9, 13.1, 13.2, 13.3, 13.4, 13.5, 13.6, 13.7, 13.8, 13.9, 14mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 인식되어 지는 바와 같이, 가용성 Toso 단백질의 양은 실험적 동물로부터 인간으로 복용량의 전환을 위해 사용된 광범위하게 승인된 체표면적(Body Surface Area; BSA) 정규화 방법을 사용하여 동물 연구에 기초되어 확인될 수 있다. (문헌 「Reagan-Shaw, S., Nihal, M., 및 Admad, N. Dose translation from animal to human studies revisited. 2007. The Faseb Journal」 참고).
특정한 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법 및 조성물은 제1형 또는 제2형 당뇨병에 대한 위험이 있거나 또는 이를 가지는 대상자를 치료하기 위해 사용된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질의 약학적으로 허용될 수 있는 양이 대상자에게 이들의 필요에 따라 투여된다. 일부 실시형태에 있어서, 당뇨병을 치료하기 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 세포질 외의 Toso 도메인 및/또는 도메인 및/또는 신호 서열 및/또는 링커를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나 또는 여기서 기술된 서열번호s: 1-25의 어떤 변이체에 따른 서열을 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병을 치료하기 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나에 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 포함한다. 서열번호:1-25의 어느 하나의 조합이 또한 당뇨병을 치료하기 위해 별도 폴리펩티드로서 또는 융합 단백질과 함께 사용될 수 있다. 이러한 폴리펩티드는 또한 당뇨병을 치료하기 위해 여기 상세한 설명에 따라, 화학적으로 변형된 것을 포함하여, 더욱 변형될 수 있다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병에 대해 대상자를 치료하기 위해 사용된 가용성 Toso 단백질은 도 8에 도시된 바와 같은, 서열번호: 5를 포함하는 서열을 가진다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 가진다. 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 약 75-99%, 80-98%, 85-97%, 90-96%, 91-99%, 92-98%, 93-97%, 94-96% 동일성을 갖는 서열을 가진다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 또는 20 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 당뇨병의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1-30, 2-25, 3-20, 4-15, 5-10, 6-9, 7-8 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 어떤 조성물에 따른 가용성 Toso 단백질로 치료는 대상자에 글루코스 내성을 개선하는 작용을 하고, 이에 의해 당뇨병을 치료한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 약 10-20, 11-19, 12-18, 13-17, 14-16mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 더 예시적인 실시형태에 있어서, 약 10, 10.1, 10.2, 10.3, 10.4, 10.5, 10.6, 10.7, 10.8, 10.9, 11, 11.1, 11.2, 11.3, 11.4, 11.5, 11.6, 11.7, 11.8, 11.9, 12, 12.1, 12.2, 12.3, 12.4, 12.5, 12.6, 12.7, 12.8, 12.9, 13.1, 13.2, 13.3, 13.4, 13.5, 13.6, 13.7, 13.8, 13.9, 14, 14.1, 14.2, 14.3, 14.4, 14.5, 14.6, 14.7, 14.8, 14.9, 15, 15.1, 15.2, 15.3, 15.4, 15.5, 15.6, 15.7, 15.8, 15.9, 16mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 인식되어 지는 바와 같이, 가용성 Toso 단백질의 양은 실험적 동물로부터 인간으로 복용량의 전환을 위해 사용된 광범위하게 승인된 체표면적(BSA) 정규화 방법을 사용하여 동물 연구에 기초되어 확인될 수 있다. (문헌 「Reagan-Shaw, S., Nihal, M., 및 Admad, N. Dose translation from animal to human studies revisited. 2007. The Faseb Journal」 참고). 여기에서 더욱 상세하게 기술된 실험에 대해, 50㎍ 복용량이 질환 모델에 사용되어, 대략적으로 20g 마우스에서 2.5 mg/kg으로 된다. BSA 전환을 사용하여, 이것은 0.2027mg/kg 또는 7.5 mg/㎡, 또는 대략적으로 60kg 성인에 대해 12.2mg으로 된다.
다른 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법 및 조성물은 다발성 경화증에 대한 위험에 있거나 또는 이를 가진 대상자를 치료하기 위해 사용된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질의 약학적으로 허용될 수 있는 양이 다발성 경화증의 치료 또는 개선을 위해 대상자에게 이들의 필요에 따라 투여된다. 일부 실시형태에 있어서, 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 및 도메인 및/또는 유연성 링커를 포함한다. 일부 실시형태에 있어서, 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 세포질 외 Toso 도메인 및/또는 Fc 도메인 및/또는 신호 서열 및/또는 링커를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-24의 어느 하나에 따른 서열을 포함한다. 서열번호:1-25의 어느 하나의 조합이 또한 다발성 경화증을 치료하기 위해, 폴리펩티드 별도로 또는 융합 단백질과 함께 사용될 수 있다. 이러한 폴리펩티드는 또한 다발성 경화증을 치료하기 위해 여기 상세한 설명에 따라, 화학적 변형을 포함하여, 더욱 변형될 수 있다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 도 8에 도시된 바와 같은 서열번호: 5를 포함하는 서열을 가진다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 다발성 경화증의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 대해 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 갖는다. 부가적인 실시형태에 있어서, 다발성 경화증의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 대해 약75-99%, 80-98%, 85-97%, 90-96%, 91-99%, 92-98%, 93-97%, 94-96% 동일성을 갖는 서열을 갖는다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 다발성 경화증의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 또는 20 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 다발성 경화증의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1-30, 2-25, 3-20, 4-15, 5-10, 6-9, 7-8 아미노산 치환체를 갖는 서열번호: 5를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 여기서 기술된 어떤 조성물에 따른 가용성 Toso 단백질로 치료는 다발성 경화증의 진행을 지연하는 작용을 한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 약 10-20, 11-19, 12-18, 13-17, 14-16mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 더 예시적인 실시형태에 있어서, 약 10, 10.1, 10.2, 10.3, 10.4, 10.5, 10.6, 10.7, 10.8, 10.9, 11, 11.1, 11.2, 11.3, 11.4, 11.5, 11.6, 11.7, 11.8, 11.9, 12, 12.1, 12.2, 12.3, 12.4, 12.5, 12.6, 12.7, 12.8, 12.9, 13.1, 13.2, 13.3, 13.4, 13.5, 13.6, 13.7, 13.8, 13.9, 14, 14.1, 14.2, 14.3, 14.4, 14.5, 14.6, 14.7, 14.8, 14.9, 15, 15.1, 15.2, 15.3, 15.4, 15.5, 15.6, 15.7, 15.8, 15.9, 16mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 인식되어 지는 바와 같이, 가용성 Toso 단백질의 양은 실험적 동물로부터 인간으로 복용량의 전환을 위해 사용된 광범위하게 승인된 체표면적(BSA) 정규화 방법을 사용하여 동물 연구에 기초되어 확인될 수 있다. (문헌 「Reagan-Shaw, S., Nihal, M., 및 Admad, N. Dose translation from animal to human studies revisited. 2007. The Faseb Journal」 참고). 여기에서 더욱 상세하게 기술된 실험에 대해, 50㎍ 복용량이 질환 모델에 사용되어, 대략적으로 20g 마우스에서 2.5 mg/kg으로 된다. BSA 전환을 사용하여, 이것은 0.2027mg/kg 또는 7.5 mg/㎡, 또는 대략적으로 60kg 성인에 대해 12.2mg으로 된다.
다른 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법 및 조성물은 관절염에 대한 위험에 있거나 또는 이를 가진 대상자를 치료하기 위해 사용된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질의 약학적으로 허용될 수 있는 양이 관절염의 치료 또는 예방을 위해 대상자에게 이들의 필요에 따라 투여된다. 일부 실시형태에 있어서, 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 및 도메인 및/또는 링커를 포함한다. 일부 실시형태에 있어서, 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 세포질 외 Toso 도메인 및/또는 Fc 도메인 및/또는 신호 서열 및/또는 링커를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나에 따른 서열을 포함한다. 서열번호:1-25의 어느 하나의 조합이 또한 관절염을 치료하기 위해, 폴리펩티드 별도로 또는 융합 단백질과 함께 사용될 수 있다. 이러한 폴리펩티드는 또한 관절염을 치료하기 위해 여기 상세한 설명에 따라, 화학적 변형을 포함하여, 더욱 변형될 수 있다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 도 8에 도시된 바와 같은 서열번호: 5를 포함하는 서열을 가진다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 관절염의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 대해 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 갖는다. 부가적인 실시형태에 있어서, 관절염의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 대해 약75-99%, 80-98%, 85-97%, 90-96%, 91-99%, 92-98%, 93-97%, 94-96% 동일성을 갖는 서열을 갖는다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 관절염의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 또는 20 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 관절염의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1-30, 2-25, 3-20, 4-15, 5-10, 6-9, 7-8 아미노산 치환체를 갖는 서열번호: 5를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 여기서 기술된 어떤 조성물에 따른 가용성 Toso 단백질로 치료는 관절염의 발현을 방지하거나 관절염이 심각성에 대해 보호하는 작용을 한다.
