KR101814615B1 - 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 애주번트 조성물 및 이를 포함하는 백신 조성물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 애주번트 조성물 및 이를 포함하는 백신 조성물에 관한 것이다. 본 발명의 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 조성물은 백신의 효과를 증대시키는 것을 확인하였으므로, 백신 투여 시 면역 반응을 증가시키는 애주번트(adjuvant)로서 사용할 수 있으며, 바이러스로 인한 질환의 예방에 매우 유용하다.
Description
본 발명은 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 애주번트 조성물 및 이를 포함하는 백신 조성물에 관한 것으로서, 보다 구체적으로, 백신에 의해서 유도되는 면역 반응을 증대시켜서 백신의 효능을 증가시키는 애주번트로서의 용도를 갖는, 인플루엔자 바이러스에 대하여 중화 활성을 가지는 1 이상의 인간 단일클론 항체를 포함하는 애주번트 조성물 및 이를 포함한 백신 조성물에 관한 것이다.
독감은 인플루엔자 바이러스(Influenza virus)가 호흡기에 감염되며 나타나는 질병으로 겨울철에 흔하게 나타나며, 감염성이 매우 높아 전 연령층을 대상으로 쉽게 전파되는데 특히 노약자층이 취약한 것으로 알려져 있다(Treanor J, 2004, N Engl J Med . 350(3):218-20). 오르쏘믹소바이러스(Orthomyxoviridae)에 속하는 외피 보유 바이러스(enveloped virus)로 8개의 분절로 된 음성-극성 및 단일 가닥(Negative-sense, single-strand)의 RNA(ribonucleic acid)를 유전체로 가지는 인플루엔자 바이러스는 A, B 및 C 그룹으로 분류되며 인플루엔자 A 바이러스(influenza A virus)의 경우 주요 표면 단백질인 HA(hemagglutinin)와 NA(neuraminidase)에 따라 다시 여러 서브타입(subtype)으로 나뉜다. 현재까지 17 종의 HA와 10 종의 NA가 알려져 있다(Cheung TK and Poon LL 2007, Ann N Y Acad Sci. 1102:1-25; Tong S, et al. 2012, Proc.Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109:4269-4274). 인플루엔자 바이러스는 종류에 따라 조류, 돼지 및 사람에 감염될 수 있다는 특성과 RNA 분절로 되어 있는 유전체로 인하여 다양한 유전자의 조합과 돌연변이로 계속해서 변종 바이러스가 발생한다(Treanor J, 2004. N Engl J Med. 350(3):218-20). 이런 지속적인 변이로 인하여 영구적인 면역력을 얻기가 힘들므로 현재 가장 효과적이라고 생각되는 예방법은 매년 유행할 것으로 예측되는 인플루엔자 바이러스에 대한 백신(vaccine)을 접종하여 특정 타입(type)에 맞는 면역력을 매년 형성시키는 것이다.
현재 매년 접종하고 있는 인플루엔자 바이러스 백신은 3가 혹은 4가 백신으로 influenza A의 H1과 H3 subtype의 HA와 1종류 혹은 2종류의 influenza B type의 HA를 섞어 사용하고 있다.
인플루엔자 바이러스 백신을 포함한 여러 감염성 질환의 백신에 면역원성을 증가시키기 위한 물질을 첨가는 경우가 있는데, 이를 애주번트(adjuvant)라고 한다. 사람에게 사용이 승인된 애주번트(adjuvant)는 aluminium hydroxide와 aluminium phosphate로 구성되어 있는 Alum 과 Oil-in-water emulsions을 가지는 MF59, AS03과 TLR4 agonist인 MPL와 aluminium hydroxide로 구성된 AS04가 있다. (Rappuoli R, 2011. Nature Reviews Immunology 11, 11(12):865-72)
위에 언급된 물질 이외에도 항체를 항원과 함께 투여함으로 인해서 면역 반응을 증대시키는 보고들이 있으며, 항체를 애주번트(adjuvant)로 사용하고자 하는 시도들이 수행되고 있다.
기존에 본 출원인이 특허출원한 인플루엔자 A 바이러스에 대한 항체는 다양한 인플루엔자의 subtype에 대하여 중화 효능을 보였으며, 특히 대한민국 특허출원 제10-2011-0020061호에 개시된 항체는 주로 계통발생 그룹 1(H1, H2, H5, H9 등)에, 대한민국 특허출원 제10-2012-0107512호에 개시된 항체는 주로 계통발생 그룹 2 (H3, H7 등)에 중화 효능을 나타내었다. 이에 두 종류 이상의 항체를 섞어 동시에 투여함으로써 유행할 가능성이 있는 그룹 1과 그룹 2에 속한 바이러스에 대하여 모두 예방과 치료 효과를 보일 수 있는 칵테일 제제를 개발하였고, 대한민국 특허출원 제 10-2014-0036601호에 개시하였다.
본 발명자는 백신 투여 시에 본 발명자가 기 개발한 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 함께 투여함으로써 백신의 효과를 증대할 수 있음을 확인하여 기 개발 항체의 애주번트로서의 새로운 용도를 발견함으로써 본 발명을 완성하였다.
따라서, 본 발명이 해결하고자 하는 과제는 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 애주번트(adjuvant) 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 애주번트 조성물 및 표적 항원을 포함하는 백신 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 애주번트 조성물 및 표적 항원을 포함하는 제조하는 방법을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 애주번트 조성물을 숙주에 투여하여 표적 항원에 대한 면역 반응을 증대시키는 방법을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 백신 조성물을 숙주에 투여하여 면역화하는 방법을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명이 해결하고자 하는 다른 과제는 상기 백신 조성물을 숙주에 투여하여 면역화된 숙주로부터 면역학적 산물을 제조하는 방법을 제공하는 것이다.
상기 과제를 해결하고자, 본 발명은 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 애주번트(adjuvant) 조성물을 제공한다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자는 인플루엔자 A 바이러스의 헤마글루티닌(HA) 단백질의 줄기 영역(stem region) 내 에피토프에 결합할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는
i) HA1 폴리펩티드의 위치 18, 25, 27, 32, 33, 38, 40, 54, 55, 278, 291, 292, 310, 311, 312 및 318 로 구성된 군으로부터 선택된 어느 하나의 아미노산 잔기(residue)를 포함하는 에피토프; 및
ii) HA2 폴리펩티드의 위치 18, 19, 20, 21, 38, 39, 41, 42, 45, 46, 48, 49, 52, 53, 56, 57, 58, 60 및 99로 구성된 군으로부터 선택된 어느 하나의 아미노산 잔기(residue)를 포함하는 에피토프
로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 에피토프임을 특징으로 하는 애주번트 조성물을 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA1 폴리펩티드의 위치 18, 38, 40, 291, 292 및 318의 아미노산 잔기(residue)를 포함할 수 있다. 또한, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA2 폴리펩티드의 위치 18, 19, 20, 21, 41, 42, 45, 48, 49, 52 및 53의 아미노산 잔기를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA1 폴리펩티드의 위치 18, 38, 40, 291, 292 및 318의 아미노산 잔기(residue)를 포함하고, HA2 폴리펩티드의 위치 18, 19, 20, 21, 41, 42, 45, 48, 49, 52 및 53의 아미노산 잔기를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA1 폴리펩티드의 위치 278 및 318의 아미노산 잔기를 포함할 수 있다. 또한, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA2 폴리펩티드의 위치 38, 39, 41, 42, 45, 48, 49, 52, 및 53 아미노산 잔기를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA 제1 단량체(monomer)의 상기 HA1 폴리펩티드 및/또는 HA2 폴리펩티드의 위치의 아미노산 잔기를 포함하고, 상기 제1 단량체에 인접한 제2 단량체의 HA1 폴리펩티드의 위치 25, 32 및 33 아미노산 잔기를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA1 폴리펩티드의 위치 278 및 318의 아미노산 잔기를 포함하고, HA2 폴리펩티드의 위치 38, 39, 41, 42, 45, 48, 49, 52, 및 53 아미노산 잔기를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA 제1 단량체(monomer)의 상기 HA1 폴리펩티드 및 HA2 폴리펩티드의 위치의 아미노산 잔기를 포함하고, 상기 제1 단량체에 인접한 제2 단량체의 HA1 폴리펩티드의 위치 25, 32 및 33 아미노산 잔기를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA1 폴리펩티드의 위치 278 및 318의 아미노산 잔기를 포함하고, HA2 폴리펩티드의 위치 38, 39, 41, 42, 45, 48, 49, 52, 53, 58 및 99의 아미노산 잔기를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA 제1 단량체(monomer)의 상기 HA1 폴리펩티드 및 HA2 폴리펩티드의 위치의 아미노산 잔기를 포함하고, 상기 제1 단량체에 인접한 제2 단량체의 HA1 폴리펩티드의 위치 25, 27, 32 및 33 아미노산 잔기를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA1 폴리펩티드의 위치 54, 55, 278, 291 및 318의 아미노산 잔기를 포함하고, HA2 폴리펩티드의 위치 19, 20, 21, 38, 39, 41, 42, 45, 46, 48, 49, 52, 53, 56, 57 및 60의 아미노산 잔기를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자의 에피토프는 HA 제1 단량체(monomer)의 상기 HA1 폴리펩티드 및 HA2 폴리펩티드의 위치의 아미노산 잔기를 포함하고, 상기 HA 제1 단량체에 인접한 HA 제2 단량체의 HA1 폴리펩티드의 위치 25, 32, 33, 310, 311, 및 312의 아미노산 잔기를 추가로 포함할 수 있다.
