KR101943494B1 - Species-specific primers for the diagnosis of the genus Lactobacillus and uses thereof - Google Patents

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KR101943494B1
KR101943494B1 KR1020180153562A KR20180153562A KR101943494B1 KR 101943494 B1 KR101943494 B1 KR 101943494B1 KR 1020180153562 A KR1020180153562 A KR 1020180153562A KR 20180153562 A KR20180153562 A KR 20180153562A KR 101943494 B1 KR101943494 B1 KR 101943494B1
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김은배
유인환
정우빈
박종빈
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강원대학교산학협력단
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Abstract

The present invention relates to a specific primer to diagnose or detect microorganisms in lactobacillus species, and uses thereof and, more specifically, to: a primer set capable of specifically diagnosing or detecting each of six kinds of microorganisms in lactobacillus species (L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus, L. jensenii, L. crispatus, and L. gallinarum); a composition for the species-specific detection of microorganisms in lactobacillus species including the same; a diagnostic kit; and a method for the species-specific detection of microorganisms in lactobacillus species using the same. According to the present invention, the primer set is able to specifically detect or diagnose each of six kinds of microorganisms in lactobacillus species and thus, is able to quickly and accurately identify the kind of microorganisms in lactobacillus species, having risk of wrong identification since distinguishing species is difficult due to similar shapes and colors, by using the specific detection or diagnosis. The primer set for the species-specific detection of L. crispatus species in lactobacillus species includes a pair of primers represented in sequence number 9 and sequence number 10.

Description

락토바실러스 속 진단용 종-특이적 프라이머 및 이의 용도{Species-specific primers for the diagnosis of the genus Lactobacillus and uses thereof}[Species-specific primers for the diagnosis of the genus Lactobacillus and uses thereof]

본 발명은 락토바실러스(Lactobacillus) 속 미생물의 진단 또는 검출을 위한 특이 프라이머 및 이의 용도에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 락토바실러스 속 미생물 6종(L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus, L. jensenii, L. crispatus, 및 L. gallinarum) 각각을 특이적으로 진단 또는 검출할 수 있는 프라이머 세트; 이를 포함하는 락토바실러스 속 미생물 종-특이적 검출용 조성물; 진단 키트; 및 이를 이용한 락토바실러스 속 미생물 종-특이적 검출 방법에 관한 것이다.The present invention relates to specific primers for diagnosis or detection of microorganisms in the genus Lactobacillus and their use, and in more detail, 6 species of microorganisms in the genus Lactobacillus ( L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus, L. jensenii) , L. crispatus, and L. gallinarum ) a set of primers capable of specifically diagnosing or detecting each; Lactobacillus genus microorganism species-specific detection composition comprising this; Diagnosis kit; And it relates to a microorganism species-specific detection method using the Lactobacillus genus.

락토바실러스(Lactobacillus) 종(species)은 식품 및 동물과 사람의 소화기관이나 여성의 질내에서 발견된다. 젖산을 생성하여 요거트, 유산균음료, 김치, 장류, 치즈 등의 식품을 발효시키는데 중요한 역할을 하며, 다른 병원성 미생물에 대한 항균활성을 가지기 때문에 우리몸의 항상성을 유지하는데 도움을 준다. Lactobacillus bacteria (Lactobacillus) species (species) are found in the vagina of the female digestive system and of food and animal and man. By producing lactic acid, it plays an important role in fermenting foods such as yogurt, lactic acid bacteria drink, kimchi, paste, and cheese, and it helps to maintain homeostasis of our body because it has antibacterial activity against other pathogenic microorganisms.

여러 락토바실러스 종들이 대장 관련 질환, 피부 질환 등에서 효과가 있다는 것은 수 많은 연구를 통해 입증되었다. It has been proven through numerous studies that several Lactobacillus species are effective in colon-related diseases and skin diseases.

일부 락토바실러스 균주(strain)들은 발효식품이나 동물사료의 생산시에 스타터 컬처(starter culture)로서 사용되기도 한다.Some Lactobacillus strains are also used as starter cultures in the production of fermented foods or animal feeds.

그러나, 유산균이 함유된 제품에서 유전적으로 비슷한 성질을 가지는 락토바실러스를 분리 및 동정하기 위해서는 많은 시간과 비용이 필요하다. However, it takes a lot of time and cost to isolate and identify Lactobacillus having similar genetic properties from products containing lactic acid bacteria.

이에 따라, 유전적 성질이 비슷한 락토바실러스 종들을 정확하고 간단하게 동정할 수 있는 새로운 기술 개발의 필요성은 항시 존재하고 있는 실정이었다.Accordingly, there has always been a need to develop a new technology that can accurately and simply identify Lactobacillus species with similar genetic properties.

본 발명은 상기한 문제점을 해결하기 위한 것으로, 락토바실러스 속 미생물 6종(L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum) 각각을 특이적으로 진단 또는 검출할 수 있는 프라이머 세트를 제공하는 것이 목적이다.The present invention is to solve the above problems , and specifically diagnose each of the six species of microorganisms in the genus Lactobacillus (L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum), respectively. Or it is an object to provide a set of detectable primers.

본 발명의 다른 목적은 상기 프라이머 세트를 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출용 조성물을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a composition for species-specific detection of microorganisms of the genus Lactobacillus comprising the primer set.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 조성물을 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출 키트를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a kit for species-specific detection of microorganisms of the genus Lactobacillus comprising the composition.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 프라이머 세트를 이용하여 락토바실러스 속 미생물의 다양한 종(L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus, 및 L. gallinarum)을 효과적으로 검출하는 방법을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to effectively detect various species of microorganisms of the genus Lactobacillus ( L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus, and L. gallinarum) using the primer set. Is to provide a way.

상기한 목적을 달성하기 위한 본 발명은 서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제1 프라이머 쌍; 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제2 프라이머 쌍; 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제3 프라이머 쌍; 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제4 프라이머 쌍; 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제5 프라이머 쌍; 또는 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제6 프라이머 쌍;을 포함하는, 락토바실러스(Lactobacillus) 속 미생물의 종-특이적 검출용 프라이머 세트이다.The present invention for achieving the above object is a first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A third primer pair represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; Or a sixth primer pair represented by SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; including, Lactobacillus ( Lactobacillus ) is a species-specific primer set for detection of microorganisms.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 락토바실러스 속 미생물은 L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum 로 이루어진 군으로부터 선택되는 종(species)인 것이 가능하다. As an embodiment of the present invention, the microorganism of the genus Lactobacillus is a species selected from the group consisting of L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum. It is possible.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 제1 프라이머 쌍은 1,200bp 내지 1,300bp의 L. gassei 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, the first primer pair may be to amplify the L. gassei species-specific PCR product of 1,200 bp to 1,300 bp.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 제2 프라이머 쌍은 800bp 내지 850bp의 L. acidophilus 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, the second primer pair may be to amplify the L. acidophilus species-specific PCR product of 800 bp to 850 bp.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 제3 프라이머 쌍은 650bp 내지 700bp의 L. helveticus 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, the third primer pair may be to amplify the L. helveticus species-specific PCR product of 650 bp to 700 bp.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 제4 프라이머 쌍은 500bp 내지 550bp의 L. jensenii 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, the fourth primer pair may be to amplify the L. jensenii species-specific PCR product of 500 bp to 550 bp.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 제5 프라이머 쌍은 350bp 내지 400bp의 L. crispatus 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, the fifth primer pair may be to amplify the L. crispatus species-specific PCR product of 350 bp to 400 bp.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 제6 프라이머 쌍은 200bp 내지 250bp의 L. gallinarum 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, the sixth primer pair may amplify a L. gallinarum species specific PCR product of 200 bp to 250 bp.

또한, 본 발명은 상기한 프라이머 세트를 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출용 조성물을 제공한다.In addition, the present invention provides a composition for species-specific detection of microorganisms of the genus Lactobacillus comprising the above primer set.

또한, 본 발명은 상기한 조성물을 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출 키트를 제공한다.In addition, the present invention provides a species-specific detection kit of a microorganism of the genus Lactobacillus comprising the above composition.

또한, 본 발명은 (a) 시료에서 락토바실러스 속 미생물 게놈 DNA를 추출하는 단계; (b) 상기 추출된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 (c) 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출 방법을 제공한다.In addition, the present invention (a) extracting the genomic DNA of the microorganism of the genus Lactobacillus from the sample; (b) using the extracted genomic DNA as a template and performing PCR using the primer set according to claim 1 or 2 to amplify the target sequence; And (c) it provides a species-specific detection method of a microorganism of the genus Lactobacillus comprising the step of detecting the amplification product.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 락토바실러스 속 미생물은 L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum 로 이루어진 군으로부터 선택되는 종(species)인 것이 가능하다.As an embodiment of the present invention, the microorganism of the genus Lactobacillus is a species selected from the group consisting of L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum. It is possible.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 PCR을 수행하는 것은, 55℃ 내지 65℃ 범위 내의 온도에서 어닐링(annealing)을 수행하는 것일 수 있다.As an embodiment of the present invention, performing the PCR may be performing annealing at a temperature within the range of 55°C to 65°C.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 증폭 산물의 검출은 DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행될 수 있다.As an embodiment of the present invention, the detection of the amplification product may be performed through a DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement, or phosphorescence measurement.

기타 실시예들의 구체적인 사항들은 상세한 설명 및 도면들에 포함되어 있다. Details of other embodiments are included in the detailed description and drawings.

이러한 본 발명에 따른 프라이머 세트는 락토바실러스 속 미생물 6종(L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum) 각각을 특이적으로 검출 또는 진단할 수 있어서, 이를 이용하는 경우 형태 및 색깔이 유사하여 종간 구별이 어려워 오동정할 위험성이 있는 락토바실러스 속 미생물의 종류를 신속하고 정확하게 동정할 수 있다. The primer set according to the present invention can specifically detect or diagnose each of the six species of microorganisms of the genus Lactobacillus ( L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum). Therefore, in the case of using this, it is possible to quickly and accurately identify the types of microorganisms in the genus Lactobacillus, which have a risk of misidentification because they are difficult to distinguish between species due to similar shapes and colors.