특정한 실시형태에 있어서, 본 발명의 방법 및 조성물은 천식에 대한 위험에 있거나 또는 이를 가진 대상자를 치료하기 위해 사용된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질의 약학적으로 허용될 수 있는 양이 대상자에게 이들의 필요에 따라 투여된다. 일부 실시형태에 있어서, 천식을 치료하기 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 세포질 외 Toso 도메인 및/또는 Fc 도메인 및/또는 신호 서열 및/또는 링커를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나 또는 여기에 기술된 서열번호s: 1-25의 변이체의 어느 것에 따른 서열을 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 천식의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호s: 1-25의 어느 하나에 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 포함한다. 서열번호:1-25의 어느 하나의 조합이 또한 천식을 치료하기 위해, 폴리펩티드 별도로 또는 융합 단백질과 함께 사용될 수 있다. 이러한 폴리펩티드는 또한 천식을 치료하기 위해 여기 상세한 설명에 따라, 화학적 변형을 포함하여, 더욱 변형될 수 있다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 천식에 대해 대상자를 치료하기 위해 사용되는 가용성 Toso 단백질은 도 8에 도시된 바와 같은 서열번호: 5를 포함하는 서열을 가진다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 천식의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 대해 적어도 약 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 동일성을 갖는 서열을 갖는다. 부가적인 실시형태에 있어서, 천식의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 서열번호. 5에 대해 약 75-99%, 80-98%, 85-97%, 90-96%, 91-99%, 92-98%, 93-97%, 94-96% 동일성을 갖는 서열을 갖는다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 천식의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 또는 20 아미노산 치환체를 갖는 서열번호. 5를 포함한다. 더 부가적인 실시형태에 있어서, 천식의 치료를 위해 대상자에게 투여되는 가용성 Toso 단백질은 1-30, 2-25, 3-20, 4-15, 5-10, 6-9, 7-8 아미노산 치환체를 갖는 서열번호: 5를 포함한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 여기에 기술된 어떤 조성물에 따른 가용성 Toso 단백질로 치료는 대상자에 글루코스 내성을 개선하는 작용을 하고, 이에 의해 천식을 치료한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 약 10-20, 11-19, 12-18, 13-17, 14-16mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 더 예시적인 실시형태에 있어서, 약 10, 10.1, 10.2, 10.3, 10.4, 10.5, 10.6, 10.7, 10.8, 10.9, 11, 11.1, 11.2, 11.3, 11.4, 11.5, 11.6, 11.7, 11.8, 11.9, 12, 12.1, 12.2, 12.3, 12.4, 12.5, 12.6, 12.7, 12.8, 12.9, 13.1, 13.2, 13.3, 13.4, 13.5, 13.6, 13.7, 13.8, 13.9, 14, 14.1, 14.2, 14.3, 14.4, 14.5, 14.6, 14.7, 14.8, 14.9, 15, 15.1, 15.2, 15.3, 15.4, 15.5, 15.6, 15.7, 15.8, 15.9, 16mg의 가용성 Toso 단백질이 치료적 효과를 위해 대상자에게 투여된다. 인식되어 지는 바와 같이, 가용성 Toso 단백질의 양은 실험적 동물로부터 인간으로 복용량의 전환을 위해 사용된 광범위하게 승인된 체표면적(BSA) 정규화 방법을 사용하여 동물 연구에 기초되어 확인될 수 있다. (문헌 「Reagan-Shaw, S., Nihal, M., 및 Admad, N. Dose translation from animal to human studies revisited. 2007. The Faseb Journal」 참고). 여기에서 더욱 상세하게 기술된 실험에 대해, 50㎍ 복용량이 질환 모델에 사용되어, 대략적으로 20g 마우스에서 2.5 mg/kg으로 된다. BSA 전환을 사용하여, 이것은 0.2027mg/kg 또는 7.5 mg/㎡, 또는 대략적으로 60kg 성인에 대해 12.2mg으로 된다.
부가적인 실시형태에 있어서, 서열번호 1-25의 하나 또는 그 이상의 폴리펩티드를 포함하는 가용성 Toso 단백질을 포함하여, 여기에 기술된 가용성 Toso 단백질은 약제로서 사용을 위한 형태이다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 약제로서 사용을 위해 서열번호 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17 ,18 ,19, 20 ,21, 22, 23, 24, 또는 25의 하나 또는 그 이상(또는 하나 또는 그 이상의 일부)의 폴리펩티드를 포함하는 가용성 Toso 단백질을 제공한다. 더욱 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명은 다음의 장애의 어느 하나를 치료하기 위한 서열번호 1-25의 하나 또는 그 이상의 폴리펩티드를 포함하는 가용성 Toso 단백질의 사용을 위한 방법을 제공한다: 자가면역 질환(제한 없이, 제1형 또는 제2형 당뇨병, 다발성 경화증, 또는 류마티스성 관절염을 포함함), 천식, 알레르기 만성 폐쇄성 폐 질환("COPD"), 하이퍼-IgM 증후군, 루푸스, 암, 또는 호중구-관련 장애(제한 없이, 호중구 감소증, 중증 선천성 호중구 감소증, 순환 호중구 감소증, 항체 매개 호중구 감소증, 망상 형성 부전, 백혈구 부착 결핍증, 유사 골수 증식성 질환, 만성 골수성 백혈병, 유사 한냉 두드러기 및 백혈구, 및 만성 육아종성 질환).
상기한 바와 같이, 일부 실시형태에 있어서, 본 발명의 가용성 Toso 단백질은 암을 치료하기 위해 사용된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명에 따른 암을 치료하는 방법은 Toso 활성을 조절함에 의해 종양 침입 및/또는 전이를 억제하는 방법을 포함한다. 예시적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 조성물은 선암, 백혈병, 림프종, 흑색종, 골수종, 육종 또는 기형암의 군의 어느 하나를 치료하기 위해 대상자에게 그들의 필요에 따라 사용된다. 부가적인 실시형태에 있어서, 본 발명의 조성물은 부신, 방광, 뼈, 골수, 뇌, 유방, 자궁 경부, 담낭, 신경절, 소화관, 심장, 신장, 간, 폐, 근육, 난소, 췌장, 부갑상선, 음경, 전립선, 침샘, 피부, 비장, 고환, 흉선, 갑상선 또는 자궁의 하나 또는 그 이상에 암으로부터 고통을 당하는 대상자를 치료하기 위해 사용된다.
실시예 1: Toso 는 관절염의 발병 기전에서 역할을 담당함
Toso^-/- 및 야생형 마우스는 완전 프로인트 어쥬번트 내 타입 II 치킨 콜라겐으로 피하로 주사되고 그리고 시간의 경과에 따라 병의 진행을 관찰하였다. 타입 II 치킨 콜라겐에 노출된 동물은 인간 류마티스성 관절염(RA)과 유사한 면역학적, 병리학적 및 조직학적 특성을 가지는 질환을 전개한다. 디지털 캘리퍼를 사용하여 발목 두께에서의 변화를 측정함으로, 관절 염증이 Toso^-/- 마우스에서 유의성 있게 감소하였다(도 1A). 부가하여, 질환의 심각성은 육안으로 부풀어 오름과 운동성에 기초하여 각 관절에 대해 0 내지 4로 점수 매겨 졌다. Toso^-/- 마우스는 야생형 대조군에 비하여 과감하게 감소된 임상적 스코어를 가졌다(도 1B). 드레이닝 림프절에서 림프구 개체군의 세포 유동 분석은 B220⁺ B 세포에서 유의성 있는 감소를 나타냈다(도 1C). 이들 데이터는 Toso가 관절염의 발병 기전에서 중요한 역할을 한다는 것을 제시한다.
실시예 2: Toso - Fc 로 치료는 관절염에 대해 보호함
본 실시예는 Toso -Fc(서열번호: 5)로 치료는 관절염에 대해 보호한다는 것을 보여준다. 관절염 민감성 마우스 DBA1이 50 μg Toso-Fc I.P로 미리 복용되어 지고, 질환을 유도하기 위한 완전 프로인트 어쥬번트 내 타입 II 치킨 콜라겐으로 면역화되고, 그런 다음 실험의 경로에 걸쳐 주당 삼 회 Toso-Fc로 치료되었다. Toso-Fc 치료된 마우스는 질환의 심각성 및 발생율 양자에 대해서 보호되어, Toso-Fc 투여는 관절염의 관리에 유용할 수 있다는 것을 제시한다. 예를 들어, 도 24A는 부가적 관절염 점수가 대조군(단지 담체로만 치료됨)에 비하여 Toso-Fc 치료된 마우스에서 무시할 수 있었다는 것을 보여준다. 유사하게, 도 24B는 또한 관절염 발생 백분율이 대조군에 비하여 Toso-Fc 치료된 마우스에서 무시할 수 있었다는 것을 보여준다. 관절염의 임상적인 증상은 다음과 같이 평가되었다; 0 = 정상, 1 = 약간의 붓기 및/또는 홍반, 2 = 현저한 붓기, 3 = 강직. 각각의 마우스에 대한 개별적인 사지 점수가 부가되어, 최대 12의 질환 점수를 제공한다. 질병의 발병율은 마우스가 관찰될 때 사지에서 1의 질환 점수를 가지는 것으로 나타났다.
