KR100715558B1 - 위암예측 유전자의 선발방법 및 그 용도 - Google Patents

Abstract

본 발명은 위암예측 유전자의 선발방법 및 그 용도에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 cDNA 마이크로어레이를 이용하여 정상조직과 위암 조직의 유전자 발현 프로파일을 분석한 후, 일방 분석법을 이용하여 위암조직에서 차별적으로 발현되는 유전자를 선발하고, 상기 선발된 유전자를 예측강도별로 분류하여 위암을 정확하게 예측할 수 있는 위암 특이적 유전자의 선발방법, 선발된 유전자를 이용한 위암 진단용 프로브 조성물, 위암 진단용 마이크로어레이에 대한 것이다.

본 발명에 따르면, cDNA 마이크로어레이 분석방법을 사용함으로써, 낮은 비용으로 신속하게 위암 특이적 유전자를 선발할 수 있으며, 선발된 유전자를 고정시킨 마이크로어레이를 이용하여 간편하고 정확하게 위암을 진단할 수 있다.

위암, 마이크로어레이, 일방분석법, 스크리닝

Description

위암예측 유전자의 선발방법 및 그 용도{Method for Selecting Gastric Cancer Specific Predictor Genes and Use Thereof}

도 1은 본 발명에 따른 마이크로어레이 실험 및 분석과정을 총괄적으로 나타낸 개략도이다.

도 2는 894개의 유전자를 정들의 예측강도에 기초하여 그룹화한 그래프이다. X축은 유전자 수를 10개에서 894개까지 나타낸 것이다. Y축은 예측강도를 나타낸 것이다.

도 3A는 트레이닝 세트 내 12,891개의 유전자와 29쌍의 위 조직 샘플의 자율 계층 분류(Unsupervised Hierarchical Clustering)를 나타낸 덴드로그램이다. 가로축은 유전자를 나타내고, 세로축은 샘플을 나타낸다. 또한, 도 3B는 트레이닝 세트에서 92개의 유전자 및 58개의 샘플의 two-way 계층적 분류를 나타낸 덴드로그램이다.

도 4는 위 조직의 유전자 발현에 기초한 예측의 정확도를 확인하기 위해 H&E 염색법을 수행한 사진이다.

도 5는 마이크로어레이와 RT-PCR 데이터간의 상관관계를 나타내는 그래프이다. (A)는 각각의 유전자 레벨에서 마이크로어레이와 RT-PCR을 이용하여 5개의 유 전자의 발현량 평균치를 나타낸 막대 그래프이다. (B)는 마이크로어레이와 실시간 RT-PCR 데이터 간의 상호관련성을 나타낸 그래프이다.

본 발명은 위암예측 유전자의 선발방법 및 그 용도에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 cDNA 마이크로어레이를 이용하여 정상조직과 위암 조직의 유전자 발현 프로파일을 분석한 후, 일방 분석법을 이용하여 위암조직에서 차별적으로 발현되는 유전자를 선발하고, 상기 선발된 유전자를 예측강도별로 분류하여 위암을 정확하게 예측할 수 있는 위암 특이적 유전자의 선발방법, 선발된 유전자를 이용한 위암 진단용 프로브 조성물, 위암 진단용 마이크로어레이에 대한 것이다.

위암은 전세계에서 가장 널리 분포되어 있는 암 중에 하나이다. 위암은 후발성(late-onset) 질환으로, 암중에서 위암의 발병률은 대한민국, 일본 등의 아시아 국가에서 1위 또는 2위로 가장 높다. 다른 암들에 비해 위암은 화학요법(chemotherapy)에 대해 높은 저항성을 갖고, 후발성 질환이기 때문에, 암의 조기 진단이 위암의 가장 효과적인 예방 및 치료방법이다. 현제, 위암의 진단은 내시경 검사에 의존하고 있지만 가격이 매우 비싸고, 내시경에만 의존하여 여러 종류의 위암을 구별할 수 없다. 따라서, 내시경을 통해 위암을 발견했다고 하더라도, 위암의 분류에 따른 적절한 치료방법 및 치료제를 선택하는데 문제가 많다.

현재 암은 주로 3가지 치료법, 즉 외과적인 수술, 방사선 조사 및 화학 요법 중 1가지 또는 이들의 조합을 통해 치료되고 있고, 특히 위암 치료는 대부분 외과절제술 및 약물들을 이용하는 화학요법으로 이루어진다. 특히 위암의 완치를 위해서는 위암의 초기 임상 진찰 시, 위암 조직의 체계적인 검출 방법 및 발견된 위암 조직을 정확하게 분류하는 것이 매우 중요하다. 즉, 종래에는 임상적, 형태학적 특징에 따라 위암을 분류하였기 때문에, 유전학적 수준에서 다르게 분류될 수 있는 환자들도 동일한 진단을 받을 수 밖에 없었다. 따라서, 종래의 분류에 따른 위암의 치료방법 및 치료제를 적용하였을 때, 위암이 치료되지 않는 경우가 많았다. 따라서, 한 집단에서 나타날 수 있는 모든 종류의 위암에 대해 각각의 분류에 따라 효과적으로 적용할 수 있는 약물들의 개발이 요구되고 있다.

이를 위해서는, 위암치료를 위한 표적유전자를 선정하는 것이 무엇보다도 중요하다. 즉, 위암의 단계에 따라 위암의 분화정도, 침입특성, 유전자들의 발현 형태 및 발현량이 달라진다. 따라서, 위암의 분류에 따라 적절하게 투여할 수 있는 약물을 개발하기 위해서는, 각 단계마다 합당한 표적 유전자를 선택하고, 표적 유전자의 기능을 조절할 수 있는 물질을 찾는 것이 중요하다.