또한, 본 발명의 락토바실러스 속 미생물 종-특이적 프라이머 및 이를 이용한 락토바실러스 속 미생물 6종의 검출방법은 농식품 현장에서 효율적인 미생물 진단 뿐만 아니라, 발효식품이나 동물사료 등에 포함된 락토바실러스 속 미생물을 정확하고 간단하게 진단할 수 있는 효과가 있다. In addition, the Lactobacillus microorganism species-specific primer of the present invention and the detection method of 6 species of Lactobacillus microorganisms using the same are not only efficient microbial diagnosis at the agrifood field, but also accurately detects the microorganisms of Lactobacillus contained in fermented foods or animal feeds. And it has the effect of being able to diagnose simply.

도 1a~f은 본 발명의 바람직한 일 실시예에 따른 프라이머를 디자인할 때 이용한 락토바실러스 6종의 염기서열을 나타낸 것이다(서열번호 13: L. gasseri, 서열번호 14: L.acidophilus, 서열번호 15: L. helveticus, 서열번호 16: L. jensenii, 서열번호 17: L.crispatus, 서열번호 18: L.gallinarum).
도 2는 본 발명의 바람직한 일 실시예에 따른 락토바실러스 6종에 대한 프라이머 세트의 PCR(Polymerase Chain Reaction) 조건을 조절하기 위한 Annealing temperature Gradient PCR 결과를 나타낸 것이다. (A, Lactobacillus gasseri; B, Lactobacillus acidophilus; C, Lactobacillus helveticus; D, Lactobacillus jensenii; E, Lactobacillus crispatus; F, Lactobacillus gallinarum; M, size marker(bp); 1, 63 ℃; 2, 62.6 ℃; 3, 62 ℃; 4, 61.1 ℃; 5, 59.9 ℃; 6, 56 ℃; 7, 58.3 ℃; 8, 58 ℃)
도 3은 본 발명의 바람직한 일 실시예에 따라 PCR template로서 gDNA를 사용하여 제작된 락토바실러스 6종의 프라이머 세트를 모두 섞은 후 Mutiplex PCR을 실시한 결과를 나타낸 것이다. (M, size marker(bp); 1, Lactobacillus gasseri; 2, Lactobacillus acidophilus; 3, Lactobacillus helveticus; 4, Lactobacillus jensenii; 5, Lactobacillus crispatus; 6, Lactobacillus gallinarum; NC, negative control)
도 4는 본 발명의 바람직한 일 실시예에 따라 락토바실러스 6종의 프라이머 세트를 모두 섞은 뒤 타겟 종, 다른 종, 다른 속(genus)에 대한 반응이 있는지 확인한 Multiplex PCR 결과를 나타낸 것이다. (M, size marker(bp); 1, Lactobacillus gasseri; 2, Lactobacillus acidophilus; 3, Lactobacillus helveticus; 4, Lactobacillus jensenii; 5, Lactobacillus crispatus; 6, Lactobacillus gallinarum; 7, Lactobacillus plantarum; 8, Lactobacillus salivarius; 9, Lactobacillus reuteri; 10, Enterococcus faecalis; 11, Enterococcus faecium; NC, negative control)Figure 1a ~ f shows the nucleotide sequence of six kinds of Lactobacillus used to design the primers, according to an embodiment of the present invention (SEQ ID NO: 13: L. gasseri, SEQ ID NO: 14: L.acidophilus, SEQ ID NO: 15 : L. helveticus , SEQ ID NO: 16: L. jensenii , SEQ ID NO: 17: L.crispatus , SEQ ID NO: 18: L.gallinarum ).
FIG. 2 shows the results of Annealing Temperature Gradient PCR for controlling the PCR (Polymerase Chain Reaction) condition of the primer set for 6 types of Lactobacillus according to a preferred embodiment of the present invention. (A, Lactobacillus gasseri ; B, Lactobacillus acidophilus ; C, Lactobacillus helveticus ; D, Lactobacillus jensenii ; E, Lactobacillus crispatus ; F , Lactobacillus gallinarum ; M, size marker (bp); 1, 63°C; 2, 62.6 °C; 3, 62°C; 4, 61.1 °C; 5, 59.9°C; 6, 56°C; 7, 58.3 °C; 8, 58 ℃)
3 shows the results of Mutiplex PCR after mixing all six Lactobacillus primer sets prepared using gDNA as a PCR template according to a preferred embodiment of the present invention. (M, size marker (bp); 1, Lactobacillus gasseri ; 2, Lactobacillus acidophilus ; 3, Lactobacillus helveticus ; 4, Lactobacillus jensenii ; 5, Lactobacillus crispatus ; 6, Lactobacillus gallinarum ; NC, negative control)
4 shows the results of Multiplex PCR confirming whether there is a reaction to a target species, another species, or a different genus after mixing all six Lactobacillus primer sets according to a preferred embodiment of the present invention. (M, size marker (bp); 1, Lactobacillus gasseri ; 2, Lactobacillus acidophilus ; 3, Lactobacillus helveticus ; 4, Lactobacillus jensenii ; 5, Lactobacillus crispatus ; 6, Lactobacillus gallinarum ; 7, Lactobacillus plantarum ; 8, Lactobacillus plantarum; 8, Lactobacillus plantarum; 8, Lactobacillus plantarum; , Lactobacillus reuteri ; 10, Enterococcus faecalis ; 11, Enterococcus faecium ; NC, negative control)

본 발명은 다양한 변환을 가할 수 있고 여러 가지 실시 예를 가질 수 있는 바, 특정 실시 예들을 도면에 예시하고 상세한 설명에서 상세하게 설명하고자 한다. 그러나, 이는 본 발명을 특정한 실시 형태에 대해 한정하려는 것이 아니며, 본 발명의 사상 및 기술 범위에 포함되는 모든 변환, 균등물 내지 대체물을 포함하는 것으로 이해되어야 한다. 본 발명을 설명함에 있어서 관련된 공지 기술에 대한 구체적인 설명이 본 발명의 요지를 흐릴 수 있다고 판단되는 경우 그 상세한 설명을 생략한다.In the present invention, various transformations may be applied and various embodiments may be provided, and specific embodiments will be illustrated in the drawings and will be described in detail in the detailed description. However, this is not intended to limit the present invention to a specific embodiment, it should be understood to include all conversions, equivalents, and substitutes included in the spirit and scope of the present invention. In describing the present invention, when it is determined that a detailed description of a related known technology may obscure the subject matter of the present invention, a detailed description thereof will be omitted.

본 출원에서 사용한 용어는 단지 특정한 실시예를 설명하기 위해 사용된 것으로, 본 발명을 한정하려는 의도가 아니다. 단수의 표현은 문맥상 명백하게 다르게 뜻하지 않는 한, 복수의 표현을 포함한다. 본 출원에서, "포함하다" 또는 "가지다" 등의 용어는 명세서상에 기재된 특징, 숫자, 단계, 동작, 구성요소, 부품 또는 이들을 조합한 것이 존재함을 지정하려는 것이지, 하나 또는 그 이상의 다른 특징들이나 숫자, 단계, 동작, 구성요소, 부품 또는 이들을 조합한 것들의 존재 또는 부가 가능성을 미리 배제하지 않는 것으로 이해되어야 한다.The terms used in the present application are only used to describe specific embodiments, and are not intended to limit the present invention. Singular expressions include plural expressions unless the context clearly indicates otherwise. In the present application, terms such as "comprise" or "have" are intended to designate the presence of features, numbers, steps, actions, components, parts, or combinations thereof described in the specification, but one or more other features. It is to be understood that the presence or addition of elements or numbers, steps, actions, components, parts, or combinations thereof does not preclude in advance.

제1, 제2 등의 용어는 다양한 구성요소들을 설명하는데 사용될 수 있지만, 상기 구성요소들은 상기 용어들에 의해 한정되어서는 안 된다. 상기 용어들은 하나의 구성요소를 다른 구성요소로부터 구별하는 목적으로만 사용된다. Terms such as first and second may be used to describe various elements, but the elements should not be limited by the terms. The above terms are used only for the purpose of distinguishing one component from another component.

본 발명은 락토바실러스(Lactobacillus) 속(genus)에 속하는 다양한 미생물 종을 특이적으로 진단 또는 검출할 수 있는 프라이머 세트를 제공함에 그 특징이 있다.The present invention is characterized by providing a primer set capable of specifically diagnosing or detecting various microbial species belonging to the genus of Lactobacillus.

본 발명의 일실시예에 있어서, 상기 락토바실러스 속 미생물은 L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum 로 이루어진 군으로부터 선택되는 종(species)일 수 있다.In one embodiment of the present invention, the microorganism of the genus Lactobacillus is a species selected from the group consisting of L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum. I can.

본 발명에서 상기 "프라이머"는 카피하려는 핵산 가닥에 상보적인 단일 가닥 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장 산물의 합성을 위한 개시점으로서 작용할 수 있다. 프라이머의 적절한 길이는 사용 목적에 따라 달라질 수 있으나, 일반적으로 15 내지 30개의 염기로 구성된다. 프라이머 서열은 주형과 완전하게 상보적일 필요는 없으나, 주형과 혼성화할 정도로 충분히 상보적이어야 한다.In the present invention, the "primer" refers to a single-stranded oligonucleotide sequence that is complementary to the nucleic acid strand to be copied, and may serve as a starting point for the synthesis of a primer extension product. The appropriate length of the primer may vary depending on the intended use, but is generally composed of 15 to 30 bases. The primer sequence need not be completely complementary to the template, but must be sufficiently complementary to hybridize to the template.

본 발명에 있어서, 프라이머로 이용된 올리고뉴클레오티드는 또한 뉴클레오티드 유사체(analogue), 예를 들면, 포스포로티오에이트(phosphorothioate), 알킬포스포로티오에이트 또는 펩티드 핵산(peptide nucleic acid)을 포함할 수 있거나 또는 삽입 물질(intercalating agent)을 포함할 수 있다.In the present invention, the oligonucleotide used as a primer may also include a nucleotide analogue, such as phosphorothioate, alkylphosphorothioate or peptide nucleic acid, or It may contain an intercalating agent.