도 25는 콜라겐을 자극된 Toso-Fc 및 담체 처리된 마우스로부터 유관세포의 리콜 반응 (증식)를 나타내는 데이터를 더 제공한다. 도면에 도시된 바와 같이, Toso-Fc로 처리된 마우스로부터의 유관세포가 담체 처리된 대조군으로부터의 유관세포보다 감소된 증식성 반응을 보인다.
실시예 3: Toso - Fc 는 일단 질환이 확립된 관절염에 대해 유효함
상기에 나타난 바와 같이, Toso-Fc의 예방적 투여가 류마티스성 관절염의 뮤어라인 모델에서 질환 증상을 개선하였다. 본 실시예는 Toso-Fc의 투여가 또한 치료적 내용(예를 들어, 질병이 이미 확립되어 있을 때)에서 효과적인 것을 보여준다.
자성 DBA.1 마우스 (6 내지 8 주령)가, 질환이 관찰될 때 하나는 담체 치료를 받고, 그리고 다른 것은 Toso-Fc를 치료받도록 2 그룹으로 무작위로 할당되었다. 모든 마우스는 질환을 유도하기 위해 콜라겐으로 접종되었다. 질환 증상의 개시는 면역화 43일 후에 관찰되었다. 동물은 그래프 상 화살표로 지시된 바와 같이, 52일에 담체 대조군 또는 Toso-Fc로 치료되었다(도 26). 57일 후, Toso-Fc의 치료적 투여는 전체 질환 점수 및 관절염 발생율을 크게 감소했다 (도 26 참고). 이들 데이터는 Toso-Fc가 질병이 이미 확립되었을 때 관절염 증상을 효과적으로 관리할 수 있고, 따라서 치료적뿐만 아니라 예방적 내용에서 효과적일 수 있다는 것을 나타낸다.
실시예 4: Toso 는 천식의 전개에 역할을 담당함
천식은 비정상적인 TH2 활성화, IgE 생성, 기관지 과민성, 및 기관지 점막 안으로 백혈구 관외유출에 의해 특징되는 알레르기성 장애이다. 호산구 증가증은 알레르기성 천식의 표석이고 그리고 염증화에 있어서 결정적 작용자인 것으로 생각된다. 천식의 병리학적 소견은 폐를 수축하도록 야기하여, 천명, 호흡 곤란, 흉부 압박감, 및 기침을 유도한다.
OVA 유도 천식 모델이 Toso-/- 및 야생형 마우스에서 수행되어 졌다(도 2A). OVA(10 mg/kg)가 0, 7, 및 14일에 복강으로 전달되었다. 마우스는 그런 다음 21, 22 및 23일에 30분 동안 에어로졸 OVA (1mg/ml)를 수취하고 그리고 2일 후에 희생되었다. Toso-/- 마우스는 DifQuik 염색에 의해 분석된 바와 같이 기관지 폐포 공간으로 호산구 전이에서 급격한 감소가 있었다(도 2B). 형태학에 근거하여, 호산구는 슬라이드 상 적어도 200 백혈구로 계수됨에 의해 정량되었다(도 2C).
천식 및 기타 알레르기성 질환이 TH2 세포 안으로 천연 T 세포의 선택적인 분화로 특징되어 진다. 기관지 폐포 세척액(BALF) 안에 TH2 관련 사이토카인 및 케모카인의 존재가 분석되었다. Toso-/- 마우스는 ELISA에 의해 분석된 바와 같이 BALF 내에 OVA 유도 TH2 사이토카인 IL-4, IL-5 및 IL-13에서의 유의성 있는 감소를 하였다 (도 3A-C). 폐안으로 억제된 호산구 전이와 일치하여, Toso-/- 마우스는 BALF 내에 호산구를 끄는 C-C 케모카인인 에오탁신을 유의성 있게 감소하였다 (도 3D). 기관지 평활근 세포는 TNFα에 반응하여 에오탁신을 생산하는 것이 알려져 있다. Toso는 폐에서 발현되어 지고는 것으로 알려지고, 그리고 Toso 결핍 마우스는 마우스에 TNF에 저항력을 부여하기 때문에, 본 발명자 등은 에오탁신 준위에 대한 Toso의 영향이 폐 고유적인 것인지에 대해 해결하고자 하였다. 배양된 Toso-/- 기관지 평활근 세포는 TNFα 치료에 반응하여 생산된 에오탁신의 준위를 유의성 있게 감소했다 (도 3E). 이와 함께, 이들 데이터는 Toso 결핍이 OVA 유도 TH2 사이토카인, 및 폐에서의 에오탁신 준위에 대해 악영향을 미친다는 것을 제시한다.
알레르기성 천식의 보증은 IgE의 과잉생성이다. B 세포를 생성하는 항체가 유도되어 IL-4와 같은 TH2 사이토카인에 의해 IgE를 생산한다(문헌,「Oettgen, H.C. and R.S. Geha, IgE regulation and roles in asthma pathogenesis. J Allergy Clin Immunol, 2001. 107(3): p. 429-40」). 혈청 내 OVA 유도 전체 IgE 및 OVA 특이적 IgE 준위는 Toso-/- 마우스에서 유의적으로 억제되었고(도 4A 및 B), 반면 OVA-특이적 IgG1은 야생형과 녹아웃 사이에서 유사했다 (도 4C). 이들 데이터는 Toso의 유전적 제거 또는 가능한 치료적 차단이 IgE의 생성을 감소할 수 있다는 것을 제시한다.
알레르기성 천식 전형인 염증 발생은 폐에 제한적인 공기 흐름을 야기하는 기도 개형에서 절정에 달한다. 따라서, Toso 결핍이 OVA 유도 기도 과민증에 영향을 미치는지가 전신 체적기록법을 사용하여 메타콜린의 증가한 복용량에 반응하는 인핸스드 포즈(Penh)를 측정함에 의해 분석되었다. Toso-/- 마우스는 야생형 대조군에 비하여 Penh 값에 있어 유의성 있는 감소를 나타내는 바와 같이 OVA 유도 기도 과민성으로부터 유의성 있게 보호되었다 (도 5). 이들 데이터는 Toso 차단이 알레르기성 천식에서 기도 반응성을 경감하기 위한 효과적인 방책으로 되는 것을 제시한다.
실시예 5: Toso 제거는 수지상 세포 활성에 영향을 미침
Toso 제거는 알레르기 및 염증성 질환의 발현에 광범위한 영향을 미친다. 하나의 가능한 비-제한적 메카니즘은 Toso가 혹시 천연 T 세포에 대해 항원을 나타내는 수지 세포 (DCs)의 작용을 통해 글로벌 수준으로 이들 질환 진행을 조절한다는 것이다.
T 세포의 활성화에 있어 또는 질환의 발현에 있어 Toso^-/- 수지상 세포의 작용적 관련을 시험하기 위해, 본 발명자 등은 항원 적하 Toso -/- DCs의 전이가 야생형 카운터파트에 유사한 질환 진행을 야기하는가를 결정하였다.
야생형 및 Toso^-/- 골수 유래 DCs가 GM-CSF로 배양을 통해 만들어 졌다 (모든 목적을 위해 그리고 특히는 수지상 세포의 배양에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 여기에 참고로 합체되는, 문헌 「Lutz, M.B., et al., An advanced culture method for generating large quantities of highly pure dendritic cells from mouse bone marrow」, 「J Immunol Methods, 1999. 223(1): p. 77-92」 참고). Lambrecht 등의 프로토콜에 유사하게, 본 실험에서 DCs는 OVA로 적하되었다. 항원 적하 DCs는 C57BL6 돔울의 기관지 안으로 주입되었다 (모든 목적을 위해 그리고 특히는 수지상 세포에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 여기에 참고로 합체되는, 문헌 「Lambrecht, B.N., et al., Myeloid dendritic cells induce Th2 responses to inhaled antigen, leading to eosinophilic airway inflammation」, 「J Clin Invest, 2000. 106(4): p. 551-9」 참고). 일 주일 후, 동물은 삼일 연속 천식 연구에 따라 에어로졸로 된 OVA로 처리되었다. 놀랍게도, OVA 적하 Toso^-/- 수지상 세포는 야생형 대조군에 비하여 BALF 안으로 TH2 사이토카인 생산을 유도하는 이들의 능력이 유의적으로 감소되었다 (도 7A). 2d2 TCR 형질전환 스트레인은 EAE를 유도하기 위해 사용된 MOG35-55 펩티드에 특이적인 T 세포를 함유한다 (문헌 「Bettelli, E., et al., Myelin oligodendrocyte glycoprotein-specific T cell receptor transgenic mice develop spontaneous autoimmune optic neuritis. J Exp Med, 2003. 197(9): p. 1073-81 」). 2d2 마우스로부터 유래된 T 세포는 MOG35-55 적하 Toso-/- DCs와 공-배양될 때 증식하지 않았다 (도 7B). 랫트 인슐린 프로모터(RIP)의 조절 하에서 림프구성 맥락수막염바이러스(LCMV)로부터 주요 글리코프로테인(GP)을 발현하는 마우스는 혈청 글루코스의 증가된 준위에 의해 분석된 바와 같이 당뇨병을 전해한다. 유사하게, GP 펩티드 적하 DCs를 수용한 RIP-GP는 또한 질병을 전개한다. Toso-/- DCs는 야생형 대조군에 비하여 질병을 유도하는 이들의 능력에 있어 손상을 나타냈고, 펩티드 적하 Toso-/- DCs를 수용한 RIP-GP 마우스는 펩티드 적하 야생형 DCs를 수용한 이들 마우스보다 유의성 있게 양호하게 생존하였다 (도 7C). 이와 함께, 이들 결과는 Toso는 T 세포를 활성화하고 질환을 유도하는 수지상 세포의 능력에 필요하다는 것을 제시한다.