상기 에피토프의 아미노산 위치 넘버링(numbering)은 H3 HA 넘버링(H3 numbering system)에 기초한다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자는
카밧 방법(Kabat method)에 따라
i) 서열번호 1의 CDR1 영역, 서열번호 2의 CDR2 영역, 및 서열번호 3의 CDR3 영역을 포함하는 경쇄 가변영역, 및 서열번호 4의 CDR1 영역, 서열번호 5의 CDR2 영역, 및 서열번호 6의 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 가변영역을 포함하는 결합 분자; 및
ii) 서열번호 7의 CDR1 영역, 서열번호 8의 CDR2 영역, 및 서열번호 9의 CDR3 영역을 포함하는 경쇄 가변영역, 및 서열번호 10의 CDR1 영역, 서열번호 11의 CDR2 영역, 및 서열번호 12의 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 가변영역을 포함하는 결합 분자
로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 결합 분자이다.
본 발명에 있어서, 가변영역의 CDR은 Kabat 등에 의해 고안된 시스템에 따라 통상적인 방법으로 결정되었다(문헌[Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest (5th), National Institutes of Health, Bethesda, MD. (1991)] 참조). 본 발명에 사용된 CDR 넘버링은 Kabat 방법을 사용했지만, 이외에 IMGT 방법, Chothia 방법, AbM 방법 등 다른 방법에 따라 결정된 CDR을 포함하는 결합 분자도 본 발명에 포함된다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 결합 분자는
i) 서열번호 13의 폴리펩티드 서열을 포함하는 경쇄 및 서열번호 14의 폴리펩티드 서열을 포함하는 중쇄를 포함하는 결합 분자; 및
ii) 서열번호 15의 폴리펩티드 서열을 포함하는 경쇄 및 서열번호 16의 폴리펩티드 서열을 포함하는 중쇄를 포함하는 결합 분자
로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 결합 분자를 포함한다.
본 발명의 일 구체예에서 상기 결합 분자는 세포 표면의 Fc 수용체에 결합되는 결합 분자를 포함한다.
또한, 본 발명은 상기 애주번트 조성물 및 표적 항원을 포함하는 백신 조성물을 제공한다. 상기 표적 항원은 바이러스 항원일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다. 바람직하게는, 상기 바이러스 항원은 인플루엔자 바이러스 항원이다. 상기 인플루엔자 바이러스 항원은 인플루엔자 A 바이러스 또는 인플루엔자 B 바이러스 항원을 포함한다. 상기 인플루엔자 바이러스 항원은 헤마글루티닌(HA) 또는 뉴라미니다제(NA)일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명의 다른 일 구체예로서, 상기 백신 조성물은 항원과 상기 애주번트 조성물의 중량비가 1:0.02 내지 1:200으로 포함될 수 있고, 바람직하게는 1:0.2 내지 1:20으로 포함될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 항원과 애주번트 조성물의 중량비는 면역원성 활성 조절을 위해 감소 또는 증가될 수 있다.
또한, 본 발명의 다른 일 구체예로서, 상기 애주번트 조성물 외에 추가적인 애주번트 조성물이 첨가된 백신 조성물을 제공한다. 상기 추가적인 애주번트 조성물은 이것에 한정되는 것은 아니지만, 알럼(Alum), 대사가능한 오일(예를 들어, 스쿠알렌), 토콜(예를 들어, 알파-토코페롤), 스테롤(예를 들어, 콜레스테롤), 사포닌(예를 들어, QS21), Toll like receptor의 라이간드(예를 들어, poly(I:C), CpG 모티프를 가지는 올리고뉴클레오타이드 및/또는 LPS 유도체(예를 들어, 3D-MPL)일 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 애주번트 조성물 및 표적 항원을 포함하는 백신 조성물을 제조하는 방법을 제공한다. 상기 백신 조성물은 인플루엔자 바이러스 백신 조성물일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은 상기 애주번트 조성물을 숙주에 투여하여 표적 항원에 대한 면역 반응을 증대시키는 방법을 제공한다. 상기 백신 조성물은 인플루엔자 바이러스 백신 조성물일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명의 다른 일 구체예로서, 상기 면역 반응은 Fc 수용체를 세포 표면에 가지는 세포에 의해 유도되는 것을 특징으로 하는 방법일 수 있으나, 이것에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은 대상에 상기 애쥬번트 조성물을 포함한 백신 조성물을 유효한 양으로 투여하는 단계를 포함하는 바이러스 유래 질환을 예방하는 방법을 제공한다. 예를 들어, 상기 바이러스 유래 질환은 인플루엔자 바이러스 유래 질환일 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 백신 조성물을 숙주에 투여하여 면역화하는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은
a) 상기 백신 조성물을 숙주에 투여하여 면역화하는 단계; 및
b) 상기 면역화된 숙주로부터 면역학적 산물을 수득하는 단계
를 포함하는 면역학적 산물을 제조하는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명의 다른 일 구체예로서, 상기 면역학적 산물이 T 세포, B 세포, 또는 항체일 수 있다. 또한 상기 면역학적 산물은 B 세포와 같이 Fc 수용체를 세포 표면에 가지는 다른 종류의 세포, 예컨대 호중구, 대식세포, 자연살해세포 또는 수지상 세포일 수 있다
이하 본 발명에서 사용된 용어를 다음과 같이 정의한다.
본 발명에 기재된 "인플루엔자 바이러스(influenza A virus)"는 오르쏘믹소바이러스 (Orthomyxoviridae)에 속하는 외피 보유 바이러스(enveloped virus)로 8개의 분절로 된 음성-극성 및 단일 가닥(Negative-sense, single-strand)의 RNA(ribonucleic acid)를 유전체로 가지고, A, B 및 C 그룹으로 분류되며, 주요 표면 단백질인 HA(hemaggutinin)와 NA(neuraminidase)에 따라 다시 여러 서브타입(subtype)으로 나뉜다. 현재까지 17종의 HA와 10종의 NA가 알려져 있다.
본 발명에 기재된 "H1 서브타입"에는 H1N1, H1N2, H1N3, H1N4, H1N5, H1N6, H1N7, H1N8, H1N9 및 H1N10이 포함된다.
본 발명에 기재된 "H2 서브타입"에는 H2N1, H2N2, H2N3, H2N4, H2N5, H2N6, H2N7, H2N8, H2N9 및 H2N10이 포함된다.
본 발명에 기재된 "H5 서브타입"에는 H5N1, H5N2, H5N3, H5N4, H5N5, H5N6, H5N7, H5N8, H5N9 및 H5N10이 포함된다.