한편, 본 발명에서 제공하는 프라이머 세트는 락토바실러스 속에 속하는 6종(species)의 미생물(L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum)을 특이적으로 검출 또는 진단할 수 있도록 고안된 정방향과 역방향의 프라이머 쌍을 포함한다.On the other hand, the primer set provided by the present invention is specific for 6 species of microorganisms ( L. gassei , L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum ) belonging to the genus Lactobacillus). It includes a pair of forward and reverse primers designed to be detected or diagnosed as.

본 발명의 일 실시예에 있어서, 본 발명에 따른 프라이머 세트는 서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제1 프라이머 쌍; 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제2 프라이머 쌍; 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제3 프라이머 쌍; 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제4 프라이머 쌍; 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제5 프라이머 쌍; 또는/및 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제6 프라이머 쌍;을 사용할 수 있다.In one embodiment of the present invention, the primer set according to the present invention comprises a first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A third primer pair represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; Or/and a sixth primer pair represented by SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; can be used.

본 발명의 서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제 1 프라이머 쌍을 이용하는 경우 L. gassei 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제 2 프라이머 쌍을 이용하는 경우 L. acidophilus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 있고; 본 발명의 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제 3 프라이머 쌍을 이용하는 경우 L. helveticus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제 4 프라이머 쌍을 이용하는 경우 L. jensenii 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 있고; 본 발명의 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제 5 프라이머 쌍을 이용하는 경우 L. crispatus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제 6 프라이머 쌍을 이용하는 경우 L. gallinarum 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있다.When using the first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 of the present invention, L. gassei species-specific PCR products can be amplified; When using the second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 of the present invention, a PCR product specific to L. acidophilus species may be amplified; When using the third primer pair represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6 of the present invention, L. helveticus species-specific PCR products can be amplified; When using the fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 of the present invention L. jensenii Species specific PCR products can be amplified; When using the fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10 of the present invention, L. crispatus species-specific PCR products can be amplified; When using the sixth primer pair represented by SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12 of the present invention, L. gallinarum species-specific PCR products can be amplified.

본 발명의 일 실시예에 있어서, 본 발명의 제 1 프라이머 쌍을 이용하는 경우 1,200bp 내지 1,300bp의 L. gassei 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 제 2 프라이머 쌍을 이용하는 경우 800bp 내지 850bp의 L. acidophilus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 있고; 본 발명의 제 3 프라이머 쌍을 이용하는 경우 650bp 내지 700bp의 L. helveticus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 제 4 프라이머 쌍을 이용하는 경우 500bp 내지 550bp의 L. jensenii 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 있고; 본 발명의 제 5 프라이머 쌍을 이용하는 경우 350bp 내지 400bp의 L. crispatus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 제 6 프라이머 쌍을 이용하는 경우 200bp 내지 250bp의 L. gallinarum 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있다.In one embodiment of the present invention, when using the first primer pair of the present invention, 1,200bp to 1,300bp of L. gassei species-specific PCR product may be amplified; When the second primer pair of the present invention is used, the L. acidophilus species-specific PCR product of 800 bp to 850 bp can be amplified; When the third primer pair of the present invention is used, the L. helveticus species-specific PCR product of 650 bp to 700 bp can be amplified; L. jensenii of 500bp to 550bp when using the fourth primer pair of the present invention Species specific PCR products can be amplified; When the fifth primer pair of the present invention is used, L. crispatus species-specific PCR products of 350 bp to 400 bp can be amplified; When the sixth primer pair of the present invention is used, L. gallinarum species-specific PCR products of 200 bp to 250 bp can be amplified.

본 발명의 일 실시예에서, 상기 제2 프라이머 쌍은 락토바실러스 속 미생물의 Ribosomal DNA 영역에 존재하는 MFS-transporter 염기서열에서 종 특이적으로 나타나는 염기 부위를 포함하는 DNA 서열에 혼성화하여 DNA 단편을 증폭시킬 수 있고, 상기 제3 프라이머 쌍은 ACPS-malonyltransferase 염기서열에서 종 특이적으로 나타나는 염기 부위를 포함하는 DNA 서열에 혼성화하여 DNA 단편을 증폭시킬 수 있고, 상기 제4 프라이머 쌍은 Acetoacetate decarboxylase 염기서열에서 종 특이적으로 나타나는 염기 부위를 포함하는 DNA 서열에 혼성화하여 DNA 단편을 증폭시킬 수 있다.In one embodiment of the present invention, the second primer pair hybridizes to a DNA sequence containing a base site that is species-specific in the MFS-transporter nucleotide sequence present in the Ribosomal DNA region of a microorganism of the genus Lactobacillus to amplify a DNA fragment. The third primer pair can be hybridized to a DNA sequence containing a nucleotide site that is species-specific in the ACPS-malonyltransferase nucleotide sequence to amplify a DNA fragment, and the fourth primer pair is in the Acetoacetate decarboxylase nucleotide sequence. A DNA fragment can be amplified by hybridizing to a DNA sequence containing a species-specific base site.

본 발명자들은 락토바실러스 속 9종(L. gasseri , L.acidophilus, L.helveticus, L. jensenii , L. crispatus , L. gallinarum , L. johnsonii , L.amylonovus, L. delbrueckii)의 whole genome sequence 데이터(88개의 데이터)를 분석하고, 각 species들의 strain간의 gene 비교를 통하여 Sequence homology가 90% 이상인 orthologs들을 선별하였으며, 이를 이용하여 락토바실러스 속 6종(L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , 및 L. gallinarum)에 대한 종-특이적 프라이머를 제작하였다. 제작된 프라이머는 상기에서 언급한 바와 같이 서열번호 1 내지 12로 나타내었다.The present inventors described whole genome sequence data of 9 species of the genus Lactobacillus ( L. gasseri , L.acidophilus, L.helveticus, L. jensenii , L. crispatus , L. gallinarum , L. johnsonii , L.amylonovus, L. delbrueckii). (88 data) was analyzed, and orthologs with sequence homology of 90% or more were selected through gene comparison between strains of each species, and 6 species of Lactobacillus genus ( L. gassei, L. acidophilus, L. helveticus , L. jensenii , L. crispatus , and L. gallinarum ) species-specific primers were constructed. The prepared primers are represented by SEQ ID NOs: 1 to 12 as mentioned above.

본 발명자들은 상기 제작된 락토바실러스 속 미생물 6종 각각의 종-특이 프라이머를 이용하여, DNA 샘플 채취에 사용된 총 6종의 락토바실러스 속 미생물을 대상으로 PCR을 수행하였으며, 그 결과 각각의 종(species)에서만 특이적으로 서로 다른 밴드가 증폭되는 것으로 나타났다. 이러한 결과를 통해 본 발명의 제 1 프라이머 쌍은 L. gassei , 제 2 프라이머 쌍은 L. acidophilus, 제 3 프라이머 쌍은 L. helveticus, 제 4 프라이머 쌍은 L. jensenii , 제 5 프라이머 쌍은 L. crispatus , 제 6 프라이머 쌍은 L. gallinarum 만을 종 특이적으로 표식함을 확인할 수 있었다.The present inventors performed PCR on a total of six Lactobacillus microorganisms used for DNA sample collection using species-specific primers for each of the six Lactobacillus genus microorganisms produced above, and as a result, each species ( species) showed that different bands were specifically amplified. Through these results, the first primer pair of the present invention is L. gassei , the second primer pair is L. acidophilus, the third primer pair is L. helveticus, the fourth primer pair is L. jensenii , and the fifth primer pair is L. crispatus , the sixth primer pair is L. gallinarum It was confirmed that the bay was marked with a species-specific label.

또한, 본 발명은 서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제1 프라이머 쌍; 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제2 프라이머 쌍; 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제3 프라이머 쌍; 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제4 프라이머 쌍; 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제5 프라이머 쌍; 또는/및 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제6 프라이머 쌍;을 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출용 조성물을 제공한다.In addition, the present invention is a first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A third primer pair represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; Or/and a sixth primer pair represented by SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; provides a composition for species-specific detection of microorganisms in the genus Lactobacillus comprising.

본 발명의 일 실시예에 있어서, 본 발명의 제 1 프라이머 쌍을 이용하는 경우 바람직하게는 1,241bp의 L. gassei 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 제 2 프라이머 쌍을 이용하는 경우 바람직하게는 828bp의 L. acidophilus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 있고; 본 발명의 제 3 프라이머 쌍을 이용하는 경우 바람직하게는 680bp의 L. helveticus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 제 4 프라이머 쌍을 이용하는 경우 바람직하게는 540bp의 L. jensenii 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 있고; 본 발명의 제 5 프라이머 쌍을 이용하는 경우 바람직하게는 376bp의 L. crispatus 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있고; 본 발명의 제 6 프라이머 쌍을 이용하는 경우 바람직하게는 224bp의 L. gallinarum 종 특이적 PCR 산물이 증폭될 수 있다.In one embodiment of the present invention, when using the first primer pair of the present invention, preferably 1,241 bp of L. gassei species-specific PCR product can be amplified; When the second primer pair of the present invention is used, a PCR product specific to L. acidophilus species of preferably 828 bp is amplified; When the third primer pair of the present invention is used, a PCR product specific to L. helveticus species of preferably 680 bp can be amplified; When using the fourth primer pair of the present invention, preferably 540bp of L. jensenii Species specific PCR products can be amplified; When using the fifth primer pair of the present invention, preferably 376 bp of L. crispatus species-specific PCR product can be amplified; When the sixth primer pair of the present invention is used, a PCR product specific to L. gallinarum species of preferably 224 bp can be amplified.

본 발명의 프라이머는 포스포르아미다이트 고체 지지체 방법, 또는 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다. 이러한 핵산 서열은 또한 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형시킬 수 있다. 상기 변형의 비-제한적인 예로는 메틸화, 캡화, 천연 뉴클레오타이드 하나 이상의 동족체로의 치환, 및 뉴클레오타이드 간의 변형, 예를 들면, 하전되지 않은 연결체(예: 메틸 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트, 카바메이트 등) 또는 하전된 연결체(예: 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트 등)로의 변형이 있다.The primers of the present invention can be chemically synthesized using the phosphoramidite solid support method, or other well known methods. Such nucleic acid sequences can also be modified using a number of means known in the art. Non-limiting examples of such modifications include methylation, encapsulation, substitution of one or more homologs of natural nucleotides, and modifications between nucleotides, e.g., uncharged linkers (e.g., methyl phosphonate, phosphorester, phosphoro Amidates, carbamates, etc.) or with charged linkers (eg phosphorothioate, phosphorodithioate, etc.).