이에, 많은 제약회사 및 연구소에서는, 위암 분류에 따라 달리 사용할 수 있는 항암제 후보물질을 찾기 위해 많은 연구가 진행되었으나, 랜덤 접근방식(random approaches)에 의해 항암제 후보물질을 찾아왔기 때문에 엄청난 연구비용과 시간이 투자되어야 했고, 항암제 후보물질이 찾아졌다 하더라도 이들 물질이 임상실험에서 부작용이 있을 수 있어 부작용이 없는 항암제를 개발하기란 매우 어려웠다. 또한, 찾아진 항암제 후보물질의 위암치료에서의 작용 기작이 명확히 밝혀지지 않을 경우, 위암 분류에 따른 적용이 어려우므로, 이들의 작용 기작을 밝혀내는데에도 엄청난 연구비용과 시간을 투자하여야만 했다.

따라서, 당업계에서는 유전학적 수준에서 객관적으로 위암을 진단하는 방법 및 랜덤 접근 방식에 의한 항암제 개발 방법을 대체할 수 있는 새로운 방법이 절실히 요구되고 있었다.

이에, 본 발명자들은 위암 조직에서 특이적으로 과발현되거나, 저발현되는 유전자들을 선발하고자 예의 노력한 결과, 마이크로어레이 분석에 의해 얻어지는 위암 특이적 유전자들을 동정하고, 본 발명을 완성하기에 이르렀다.

결국 본 발명의 주된 목적은 cDNA 마이크로어레이를 이용하여 정상조직과 위암 조직의 유전자 발현 프로파일을 분석한 후, 일방 분석법을 이용하여 위암조직에서 정상 위조직에 비해 상대적인 발현변화를 보이는 유전자를 선발하고, 상기 선발된 유전자를 예측강도별로 분류하여 위암을 정확하게 예측할 수 있는 위암 특이적 유전자의 선발방법을 제공하는 데 있다.

본 발명의 다른 목적은 상기 방법을 이용하여 선발된 유전자로 구성된 군으로부터 선택되는 서열에서 유래한 올리고뉴클레오티드를 포함하는 위암 진단용 프로브 조성물을 제공한다.

본 발명은 또한 상기 선발된 유전자 또는 그 단편이 고정되어 있는 위암 진 단용 마이크로 어레이를 제공하는데 있다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 (a) cDNA 마이크로어레를 이용하여 위 정상조직과 위암조직의 유전자 발현 프로파일을 분석하는 단계; (b) 상기 유전자 발현 프로파일 분석결과를 트레이닝 세트(training set), 테스트 세트(test set) 및 독립적인 세트(independent set)로 구분하는 단계; (c) 일방 분산분석법(one way-ANOVA)을 이용하여 상기 트레이닝 세트 내의 유전자 중에서 위암조직과 정상조직에서 차별적으로 발현된 유전자를 선발하는 단계; (d) 상기 선발된 유전자를 예측강도별로 분류하는 단계; 및 (e) k-nearest neighbor법에 기초한 크로스확인(cross-validation) 및 실시간 PCR 분석법에 의해 예측 정확도를 확인하는 단계를 포함하는 위암 특이적 유전자의 선발방법을 제공한다.

본 발명은 또한, 위암 예측강도가 37.94인 GenBank ID NO: R72097 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: R71093 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AA521228 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: R51912 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AI733427 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AW058221 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: H38240 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AI001183 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오 티드; GenBank ID NO: AI002047 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; 및 GenBank ID NO: AI913412 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드를 함유하는 위암 진단용 프로브 조성물을 제공한다.

