KR101539009B1 - Method for plantlet formation of Cypripedium macranthum Sw. using bioreactor - Google Patents

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Abstract

본 발명은 생물반응기를 이용한 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.)의 유묘 형성 방법에 관한 것으로, 구체적으로 풍선형(ballon type) 생물반응기에서 복주머니란 배양을 위한 최적 조건을 확립하고, 상기 최적조건으로 배양한 복주머니란의 원괴체(protocorm), 신아(new bud) 및 유식물체 형성율이 우수하므로, 복주머니란의 대량 증식에 유용하게 사용될 수 있다.The present invention relates to a method of seedling formation of Cypripedium macranthum Sw. Using a bioreactor, and more particularly, to establish an optimum condition for culturing a bag in a balloon type bioreactor, , And it can be usefully used for mass proliferation of bovine pancreas, because it is excellent in protocorm, new bud, and seedling planting rate.

Description

생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법{Method for plantlet formation of Cypripedium macranthum Sw. using bioreactor}[0001] The present invention relates to a method for forming a seedling of a bovine egg using a bioreactor. using bioreactor}

본 발명은 생물반응기를 이용한 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.)의 유묘 형성 방법에 관한 것이다.
The present invention relates to a method of seedling formation of a bacterium ( Cypripedium macranthum Sw.) Using a bioreactor.

복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.)은 난초과에 속하는 숙근성 다년초로서 우리말로 개불알꽃 또는 복주머니꽃으로 불리어지고 있다. 우리 나라에 자생하고 있는 Cypripedium속 식물은 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.), 털복주머니란(Cyp. guttatum var. koreanum), 노랑복주머니란(Cyp. calceolus), 광릉요강꽃(Cyp. japonicum) 등 4 종과 털복주머니란의 변종인 흰털복주머니란(Cyp. guttatum for. albiflorum) 등 5 종류가 있다. 복주머니란은 산기슭에서는 그늘에서 자라지만 산 위로 올라가면서 양지쪽 풀밭에서 자라며, 근경이 옆으로 자라나가 마디에서 뿌리가 내리고 초장은 25-40 cm이며 다세포의 털이 있다. 잎은 3-5 개이고, 연한 홍자색의 꽃이 5-7 월에 원줄기 끝에 1개가 피며, 특징인 순판(lip)이 주머니 같은 독특한 모양으로 변형되어 있어서 관상 가치가 높은 자생란 중의 하나이다.
Cypripedium macranthum Sw. ( Cypripedium macranthum Sw.) Is a stable perennial plant belonging to the orchidaceae family. The Cypripedium genus that is native to our country is called Cypripedium 4 varieties such as macranthum Sw., Cyp. guttatum var koreanum , Cyp. calceolus , Cyp. japonicum , Cyp. Guttatum for albiflorum ). Bamboo grass grows in the shade at the foot of the mountain, but grows on the grass in the bamboo grass, climbs up to the side, grows to the side, root is lowered from the hill, 25-40 cm in length and has multicellular hairs. The leaves are 3-5, and the flower of light purplish red color is bloomed at the end of the main stem in May-July, and the characteristic lip is transformed into a peculiar shape like pouch, which is one of the wild flowers with high ornamental value.

관상가치가 매우 뛰어나 이미 해외에서는 가장 인기 있는 자생란 중 하나인 복주머니란은 일본, 미국 등에서는 상품화되어 유통 중이며, 특히, 미국의 상업적 난 판매회사인 Vermont Lady's Slipper company에서는 복주머니란과 같은 Cypripedium속 식물인 광릉용강꽃을 촉당 70 달러에 판매하고 있어 상업적 가치가 매우 뛰어난 자생식물 중 하나이다. 이렇게 충분히 산업화 잠재력이 높음에도 불구하고 자생 복주머니란은 자연상태에서는 종자번식이 불가능하고 또한 재배법 미확립으로 퇴화하는 경향이 있어 원예용으로써 이용 개발에 한계가 있었다.
In the ornamental value is very outstanding already abroad jungyimyeo one of the most popular jasaengran in the bags field is in Japan, the United States has been commercialized distribution, particularly in the commercial, I sold the company in Vermont Lady's Slipper of the US company Cypripedium in such bags is It sells the plant Gwangneung dragon flower for $ 70 per person, which is one of the most valuable commercial plants. Despite its high potential for industrialization, the native bamboo field has been limited to use as a horticultural plant because it is impossible to breed seeds in the natural state, and it tends to be degraded due to insufficient cultivation.

2005년 야생동식물보호법이 발효되어 관련 법률이 제정되고 산림생물다양성 보전 기본계획에 의거하여 환경부를 중심으로 희귀 특산식물에 대한 보존 복원사업이 활발히 추진되고 있다. 현재 산림청 지정 특산 희귀식물로는 610 종이 있으며, 그 중 복주머니란속 5 종 중 광릉요강꽃은 65호, 복주머니란은 66호로 지정되어 있으나 산채 형태로 음성적인 수출이 이루어지고 있어 군락지 훼손 및 서식 개체수의 감소가 심각한 상황이다.
In 2005, the Wildlife Conservation Act was enacted, related laws were enacted, and conservation restoration projects for rare rare plants were actively pursued mainly by the Ministry of Environment in accordance with the Forest Biodiversity Conservation Master Plan. Currently, there are 610 species of rare plants designated by the Korean Forest Service. Among them, Gwangneung Yogang flower is designated as 65 and Bokbun column is designated as No. 66 among the five species of bamboo grass. However, Decrease in the number of habitats is a serious situation.

따라서 멸종위기종으로 지정된 복주머니란의 복원 증식 및 유망 자생식물 개발에 따른 화훼화 및 산업화를 위하여 효율적인 번식법 개발이 필요하였다. 그러나 기존에 알려진 복주머니란 종자번식법은 발아율이 낮고 발아기간을 포함한 배양기간이 매우 길며, 퇴화되거나 고사되는 경향이 있어 대량배양 및 순화 재배에 한계가 있었다. 따라서 복주머니란의 종자 발아율을 향상시키고, 발아 후 원괴체(protocorm, 原塊體)로부터 유묘(幼苗, 유식물체) 형성 단계를 최적화하는 대량배양 체계를 확립함으로써 유묘 생산의 효율을 높이는 배양 기술의 개발이 반드시 필요하였다. Therefore, it was necessary to develop an efficient breeding method for flower growth and industrialization in accordance with the restoration and propagation of the bifurcation line designated as an endangered species and the development of promising native plants. However, the known seedling breeding method has a low germination rate, a long incubation period including the germination period, and a tendency to be degenerated or dead, resulting in limitations on mass cultivation and cultivation. Therefore, it is necessary to improve the seed germination rate of bamboo seedlings and to establish a mass culture system that optimizes seedling formation from protocorm (germinal mass) after germination, Development was essential.

기존의 전통적인 고체배지를 이용한 배양 방법은 소규모 배양용기를 이용한 집약적 배양 형태로 이루어지므로 시간과 노동력이 많이 소요되며, 배양용기의 용적 활용도가 낮고 자동화가 불가능한 단점이 있어 개선의 필요성이 대두되어 왔다. 현재 이러한 단점을 보완하기 위하여 다양한 형태와 규모의 생물반응기(生物反應機)를 식물의 세포 및 기관배양에 적용하고 있으며, 공정 자동화 및 최적화를 통해 대량 증식효율을 높이는 배양시스템이 실용화되고 있다. 상업화 개발 사례로는 택솔함암제(주목), 생체방어제 및 당뇨치료제(산삼) 등이 있다. 생물반응기를 이용한 배양 형태는 용기 내부로 적정수준의 공기 공급이 가능하여 반응기 용적의 90% 이상을 활용할 수 있고, 공기량, 산도, 온도, 액체배지 공급량 등을 조절할 수 있어 자동화가 가능한 이점이 있다.
Since conventional culture methods using conventional solid media are performed in an intensive culture form using a small scale culture container, it takes a lot of time and labor, and there is a disadvantage that the volume utilization of the culture container is low and automation is impossible. To overcome these disadvantages, various types and sizes of bioreactors have been applied to plant cell and organ culture, and a culture system for increasing mass proliferation efficiency through process automation and optimization has been put into practical use. Examples of commercialization development include taxol cancer drugs (attention), biologics and diabetic drugs (wild ginseng). The culture type using the bioreactor can provide an appropriate level of air to the inside of the vessel, which makes it possible to utilize more than 90% of the reactor volume and to control the amount of air, acidity, temperature, and liquid medium supply.

이에 본 발명자들은 멸종위기종 자생 복주머니란의 보존·복원 및 원예화를 위한 대량 증식을 위한 방법을 찾기 위하여, 풍선형(ballon type) 생물반응기에서 복주머니란 배양을 위한 최적 조건을 확립하여 배양한 결과, 복주머니란의 원괴체, 신아(new bud) 및 유식물체 형성율이 현저하게 우수함을 확인함으로써, 상기 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법이 복주머니란의 대량 증식에 유용하게 이용될 수 있음을 밝힘으로써 본 발명을 완성하였다.
Accordingly, the present inventors have established an optimum condition for culturing a bovine bag in a balloon type bioreactor in order to find a method for mass proliferation for preservation, restoration and horticulture of endangered species species bovine egg As a result, it was confirmed that the rate of formation of the raw gut, new bud, and seedling plant of the bumblebug was remarkably excellent, so that the seedling formation method using the bioreactor was useful for mass proliferation of the bumblebug column The present invention has been accomplished on the basis of these findings.

본 발명의 목적은 SUMMARY OF THE INVENTION

1) 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.) 종자를 기내(in vitro) 파종 배지에 배양하여 원괴체(protocorm)를 형성하는 단계; 및1) Cypripedium macranthum Sw.) in flight ( in vitro ) seeding medium to form a protocorm; And

2) 상기 단계 1)의 원괴체를 생물반응기에 접종하고 생물반응기 배양 배지로 배양하여 유묘를 형성하는 단계를 포함하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법을 제공하기 위한 것이다.
2) Inoculating the raw mass of step 1) into a bioreactor and culturing the same in a bioreactor culture medium to form a seedling.

본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은In order to achieve the object of the present invention,

1) 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.) 종자를 기내(in vitro) 파종 배지에 배양하여 원괴체(protocorm)를 형성하는 단계; 및1) Cypripedium macranthum Sw.) in flight ( in vitro ) seeding medium to form a protocorm; And

2) 상기 단계 1)의 원괴체를 생물반응기에 접종하고 생물반응기 배양 배지로 배양하여 유묘를 형성하는 단계를 포함하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법을 제공한다.
2) Inoculating the raw mass of step 1) into a bioreactor and culturing in a bioreactor culture medium to form a seedling.