본 발명에 기재된 "H9 서브타입"에는 H9N1, H9N2, H9N3, H9N4, H9N5, H9N6, H9N7, H9N8, H9N9 및 H9N10이 포함된다.
본 발명에 기재된 "H3 서브타입"에는 H3N1, H3N2, H3N3, H3N4, H3N5, H3N6, H3N7, H3N8, H3N9 및 H3N10이 포함된다.
본 발명에 기재된 "H7 서브타입"에는 H7N1, H7N2, H7N3, H7N4, H7N5, H7N6, H7N7, H7N8, H7N9 및 H7N10이 포함된다.
본 발명에 기재된 "헤마글루티닌(hemagglutinin, 이하 "HA"라 칭함)"은 인플루엔자 바이러스의 외피(envelope) 당단백질을 나타낸다. HA는 인플루엔자 바이러스가 숙주 세포에 흡착하여 침투하는 것을 매개한다. 현재까지 17 종류의 서브타입이 보고되어 있다.
본 발명에 기재된 "뉴라미니다제(neuraminidase, 이하 "NA"라 칭함)"은 인플루엔자 바이러스의 외피(eveolope) 당단백질을 나타낸다. NA는 인플루엔자 바이러스가 증식한 뒤 확산할 때 중요하게 역할을 한다. 현재까지 10 종류의 서브타입이 보고되고 있다.
본 발명에 기재된 "인플루엔자 백신(influenza vaccine)"은 계절 또는 판데믹(pandemic) 인플루엔자를 예방하는 가장 좋은 방법으로, 크게 생백신과 비활성화백신으로 나누어진다. 생백신은 약독화 생백신(live attenuated vaccine)이 개발되어 사용되고 있다. 비활성화백신은 부화란 혹은 세포배양에서 배양한 바이러스를 정제하여 포르말린 등으로 비활성화시킨 바이러스 전체를 사용하는 전바이러스 백신(whole virus vaccine), 에테르 등으로 바이러스 외피를 분쇄시킨 분할 백신(split vaccine), HA와 NA 성분을 정제한 아단위 백신(subunit vaccine)등이 있다. 인플루엔자 A 그룹의 H1과 H3 subtype과 함께 인플루엔자 B 그룹을 한 종류 포함하는 백신은 3가 백신, 두 종류의 인플루엔자 B 그룹을 포함하는 백신은 4가 백신이라고 한다.
본 발명에 기재된 “인플루엔자 백신”은 3가, 4가의 계절성, 판데믹의 생백신과 비활성화백신을 모두 포함한다.
본 발명에 기재된 “결합 분자”는 키메라, 인간화 또는 인간 단일클론 항체와 같은 단일클론 항체를 포함하는 온전한(intact) 이뮤노글로블린(immunoglobulin), 이뮤노글로블린의 Fc 부분의 가지는 융합 단백질 또는 항원에 결합하는 이뮤노글로블린, 예를 들면 인플루엔자 A 바이러스의 단량체 HA 또는 삼량체 HA와의 결합을 위해 온전한(intact) 이뮤노글로블린과 경쟁하는 이뮤노글로블린 단편을 포함하는 가변성 도메인 또는 기질과 결합 가능한 효소, 수용체, 단백질을 뜻한다. 구조와는 상관없이 항원-결합 단편은 온전한(intact) 이뮤노글로블린에 의해 인식된 동일한 항원과 결합된다. 항원-결합 단편은 결합 분자의 아미노산 서열의 2개 이상의 연속기, 20개 이상의 연속 아미노산 잔기, 25개 이상의 연속 아미노산 잔기, 30개 이상의 연속 아미노산 잔기, 35개 이상의 연속 아미노산 잔기, 40개 이상의 연속 아미노산 잔기, 50개 이상의 연속 아미노산 잔기, 60개 이상의 연속 아미노산 잔기, 70개 이상의 연속 아미노산 잔기, 80개 이상의 연속 아미노산 잔기, 90개 이상의 연속 아미노산 잔기, 100개 이상의 연속 아미노산 잔기, 125개 이상의 연속 아미노산 잔기, 150개 이상의 연속 아미노산 잔기, 175개 이상 연속 아미노산 잔기, 200개 이상의 연속 아미노산 잔기, 또는 250개 이상의 연속 아미노산 잔기의 아미노산 서열을 포함하는 펩티드 또는 폴리펩티드를 포함할 수 있다.
본 발명에 기재된 “항원-결합 단편”은 특히 Fab, F(ab'), F(ab')2, Fv, dAb, Fd, 상보성 결정 영역(CDR) 단편, 단일-쇄 항체(scFv), 2가(bivalent) 단일-쇄 항체, 단일-쇄 파지 항체, 디아바디(diabody), 트리아바디, 테트라바디, 폴리펩티드로의 특정 항원에 결합하기에 충분한 이뮤노글로브린의 하나 이상의 단편을 함유하는 폴리펩티드 등을 포함한다. 상기 단편은 합성으로 또는 완전한 이뮤노글로블린의 효소적 또는 화학적 분해에 의해 생성되거나, 재조합 DNA 기술에 의해 유전공학적으로 생성될 수 있다. 생성 방법은 당업계에 잘 알려져 있다.
본 발명에 기재된 “애주번트(Adjuvant)”는 백신 또는 약학적으로 활성 있는 성분들에 첨가되어 면역 반응을 증가시키거나 및/또는 영향을 주는 물질 또는 조성물을 말하는 것이다. 대표적으로 면역원(immunogen)용 캐리어(carrier) 또는 보조 물질 및/또는 다른 약학적으로 활성 있는 물질 또는 조성물을 통상적으로 의미한다. 전형적으로, 용어 "애주번트(adjuvant)"는 넓은 개념에서 해석되어야 하며, 상기 애주번트(adjuvant)에 통합되거나 상기 애주번트(adjuvant)와 함께 투여된 항원의 면역원성(immunogenicity)을 증진시킬 수 있는 넓은 범위의 물질 또는 책략(stratagerm)을 의미한다. 또한, 애주번트(adjuvant)는, 이에 제한되지 않고, 면역 강화제(immune potentiator), 항원 전달계 또는 이들의 조합으로 나뉘어질 수 있다.
본 발명에 기재된 “면역학적 산물”은 항원 및/또는 애주번트 조성물의 투여에 의해 면역화된 숙주로부터 발생하는 방어 면역 매개 물질 또는 세포 등을 의미하며, 예를 들어, 활성화된 T세포, B세포 또는 항체 등을 의미할 수 있으나 이에 한정하는 것은 아니다.
본 발명에 기재된 "약제학적으로 허용가능한 부형제"라는 용어는 용인 가능한 또는 편리한 투약 형태를 제조하기 위한 약물, 제제 또는 결합 분자와 같은 활성 분자로 조합되는 불활성 물질을 의미한다. 약제학적으로 허용 가능한 부형제는 비독성이거나, 적어도 독성이 사용된 용량 및 농도에서 수용자에게 이의 의도된 용도를 위해 허용될 수 있는 부형제이고, 약물, 제제 또는 결합 분제를 포함하는 제형화의 다른 성분과 양립할 수 있다.
본 발명에 기재된 “유효한 양”이라는 용어는 인플루엔자 A 바이러스의 백신과 함께 투여 시에, 백신의 효과를 증대시키는 유효한 본 발명의 결합 분자의 양을 나타낸다.
본 발명에서는 기 특허출원(대한민국 특허출원 제10-2011-0020061호, 대한민국 특허출원 제10-2012-0107512, 대한민국 특허출원 제10-2014-0036601호)된 항체들이 인플루엔자 백신 접종 시에, 면역반응을 증가시킴을 mouse 실험에서 확인함으로써 기 개발 항체들이 애주번트로서의 새로운 용도를 가짐을 확인하였다. 본 출원인이 기출원한 대한민국 특허출원 제10-2011-0020061호, 대한민국 특허출원 제10-2012-0107512호 및 대한민국 특허출원 제10-2014-0036601호는 본 발명의 명세서에 참조로서 통합된다.
