KR101292838B1 - 재조합 대장균을 이용한 5―아미노발레르산의 제조 방법 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 재조합 대장균 균주를 이용한 라이신(lysine)으로부터 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid)의 제조 방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로 재조합 대장균 균주를 delta-aminovaleramidase(DavA) 및 lysine 2-monooxygenase(DavB) 유전자로 형질전환하여 제조한 재조합 균주에 의해 라이신으로부터 5-아미노발레르산을 생산하는 방법에 관한 것이며, 상기 재조합 대장균 균주는 라이신으로부터 5-아미노발레르산으로의 전환 생산능이 있으므로, 상기 방법은 5-아미노발레르산 저가의 대량 생산기술에 유용하게 이용될 수 있다.
Description
본 발명은 재조합 대장균 균주를 이용한 라이신(lysine)으로부터 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid)의 제조 방법에 관한 것이다.
최근 전 세계적인 석유수급 불안과 석유자원 고갈에 대한 위기의식으로 최근에 산업 바이오 기술을 이용하여 바이오매스에서 유래한 대체 생산 방법이나 대체 화합물을 생산하기 위한 전 인류적인 노력이 바이오에너지, 바이오플라스틱, 바이오화합물 등의 다양한 분야에서 가시화되고 있다. 바이오매스를 활용하여 생산되는 바이오 플라스틱 시장의 경우 2002년 Natureworks사에 의해 상업화된 폴리유산 (Poly Lactic acid)이 연 14만 톤 규모로 생산되어 최근 시장이 급속히 확대되고 있다. PHA계 바이오플라스틱인 폴리-(3-하이드록시부틸레이트-코-3-하이드록시발레레이트{poly-(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalarate)}(P(3HB-co-3HV))도 Metabolix와 ADM의 합작회사인 Telles에 의해 5만 톤 규모의 공장이 2010년 완공되어 제품이 시판되고 있다. 또한, 듀폰사가 생산하고 있는 바이오매스 기반의 1,3-프로판디올을 이용하여 PTT 고분자 제품이 현재 상용화되어 있다. 이외에도 숙신산 기반의 PBS 등도 활발히 개발되고 있다. 상기 예로 든 바이오매스 유래 고분자의 단점 중의 하나는 낮은 내열성을 들 수 있다. 높은 내열성을 보유한 고분자의 대표적인 예는 나일론이다. 나일론 6과 나일론 6,6이 나일론 시장의 대부분을 차지하고 있지만 최근 생분해성 특성과 내열성을 동시에 지닌 나일론 4에 대한 관심이 높아지고 있다.
나일론 4의 원료물질인 2-피롤리돈은 감마 부티로락톤(gamma butyrolactone)으로부터 생산될 수 있으며 4-아미노부틸산의 탈수 고리반응에 의해 생산될 수 있다. 4-아미노부틸산의 경우 감마-아미노부틸산(gamma-aminobutyric acid, GABA)이라고도 하는데, 체내에서는 신경전달물질 억제효과에 의한 저혈압 및 진통효과가 있다고 알려져, 현재 식품 및 의약품 소재로 활용되고 있다(Erlander et al., Neurochem Res. 16: 215-226, 1991). 이러한 GABA는 글루타메이트를 원료로 글루타메이트 디카르복실라아제(Glutamate decarboxylase)에 의해 제조될 수 있는데, 현재까지 다양한 글루타메이트 디카르복실라아제가 보고되어 있으며(Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87: 8491-8495, 1990; Protein Expression and Purification 8: 430-438, 1996; Biosci. Biotechnol. Biochem. 66(12): 2600-2605, 2002), 글루타메이트 디카르복실라아제를 이용하여 GABA를 생산하는 공정이 개발된바 있다. 나일론 4 이외에 최근에 나일론 5에 관한 관심 또한 높아지고 있다. 나일론 5의 모노머는 현재 라이신으로부터 유래된 다이아민인 카다베린(cadaverine)이 사용되고 있다.