본 발명은 생물반응기를 이용한 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.)의 유묘 형성 방법에 관한 것으로, 구체적으로 풍선형(ballon type) 생물반응기에서 복주머니란 배양을 위한 최적 조건을 확립하여 배양한 결과, 복주머니란의 원괴체(protocorm), 신아(new bud) 및 유식물체 형성율이 유의적으로 우수하므로, 상기 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법을 복주머니란의 대량 증식에 유용하게 이용할 수 있다.
The present invention relates to a method of forming a seedling of Cypripedium macranthum Sw. Using a bioreactor, and more specifically, it has been found that an optimal condition for culturing a bovine bag was established in a balloon type bioreactor, Since the formation rate of protocorm, new bud, and seedling plant of bovine rice bran is significantly superior, the seedling formation method using the bioreactor is useful for mass proliferation of bovine rice bran. .

도 1은 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.) 종자 소독방법별 종자 형태를 나타낸 도이다.
도 2는 복주머니란 종자 기내(in vitro) 파종 후 종자에서 발아된 원괴체(protocorm)를 나타낸 도이다.
도 3은 복주머니란 원괴체 접종밀도별 신아(new bud) 및 유묘 초기 형성을 나타낸 도이다.
도 4는 생물반응기 내로 주입되는 공기 공급량별 복주머니란 신아 및 유묘 초기 형성을 나타낸 도이다.
도 5는 배양 배지 내 수크로오스 (sucrose) 함량별 복주머니란 신아 및 유묘 초기 형성을 나타낸 도이다.
도 6은 배지공급 및 배양체 배양방식별 복주머니란 신아 및 유묘 초기 형성을 나타낸 도이다.
도 7은 복주머니란 배양기간별 배지 내 수크로오스 잔존 함량을 나타낸 도이다.
도 8은 유리온실 식재 후 1 년 뒤의 복주머니란의 유묘 및 유식물체를 관찰한 도이다.
Brief Description of the Drawings Fig. 1 is a cross- macranthum Sw.) seed seed sterilization method.
FIG. 2 is the seed bags on board (in vitro) is a diagram showing a source goeche (protocorm) germination after sowing seeds.
FIG. 3 is a graph showing the initial formation of a new bud and a seedling according to the seeding density of the raw goat.
FIG. 4 is a graph showing the initial formation of a new baby and seedling according to the amount of air supplied into the bioreactor.
FIG. 5 is a graph showing the initial formation of newborn seedlings and embryo seedlings according to the content of sucrose in the culture medium.
Fig. 6 is a diagram showing the initial formation of newborn seedlings and embryo seedlings according to the culture medium supply method and cultivation method.
Fig. 7 is a graph showing the content of sucrose remaining in the medium by incubation period.
Fig. 8 is a view showing the seedlings and seedling plants of the bovine rice field one year after the glasshouse planting.

이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
Hereinafter, the present invention will be described in detail.

본 발명은The present invention

1) 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.) 종자를 기내(in vitro) 파종 배지에 배양하여 원괴체(protocorm)를 형성하는 단계; 및1) What is a bag (Cypripedium macranthum Sw.) Seeds on board (in vitro) Seeding medium to form a protocorm; And

2) 상기 단계 1)의 원괴체를 생물반응기에 접종하고 생물반응기 배양 배지로 배양하여 유묘를 형성하는 단계를 포함하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법을 제공한다.2) Inoculating the raw mass of step 1) into a bioreactor and culturing in a bioreactor culture medium to form a seedling.

상기 단계 1)의 복주머니란과 동속 식물은 본 발명과 동일한 유묘 형성 방법을 이용할 수 있다.The same seedling formation method as that of the present invention can be used for the bushbone field in step 1).

상기 단계 1)의 복주머니란 종자는 복주머니란을 타가수분(cross-pollination)하여 인공 교배한 후, 60 내지 70일 지난 씨방을 열개하여 채취하는 것이 바람지하나 이에 한정되지 않는다.The seeds of the step 1) are preferably those obtained by cross-pollination of the seeds of the bovine cells and artificially crossing the seeds of the bovine seeds, and then collecting the ovaries after 60 to 70 days.

상기 단계 1)의 복주머니란 종자는 씨방에서 분리하여 종자 표면을 70% 에탄올에 20 내지 40 초간 침지한 후, 2% 차아염소산나트륨(NaOCl) 용액으로 10 내지 15 분간 침지하여 소독하는 것이 바람직하고, 70% 에탄올에 30 초간 침지하는 것이 보다 바람직하다.The seeds of the step 1) are preferably separated from the ovary and the seed surface is immersed in 70% ethanol for 20 to 40 seconds, followed by immersion in 2% sodium hypochlorite (NaOCl) solution for 10 to 15 minutes , It is more preferable to immerse in 70% ethanol for 30 seconds.

상기 소독된 종자는 멸균수를 이용하여 10 내지 15 분간 2 내지 4 회 세척하는 단계를 추가적으로 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 않는다.Preferably, the sterilized seed is washed with sterilized water for 2 to 4 times for 10 to 15 minutes, but is not limited thereto.

상기 단계 1)의 기내 파종 배지는 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.175 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.0 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.65 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 0.0625 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, Na2EDTA 18.62 mg/ℓ, FeSO4·7H2O 13.93 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ 및 수크로오스(sucrose) 10.00 g/ℓ)에 미오이노시톨(Myo-Inositol) 20 내지 30 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.2 내지 0.3 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.12 내지 0.13 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.12 내지 0.13 mg/ℓ, 코코넛워터 3 내지 8%를 첨가하여 제조한 배지인 것이 바람직하고, 미오이노시톨 25 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.25 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.125 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.125 mg/ℓ, 코코넛워터 5%를 첨가하여 제조한 배지인 것이 보다 바람직하다.Flight planting medium of step 1) is 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, NH 4 NO 3 412.50 mg / ℓ, MgSO 4 45.175 mg / ℓ, KNO 3 475.00 mg / ℓ, KH 2 PO 4 42.50 mg / ℓ, CaCl 2 83.0 mg / ℓ, CoCl 2 · 6H 2 O 0.00625 mg / ℓ, ZnSO 4 · 7H 2 O 2.65 mg / ℓ, Na 2 MoO 4 · 2H 2 O 0.0625 mg / ℓ, MnSO 4 · H 2 O 4.225 mg / l, H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, Na 2 EDTA 18.62 mg / ℓ, FeSO 4 · 7H 2 O 13.93 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg / ℓ and sucrose (sucrose) 10.00 g / ℓ) Inositol 20 to 30 mg / l, Thiamine HCl 0.2 to 0.3 mg / l, Nicotinic acid 0.12 to 0.13 mg / l, Pyridoxine HCl 0.12 to 0.13 mg / / L and 3 to 8% of coconut water. Preferably, it is a medium prepared by adding 25 mg / L of myoinositol, 0.25 mg / L of thiamine HCl, 0.125 mg / L of nicotinic acid, (Pyridoxine HCl) 0.125 mg / L, and coconut water 5%.

상기 단계 2)의 생물반응기 배양 배지는 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.175 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.00 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.65 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 2.65 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, Na2EDTA 18.62 mg/ℓ, FeSO4·7H2O 13.93 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ 및 수크로오스 10.00 g/ℓ)에 수크로오스 10 내지 20 g/ℓ, 미오이노시톨 90 내지 110 mg/ℓ, 티아민 HCl 0.5 내지 1.5 mg/ℓ, 니코틴산 0.3 내지 0.8 mg/ℓ, 피리독신 HCl 0.3 내지 0.8 mg/ℓ, 코코넛워터 7 내지 13% 및 PPM(Plant Preservative Mixture) 0.7 내지 1.3 ㎖를 첨가하여 제조한 배지인 것이 바람직하고, 수크로오스 20 g/ℓ, 미오이노시톨 100 mg/ℓ, 티아민 HCl 1 mg/ℓ, 니코틴산 0.5 mg/ℓ, 피리독신 HCl 0.5 mg/ℓ, 코코넛워터 10% 및 PPM 1 ㎖를 첨가하여 제조한 배지인 것이 보다 바람직하다.The bioreactor culture medium of step 2) is 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, NH 4 NO 3 412.50 mg / ℓ, MgSO 4 45.175 mg / ℓ, KNO 3 475.00 mg / l, KH 2 PO 4 42.50 mg / l, CaCl 2 83.00 mg / l of CoCl 2 .6H 2 O, 2.65 mg / l of ZnSO 4 .7H 2 O, 2.65 mg / l of Na 2 MoO 4 .2H 2 O, 4.225 mg / l of MnSO 4 .H 2 O , H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, Na 2 EDTA 18.62 mg / ℓ, FeSO 4 · 7H 2 O 13.93 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O in sucrose 10 0.00625 mg / ℓ and sucrose 10.00 g / ℓ) To about 20 mg / l, myoinositol 90-110 mg / l, thiamine HCl 0.5-1.5 mg / l, nicotinic acid 0.3-0.8 mg / l, pyridoxine HCl 0.3-0.8 mg / l, coconut water 7-13% Plant Preservative Mixture), 0.7-1.3 ml, and preferably 20 g / l sucrose, 100 mg / l myoinositol, 1 mg / l thiamine HCl, 0.5 mg / l nicotinic acid, 0.5 mg / l pyridoxine HCl, l, coconut water 10% and 1 ml of PPM.

상기 단계 2)의 생물반응기 배양 배지는 1/4 Murashige & Skoog Medium(Including Modified Vitamins, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.135 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.01 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.15 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 0.0625 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, FeNaEDTA 9.175 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ및 글라이신(Glycine) 0.50 mg/ℓ)에 수크로오스 20 내지 30 g/ℓ, 미오이노시톨 70 내지 80 mg/ℓ, 티아민 HCl 0.7 내지 0.8 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.3 내지 0.4 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.3 내지 0.4 mg/ℓ, 코코넛워터 7 내지 13% 및 PPM 0.7 내지 1.3 ㎖를 첨가하여 제조한 배지인 것이 바람직하고, 수크로오스 30 g/ℓ, 미오이노시톨 75 mg/ℓ, 티아민 HCl 0.75 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.375 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.375 mg/ℓ, 코코넛워터 10% 및 PPM 1 ㎖를 첨가하여 제조한 배지인 것이 보다 바람직하다.The bioreactor culture medium of step 2) was diluted with 1/4 Murashige & Skoog Medium (Included Modified Vitamins, NH 4 NO 3 412.50 mg / l, MgSO 4 45.135 mg / l, KNO 3 475.00 mg / l, KH 2 PO 4 42.50 mg / ℓ, CaCl 2 MnSO 4揃 H 2 O 4.225 mg / ℓ, MnSO 4揃 H 2 O, 0.025 mg / ℓ, CoCl 2揃 6H 2 O 0.00625 mg / ℓ, ZnSO 4揃 7H 2 O 2.15 mg / ℓ, Na 2 MoO 4揃 2H 2 O 0.0625 mg / , H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, FeNaEDTA 9.175 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg / ℓ and Glycine (Glycine) in the 0.50 mg / ℓ) of sucrose of 20 to 30 g / ℓ, myoinositol 70 to (Pyridoxine HCl) 0.3 to 0.4 mg / l, coconut water 7 to 13% and PPM 0.7 to 1.3 mg / l, And the medium prepared by adding sucrose 30 g / l, myoinositol 75 mg / l, thiamine HCl 0.75 mg / l, nicotinic acid 0.375 mg / l, pyridoxine HCl 0.375 mg / / l, 10% coconut water and 1 ml of PPM.