본 발명에 있어서, 상기 프로브 조성물은 GenBank ID NO: AI766870; AI672312; AA457710; AA928660; N63988; AI990922; AA444051; AW072982; AA482119; R56211; AA669637; AA450009; AI254931; AA279025; AA455157; AA490929; AA973568; AI469062; AI299356; AA971493; N92901; AA002126; AA416890; AI961583; H39192; AA419460; AA478298; AI889705; H17034; N66177; AA035384; AA454732; AA987627; AA845156; AI364113; AA983158; AI225185; AA419488; AA459305; AA922939; AA404486; AI365395; AI291174; AA459109; AA454652; AA888224; AA152496; AA973703; AI383789; T71879; AI936324; N62620; AA935508; AA447781; AA287695; AI356106; AA017383; N35888; AI871588; AI365075; AI635529; AA701652; AA991346; AI984082; AA935273; AI360385; AA725397; AA436152; AA292226; AA025276; AA446259; AI254559; AA488075; AI438930; AA418674; AI302139; AA488084; AI299348; AI302661; AI056417; AA911832; AA676471; AA427954; AA453015; AA913197; AA700876; AI146764; AA916857; AI439171; AA491209; AI739498; AA436479; AI473896; AA496792; AA775616; AA457114; W73874; AA172400; H60549; R55786; AI925568; AA598865; AI922341; AI493478; AA046430; AA418104; AI971229; AI382541; AA629591; AA863149; AA489246; AA857101; AI361897; N33920; AA702193; AI081973; R02085; R47893; AA457084; AA281929; AA863125; AA088420; AI652076; R05416; AI160757; N39161; AI310461; AA214530; AA913079; AA489587; AI654147; AI654494; AA669689; AI272002; AA425022; AA700060; AA873499; AI884731; AI337099; AI337428; AA292410; AI346147; AA426025; AI521155; AA432084; AA911705; AA427561; AA598478; AW082097; R56149; H17883; AI299378; AA777410; N81029; AA279396; AI475805; AI950312; AA598610; T96082; T61948; AA149987; AA497002; AI985398; AI318311; AA458878; AA461118; AI862416; AI361715; AA425450; AI675311; W73790; AI769340; AA452278; AA598965; AI655392; AA400464; AA988586; AA047567; AW008721; AI681849; AA455111; AI300810; AA432063; AI492016; AI291184; AA699469; H25917; AI423445; AA490011; AW072762; AI263104; AA504465; AA278534; AW003596; AI076929; AA489666; AA458634; AI299221; AA887320; AA454588; AA989217; AI668916; R93124; AI216056; T41173; AA775257; AW025920; AA989521; AI796806; W76339; AA961116; AA971398; N76927; AI416975; W96155; AI310550; AA402754; AA975556; N30553; AA489100; AI565424; AA488341; AA211855; AI357590; AA460282; AA280846; AI797648; AI341318; AI674349; AA488618; AA454540; N29639; AA863225; AA936133; AA680186; AI401608; AI292232; T71976; AA459265; AI299073; AA928017; AA442092; AI254648; AW073291; AA125872; AA404387; AW073055; AI131555; W49563; R60301; AA496022; AA485303; AI268697; AA460833; N95761; AA461157; AA479344; AI624388; N80235; H26184; AI652005; AI380209; AA916327; AI811492; AI016689; AI438958; AI679562; AI267935; AA857035; R43873; AI261783; AA486261; T70057; AI675714; AI631139; AA490887; AA933888; N64679; AA412433; H24326; AI146507; R75635; AI814648; AI814383; AA011414; AA100036; AI301699; AI652207; AI261737; AI400273; H17615; AI016025; AA505045; AI871665; R40897; AA055486; AI524284; AI350153; AA464590; AI207000; AA830392; AA521373; AA911045; AA939219; AI927438; H22944; AA779401; AA150828; AA452353; AI361561; AA927663; AI658727; AI299994; AI676097; AA430540; AA419251; AI340188; R45009; N72137; AI363203; AI097617; AA156988; T55560; AA196287; AI016051; AI361422; T71991; AA279337; H15155; AA885869; AI301123; AA479745; AA482286; H65030; AA457051; AA453774; AI318421; AA169469; H96643; AA953560; AW058344; AA505051; T72336; AA863093; H84982; AI701664; AA207165; W72294; AA504253; R56774; AI363436; AI924634; AA677534; AI684973; AI253074; AI383503; R85257; AI768615; AI268273; AA488070; AA775212; AI341604; AI971009; AA932813; W72792; AW057803; AA668470; AA454597; AA485865; AA885835; AI433513; AA464217; AI341160; AA458965; AA459401; AI421677; AA664101; AA705720; AA279804; AI262070; AA102526; AA976851; R43532; AI261207; H73234; AI311391; AA922859; R76099; AA887001; AI340883; AI523637; H62387; AA916325; AA865464; AA989210; AA488996; AI979290; AA917683; AA857343; AA913127; AI538184; AA873089; AA888213; AA431832; AA934764; AI369830; N70463; AI302205; AA479199; AI301175; AA424833; 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AA663309; AI470775; AA991590; AA487193; AI350347; AI652557; AA864299; AA974305; R91950; AA865554; AA999838; AW071052; AA434102; AA521358; W32272; AA911063; AI473897; AA775091; AA857015; AA862436; AI924753; AA430665; T66832; AI301513; AA971278; AI745626; AA011096; AA152347; AA873577; AI269774; AA931491; AI923970; AA857437; AA664009; R91396; AI887514; AW028368; AA029283; AI368479; N68159; AA862371; AI375428; AI473884; T70999; AI368486; AI000474; AA676836; N67017; N53136; AI362740; AI560668; AA029299; AA932696; AI279830; AA476461; AI868227; 및 AI081269으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 서열에서 유래한, 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드를 추가적으로 함유하는 것을 특징으로 할 수 있다.

본 발명은, 상기 프로브 조성물이 기질상에 고정되어 있는 것을 특징으로 하는 위암 진단용 올리고뉴클레오티드 마이크로어레이를 제공한다.

본 발명은 또한, 위암 예측강도가 37.94인 GenBank ID NO: R72097; R71093; AA521228; R51912; AI733427; AW058221; H38240; AI001183; AI002047; 및 AI913412 유전자가 기질상에 고정되어 있는 것을 특징으로 하는 위암 진단용 cDNA 마이크로어레이를 제공한다.

본 발명에 있어서, 상기 cDNA 마이크로어레이는 GenBank ID NO: AI766870; AI672312; AA457710; AA928660; N63988; AI990922; AA444051; AW072982; AA482119; R56211; AA669637; AA450009; AI254931; AA279025; AA455157; AA490929; AA973568; AI469062; AI299356; AA971493; N92901; AA002126; AA416890; AI961583; H39192; AA419460; AA478298; AI889705; H17034; N66177; AA035384; AA454732; AA987627; AA845156; AI364113; AA983158; AI225185; AA419488; AA459305; AA922939; AA404486; AI365395; AI291174; AA459109; AA454652; AA888224; AA152496; AA973703; AI383789; T71879; AI936324; N62620; AA935508; AA447781; AA287695; AI356106; AA017383; N35888; AI871588; AI365075; AI635529; AA701652; AA991346; AI984082; AA935273; AI360385; AA725397; AA436152; AA292226; AA025276; AA446259; AI254559; AA488075; AI438930; AA418674; AI302139; AA488084; AI299348; AI302661; AI056417; AA911832; AA676471; AA427954; AA453015; AA913197; AA700876; AI146764; AA916857; AI439171; AA491209; AI739498; AA436479; AI473896; AA496792; AA775616; AA457114; W73874; AA172400; 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AA931118; AI924306; AA663309; AI470775; AA991590; AA487193; AI350347; AI652557; AA864299; AA974305; R91950; AA865554; AA999838; AW071052; AA434102; AA521358; W32272; AA911063; AI473897; AA775091; AA857015; AA862436; AI924753; AA430665; T66832; AI301513; AA971278; AI745626; AA011096; AA152347; AA873577; AI269774; AA931491; AI923970; AA857437; AA664009; R91396; AI887514; AW028368; AA029283; AI368479; N68159; AA862371; AI375428; AI473884; T70999; AI368486; AI000474; AA676836; N67017; N53136; AI362740; AI560668; AA029299; AA932696; AI279830; AA476461; AI868227; 및 AI081269으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 추가적으로 고정되어 있는 것을 특징으로 할 수 있다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.