본 발명의 1 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 결합 분자를 포함하는 조성물은 백신의 효과를 증대시키는 것을 확인하였으므로, 백신 투여 시 면역 반응을 증가시키는 애주번트(adjuvant)로서 사용할 수 있으며, 바이러스로 인한 질환의 예방에 매우 유용하다.
도 1은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 1 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 17일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 2는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 3 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 28일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 HA 단백질과 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 3은 면역화된 mouse에 H1N1 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 4는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 5 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 5은 면역화된 mouse에 H1N1 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 6은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 7 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 7은 면역화된 mouse에 H1N1 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 8은 H3N2 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 9 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H3N2 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 9은 면역화된 mouse에 H3N2 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 10은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 11 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 11은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 14 참조), 두 번째 근육 주사 1일, 3일, 7일 후에 비장 내 면역 세포 중 B 세포가 차지하는 비율을 확인한 결과이다.
도 12은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 14 참조), 두 번째 근육 주사 1일, 3일, 7일 후에 샅고랑림프절 내 면역 세포 중 B 세포가 차지하는 비율을 확인한 결과이다.
도 13는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 15 참조), 두 번째 근육 주사로부터 4주 후에 H1N1 virus를 접종하여 1일, 3일 뒤 비장과 체내 림프절 내 B 세포의 비율을 확인한 결과이다.
도 14는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 16 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 2는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 3 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 28일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 HA 단백질과 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 3은 면역화된 mouse에 H1N1 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 4는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 5 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 5은 면역화된 mouse에 H1N1 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 6은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 7 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 7은 면역화된 mouse에 H1N1 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 8은 H3N2 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 9 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H3N2 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 9은 면역화된 mouse에 H3N2 influenza virus를 10MLD50로 접종한 뒤, 면역화된 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인한 결과이다.
도 10은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 11 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
도 11은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 14 참조), 두 번째 근육 주사 1일, 3일, 7일 후에 비장 내 면역 세포 중 B 세포가 차지하는 비율을 확인한 결과이다.
도 12은 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 14 참조), 두 번째 근육 주사 1일, 3일, 7일 후에 샅고랑림프절 내 면역 세포 중 B 세포가 차지하는 비율을 확인한 결과이다.
도 13는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 15 참조), 두 번째 근육 주사로부터 4주 후에 H1N1 virus를 접종하여 1일, 3일 뒤 비장과 체내 림프절 내 B 세포의 비율을 확인한 결과이다.
도 14는 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하고(표 16 참조), 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 혈청을 채취하여 혈청 내 H1N1 influenza virus에 대한 특이 항체 역가를 ELISA로 확인한 결과이다.
이하 본 발명을 실시예를 통해 상세히 설명한다. 그러나 하기 실시예들은 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 발명의 범위가 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다. 본 발명에서 인용된 문헌은 본 발명의 명세서에 참조로서 통합된다.
실시예
실시예 1: 인플루엔자 바이러스 중화 항체의 백신 애주번트 효과 확인
1-1. ELISA 실험
하기의 표 1과 같이 치료용 항체인 CT120 항체와 CT149 항체가 인플루엔자 바이러스 백신의 애주번트로서의 효과가 있는지를 확인하기 위하여 동물 실험을 수행하였다. 하기의 표 1과 마찬가지로 H1N1 split 백신 0.2ug를 단독으로 투여하거나, 대표적으로 사용하는 애주번트(adjuvant)인 Alum(1mg) 면역보조제와 같이 투여하거나, CT120 항체(0.5ug, 1ug, 5ug, 10ug) 또는 CT149 항체(0.5ug, 1ug, 5ug, 10ug)를 면역보조제로 함께 투여한 후 mouse에서 인플루엔자 바이러스에 대한 항체 역가를 확인하였다.
상기의 표 1과 같이 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사한 후, 각각의 실험군에서 유도되는 면역 반응을 확인하였다. 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 17일, 27일 후에 각각의 실험군에서 혈청을 채취하여, 항체의 역가를 ELISA를 통해서 확인하였다.
도 1의 결과와 같이, 백신만을 투여한 그룹에 비해서 CT120, CT149, 또는 Alum을 백신과 함께 투여한 그룹이 전체적으로 투여한 백신에 해당하는 바이러스를 감지할 수 있는 항체 생성이 많음을 확인할 수 있었다. 백신과 애주번트 투여 후 27일 후 항체의 양을 비교하였을 때, CT120 5ug 또는 CT149 10ug을 투여한 그룹은 Alum를 투여한 그룹과 비슷한 항체 생성을 보였으며, CT149 1ug 또는 0.5ug을 투여한 그룹은 Alum를 투여한 그룹과 비교하여 더 많은 항체가 생성됨을 확인하였다.
1-2. 혈구응집반응실험(HI assay, hemaglutinin inhibition assay)
하기의 표 2와 같이 치료용 항체인 CT120 항체와 CT149 항체가 인플루엔자 바이러스 백신의 애주번트로서의 효과가 있는지를 확인하기 위하여 혈구응집반응실험(HI assay, hemaglutinin inhibition assay)을 통해서 백신의 유효성을 평가하였다. 백신과 애주번트 투여 후 13일, 17일, 27일 후에 mouse로부터 혈청을 얻어, 인플루엔자 바이러스와 치킨 적혈구의 응집 반응을 억제할 수 있는 항체 역가를 확인하였다.
도 1의 결과와 동일하게, 백신과 애주번트 투여 후 27일 후 항체의 양을 비교하였을 때, CT120 5ug, CT149 10ug을 투여한 그룹(그룹 6 및 9)은 Alum를 투여한 그룹(그룹 13)과 비슷한 HI titer를 보였으며, CT149 1ug, 0.5ug을 투여한 그룹(그룹 11 및 12)은 Alum를 투여한 그룹과 비교하여 더 많은 HI titer를 보였다.
CT120 혹은 CT149를 인플루엔자 바이러스 백신 투여 시 함께 투여해주면, 애주번트인 Alum과 비슷한 혹은 더 좋은 면역원성 증강 효과를 확인하였다. 이로써, CT120 및 CT149가 인플루엔자 바이러스 백신의 애주번트로서 효과가 있음을 확인하였다.
실시예
2:
H1N1
백신을 항원으로 하여
CT120
과
CT149
의 면역보조제 효과를 확인하기 위한 항원 농도 결정
2-1. 항체 생성 결과
하기의 표 3과 같이, 치료용 항체의 면역보조제 효과를 검증하기에 앞서 적절한 항원 농도 결정을 위한 동물 실험을 앞서 수행하였다. H1N1 백신(cell based)을 0.01ug에서 1ug까지 단독으로 투여하거나 Alum 면역보조제와 같이 투여한 후 ELISA를 통해 항체 역가를 확인하고 HI를 통해 중화 항체 역가를 확인하였다. Standard는 판매되고 있는 3가 백신으로 실험 결과의 비교를 위해 진행하였다.
상기의 표 3과 같이 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사한 후, 각각의 실험군에서 유도되는 면역 반응을 확인하였다. 첫 번째 근육 주사로부터 28일 후에 각각의 실험군에서 혈청을 채취하여, 혈청 내 HA 단백질과 virus에 대한 항체 역가를 ELISA를 통해서 확인하고, 중화 항체 역가를 HI assay를 통해 확인하였다.
도 2의 결과와 같이, 항체의 역가는 투여된 항원의 양에 대체적으로 비례하여 증가되는 것을 확인할 수 있었고, Alum 면역보조제를 같이 넣어준 경우에 대체적으로 항체 역가가 더 높게 나오는 것을 확인하였다. 또한 HA 단백질에 대한 항체 역가와 H1N1 virus에 대한 항체 역가의 차이는 크게 나타나지 않았다.
상기의 표 4의 결과와 같이, 항원만을 넣어준 실험군에 비해 Alum을 같이 넣어준 실험군에서의 HI titer가 증가되는 결과를 확인하였다. 또한, 항원 농도 0.1ug 실험군(그룹 9 및 10)과 항원 농도 0.05ug 실험군(그룹 12 및 13)에서는 항원만을 넣었을 때에 비해 면역보조제인 Alum을 넣어주었을 때의 HI titer가 각각 8배, 4배 상승하여, 면역보조제의 유무에 따라서 백신 효과의 차이를 명확하게 확인할 수 있었다.