실시예 6: 가용성 Toso 단백질의 투여는 천식 질환 통계를 무효화함
가용성 수용체를 생성하기 위해, 인간 비장 cDNA 라이브러리로부터 Toso의 세포질 외의 도메인이 증폭되고 그런 다음, 배양 상등액 안으로 최적의 분비를 가능하게 하는, IL2 신호 서열의 pFuse-hIgG1e3-Fc2 다운스트림 안에 C-말단에 인간 IgG1로부터 유래된 Fc 도메인을 갖는 프레임 안에 클론되었다 (도 8A - 박스에 의해 지시된 신호 서열, 및 밑줄로 지시된 Fc 도메인). 부가하여, Fc 영역은 항원 의존성- 및 보체 의존성-세포독성을 제거하는 것으로 나타난 몇몇 돌연변이(E233P/L234V/L235A/ΔG236/A327G/A330S/P331S)를 함유했다. 이들 돌연변이는 단백질의 반감기를 고양할 수 있고 그리고 생체 내에 투여될 때 바람직한 약동학적 프로필을 부여할 수 있다. 이 Toso-Fc 컨스트럭트 뿐만 아니라 공 벡터 대조군이 프리스타일 발현 시스템을 사용하여 무혈청 배지 세포 400ml 내에 3 × 10⁸ 293F 세포로 형질도입되었다. 이일 후, 상등액이 수집되었고 세포는 추가적인 400ml의 배지에 재현탁되었다. 배양 2일 이상 후에, 이차 상등액이 수집되고 일차 상등액과 혼합되었다. Toso-Fc 가용성 수용체의 분비는 ELISA를 사용하여 확인되었고(도 8B), 프로테인 G 크로마토그라피에 의해 정제되고, 그리고 100mM 글리신으로 pH 2.3에서 용리되었다. 1ml의 용리 분획이 60ml의 중화 완충액(1M Tris pH 9.5)으로 수집되고, 위스턴 블럿에 의해 Fc 영역에서 나타난 항체 (도 8Ci) 및 쿠마시 블루 염색 (도 8Cii)에 의해 확인되었다.
가용성 수용체의 결합은 뮤어라인 유관세포 상에서 시험되었다. 대략적으로, 106 세포가 얼음 상에서 2시간 동안 100㎕의 FACS 염색 완충액(PBS+1%BSA+0.05% NaN₃) 내에서 지시된 양의 Toso-Fc로 배양되었다. 세포는 FACS 완충액 내에서 수세되고 그리고 얼음 상에서 30분 동안 FITC 컨쥬게이트된 항-인간 FCgF(ab')2 절편으로 배양되고, FACS Canto 유동세포분석기 상에서 얻어졌다. 대략적으로 10%의 유관세포가 10㎍에서 가용성 수용체에 결합했다 (도 8D). 정제된 Fc 단백질만이 유관세포에 유의성 있는 결합을 보이지 않아, Toso-Fc 결합이 특이적인 것을 제시한다. 부가적인 상세한 분석은 Toso-Fc가 비장 내 CD11c+MHChi 성숙 수지상 세포 또는 CD11c+B220+ 플라스마시토이드 DCs에 가장 유의성 있게 결합했다는 것을 나타냈다 (도 8E). 이들 데이터는 Toso-Fc 가용성 수용체가 기능성이고, 그리고 Toso에 대한 리간드는 성숙 수지상 세포 상에서 발현될 수 있다는 것을 설명한다.
Toso-Fc 투여의 치료적 실용성은 OVA 유도 천식의 뮤어라인 모델에서 분석되었다. 질환은 완만한 변형으로 상술한 바와 같이 유도되었다. 자성 BALB/c 마우스가 50㎍의 Toso-Fc가 에어로졸 된 OVA 챌린지 전 연속 3일 동안 복강 내로 투여되어 지는 것을 제외하고 기술된 바와 같이 처리되었다 (도 9A). 질환의 심각성은 BALF 내의 Th2 사이토카인 (도 9B), BALF 내 세포질 (도 9C)을 평가함에 의해 분석되었다. Toso-Fc로의 예비치료는 질환 통계를 유의성 있게 무효화하여, Toso-Fc의 투여는 천식의 관리에 유용한 치료 패러다임일 수 있다는 것을 제시한다.
실시예 7: Toso 는 다발성 경화증의 치료에 대해 잠정적인 표적임
실험적 자가면역 뇌염 (EAE)은 인간 MS에 대한 유용한 마우스 모델이다. 이 시스템은 CD4+ TH1/TH17 세포의 항원 의존성 활성화를 포함하고, 모노사이트 세포의 혈관 주위 축적은 탈수초화, 및 뒷다리 마비를 초래한다. C57BL/6 배경이 있어서, EAE는 시간에 따른 질환 증가로 만성적 진행성으로 간주되고, 완전 프로인트 어쥬번트 내 페르투시스 독소로 미엘린 올리고덴드로사이트 글리코프로테인 펩티드인 MOG35-55의 주입을 통하여 유도된다. 질환 심각성은 대략적으로 1개월 동안 매일 0 내지 5로 점수 매겨 진다 (여기서 0 = 질환의 징후 없음, 1 = 꼬리 파행 또는 뒷다리 약화, 그러나 양자 모두는 아님, 2 = 꼬리 파행 및 뒷다리 약화, 3 = 부분적인 뒷 다리 마비, 4 = 완전한 뒷 다리 마비, 5 = EAE에 의한 빈사 상태 또는 죽음).
전술한 MOG-유도 모델에 있어서, Toso-/- 마우스는 야생형 대조군에 비하여 EAE의 발현으로부터 현저하게 보호되었다 (도 6). 이들 데이터는 Toso 작용 차단은 MS에 대한 새로운 치료 방책을 제시할 수 있다는 것을 제안한다.
실시예 8: Toso - Fc 로의 치료는 EAE 의 발현을 지연함
이 실시예는 Toso-Fc (서열번호: 5)로의 치료가 EAE의 발현을 지연한다는 것을 증명한다. 상술된 바와 같이, EAE 마우스 모델은 인간 MS에 대한 유용한 모델이다. 도 23A에 도시된 실험을 위해, C57BL/6 마우스가 질환-유도 MOG 펩티드로 면역화 전에 Toso-Fc로 미리 치료되어 졌다. 면역화 후, 마우스는 30일 동안 주당 삼 회 복강 내로 50㎍ Toso-Fc(또는 대조군 마우스에 대해 PBS)로 처리되어 졌다. 도 23B에 도시된 바와 같이, Toso-Fc는 다발성 경화증에서 Toso-Fc의 효과를 변형하는 것을 보여 주는 EAE의 진행을 지연하였다.
실시예 9: Toso 는 선천성 항균 면역 반응을 감소함
본 실시예는 과립구가 세균 감염 후 Toso 결핍 마우스에서 조기에 활성화되고 병원균의 조절에 필수적이다는 것을 입증한다. Toso 결핍 과립구는 CD11b 및 CD18의 증진된 발현을 입증하였고 낮아진 활성화 임계치를 나타냈다. 이들 결과와 나란히, Toso 결핍성 과립구는 조직 주위 내 염증의 부위에서 감소된 이펙터 작용을 나타냈다. 개변된 과립구 작용의 결과로서, Toso 결핍 마우스는 Toso 결핍 마우스의 이른 죽음을 초래하는 명백한 체계적 리스테리아 감염을 하지 않았다. 따라서, Toso는 과립구의 활성화 임계값 및 이펙터 작용에 영향을 미치고, 따라서 선천성 항균 면역 반응을 결정적으로 감소한다.