실시예 1 : 조직 샘플 준비 및 RNA 추출

모든 실험에서 쓰인 환자의 조직은 연세대학교 의과대학의 Internal Review Board에서 그 용도가 검토되었고 사용허가를 받았으며, 특히, 1997년-1999년 동안 연세대학교 의과대학에서 수술을 받은 환자의 조직을 환자의 동의하에 사용하였다. 70% 이상의 종양을 포함하는 조직은 수술 직후 액체 질소에 보관하였고, 정상 위 조직 샘플 및 이에 대응하는 위의 종양조직 샘플은 동일 환자(한 쌍의 샘플)에게서 얻었다.

조직 샘플(n=95)은 29쌍의 트레이닝 세트(n=58), 28개의 테스트 세트(7쌍, 8개의 정상조직 샘플 및 6개의 종양조직 샘플) 및 9개의 샘플로 이루어진 독립적인 세트(7개의 종양조직 샘플 및 2개의 정상조직 샘플)로 나눴다. 예측 분석 전에 실험자는 트레이닝 세트에 한해서 임상적 정보를 알 수 있었다.

RNA는 공지된 프로토콜에 따라 TRIzol (Invitrogen, Carlsberg, CA) 시약을 사용하여 균질화된 조직으로부터 추출하였다. 추출한 총 RNA를 RNeasy Mini Kit(Qiagen, Valencia, CA)를 이용하여 더 정제하였다.

실시예 2 : cDNA 마이크로어레이 제작 및 혼성화

17K cDNA 마이크로어레이 제작 및 혼성화는 공지된 프로토콜에 기초하여 수행하였다(Yang, S.H. et al., Int J Oncol., 22:741, 2003). 즉, 정상 위 조직의 cDNA를 분리한 후, 이를 PCR로 증폭하였다.　 이 때, PCR은 최종부피가 50㎕가 되도록 20pmol 프라이머, 2.5mM의 dNTP 혼합물, 100ng의 플라스미드 DNA, 5㎕의 10 × PCR 완충용액(Solgent Co.), 2.5 unit의 Taq DNA 폴리머라제를 혼합한 다음 상기 혼합액을 94℃에서 10분간 변성, 94℃에서 1분간 변성, 55℃에서 45초간 재결합, 72℃에서 45초간 신장 과정을 34회 반복하였다.　 72℃에서 10분간 확장한 다음 반응을 종료하였다.

증폭된 DNA 단편을 QuiaQuick PCR 정제 kit(Qiagen)로 정제한 후, 2% 아가로스 겔에서 전기영동하여 PCR 산물을 확인한 후, PCR 산물들을 건조시킨 후, 50% DMSO 용액 20㎕에 녹이고 DNA 칩용 코닝 갭스 슬라이드(Corning GAPS slide) 상에 집적시켜 칩을 제조한 후, 300mJ의 UV 조사로 cross-linking시킨 다음 실온에서 건조대에서 보관하였다.

Cy5-dUTP 표지된 위 조직 총 RNA의 cDNA 타겟은 혼성화가 일어나는 매번 Cy3-dUTP 표지된 통상 RNA 풀(pool)로부터 유래한 cDNAs와 경쟁적으로 혼성화 되었 다(Kim, T.M. et al., Clin Cancer Res., 11:79, 2005).

실시예 3 : 마이크로어레이 데이타 분석

도1은 본 발명의 총체적인 개략도이며, 마이크로어레이 실험과 유전자 선발, 교차 확인법(cross-validation) 및 예측을 포함하는 분석법을 나타낸다. 원시 데이터(Raw data) 표준화, 유전자 필터링(filtering), 분류 유전자(classifier gene) 선발, 트레이닝 세트의 교차 확인, 테스트 및 독립 세트의 클래스 예측은 GeneSpring 7.0 소프트웨어(Silicon Genetics, Redwood City, CA)를 사용하여 수행하였다.

원시 데이터는 유전자 필터링 이전에 Lowess 함수(Kim B.S. Can Res Treat 35:533 ;2003)를 이용하여 print-tip 표준화(normalization) 시켰다. 계속되는 분석으로 불분명한 신호(F532-1.5 XB532<0 or F635-1.5 X B635<0)들을 제거하였고, Cy5/Cy3 비율이 불명확한 유전자들 역시 제거하였다(잔여 13,071의 유전자).

Gene Spring의 '크로스-유전자 에러 모델'함수를 이용하여 낮은 통제(control) 스팟을 가진 유전자의 제거를 통한 데이터의 필터링에 의해 신뢰도이 높은 유전자를 획득하였다(잔여 12,891의 유전자). 일방 분산분석법(one way-ANOVA)을 이용하여 정상조직 및 암 조직 그룹 간에 다르게 발현된 것을 통계적 유의차를 p<0.05로 하여 선정함으로써 수행되어졌다. 오차율을 극소화하기 위하여 Westfall and Young의 순열법에 기초한 수차례의 p-values 실험 교정을 하였다.

유전자 및 k-nearest neighbor 분류 규칙(k=14)의 예측강도에 기초를 둔 클 래스 예측 기능은 모든 교차 확인법 및 예측을 위해 사용되었다. Fisher’s exact test 및 signal-to-noise 알고리즘 모두 적은 수의 예측 유전자를 선발하는데 사용되었다. 이를 달성하기 위해, 트레이닝 세트에서 초기에 선정된 예측 유전자(894개의 유전자)는 교차 확인을 하였다.

상기 절차를 통해 894개 유전자 모두의 예측강도를 측정할 수 있었으며, 예측강도는 트레이닝 세트 안에서 선정된 모든 유전자 리스트 및 유전자 발현 데이터를 이용하여 예측강도를 평가하였다. 모든 유전자는 독립적으로 평가되었고, 다른 유전자로부터 각 클래스를 식별할 수 있는 강도에 따라서 계층화 되었다.

