KR100817020B1 - 셀레늄을 유효성분으로 하는 배아 발생 개선용 조성물 및그 방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 셀레늄을 유효성분으로 하는 배아 발생 개선용 조성물 및 그 방법에 관한 것이다.
셀레늄, 배아, 발생력, 에팝토시스

Description

셀레늄을 유효성분으로 하는 배아 발생 개선용 조성물 및 그 방법{Methods of and compositions for improving development of embryos}
도 1은 25 ng/㎖ SS(sodium selenite)를 포함하는(A), 또는 포함하지 않는(B) NCSU23 + 0.4% PVA에서 배양된 돼지 성숙 난모세포들의 처녀생식적 활성화에서 유래된 배반포들의 면역염색을 나타낸다. 1 : 비염색된 배반포들, 2 : Hoechst 33342 염색, 3. : TUNEL 분석(녹색: 에팝토틱 세포) 그리고 4 : 차별적 염색(적색: 영양세포층 세포, 청색: ICM).
도 2는 25 ng/㎖ SS를 포함하는 NCSU23 + 0.4% PVA에서 배양된 돼지 성숙 난모세포들의 ICM 률을 나타낸다. PVA는 21.3±3.4%(n = 8)이었고 PVA+SS는 29.4±6.1% (n = 16)이었다. 같은 바 상단에 별표를 가지는 값은 유의적으로 차이이다(p < 0.05).
도 3은 25 ng/㎖ SS를 포함하는 NCSU23 + 0.4% PVA에서 배양된 돼지 성숙 난모세포들의 실시간 PCR에 의한 Bax/BclXL 유전자들의 발현 레벨을 나타낸다. PVA는 1이고 PVA+SS는 0.39±0.06이었다. 이 실험은 3회 반복하였다. 같은 바 상단에 별표를 가지는 값은 유의적으로 차이이다(p < 0.05).
도 4는 25 ng/㎖ SS를 포함하는 NCSU23 + 0.4% PVA에서 배양된 돼지 성숙 난 모세포들의 ERK1/2 (A), caspase 3 (B) 및 GPx (C)를 나타낸다. 이 실험은 3회 반복하였다. 같은 바 상단에 별표를 가지는 값은 유의적으로 차이이다(p < 0.05).
본 발명은 셀레늄을 유효성분으로 하는 배아 발생 개선용 배지, 조성물 및 그 방법에 관한 것이다.
최근에 돼지 배아의 인 비트로 생산에 대한 기술이 많이 발전하였다. 배아 배양은 그것의 생존력과 질을 유지하기 위하여 매우 정의된 배아 배지를 필요로 한다. 비록 몇 배아 배양 배지들을 상용화되었지만 그들은 모든 요건들을 충족하지 못하여 배반포 촉진 물질들에 초점을 맞춘 여러 연구들이 진행 중이다.
그러나 그러한 기술들은 감소된 발생 능력을 계속 나타내고, 낮은 전체 세포 수, 변경된 내부 세포 질량(ICM) 비, 불규칙한 크기의 할구 및 감소된 임신률을 야기하는 세포질 전달을 전형적으로 나타낸다.
셀레늄(Selenium)은 인간과 동물들에게 필수적인 미량원소이고, 이것은 GSH/GSSG 항산화 시스템에서 산화된 글루타치온(GSSG)을 환원된 글루타치온(GSH) 으로 환원시키는 글루타치온 퍼옥시데이즈(GSHpx)와 같은 셀레노-효소에 삽입하여 하이드로퍼옥사이드와 지질 퍼옥사이드를 환원시켜서 산화적 손상으로부터 세포를 보호한다. 그것은 또 지질 과산화를 저해하기 위하여 알파-토코페롤과 협력하여 막 및 지질단백질들내의 인지질 과산화수소를 감소시킨다.따라서 셀레나이트는 외부 스트레스로부터 세포 생존과 보호에 기여한다.
본 발명은 상기의 문제점을 해결하고, 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로서 본 발명의 목적은 배아 발생 개선용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 배아 발생 개선용 배지를 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 배아 발생 개선 방법을 제공하는 것이다.
상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 셀레늄을 유효성분으로 하는 돼지 배아 발생 개선용 조성물을 제공한다. 돼지의 경우 다른 포유류들과 다른 특징을 가지고 있다.
첫 번째는 돼지 배아의 경우 난자 내에 존재하는 다량의 리피드 함량으로 인하여, 산화작용이 일어난다는 보고가 있으며,
둘째로는 체외생산 난자의 경우 체내생산의 난자보다도 세포의 단편화(fragmentation)가 급격하게 나타나기 때문에 체외배양시 배반포율의 감소에 따른 세포수의 감소를 야기시킨다.