또한, 본 발명은 상기 조성물을 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출 또는 진단용 키트를 제공한다.In addition, the present invention provides a kit for species-specific detection or diagnosis of a microorganism of the genus Lactobacillus comprising the composition.

상기 키트에는 본 발명의 프라이머 세트(서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제1 프라이머 쌍; 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제2 프라이머 쌍; 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제3 프라이머 쌍; 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제4 프라이머 쌍; 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제5 프라이머 쌍; 또는/및 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제6 프라이머 쌍)뿐만 아니라 분석 방법에 적합한 한 종류 또는 그 이상의 다른 구성 성분 조성물, 용액 또는 장치가 포함될 수 있다.The kit includes a primer set of the present invention (a first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; a second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; a second primer pair represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6) 3 primer pairs; a fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; a fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; or/and a sixth primer represented by SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12 Pairs) as well as one or more other component compositions, solutions or devices suitable for the method of analysis.

예를 들어, 본 발명의 키트는 PCR을 수행하기 위해 필요한 필수 요소를 포함하는 키트일 수 있다. PCR 키트는, 본 발명의 프라이머 세트(서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제1 프라이머 쌍; 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제2 프라이머 쌍; 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제3 프라이머 쌍; 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제4 프라이머 쌍; 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제5 프라이머 쌍; 또는/및 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제6 프라이머 쌍) 외에도 테스트 튜브 또는 다른 적절한 컨테이너, 반응 완충액 (pH 및 마그네슘 농도는 다양), 데옥시뉴클레오타이드 (dNTPs), Taq-폴리머라아제 및 역전사효소와 같은 효소, DNase, RNAse 억제제, DEPC-수 (DEPC-water) 및 멸균수 등을 포함할 수 있다.For example, the kit of the present invention may be a kit including essential elements necessary for performing PCR. The PCR kit includes a primer set of the present invention (a first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; a second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6) A third primer pair; a fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; a fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; or/and a sixth primer represented by SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12 Primer pairs), in addition to test tubes or other suitable containers, reaction buffers (varies in pH and magnesium concentration), enzymes such as deoxynucleotides (dNTPs), Taq-polymerase and reverse transcriptase, DNase, RNAse inhibitors, DEPC-water ( DEPC-water) and sterile water.

또한, 상기 키트는 안내서를 포함할 수 있다. 안내서는 키트 사용법, 예를 들면, PCR 완충액 제조 방법, 제시되는 반응 조건 등을 설명하는 인쇄물이다. 안내서는 팜플렛 또는 전단지 형태의 안내 책자, 키트에 부착된 라벨, 및 키트를 포함하는 패키지의 표면상에 설명을 포함한다. 또한, 안내서는 인터넷과 같이 전기 매체를 통해 공개되거나 제공되는 정보를 포함한다.In addition, the kit may include a guide. The guide is a printout explaining how to use the kit, e.g., how to prepare PCR buffer, suggested reaction conditions, and so on. The guide includes a brochure in the form of a pamphlet or flyer, a label affixed to the kit, and a description on the surface of the package containing the kit. In addition, the guide includes information disclosed or provided through electronic media such as the Internet.

또한, 본 발명은 (a) 시료에서 락토바실러스 속 미생물 게놈 DNA를 추출하는 단계; (b) 상기 추출된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 본 발명에 따른 프라이머 세트(서열번호 1 및 서열번호 2로 표시되는 제1 프라이머 쌍; 서열번호 3 및 서열번호 4로 표시되는 제2 프라이머 쌍; 서열번호 5 및 서열번호 6으로 표시되는 제3 프라이머 쌍; 서열번호 7 및 서열번호 8로 표시되는 제4 프라이머 쌍; 서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 제5 프라이머 쌍; 또는/및 서열번호 11 및 서열번호 12로 표시되는 제6 프라이머 쌍)를 이용하여 PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 (c) 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는 락토바실러스 속 미생물의 종-특이적 검출 방법을 제공한다.In addition, the present invention (a) extracting the genomic DNA of the microorganism of the genus Lactobacillus from the sample; (b) using the extracted genomic DNA as a template, and a primer set according to the present invention (a first primer pair represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; a second primer pair represented by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A third primer pair represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A fourth primer pair represented by SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A fifth primer pair represented by SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; or/and SEQ ID NO: 11 and a sixth primer pair represented by SEQ ID NO: 12) by performing PCR to amplify the target sequence; And (c) it provides a species-specific detection method of a microorganism of the genus Lactobacillus comprising the step of detecting the amplification product.

본 발명의 일 실시예로서, 상기 PCR을 수행하는 것은, 55℃ 내지 65℃ 범위 내의 온도에서 어닐링(annealing)을 수행하는 것일 수 있다. 즉, 본 발명에서 PCR을 수행하는 구체적인 방법은 특별히 제한되지 않고, 어닐링 온도 역시 특별히 제한되지는 않지만 55℃ 내지 65℃ 범위 내, 바람직하게는 58℃ 내지 63℃ 범위 내, 더욱 바람직하게는 60℃ 내지 63℃ 범위 내의 온도에서 어닐링을 수행하는 경우 보다 명확한 전기영동 밴드를 얻을 수 있다. 어닐링 온도가 상기 보다 낮으면 non-specific한 밴드가 나올 수도 있기 때문에, 모든 균주가 detection되는 온도 중 가장 높은 온도로 수행하는 것이 바람직하다. As an embodiment of the present invention, performing the PCR may be performing annealing at a temperature within the range of 55°C to 65°C. That is, the specific method of performing PCR in the present invention is not particularly limited, and the annealing temperature is also not particularly limited, but within the range of 55°C to 65°C, preferably within the range of 58°C to 63°C, more preferably 60°C. When the annealing is performed at a temperature in the range of to 63° C., a more clear electrophoretic band can be obtained. If the annealing temperature is lower than the above, a non-specific band may appear, so it is preferable to perform the temperature at the highest temperature among the temperatures at which all strains are detected.

상기 PCR 수행을 통해 증폭된 표적 서열은 검출 가능한 표지 물질로 표지될수 있다. 하나의 구체적 예로서, 상기 표지 물질은 형광, 인광 또는 방사선을 발하는 물질일 수 있으나, 이로 제한되지 않는다. 바람직하게는 상기 표지 물질은 에티디움브로마이드(Ethidium Bromide: EtBr), Cy-5 또는 Cy-3이다. 표적 서열의 증폭시 프라이머의 5′-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이검출 가능한 형광 표지 물질로 표지될 수 있다. 또한, 방사선 물질을 이용한 표지는 PCR 수행 시 32P 또는 35S 등과 같은 방사선 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하면 증폭 산물이 합성되면서 방산선이 증폭 산물에 혼입되어 증폭 산물이 방사선으로 표지될 수 있다.The target sequence amplified through the PCR operation may be labeled with a detectable labeling material. As a specific example, the labeling material may be a material that emits fluorescence, phosphorescence, or radiation, but is not limited thereto. Preferably, the labeling material is Ethidium Bromide (EtBr), Cy-5 or Cy-3. When amplifying the target sequence, if PCR is performed by labeling Cy-5 or Cy-3 at the 5′-end of the primer, the target sequence may be labeled with a detectable fluorescent labeling material. In addition, for labeling using a radioactive material, when a radioactive isotope such as 32P or 35S is added to the PCR reaction solution when performing PCR, the amplification product is synthesized and the radiation is incorporated into the amplification product, so that the amplification product can be labeled with radiation.

상기 증폭된 산물의 검출은 DNA 칩. 겔 전기영동, 방사선 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행되 수 있으나, 이로 제한되는 것은 아니다. 증폭 산물을 검출하는 방법 중의 하나로서, 겔 전기영동을 수행할 수 있다. 겔 전기영동은 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아미드 겔 전기영동을 이용할 수 있다. 또한, 형광 측정 방법은 프라이머의 5′-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출 가능한 형광 표지 물질로 표지되며, 이렇게 표지된 형광은 형광 측정기를 이용하여 측정할 수 있다. 또한, 방사선 측정 방법은 PCR 수행 시 32P 또는 35S 등과 같은 방사선 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하여 증폭 산물을 표지한 후, 방사선 측정기구, 예를 들면, 가이어 계수기(Geiger counter) 또는 액체섬광계수기(liquid scintillation counter)를 이용하여 방사선을 측정할 수 있다.The detection of the amplified product is a DNA chip. It may be performed through gel electrophoresis, radiation measurement, fluorescence measurement, or phosphorescence measurement, but is not limited thereto. As one of the methods for detecting the amplification product, gel electrophoresis can be performed. Gel electrophoresis may use agarose gel electrophoresis or acrylamide gel electrophoresis depending on the size of the amplification product. In addition, when performing PCR by labeling Cy-5 or Cy-3 at the 5′-end of the primer, the fluorescence measurement method is labeled with a detectable fluorescent labeling material, and the thus labeled fluorescence is measured using a fluorescence meter. can do. In addition, the radiation measurement method includes labeling the amplified product by adding a radioactive isotope such as 32P or 35S to the PCR reaction solution when performing PCR, and then labeling the amplified product, and then using a radiation measuring instrument such as a Geiger counter or a liquid scintillation counter ( Liquid scintillation counter) can be used to measure radiation.

본 발명은 하기의 실시예에 의하여 보다 더 잘 이해 될 수 있으며, 하기의 실시예는 본 발명의 예시 목적을 위한 것이며, 첨부된 특허청구범위에 의하여 한정되는 보호범위를 제한하고자 하는 것은 아니다.The present invention may be better understood by the following examples, and the following examples are for illustrative purposes of the present invention, and are not intended to limit the scope of protection defined by the appended claims.