예측강도는 p-value의 네거티브 자연로그 값으로 산출 되었다. 894개의 유전자를 예측강도를 토대로 그룹을 만들었다. 이 시스템에서는, 각각의 유전자가 각각의 클래스(정상 또는 종양)로부터 관찰한 샘플 수의 "이상적인 발현 패턴" 정도의 획득 확률을 산출할 수 있다(Golub T.R., Science 286:531 ;1999).

무작위로 선출한 적은 수의 유전자를 이용하는 대신, 예측강도에 기초한 유전자들이 894개의 유전자로 부터 더 적은 수의 선택 기준으로 사용되었다(도 2). 테스트 세트의 28개의 샘플과 독립 세트의 9개의 샘플 안의 28개 샘플의 마이크로어레이 실험은 분류자(classifier) 선택에 있어서 통계적인 과잉맞춤(over-fitting)을 극소화하기 위하여 트레이닝 세트로부터 분리되어 실행되었다. 데이터 표준화 및 스팟 질의 필터링은 트레이닝 세트에서와 같은 방법으로 수행되어졌다.

실시예 4 : 클래스 예측 유전자의 선발, 트레이닝 세트내의 교차 확인법 및 테스트 세트 내 조직 타입의 예측

상기 실시예 3에서과 같이, 트레이닝 세트의 정상조직 또는 종양조직 간의 일방 ANOVA법(p<0.05)으로 12,891개의 유전자에서 894개의 유전자를 선발하였고, 이들 유전자의 상대적인 발현변화 차이를 기초로, 트레이닝 세트의 58개의 모든 샘플에 대한 교차확인에서 조직 타입을 정확히 예측해 내었으며, 예측 정확도는 100%였다. 상기 894개 유전자의 동일 세트는 테스트 세트에서 조직 타입을 예측하기 위해 사용되었으며, 테스트 세트 내의 28개의 샘플(96.4%) 중 27개는 정확하게 예측되었다.

교차 확인법과 예측 프로세스를 통해 각각의 유전자의 예측강도에 따라 894개 유전자 순위를 결정했다. 894개의 유전자의 부분집합은 트레이닝 세트 내에서 교차 확인법을 통해 다시 분류되었으며, 테스트 세트 내에서 예측되었다.

표 1은 트레이닝 세트의 정상조직 또는 종양조직 간의 일방 ANOVA법을 이용하여, 선발한 894개의 유전자를 나타낸 것이고, 정상조직^b과 종양조직^c의 Avg.Ratio는 트레이닝 세트 내의 각각 29개의 정상조직의 Cy5/Cy3 비율의 평균을 나타낸다.

	GenBank ID	정상조직 b Avg. Ratio	종양조직 c Avg. Ratio	Common Name
1	AI766870	1.43	2.90	BCL2A1
2	AI672312	1.17	2.40	CRA
3	AA457710	2.13	1.50	POLD4
4	AA928660	2.00	1.23	PRSS12
5	N63988	0.98	1.82	IFIT2
6	AI990922	1.58	1.14	SYNE2
7	AA444051	0.42	1.04	S100A10
8	AW072982	0.74	1.41	MGC21688
9	AA482119	1.42	0.80	ID3
10	R56211	1.69	2.78
11	AA669637	2.28	1.69	PNRC1
12	AA450009	2.22	3.66	EDNRA
13	AI254931	1.71	1.11	ANK3
14	AA279025	2.12	1.37	LPIN2
15	AA455157	6.28	12.52	COL15A1
16	AA490929	2.03	1.03
17	AA973568 | AI733279	2.11	1.37
18	AI469062	1.65	1.04
19	AI299356	2.57	1.62
20	AA971493 | AI733333	1.68	1.08
21	N92901	2.87	0.98	FABP4
22	AA002126	4.22	2.34	BIRC3
23	AA416890	1.80	1.22	SMPD1
24	AI961583	1.87	1.26	MAPK10
25	H39192	1.95	1.26	MAPK7
26	AA419460	1.61	0.92	SIK2
27	AA478298	4.69	1.84	C10orf116
28	AI889705	2.78	5.30	ADAMTS4
29	H17034	0.56	1.17
30	N66177	1.24	0.61	MITF
31	AA035384	1.81	1.21	SDHD
32	AA454732	2.95	1.64	IL16
33	AA987627	6.60	2.61	TNFRSF17
34	AA845156	144.41	35.77	SPINK1
35	AI364113	4.06	2.42	TCEA3
36	AA983158 | AI733450	1.33	2.09
37	AI225185	1.80	1.13	PDE5A
38	AA419488	1.77	1.12	FLJ32569
39	AA459305	0.48	1.09	PLOD3
40	AA922939 | AI733010	1.71	1.10
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886	AI362740	4.58	2.14	CTL2
887	AI560668	13.51	1.99	USP19
888	AA029299	3.40	2.34	KCNMB1
889	AA932696	4.00	1.52	TU3A
890	AI279830	2.75	1.58	PPP1R16B
891	AA476461	4.00	1.39	PTPRZ1
892	AI868227	108.94	5.97	ADH1C
893	AI001183	22.62	1.05	REP15
894	AI081269	2.53	1.40

실시예 5 : 트레이닝 세트의 자율 계층 분류(Unsupervised Hierarchical Clustering)

신뢰도가 높은 클래스-예측 유전자를 선발하기 위해, 트레이닝 세트내 조직의 특질 및 동일성은 정확해야 한다. 이는 58개의 조직 샘플의 자율 two-way 계층 분류와, 12,891개의 유전자의 필터링을 통해 수행하였다(도 3A). 정상조직과 종양조직은 필터링한 유전자의 발현 양상에 따라 2개의 분명한 그룹으로 나뉘었다. 도 3A는 트레이닝 세트 내 12,891개의 유전자와 29쌍의 위 조직 샘플의 자율 계층 분류(Unsupervised Hierarchical Clustering)를 나타낸 덴드로그램으로 세로축은 유전자를 나타내고, 가로축은 샘플을 나타낸다. 또한, 도 3B는 트레이닝 세트에서 92개의 유전자 및 58개의 샘플의 two-way 계층적 분류를 나타낸 덴드로그램이다.