상기 단계 2)의 배양은 배지 1 ℓ당 3 내지 7 mm의 원괴체를 2 내지 4 g 접종하여 암조건 하에서 배양하는 것이 바람직하고, 배지 1 ℓ당 5 mm의 원괴체를 배양하는 것이 보다 바람직하다.The cultivation in step 2) is preferably carried out under a dark condition by inoculating 2 to 4 g of a raw mass of 3 to 7 mm per liter of the medium, and it is more preferable to culture the raw mass of 5 mm per liter of the medium .

상기 단계 2)의 생물반응기 배양 배지는 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(immersion culture system)으로 공급되는 것이 바람직하다.The bioreactor culture medium of step 2) is preferably supplied in an immersion culture system without netting.

상기 단계 2)의 생물반응기 배양 배지는 배양 후 4 내지 5 주에 한 번씩 새로운 배지로 교체되는 것이 바람직하다.Preferably, the bioreactor culture medium of step 2) is replaced with fresh medium every 4 to 5 weeks after the culture.

상기 단계 2)의 생물반응기는 0.1 내지 0.2 vvm 공기가 주입되는 것이 바람직하고, 0.2 vvm 공기가 주입되는 것이 보다 바람직하다.
The bioreactor in step 2) is preferably injected with 0.1 to 0.2 vvm air, and more preferably injected with 0.2 vvm air.

본 발명의 구체적인 실시예에서, 본 발명자들은 복주머니란의 종자 발아기간을 줄이고 종자 발아율을 높이기 위하여, 4월 말에서 5월 중순경 개화한 복주머니란을 타가수분(cross-pollination)하여 인공 교배한 후, 60-70 일 정도 지난 씨방(종자가 들어있는 꼬투리) 내부에 들어 있는 종자를 모아 세척 및 소독하고, 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.175 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.0 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.65 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 0.0625 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, Na2EDTA 18.62 mg/ℓ, FeSO4·7H2O 13.93 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ 및 수크로오스(sucrose) 10.00 g/ℓ)에 미오이노시톨(Myo-Inositol) 25 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.25 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.125 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.125 mg/ℓ, 코코넛워터 5 %를 첨가하여 제조한 배지 100 ㎖가 들어있는 배양병(외경 81 mm, 높이 132 mm)에 넣고 광을 차단한 암상태로 액체(진탕) 배양한 결과, 상기 복주머니란 종자 발아율이 향상되고 오염율이 개선되며, 종자가 3-4 개월 후 발아되어 원괴체를 형성함을 확인하였다(도 1 및 도 2, 및 표 1 및 표 2 참조).In a specific embodiment of the present invention, in order to reduce the seed germination period of bamboo seedlings and increase the germination rate of seeds, the present inventors cross-pollinated the bamboo seedlings bloomed from the end of April to the middle of May, After seeding, seeds inside the ovary (pod containing seeds) of about 60-70 days were collected, washed and disinfected, and washed with 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, NH 4 NO 3 412.50 mg / , MgSO 4 45.175 mg / ℓ, KNO 3 475.00 mg / ℓ, KH 2 PO 4 42.50 mg / ℓ, CaCl 2 83.0 mg / ℓ, CoCl 2 · 6H 2 O 0.00625 mg / ℓ, ZnSO 4 · 7H 2 O 2.65 mg / L, Na 2 MoO 4 .2H 2 O 0.0625 mg / L, MnSO 4 .H 2 O 4.225 mg / L, H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, Na 2 EDTA 18.62 mg / ℓ, FeSO 4 · 7H 2 O 13.93 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg / ℓ and sucrose (sucrose) 10.00 g / ℓ) 25 mg / l of myo-inositol, 0.25 mg / l of thiamine HCl, 0.125 mg / l of nicotinic acid, 0.125 mg / l of pyridoxine HCl and 5% of coconut water As a result of culturing liquid (shaking) in a dark state in which light was blocked by putting it in a culture bottle (outer diameter: 81 mm, height: 132 mm) containing 100 ml of the prepared medium, the bovine bag improved seed germination rate and contamination rate And seeds were germinated 3-4 months later to form a lozenge (see FIGS. 1 and 2, and Tables 1 and 2).

또한, 본 발명자들은 복주머니란 대량 배양을 위한 생물반응기 이용 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.175 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.00 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.65 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 2.65 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, Na2EDTA 18.62 mg/ℓ, FeSO4·7H2O 13.93 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ 및 수크로오스 10.00 g/ℓ)에 수크로오스 20 g/ℓ, 미오이노시톨(Myo-Inositol) 100 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 1 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.5 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.5 mg/ℓ, 코코넛워터 10% 및 PPM(Plant Preservative Mixture, Plant Cell Technology) 1 ㎖를 첨가하여 제조하거나, 또는 1/4 Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.135 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.01 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.15 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 0.0625 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, FeNaEDTA 9.175 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ및 글라이신(Glycine) 0.50 mg/ℓ)에 수크로오스 30 g/L, 미오이노시톨(Myo-Inositol) 75 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.75 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.375 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.375 mg/ℓ, 코코넛워터 10% 및 PPM(Plant Preservative Mixture, Plant Cell Technology社) 1 ㎖를 첨가하여 제조한 배지로 배양한 생물반응기에서 원괴체 접종밀도별 생육 정도, 및 신아(new bud) 및 유묘 초기 형태를 확인한 결과, 복주머니 원괴체의 접종밀도가 2 g인 경우 생물반응기에서 생육 정도가 우수하며, 생물반응기 이용 복주머니란 최적 접종밀도가 2 내지 4 g임을 확인하였다(도 3, 및 표 3 내지 표 6 참조).In order to confirm the optimal culture condition of the bacterium used for mass culture of the bacterium, the present inventors used the bacterium obtained by the seed disinfection and cultivation method as a 1/2 bacterium of Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, NH4NO3412.50 mg / l, MgSO44 45.175 mg / l, KNO3 475.00 mg / l, KH2PO4 42.50 mg / l, CaCl283.00 mg / l, CoCl2· 6H2O 0.00625 mg / l, ZnSO4· 7H2O 2.65 mg / l, Na2MoO42H2O 2.65 mg / l, MnSO4· H2O 4.225 mg / l, H3BO3 1.55 mg / l, KI 0.2075 mg / l, Na2EDTA 18.62 mg / l, FeSO4· 7H2O 13.93 mg / l, CuSO4· 5H2Inocosol 100 mg / l, Thiamine HCl 1 mg / l, Nicotinic acid 0.5 mg / l, sucrose 20 g / l, , 1/4 Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins, NH), 0.5 mg / l of Pyridoxine HCl, 10% of coconut water and 1 ml of Plant Preservative Mixture (PPM)4NO3 412.50 mg / l, MgSO44 45.135 mg / l, KNO3 475.00 mg / l, KH2PO4 42.50 mg / l, CaCl2  83.01 mg / l, CoCl2· 6H2O 0.00625 mg / l, ZnSO4· 7H2O 2.15 mg / l, Na2MoO42H2O 0.0625 mg / l, MnSO4· H2O 4.225 mg / l, H3BO3  1.55 mg / l, KI 0.2075 mg / l, FeNaEDTA 9.175 mg / l, CuSO4· 5H2O), 30 g / L of sucrose, 75 mg / l of Myo-Inositol, 0.75 mg / l of thiamine HCl, 1 g of nicotinic acid, , 0.375 mg / l of pyridoxine HCl, 0.375 mg / l of pyridoxine HCl, 10% of coconut water and 1 ml of PPM (Plant Preservative Mixture, Plant Cell Technology Co.) As a result of confirming the degree of starch growth and the initial shape of new bud and seedlings, the growth rate in the bioreactor was excellent when the inoculum density of 2 g of the bovine lozenge was high, and the optimal inoculum density was 2 To 4 g (see Fig. 3 and Tables 3 to 6).

또한, 본 발명자들은 복주머니란 대량 배양을 위한 생물반응기 이용 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 최적의 생물반응기 배양 배지로 배양한 생물반응기에서 공기 공급량에 따른 복주머니란 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 확인한 결과, 0.2 vvm 공기 공급량으로 조절하여 공기를 주입한 생물반응기에서 복주머니란의 생육 정도가 우수하며, 생물반응기 이용 복주머니란 배양을 위한 최적 공기공급량이 0.2 vvm임을 확인하였다(도 4, 및 표 7 및 표 8 참조).The present inventors have also found that, in order to determine optimal culture conditions for a bioreactor-use bag for mass culture, the present inventors found that a bovine cell obtained by the above-described seed sterilization and culture method was cultured in an optimal bioreactor culture medium As a result of examining the degree of growth of bovine bag according to the amount of air supplied in the bioreactor, and the initial shape of the newborn and seedling seedlings, the growth rate of the bovine bran was excellent in the bioreactor in which the air was adjusted by 0.2 vvm air supply, It was confirmed that the optimal air supply amount for the culture of the bag was 0.2 vvm (see Fig. 4 and Table 7 and Table 8).

또한, 본 발명자들은 복주머니란 대량 배양을 위한 생물반응기 이용 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 최적의 생물반응기 배양 배지로 배양한 생물반응기에서 수크로오스(sucrose) 함량에 따른 복주머니란 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 확인한 결과, 3% 수크로오스를 포함한 배양 배지로 배양한 복주머니란의 생육 정도가 우수하며, 생물반응기 배양 배지의 최적 수크로오스 함량이 3%임을 확인하였다(도 5, 및 표 9 및 표 10 참조).The present inventors have also found that, in order to determine optimal culture conditions for a bioreactor-use bag for mass culture, the present inventors found that a bovine cell obtained by the above-described seed sterilization and culture method was cultured in an optimal bioreactor culture medium As a result of examining the degree of growth of the bovine bag according to the sucrose content in the bioreactor and the initial shape of the newborn and seedling seedlings, it was found that the bovine seedlings cultured with the culture medium containing 3% sucrose had a good growth, Of sucrose was found to be 3% (see Fig. 5 and Tables 9 and 10).