따라서 돼지의 체외 배양에 있어서 돼지 난자의 특수성을 감안하여, 셀레늄을 유효성분으로 하는 배지는 외부의 스트레스를 줄임으로 인한 배반포율의 증가와 세포수의 증가, 그리고 세포사멸(apaptosis)의 감소를 가져오게 하는 것이 본 발명의 요점이다.
본 발명의 일 실시예에 있어서 상기 셀레늄의 양은 2.5∼250ng/ml인 것이 바람직하다.
또 본 발명은 셀레늄을 유효성분으로 하는 돼지 배아 발생 개선용 배지를 제공한다.
본 발명의 배지에 있어서, 상기 셀레늄의 양은 2.5∼250ng/ml이 바람직하다.
또한 본 발명은 a) 성숙 전(Prepubertal) 난모세포를 인 비트로에서 성숙시키는 단계; b) 상기 난모세포를 활성화에 의하여 처녀생식적으로 활성화시키는 단계; 및 c) 상기 추정적인 배수 접합체들을 셀레나이트 염을 포함하는 배지에서 배양하는 단계를 포함하는 돼지 배아 발생 개선 방법을 제공한다.
본 발명의 방법에 있어서, 상기 셀레나이트 염의 농도는 2.5∼250ng/ml인 것이 바람직하다.
이하 본 발명을 설명한다.
본 발명에서 사용된 "배아 발생 개선"이란 용어는 배반포률이 증가하고, 난모세포의 발생능력도 증가하고, 그러나 에팝토시스률은 현저하게 감소되는 것을 의미한다..
본 발명은 돼지 배아의 발생에서 셀레늄의 중요성을 입증하였다. 본 발명자들은 처녀 생식 배아의 발생 특성이 체외 수정된 배아들의 것과 유사하고, 부계/정장 인자의 영향으로 인한 혼돈스런 오차를 피하여 배아 발생에 대한 모계 인자들의 영향을 분석하기 위한 우수한 시스템으로 알려진 처녀생식 배아(parthenogenetic embryo)들을 모델 시스템으로 사용하였다. 셀레늄의 효과는 배지 조건을 화학적으 로 한정하기 위하여 혈청 없는 배지와 BSA의 존재 또는 부존재하에서 측정하였다. 본 발명은 성숙전 난모세포를 인 비트로에서 성숙시키고 전기활성화에 의하여 처녀생식적으로 활성화시켰다. 추정적인 배수 접합체들을 소디움 셀레나이트(0, 2.5, 25, 250 ng/ml)의 존재 또는 부존재하에서 배양하고 배아 발생 역학, 배반포 세포 수들 및 내 세포괴(inner cell mass;ICM) 율을 측정하였다. 배아들을 또 TUNEL 분석과 프로-아폽틱 BAX에 대한 실시간 qRT-PCR 그리고 항-아폽토틱 Bcl-xL 전사체들에 의하여 아폽토시스에 대하여 분석하였다. Caspase 3, ERK와 GSHpx 단백질들에 대한 웨스턴 블럿팅을 셀레늄의 작용에 대한 더 많은 결과를 얻기 위하여 수행하였다.
이러한 결과로 본 발명의 일 실시예에서는 25 ng/ml의 SS의 존재하에서 처녀생식된 반수성개체(parthenote)들을 배양할 경우, 배반포률은 대조군의 12.7%에 비하여 45.4로 증가된다. 이들 배반포들을 또 대조군(12.7 ± 4.6%)에 비하여 낮은 에팝토시스(5.6 ± 2.4%)을 보인다. 배반포에서 Bax/BclXL 유전자들의 발현율은 SS존재하에서 0.4 ± 0.1배 감소한다. 더구나, SS에 의하여 배반포에서 caspase-3활성은 감소하고, 배반포에서 ERK 1/2와 GPx의 활성은 증가하는 것을 알 수 있었다.
SS 농도(ng/ml) 2-4 세포기 배아 수 배반포의 % (n) 전체 세포들의 %(n) 에팝토틱 세포들의 %(n)
0 137 20.1±3.1a (28) 30.8±1.6a (12) 11.6±4.2a (12)
2.5 137 26.9±4.5ab (36) 35.9±3.4a (16) 8.3±4.5ab (16)
25 136 34.8±6.1b (47) 38.8±5.2a (20) 5.8±2.7c (20)
250 139 29.7±5.7b (41) 36.2±3.2a (18) 6.1±2.8bc (18)
상기 표 1은 여러 다른 농도의 SS를 함유하는 NCSU23 + 0.4% PVA에서 돼지 2-4 세포 스테이지의 발생능력과 에팝토시스를 나타낸다. 실험은 5회 반복실험되었고, 칸내의 a,b,c는 차이를 나타낸다(p < 0.05).