이에 본 발명자들은 라이신(lysine)으로부터 유래될 수 있는 나일론 5의 또 다른 모노머로서 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid)을 생산하는 공정을 개발하기 위하여 연구한 결과, 대장균에 L-lysine을 5-aminovaleramide로 전환하는 lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소와 5-aminovaleramide를 5-aminovaleric acid로 전환하는 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 증폭한 결과 라이신으로부터 5-아미노발레르산이 생산됨을 확인하여, 상기 재조합 균주는 5-아미노발레르산을 저가로 대량 생산하는데 유용하게 사용할 수 있음을 밝힘으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소 및 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 벡터로 형질전환하여 제조된 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid) 생산용 재조합 대장균 균주를 제공하기 위한 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 DavB 효소 및 DavA 효소를 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 벡터로 형질전환하여 제조된 재조합 대장균 균주를 이용하여 글루코스 및 라이신이 포함된 배지로부터 5-아미노발레르산을 생산하는 방법을 제공하기 위한 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은
1) lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소 및 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 코딩하는 유전자를 발현벡터 내로 삽입하여 재조합 벡터를 제조하는 단계; 및
2) 단계 1)에서 제조한 재조합 벡터를 대장균 균주에 형질전환시켜 재조합 대장균 균주를 제조하는 단계를 포함하는 제조방법으로 제조된 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid) 생산용 재조합 대장균 균주를 제공한다.
아울러, 본 발명은
1) DavB 효소 및 DavA 효소를 코딩하는 유전자를 발현벡터 내로 삽입하여 재조합 벡터를 제조하는 단계;
2) 단계 1)에서 제조한 재조합 벡터를 대장균 균주에 형질전환시켜 재조합 대장균 균주를 제조하는 단계;
3) 단계 2)의 재조합 대장균 균주를 글루코스(glucose) 및 라이신(lysine)을 포함하는 배지에 배양하는 단계; 및
4) 단계 3)의 배양액으로부터 5-아미노발레르산을 수득하는 단계를 포함하는 5-아미노발레르산 생산방법을 제공한다.
본 발명은 L-lysine을 5-aminovaleramide로 전환하는 lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소와 5-aminovaleramide를 5-aminovaleric acid로 전환하는 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소가 증폭된 재조합 대장균 균주에 관한 것으로, 상기 재조합 대장균 균주를 라이신이 함유된 배지에서 배양할 경우 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid)을 대량생산 할 수 있으므로 5-아미노발레르산 대량생산 산업화기술개발에 유용하게 이용될 수 있다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
1) lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소 및 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 코딩하는 유전자를 발현벡터 내로 삽입하여 재조합 벡터를 제조하는 단계; 및
2) 단계 1)에서 제조한 재조합 벡터를 대장균 균주에 형질전환시켜 재조합 대장균 균주를 제조하는 단계를 포함하는 제조방법으로 제조된 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid) 생산용 재조합 대장균 균주를 제공한다.
상기 DavB는 서열번호 1로 기재되는 염기서열을 갖는 것이 바람직하나 이에 한정하지 않는다.
상기 DavA는 서열번호 2로 기재되는 염기서열을 갖는 것이 바람직하나 이에 한정하지 않는다.
상기 대장균 균주는 모든 종류의 대장균 균주가 적용될 수 있으나, BL21 codon plus인 것이 보다 바람직하나 이에 한정하지 않는다.
또한, 본 발명은
1) DavB 효소 및 DavA 효소를 코딩하는 유전자를 발현벡터 내로 삽입하여 재조합 벡터를 제조하는 단계;
2) 단계 1)에서 제조한 재조합 벡터를 대장균 균주에 형질전환시켜 재조합 대장균 균주를 제조하는 단계;
3) 단계 2)의 재조합 대장균 균주를 글루코스(glucose) 및 라이신(lysine)이 포함하는 배지에 배양하는 단계; 및
4) 단계 3)의 배양액으로부터 5-아미노발레르산을 수득하는 단계를 포함하는 5-아미노발레르산 생산방법을 제공한다.
상기 단계 3)의 배지는 대장균 균주의 배양에 이용되는 어떠한 배지도 사용가능하나, LB배지가 보다 바람직하나 이에 한정하지 않는다.
상기 단계 3)의 배양은 48 내지 96시간인 것이 바람직하고, 배양온도는 20 내지 40℃인 것이 바람직하고, 37℃인 것이 보다 바람직하나 이에 한정하지 않는다.