또한, 본 발명자들은 복주머니란 대량 배양을 위한 생물반응기 이용 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배양한 생물반응기에서 배지공급 및 배양체 배양 방식에 따른 복주머니란 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 확인한 결과, 망을 건 연속침지 방식(Raft culture system), 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(immersion culture system) 및 Ebb&Flood 이용 일시 침지 방식(Ebb&Flood culture system) 중 망을 걸지 않은 연속 침지 방식으로 배양한 복주머니란의 생육 정도가 우수하며, 생물반응기 이용 복주머니란 배양을 위한 최적 배지공급 및 배양체 배양방식임을 확인하였다(도 6, 및 표 12 및 표 13 참조).The present inventors have also found that, in order to determine optimal culture conditions for a bioreactor-use bag for mass culture, the present inventors have found that the bacterium obtained by the above-mentioned seed disinfection and culturing method is a bioreactor in which a raw material is cultured, As a result of examining the degree of growth and the initial shape of the newborn and seedling according to the culture method, it was found that the rye culture system, the immersion culture system without netting and the temporary immersion method using Ebb & Flood (Ebb & Flood culture system), the growth of the bovine cells cultured by the continuous immersion method without netting was excellent, and it was confirmed that the bioreactor-used bovine bag was the optimum culture medium for culturing and culture method See Table 12 and Table 13).

또한, 상기 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배지 내 최적 수크로오스 함량으로 확인된 바 있는 3% 수크로오스 함유 배지에서 배양할 때, 배양체인 원괴체의 생장을 지속시키고 탄소원이자 에너지원인 수크로오스의 고갈을 방지하기 위한 배양기간 중 새로운 배지로 교체하여 주는 시기를 확인하기 위하여, 배지공급 및 배양체 배양방식별로 6주간 배양하였을 때 배지 내 수크로오스의 잔존 함량을 분석한 결과, 원괴체 및 신아의 생육 정도가 가장 좋았고, 신아 및 유묘 형성율이 가장 우수하였던 배양 방식인 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(Immersion culture system)에서 배양기간별 수크로오스 소모율이 가장 커 배지 내 수크로오스 잔존 함량이 가장 낮으며, 배양 4주차에는 배지 내 수크로오스 잔존 함량이 0.7%, 배양 5주차에는 배지 내 수크로오스 잔존 함량이 0.2% 정도로 급격히 감소하는 것을 확인함으로써, 배지 내 탄소원이자 에너지 공급원인 수크오로스의 함량이 1% 이하로 감소하는 시기인 배양 후 4 내지 5주에 3%의 수크로오스가 함유된 새로운 배지로 교체하여 원괴체의 생장을 지속시키는 것이 적합함을 확인하였다(도 7 참조).In addition, the bovine bag obtained by the seed disinfection and culture method described above was cultured in a sucrose-containing medium containing 3% sucrose, which had been confirmed to have an optimal sucrose content in the medium, to sustain the growth of the original plant, As a result of analysis of the residual content of sucrose in the medium when cultured for 6 weeks according to the culture medium feeding method and culturing method to confirm the timing of replacing with new medium during the incubation period to prevent depletion of sucrose, The sucrose consumption rate was the highest in the immersion culture system which had the best growth rate, the highest growth rate of the newborn and seedling formation, and the lowest sucrose content in the culture medium. In the parking lot, the sucrose residue content in the medium was 0.7%, and in the fifth week of culture, It was confirmed that the residual sucrose content was abruptly decreased to about 0.2%. Thus, it was confirmed that the content of sucrose in the medium was reduced to 1% or less, It was confirmed that it was appropriate to replace the medium with the medium and to sustain the growth of the raw mass (see FIG. 7).

또한, 본 발명자들은 복주머니란 대량 배양을 위한 생물반응기 이용 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에 크기 5 mm 내외의 복주머니란 원괴체를 배지 1 ℓ 당 2 내지 4 g 정도 접종하고, 생물반응기 내로 주입되는 공기의 공급량은 0.2 vvm으로, 배지 내 수크로오스 함량은 3%(30 g/ℓ)로, 새로운 배지로 교체하는 주기는 배양 후 4 내지 5 주 간격으로 하여 망을 걸지 않은 연속 침지 방식으로 배지공급 및 원괴체를 배양한 결과, 6 내지 12 주 후에 복주머니란 원괴체로부터 유묘가 형성되고, 상기 복주머니란 유묘의 신아를 유리 온실에 식재하여 1 년 정도 재배 후 신아로부터 분화된 유식물체를 확인하였다(도 8 참조).In order to confirm optimal culture conditions for a bioreactor used for mass culture, the present inventors used a 3 ℓ or 5 ℓ balloon bioreactor and a bovine granule about 5 mm in size, The feed amount of the air injected into the bioreactor is 0.2 vvm and the sucrose content in the medium is 3% (30 g / l). The cycle of replacing with fresh medium is 4 to 5 As a result of feeding the culture medium and culturing the raw masses by a continuous immersion method in which the webs were not spaced apart from each other at regular intervals, six to twelve weeks later, seedlings were formed from the raw masses of bovine bags, And after 1 year of cultivation, the seedlings differentiated from the newborn were identified (see FIG. 8).

따라서, 본 발명의 풍선형(ballon type) 생물반응기에서 최적조건으로 확립하여 배양한 복주머니란 종자는 원괴체 형성, 및 신아 및 유식물체 형성율이 우수하므로, 상기 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법이 복주머니란의 대량 증식에 유용하게 사용될 수 있다.
Therefore, since the bovine seeds cultured and established in the optimum condition in the balloon type bioreactor of the present invention are excellent in the formation of raw masses and the rate of formation of newborn and seedling plants, The method of seedling formation can be useful for the mass proliferation of bovine eggs.

이하, 본 발명을 실시예에 의하여 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to examples.

단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.
It should be noted, however, that the following examples are illustrative of the present invention and are not intended to limit the scope of the present invention.

<< 실시예Example 1>  1> 복주머니란Bags 종자 기내 인공 파종 Artificial seeding of seeds

기존의 복주머니란 종자 파종 방법은 채취한 씨방 전체를 세척 및 소독하여 씨방의 표면을 완전히 살균한 후 조직배양용 메스(해부칼, mes)를 이용하여 세로로 절개한 다음 씨방 내부에 들어 있는 종자를 기내 파종용 고체 배지 위에 털어 넣어 배양하는 것이다. 그러나, 기존의 종자 파종 방법으로는 종자 발아기간만 최소 1년 이상 소요된다. 따라서, 종자 발아기간을 줄이고 종자 발아율을 높이기 위하여, 하기와 같이 복주머니란 종자를 인공 파종하였다.In the conventional seedling seeding method, the entire ovary collected is cleaned and disinfected, the surface of the ovary is completely sterilized, and then the incision is made longitudinally using a tissue culture scalpel (an artificial knife, mes). Then, seeds Is shaken on a solid medium for in-flight seeding and cultured. However, in the conventional seed sowing method, the seed germination period only takes at least one year. Therefore, in order to reduce the seed germination period and increase the seed germination rate, seeds were artificially sown as described below.

구체적으로, 4월 말에서 5월 중순경 개화한 복주머니란(충청북도농업기술원 유리온실 내 시험재배용)을 타가수분(cross-pollination)하여 인공 교배한 후, 60-70 일 정도 지난 씨방(종자가 들어있는 꼬투리)을 채취하였다. 채취한 씨방을 조직배양용 해부칼을 이용하여 세로로 절개한 후 씨방 내부에 들어 있는 종자를 모아 세척 및 소독하였다. 무균작업대(clean bench)에서 70% 에탄올에 30 초간 종자를 침지하여 종자 표면을 소독하고 2% 차아염소산나트륨(NaOCl) 용액에 10-15 분간 침지하여 1 회 소독한 후 멸균수로 10 분간 3 회 세척하였다. 그 후, 상기 세척 및 소독이 완료된 종자를 하기 [표 1]의 성분을 포함한 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, P0931, SIGMA)에 미오이노시톨(Myo-Inositol) 25 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.25 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.125 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.125 mg/ℓ, 코코넛워터 5 %를 첨가하여 제조한 배지 100 ㎖가 들어있는 배양병(외경 81 mm, 높이 132 mm)에 넣고 광을 차단한 암상태로 액체(진탕) 배양하였다.Specifically, a bovine flower bloomed from the end of April to mid May (for testing in the greenhouse of the Chungcheongbuk-do Agricultural Research and Extension Service) was cross-pollinated and artificially mated. After 60-70 days of seeding, Pods contained). The collected ovaries were cut longitudinally with a dissection knife for tissue culture, and seeds contained in the ovary were collected and washed and disinfected. The seed surface was sterilized in 70% ethanol for 30 seconds in a clean bench, and the seed surface was disinfected. The seed surface was disinfected and immersed in 2% sodium hypochlorite (NaOCl) solution for 10-15 minutes and once sterilized. And washed. Thereafter, the washed and disinfected seeds were seeded with 25 mg / l Myo-Inositol in a 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, P0931, SIGMA) containing the ingredients shown in Table 1 below, A culture bottle (100 ml) prepared by adding 0.25 mg / l of thiamine HCl, 0.125 mg / l of nicotinic acid, 0.125 mg / l of pyridoxine HCl and 5% of coconut water 81 mm in outer diameter, 132 mm in height) and cultured in a dark state (light shade) in which light was blocked.

1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal)1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal) 성분ingredient 함량content NH4NO3 NH 4 NO 3 412.50 mg/ℓ412.50 mg / l MgSO4 MgSO 4 45.175 mg/ℓ45.175 mg / l KNO3 KNO 3 475.00 mg/ℓ475.00 mg / l KH2PO4 KH 2 PO 4 42.50 mg/ℓ42.50 mg / l CaCl2 CaCl 2 83.0 mg/ℓ83.0 mg / l CoCl2·6H2OCoCl 2 .6H 2 O 0.00625 mg/ℓ0.00625 mg / l Na2MoO4·2H2ONa 2 MoO 4 .2H 2 O 0.0625 mg/ℓ0.0625 mg / l MnSO4·H2OMnSO 4 .H 2 O 4.225 mg/ℓ4.225 mg / l H3BO3 H 3 BO 3 1.55 mg/ℓ1.55 mg / l KIKI 0.2075 mg/ℓ0.2075 mg / l Na2EDTANa 2 EDTA 18.62 mg/ℓ18.62 mg / l FeSO4·7H2OFeSO 4 .7H 2 O 13.93 mg/ℓ13.93 mg / l CuSO4·5H2OCuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg/ℓ0.00625 mg / l 수크로오스(Sucrose)Sucrose 10.00 g/ℓ10.00 g / l 배지의 pHThe pH of the medium 5.85.8

그 결과, 도 1 및 도 2에 나타낸 바와 같이, 직접 소독한 종자가 3-4 개월 후 발아되어 끈 모양 또는 가지 모양의 비대된 구조의 원괴체(protocorm, 原塊體)를 형성함을 확인하였다(도 1 및 도 2)As a result, as shown in FIG. 1 and FIG. 2, it was confirmed that the directly disinfected seeds germinated 3-4 months later to form protocorm (protocorm) having a stranded or branched structure (Figures 1 and 2)

또한, 표 2에 나타낸 바와 같이, 씨방을 직접 열개하여 종자를 직접 소독한 후 액체(진탕) 배양한 경우, 씨방 표면 소독 후 종자를 열개하여 바로 고체 배지에 배양하는 기존의 방법 대비 발아율은 6.5배 증가, 오염율은 81% 감소하는 것을 확임함으로써, 상기 복주머니란 종자 소독방법 및 배양 형태가 발아율에 유의한 영향을 미치며, 이 결과는 소독 과정에서 사용되는 차아염소산나트륨으로 씨방 열개 후 종자를 직접 소독하면서 종피(종자의 표피)의 해리, 및 흡집 및 구멍을 통한 수분과 양분의 이동으로 종피의 왁스층에 의한 불투수성이 개선되면서 종자의 발아율이 향상됨을 확인하였다(표 2).Furthermore, as shown in Table 2, when the seeds were directly disinfected and the seeds were directly disinfected and cultured in liquid (shaking), the germination ratio was 6.5 times higher than the conventional method in which the seeds were opened and the seeds were immediately cultured in a solid medium after sterilization And the contamination rate is reduced by 81%. Thus, the method of seed disinfection and the culture form of the bag have a significant effect on the germination rate. As a result, the sodium hypochlorite used in the disinfection process, It was confirmed that the germination rate of the seed was improved by improving the impermeability by the wax layer of the seed coat due to dissociation of the seed coat (seed surface) and the movement of moisture and nutrients through the sucking and pores (Table 2).