도면의 윗부분의 파란색, 빨간색 노드(node)는 정상조직 및 종양조직 샘플을 나타내며, 아랫부분의 파란색, 빨간색 막대는 각각 정상조직 및 종양조직을 나타낸다. 우측 막대의 색상으로부터 발현 비율 및 색상을 가늠할 수 있다.

실시예 6 :정상조직과 종양조직간에 다르게 발현하는 92개의 클래스 예측 유전자

정상조직 및 종양조직에서 예측 유전자의 상대적인 발현 패턴을 확인하기 위해, 트레이닝 세트 안에서 대표적인 92개 유전자의 two-way 계층 분류를 하였다(도 3B). 92개의 유전자의 체계, 일반적인 유전자 이름, 평균 유전자 발현 비율을 포함한 자세한 정보는 하기 표 1내지 5에 기술되어 있고, 표 1에 기재된 유전자들의 예측강도가 가장 높다. 하기 표에 나타난 유전자의 상세설명^a은 DAVID (http://apps1.niaid.nih.gov/david/), SOURCE (http://genome-www5.stanford.edu/cgi- bin/source/sourceSearch) 그리고 AceView (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/IEB/Research/Acembly/)로부터 얻었고, 정상조직^b의Avg.Ratio와 SD는 트레이닝 세트 내의 각각 29개의 정상조직의 Cy5/Cy3 비율의 평균 및 그들의 표준 편차를 나타낸다. 종양조직^c의 Avg.Ratio와 SD는 트레이닝 세트 내의 각각 29개의 정상조직의 Cy5/Cy3 비율의 평균 및 그들의 표준 편차를 나타낸다. 또한, 표 6은 위암 조직에 특이적으로 발현이 증가하는 유전자를 별도로 분류한 것이고, 표 7은 위암 조직에 특이적으로 발현이 감소하는 유전자를 별도로 분류한 것이다.

실시예 7 : 독립적인 세트의 위 종양조직 형태의 예측

테스트 세트 상에서의 예측 결과, 하나의 조직 샘플이 부정확하게 예측되었다. 그 샘플은 Y-GC-01-049이었으며, 이는 종양조직으로 라벨링 되었으나, 정상 위 조직으로 부정확하게 예측되었다. 이는 정상 위 조직으로 라벨링된 것인 Y-GC-01-048과 한쌍의 샘플이었다.

예측 알고리즘은 거의 100%의 신뢰도로 Y-GC-01-049을 정상 샘플로 예측하였고, 이러한 애매한 결과를 명확히 하기 위하여 Y-GC-01-048과 Y-GC-01-049을 추가적으로 H&E 염색법을 수행하였다. H&E 염색 결과로 Y-GC-01-048은 정상 위염 조직임을 확인했다. 종양 조직으로 라벨링 되었으나 발현 양상에 기초한 예측법에 의해 정상조직으로 예측된 Y-GC-01-049은 정상 위 조직이었음이 상기 염색 결과를 통해 명확히 확인되었다(도 4). 즉, 종양 위 조직으로 라벨링 된 줄 알았으나, 위염 조직으로 라벨링 된 것이었다. 상기 결과로부터, 본 발명의 교차 확인법은 100%의 정확도를 나타낸다는 것을 알 수 있었다.

예측 유전자의 유용성을 위한 궁극적인 클래스 예측 테스트는 트레이닝 세트나 테스트 세트가 아닌 다른 독립적인 세트에서 수행되어졌다. 이를 위해, 9개 샘플의 추가 세트에 독립적으로 마이크로어레이 실험을 수행하였고, 원시 데이터만 표준화 시켰다. 추가 데이터의 전처리(pre-processing) 없이, 894개의 유전자에서 10개 유전자의 예측강도에 기초한 유전자 세트는 새로운 세트에서 조직 형태를 예측하는데 사용되어졌다. 독립적인 데이터 세트내의 모든 조직 형태는 각각의 예측 세트와 같이 정확하게 예측되었다(표 8).

실험 결과, 894개의 유전자는 단체적으로 위암/정상 위조직을 유전자 발현패턴 만으로 100%정확히 예측할 수 있었다. 그러나 가장 이상적인 진단용 마이크로어레이 제작을 위해서는 가능한 적은 수의 유전자를 사용하면서도 100%예측율을 여전히 유지하는 것이다. 이를 위하여 본 발명자들은 예측강도가 높은 유전자들을 유지하면서 예측강도가 낮은 유전자를 제거하면서 위암/정상 위조직을 예측해 보았다. 그 결과, 예측강도가 가장 높은 최소의 10개(예측강도 37.94)의 유전자만을 이용해서도 위암/정상 위조직을 100% 정확하게 에측할 수 잇었다.

다만, 유전자수가 위의10개에서 1개이상 줄어들때, 예측 강도가 100% 미만으로 떨어지는 것을 관찰할 수 있었다. 따라서, 본 발명자들은 예측강도가 가장 높은 최소 10개의 유전자를 포함하는 유전자 세트의 경우 위암 조직 예측 능력이 있음을 확인할 수 있었다.

No	샘플 ID	참값 (True Value)	예측	p-값 비율	정상	정상	종양	종양
					예측(votes)	p-값	예측(votes)	p-값
1	Y-GC-01-182	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
2	Y-GC-01-183	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
3	Y-GC-01-184	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
4	Y-GC-01-185	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
5	Y-GC-01-186	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
6	Y-GC-01-187	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
7	Y-GC-01-188	T	T	7.65E-06	0	1	14	7.65E-06
8	Y-GC-01-189	N	N	7.65E-06	14	7.65E-06	0	1
9	Y-GC-01-190	N	N	7.65E-06	14	7.65E-06	0	1

실시예 8 : 실시간 RT-PCR

마이크로어레이 실험에서 얻은 발현 비율의 유효성을 검증하기 위하여, 유전자 발현 양상을 확인하기 위헤 동일 RNA를 가지고 실시간 RT-PCR을 수행하였다(Kim T.M. et al., Clin Cancer Res 11:79 ;2005). 이 반응은 2.5mM MgCl₂(Qiagen, CA), 2 ㎕의 cDNA, 20pmol의 올리고뉴클레오티드 프라이머로 이루어진 QuantiTect SYBR Green PCR mixture 10 ㎕가 포함된 총 20 ㎕부피를 가지고, Roter Gene 2072D 실시간 PCR 기계(Corbett Research, Sydney, Australia)에서, PCR은 95℃에서 15분(HotstarTaq DNA 중합효소 활성화), 95℃에서 20초간 30 주기(증폭), 50℃에서 30초, 72℃에서 45초 동안 수행하였다.