상기 단계 4)의 5-아미노발레르산 수득은 배양액을 분무 건조하여 저농도의 5-아미노발레르산-함유 분말을 대량으로 얻을 수 있고, 배양액을 감압 증발기를 이용하여 농축한 후 동결건조를 진행하여 고농도의 5-아미노발레르산 수득도 가능하며, 또한 이온교환수지를 이용한 정제방법을 사용한 후 농축 및 건조 공정을 수행하여 고순도의 5-아미노발레르산의 수득할 수 있으나 이에 한정하지 않으며, 상기 5-아미노발레르산은 온도 및 pH의 변화에 크게 영향을 받지 않고, 공정 안정성이 있기 때문에 회수 공정상의 제한이 없다.
본 발명의 구체적인 실시예에 있어서, 대장균 균주를 lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소와 5-aminovaleramide를 5-aminovaleric acid로 전환하는 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 코딩하는 유전자를 함유한 재조합 벡터로 형질전환하여 형질전환된 대장균 균주를 라이신이 포함된 배지에서 배양한 후 5-아미노발레르산 전환 생산능을 확인한 결과, 5-아미노발레르산의 유의적인 전환 생산능을 확인하였다(표 2 참조).
따라서, 본 발명의 재조합 대장균 균주는 5-아미노발레르산을 저가로 대량 생산하는데 유용하게 사용될 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<
실시예
1>
DavA
및
DavB
유전자 발현을 위한 발현 벡터의 제조
L-lysine을 5-aminovaleramide로 전환하는 lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소와 5-aminovaleramide를 5-aminovaleric acid로 전환하는 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 증폭한 재조합 E. coli BL21 codon plus를 배양하여 라이신으로부터 5-아미노발레르산(5-aminovaleric acid) 생산능을 확인하기 위하여, DavA, DavB 유전자를 발현하는 벡터를 제작하였다.
발현용 벡터 pZE12-MCS는 pTacLac(Lee et al. Appl . Microbiol . Biotechnol . 79, 633-641, 2008)의 MCS(Muti-cloning sites) 및 Ralstonia eutropha의 PHA 생합성 유전자 전사 터미네이터를 가지도록 변형시켰다.
구체적으로, Ralstonia eutropha의 PHA 생합성 유전자 전사 터미네이터 유전자 단편을 p619C1437-pct540로부터 하기 표 1에서 나타낸 서열번호 3 및 서열번호 4의 프라이머를 이용하여 PCR로 수득하고, 상기 수득한 유전자 단편을 주형으로 하여 하기 표 1에서 나타낸 서열번호 5 및 서열번호 4의 프라이머를 이용하여 PCR을 수행하여 RBS, pTacLac MCS 및 R. eutropha의 PHA 생합성 유전자 전사 터미네이터를 수득하였다. 상기 PCR 산물을 MfeI 및 AvrII를 처리하여 절단하고, EcoRI/AvrII로 절단된 pZE12-MCS에 삽입하여, pKE12-MCS를 제조하였다. 플라스미드 pZE12-MCS는 ESPRESSYS(www.expressys.com)로부터 구입하여 수용하였다. pKE12-MCS에 Pseudomonas putida의 DavA 유전자를 EcoRI/KpnI으로 삽입하여, pKE12DavA를 제조하였고, pKE12DavA에 Pseudomonas putida의 DavB 유전자를 KpnI/BamHI으로 삽입하여, pKE12DavAB를 제조하였다.