Figure 112013106942516-pat00001
Figure 112013106942516-pat00001

<< 실시예Example 2>  2> 원괴체Raw stratum 접종밀도에 따른 생물반응기 이용  Bioreactor use by inoculation density 복주머니란Bags 최적 배양 조건 확인 Identify optimal culture conditions

생물반응기란 생체반응을 이용하여 미생물, 동물, 또는 식물세포를 배양하거나 특정 물질을 생산하는 장치를 말하는데, 공기부양식 생물반응기는 외부에서 공기를 주입하며 반응기 내부의 배지와 배양체가 함께 회전하는 형태이다. 이러한 형태의 생물반응기는 초기 설치비용이 적고 오염율도 적으며 반응기 바닥에 살포기(sparge)를 부착한 버블 컬럼(bubble column) 형태가 많이 사용되므로 산소전달률이 높고 배양체의 유체역학적 스트레스를 최소화할 수 있어 대량배양 과정에서 많이 사용되고 있다. 따라서, 생물반응기를 이용한 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 <실시예 1>의 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배양한 생물반응기에서 원괴체 접종밀도별 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 측정하였다.A bioreactor is a device for cultivating microorganisms, animals, or plant cells using a biological reaction or for producing a specific substance. An aerobic bioreactor is a device in which air is injected from the outside and a culture medium to be. This type of bioreactor has low initial installation cost, low contamination rate, and a bubble column type with a sparge attached to the bottom of the reactor is used so that the oxygen transmission rate is high and the hydrodynamic stress of the culture can be minimized It is widely used in mass culture. Therefore, in order to confirm the optimal culture condition of the bacterium using the bioreactor, the bacterium obtained by the seed disinfection and cultivation method of the above Example 1 was cultured in a bioreactor cultured on a raw mass, , And the initial shape of newborn and seedlings were measured.

구체적으로, 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형(ballon type) 생물반응기(삼성과학상사)에 상기 <실시예 1>의 기내 파종 후 3-4개월 지난 원괴체를 접종하여, 배양할 때에는 배지 1 ℓ당 크기 5 mm 내외의 원괴체를 2, 4, 6 및 8 g 접종한 후 광을 차단한 상태로 암조건 하에 배양한 후, 각각의 원괴체 접종밀도별 생육특성 및 원괴체로부터 발달한 신아(新芽, new bud) 및 유묘(幼苗)의 초기 형태를 비교하였다. 하기 [표 3]의 성분을 포함한 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, P0931, Sigma)에 수크로오스 20 g/ℓ, 미오이노시톨(Myo-Inositol) 100 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 1 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.5 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.5 mg/ℓ, 코코넛워터 10% 및 PPM(Plant Preservative Mixture, Plant Cell Technology) 1 ㎖를 첨가하여 제조한 배지 1, 또는 하기 [표 4]의 성분을 포함한 1/4 Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins, M0245, Duchefa)에 수크로오스 30 g/ℓ, 미오이노시톨(Myo-Inositol) 75 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.75 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.375 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.375 mg/ℓ, 코코넛워터 10% 및 PPM 1 ㎖를 첨가하여 제조한 배지 2를 상기 3 ℓ의 풍선형 생물반응기에는 0.8 내지 1.0 ℓ 넣고 배양하고, 상기 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에는 1.3 내지 1.7 ℓ 넣고 60일 동안 배양한 후, 생육 특성을 조사하고, 신아 및 유묘 초기 형태를 비교하였다.Specifically, in a 3 L or 5 L ballon type bioreactor (Samsung Scientific), a raw mass 3 to 4 months after in-flight sowing of Example 1 was inoculated, and when culturing, 1 liter of culture medium After 2, 4, 6 and 8 g inoculum of about 5 mm in sugar size and incubated under the dark condition with blocking of light, growth characteristics and growth characteristics of each gonad New buds, and seedlings were compared. 20 g / l of sucrose, 100 mg / l of Myo-Inositol, 1 ml of thiamine HCl (manufactured by Sigma), 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, P0931, Sigma) ) Was prepared by adding 1 mg / L of 1% nitric acid, 0.5 mg / L of nicotinic acid, 0.5 mg / L of pyridoxine HCl, 10% of coconut water and 1 mL of Plant Preservative Mixture (PPM) 1 or Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins, M0245, Duchefa) containing the components shown below in Table 4, sucrose 30 g / l, myo-inositol 75 mg / l, thiamine HCl Medium 2 prepared by adding 0.75 mg / L of thiamine HCl, 0.375 mg / L of nicotinic acid, 0.375 mg / L of pyridoxine HCl, 10% of coconut water and 1 mL of PPM was added to the 3 L balloon Type bioreactor, 0.8-1.0 L was added to the 5-L balloon-type bioreactor, and 1.3-1.7 L was added to the 5 L balloon bioreactor. Investigated after, growth characteristics, and were compared to Shin and seedling initial shape.

1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal)1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal) 성분ingredient 함량content NH4NO3 NH 4 NO 3 412.50 mg/ℓ412.50 mg / l MgSO4 MgSO 4 45.175 mg/ℓ45.175 mg / l KNO3 KNO 3 475.00 mg/ℓ475.00 mg / l KH2PO4 KH 2 PO 4 42.50 mg/ℓ42.50 mg / l CaCl2 CaCl 2 83.00 mg/ℓ83.00 mg / l CoCl2·6H2OCoCl 2 .6H 2 O 0.00625 mg/ℓ0.00625 mg / l ZnSO4·7H2OZnSO 4 .7H 2 O 2.65 mg/ℓ2.65 mg / l Na2MoO4·2H2ONa 2 MoO 4 .2H 2 O 0.0625 mg/ℓ0.0625 mg / l MnSO4·H2OMnSO 4 .H 2 O 4.225 mg/ℓ4.225 mg / l H3BO3 H 3 BO 3 1.55 mg/ℓ1.55 mg / l KIKI 0.2075 mg/ℓ0.2075 mg / l Na2EDTANa 2 EDTA 18.62 mg/ℓ18.62 mg / l FeSO4·7H2OFeSO 4 .7H 2 O 13.93 mg/ℓ13.93 mg / l CuSO4·5H2OCuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg/ℓ0.00625 mg / l 수크로오스Sucrose 10.00 g/ℓ10.00 g / l 배지의 pHThe pH of the medium 5.85.8

1/4 Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins)1/4 Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins) 성분ingredient 함량content NH4NO3 NH 4 NO 3 412.50 mg/ℓ412.50 mg / l MgSO4 MgSO 4 45.135 mg/ℓ45.135 mg / l KNO3 KNO 3 475.00 mg/ℓ475.00 mg / l KH2PO4 KH 2 PO 4 42.50 mg/ℓ42.50 mg / l CaCl2 CaCl 2 83.01 mg/ℓ83.01 mg / l CoCl2·6H2OCoCl 2 .6H 2 O 0.00625 mg/ℓ0.00625 mg / l ZnSO4·7H2OZnSO 4 .7H 2 O 2.15 mg/ℓ2.15 mg / l Na2MoO4·2H2ONa 2 MoO 4 .2H 2 O 0.0625 mg/ℓ0.0625 mg / l MnSO4·H2OMnSO 4 .H 2 O 4.225 mg/ℓ4.225 mg / l H3BO3 H 3 BO 3 1.55 mg/ℓ1.55 mg / l KIKI 0.2075 mg/ℓ0.2075 mg / l FeNaEDTAFeNaEDTA 9.175 mg/ℓ9.175 mg / l CuSO4·5H2OCuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg/ℓ0.00625 mg / l 글라이신(Glycine)Glycine 0.50 mg/ℓ0.50 mg / l 배지의 pHThe pH of the medium 5.85.8

그 결과, 도 3, 및 표 5 및 표 6에 나타낸 바와 같이, 배지 1 및 배지 2 모두에서 원괴체의 접종밀도가 6 및 8 g인 경우에 비해 2 g 및 4 g 접종한 경우, 원괴체의 생장이 양호하고 발근수도 많았으며, 뿌리사멸율은 현저히 낮으며, 또한, 신아 형성율이 높았으며 신아의 생장도 우수하여 신아로부터 발달하는 식물체 형성율이 높게 조사됨을 확인하였다. 특히, 생물반응기 내로 접종되는 배양체의 초기 밀도가 높으면 세포분열에 소요되는 시간(doubling time)이 상대적으로 짧아져 배양체의 발달단계가 빨리 진행되어 노화가 많이 진행될 수 있는데, 원괴체의 접종밀도가 6 및 8 g인 경우 뿌리사멸률이 22% 이상으로 조사되어 2 g 및 4 g 접종과 비교할 때 2 내지 2.6배 더 높음을 확인함으로써, 생물반응기 이용 복주머니란 최적 접종밀도는 2 내지 4 g임을 확인하였다(도 3, 및 표 5 및 표 6).As a result, as shown in Fig. 3 and Tables 5 and 6, in the case of inoculation of 2 g and 4 g in the inoculum density of the ingested masses of both medium 1 and medium 2 compared to the inoculum density of 6 and 8 g, It was confirmed that the rate of plant growth developed from newborns was high because of good growth, number of rooting, low rooting rate, high rate of newborn formation and excellent growth of newborn. In particular, when the initial density of the culture inoculated into the bioreactor is high, the doubling time required for cell division is relatively short, so that the development stage of the cultured organism progresses rapidly, And 8 g, it was confirmed that the mortality rate of roots was 22% or more and 2 to 2.6 times higher than that of 2 g and 4 g inoculations. Thus, it was confirmed that the optimal inoculum density was 2 to 4 g (Fig. 3, and Table 5 and Table 6).