재료 및 방법
마우스: 짧은 서열이 마우스 Toso cDNA 서열로부터 유래된 일련의 올리고머를 사용하여 라이브러리 분리된 게놈 DNA 절편을 염기서열 분석함에 의해 얻어졌다. 6.5kbp 절편이 BgIII 레스트릭션 다이제션 효소를 사용하여 5' 말단으로부터 분리되었고 녹아웃 컨스트럭트를 위해 롱 아암으로서 사용되었다. 650bp의 짧은 아암은 유전자의 3' 말단의 서열로부터 유래된 올리고머를 사용하여 중합효소 연쇄반응에 의해 생성되었다(5' GTGAATACGTGAGCTTGGGCTACC 3' 서열번호: 1 및 5' CAAGTGATGG GGGATTACAGTGAA3' 서열번호: 2). 긴 아암 및 짧은 아암은 Toso 트랜스레이션 센스와 같은 방향으로 네오마이신 내성 카셋트의 어느 하나의 말단 상에 결찰된다. 배아 줄기 (ES) 세포 게놈 DNA 안으로 이 녹아웃 컨스트럭트의 사이트 특이적 삽입은 먼저 짧은 아암의 3' 말단의 게놈 DNA 측면 영역 다운스트림 내 및 Neo의 3' 말단 내에 디자인된 프라이머를 사용하여 중합효소 연쇄반응(PCR)에 의하여 분석되어 졌다. 마우스는 프라이머를 사용하여 분석되어 졌다. 공통적인 프라이머(5' TGTTTAATATGATGTGTCAGGCTG 3' 서열번호: 3)가 짧은 아암 영역에 위치되었고, 두 다른 프라이머가 Neo의 3' 영역 (5' AGGGCCAGCTCATTCCTCCCACTCAT 3' 서열번호: 4) 또는 녹아웃 컨스트럭트에 의해 잘려진 DNA의 3' 영역(5' AACTCTGCCCCTGCTCCTTCATTTCC 3' 서열번호: 5)의 하나로부터 있었다. 이렇게 함에 있어 재배열된 대립 유전자로부터 얻어진 밴드는 400bp이고, 선천적 유전자의 것은 450bp이었다. D3 ES 세포는 녹아웃 컨스트럭트로 전기영동되어 지고 300㎍/ml G418의 존재하에 성장되었다. 양성적 ES 클론은 그런 다음 배반포로부터 유래된 E3.5 C57/BL6 안으로 주입되었다. 키메르 오프 스프링이 재배열된 대립 유전자의 존재에 대해 분석되었고 C57BL/6 백그라운드에 대해 역교배되었다. CD11b ^-/- 마우스는 C57BL/6 백그라운드 상에 Jackson으로부터 유래되었다.
골수 키메르 마우스: 마우스는 치명적으로 1050rad으로 조사되고 10⁷ CD45.1 WT 골수 세포, 또는 10⁷ CD45.2 Toso^-/- 골수 세포 또는 5 x 10⁶ CD45.1 WT 골수 세포 플러스 5 x 10⁶ CD45.2 Toso ^-/- 골수 세포의 어느 하나로 재구성되었다. 본 연구에서 사용된 모든 마우스는 C57BL/6 유전 백그라운드 상에 유지되었다. 모든 실험은 단일 환기 우리 안에서 수행되었다.
리스테리아 감염: 리스테리아는 하트 인퓨젼 아가에서 배양되었다. 만일 달리 지시되지 않는다면, 마우스는 2x10⁴ CFU로 정맥 내로 감염되어 진다.
사이토카인 자극 후 과립구 활성화 및 FACS 분석: FACS 염색 및 분석은 기술된 바와 같이 수행되었다(모든 목적을 위해 그리고 특히는 FACS 염색 및 분석에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 여기에 참고로 합체되는, 문헌 「Lang, P.A., et al. Aggravation of viral hepatitis by platelet-derived serotonin. Nat Med 14, 756-761 (2008)」 참고). 재조합 마우스 TNF-α는 R+D 시스템으로부터, LPS는 시그마사로부터 그리고 GM-CSF는 ×63O 세포 상등액으로부터 얻어졌다. 시그마사로부터 fMLP는 지시된 농도로 사용되었다. 활성화 연구를 위해 10㎕ 혈액이 안티 Gr1 (eBiosciences), 디하이드로다민 (Alexis) 및 CD11b (만일 지시된다면, eBiosciences)에 부가하여 다른 사이토카인을 함유하는 100㎕ 배지에서 배양되었다. 배양(만일 달리 지시되지 않았다면 37℃에서)의 30분 또는 45분 후, 과립구는 고정되고 그리고 적혈구는 적혈구 용해 완충액(BD Biociences)을 사용하여 용해되었다. CD11a의 순수한 발현을 위해, CD11b 및 CD18 혈액은 10분 동안 2% 포르말린으로 고정되고, 그런 다음 4℃에서 항 Gr1 및 이에 따른 항체로 염색되었다. Toso 항체는 문헌 「Nguyen, et al., (Blood, 2011, Jul 21, 118(3):598-608)」에 따라 생성되었다.
프라이밍 연구를 위해 과립구는 fMLP의 배양의 15분 후 30분 동안 다른 사이토카인으로 배양되었다.
조직학: 조직학적 분석은 모든 목적을 위해 그리고 특히는 조직학적 분석에 관한 모든 교시를 위해 이들의 전체로 여기에 참고로 합체되는, 문헌 「Lang, K.S., et al. Immunoprivileged status of the liver is controlled by Toll-like receptor 3 signaling. J Clin Invest 116, 2456-2463 (2006)」에 기술된 바와 같은 결빙된 스냅 또는 포르말린 고정 조직 상에서 수행되어 졌다.
MPO ELISA : MPO ELISA는 Hycult biotech 사로부터 구입되고 그리고 제조사의 지시서에 따라 수행되었다.
정량적 RT - PCR 에 의한 mRNA 유전자-프로파일링: RNA 추출 및 cDNA 합성은 Trizol을 사용하여 수행되었다. 유전자 발현 분석은 Applied Biosystems 사로부터의 Toso (Faim3) 키트 Mm01302388_m1을 사용하여 수행되었다. 분석을 위해, 모든 표적 유전자의 발현 준위는 18sRNA (ΔCt)에 대해 정상화되었다. 유전자 발현 값은 ΔCt로 표시되었다.
통계적 분석: 데이터는 평균 S.E.M으로 표시되었다. 두 다른 그룹 사이의 통계적으로 유의성 있는 차이는 스튜던트 t-테스트를 사용하여 분석되었다. 만일 달리 언급되지 않으면 짝짓지 않은 투 웨이(unpaired two way)이다. 몇 가지 그룹을 포함하는 분석은 부가적인 Bonferroni 또는 Dunnett 테스트를 갖는 원-웨이 ANOVA를 사용하여 수행되었다. 다발성 경화증에 걸친 실험 군 사이의 통계학적으로 유의성 있는 차이가 투-웨이 ANOVA(반복된 측정)를 사용하여 계산되었다. p 값 < 0.05는 통계학적으로 유의성 있는 것으로 고려되었다.
Toso는 과립구 상에서 발현되지만 백혈구 분화에 필수적이지 않음
생체 내에서 Toso의 기능적 관련성을 분석하기 위해, 본 발명자 등은 재료 및 방법에서 기술된 바와 같은 Toso 결핍 마우스를 생성하였다. Toso 결핍 마우스는 C57BL/6 백그라운드에 역교배되고 그런 다음 Toso RNA의 발현에 대해 분석되었다.Toso ^-/- 마우스로부터 RT-PCR 분석은 Toso의 결핍을 나타내어, 실제로 Toso가 Toso ^-/- 마우스에서는 발현되지 않는다는 것을 제시한다(도 12a). 다음으로 Toso 단백질은 Toso 특이적 항체를 사용하여 림프구 상에서 분석되었다. T 세포가 아닌 순수 B 세포만이 공개된 문헌과 조화하여 Toso를 발현한다는 것이 밝혀졌다(도 12b). 다음으로, 본 발명자 등은 과립구 상에 Toso의 발현을 분석하였다. 본 발명자 등은 혈액 및 비장 양자에서 과립구가 세포 표면 상에 Toso를 발현하였다는 것을 발견하였다(도 12c). Toso가 림프구 또는 과립구 전개에 영향을 미쳤는가를 분석하기 위해, 본 발명자 등은 Toso ^-/- 마우스의 말초 혈액에서 이들 세포 개체군을 분석하였다. Toso ^-/- 마우스는 혈액 과립구 안에서 어떠한 현저한 차이를 나타내지 않았다 (도 12d). 감소된 B 세포 수에 기여하는 것으로 여겨지는 Toso 결핍 마우스에서의 혈액 림프구 수의 어느 정도 유의성 있는 감소가 있었다 (도 12d 및 e). Toso ^-/- 마우스의 비장 크기는 정상이었고 비장 림프구는 정상 분포를 나타내어 (도 12f 및 g) 면역 세포의 전개에 Toso의 주요한 역할이 없다는 것을 제시한다.
3. 활성화를 위한 임계값이 Toso 결핍 마우스의 과립구에서 감소됨
Toso ^-/- 마우스 및 야생형 마우스로부터의 과립구가 과립구 활성자 N-포르밀메티오닐-렌실-페닐알라닌 (fMLP)으로 활성화되어 졌다. fMLP는 과립구 상에 fMLP 수용체를 활성화하여, 병원체 접촉을 모방한다. 미리-활성화된 과립구에 있어서 fMLP와의 접촉은 탈과립 및 활성산소종 (ROS)의 강력한 생성을 초래한다. 반대로 사이토카인에 의해 미리 활성화되지 않은 과립구는 fMLP에 대해 제한된 반응을 보였다. 단지 10%의 야생형 과립구만이 탈과립 및 ROS의 생성에 의해 분석될 때 fMLP로 처리에 의해 활성화되었다 (도 13a). 반대로, fMLP로의 처리는 Toso ^-/- 과립구의 50%를 활성화했다 (도 13a).