2-2. 방어 면역 결과
인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역을 확인하기 위해, 두 번째 면역 4주 후에 10MLD50의 CA/04/09 H1N1 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하여 감염시키고, 이후 15일 동안 상기 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인하였다.
도 3의 결과와 같이, 모든 농도에서 항원 단독으로 투여한 실험군에 비해 면역보조제가 있는 실험군에서 인플루엔자 바이러스에 대한 방어면역 효과가 높은 것을 확인하였다. 또한, HI titer 결과에서 면역보조제의 유무에 따라서 백신 효과의 차이가 많이 보였던, 두 가지 항원 농도(0.1ug과 0.05ug)의 실험군 결과에서는 0.1ug 실험군의 경우 항원 단독으로 투여한 실험군이 80%의 생존율을 보였고, 면역보조제와 같이 투여한 실험군에서는 100%의 생존율을 나타내었다. 반면, 0.05ug 실험군의 경우 항원 단독으로 투여한 실험군의 경우 60%의 생존율을 보였고, 면역보조제와 같이 투여한 실험군에서는 100%의 생존율을 나타내었다.
2-3. 소결
HI titer 결과와 인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역 효과를 종합적으로 판단하였을 때, 0.1ug 실험군의 경우 HI titer는 차이가 나지만 방어 면역 효과에서 면역보조제의 유무에 따른 차이가 적어 HI titer와 방어 면역에서의 면역보조제 유무에 따른 차이가 크게 나타나는 0.05ug을 최종 항원 농도로 결정하였다. 이를 이용하여 면역보조제 효과를 확인하는 동물 실험을 진행하였다.
실시예
3:
H1N1
백신을 항원으로 하여
CT120
과
CT149
의 면역보조제 효과 확인
3-1.
H1N1
백신을 항원으로 하여
CT120
의 면역보조제 효과 확인
3-1-1. 항체 생성 결과
항원 농도를 결정하기 위한 동물 실험 결과(실시예 2)로부터 결정된 항원농도 0.05ug을 이용하여, 치료용 항체인 CT120과 CT149의 면역보조제 효과를 검증하는 동물실험을 진행하였다. 다만 mouse 실험에서는 CT120과 CT149 항체의 mouse form인 CT120(mIgG2a)와 CT149(mIgG2a)의 면역보조제 효과가 CT120이나 CT149보다 더 효율적으로 나타날 수 있을 것이라 예상되어, CT120 및 CT149 및 이의 mouse form을 모두 이용하여 동물 실험 진행하였다.
상기 mouse form 항체는 human IgG1 form인 CT120, CT149에서 Fc region의 constant region을 mouse의 IgG1 혹은 IgG2a region으로 교체하여 제작되었다.
CT120 및 CT120(mIgG2a)의 양은 예비 실험(본 명세서에는 작성되어 있지 않음)을 통해서 면역보조제로서의 효과를 보인 농도를 선택하였다.
H1N1 백신(cell based)을 다양한 농도의 치료용 항체와 섞어 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 하기의 표 5와 같이 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사한 후, 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 각각의 실험군에서 혈청을 채취하여 혈청 내 ELISA를 통한 H1N1 virus에 대한 항체 역가와 HI assay를 통한 중화 항체 역가를 확인하였다.
도 4의 결과와 같이, H1N1 virus에 대한 항체 역가는 mouse form인 CT120(mIgG2a)를 면역보조제로 사용한 실험군에서 CT120을 면역보조제로 사용한 실험군에 비하여 전반적으로 높게 나타났다. 또한 CT120(mIgG2a)를 사용한 실험군의 경우, Alum을 면역보조제로 사용한 실험군보다도 전반적으로 항체 역가가 높게 나타났으며, 첫 번째 면역 3주 후에 채취한 혈청(도 5의 D20)에서 항체 역가가 급격히 높아지는 것을 확인하였다.
상기 표 6의 결과와 같이, 전반적으로 CT120을 면역보조제로 사용한 실험군에 비해 CT120(mIgG2a)를 면역보조제로 사용한 실험군에서 농도에 따라 최대 4배까지 HI titer가 높아졌다. 항체 역가에서 가장 높게 나왔던 CT120(mIgG2a) 0.5ug을 사용한 실험군(그룹 10)은 HI titer에서도 전 실험군 중에 가장 높은 HI titer인 160을 나타냈다.
3-1-2. 방어 면역 결과
인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역을 확인하기 위해, 두 번째 면역 4주 후에 10MLD50의 CA/04/09 H1N1 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하여 감염시키고, 이후 15일 동안 상기 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인하였다.
도 5의 결과와 같이, CT120(mIgG2a)을 면역보조제로 사용하였을 때, CT120을 면역보조제로 사용한 실험군이나 항원 단독으로 사용한 실험군에 비하여 생존율이 높았으며, 몸무게 변화 또한 가장 적은 폭으로 나타났다. 특히, 항체 역가와 HI titer에서 가장 높게 나온 CT120(mIgG2a) 0.5ug을 면역보조제로 사용한 실험군에서는 100%의 생존율을 보였으며, 이는 Alum을 면역보조제로 사용한 실험군에 비해서도 생존율이 30% 증가한 것이다.
이와 같은 결과를 통해, CT120(mIgG2a)가 CT120에 비하여 면역보조제로서의 효과가 더 높은 것을 확인하였으며, 0.5ug의 농도로 투여하였을 때에 효과가 가장 좋은 것을 확인하였다.
3-2.
H1N1
백신 항원으로 하여
CT149
의 면역보조제 효과 확인
3-2-1. 항체 생성 결과
하기의 표 7과 같이 CT149에 대한 예비 실험(본 명세서에는 작성되지 않음)에서 면역보조제로서의 효과를 보인 농도를 선정하여, 상기 실시예 3-1-1과 동일한 실험을 진행하였다.
도 6의 결과와 같이, CT120과는 달리 CT149의 면역보조제 효과는 전반적으로 약하게 나타났으며, CT149(mIgG2a) 0.5ug을 사용한 실험군에서 Alum 면역보조제를 사용한 실험군과 비슷한 항체 역가를 보임을 확인하였다.
상기 표 8의 결과와 같이, CT149나 CT149(mIgG2a)를 면역보조제로 사용한 실험군에서 HI titer가 크게 높아지지 않았으며, ELISA로 측정한 항체 역가의 결과와 유사하게, CT149(mIgG2a) 0.5ug을 사용한 실험군(그룹 10)에서 Alum 면역보조제를 사용한 실험군(그룹 11)과 동일한 HI titer를 나타냈다.
3-2-2. 방어 면역 결과
인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역을 확인하기 위해, 두 번째 면역 4주 후에 10MLD50의 CA/04/09 H1N1 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하여 감염시키고, 이후 15일 동안 상기 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인하였다.
도 7의 결과와 같이, CT149(mIgG2a) 0.5ug을 면역보조제로 사용한 실험군에서 Alum보다 10% 높은 생존율인 80%의 생존율을 보였다. 몸무게 변화 폭도 Alum과 비교하여 크게 나아지지 않았다.
3-3. 소결
이와 같은 결과들을 종합해 본 결과, CT120(mIgG2a)가 H1N1 백신에 대해서는 가장 높은 면역보조제 효과를 나타내었으며 그 중에서도 0.5ug을 사용하였을 때, 효과가 가장 높게 나타났다. CT149(mIgG2a)의 경우, 0.5ug을 사용했을 때 면역보조제 효과가 보였으나 CT120(mIgG2a)에 비해서는 낮게 나타났다.
실시예
4:
H3N2
백신을 항원으로 하여
CT120
과
CT149
의 면역보조제 효과 확인
H1N1 백신에 대한 CT120과 CT149의 면역보조제로서의 효과를 실시예 1 내지 3을 통하여 확인한 데 이어, 또 다른 influenza virus strain인 Philippines/2/82(H3N2)를 이용하여 H3N2 백신(cell based)을 생산한 후, 이를 이용하여 H3N2 백신에 대한 CT120과 CT149의 면역보조제 효과를 확인하기 위한 동물 실험을 진행하였다.