Figure 112013106942516-pat00002
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Figure 112013106942516-pat00003
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<< 실시예Example 3> 공기 공급량에 따른 생물반응기 이용  3> Bioreactor usage by air supply 복주머니란Bags 최적 배양 조건 확인 Identify optimal culture conditions

상기 <실시예 2>와 같이 생물반응기를 이용한 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 <실시예 1>의 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배양한 생물반응기에서 공기 공급량에 따른 복주머니란의 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 측정하였다.In order to confirm the optimum culture condition of the bifurcation using the bioreactor as in the above <Example 2>, the bifurcation bag obtained by the seed disinfection and culture method of <Example 1> The growth rate of the bumblebee seedlings and the initial shape of newborns and seedlings were measured.

구체적으로 상기 <실시예 2>와 같이 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에 크기 5 mm 내외의 원괴체를 배지 1 ℓ 당 2 내지 4 g 정도 접종하고 생물반응기 내로 공기의 공급량을 0.05, 0.1, 0.2 및 0.4 vvm으로 조절하여 주입하여 60일 동안 배양한 후, 생육특성을 조사하고, 신아 및 유묘 초기 형태를 비교하였다.Specifically, as in Example 2, a 3 L or 5 L balloon-shaped bioreactor was inoculated with about 2 to 4 g per 1 L of the culture medium of about 5 mm in size, and the supply amount of air into the bioreactor was set at 0.05, 0.1 , 0.2 and 0.4 vvm for 60 days, respectively. The growth characteristics were investigated, and the initial morphological characteristics of newborn and seedlings were compared.

그 결과, 도 4, 및 표 7 및 표 8에 나타낸 바와 같이, 가장 적은 양의 공기를 공급한 0.05 vvm 처리구와 가장 많은 양의 공기를 공급한 0.4 vvm 처리구에서는 뿌리사멸률이 25% 이상으로, 0.1 내지 0.2 vvm 과 비교할 때 원괴체의 생장이 정상적으로 이루어지지 않음을 확인하였다. 생물반응기 내부로 공급되는 공기량은 배지 내 용존산소의 농도와 배양체의 양 수분 흡수율에 영향을 미치는 요인인데, 적은 양의 공기를 공급해주는 경우 배양체와 배지의 회전이 원활히 이루어지지 않아 배양체가 배지로부터 생장에 필요한 양의 수분 흡수 및 호흡에 필요한 산소 공급이 상대적으로 낮아지게 된다. 반대로 많은 양의 공기를 공급하는 경우 배양 초기부터 과다한 공기가 생물반응기 내부로 공급되면서 배양체와 배지의 회전율이 지나치게 높아 배양체에 강한 유체역학적 스트레스가 가해지게 되므로, 적정 공기공급량의 선정이 매우 중요하다. 따라서, 상기 결과를 통해 0.2 vvm으로 공기를 공급하였을 때 최대 신초의 길이, 무게, 발근수 및 신아형성율을 나타내는 것을 확인함으로써, 0.2 vvm 공기 공급량으로 조절하여 공기를 주입한 생물반응기에서 복주머니란의 신아 및 유묘 형성율이 우수하며, 생물반응기 이용 복주머니란 배양을 위한 최적 공기공급량은 0.2 vvm임을 확인하였다(도 4, 및 표 7 및 표 8). As a result, as shown in FIG. 4, and Table 7 and Table 8, in the 0.05 vvm treatment which supplied the least amount of air and the 0.4 vvm treatment which supplied the greatest amount of air, the root kill rate was 25% It was confirmed that the growth of the raw mass was not performed normally compared with 0.1 to 0.2 vvm. The amount of air supplied to the inside of the bioreactor influences the concentration of dissolved oxygen in the culture medium and the water absorption rate of the culture medium. When the amount of air supplied is small, the culture medium and the culture medium are not rotated smoothly. The required amount of moisture absorption and the oxygen supply required for respiration are relatively low. Conversely, when a large amount of air is supplied, since excessive air is supplied into the bioreactor from the initial stage of culture, the rotation rate of the culture medium and the culture medium is excessively high, so that strong hydrodynamic stress is applied to the culture medium. Therefore, by confirming that the maximum shoot length, weight, rooting number and newborn formation rate were shown when air was supplied at 0.2 vvm, it was confirmed that in the bioreactor in which the air was supplied at a flow rate of 0.2 vvm, (Fig. 4, and Table 7 and Table 8). It was confirmed that the optimal air supply amount for culturing the bioreactor-used bag was 0.2 vvm.

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<< 실시예Example 4> 수크로오스 함량에 따른 생물반응기 이용  4> Use of bioreactor according to sucrose content 복주머니란Bags 최적 배양 조건 확인 Identify optimal culture conditions

상기 <실시예 2>와 같이 생물반응기를 이용한 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 <실시예 1>의 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배양한 생물반응기에서 수크로오스 함량에 따른 복주머니란의 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 측정하였다.In order to confirm the optimum culture condition of the bacterium using the bioreactor as in the above <Example 2>, the bacterium obtained by the seed disinfection and cultivation method of <Example 1> The growth of bamboo shoots and the initial shape of newborns and seedlings were measured.

구체적으로 상기 <실시예 2>와 같이 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에 크기 5 mm 내외의 원괴체를 배지 1 ℓ 당 2 내지 4 g 정도 접종하여 배양할 때 배지 내 수크로오스의 함량을 1, 3, 5, 7 및 9%로 조절하여 60일 동안 배양한 후, 생육특성을 조사하고, 신아 및 유묘 초기 형태를 비교하였다. 이 때, 생물반응기 내로 주입되는 공기의 공급량은 0.2 vvm으로 조절하였다.Specifically, when a 3 L or 5 L balloon-shaped bioreactor is inoculated with about 2 to 4 g per 1 L of a raw material having a size of about 5 mm, the content of sucrose in the medium is set to 1 , 3, 5, 7, and 9% for 60 days. Growth characteristics of the seedlings were investigated. At this time, the supply amount of air injected into the bioreactor was adjusted to 0.2 vvm.

그 결과, 도 5, 및 표 9 및 표 10에 나타낸 바와 같이, 수크로오스 함량이 적을수록 원괴체의 뿌리사멸율이 감소하고, 신아형성율 및 유식물체 형성율이 증가하고, 특히, 3% 수크로오스를 처리한 경우 최대 원괴체의 발근수 및 신아의 길이를 나타내는 것을 확인하였다. 배지내 당 농도가 높아지면 삼투압 및 배지의 점도 증가로 세포분열과 팽창에 필요한 물, 무기원소 및 탄소원의 흡수가 억제되어 배양체의 생장이 감소되고, 배지 내 삼투압 증가에 따른 수분 스트레스가 유도되어 과산화수소, 프롤린(proline) 함량, 및 DDPH 활성이 증가하게 된다. 수크로오스를 5% 이상 처리한 경우 과산화수소, proline 함량, DDPH 활성이 크게 증가하므로, 수분 스트레스에 의한 방어기작이 강하게 발현됨을 확인하였다. 따라서, 상기 결과를 통해 생물반응기에서 3% 수크로오스를 포함한 배양 배지로 배양한 복주머니란의 신아 및 유묘 형성율이 우수하며, 생물반응기 이용 복주머니란 배양을 위한 최적 배지의 수크로오스 함량은 3%(30 g/ℓ)임을 확인하였다(도 5, 및 표 9 및 표 10).As a result, as shown in Fig. 5, and Tables 9 and 10, as the sucrose content was lower, the root mortality rate of the raw mass was decreased, the rate of newborn formation and the rate of plant formation were increased, and especially, 3% sucrose And it was confirmed that the number of rooting and the length of the newborn baby were the maximum. As the sugar concentration in the medium increases, the osmotic pressure and the viscosity of the medium increase due to the suppression of the absorption of water, inorganic elements and carbon sources necessary for cell division and expansion, thereby reducing the growth of the cultured medium. , Proline content, and DDPH activity. When sucrose was treated more than 5%, the hydrogen peroxide, proline content and DDPH activity were greatly increased, and it was confirmed that the defense mechanism by moisture stress was strongly expressed. Therefore, through the above results, it was found that the bacterium cultured in the culture medium containing 3% sucrose in the bioreactor was excellent in the rate of newborn and seedling formation, and the optimum content of sucrose in the bioreactor used bacterium was 3% 30 g / L) (FIG. 5 and Tables 9 and 10).

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<< 실시예Example 5>  5> 배지공급Badge supply 및 배양체 배양방식에 따른 생물반응기 이용  And use of bioreactor according to cultivation method of culture 복주머니란Bags 최적 배양 조건 확인 Identify optimal culture conditions

상기 <실시예 2>와 같이 생물반응기를 이용한 복주머니란 최적 배양 조건을 확인하기 위하여, 상기 <실시예 1>의 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배양한 생물반응기에서 배지공급 및 배양체 배양방식에 따른 복주머니란의 생육 정도, 및 신아 및 유묘 초기 형태를 측정하였다.In order to confirm the optimal culture condition of the bifurcation using the bioreactor as in the above <Example 2>, the bifurcation bag obtained by the seed disinfection and culture method of <Example 1> Growth of bamboo shoots and initial shape of newborns and seedlings were measured by feeding and culturing methods.

구체적으로 상기 <실시예 2>와 같이 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에 크기 5 mm 내외의 원괴체를 배지 1 ℓ 당 2 내지 4 g 정도 접종하여 배양할 때 하기 [표 11]과 같은 특징을 가진 3 가지 배지공급 및 원괴체 배양방식, 망을 건 연속 침지(continuous immersion)(Raft culture system), 망을 걸지 않은 연속 침지(Immersion cultures system) 및 Ebb& Flood를 이용한 일시 침지(temporary immersion) 방식으로 배양체를 침지하여 60일 동안 배양한 후, 생육특성을 조사하고, 신아 및 유묘 초기 형태를 비교하였다. 이 때, 생물반응기 내로 주입되는 공기의 공급량은 0.2 vvm으로 조절하였다.Specifically, as in Example 2, when a 3 L or 5 L balloon-shaped bioreactor was inoculated with about 2 to 4 g per 1 L of the raw gristle of about 5 mm in size, (RBC) culture system, Immersion cultures system, and temporary immersion using Ebb & Flood. The culture medium of the present invention can be used as a culture medium, After culturing for 60 days, the growth characteristics were investigated and the initial morphology of the newborn and seedlings was compared. At this time, the supply amount of air injected into the bioreactor was adjusted to 0.2 vvm.