프라이머 서열(Primer sequence) | 표적 유전자(Target gene) | |
서열번호: 3 | gagtcgacctgcaggcatgcaagcttcctgccggcctggttcaacc | R. eutropha PHA biosynthesis genes transcription terminator |
서열번호: 4 | cctagg gcctcgcccccgcgagggcc | |
서열번호: 5 | caattgattaaagaggagaaagaattcgagctcggtacccggggatcctctagagtcgacctgcaggcatgcaagctt | RBS and MCS for pKE12-MCS |
<
실시예
2>
5-
아미노발레르산
(5-
aminovaleric
acid
)
생산능
확인
상기 <실시예 1>에서 제작한 E. coli BL21 codon plus(pKE12DavAB)를 이용하여 5-아미노발레르산 생산능을 확인하기 위하여, E. coli BL21 codon plus를 LB배지 및 글루코스 10 g/L와 라이신 10 g/L가 함유된 LB 및 MR 배지에서 배양하였다. MR 배지는(pH 6.9) 1리터당 다음과 같은 조성으로 구성되어 있다. 6.67 g KH2PO4, 4 g(NH4)2HPO4,0.8 g MgSO47H2O, 0.8g citric acid, 5 ml trace metal solution. Trace metal solution은 1리터당 다음과 같은 조성으로 구성되어 있다(0.5 M HCl), 10 g FeSO47H2O, 2 g CaCl2, 2.2gZnSO47H2O, 0.5 g MnSO44H2O, 1 g CuSO45H2O, 0.1 g(NH4)6Mo7O244H2O, 0.02 g Na2B4O710H2O.
그 결과, 표 2에 나타낸 바와 같이, 라이신으로부터 5-아미노발레르산이 유의적으로 생산되는 것을 확인하였다.
<110> Korea research institute of chemical technology
<120> Method for Preparing 5-aminovaleric acid using recombinant
Escherichia coli strains
<130> 11p-02-20
<160> 5
<170> KopatentIn 1.71
<210> 1
<211> 1683
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 1
atgaacaaga agaaccgcca ccccgccgac ggcaagaagc cgatcaccat tttcggcccg 60
gacttccctt ttgctttcga cgactggctg gaacacccgg caggcctggg cagcattccg 120
gctgagcgcc atggggaaga ggtggccatt gtcggtgccg gtatcgccgg cctggtagcg 180
gcctacgagc tgatgaagct gggcctcaag ccggtggtgt acgaggcttc caagctgggc 240
ggccggctgc gctcgcaagc cttcaatggc actgacggga tcgttgccga actgggtggc 300
atgcgcttcc cggtgtcgtc caccgccttc taccactacg tcgacaagct gggcctggaa 360
accaagccct tccccaaccc gctgaccccg gcttcgggca gcacggtgat cgacctggaa 420
ggccagacct actacgccga gaagcccacc gacctgccac aactgtttca tgaggtagcc 480
gacgcctggg ccgatgcgct ggagagcggt gcgcagttcg ccgatatcca gcaggccatc 540
cgcgaccgtg atgtaccgcg cctgaaggaa ctttggaaca agctggtgcc gctgtgggac 600
gaccgcacct tctacgactt cgtcgccacc tcgcgctctt ttgccaagct gagcttccag 660
caccgcgaag tgttcggcca ggtcggtttc ggcaccggcg gttgggactc ggacttcccc 720
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gtggtcgggg gcgtggaaca agtgccacaa ggcatctggc gccacgtacc ggaacgctgc 840
gtgcattggc cagagggcac cagcctgagc acgctgcatg gcggcgcacc gcgtaccggt 900
gtcaagcgca ttgcccgcgc ctccgatggc cgcctggcgg tcaccgacaa ctggggcgat 960
acccgccact acagcgcagt actcgccacc tgccagacct ggttgctgac cacccagatc 1020
gactgcgaag aatcgctgtt ctcgcaaaag atgtggatgg ccctggaccg tacccgctac 1080
atgcagtcgt cgaaaacctt cgtcatggtc gaccgcccgt tctggaagga caaggacccg 1140
gaaaccggcc gtgacctgct gagcatgacc ctcaccgatc gcctcacccg cggcacttac 1200
ctgttcgaca acggcaacga caagcccggg gtgatctgcc tgtcatactc gtggatgagc 1260
gacgcgctga agatgctgcc gcacccggtg gagaagcgcg tacaactggc cctggatgcg 1320
ctgaagaaga tctacccgaa gaccgatatc gccggccaca tcatcggcga cccgatcacg 1380
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taccgctaca accagcgcat gtacgcgcac ttcatgcagc aggacatgcc ggcagagcag 1500