다음으로 Toso ^-/- 마우스 과립구의 ROS 생성 및 탈과립이 통상적으로 단지 과립구를 증대하지만 ROS 생성을 이끌지 않는 TNF-α로의 처리에 따라 분석되었다. TNF-α로의 처리는 WT 과립구 내에 ROS 생성이 사실상 부재하도록 이끌었다 (도 13b). 반대로 Toso ^-/- 과립구는 TNF-α로의 처리 후 유의성 있는 ROS 생산/탈과립화된 과립구를 나타내어, Toso가 과립구 활성화의 임계값에 영향을 미치는 것을 제시한다 (도 13b). 과립구를 증대하는 것으로 또한 알려진 LPS 및 GM-CSF로의 처리는 야생형에서 뿐 아니라 Toso^-/- 과립구에서도 ROS를 활성화하지 않았다 (도 13c 및 d). 이들 결과는 Toso^-/- 과립구가 fMLP 및 TNF-α 양자에 대한 보다 낮은 활성화 임계값을 가진다는 것을 보여준다. fMLP와 함께 GM-CSF 또는 LPS의 공동-처리는 WT 과립구에서 10배의 ROS 생성 야생형 과립구의 백분율을 증가했다 (도 13e). ROS 생성 과립구의 백분율은 LPS 뿐만 아니라 GM-CSF 증대된 fMLP 공동-처리된 Toso^-/- 과립구에서 또한 증가되었다 (도 13e). 이들 결과는 Toso^-/- 과립구가 GM-CSF 또는 LPS로 증대한 과립구의 셋팅에 있어서 또한 낮아진 활성화 임계값을 나타냈다는 것을 보여준다. 이것은 Toso^-/- 과립구가 일반적으로 감소된 활성화 임계값을 가진다는 것을 제시한다.
세포질의 스트레스는 (자가)면역성 질환에 유의성 있게 기여하는 것으로 여겨지는 과립구를 활성화할 수 있다. Toso^-/- 과립구가 이러한 활성화에 보다 경향이 있는지를 분석하기 위해, 야생형 (WT) 및 Toso^-/- 과립구가 다른 온도에서 배양되었다. 야생형 과립구는 어떠한 반응도 보이지 않은 조건인, 온도 감소는 Toso^-/- 과립구의 30%에서 탈과립을 유도하였다 (도 13f). 활성화 임계값에서의 차이는 WT와 Toso^-/- 과립구 사이의 수명에 있어서 차이에 의해 설명되어 질 수 있다. 과립구는 통상적으로 생체 외 배양 후 24시간 내에 자발적 세포자멸에 의해 강조된 아주 한정된 수명을 가진다. 과립구 활성화는 일반적으로 연장된 수명 및 감소된 세포자멸에 연결된다. 그러나, Toso^-/- 및 WT 과립구 사이에 자발적 세포자멸에서의 차이는 없었다 (도 17). GM-CSF로의 처리는 과립구 내에 Toso에 의존하지 않는 프로세스인 세포자멸를 감소했다 (도 17). 이 데이터는 Toso 단백질의 발현이 염증성 또는 스트레스 신호를 고려할 때 휴지 비-활성화된 상태에 과립구를 유지하는 것을 입증한다.
과립구에서 활성화 임계값은 본질적으로 조절됨
Toso^-/- 마우스로부터 유래된 과립구는 야생형 과립구에 비교할 때 이펙터 표현형 안으로 분화에 대해 낮아진 임계값을 가진다. 본질적 조절 외에, 과립 성 백혈구 활성화는 여러 외인성 체액성 요인(사이토카인, 항체, 보체 인자 같은 것) 뿐만 아니라 B 세포, T 세포, 내피세포 또는 혈소판과 같은 주변 세포의 활성화 상태에 의해 영향을 받는다. Toso^-/- 마우스로부터 유래된 과립구의 낮아진 활성화 임계값의 메카니즘에 대한 더 많은 통찰을 얻기 위해, 혼합된 골수 키메라가 분석되었다. C57BL/6 마우스는 방사선 조사되고 그런 다음 WT, Toso^-/- 또는 혼합된 WT/Toso^-/-(비율 1:1) 골수의 어느 하나로 재구성되었다. WT 골수는 CD45.1 이소폼의 발현에 의해 키메라 마우스 안에서 별도로 추적되어 질 수 있다 (도 14a). 이 혼합된 골수 키메라는 동일한 마우스로부터 유래된 WT 및 Toso^-/- 과립구의 활성화 임계값의 분석을 가능하게 했다. 활성화 임계값(특히는 혼합된 키메라 마우스에서의 것)에서 관찰된 차이는 Toso가 본질적으로 과립구의 활성화를 조절한다는 것을 제시한다. 골수 이식 30일 후 골수 키메라의 분석은 Toso^-/- 과립구가 과립구의 전개에 있어 Toso의 주요한 역할이 없다는 것을 다시 제안하는 WT 과립구와 같은 수로 재구성되었다는 것을 나타냈다 (도 14b). 혼합된 키메라에 있어 전체 과립구 (WT 및 Toso ^-/- )는 단일 마우스 스트레인으로부터 골수를 수취한 마우스에 필적할 만 했다 (도 14b). 혼합된 골수 키메라의 경쟁적 셋트에서 WT 대 Toso^-/- 과립구의 현저한 이점은 없었다 (도 14b).
다음으로 키메라에서 WT 대 Toso^-/- 과립구의 활성화 임계값이 분석되었다. fMLP로의 처리는 골수 이식을 받은 마우스에서 보다 많은 과립구를 활성화하며 (도 14a 대 도 13a), 이는, 본 잠정적 메카니즘에 제한됨이 없이, 골수 이식을 수령한 마우스에서 다른 사이토카인 수준에 기인될 수 있다. Toso^-/- 마우스로부터 유래된 데이터에 비교하여, Toso^-/- 골수로 재구성된 C57BL/6 마우스는 낮아진 활성화 임계값을 나타냈다 (도 14c). 이것은 또한 혼합된 골수 키메라에서 관찰되었다 (도 14c). 이것은 Toso가 본질적으로 과립구의 활성화 임계값에 영향을 미쳤다는 것을 제시한다
부가하여 Toso가 이펙터 작용의 강도에 영향을 미치는지를 결정하기 위해, 활성화된 WT 및 활성화된 Toso^-/- 과립구의 ROS 생성 양이 결정되었다. 활성화된 WT 과립구는 활성화된 Toso ^-/- 과립구보다 유의성 있게 많은 ROS 생성을 나타냈다 (도 14d). 이들 데이터는 Toso가 과립구의 활성화 임계값을 고양했다는 것을 보여준다. 일단 과립구가 활성화되면, 이들은 Toso의 존재에서 고양된 이펙터 기능을 나타냈다.
Toso 결핍 마우스에서 리스테리아의 손상된 조절
생체 내에서 박테리아 조절에 대한 과립구 내 Toso의 결핍 영향이 평가되었다. 그람 양성 리스테리아 단핵세포 유전자로 감염은 특히 과립구의 빠른 활성화에 크게 의존한다. 치사량에 가까운 복용량의 리스테리아로 감염은 Toso가 박테리아의 제어에 필수적인 것을 제시하는, Toso ^-/- 마우스에서 증가된 죽음을 유도했다 (도 15a). Toso ^-/- 마우스 내 혈액 과립구는 리스테리아 접종 2일 후 고양된 탈고립 및 ROS 생성을 보였다 (도 15b). 이것은 Toso ^-/- 마우스의 혈청 내 마엘로퍼옥시다제의 고양된 방출과 상관된다 (도 15c).
하나의 가능성은 Toso ^-/- 과립구가 혈액 내에서 빠르게 활성화되지만, 그러나 감염된 장기 내에서 이들의 전체 블로운 이펙터 기능을 발휘할 수 없을 것이다는 것이다. 이 가설을 분석하기 위해, 감염된 야생형 또는 Toso ^-/- 마우스가 2 x 10⁶ CFU의 리스테리아로 감염되었고 그리고 조직학이 20시간 후에 분석되었다. 육아종이 WT 및 Toso ^-/- 마우스 양자에서 발견되어 (도 15d), Toso가 육아종 형성에 포함되지 않는다는 것을 제시한다. 리스테리아에 대한 염색은 육아종에서 고양된 박테리아를 나타내어 (도 15d), 육아종에서 이펙터 기능이 Toso에 의해 영향을 받는다는 것을 제시한다.
장기 내 감염 일일 후 과립구의 분석은 감소된 이펙터 기능을 나타냈고 (도 15e) 그리고 리스테리아 성장은 Toso ^-/- 마우스의 간과 비장에서 유의성 있게 고양되었다 (도 15f). 이것은 혈액 안으로 리스테리아의 확산 (도 18) 및 최종적으로 아마도 리스테리아 감염 Toso ^-/- 마우스의 죽음에 대한 이유가 되는, 뇌로 리스테리아의 확산 (도 15f)과 연계된다. 이들 데이터는 Toso ^-/- 마우스가 리스테리아 감염에 고양된 민간성을 나타냈다는 것을 보여준다. 이것은 혈액 내에 고양된 과립구 활성화, 간 및 비장에서의 감소된 이펙터 기능 및 뇌로의 리스테리아의 확산과 상관된다.