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그 결과, 도 6, 및 표 12 및 표 13에 나타낸 바와 같이, 망을 걸지 않은 연속 침지 방식으로 배양한 복주머니란 원괴체의 뿌리사멸율이 10% 이하이고, 신아형성율 및 유식물체 형성율이 각각 78.6% 및 80.7%로 세 가지 방식 중 가장 좋으며, 또한, 원괴체 및 신아의 생육 정도가 좋음을 확인하였다. 또한, 0.2 vvm의 적정 공기량이 배양기 내부로 투입되기 때문에 배양기간 내내 배양체가 배지에 침지된 상태로 배양되는 형태인 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(immersion culture system)에서 원괴체로의 배지 내 양 수분의 흡수가 가장 원활하여 신아의 발달 및 생장이 최대로 증가함을 확인함으로써, 상기 망을 걸지 않은 연속 침지 방식으로 배양한 복주머니란의 신아 및 유묘 형성율이 우수하며, 따라서, 생물반응기 이용 복주머니란 배양을 위한 최적 배지공급 및 배양체 배양방식은 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(immersion culture system)임을 확인하였다(도 6, 및 표 12 및 표 13). As a result, as shown in FIG. 6, and Table 12 and Table 13, the bovine bag cultured in the continuous immersion system without netting was a plant having a root mortality rate of 10% or less, a rate of newborn formation, Were 78.6% and 80.7%, respectively, and it was confirmed that the growth rate of raw giardia and newborn was good. In addition, since an appropriate amount of air of 0.2 vvm is injected into the incubator, an immersion culture system in which the culture is immersed in the medium throughout the incubation period, And the growth rate of the newborn baby is maximally increased. As a result, it was found that the bovine cells cultured by the continuous immersion method without the mesh was superior in the rate of newborn and seedling formation, (Fig. 6, and Table 12 and Table 13). The culture medium for culturing pouch was the optimal culture medium and the culturing method was a non-net immersion culture system.

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<< 실시예Example 6> 생물반응기 이용  6> Using bioreactor 복주머니란Bags 최적 배양을 위한 배지 교체 적정 주기 확인 Confirmation period of medium change for optimal culture

상기 <실시예 1>의 종자 소독 및 배양 방법으로 획득한 복주머니란 원괴체를 배지 내 최적 수크로오스 함량으로 확인된 바 있는 3% 수크로오스 함유 배지에서 배양할 때, 배양체인 원괴체의 생장을 지속시키고 탄소원이자 에너지원인 수크로오스의 고갈을 방지하기 위한 배양기간 중 새로운 배지로 교체하여 주는 시기를 확인하기 위하여, 배지공급 및 배양체 배양방식별로 6주간 배양하였을 때 배지 내 수크로오스의 잔존 함량을 분석하였다.The bovine bag obtained by the seed disinfection and culturing method of Example 1 described above was cultured in the medium containing 3% sucrose which had been confirmed to have the optimum sucrose content in the medium, During the incubation period to prevent the depletion of sucrose, which is the source of carbon source energy, the residual content of sucrose in the medium was analyzed in order to confirm the timing of replacing with new medium for 6 weeks according to the culture medium feeding method and culturing method.

구체적으로, 상기 <실시예 2>와 같이 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에 크기 5 mm 내외의 원괴체를 배지 1 ℓ 당 2 내지 4 g 정도 접종하여 배양할 때 3 가지 배지공급 및 원괴체 배양방식, 망을 건 연속 침지(continuous immersion)(Raft culture system), 망을 걸지 않은 연속 침지(Immersion cultures system) 및 Ebb&Flood를 이용한 일시 침지(temporary immersion) 방식으로 배양체를 침지하고, 3% 수크로오스가 포함된 생물반응기 배양 배지에서 총 6주간 배양한 ㅎ후 배양 시작 후 1주 간격으로 배양 중인 배지를 소량(5 내지 10 ㎖ 정도) 수거하여 수크로오스 잔존 함량을 분석하였다.Specifically, when a 3 L or 5 L balloon type bioreactor is inoculated with about 2 to 4 g per 1 L of the raw gross mass of about 5 mm in size, as in the above <Example 2> Cultures were immersed in a culture medium using a culture method, a continuous culture method, a continuous culture method, a continuous culture method, a continuous immersion culture method, an immersion culture system and a temporary immersion method using Ebb & Flood, (5 to 10 ㎖) were collected at the interval of one week after the initiation of the incubation for 6 weeks in the bioreactor culture medium.

그 결과, 도 7에 나타낸 바와 같이, 원괴체 및 신아의 생육 정도가 가장 좋았고, 신아 및 유묘 형성율이 가장 우수하였던 배양 방식인 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(Immersion culture system)에서 배양기간별 수크로오스 소모율이 가장 커 배지 내 수크로오스 잔존 함량이 가장 낮았으며, 특히, 배양 4주차에는 배지 내 수크로오스 잔존 함량이 0.7%, 배양 5주차에는 배지 내 수크로오스 잔존 함량이 0.2% 정도로 급격히 감소함을 확인하였다. 또한, 기내(in vitro)라는 제한된 환경 속에서 배양되는 배양체(본 발명에서는 원괴체를 말함)는 생장과 발달에 필요한 물과 무기원소 및 탄소원을 배지로부터 흡수하여 유기물을 합성해야 하는데, 동일한 화학조성을 갖는 배지를 사용하였더라도 배양 기간이 경과함에 배양 방식별로 배양체의 생육정도가 다르게 나타난 만큼 배양체가 배지로부터 흡수한 탄소원의 흡수율도 다르게 나타남을 확인하였다. 일반적으로 배양체의 생장량이 높아 배지 내 남아있는 탄소원의 양이 1% 이하로 떨어지면 탄소원이 함유된 새로운 배지를 첨가하거나 새롭게 교체하여 주여 배양체의 생장을 지속시킬 수 있다. 따라서, 상기 결과를 통해 배지 내 탄소원이자 에너지 공급원인 수크로오스의 함량이 1% 이하로 감소하는 시기인 배양 후 4 내지 5주에 3%의 수크로오스가 함유된 새로운 배지로 교체하여 원괴체의 생장을 지속시키는 것이 적합함을 확인하였다. 반면 새로운 배지 교체 주기가 지나치게 짧아지는 경우, 배양체의 생장과 노화가 빨리 이루어지고 배지 교체 또는 첨가에 따른 노동력이 많이 소모되므로 적정 배양기간의 선정 또한 중요한데 본 발명에서는 배양 후 10주까지 원괴체의 생장이 지속적으로 이루어지는 것을 확인하였다(도 7 참조).
As a result, as shown in Fig. 7, in the immersion culture system in which the growth rate of the raw gut and newborn was the best and the growth rate of the newborn and the seedling formation was the highest, the sucrose consumption rate The content of sucrose in the medium was the lowest, and the content of sucrose in the medium was 0.7% in the 4th week of culture. In the 5th week of culture, the amount of sucrose remained in the medium was decreased to 0.2%. In addition, the cabin (in (in the present invention, the term &quot; raw material &quot;) cultivated in a limited environment, such as in vitro , requires the absorption of water, inorganic elements, and carbon source necessary for growth and development from the medium to synthesize an organic material. Even if a medium having the same chemical composition is used As the cultivation period elapsed, the degree of growth of the cultivar was different depending on the cultivation method, so that the absorption rate of the carbon source absorbed from the culture medium was also different. Generally, when the amount of carbon source remaining in the medium is lowered to 1% or less due to a high growth rate of the culture, a new medium containing a carbon source may be added or a new one may be added to sustain the growth of the culture. Therefore, through the above results, the growth of the raw material was continued by replacing with a new medium containing 3% sucrose at 4 to 5 weeks after the culture, in which the content of sucrose, which is a carbon source in the medium, . On the other hand, when the replacement period of the new medium is too short, it is important to select a suitable culture period because the growth and aging of the culture medium grows quickly and the labor required for replacing or adding the medium is consumed. In the present invention, (See FIG. 7).

<< 실시예Example 7> 생물반응기 이용  7> Using bioreactor 복주머니란Bags 최적 배양 조건에서 복주머니란의 유묘 및 유식물체 형성 확인 Identification of seedling and seedling plant in bovine egg under optimal culture conditions

<7-1> 생물반응기 이용 <7-1> Use of bioreactor 복주머니란Bags 최적 배양 조건에서 복주머니란의 유묘 형성 확인 Confirmation of embryo formation of bovine lamb under optimal culture condition

상기 <실시예 1> 내지 <실시예 6>으로부터 생물반응기 이용 복주머니란 최적 배양 조건을 확립하고, 최적 배양 조건으로 배양한 복주머니란의 유묘 형성을 확인하였다.From the above <Examples 1 to 6>, optimum culture conditions were established by using bioreactor bags, and seedling formation of the bovine cells cultured under optimal culture conditions was confirmed.

구체적으로, 3 ℓ 또는 5 ℓ의 풍선형 생물반응기에 크기 5 mm 내외의 원괴체를 배지 1 ℓ 당 2 내지 4 g 정도 접종하고, 생물반응기 내로 주입되는 공기의 공급량은 0.2 vvm으로, 배지 내 수크로오스 함량은 3%(30 g/ℓ)로, 새로운 배지로 교체하는 시기는 배양 후 4 내지 5 주 간격이며, 망을 걸지 않은 연속 침지 방식으로 배지공급 및 원괴체를 배양하였다.Specifically, a 3 L or 5 L balloon bioreactor was inoculated with about 2 to 4 g per 1 L of a raw mass of about 5 mm in size, and the supply amount of air injected into the bioreactor was 0.2 vvm, The content was 3% (30 g / l), and the time of replacing with fresh medium was 4 to 5 weeks after the incubation, and the medium was supplied and the raw gristle was cultured by the continuous immersion method without netting.

그 결과, 6 내지 12 주 후에 복주머니란 원괴체로부터 충실한 신아가 발달하고 유묘가 형성되는 것을 확인하였다.
As a result, after 6 to 12 weeks, it was confirmed that a faithful new baby was developed from the raw bovine body and the seedling was formed.

<7-2> 생물반응기 이용 <7-2> Using a bioreactor 복주머니란Bags 최적 배양 조건에서  Under optimal culture conditions 복주머니란Bags 유식물체Plants 형성 확인 Confirm formation

상기 실시예 <7-2>에 기재된 방법으로 획득한 복주머니란 유묘의 생육 및 및 유식물체 형성을 확인하였다.The growth of seedlings and the formation of seedlings were confirmed in the bags obtained by the method described in Example <7-2> above.