각 견본에 증폭된 형광 신호는 각 주기의 늦은 연장 단계에 측정했다. 각각의 유전자로부터 신호의 양을 재기 위해서 10 배로 순차적으로 희석한 인간 게놈 DNA를 대조군으로 사용하였다. 표준 곡선은 측정된 역치 주기 대 임의 단위를 측정함으로써 그렸다. 표준 곡선은 희석시킨 게놈 DNA에서 β-액틴의 유전자 발현에 대한 반응에서 PCR 산물의 임의적 수치에 대해 측정한 역치 주기를 그림으로써 작성하였다. 역치 주기(Ct) 값은 형광이 역치값을 초과할 때 주기수로 결정된다. 음성 대조군은 주기 수가 35까지 증가하도록 형광 신호가 없었다.

pepsinogen 5 (PGA5, GenBank# R72097), lipase (LIPF, AW058221), thrombospondin2 (THBS2, H38240), rab15 effector protein (REP15, AI01183) 및 poly (ADP-ribose) polymerase family member 10 (PARP10, AI002947)의 5개 무작위로 선발한 유전자를 상기 목적을 위해 사용하였다.

프라이머로는 PGA5를 증폭시키기 위한 정방향(forward) 프라이머(서열번호 1: 5’-GATACGACACTGTCCAGGTT-3’)와 역방향 (reverse) 프라이머(서열번호 2: 5’-CCAGTTCAGACTTCCAGTGT-3’)를 사용하였고, LIPF를 증폭시키기 위한 정방향 프라이머(서열번호 3: 5’-TCTGTTCAAAACATGTTCCA-3’)와 역방향 프라이머(서열번호 4: 5-’TGTGGTAAATAAGATTGGGG-3’)를 사용하였으며, THBS2를 증폭시키기 위한 정방향 프라이머(서열번호 5: 5’-ACGAGGACATAGATGACGAC-3’)와 역방향 프라이머 (서열번호 6: 5-TTTACAAATATCACCCCGTC-3’)를 사용하였고, REP15를 증폭시키기 위한 정방향 프라이머(서열번호 7: 5’-AGCTCACCTATTTGCATCAT-3’)와 역방향 프라이머 (서열번호 8: 5’-CTCTGTAATTGCGACATGAA-3’)를 사용하였으며, PARP10을 증폭시키기 위한 정방향 프라이머(서열번호 9: 5’-GAGAGGGGCTGGGCTA-3’)와 역방향 프라이머(서열번호 10: 5’-ATTCAAACAACAGAGCCG-3’)를 사용하였고, 또한 β-actin를 증폭시키기 위한 정방향 프라이머(서열번호 11: 5’-GGGAATTCAAAACTGGAACGGTGAAGG-3’)와 역방향 프라이머(서열번호 12: 5’-GGAAGCTTATCAAAGTCCTCGGCCACA-3’)를 사용하였다.

6개의 조직(2쌍, 1종양, 1개의 정상조직) 유전자의 상대적인 발현 정도는 마이크로어레이 분석 및 실시간 RT-PCR에 의한 유전자 발현 비율과 상관 관계를 보였다. 상호 관련 계수는 유전자의 발현 값을 마이크로어레이와, RT-PCR로 측정한 데이터를 비교함으로써 측정되어진다. 마이크로어레이에 의한 5개 유전자의 발현 패턴은 실시간 RT-PCR에 의해 완전하게 동일했다(도 5A). 더구나, 5개의 유전자의 비율을 비교해보니, 마이크로어레이와 실시간 RT-PCR 데이터 간에 상호관련성(r²=0.7)이 있었다(도 5B).

이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시 양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의 된다고 할 것이다.

이상 상세히 설명한 바와 같이, 본 발명은 정상 위조직에 비하여 위암 조직에서 특이적으로 발현차이를 보이는 유전자의 선발방법, 선발된 유전자를 이용한 위암 진단용 프로브 조성물, 위암 진단용 마이크로어레이를 제공하는 효과가 있다.

본 발명에 따르면 기존의 육안에 의한 위암 조직 확인, 혹은 장기간을 요하는 생화학적 위암조직 판단 방법에 비해, 낮은 비용으로 신속하게 위암 특이적 유전자를 선발할 수 있으며, 선발된 유전자를 고정시킨 마이크로어레이를 이용하여 간편하고 정확하게 위암을 진단할 수 있고, 위암에서 특이적으로 과발현되는 유전자를 이용할 경우, 위암에 특이적인 항암제를 스크리닝할 수 있다.