Toso는 과립구 상에서 표면 CD11b 및 CD18 발현을 조절함
Toso 겹핍성 과립구는 혈액 냉에서 고양된 활성화를 나타냈지만, 조직 내에서는 과립구의 감소된 이펙터 기능을 나타냈다. 이 표현형은 인테그린의 다른 발현 및/또는 다른 신호화에 잘 적합한다. CD11a, CD11b 및 CD18은 과립구 활성화에 대해 중요한 인테그린이다. 따라서, CD11a, CD11b 및 CD18의 발현은 WT 및 Toso ^-/- 과립구에 비교되어 졌다. 순수 Toso 결핍 과립구 상에 CD11b 및 CD18의 유의성 있게 고양된 발현이 있었다 (도 16a). CD11a의 발현은 WT와 Toso ^-/- 과립구 사이에 유의성 있게 다르지 않았다 (도 16a). GM-CSF 또는 LPS로의 활성화에 의해, CD11b 발현이 WT 및 Toso ^-/- 과립구 양자에서 상향 조절되었지만, 그러나 발현의 차이는 LPS 및 GM-CSF 농도를 증가함으로 감소하였다 (도 16b). LPS 및 GM-CSF는 fMLP에 의해 과립구의 활성화 임계값을 감소했다. 따라서 WT 및 Toso ^-/- 과립구 사이에서 CD11b 발현의 차이는 아마도 다른 활성화 임계값을 설명할 수 있었다. 실제로 CD11b 발현이 활성화 임계값의 조절에 포함되어지는 지를 알아보기 위해, 본 발명자 등은 계 안에서의 CD11b의 역할을 분석하였다. 기대된 바와 같이, CD11b의 결핍은 CD18의 감소된 발현을 유도했다 (도 16c). Cd11b ^-/- 과립구는 GM-CSF와 함께 fMLP로의 처리에 의해 감소된 활성화 및 ROS 생성을 나타냈다 (도 16d). 이들 데이터는 Toso ^-/- 과립구가 과립구의 활성화 임계값에 영향을 미치는 인테그린인 CD11b의 고양된 기초적 발현을 나타냈다는 것을 보여준다. 이들 발견은 Toso의 부재에서 감소된 활성화 임계값으로 Toso ^-/- 백혈구에서 고양된 CD11b 발현에 연결된다.
실시예 10: Toso는 글루코스 내성 및 인슐린 민감성에서 역할을 담당함
본 실시예는 Toso가 글루코스 내성 및 인슐린 민감성에서 역할을 담당한다는 것을 입증한다. 도 19는 Toso^-/- 마우스가 고지방 다이어트의 개시 후 정상적인 음식 섭취와 체중을 가지는 것을 보여준다. 도 19A에서 실험을 위해, 고 지방 다이어트의 개시(5주령에서 시작) 이래로 WT 및 Toso^-/- 웅성 마우스가 모니터되었다. 도 19B를 위해, 음식 섭취가 고지방 다이어트 14주 후에 평가되었다. 음식 섭취는 동물을 단독으로 수용함에 의해, 시작시 및 2일 기간의 종단에서음식 중량에의 차이의 결정으로 평가되어 졌다.
도 20에 도시된 바와 같이, Toso^-/- 마우스는 10-13주 동안 고 지방 다이어트되어 진 후 야생형 마우스에 비하여 고양된 글루코스 및 인슐린 민감성을 가졌다. 글루코스 내성 시험은 5주령 이래로 10-13주 동안 고 지방 다이어트로 사육된 야생형 및 Toso^-/- 마우스로 수행되었다(유사한 결과가 자성 마우스 그룹에도 얻어졌음). 인슐린 내성 시험은 5주령 이래로 10-13주 동안 고 지방 다이어트로 사육된 야생형 및 Toso^-/- 마우스로 수행되었다
글루코스 내성 시험은 복강 내로(i.p.) 주입된 체중당 글루코스 복용량 1g/kg으로 하고 그리고 주사 후 0, 15, 30, 60, 및 120 분에서 글루코스 준위의 측정을 이용하여, 9:30 내지 11:30 a.m. 사이에 밤새 절식된 동물에 대해 수행되었다.
인슐린 내성 시험은 체중당 복용량 0.5 U/kg으로 인간 정기적 인슐린(Humalog)을 이용하여, 9:30 및 11:30 a.m. 사이에 밤새 절식된 동물에 대해 또는 1:00-3 p.m. 사이에 4.5-시간 절식된 동물에 대해 수행되었고, 그리고 혈당는 주입 후 0, 15, 30, 45, 및 60 분에서 측정되었다.
고 지방 다이어트 사육 마우스에 대비하여, 도 21은 양 셋트의 마우스가 10-13주 동안 정기적 음식 섭취로 사육될 때 Toso^-/- 가 야생형 마우스에 유사한 글루코스 내성 및 인슐린 민감성을 가지는 것을 나타낸다. 글루코스 내성 시험은 정기적 음식으로 사육된 야생형 및 Toso^-/- 웅성 마우스(15-18 주령)로 수행되었다. 인슐린 내성 시험은 정기적 음식으로 사육된 야생형 및 Toso^-/- 웅성 마우스(15-18 주령)로 수행되었다. 도 21은 이론에 의해 제한됨이 없이 Toso-결핍의 보호적 효과는 고 지방 다이어트를 필요하다는 것을 제시한다. 글루코스 내성 시험은 복강 내로(i.p.) 주입된 체중당 글루코스 복용량 1g/kg으로 하고 그리고 주사 후 0, 15, 30, 60, 및 120 분에서 글루코스 준위의 측정을 이용하여, 9:30 내지 11:30 a.m. 사이에 밤새 절식된 동물에 대해 수행되었다. 인슐린 내성 시험은 체중당 복용량 0.5 U/kg으로 인간 정기적 인슐린(Humalog)을 이용하여, 9:30 및 11:30 a.m. 사이에 밤새 절식된 동물에 대해 또는 1:00-3 p.m. 사이에 4.5-시간 절식된 동물에 대해 수행되었고, 그리고 혈당는 주입 후 0, 15, 30, 45, 및 60 분에서 측정되었다.
실시예 11: 가용성 Toso로 처리는 고 지방 다이어트로 사육된 야생형 마우스에서 글루코스 내성을 개선함
본 실시예는 가용성 Toso 단백질 (서열번호: 5)로 처리는 14주 동안 고 지방 다이어트로 사육된 야생형 마우스에서 글루코스 내성을 개선했다는 것을 증명한다. 도 22A는 가용성 Toso 처리 전 야생형 웅성 마우스로부터의 데이터를 나타낸다. 글루코스 내성 시험은 5주령 이래로 14주 동안 고 지방 다이어트(60% 지방 칼로리)로 사육된 절식된 야생형 마우스로 수행되었다. 도 22B는 가용성 Toso 처리 후 야생형 마우스로부터의 데이터를 나타낸다. 마우스(14주 동안 고 지방 다이어트)는 0, 2, 5, 7, 9, 및 12일에 복강 내로 50㎍의 복용량으로 가용성 Toso-hIgG로 처리되었다. 글루코스 내성 시험은 밤 세워 절식 후 14일에 수행되었다. 가용성 Toso 단백질 치료의 경과 중, 마우스는 고 지방 다이어트가 지속되었다. 글루코스 내성 시험은 복강 내로(i.p.) 주입된 체중당 글루코스 복용량 1g/kg으로 하고 그리고 주사 후 0, 15, 30, 60, 및 120 분에서 글루코스 준위의 측정을 이용하여, 9:30 내지 11:30 a.m. 사이에 밤새 절식된 동물에 대해 수행되었다.
실시예 12: 인간 및 마우스 Toso - Fc 를 분비하는 안정한 세포 라인의 발생
Toso-Fc 인토딩 cDNAs는 리포펙타민 2000을 사용하여 착생 HEK293T 세포 안으로 형질도입된다. 단일 클론이 10% 송아지 태반 혈청 및 0.2 mg/ml 제오신(Zeocin)으로 보충된 DMEM 배지에 선택되어 졌다. 고 발현 클론이 15cm 디쉬로 확대되고 그리고 컨플루언스에서 1:2로 분할되었다. 각 분할에서, 안정한 형질도입자는 세포를 무혈청 성장에 대해 맞도록 하기 위해 연속적으로 보다 많은 무혈청 프리스타일 배지 및 연속적으로 보다 적은 DMEM /FBS 배지로 되는 배지에서 배양되었다. (예를 들어- 분할 1에서 90% DMEM/FBS 10% 프리스타일 → 분할 10에서 100% 프리스타일). 무혈청 배지에서 성장하도록 조절된 안정한 형질도입자는 생존력에서의 손실 없이 오비탈 쉐이커 인큐베이터(37℃, 8% CO2, 125 rpm) 내 현탁액에서 성장했다.