4-1. 항체 생성 결과
하기의 표 9와 같이, 치료용 항체의 면역보조제 효과를 검증하기에 앞서 적절한 항원 농도 결정을 위한 동물 실험을 진행하였다. H3N2 백신을 0.01ug에서 1ug까지 단독으로 투여하거나 Alum 면역보조제와 같이 투여한 후 ELISA를 통해 항체 역가를 확인하고 HI를 통해 중화 항체 역가를 확인하였다. 또한, 방어 면역 효과를 확인하기 위하여 mouse adapted Philippines/2/82(H3N2) virus를 감염시켜 생존율 및 몸무게의 변화 양상도 확인하였다.
상기의 표 9와 같이 H3N2 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사한 후, 각각의 실험군에서 유도되는 면역 반응을 확인하였다. 각 근육 주사 2주 후, 각각의 실험군에서 혈청을 채취하여 혈청 내 H3N2 virus에 대한 항체 역가를 ELISA를 통해서 확인하고, 중화 항체 역가를 HI assay를 통해 확인하였다.
도 8의 결과와 같이, 항체의 역가는 투여된 항원의 양에 비례하여 증가되는 것을 확인할 수 있었고, Alum 면역보조제를 같이 넣어준 경우에 대체적으로 항체 역가가 더 높게 나오는 것을 확인하였다.
상기의 표 10의 결과와 같이 항원만을 넣어준 실험군에 비해 Alum을 같이 넣어준 실험군에서의 HI titer가 높은 것을 확인하였다. 또한, 항원 0.01ug와 0.05ug을 넣어준 실험군(그룹 12 및 10)에서는 HI titer를 확인할 수 없었지만, 면역보조제인 Alum을 함께 넣어준 실험군(그룹 13 및 11)에서는 HI titer가 각각 160, 640으로 상승하는 것을 확인하였다.
4-2. 방어 면역 결과
인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역을 확인하기 위해, 두 번째 면역 4주 후에 10MLD50의 A/Philippines/2/82 H3N2 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하여 감염시키고, 이후 15일 동안 상기 mouse의 생존율과 몸무게 변화를 확인하였다.
도 9의 결과와 같이, 저용량의 항원, 즉 항원 0.01ug와 항원 0.05ug를 단독 투여한 실험군을 제외한 실험군에서 면역반응 효과가 높은 것을 확인하였다.
4-3. 소결
H3N2 백신 조성물의 경우도, 실시예 3에서 수행한 H1N1 실험에서 사용한 항원 농도(0.05ug)에서 면역보조제의 유무에 따른 HI titer와 생존율의 차이를 나타내었다. 따라서 이로부터 결정된 H3N2 항원농도 0.05ug을 이용하여 치료용 항체인 CT120과 CT149의 면역보조제 효과를 확인하는 동물 실험을 실시예 3과 동일한 방법으로 진행함으로써 H3N2 백신을 항원으로 한 CT120 및 CT149의 면역보조제로서의 효과를 확인하였다.
실시예 5: 독감 백신의 면역보조제 역할에 대한 기작 연구
상기 실시예 1 내지 4의 실험으로부터 치료용 독감 항체가 독감 백신의 효과를 증진시키는 면역보조제로서의 역할을 한다는 결과를 얻었다. 따라서 이와 같은 면역보조제 효과를 발생시키는 기작을 연구하기 위한 동물 실험을 진행하였다.
치료용 항체가 독감 백신에 대한 면역보조제 효과를 보이는 기작에 대한 가설은 항체의 Fc 부분이 면역 세포에 존재하는 Fc 수용체에 binding함으로써 독감 백신에 대한 면역 반응이 더 효율적으로 일어날 수 있다는 것이다.
상기 가설을 증명하기 위해서, 실시예 3에서 면역보조제로서의 효과를 가장 뚜렷하게 보인 CT120(mIgG2a) 0.1ug와 0.5ug의 항체 농도를 선정하여, 온전한 형태의 CT120(mIgG2a)과 Fc 부분이 제거된 CT120(mIgG2a) F(ab')2을 표 11과 같이 다양한 양으로 0.05ug의 H1N1 백신과 반응시켜 mouse에 근육 주사한 후, 유도되는 면역 반응을 확인하였다.
5-1. 항체 생성 결과
하기의 표 11과 같이, CT120(mIgG2a) 투여군의 경우 실시예 3에서 H1N1 백신의 면역보조제로서 가장 좋은 효과를 보인 농도인 0.1ug과 0.5ug로 실험을 진행하였고, CT120(mIgG2a) F(ab')2 투여군의 경우 CT120(mIgG2a)과 동일한 양을 투여하는 그룹과 CT120(mIgG2a) 0.5ug, 0.1ug일 때의 백신 물질과의 molar ratio와 동일하도록 CT120(mIgG2a) F(ab')2의 양을 계산하여 투여하는 그룹으로 나누어 실험을 진행하였다.
H1N1 백신을 다양한 농도의 CT120(mIgG2a) 혹은 CT120(mIgG2a) F(ab')2를 섞어 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 상기의 표 11과 같이 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사한 후, 각각의 실험군에서 유도되는 면역 반응을 확인하였다. 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 각각의 실험군에서 혈청을 채취하여 혈청 내 ELISA를 통한 H1N1 virus에 대한 항체 역가와 HI를 통한 H1N1 virus에 대한 중화 항체 역가를 확인하였다.
도 10의 결과와 같이, 항체의 역가는 CT120(mIgG2a) F(ab')2를 넣어준 경우에 상대적으로 낮게 나타나긴 했지만, 항체 역가의 차이는 모든 실험군에서 유의미한 차이를 나타내지 않았다.
상기의 표 12의 결과와 같이, CT120(mIgG2a) F(ab')2를 면역보조제로 사용한 모든 실험군(그룹 8 내지 11)에서의 HI titer는 면역보조제 없이 H1N1 백신을 단독으로 투여한 실험군(그룹 2)에서 나타나는 HI titer와 유사한 값을 나타냈다. 그에 비해, 온전한 모양의 CT120(mIgG2a)를 면역보조제로 사용한 실험군(그룹 6 및 7)은 HI titer가 각각 160과 80으로 H1N1 백신을 단독으로 투여한 실험군(그룹 2)에 비해서 HI titer가 8배, 4배 증가하였다.
5-2. 방어 면역 결과
인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역을 확인하기 위해, 두 번째 면역 4주 후에 10MLD50의 CA/04/09 H1N1 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하여 감염시키고, 이후 15일 동안 상기 mouse의 생존율을 확인하였다.
상기의 표 13의 결과와 같이, 온전한 모양의 CT120(mIgG2a)을 면역보조제로 넣어준 실험군(그룹 6 및 7)은 실시예 3에서와 같이 높은 생존율을 확인하였음에 비하여, CT120(mIgG2a) F(ab')2를 면역보조제로 넣어준 실험군(그룹 8 내지 11)은 항원을 단독으로 투여한 실험군(그룹 2)과 비슷한 생존율을 보이는 것을 확인하였다.
5-3. 소결
이와 같은 결과를 통해 항체의 Fc 부분이 독감 백신의 면역보조제로 역할을 하는데 중요하게 작용한다는 것을 확인하였다.
실시예 6: 독감 백신의 면역보조제의 타겟 면역 세포 발굴
6-1. 타겟 면역 세포 확인 결과
실시예 5에서 독감 항체의 Fc 부분이 면역보조제로서의 역할에 중요하게 작용함을 확인하였다. 이를 토대로, Fc 수용체를 발현하는 면역 세포 중 Fc 부위와 결합함에 따라 면역 반응이 달라지는 세포를 발굴하고자 동물 실험을 진행하였다. 항체의 양은 실시예 3을 통해서 H1N1 백신의 면역보조제로서 가장 좋은 효과를 보인 mouse form의 CT120(mIgG2a) 0.5ug을 선정하였다.
H1N1 백신과 면역보조제를 섞어 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 상기의 표 14와 같이, mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사하였다. 그로부터 1일, 3일, 7일 후에 각각의 mouse에서 비장과 샅고랑림프절을 분리하여 다양한 면역 세포 수와 비율을 확인하였다.