SS 난모세포의 % (n) 2-4 세포기 배아 % (n) o 배반포의 % (n) 전체 세포들의 % (n) 에팝토틱 세포들의 % (n)
비처리 221 58.2±4.8a (129) 12.7±4.8a (71) 31.3 ±10.1a (12) 12.7±4.6a (12)
처리 221 60.7±4.6a (133) 45.4±8.8b (92) 42.1±15.5b (20) 5.6±2.4a (20)
상기 표2는 SS를 함유하는 NCSU23 + 0.4% PVA에서 활성화된 돼지 성숙 난모세포의 발생능력과 에팝토시스를 나타낸다. 실험은 5회 반복실험되었고, 칸 내의 a,b는 차이를 나타낸다(p < 0.05).
이하, 비한정적인 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세하게 설명한다.
실시예
본 발명에서 특정하지 아니하고 사용된 모든 시약들은 시그마-알드리치(St. Louis, MO, USA)에서 구입하였다.
실시예: 돼지 처녀생식으로 생긴 반수성개체(parthenote)들의 생산
난모세포 회수 및 인 비트로 성숙
성년 이전(Prepubertal) 돼지 난소들을 지역 도살장으로부터 모아서 실험실로 가져와서 30 ∼ 37℃ 식염수에서 보존하였다. 난구 난모세포 복합체들(Cumulus oocyte complexes;COCs) 18 G 니들을 가지는 10ml 주사기를 사용하여 3-6 mm 지름의 난포로부터 빨아내었다. 그 COCs를 1 mg/ml BSA (낮은 카보네이트 TALP)를 포함하는 TL-HEPES 배지로 3회 세척하고, 25 mM NaHCO3, 10% (v/v) 돼지 난포액, 0.57 mM cysteine, 0.22 μg/ml sodium pyruvate, 25 μg/ml gentamicin sulfate, 0.5 ㎕/ml p-FSH (Folltropin V; Vetrepharm, Canada), 1 μg/ml estradiol-17β 및 10 ng/ml 표피 성장 인자(EGF; E-4127, Sigma)가 보충된 Earle's salts (TCM-199; Gibco BRL, Grand Island, NY)를 가지는 500 ㎕의 Tissue Culture Medium 199에서 50개의 군으로 광유 하에서 39℃, 5% CO2 습도 환경에서 42-44 시간 성숙시켰다.
난모세포들의 처녀생식 활성화
인 비트로 성숙 후에 난모 세포들을 0.1% 히알루노니다제를 사용하여 난구 세포들로부터 떼어내어서 TL-HEPES에서 3회 세척하고, 0.3 M mannitol, 0.1 mM MgSO4와 1.0 mM CaCl2로 구성된 활성화 배지에서 전기활성화하였다. 활성화를 위하여 떼어 낸 난모세포들을 전기 펄싱 머신(BTX Electro Cell Manipulator 200, BTX, San Diego, CA)이 연결된 챔버 내에 활성화 배지로 덮힌 1mm 떨어진, 0.2 mm 지름 백금 전극 사이로 트랜스퍼하였다. 활성화는 1.36 KV/cm의 단일 직류로 30 μs동안 유도되었다. 활성화 후에 활성화된 난모세포들을 이 후의 인 비트로배양 배지로 옮기기 전에 4 시간 동안 7.5 μg/ml Cytochalasin B가 보충된 North Carolina State University Medium 23 (NCSU23) 배지에서 배양하였다.
활성화된 난모세포들의 인 비트로 배양
활성화된 반수성개체(parthenote)들을 0.4% PVP (polyvinulalcohol)가 보충된 NCSU23 배지에서 배양하였다. 절단률(Cleavage rate)을 2일째 측정하였고, 배반포 률은 배양 7일째 측정하였다. 활성화 후 168 시간 후 배반포를 배아 품질 평가를 위하여 모았다.
실험예 1: TUNEL 및 세포 카운팅
TUNEL 분석 키트(in situ Cell Death Detection Kit, AP, Roche Diagnostic Corp., Indianapolis, IN)는 배반포에서 아폽토틱 세포의 존재를 측정하는데 사용된다.