본 명세서는 여기에-서술된 기술의 예시적인 측면에서 방법론, 시스템 및/또는 구조 및 이들의 용도의 완전한 설명을 제공한다. 비록 본 기술의 다양한 측면이 어떤 특별한 정도로, 또는 하나 또는 그 이상의 개개의 측면을 참고로 상술되어 졌지만, 이 기술분야에서의 통상인은 여기의 기술의 정신 또는 범주로부터 벗어남이 없이 개시된 측면에 대한 다수의 변형을 만들 수 있다. 많은 측면은 본 기재 기술의 사상 및 범위를 벗어나지 않고 이루어질 수 있기 때문에, 적절한 범위는 이하 첨부된 청구범위로 된다. 따라서 다른 측면도 고려된다. 더욱이, 명시적으로 달리 요구되지 않거나 또는 특정 순서가 본질적으로 청구 언어에 의해 필요로 하지 않는다면, 어떤 조작은 임의의 순서로 수행될 수 있다는 것으로 이해되어야 한다. 상기 상세한 설명에 포함되고 첨부 도면에 도시된 모든 사항은 단지 특별한 태양을 설명하기 위한 것으로 해석되어야 하고 개시된 실시형태에 한정되지 않는 것으로 의도된다. 그렇지 않으면 문맥으로부터 명백하거나 또는 명백하게 언급되지 않는 한, 여기에 제공된 농도 값은 혼합물의 특정 성분의 첨가에 의해 또는 첨가에 따라 일어나는 어떤 전환에 관계없이 혼합물 값 또는 백분율의 관점에서 일반적으로 주어진다. 이미 명백히 여기에 합체되지 않은 정도까지, 본 개시에 언급된 모든 공개된 참고 문헌 및 특허 문헌은 모든 목적을 위해 그 전체로 여기에 참고로 합체된다. 상세 또는 구성의 변경은 다음의 청구범위에서 정의된 바와 같이, 본 기술의 기본 요소들로부터 벗어나지 않고 이루어질 수 있다.

SEQUENCE LISTING <110> University Health Network Tusche, Michael W. Mak, Tak W. Ohashi, Pamela S. Lang, Philipp Lang, Karl Brenner, Dirk Lin, Gloria <120> METHODS AND COMPOSITIONS FOR MODULATING TOSO ACTIVITY <130> 011506-5001-WO <140> PCT/IB13/01179 <141> 2013-03-14 <150> US 61/612,183 <151> 2012-03-16 <150> US 61/646,143 <151> 2012-05-11 <150> US 61/731,428 <151> 2012-11-29 <160> 30 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 243 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> soluble Toso protein <400> 1 Ile Ser Ala Met Val Arg Ser Arg Ile Leu Pro Glu Val Lys Val Glu 1 5 10 15 Gly Glu Leu Gly Gly Ser Val Thr Ile Lys Cys Pro Leu Pro Glu Met 20 25 30 His Val Arg Ile Tyr Leu Cys Arg Glu Met Ala Gly Ser Gly Thr Cys 35 40 45 Gly Thr Val Val Ser Thr Thr Asn Phe Ile Lys Ala Glu Tyr Lys Gly 50 55 60 Arg Val Thr Leu Lys Gln Tyr Pro Arg Lys Asn Leu Phe Leu Val Glu 65 70 75 80 Val Thr Gln Leu Thr Glu Ser Asp Ser Gly Val Tyr Ala Cys Gly Ala 85 90 95 Gly Met Asn Thr Asp Arg Gly Lys Thr Gln Lys Val Thr Leu Asn Val 100 105 110 His Ser Glu Tyr Glu Pro Ser Trp Glu Glu Gln Pro Met Pro Glu Thr 115 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Sequence <220> <223> soluble Toso protein <400> 24 Met Tyr Arg Met Gln Leu Leu Ser Cys Ile Ala Leu Ser Leu Ala Leu 1 5 10 15 Val Thr Asn Ser Ile Ser Ala Met Val Arg Ser Arg Ile Leu Pro Glu 20 25 30 Val Lys Val Glu Gly Glu Leu Gly Gly Ser Val Thr Ile Lys Cys Pro 35 40 45 Leu Pro Glu Met His Val Arg Ile Tyr Leu Cys Arg Glu Met Ala Gly 50 55 60 Ser Gly Thr Cys Gly Thr Val Val Ser Thr Thr Asn Phe Ile Lys Ala 65 70 75 80 Glu Tyr Lys Gly Arg Val Thr Leu Lys Gln Tyr Pro Arg Lys Asn Leu 85 90 95 Phe Leu Val Glu Val Thr Gln Leu Thr Glu Ser Asp Ser Gly Val Tyr 100 105 110 Ala Cys Gly Ala Gly Met Asn Thr Asp Arg Ser Val Glu Cys Pro Pro 115 120 125 Cys Pro Ala Pro Pro Val Ala Gly Pro Ser Val Phe Leu Phe Pro Pro 130 135 140 Lys Pro Lys Asp Thr Leu Met Ile Ser Arg Thr Pro Glu Val Thr Cys 145 150 155 160 Val Val Val Asp Val Ser His Glu Asp Pro Glu Val Lys Phe Asn Trp 165 170 175 Tyr Val Asp Gly Val Glu Val His Asn Ala Lys Thr Lys Pro Arg Glu 180 185 190 Glu Gln Tyr Asn Ser Thr Tyr Arg Val Val Ser Val Leu Thr Val Leu 195 200 205 His Gln Asp Trp Leu Asn Gly Lys Glu Tyr Lys Cys Lys Val Ser Asn 210 215 220 Lys Gly Leu Pro Ser Ser Ile Glu Lys Thr Ile Ser Lys Ala Lys Gly 225 230 235 240 Gln Pro Arg Glu Pro Gln Val Tyr Thr Leu Pro Pro Ser Arg Glu Glu 245 250 255 Met Thr Lys Asn Gln Val Ser Leu Thr Cys Leu Val Lys Gly Phe Tyr 260 265 270 Pro Ser Asp Ile Ala Val Glu Trp Glu Ser Asn Gly Gln Pro Glu Asn 275 280 285 Asn Tyr Lys Thr Thr Pro Pro Val Leu Asp Ser Asp Gly Ser Phe Phe 290 295 300 Leu Tyr Ser Lys Leu Thr Val Asp Lys Ser Arg Trp Gln Gln Gly Asn 305 310 315 320 Val Phe Ser Cys Ser Val Met His Glu Ala Leu His Asn His Tyr Thr 325 330 335 Gln Lys Ser Leu Ser Leu Ser Pro Gly Lys 340 345 <210> 25 <211> 7 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> soluble Toso protein <400> 25 Ile Ser Ala Met Val Arg Ser 1 5 <210> 26 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic oligomer <400> 26 gtgaatacgt gagcttgggc tacc 24 <210> 27 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic oligomer <400> 27 caagtgatgg gggattacag tgaa 24 <210> 28 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 28 tgtttaatat gatgtgtcag gctg 24 <210> 29 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 29 agggccagct cattcctccc actcat 26 <210> 30 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 30 aactctgccc ctgctccttc atttcc 26

Claims (50)

1. 서열번호: 5 또는 서열번호: 6의 폴리펩티드를 포함하는, 대상자에서 자가면역 질환을 치료하기 위한 조성물.
2. 제1항에 있어서, 상기 폴리펩티드는 다량체인, 조성물.
3. 제2항에 있어서, 상기 다량체는 6개의 단량체를 포함하고, 여기서 각 단량체는 서열번호: 6에 따른 서열을 포함하는, 조성물.
4. 제1항의 폴리펩티드를 인코딩하는 분리된 핵산.
5. 제1항의 폴리펩티드를 인코딩하는 핵산을 포함하는 숙주 세포.
6. 인간 Toso 단백질의 세포질 외의 도메인, Fc 영역 및 신호 서열을 포함하는, 융합 단백질로서, 상기 세포질 외의 도메인은 서열번호 7의 아미노산 18-253을 포함하는, 융합 단백질.
7. 제6항에 있어서, 상기 신호 서열은 외인성 IL-2 서열인, 융합 단백질.
8. 제6항의 융합 단백질을 인코딩하는 분리된 핵산.
9. 제6항의 융합 단백질을 인코딩하는 핵산을 포함하는 숙주 세포.
10. 제6항에 따른 융합 단백질을 생산하는 방법으로서,
    상기 방법은 상기 융합 단백질을 인코딩하는 핵산을 포함하는 세포를 제공하는 단계를 포함하며,
    상기 세포는 상기 융합 단백질의 발현에 적절한 조건 하에서 배양되는, 방법.
11. 제6항의 융합 단백질을 인코딩하는 핵산.
12. 서열번호: 5 또는 6에 따른 폴리펩티드를 생산하는 방법으로서,
    상기 방법은 상기 폴리펩티드를 인코딩하는 핵산을 포함하는 세포를 제공하는 단계를 포함하며,
    상기 세포는 상기 폴리펩티드의 발현에 적절한 조건 하에서 배양되는, 방법.
13. 서열번호: 5 또는 6에 따른 폴리펩티드를 인코딩하는 핵산.
14. 서열번호: 5 또는 6에 따른 폴리펩티드를 인코딩하는 핵산을 포함하는 숙주 세포.
15. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 자가면역 질환이 류마티스 관절염, 다발성 경화증, 루푸스, 및 타입 1 당뇨병에서 선택되는 것인, 조성물.
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