도 11 및 12의 결과와 같이, H1N1 백신과 CT120(mIgG2a)를 넣어준 경우, 두 번의 근육 주사 후 1일이 지난 시점에서 비장과 샅고랑림프절 모두에서 B 세포가 다른 투여군에 비해 약 2배 이상 증가되었음을 확인하였다. 3일과 7일에서는 비교적 유사한 정도의 세포 비율이 보였다.
이와 같은 결과를 통해, CT120 면역보조제는 Fc 부위를 통해 B 세포의 면역 반응을 증진시키는 것을 확인하였다. CT120 F(ab')2을 투여한 그룹의 경우, 대조군인 PBS를 투여한 mouse와 차이점을 발견할 수 없었기 때문에 Fc 부위의 중요성을 한 번 더 확인할 수 있었다. 이로부터 CT120 면역보조제는 상업화된 면역보조제인 Alum과는 상이한 기작으로 H1N1 백신 물질의 면역원성을 높이는 것을 알 수 있었다.
6-2. B 세포 방어 면역 결과
상기 실시예 6-1에서 CT120 면역보조제가 B 세포 면역을 증진시키는 것을 확인하였다. 이를 토대로, virus를 접종한 상태에서도 CT120 면역보조제가 B 세포 방어 면역에 관여할 수 있는지 확인하는 동물 실험을 진행하였다.
상기의 표 15와 같이 H1N1 백신 조성물을 mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사 후, 4주 뒤에 10MLD50의 CA/04/09 H1N1 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하였다. 바이러스 감염으로부터 1일, 3일이 경과하였을 때, 각각의 mouse에서 비장과 체내 림프절을 분리하여 전체 세포 내에서 B 세포가 차지하는 비율을 유세포분석기로 확인하였다.
도 13의 결과와 같이 바이러스 감염 후 1일 째 비장을 분석한 결과, H1N1 백신과 CT120을 함께 투여한 실험군에서 PBS 대조군 대비 약 10% 정도 증가된 B 세포를 확인할 수 있었다. 백신에 Alum을 함께 투여한 실험군도 PBS 대조군에 비해 유의성 있게 증가하였으나 CT120을 넣은 실험군보다 B 세포의 비율이 크게 증가하지 않았다. 또한, 다른 군들은 미성숙한 B 세포의 형태인 B-1 세포 (CD19 + B220-)가 존재하고 있지만 H1N1 백신에 CT120을 주사한 실험군은 B-1 세포에서 더 성숙한 형태의 B-2 세포 (CD19+B220+)만 존재하고 있다. 림프절의 경우, 비장에서 보이는 현상과 같이 B 세포의 비율이 급격하게 증가하지는 않았지만, 3회 반복 실험에서 유의성 있게 증가함을 확인할 수 있었다.
6-3. 소결
이와 같은 결과를 통해, CT120을 면역보조제로 사용하게 되면 더 성숙한 형태의 B 세포가 빠르게 형성되는 것을 알 수 있었다.
실시예 7: 상업화 면역보조제와 CT120의 효과 비교
상기 실시예를 통해서 CT120가 독감 백신의 면역보조제로서 효과가 있음을 확인한 데 이어 이러한 효과를 현재 독감 백신에 사용되는 면역보조제의 효과와 비교하는 실험을 진행하였다. 현재 시판 중인 계절성 독감 백신에서 사용하는 면역보조제는 노바티스의 Fluad에 사용되는 MF59이다. 하기 비교 실험에서는 MF59와 동일한 조성을 가지고 있는 AddaVax ™ (InvivoGen, Catalog # vac-adx-10)를 사용하였다.
7-1. 항체 생성 결과
실시예 3에서 H1N1 백신의 면역보조제로서 가장 좋은 효과를 보인 mouse form의 CT120(mIgG2a) 0.5ug, 0.1ug을 선정하여 실험을 진행하였다. 하기 표 16에서 Addvax 100%는 계절성 독감 백신의 HA 함량 45ug에 들어가는 면역보조제의 양을 의미한다.
H1N1 백신을 CT120(mIgG2a) 혹은 상업화된 면역보조제와 동일한 조성을 가진 Addvax와 섞어 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 상기의 표 16과 같이, mouse에 2주 간격으로 두 번 근육 주사한 후, 각각의 실험군에서 유도되는 면역 반응을 확인하였다. 첫 번째 근육 주사로부터 13일, 20일, 27일 후에 각각의 실험군에서 혈청을 채취하여 혈청 내 ELISA를 통한 H1N1 virus에 대한 항체 역가와 HI를 통한 H1N1 virus에 대한 중화 항체 역가를 확인하였다.
도 14의 결과와 같이, Addavax 100%를 투여한 실험군만이 CT120(mIgG2a)를 0.5ug, 0.1ug 투여한 실험군과 유사한 항체 역가를 나타내었고, Addavax 10%, 1%를 투여한 경우는 항체 역가가 낮게 나타나는 것을 확인할 수 있었다.
상기의 표 17의 결과와 같이, Addvax 100% 투여 실험군(그룹 8)은 CT120(mIgG2a)를 0.5ug, 0.1ug 투여한 실험군(그룹 6 및 7)과 유사한 HI titer를 보였지만, Addvax 1%, 10% 투여 실험군(그룹 10 및 9)은 H1N1 백신을 단독으로 투여한 실험군(그룹 2)과 유사 혹은 HI titer이 측정되지 않았다.
7-2. 방어 면역 결과
인플루엔자 바이러스에 대한 방어 면역을 확인하기 위해, 두 번째 면역 4주 후에 10MLD50의 CA/04/09 H1N1 virus를 면역화된 mouse 비강에 접종하여 감염시키고, 이후 15일 동안 상기 mouse의 생존율을 확인하였다.
상기의 표 18의 결과와 같이, Addavax 100% 투여한 실험군(그룹 8)이 CT120(mIgG2a)를 0.5ug, 0.1ug 투여한 실험군(그룹 6 및 7)과 유사한 생존율을 보이는 것을 확인하였으며, Addvax 1%, 10% 투여 실험군(그룹 10 및 9)은 생존율이 감소되는 것을 확인하였다.
7-3. 소결
이러한 결과를 통해, H1N1 백신에 CT120(mIgG2a)을 0.5ug, 0.1ug로 투여하였을 때에 나타나는 면역보조제로서의 효과가 상업화 독감 백신 HA 45ug에 들어가는 함량(Addavax 100%)의 면역보조제를 투여하였을 때 나타나는 면역보조제의 효과와 유사한 것을 확인하였다. 또한 실시예 4에서, CT149(mIgG2a) 0.5ug을 면역 보조제로 사용하였을 경우에도 CT120(mIgG2a) 0.1ug과 0.5ug으로 투여한 것과 유사한 결과를 얻었기에 CT149(mIgG2a)도 CT120(mIgG2a)의 결과와 유사한 효과를 기대할 수 있다.
<110> CELLTRION INC.