실시예Example

실시예 1: 프라이머의 제작Example 1: Preparation of primer

락토바실러스에 대한 프라이머 제작을 위해 National Center for Biotechnology Information(NCBI) 사이트의 genome 검색란에서 Lactobacillus를 검색하였고, whole genome sequence(WGS) 데이터를 다운로드 하였다. 다운받은 WGS를 분석에 이용하였으며, 본 발명에서는 총 88개의 데이터(L. gasseri , L.acidophilus, L.helveticus, L.jensenii, L.crispatus, L.gallinarum, L.johnsonii, L.amylonovus, L. delbrueckii)를 이용하였다. To prepare a primer for Lactobacillus , Lactobacillus was searched in the genome search column of the National Center for Biotechnology Information (NCBI) site, and whole genome sequence (WGS) data was downloaded. The downloaded WGS was used for analysis, and in the present invention, a total of 88 data ( L. gasseri , L.acidophilus, L.helveticus, L.jensenii, L.crispatus, L.gallinarum, L.johnsonii, L.amylonovus, L.amylonovus, L. . delbrueckii was used).

상기 다운로드 받은 WGS에 species, strain, gene 이름을 부여하여 정리한 후, 하나의 파일로 병합시켰다. 그 다음, Global Alignment Short Sequence Search Tool(GASSST) 분석을 이용하여 각 species들의 strain간의 gene 비교를 통해 Sequence homology가 65% 이상인 gene을 대상으로 Ortholog라는 이름을 부여하였다. 다시 말하면, gene별로 Ortholog.xxxxx(x: 숫자, 00001부터 시작) 형식을 부여하였다.The downloaded WGS was organized by giving species, strain, and gene names, and then merged into one file. Then, by comparing genes between strains of each species using Global Alignment Short Sequence Search Tool (GASSST) analysis, the name of Ortholog was given to genes with sequence homology of 65% or more. In other words, Ortholog.xxxxx (x: number, starting from 00001) was assigned for each gene.

상기 Genome을 fragmentation 시키는 tool을 이용하여 gene들을 7bp 간격으로하여 총 50bp로 gene fragments를 만들었으며, 상기 gene fragments를 GASSST를 이용하여 Ortholog gene 에 align 시켰다(homology >65%). 이 후, gene 길이의 30% 미만의 coverage를 보이는 경우, 해당 gene은 상기 검색된 Genome 상에 존재하지 않는 걸로 판단하여 분석에 이용하지 않았다. 상기 부여된 Orthologs 들을 각 species의 strain의 genome data와 비교 분석하여 homology(%)를 기재하였다. 상기 분석된 파일을 통해 각 species마다 특이적으로 존재하는 Orthologs 중, sequence homology가 90% 이상인 orthologs들을 선별하였고, Primer 디자인하는데 이용하였다. 상기 sequence homology가 90% 이상인 서열은 하기 도1 a~f에 나타내었다. 도 1a~f은 본 발명의 바람직한 일 실시예에 따른 프라이머를 디자인할 때 이용한 락토바실러스 6종의 염기서열을 나타낸 것이다(서열번호 13: L. gasseri, 서열번호 14: L.acidophilus, 서열번호 15: L. helveticus, 서열번호 16: L. jensenii, 서열번호 17: L. crispatus, 서열번호 18: L. gallinarum).Gene fragments were made with a total of 50 bp by using the gene fragmentation tool at 7 bp intervals, and the gene fragments were aligned with the Ortholog gene using GASSST (homology >65%). Thereafter, when coverage of less than 30% of the gene length was shown, the gene was determined to be not present on the retrieved genome and was not used for analysis. The homology (%) was described by comparing the assigned orthologs with the genome data of the strain of each species. Among the orthologs that exist specifically for each species through the analyzed file, orthologs with sequence homology of 90% or more were selected and used for primer design. The sequence homology of 90% or more is shown in Figs. 1 a to f below. Figure 1a ~ f shows the nucleotide sequence of six kinds of Lactobacillus used to design the primers, according to an embodiment of the present invention (SEQ ID NO: 13: L. gasseri, SEQ ID NO: 14: L.acidophilus, SEQ ID NO: 15 : L. helveticus , SEQ ID NO: 16: L. jensenii , SEQ ID NO: 17: L. crispatus , SEQ ID NO: 18: L. gallinarum ).

프라이머 디자인의 경우, 오픈소스인 Primer3Plus 를 이용하였고, PCR(Polymerase Chain Reaction) 후 전기영동 결과이미지에서 각 종(species)의 차이를 눈으로 확인할 수 있도록 Product size를 조절하였다. 이를 통해 L.gasseri(1241bp), L.acidophilus(828bp), L.helveticus(680bp), L.jensenii(540bp), L. crispatus(376bp), L. gallinarum(224bp) 6종의 프라이머를 디자인하였으며, 실제 적용가능한지 알아보기 위하여 프라이머를 주문제작 후 최적의 PCR 조건을 결정하였다. 상기 6종의 프라이머는 종(species) 간 구분이 한 번에 가능하게 하기 위해서 6종의 product size를 모두 다르게 디자인하였고, 상기 6종의 프라이머 및 product size는 하기 표 1에 나타내었다. 한 번의 PCR로 6종의 Lactobacillus를 검출할 수 있도록 PCR 조건을 맞추어 모든 프라이머들을 섞은 후 테스트를 진행하였다. 이하, 상기 PCR 실험과정에 대해서는 하기 실험예 1에서 자세히 설명한다.For the primer design, the open source Primer3Plus was used, and the product size was adjusted so that the difference between each species can be visually confirmed in the electrophoresis result image after PCR (Polymerase Chain Reaction). Through this, L.gasseri (1241bp), L.acidophilus (828bp), L.helveticus (680bp), L.jensenii (540bp), L. crispatus (376bp), and L. gallinarum (224bp) six primers were designed. , In order to see if it is practically applicable, the optimal PCR conditions were determined after customizing primers. The six kinds of primers were designed differently for all six kinds of product sizes in order to be able to distinguish between species at once, and the six kinds of primers and product sizes are shown in Table 1 below. All primers were mixed according to PCR conditions so that 6 kinds of Lactobacillus could be detected in a single PCR, and then the test was carried out. Hereinafter, the PCR experiment process will be described in detail in Experimental Example 1 below.

Figure 112018120782351-pat00001
Figure 112018120782351-pat00001

실험예Experimental example 1: One: 락토바실러스Lactobacillus 6종 각각에 대한 For each of the six PCRPCR

PCR 과정에서 최적의 어닐링(annealing) 온도를 알아보기 위하여 6종의 균주에 대하여 gradient PCR을 실시하였다. PCR mixture는 총 20ul이며 멸균된 증류수, 0.8m dNTPs, 1.25mM MgCl2, 0.075U i-Taq DNA polymerase (iNtRON Biotechnology, South Korea), 10x PCR buffer (2ul, 20mM MgCl2), 각 균주에 맞는 프라이머 한 세트(reverse와 forward primer)가 0.125 pmol씩 들어있으며, 5ng/ul의 DNA가 포함되어있다. denaturation, annealing, extension의 과정이 각각 94 ℃ 에서 20초, 58~63℃에서 30초, 72 ℃에서 1.5분씩 40cycle 반복되었다. Gradient PCR was performed on 6 strains to determine the optimum annealing temperature during the PCR process. PCR mixture is a total of 20ul, sterilized distilled water, 0.8m dNTPs, 1.25mM MgCl2, 0.075U i- Taq DNA polymerase (iNtRON Biotechnology, South Korea), 10x PCR buffer (2ul, 20mM MgCl 2 ), one primer suitable for each strain. The set (reverse and forward primer) contains 0.125 pmol each, and contains 5 ng/ul of DNA. The processes of denaturation, annealing, and extension were repeated 40 cycles at 94°C for 20 seconds, 58 to 63°C for 30 seconds, and 72°C for 1.5 minutes.

PCR 증폭 후, TAE buffer와 ethidium-bromide (349.31 g/mol)가 포함된 1.5% agarose gel로 전기영동 하여 밴드를 확인하였다. 도 2에 나타난 바와 같이, L. gassei의 경우 58 ℃에서 뚜렷한 밴드가 나오지 않았으나 다른 균주들은 설정한 온도 범위에서 모두 뚜렷한 밴드를 보였다. 상기 Gradient PCR결과를 바탕으로 PCR을 수행하기 위한 어닐링 온도를 결정하였다.After PCR amplification, the band was identified by electrophoresis with 1.5% agarose gel containing TAE buffer and ethidium-bromide (349.31 g/mol). As shown in FIG. 2, in the case of L. gassei , no distinct band appeared at 58° C., but all other strains showed distinct bands in the set temperature range. Based on the gradient PCR result, an annealing temperature for performing PCR was determined.

도 2에 나타난 바와 같이, Lactobacillus 6종이 특이적으로 검출되는 것을 확인하였고 negative control (Lactobacillus 다른 종들과 Enterococcus 균주)은 검출되지 않는 것을 확인하였다. 설정한 온도 조건에서 Lactobacillus 6종 모두 뚜렷한 밴드를 나타냄으로써, PCR 조건을 확립하였다.As shown in FIG. 2, it was confirmed that 6 species of Lactobacillus were specifically detected, and it was confirmed that a negative control ( Lactobacillus other species and Enterococcus strain) was not detected. PCR conditions were established by showing distinct bands in all 6 species of Lactobacillus under the set temperature conditions.

실험예Experimental example 2: 2: 락토바실러스Lactobacillus 6종 모두에 대한 Multiplex Multiplex for all 6 types PCRPCR

1) 타겟 락토바실러스 6종에 대한 Mutiplex PCR1) Mutiplex PCR for 6 types of target Lactobacillus

PCR mixture안에 6종 primer를 모두 넣고, 한 번의 PCR로 6개 균의 동정이 가능한지 확인하였다. PCR mixture는 총 20ul이며 멸균된 증류수, 0.8m dNTPs, 1.25mM MgCl2, 0.075U i-Taq DNA polymerase (iNtRON Biotechnology, South Korea), 10x PCR buffer (2ul, 20mM MgCl2), 5ng/ul의 DNA와 6세트의 프라이머가 0.125 pmol씩 섞여 있다. Negative의 경우 DNA대신 멸균된 증류수를 넣었다. All six primers were put into the PCR mixture, and it was confirmed that 6 bacteria can be identified by a single PCR. PCR mixture is a total of 20ul, sterilized distilled water, 0.8m dNTPs, 1.25mM MgCl2, 0.075U i- Taq DNA polymerase (iNtRON Biotechnology, South Korea), 10x PCR buffer (2ul, 20mM MgCl2), 5ng/ul of DNA and 6 The primers in the set were mixed in 0.125 pmol increments. In the case of negative, sterilized distilled water was added instead of DNA.