간단하게 설명하면, 7 일째 배반포를 상온에서 1시간 동안 PBS, PH 7.4, 4% 파라포름알데히드에서 고정하고, 1시간 동안 1.0% Triton X-100과 0.1% Sodium Citrate 용액을 가지는 PBS에서 투과시킨다. 사멸한 세포의 그 절단된 DNA 말단들을 39℃ 에서 1시간 동안 TdT와 후루오레세인-dUTP로 표지하였다. 그 후 그 배반포를 전체 핵 수를 보기 위하여 5 μg/ml Hoechst 33342 (Sigma; B-2261)로 카운터-염색하고 Universal mount (2130 Memorial Pkwy SW, Huntsville, AL)에 마운트하였다. 세포 수 및 아폽토틱 핵을 결정하기 위하여 각 배반포의 두 디지털 이미지들(Nikon Coolpix 990; Nikon Corporation, Tokyo, Japan)을 (i) Hoechst 33342 이미지를 위하여 UV 피필터를 사용하고, (ii) TUNEL 이미지를 위하여 FITC 필터를 사용하여 기록하였다. 핵의 수는 이미지들을 인쇄한 후 계수하였다.
실험예 2: 내 세포괴(ICM)과 TE의 차별적(Differential) 표지
7 일째 배반포를 내 세포괴 률을 분석하기 위하여 면역염색하였다. 간단하게 설명하면, 배반포들의 투명대(zonae pellucidae)를 0.5% pronase로 제거하였다. 1 mg/ml 폴리비닐 알콜을 함유한 TL-HEPES 배지로 세척한 후, 투명대 없는 배아들을 1:5 희석의 토끼 항-돼지 전혈청에서 1시간 노출하였다. 그 후 그들을 TL-HEPES로 5분간 3회 세척하고 1:10 희석의 10 μg/ml propidium iodide와 10 μg/ml bisbenzimide를 포함하는 귀니아 피그 보체에 1시간 정치하였다. TL-HEPES에서 짧게 세척 후, 그 염색된 배아들을 커버 슬립하의 슬라이드 글라스에 고정하고 epifluorescent 현미경을 사용하여 UV광 아래서 관찰하였다. 청색과 적색 세포들을 각각 ICM과 TE로부터 온 세포로 계수하였다.
실험예 3: 실시간 정량적 역 전사 PCR(real time qRT-PCR)
BAX , BCL - XL IGF2 유전자의 mRNA 전사체의 상대적 양을 평가하기 위하여, 배반포는 활성화 168시간 후에 수집되었고, 용해 완충액(1 U/ul RNAsin이 첨가된 0.1% 폴리비닐피롤리돈의 PBS; Promega) 내에서 급속 냉동되었으며, 실시간 RT-PCR되었다(Cui XS 및 Kim NH, 2005 "Polyamines inhibit apoptosis in porcine parthenotes developing in vitro" Mol Reprod Dev 70:471-477). 간단하게, 메신저 RNA가 제조자의 사용설명서에 따라 Dynabeads™ mRNA Direct Kit 및 Magnetic Particle Concentrator(Dynal Asa, Oslo, Norway)를 사용하여 추출되었다. 첫 번째 가닥 cDNA 합성은 제조자의 사용설명서에 따라 AccuPower™ RT Premix(Bioneer, Korea)를 사용하여 수행되었다. BCL-XL, BAXIGF2 종의 mRNA는 그 후 실시간 RT-PCR(Chromo 4™ Continuous Fluorescence Detector, MJ Research, MA, USA)로 조정된 Tbr DNA 폴리머라제, SYBR Green, 최적화된 PCR 완충액, 5 mM MgCl2 및 dUTP 포함 dNTP 혼합물을 함유하는 DyNAmo SYBR green qPCR kit(Finnzyme, Finland)를 사용하여 증폭되었으며, 이때 사용된 프라이머쌍 및 PCR 조건은 하기 표 3과 같다.