<120> Adjuvant composition comprising one or more influenza virus
neutralizing binding molecules and vaccine composition comprising
thereof
<130> CPD2015043KR
<160> 16
<170> KopatentIn 2.0
<210> 1
<211> 11
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 light chain CDR1
<400> 1
Arg Ala Ser Glu Asn Ile Trp Asn Asn Leu Ala
1 5 10
<210> 2
<211> 7
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 light chain CDR2
<400> 2
Gly Ala Ser Thr Gly Ala Thr
1 5
<210> 3
<211> 9
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 light chain CDR3
<400> 3
Gln Gln Tyr Asn Ser Trp Pro Arg Thr
1 5
<210> 4
<211> 5
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 heavy chain CDR1
<400> 4
Ser His Ala Ile Ser
1 5
<210> 5
<211> 17
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 heavy chain CDR2
<400> 5
Gly Ile Ser Pro Met Phe Gly Thr Thr His Tyr Ala Gln Lys Phe Gln
1 5 10 15
Gly
<210> 6
<211> 14
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 heavy chain CDR3
<400> 6
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1 5 10
<210> 7
<211> 12
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT149 light chain CDR1
<400> 7
Arg Ala Ser His Arg Val Gly Ser Thr Tyr Ile Ala
1 5 10
<210> 8
<211> 7
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT149 light chain CDR2
<400> 8
Gly Ala Ser Asn Arg Ala Thr
1 5
<210> 9
<211> 9
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT149 light chain CDR3
<400> 9
Gln Gln Phe Ser Val Ser Pro Trp Thr
1 5
<210> 10
<211> 5
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT149 heavy chain CDR1
<400> 10
Thr Tyr Gly Val Ser
1 5
<210> 11
<211> 17
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT149 heavy chain CDR2
<400> 11
Trp Ile Ser Ala Tyr Thr Gly Ile Thr Asp Tyr Ala Gln Lys Phe Gln
1 5 10 15
Gly
<210> 12
<211> 17
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT149 heavy chain CDR3
<400> 12
Asp Lys Val Gln Gly Arg Val Glu Val Gly Ser Gly Gly Arg His Asp
1 5 10 15
Tyr
<210> 13
<211> 234
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 light chain
<400> 13
Met Glu Ala Pro Ala Gln Leu Leu Phe Leu Leu Leu Leu Trp Leu Pro
1 5 10 15
Asp Thr Thr Gly Glu Ile Val Leu Thr Gln Ser Pro Ala Thr Leu Ser
20 25 30
Leu Ser Pro Gly Glu Arg Ala Thr Leu Ser Cys Arg Ala Ser Glu Asn
35 40 45
Ile Trp Asn Asn Leu Ala Trp Tyr Gln Gln Lys Pro Gly Gln Ala Pro
50 55 60
Arg Leu Leu Ile Ser Gly Ala Ser Thr Gly Ala Thr Gly Val Pro Ser
65 70 75 80
Arg Phe Arg Gly Ser Gly Ser Arg Thr Glu Phe Thr Leu Thr Ile Ser
85 90 95
Ser Leu Gln Ser Glu Asp Phe Ala Ile Tyr Phe Cys Gln Gln Tyr Asn
100 105 110
Ser Trp Pro Arg Thr Phe Gly Pro Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys Arg
115 120 125
Thr Val Ala Ala Pro Ser Val Phe Ile Phe Pro Pro Ser Asp Glu Gln
130 135 140
Leu Lys Ser Gly Thr Ala Ser Val Val Cys Leu Leu Asn Asn Phe Tyr
145 150 155 160
Pro Arg Glu Ala Lys Val Gln Trp Lys Val Asp Asn Ala Leu Gln Ser
165 170 175
Gly Asn Ser Gln Glu Ser Val Thr Glu Gln Asp Ser Lys Asp Ser Thr
180 185 190
Tyr Ser Leu Ser Ser Thr Leu Thr Leu Ser Lys Ala Asp Tyr Glu Lys
195 200 205
His Lys Val Tyr Ala Cys Glu Val Thr His Gln Gly Leu Ser Ser Pro
210 215 220
Val Thr Lys Ser Phe Asn Arg Gly Glu Cys
225 230
<210> 14
<211> 472
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CT120 heavy chain
<400> 14
Met Asp Trp Thr Trp Arg Phe Leu Phe Val Val Ala Ala Ala Thr Gly
1 5 10 15
Val Gln Cys Gln Val Gln Leu Val Gln Ser Gly Ala Glu Val Lys Met
20 25 30
Pro Gly Ser Ser Val Lys Val Ser Cys Lys Thr Ser Gly Val Phe Phe
35 40 45
Ser Ser His Ala Ile Ser Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Gln Gly Leu
50 55 60
Glu Trp Met Gly Gly Ile Ser Pro Met Phe Gly Thr Thr His Tyr Ala
65 70 75 80
Gln Lys Phe Gln Gly Arg Val Thr Ile Thr Ala Asp Gln Ser Thr Thr
85 90 95
Thr Ala Tyr Met Glu Leu Thr Ser Leu Thr Ser Glu Asp Thr Ala Val
100 105 110
Tyr Tyr Cys Ala Arg Asp Gly Ala Gly Ser Tyr Tyr Pro Leu Asn Trp
115 120 125
Phe Asp Pro Trp Gly Gln Gly Thr Leu Val Thr Val Ser Ser Ala Ser
130 135 140
Thr Lys Gly Pro Ser Val Phe Pro Leu Ala Pro Ser Ser Lys Ser Thr
145 150 155 160
Ser Gly Gly Thr Ala Ala Leu Gly Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro
165 170 175
Glu Pro Val Thr Val Ser Trp Asn Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val
180 185 190
His Thr Phe Pro Ala Val Leu Gln Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser
195 200 205
Ser Val Val Thr Val Pro Ser Ser Ser Leu Gly Thr Gln Thr Tyr Ile
210 215 220
Cys Asn Val Asn His Lys Pro Ser Asn Thr Lys Val Asp Lys Arg Val
225 230 235 240
Glu Pro Lys Ser Cys Asp Lys Thr His Thr Cys Pro Pro Cys Pro Ala
245 250 255
Pro Glu Leu Leu Gly Gly Pro Ser Val Phe Leu Phe Pro Pro Lys Pro
260 265 270
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Claims (9)
- 삭제
- 삭제
- 1 이상의 인플루엔자 바이러스 항체를 포함하는 애주번트(adjuvant) 조성물로서,
상기 항체는 인플루엔자 A 바이러스의 헤마글루티닌(HA) 단백질에 결합하고, 면역 세포에 존재하는 Fc 수용체에 결합하고
상기 항체의 에피토프는
i) HA1 폴리펩티드의 위치 18, 38, 40, 291, 292, 및 318의 아미노산 잔기(residue)를 포함하고, HA2 폴리펩티드의 위치 18, 19, 20, 21, 41, 42, 45, 48, 49, 52, 및 53의 아미노산 잔기를 포함하는 에피토프; 및
ii) HA1 폴리펩티드의 위치 278 및 318의 아미노산 잔기를 포함하고, HA2 폴리펩티드의 위치 38, 39, 41, 42, 45, 48, 49, 52, 및 53의 아미노산 잔기를 포함하는 에피토프
로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 에피토프임을 특징으로 하는 애주번트 조성물.
- 제3항에 있어서,
상기 항체는
i) 카밧 방법(Kabat method)에 따라, 서열번호 1의 CDR1 영역, 서열번호 2의 CDR2 영역, 및 서열번호 3의 CDR3 영역을 포함하는 경쇄 가변영역 및 서열번호 4의 CDR1 영역, 서열번호 5의 CDR2 영역, 및 서열번호 6의 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 가변영역을 포함하는 항체; 및
ii) 카밧 방법(Kabat method)에 따라, 서열번호 7의 CDR1 영역, 서열번호 8의 CDR2 영역, 및 서열번호 9의 CDR3 영역을 포함하는 경쇄 가변영역 및 서열번호 10의 CDR1 영역, 서열번호 11의 CDR2 영역, 및 서열번호 12의 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 가변영역을 포함하는 항체
로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 항체임을 특징으로 하는 애주번트 조성물.
- 제3항에 있어서,
상기 항체는
i) 서열번호 13의 폴리펩티드 서열을 포함하는 경쇄 및 서열번호 14의 폴리펩티드 서열을 포함하는 중쇄를 포함하는 항체; 및
ii) 서열번호 15의 폴리펩티드 서열을 포함하는 경쇄 및 서열번호 16의 폴리펩티드 서열을 포함하는 중쇄를 포함하는 항체
로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 항체임을 특징으로 하는 애주번트 조성물.
- 제3항 내지 제5항 중 어느 한 항의 애주번트 조성물 및 인플루엔자 바이러스 항원을 포함하는 백신 조성물.
- 삭제
- 제6항에 있어서,
상기 항원과 애주번트 조성물의 중량비가 1:0.02 내지 1:200임을 특징으로 하는 백신 조성물.
- 제3항 내지 제5항 중 어느 한 항의 애주번트 조성물 및 인플루엔자 바이러스 항원을 포함하는 백신 조성물을 제조하는 방법.
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