도 3에 나타난 바와 같이, 타겟하는 6개의 균주에 예상했던 사이즈의 밴드가 검출되었고 negative control에서는 밴드가 나타나지 않은 것을 확인하였다.As shown in Figure 3, it was confirmed that the band of the expected size was detected in the target 6 strains, and the band did not appear in the negative control.

2) 타겟 락토바실러스 6종 외 다른 균주에 대한 Multiplex PCR2) Multiplex PCR for strains other than 6 species of target Lactobacillus

상기 실시예 1에서 디자인된 primer가 타겟으로하는 6개 균주만 특이적으로 검출하는지 다른 Lactobacillus species들 및 Enterococcus 균주를 이용하여 확인하였다. 실험조건 및 방법은 상기 실험예 2와 동일하게 진행되었다.It was confirmed using other Lactobacillus species and Enterococcus strains whether the primer designed in Example 1 specifically detects only 6 strains targeted. Experimental conditions and methods were carried out in the same manner as in Experimental Example 2.

도 4에 나타난 바와 같이, 타겟으로한 6개 균주들은 모두 예상된 사이즈에서 밴드가 검출되었고 나머지 샘플들과 negative control에서는 밴드가 검출되지 않은 것을 확인하였다. 상기 실시예 1에서 디자인된 primer가 타겟으로하는 6개 균주를 특이적으로 detection할 수 있음을 다시 한 번 증명하였다.As shown in FIG. 4, it was confirmed that bands were detected in all of the six strains as targets at the expected size, and no bands were detected in the remaining samples and the negative control. It was once again proved that the primer designed in Example 1 can specifically detect 6 strains as targets.

상기에서는 본 발명을 특정의 바람직한 실시예에 관련하여 도시하고 설명하였지만, 이하의 특허청구범위에 의해 마련되는 본 발명의 기술적 특징이나 분야를 이탈하지 않는 한도 내에서 본 발명이 다양하게 개조 및 변화될 수 있다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 명백한 것이다. In the above, the present invention has been illustrated and described in relation to specific preferred embodiments, but the present invention may be variously modified and changed within the scope of not departing from the technical features or field of the present invention provided by the following claims. It is obvious to one of ordinary skill in the art that it can be.