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cccgacaacc cgggcccggg cgatgtgttc aacgaaatcg gcccgatcgc cctggcggat 1680
tga 1683
<210> 2
<211> 795
<212> DNA
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<400> 2
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gagatgttcc tgaccggcta caacatcggc ctggcccagg tcgagcgcct ggccgaggcc 180
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gtctatggct acccggagcg cggtgacgac ggggcgatct acaacagcgt gcagttgatc 300
gatgcgcatg gccgcagcct gagcaattac cgcaagacgc acctgttcgg tgaactggac 360
cgctcgatgt tcagccctgg tgcggaccac ttcccggtgg tggaactgga aggctggaag 420
gttggcctgc tgatctgcta cgacatcgag ttcccggaga acgcccgacg cctagcgctg 480
gacggcgccg agctgatcct ggtgccgacg gcgaacatga cgccgtacga ctttacctgc 540
caggtgaccg tgagagcgag ggcacaggaa aaccagtgct acctggtata tgccaactac 600
tgcggtgcgg aagacgagat tgagtattgc gggcagagca gcatcatcgg cccggatggc 660
agcttgctgg ccatggccgg gcgggatgag tgccagttgt tggcagagct tgaacatgag 720
cgggtggtgc aggggcgcac ggcgtttccc tacctgaccg atttgcgcca ggagctgcac 780
ctgcgtaaag gctga 795
<210> 3
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> forward primer for R. eutropha PHA biosynthesis genes
transcription terminator
<400> 3
gagtcgacct gcaggcatgc aagcttcctg ccggcctggt tcaacc 46
<210> 4
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> reverse primer for R. eutropha PHA biosynthesis genes
transcription terminator
<400> 4
cctagggcct cgcccccgcg agggcc 26
<210> 5
<211> 78
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> forward primer for RBS and MCS for pKE12-MCS
<400> 5
caattgatta aagaggagaa agaattcgag ctcggtaccc ggggatcctc tagagtcgac 60
ctgcaggcat gcaagctt 78
Claims (5)
1) lysine 2-monooxygenase(DavB) 효소 및 delta-aminovaleramidase(DavA) 효소를 코딩하는 유전자를 발현벡터 내로 삽입하여 재조합 벡터를 제조하는 단계;
2) 단계 1)에서 제조한 재조합 벡터를 대장균 균주에 형질전환시켜 재조합 대장균 균주를 제조하는 단계;
3) 단계 2)의 재조합 대장균 균주를 라이신(lysine)이 포함하는 배지에 배양하는 단계; 및
4) 단계 3)의 배양액으로부터 5-아미노발레르산을 수득하는 단계를 포함하는 5-아미노발레르산 생산방법.
2) 단계 1)에서 제조한 재조합 벡터를 대장균 균주에 형질전환시켜 재조합 대장균 균주를 제조하는 단계;
3) 단계 2)의 재조합 대장균 균주를 라이신(lysine)이 포함하는 배지에 배양하는 단계; 및
4) 단계 3)의 배양액으로부터 5-아미노발레르산을 수득하는 단계를 포함하는 5-아미노발레르산 생산방법.
제 1항에 있어서, 상기 DavB는 서열번호 1로 기재되는 염기서열을 갖는 것을 특징으로 하는 5-아미노발레르산 생산방법.
제 1항에 있어서, 상기 DavA는 서열번호 2로 기재되는 염기서열을 갖는 것을 특징으로 하는 5-아미노발레르산 생산방법.
삭제
제 1항에 있어서, 상기 단계 3)의 배양은 48 내지 96시간 동안 30 내지 40℃에서 실시하는 것을 특징으로 하는 5-아미노발레르산 생산방법.
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US9090898B2 (en) * | 2008-12-12 | 2015-07-28 | Metabolix, Inc. | Green process and compositions for producing poly(5HV) and 5 carbon chemicals |
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GenBank Accession Number AB353855 (2008)* |
Olga Revelles 등. JOURNAL OF BACTERIOLOGY. Vol. 187, No. 21, 페이지 7500-7510 (2005) * |
Olga Revelles 등. JOURNAL OF BACTERIOLOGY. Vol. 187, No. 21, 페이지 7500-7510 (2005)* |
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---|---|---|---|---|
KR20230056823A (ko) | 2021-10-20 | 2023-04-28 | 홍익대학교세종캠퍼스산학협력단 | 5-아미노발레르산으로부터 글루타르산으로의 전환 방법 |
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