유전자 프라이머 서열(5'→3') GenBank 기재번호 어닐링 온도(℃) 앰플리콘 크기(bp)
BCL - XL Forward Reverse GGAGCTGGTGGGTTGACTTTC(서열번호 1) CTAGGTGGTCATTCAGGTAAGG(서열번호 2) AF216205 60 518
BAX Forward Reverse CAGCTCTGAGCAGATCATGAAGACA(서열번호 3) GCCCATCTTCTTCCAGATGGTGAGC(서열번호 4) AJ606301 60 535
GADPH Forward Reverse GGGCATGAACCATGAGAAGT(서열번호 5) AAGCAGGGATGATGTTCTGG(서열번호 6) AF017079 60 230
GADPH가 모든 실험에 있어 내부 표준물질로 사용되었다. cDNA를 제외하고 모든 조건이 동일한 비-주형 대조군이 각 PCR에 포함되었다. 증폭에 있어 열 프로파일은 다음과 같다: 초기 변성은 15분 동안 95℃; 변성은 30초 동안 97℃; 어닐링은 사용된 프라이머쌍에 따라 30초 동안 60℃(상기 표 1 참조); 연장(extension)은 30초 동안 72℃; 및 마지막 연장은 5분 동안 72℃. 이러한 증폭 과정이 40번 반복되었다. 형광 데이터가 얻어졌고 비-특이적인 것으로부터 구별되는 특정 앰플리콘(amplicon)에 대한 용융 커브를 얻기 위하여 Opticon Monitor™ software version 2.03(MJ Research, MA, USA)으로 분석되었다. 상대적 정량분석이 2-ddCt 방법으로 수행되었다(Livak 및 Schmittgen, 2001 "Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ddCt Method" Methods 25:402-408). PCR 결과물의 크기는 서브마린 아가로스 겔 전기영동에 의해 확인되었으며, 에티디움 브로마이드로 염색되었다.
실험예 4: 웨스턴 블럿 분석
배반포들(샘플 당 10)을 냉동 인산 버퍼 식염수(PBS)로 3회 세척한 후, 추출버퍼(1% Triton X-100, 100 mM Tris-HCl, pH 7.5, 10 mM NaCl, 10% 글리세롤, 1 mM sodium orthovanadate, 50 mM sodium fluoride, 1 mM p-nitrophenyl phosphate, 1 mM phenylmethylsulfonyl fluoride)에 모았다. 그 배아들을 얼음에서 30분간 정치한 후, 단백질들을 Bio-Rad 장치를 사용하여 10% SDS-PAGE gel에서 분리하여 Bio-Rad Mini Trans-Blot Cell (Bio-Rad, Hercules, CA)을 사용한 enhanced chemiluminescence (ECL) Hybond 나이트로셀루로스 막들(Amersham, Piscataway, NJ)위로 전기영동적으로 옮겼다. 이 막들을 5% 탈지 분유와 트리스-버터 식염수 내의 0.1% Tween 20으로 블럭한 후에 5% 탈지 분유와 트리스-버퍼 식염수 내의 01.% Tween 20을 가지는 트리스-버퍼 식염수 내의 일차 항체 (ERK1/2, Caspase 3, GSHPx - 모두 Santa Cruz Biotechology, CA)로 프로브하였다.
그 후 그들을 0.1% Tween 20을 가지는 트리스-버퍼 식염수로 15분간 세척하고 그 항원-항체 복합체들을 항-마우스 IgG 또는 항-또끼 IgG 퍼옥사이드 결합체로 enhanced chemiluminescence (ECL) 검출 키트(Amersham Bioscience)를 사용하여 검출하였다. 본 실험은 3회 반복시행하였다. 블럿들의 밴드들의 강도는 덴시토메트리 분석 시스템(Bio-Rad)을 사용하여 측정하였다.
상기 모든 실시예들의 모든 실험은 최소 3회 이상 반복되었으며, 통계 분석은 SAS 소프트웨어(Statistical Analysis System Inc., Cary, NC, USA)를 이용하였다. 배반포 핵 수 및 핵 손상의 평균은 적당한 t-test 또는 ANOVA를 적절히 사용하여 비교되었다. 데이터는 평균±SEM으로 제시되었으며, P≤0.05의 차이를 보이는 경우 유의성 있는 것으로 판단하였다.
상기의 구성에서 알 수 있는 바와 같이 본 발명은 셀레늄이 돼지 처녀생식된 반수성개체의 발생을 증가시키고, 그들의 에팝토시스를 감소시키는데 매우 중요한 역할을 하는 것을 알 수 있다.
서열목록 전자파일 첨부

Claims (6)

  1. 유효성분으로 2.5ng/ml~250ng/ml의 셀레늄을 포함하는 돼지 배아 발생 개선용 조성물.
  2. 삭제
  3. 유효성분으로 2.5ng/ml~250ng/ml의 셀레늄을 포함하는 돼지 배아 발생 개선용 배지.
  4. 삭제
  5. a) 성숙 전 난모세포를 인 비트로에서 성숙시키는 단계;
    b) 상기 난모세포를 활성화에 의하여 처녀생식으로 활성화시키는 단계; 및
    c)상기 추정적인 배수 접합체들을 2.5ng/ml~250ng/ml의 셀레나이트 염을 포함하는 배지에서 배양하는 단계를 포함하는 돼지 배아 발생 개선 방법.
  6. 삭제
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