구체적으로, 상기 실시예 <7-2>에 기재된 방법으로 획득한 배양한 복주머니란의 유묘를 유리 온실로 옮긴 후, 부엽토(leaf mold , 腐葉土, 풀과 나무 등의 낙엽 같은 것이 썩어서 이루어진 흙. 원예에 많이 사용되며 배수가 좋고 수분과 양분을 많이 가지고 있음)와 마사토(磨沙土, 화강암이 풍화되어 생성된 흙으로 물 빠짐이 좋음)를 8:2의 비율로 혼합한 용토에 식재하고 광 환경은 2,000 Lux 정도로 조절하여 유리 온실에서 1년 동안 재배하였다. 재배기간 동안 기내 배양 중 형성된 복주머니란 유묘의 신아로부터 줄기와 잎이 출현하여 어린 식물체(유식물체)가 분화되었다. 어린 식물체의 지상부 생육 촉진 및 신아의 발달을 충실하게 하기 위하여 4종 복합비료(N:P:K=20-20-20) 1,000 내지 2,000 배액을 4 내지 6 주 간격으로 3 내지 6 회 정도 엽면 살포하였다.Specifically, the seedlings of the cultured bovine longeum obtained by the method described in the above Example <7-2> were transferred to a glasshouse, and then the soil of rotten leaves such as leaf mold, mulch, grass and trees was decayed. It is cultivated in a mixed soil with a ratio of 8: 2 mixed with Masato (磨沙 土, which is good for drainage and water and nutrients) and Masato Was cultivated for 1 year in a greenhouse adjusted to about 2,000 Lux. The stem and leaf emerged from the seedling of the seedlings during the cultivation period and the young plants (seedlings) were differentiated. In order to enhance the growth of the upper part of the young plant and the development of the newborn baby, 1,000 to 2,000 times of 4 kinds of compound fertilizer (N: P: K = 20-20-20) is sprayed 3 to 6 times at 4 to 6 weeks Respectively.

그 결과, 도 8에 나타낸 바와 같이, 배양된 복주머니란 유묘를 유리 온실에 식재하여 1년 정도 재배 후 생육 정도를 확인하였고, 유묘의 신아를 유리 온실에 식재하여 1년 정도 재배 후 신아로부터 분화된 어린 식물체를 확인하였다.As a result, as shown in Fig. 8, the cultured bovine seedlings were planted in a glasshouse and grown for about one year, and the degree of growth was confirmed. The seedlings were seeded in a glasshouse and cultivated for about one year. Were identified.

Claims (10)

1) 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.)을 타가수분(cross-pollination)하여 인공 교배한 후, 60 내지 70일 지난 씨방을 열개하여 채취된 복주머니란(Cypripedium macranthum Sw.) 종자를 70% 에탄올에 20 내지 40 초간 침지한 후, 2% 차아염소산나트륨(NaOCl) 용액으로 10 내지 15 분간 침지하여 소독하고 기내(in vitro) 파종 배지에 배양하여 원괴체(protocorm, 原塊體)를 형성하는 단계; 및
2) 상기 단계 1)의 배지 1 ℓ당 3 내지 7 mm의 원괴체를 2 내지 4 g으로, 0.1 내지 0.2 vvm의 공기가 공급되는 생물반응기에 접종하고, 망을 걸지 않은 연속 침지 방식(immersion culture system)으로 공급되고 3% 수크로오스를 포함하는 생물반응기 배양 배지로 암조건 하에서 배양한 후, 4 내지 5주에 한 번씩 생물반응기 배양 배지를 교체하여 유묘(幼苗)를 형성하는 단계를 포함하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법.
1) Cypripedium macranthum Sw. Was cross-pollinated and cross-pollinated. The seeds of Cypripedium macranthum Sw. Harvested 60-70 days after ovation were washed with 70% ethanol , Immersing in a 2% sodium hypochlorite (NaOCl) solution for 10 to 15 minutes, and disinfection and culturing in a seeding medium in vitro to form a protocorm ; And
2) Inoculating a bioreactor in which 0.1 to 0.2 vvm of air is supplied with 2 to 4 g of raw masses of 3 to 7 mm per 1 liter of the medium of step 1) and immersion culture (immersion culture system, and culturing under a dark condition in a bioreactor culture medium containing 3% sucrose, and then replacing the bioreactor culture medium every 4 to 5 weeks to form seedlings (seedlings) A method for forming a seedling of a bovine egg yolk using the method.
제 1항에 있어서, 상기 단계 2)의 생물반응기는 풍선형(balloon type)인 것을 특징으로 하는 복주머니란의 유묘 형성 방법.
2. The method according to claim 1, wherein the bioreactor in step 2) is a balloon type.
삭제delete 제 1항에 있어서, 상기 단계 1)의 기내 파종 배지는 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.175 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.0 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.65 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 0.0625 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, Na2EDTA 18.62 mg/ℓ, FeSO4·7H2O 13.93 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ 및 수크로오스(sucrose) 10.00 g/ℓ)에 미오이노시톨(Myo-Inositol) 20 내지 30 mg/ℓ, 티아민 HCl(Thiamine HCl) 0.2 내지 0.3 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.12 내지 0.13 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.12 내지 0.13 mg/ℓ, 코코넛워터 3 내지 8%를 첨가하여 제조한 배지인 것을 특징으로 하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법.
Flight planting medium in said step 1) according to claim 1, wherein the 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, NH 4 NO 3 412.50 mg / ℓ, MgSO 4 45.175 mg / ℓ, KNO 3 475.00 mg / ℓ , KH 2 PO 4 42.50 mg / l, CaCl 2 83.0 mg / l, CoCl 2揃 6H 2 O 0.00625 mg / l, ZnSO 4揃 7H 2 O 2.65 mg / ℓ, Na 2 MoO 4揃 2H 2 O 0.0625 mg / l, MnSO 4 .H 2 O 4.225 mg / l, H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, Na 2 EDTA 18.62 mg / ℓ, FeSO 4 · 7H 2 O 13.93 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg / ℓ and sucrose (sucrose) 10.00 g / ℓ) Inositol 20 to 30 mg / l, Thiamine HCl 0.2 to 0.3 mg / l, Nicotinic acid 0.12 to 0.13 mg / l, Pyridoxine HCl 0.12 to 0.13 mg / / L, and 3 to 8% of coconut water. The method for forming seedlings using the bioreactor according to claim 1,
제 1항에 있어서, 상기 단계 2)의 생물반응기 배양 배지는 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium(w/o Charcoal, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.175 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.00 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.65 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 2.65 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, Na2EDTA 18.62 mg/ℓ, FeSO4·7H2O 13.93 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ 및 수크로오스 10.00 g/ℓ)에 수크로오스 10 내지 20 g/ℓ, 미오이노시톨 90 내지 110 mg/ℓ, 티아민 HCl 0.5 내지 1.5 mg/ℓ, 니코틴산 0.3 내지 0.8 mg/ℓ, 피리독신 HCl 0.3 내지 0.8 mg/ℓ, 코코넛워터 7 내지 13% 및 PPM(Plant Preservative Mixture) 0.7 내지 1.3 ㎖를 첨가하여 제조한 배지인 것을 특징으로 하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법.
The method according to claim 1, wherein the bioreactor culture medium of step 2) is 1/2 Phytamax Orchid Maintenance Medium (w / o Charcoal, NH 4 NO 3 412.50 mg / ℓ, MgSO 4 45.175 mg / ℓ, KNO 3 475.00 mg / ℓ, KH 2 PO 4 42.50 mg / L, CaCl 2 83.00 mg / l of CoCl 2 .6H 2 O, 2.65 mg / l of ZnSO 4 .7H 2 O, 2.65 mg / l of Na 2 MoO 4 .2H 2 O, 4.225 mg / l of MnSO 4 .H 2 O , H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, Na 2 EDTA 18.62 mg / ℓ, FeSO 4 · 7H 2 O 13.93 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg / ℓ and sucrose 10.00 g / l), sucrose 10 to 20 g / l, myoinositol 90 to 110 mg / l, thiamine HCl 0.5 to 1.5 mg / l, nicotinic acid 0.3 to 0.8 mg / l, pyridoxine HCl 0.3 to 0.8 mg / 13% and 0.7 to 1.3 ml of a PPM (Plant Preservative Mixture).
제 1항에 있어서, 상기 단계 2)의 생물반응기 배양 배지는 1/4 Murashige & Skoog Medium(Including Modified Vitamins, NH4NO3 412.50 mg/ℓ, MgSO4 45.135 mg/ℓ, KNO3 475.00 mg/ℓ, KH2PO4 42.50 mg/ℓ, CaCl2 83.01 mg/ℓ, CoCl2·6H2O 0.00625 mg/ℓ, ZnSO4·7H2O 2.15 mg/ℓ, Na2MoO4·2H2O 0.0625 mg/ℓ, MnSO4·H2O 4.225 mg/ℓ, H3BO3 1.55 mg/ℓ, KI 0.2075 mg/ℓ, FeNaEDTA 9.175 mg/ℓ, CuSO4·5H2O 0.00625 mg/ℓ및 글라이신(Glycine) 0.50 mg/ℓ)에 수크로오스 20 내지 30 g/ℓ, 미오이노시톨 70 내지 80 mg/ℓ, 티아민 HCl 0.7 내지 0.8 mg/ℓ, 니코틴산(Nicotinic acid) 0.3 내지 0.4 mg/ℓ, 피리독신 HCl(Pyridoxine HCl) 0.3 내지 0.4 mg/ℓ, 코코넛워터 7 내지 13% 및 PPM 0.7 내지 1.3 ㎖를 첨가하여 제조한 배지인 것을 특징으로 하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법.
The method of claim 1, wherein the bioreactor culture medium of step 2) is 1/4 Murashige & Skoog Medium (Including Modified Vitamins, NH 4 NO 3 412.50 mg / ℓ, MgSO 4 45.135 mg / ℓ, KNO 3 475.00 mg / ℓ , KH 2 PO 4 42.50 mg / L, CaCl 2 MnSO 4揃 H 2 O 4.225 mg / ℓ, MnSO 4揃 H 2 O, 0.025 mg / ℓ, CoCl 2揃 6H 2 O 0.00625 mg / ℓ, ZnSO 4揃 7H 2 O 2.15 mg / ℓ, Na 2 MoO 4揃 2H 2 O 0.0625 mg / , H 3 BO 3 1.55 mg / ℓ, KI 0.2075 mg / ℓ, FeNaEDTA 9.175 mg / ℓ, CuSO 4 · 5H 2 O 0.00625 mg / ℓ and Glycine (Glycine) in the 0.50 mg / ℓ) of sucrose of 20 to 30 g / ℓ, myoinositol 70 to (Pyridoxine HCl) 0.3 to 0.4 mg / l, coconut water 7 to 13% and PPM 0.7 to 1.3 mg / l, Wherein the culture medium is a culture medium prepared by adding the culture medium to the culture medium.
삭제delete 삭제delete 삭제delete 제 1항에 있어서, 상기 단계 2)의 생물반응기는 0.2 vvm 공기가 주입되는 것을 특징으로 하는 생물반응기를 이용한 복주머니란의 유묘 형성 방법.[2] The method according to claim 1, wherein the bioreactor in step 2) is injected with 0.2 vvm air.
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