<110> KNU-Industry Cooperation Foundation <120> Species-specific primers for the diagnosis of the genus Lactobacillus and uses thereof <130> PA-D2017-30 <160> 18 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gasseri_F primer <400> 1 aatactcccg aagcacgtca 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gasseri_R primer <400> 2 tcattgtgtt tggcaatcgt 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. acidophilus_F primer <400> 3 tcatgttggg atgcaatgag 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. acidophilus_R primer <400> 4 tttcaaaact tgtcctgctg 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. helveticus_F primer <400> 5 gtatgatcgt tcgccaccac 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. helveticus_R primer <400> 6 attgtcgcca tgagtacagg 20 <210> 7 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. jensenii_F primer <400> 7 atgcttggcg cttatcctt 19 <210> 8 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. jensenii_R primer <400> 8 atatggtgcg atttcatctg g 21 <210> 9 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. crispatus_F primer <400> 9 tggcgaagag acaccaatat c 21 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. crispatus_R primer <400> 10 tgacgtaacg catgatgaat 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gallinarum_F primer <400> 11 agtcttgagc ccgtaaaagc 20 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gallinarum_R primer <400> 12 ttgccaaacg gttcttcttt 20 <210> 13 <211> 2367 <212> DNA <213> Lactobacillus gasseri <220> <221> gene <222> (1)..(2367) <223> Hypothetical protein <400> 13 gtgcggaggc ttggtcgttt ggcagcccaa ctcacgatac acgctacttc atccgccttg 60 ccaaacggaa gaataaagaa gttcgatact ttaatacaag aatggaggat tgctaagatg 120 cactttactt tatcaacagc agccaattcc ggtcaggcca gtaacactat ttaccctaac 180 cagctaatta tcactaactc ccaagaatta cagcaggccg tacagtatga ccatgtttgt 240 gggcggttca agaataacca acgtaacatt gcaaacttca tcaaagctga ctgcttagtc 300 atggattgtg acaatgacca ctctgatgat tctgccgctt ggattaatcc taccagcatt 360 gcgaattact ttgatggcgt ttcttatgcc attacattat cgcgcaacaa catgaaagct 420 aagaacaata aagccccgcg cccaaagttc cacatctact ttccaattag cgagatcaat 480 aatgctaaaa cctacgctga attaaaacat gaaattcaag aatatttccc ctattttgat 540 aacaatgctc tcgatgctgc ccgcttcgta tttggtgttc ccagtacaca agttagttgg 600 cacgaaggat cccaaaccat cgaccaattt atgatggcgc aacgttactt tgccaagcaa 660 aaggtcggat cgattcgcca aggcaaacgc aatgcaactc tctcccactt tgctggtcga 720 atcattatgc gattgggcaa tactcccgaa gcacgtcagg cctttcaaga cgaggcagcg 780 aagtgtgaac cgccactggg agaacaagaa ctaagaacca tctggcatag tgctatcaaa 840 ttcggccacc gaatggccag taaaaaaggt tatattccac ctgaagaata taatcaaccc 900 aatgatgatc tgcatcccta cgattattcg gatactggcg agtcctatgt ttttgttaac 960 aactgtaagg accgcgtctg ctacaccaac cagtcaggtt ttatgtggtt tgacggtaaa 1020 atttggcaag aatcggagcc cctcgctctc ggcgaggttc aacgctttac tgacaaacaa 1080 cttgcggatg ctcaactacg agtcactaag gcttaccaag tgatccaaca aaatggcgta 1140 actagcgcgc ttcaaacgat gggcaaaacg aaggctagtc gcacttttaa tgatgatcag 1200 caagctacgt tcaaagaata tcaaaacgcc aaggcttatg aagcttttat tctcaaggaa 1260 cggagcaccc gtggcatcaa tggaatcttg actaacgccc ggccaaagtt agtaaaagaa 1320 atcaatgaat tcgatgctaa tcccttttta ttaaacactc ctgatggccc ttacaacctt 1380 aaacagggca ttcatgggca acaagaaatt caagccagcg atttgattac taagtccacg 1440 tcttgtgtgc ctggcagtca aggaaattca atctggcaag aagccctaaa tacattcttt 1500 tgtaacgacc tagcactaat aaattacgtt caagaaattg tgggactcgt tgccattggt 1560 caggtttact tggaagcgtt gattattgca tatggcagtg gacgaaatgg taaatccact 1620 ttctggaaca caattgccaa tgtactcggt tcttatactg gtcacctctc agctgatgcc 1680 ttaacaacag gtgttcgacg gaatgtcaaa ccagaaatgg ctgaagtcaa aggtaaacgc 1740 ttaatcatct ctgctgagct ggaagaaggc aaacgactaa acacttcgat tgtcaaacaa 1800 ctctgttcaa ctgatgaaat ctacgctgag aaaaaataca tgaagccctt ctcttttaca 1860 cctagtcata ccatcgttct ctataccaac 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ttggctgctt ttttcaagaa ttattacagc atcagtggca 300 ggaatgattg aatcactgct atcggtaatc gtttaccaga tattgcataa tcaaaaatag 360 cgctcggtga cgattgtctg gatttataca ggctttagca tcggttgtgg gtgtgccgct 420 gggaacggtc attgctgatc actggcgatg gcaggatgct ttcaccatgt gtgtggtaat 480 tacagcggtg gctacaatta ttgcgttgct agttttgcct aaaaacttga atgcaggtga 540 gggtaattat agcgatcgga ttcagatttt caaggataaa acaatctggt atgggatcgg 600 cttcgttatc tgtgcggcag ctaccttgta tggctattac acgtatatta gaccgctggt 660 tcatgtgcaa cttaagttcg atttgaatgc attgagtttg atttggctac tccttggtgt 720 ggtagctatt tttggctcga caacacaagt attatttttg aatgaagcat cgaaaaaata 780 tccggcagcg attagtttgg catcaacgtt aagtgcaatt ttttataatg tcggtatctt 840 caatgacagc aggacaagtt ttgaaatacg gtggtttaac tagtttgggc tggaattcat 900 ttgtttattg ctttgttttg gctagaaaac tagataatag aaatttgggg gataagtag 959 <210> 15 <211> 918 <212> DNA <213> Lactobacillus helveticus <220> <221> gene <222> (1)..(918) <223> ACPS-malonyltransferase <400> 15 ttatttcacc aactttgctt ttgatcgaaa atcgtttaac gtcttaacac tatcaatatg 60 gaatgtatga tcgttcgcca ccacattctt ggcaaacttc atcaacgtat cgccagggcc 120 cagttcaaca actgtatcaa cacccaattg agtaagctgt tgaatgcagt tataaaaatg 180 ggttggatta atgagctgat cgattaacgt ttgcttaatc gtgttaactt cgaaaggttg 240 agacgttgtg ttactgatca ctgggaaagc caactggtta aacgagacat cttgaattcg 300 ttttgccaac aaatcggagg cctcctgcat aaatggggtg tgagacgcaa ccgtcatttt 360 caacgggaca acccgtttaa caccgtgctc atgcagataa tcggtagctg cttgaagccc 420 ctcaatggaa ccaccaatca caatttgaga atctgtgttg taattggcta catagatctc 480 acccttcttc gaaccgactt ttaccgcttg gtcgaccatg tcagcagtcg tttttaagac 540 agccgccatt ttgccaggat gatcctgacc ggctttatcc atgtagtgac tgcgatcacg 600 aaccaattga agggcatcac tgaagtccaa tcccttggca gcgacaatcg cgctatactc 660 accaagactc aaaccagtgg caccaactgg atcaccaaaa tcttgattga taatccgttc 720 aatccctgta ctcatggcga caatcgccac ttgggtattg accggattat caaaaacggt 780 ggcatcgctc atatccatat tcaaagcttc ggaagcttga tcaattgttt gccgataaac 840 aggttcttgt tgatacaagt cctgtcccat tttgccaaat tgcttacctt ggccgctaaa 900 taaataacct agtttcaa 918 <210> 16 <211> 828 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> Lactobacillus jensenii <220> <221> gene <222> (1)..(828) <223> Acetoacetate decarboxylase <400> 16 atgactagtt atcttgttaa caaagaagat gttgtcaact ttcttgataa tcctaacatg 60 aaaaatcaag atggttatat gtttgcctac gtcacttcac cagaagtttt agctagatta 120 gtgcctaagc cattaacgcc tatcgcacca gtcatcgctg gttatattac ccatatgggc 180 aatccaactt ttgctaagcc ttatgatgaa gctgtcttat atagtttagt ttcatacggt 240 ggccgcatgc ttggcgctta tcctttcacc ctatttttaa gtggtgaagg agccgaagaa 300 gccatgcttg ctggtcgtga aggagctgca attccaaaga agttagctga taaaattagc 360 tacactgaaa aaaatggcag cacccatgtt gttgttacta gacatggtgt agatttaatt 420 aatcttacct ttactccagg tattcccaac gatcctgaca tcgctaaaca gttaatgggt 480 ggtcaatcta agcttgatac gccaaccgat acttatagtt ttttcttcga ctataagatt 540 gatcaagacc atgacggtca caaccacttc attaacactc gtttaattgc tactaagaca 600 acaggtgtca cccacgcatt cactccaggc aacattacaa tggaacttgg gacaagtagc 660 gatgatccag tcagcgaatt aaccgtatta aagccagttg gtggcgctca ctaccaaatg 720 actagtggca aaatgcacga aacaattcaa cttgcccaag ttgaaccaga tgaaatcgca 780 ccatatttaa ttactggccg ctatgaccaa gctattttag gaaagtaa 828 <210> 17 <211> 420 <212> DNA <213> Lactobacillus crispatus <220> <221> gene <222> (1)..(420) <223> Hypothetical protein <400> 17 atggcgaaga gacaccaata tctttggtgt ttggttgaat tgcctaacgg caaacgcgaa 60 tggtactgca tttctaaggt attgcgcaag gccttacttt gggagaaaaa ttatctgcat 120 aatcgatact ggcgcaatac tttaattggt agctacctca atgttgctcg cacgcgttat 180 catcatgatc gggcaattat tacagtagga agggtaatcc gagtgaaaat tttgtattat 240 cctactcagg attggcattg gacacgcaat caatttatcg cggcgggaca attggataac 300 tttgccaccg cctataatta tatgaagcac aattatgctt ggtacaacaa gctattgatt 360 catcatgcgt tacgtcattg gcgtagaata agcacttcta aacattgcaa taaattctaa 420 420 <210> 18 <211> 552 <212> DNA <213> Lactobacillus gallinarum <220> <221> gene <222> (1)..(552) <223> Hypothetical protein <400> 18 atgattctag agctttttat tttgttaaat tgtttaactc taaaggtatc atattataat 60 cttaaagaaa gagaccacat cattataagt aattctctta gcataatttc taaacatcac 120 caaggagtac catatctgaa gatgaaaact aaaataatat caataatact tttaatactc 180 atcgtcccac ctattctttt ctgtgtactt aattctagtt acgagttata cgttaatcat 240 caagaaaata ttgcatacag taaaatgcaa caagctgtag acaaacatgg ctataatgca 300 attagtcttg agcccgtaaa agctcgaata aaattctttc acatttatga atataaaagt 360 tcattttcta atcaaaaaac attgaataag aatagacaac tcttcaacaa agttggatat 420 aagataggca aacatgatga tctagaaacg ccttataaat attcaatcag tgccctaaaa 480 tcaaacgaaa aatggacagt ttatattaaa gaagaaccgt ttggcaaaga aaaaagttat 540 cgcgaagatt ga 552 <110> KNU-Industry Cooperation Foundation <120> Species-specific primers for the diagnosis of the genus Lactobacillus and uses thereof <130> PA-D2017-30 <160> 18 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gasseri_F primer <400> 1 aatactcccg aagcacgtca 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gasseri_R primer <400> 2 tcattgtgtt tggcaatcgt 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. acidophilus_F primer <400> 3 tcatgttggg atgcaatgag 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. acidophilus_R primer <400> 4 tttcaaaact tgtcctgctg 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. helveticus_F primer <400> 5 gtatgatcgt tcgccaccac 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. helveticus_R primer <400> 6 attgtcgcca tgagtacagg 20 <210> 7 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. jensenii_F primer <400> 7 atgcttggcg cttatcctt 19 <210> 8 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. jensenii_R primer <400> 8 atatggtgcg atttcatctg g 21 <210> 9 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. crispatus_F primer <400> 9 tggcgaagag acaccaatat c 21 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. crispatus_R primer <400> 10 tgacgtaacg catgatgaat 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gallinarum_F primer <400> 11 agtcttgagc ccgtaaaagc 20 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> L. gallinarum_R primer <400> 12 ttgccaaacg gttcttcttt 20 <210> 13 <211> 2367 <212> DNA <213> Lactobacillus gasseri <220> <221> gene <222> (1)..(2367) <223> Hypothetical protein <400> 13 gtgcggaggc ttggtcgttt ggcagcccaa ctcacgatac acgctacttc atccgccttg 60 ccaaacggaa gaataaagaa gttcgatact ttaatacaag aatggaggat tgctaagatg 120 cactttactt tatcaacagc agccaattcc ggtcaggcca gtaacactat ttaccctaac 180 cagctaatta tcactaactc ccaagaatta cagcaggccg tacagtatga ccatgtttgt 240 gggcggttca agaataacca acgtaacatt gcaaacttca tcaaagctga ctgcttagtc 300 atggattgtg acaatgacca ctctgatgat tctgccgctt ggattaatcc taccagcatt 360 gcgaattact ttgatggcgt ttcttatgcc attacattat cgcgcaacaa catgaaagct 420 aagaacaata aagccccgcg cccaaagttc cacatctact ttccaattag cgagatcaat 480 aatgctaaaa cctacgctga attaaaacat gaaattcaag aatatttccc ctattttgat 540 aacaatgctc tcgatgctgc ccgcttcgta tttggtgttc ccagtacaca agttagttgg 600 cacgaaggat cccaaaccat cgaccaattt atgatggcgc aacgttactt tgccaagcaa 660 aaggtcggat cgattcgcca aggcaaacgc aatgcaactc tctcccactt tgctggtcga 720 atcattatgc gattgggcaa tactcccgaa gcacgtcagg cctttcaaga cgaggcagcg 780 aagtgtgaac cgccactggg agaacaagaa ctaagaacca tctggcatag tgctatcaaa 840 ttcggccacc gaatggccag taaaaaaggt tatattccac ctgaagaata taatcaaccc 900 aatgatgatc tgcatcccta cgattattcg gatactggcg agtcctatgt ttttgttaac 960 aactgtaagg accgcgtctg ctacaccaac cagtcaggtt ttatgtggtt tgacggtaaa 1020 atttggcaag aatcggagcc cctcgctctc ggcgaggttc aacgctttac tgacaaacaa 1080 cttgcggatg ctcaactacg agtcactaag gcttaccaag tgatccaaca aaatggcgta 1140 actagcgcgc ttcaaacgat gggcaaaacg aaggctagtc gcacttttaa tgatgatcag 1200 caagctacgt tcaaagaata tcaaaacgcc aaggcttatg aagcttttat tctcaaggaa 1260 cggagcaccc gtggcatcaa tggaatcttg actaacgccc ggccaaagtt agtaaaagaa 1320 atcaatgaat tcgatgctaa tcccttttta ttaaacactc ctgatggccc ttacaacctt 1380 aaacagggca ttcatgggca acaagaaatt caagccagcg atttgattac taagtccacg 1440 tcttgtgtgc ctggcagtca aggaaattca atctggcaag aagccctaaa tacattcttt 1500 tgtaacgacc tagcactaat aaattacgtt caagaaattg tgggactcgt tgccattggt 1560 caggtttact tggaagcgtt gattattgca tatggcagtg gacgaaatgg taaatccact 1620 ttctggaaca caattgccaa tgtactcggt tcttatactg gtcacctctc agctgatgcc 1680 ttaacaacag gtgttcgacg gaatgtcaaa ccagaaatgg ctgaagtcaa aggtaaacgc 1740 ttaatcatct ctgctgagct ggaagaaggc aaacgactaa acacttcgat tgtcaaacaa 1800 ctctgttcaa ctgatgaaat ctacgctgag aaaaaataca tgaagccctt ctcttttaca 1860 cctagtcata ccatcgttct ctataccaac tacctgcctc acgtgggcgg taacgatgaa 1920 ggaatctggc ggcgattgat cgtaataccg tttaaagcca cgattgccaa acacaatgat 1980 attaaaaatt atgcccagta cctaaccgaa caagccggtc cggcagtgtt gcaatggatc 2040 attgagggcg cgcaacgaat cattcaacaa aattaccagc taactactcc ggcagcagtt 2100 actaaagcag tcaaggacta ccacgccgat aatgactggt taggtcattt tctcaatgaa 2160 aattgcgaac ttgattctag ttatcagcaa aaatcgggtg acctctatca aaagtaccga 2220 gaatactgcc aaggtatcgg cgaatacacc cgaagtacca ctgactttta cacggccctt 2280 aagaatgcgg gctttcaacg tcaacgtaag aatactggat cctatgttcg cggactgcgc 2340 ttaaaggcat cagaatttct cgactag 2367 <210> 14 <211> 959 <212> DNA <213> Lactobacillus acidophilus <220> <221> gene <222> (1)..(959) <223> MFS-transporter <400> 14 ttgcatattt tgacggcgat gttcgtgctg attgcgttca tgttgggatg caatgagttt 60 atggtagtcg gaaatttgtc actgattgcg caaacttatc atgaatcgct gagtcagatt 120 tcttggttgg tatcggcgtt tgcatggact tatgcgatcg tgacaccgct cctggcttta 180 tttaccaata agattcacaa atactatttg ttgatttttt tgacgggaac aattttgagc 240 tcgtgtgcac caagtattgg ttggctgctt ttttcaagaa ttattacagc atcagtggca 300 ggaatgattg aatcactgct atcggtaatc gtttaccaga tattgcataa tcaaaaatag 360 cgctcggtga cgattgtctg gatttataca ggctttagca tcggttgtgg gtgtgccgct 420 gggaacggtc attgctgatc actggcgatg gcaggatgct ttcaccatgt gtgtggtaat 480 tacagcggtg gctacaatta ttgcgttgct agttttgcct aaaaacttga atgcaggtga 540 gggtaattat agcgatcgga ttcagatttt caaggataaa acaatctggt atgggatcgg 600 cttcgttatc tgtgcggcag ctaccttgta tggctattac acgtatatta gaccgctggt 660 tcatgtgcaa cttaagttcg atttgaatgc attgagtttg atttggctac tccttggtgt 720 ggtagctatt tttggctcga caacacaagt attatttttg aatgaagcat cgaaaaaata 780 tccggcagcg attagtttgg catcaacgtt aagtgcaatt ttttataatg tcggtatctt 840 caatgacagc aggacaagtt ttgaaatacg gtggtttaac tagtttgggc tggaattcat 900 ttgtttattg ctttgttttg gctagaaaac tagataatag aaatttgggg gataagtag 959 <210> 15 <211> 918 <212> DNA <213> Lactobacillus helveticus <220> <221> gene <222> (1)..(918) <223> ACPS-malonyltransferase <400> 15 ttatttcacc aactttgctt ttgatcgaaa atcgtttaac gtcttaacac tatcaatatg 60 gaatgtatga tcgttcgcca ccacattctt ggcaaacttc atcaacgtat cgccagggcc 120 cagttcaaca actgtatcaa cacccaattg agtaagctgt tgaatgcagt tataaaaatg 180 ggttggatta atgagctgat cgattaacgt ttgcttaatc gtgttaactt cgaaaggttg 240 agacgttgtg ttactgatca ctgggaaagc caactggtta aacgagacat cttgaattcg 300 ttttgccaac aaatcggagg cctcctgcat aaatggggtg tgagacgcaa ccgtcatttt 360 caacgggaca acccgtttaa caccgtgctc atgcagataa tcggtagctg cttgaagccc 420 ctcaatggaa ccaccaatca caatttgaga atctgtgttg taattggcta catagatctc 480 acccttcttc gaaccgactt ttaccgcttg gtcgaccatg tcagcagtcg tttttaagac 540 agccgccatt ttgccaggat gatcctgacc ggctttatcc atgtagtgac tgcgatcacg 600 aaccaattga agggcatcac tgaagtccaa tcccttggca gcgacaatcg cgctatactc 660 accaagactc aaaccagtgg caccaactgg atcaccaaaa tcttgattga taatccgttc 720 aatccctgta ctcatggcga caatcgccac ttgggtattg accggattat caaaaacggt 780 ggcatcgctc atatccatat tcaaagcttc ggaagcttga tcaattgttt gccgataaac 840 aggttcttgt tgatacaagt cctgtcccat tttgccaaat tgcttacctt ggccgctaaa 900 taaataacct agtttcaa 918 <210> 16 <211> 828 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> Lactobacillus jensenii <220> <221> gene <222> (1)..(828) <223> Acetoacetate decarboxylase <400> 16 atgactagtt atcttgttaa caaagaagat gttgtcaact ttcttgataa tcctaacatg 60 aaaaatcaag atggttatat gtttgcctac gtcacttcac cagaagtttt agctagatta 120 gtgcctaagc cattaacgcc tatcgcacca gtcatcgctg gttatattac ccatatgggc 180 aatccaactt ttgctaagcc ttatgatgaa gctgtcttat atagtttagt ttcatacggt 240 ggccgcatgc ttggcgctta tcctttcacc ctatttttaa gtggtgaagg agccgaagaa 300 gccatgcttg ctggtcgtga aggagctgca attccaaaga agttagctga taaaattagc 360 tacactgaaa aaaatggcag cacccatgtt gttgttacta gacatggtgt agatttaatt 420 aatcttacct ttactccagg tattcccaac gatcctgaca tcgctaaaca gttaatgggt 480 ggtcaatcta agcttgatac gccaaccgat acttatagtt ttttcttcga ctataagatt 540 gatcaagacc atgacggtca caaccacttc attaacactc gtttaattgc tactaagaca 600 acaggtgtca cccacgcatt cactccaggc aacattacaa tggaacttgg gacaagtagc 660 gatgatccag tcagcgaatt aaccgtatta aagccagttg gtggcgctca ctaccaaatg 720 actagtggca aaatgcacga aacaattcaa cttgcccaag ttgaaccaga tgaaatcgca 780 ccatatttaa ttactggccg ctatgaccaa gctattttag gaaagtaa 828 <210> 17 <211> 420 <212> DNA <213> Lactobacillus crispatus <220> <221> gene <222> (1)..(420) <223> Hypothetical protein <400> 17 atggcgaaga gacaccaata tctttggtgt ttggttgaat tgcctaacgg caaacgcgaa 60 tggtactgca tttctaaggt attgcgcaag gccttacttt gggagaaaaa ttatctgcat 120 aatcgatact ggcgcaatac tttaattggt agctacctca atgttgctcg cacgcgttat 180 catcatgatc gggcaattat tacagtagga agggtaatcc gagtgaaaat tttgtattat 240 cctactcagg attggcattg gacacgcaat caatttatcg cggcgggaca attggataac 300 tttgccaccg cctataatta tatgaagcac aattatgctt ggtacaacaa gctattgatt 360 catcatgcgt tacgtcattg gcgtagaata agcacttcta aacattgcaa taaattctaa 420 420 <210> 18 <211> 552 <212> DNA <213> Lactobacillus gallinarum <220> <221> gene <222> (1)..(552) <223> Hypothetical protein <400> 18 atgattctag agctttttat tttgttaaat tgtttaactc taaaggtatc atattataat 60 cttaaagaaa gagaccacat cattataagt aattctctta gcataatttc taaacatcac 120 caaggagtac catatctgaa gatgaaaact aaaataatat caataatact tttaatactc 180 atcgtcccac ctattctttt ctgtgtactt aattctagtt acgagttata cgttaatcat 240 caagaaaata ttgcatacag taaaatgcaa caagctgtag acaaacatgg ctataatgca 300 attagtcttg agcccgtaaa agctcgaata aaattctttc acatttatga atataaaagt 360 tcattttcta atcaaaaaac attgaataag aatagacaac tcttcaacaa agttggatat 420 aagataggca aacatgatga tctagaaacg ccttataaat attcaatcag tgccctaaaa 480 tcaaacgaaa aatggacagt ttatattaaa gaagaaccgt ttggcaaaga aaaaagttat 540 cgcgaagatt ga 552

Claims (7)

서열번호 9 및 서열번호 10으로 표시되는 프라이머 쌍을 포함하는,
락토바실러스(Lactobacillus) 속 L. crispatus 종(species) 미생물의 종-특이적 검출용 프라이머 세트.
SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10,
Species-specific detection primer set of L. crispatus species microorganisms from the genus Lactobacillus .
제1항에 있어서,
상기 프라이머 쌍은 350bp 내지 400bp의 L. crispatus 종 특이 PCR 산물을 증폭하는 것을 특징으로 하는, 락토바실러스 속 L. crispatus 종 미생물의 종-특이적 검출용 프라이머 세트.
The method according to claim 1,
A primer set for species-specific detection of microorganisms of the genus L. crispatus of the genus Lactobacillus, characterized in that the primer pair amplifies a 350 bp to 400 bp L. crispatus species specific PCR product.
제1항 또는 제2항의 프라이머 세트를 포함하는, 락토바실러스 속 L. crispatus 종 미생물의 종-특이적 검출용 조성물.
A composition for the species-specific detection of microorganisms of the genus Lactobacillus L. crispatus , comprising the primer set of claim 1 or 2.
제3항의 조성물을 포함하는 락토바실러스 속 L. crispatus 종 미생물의 종-특이적 검출 키트.
Lactobacillus L. crispatus comprising the composition of claim 3 Species-specific detection kit of species microorganisms.
(a) 시료에서 락토바실러스 속 미생물 게놈 DNA를 추출하는 단계;
(b) 상기 추출된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및
(c) 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 락토바실러스 속 L. crispatus 종 미생물의 종-특이적 검출 방법.
(a) extracting Lactobacillus genus DNA from a sample;
(b) amplifying the target sequence by performing PCR using the extracted genomic DNA as a template and using the primer set according to (1) or (2); And
(c) detecting the amplification product. &lt; RTI ID = 0.0 &gt; 18. &lt; / RTI &gt;
제5항에 있어서,
상기 PCR을 수행하는 것은, 55℃ 내지 65℃ 범위 내의 온도에서 어닐링(annealing)을 수행하는 것을 특징으로 하는, 락토바실러스 속 L. crispatus 종 미생물의 종-특이적 검출 방법.
6. The method of claim 5,
The PCR is carried out by performing annealing at a temperature in the range of 55 캜 to 65 캜. The Lactobacillus sp. L. crispatus Species-specific detection of species microorganisms.
제5항에 있어서,
상기 증폭 산물의 검출은 DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행되는 것을 특징으로 하는 락토바실러스 속 L. crispatus 종 미생물의 종-특이적 검출 방법.6. The method of claim 5,
Wherein the detection of the amplification product is carried out by DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement or phosphorescence measurement. The Lactobacillus sp. L. crispatus Species-specific detection of species microorganisms.
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