서열목록 전자파일 첨부

Claims (6)

1. 삭제
2. GenBank ID NO: R72097 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: R71093 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AA521228 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: R51912 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AI733427 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AW058221 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: H38240 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AI001183 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; GenBank ID NO: AI002047 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드; 및 GenBank ID NO: AI913412 서열의 10개~200개의 연속적인 올리고뉴클레오티드를 함유하는 위암 진단용 프로브 조성물.
3. 제2항에 있어서, 상기 프로브 조성물은 GenBank ID NO: AI766870; AI672312; AA457710; AA928660; N63988; AI990922; AA444051; AW072982; AA482119; R56211; AA669637; AA450009; AI254931; AA279025; AA455157; AA490929; AA973568; AI469062; AI299356; AA971493; N92901; AA002126; AA416890; AI961583; H39192; AA419460; AA478298; AI889705; H17034; N66177; AA035384; AA454732; AA987627; AA845156; AI364113; AA983158; AI225185; AA419488; AA459305; AA922939; AA404486; AI365395; AI291174; AA459109; AA454652; AA888224; AA152496; AA973703; AI383789; T71879; AI936324; N62620; AA935508; AA447781; AA287695; AI356106; AA017383; N35888; AI871588; AI365075; AI635529; AA701652; AA991346; AI984082; AA935273; AI360385; AA725397; AA436152; AA292226; AA025276; AA446259; AI254559; AA488075; AI438930; AA418674; AI302139; AA488084; AI299348; AI302661; AI056417; AA911832; AA676471; AA427954; AA453015; AA913197; AA700876; AI146764; AA916857; AI439171; AA491209; AI739498; AA436479; AI473896; AA496792; AA775616; AA457114; W73874; AA172400; H60549; R55786; AI925568; AA598865; AI922341; AI493478; AA046430; AA418104; AI971229; AI382541; AA629591; AA863149; AA489246; AA857101; AI361897; N33920; AA702193; AI081973; R02085; R47893; AA457084; AA281929; AA863125; AA088420; AI652076; R05416; AI160757; N39161; AI310461; AA214530; AA913079; AA489587; AI654147; AI654494; AA669689; AI272002; AA425022; AA700060; AA873499; AI884731; AI337099; AI337428; AA292410; AI346147; AA426025; AI521155; AA432084; AA911705; AA427561; AA598478; AW082097; R56149; H17883; AI299378; AA777410; N81029; AA279396; AI475805; AI950312; AA598610; T96082; T61948; AA149987; AA497002; AI985398; AI318311; AA458878; AA461118; AI862416; AI361715; AA425450; AI675311; W73790; AI769340; AA452278; AA598965; AI655392; AA400464; AA988586; AA047567; AW008721; AI681849; AA455111; AI300810; AA432063; AI492016; AI291184; AA699469; H25917; AI423445; AA490011; AW072762; AI263104; AA504465; AA278534; AW003596; AI076929; AA489666; AA458634; AI299221; AA887320; AA454588; AA989217; AI668916; R93124; AI216056; T41173; AA775257; AW025920; AA989521; AI796806; W76339; AA961116; AA971398; N76927; AI416975; W96155; AI310550; AA402754; AA975556; N30553; AA489100; AI565424; AA488341; AA211855; AI357590; AA460282; AA280846; AI797648; AI341318; AI674349; AA488618; AA454540; N29639; AA863225; AA936133; AA680186; AI401608; AI292232; T71976; AA459265; AI299073; AA928017; AA442092; AI254648; AW073291; AA125872; AA404387; AW073055; AI131555; W49563; R60301; AA496022; AA485303; AI268697; AA460833; N95761; AA461157; AA479344; AI624388; N80235; H26184; AI652005; AI380209; AA916327; AI811492; AI016689; AI438958; AI679562; AI267935; AA857035; R43873; AI261783; AA486261; T70057; AI675714; AI631139; AA490887; AA933888; N64679; AA412433; H24326; AI146507; R75635; AI814648; AI814383; AA011414; AA100036; AI301699; AI652207; AI261737; AI400273; H17615; AI016025; AA505045; AI871665; R40897; AA055486; AI524284; AI350153; AA464590; AI207000; AA830392; AA521373; AA911045; AA939219; AI927438; H22944; AA779401; AA150828; AA452353; AI361561; AA927663; AI658727; AI299994; AI676097; AA430540; AA419251; AI340188; R45009; N72137; AI363203; AI097617; AA156988; T55560; AA196287; AI016051; AI361422; T71991; AA279337; H15155; AA885869; AI301123; AA479745; AA482286; H65030; AA457051; AA453774; AI318421; AA169469; H96643; AA953560; AW058344; AA505051; T72336; AA863093; H84982; AI701664; AA207165; W72294; AA504253; R56774; AI363436; AI924634; AA677534; AI684973; AI253074; AI383503; R85257; AI768615; AI268273; AA488070; AA775212; AI341604; AI971009; AA932813; W72792; AW057803; AA668470; AA454597; AA485865; AA885835; AI433513; AA464217; AI341160; AA458965; AA459401; AI421677; AA664101; AA705720; AA279804; AI262070; AA102526; AA976851; R43532; AI261207; H73234; AI311391; AA922859; R76099; AA887001; AI340883; AI523637; H62387; AA916325; AA865464; AA989210; AA488996; AI979290; AA917683; AA857343; AA913127; AI538184; AA873089; AA888213; AA431832; AA934764; AI369830; N70463; AI302205; AA479199; 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4. 제2항 또는 제3항의 프로브 조성물이 기질상에 고정되어 있는 것을 특징으로 하는 위암 진단용 올리고뉴클레오티드 마이크로어레이.
5. GenBank ID NO: R72097; R71093; AA521228; R51912; AI733427; AW058221; H38240; AI001183; AI002047; 및 AI913412 유전자가 기질상에 고정되어 있는 것을 특징으로 하는 위암 진단용 cDNA 마이크로어레이.
6. 제5항에 있어서, 상기 cDNA 마이크로어레이는 GenBank ID NO: AI766870; AI672312; AA457710; AA928660; N63988; AI990922; AA444051; AW072982; AA482119; R56211; AA669637; AA450009; AI254931; AA279025; AA455157; AA490929; AA973568; AI469062; AI299356; AA971493; N92901; AA002126; AA416890; AI961583; H39192; AA419460; AA478298; AI889705; H17034; N66177; AA035384; AA454732; AA987627; AA845156; AI364113; AA983158; AI225185; AA419488; AA459305; AA922939; AA404486; AI365395; AI291174; AA459109; AA454652; AA888224; AA152496; AA973703; AI383789; T71879; AI936324; N62620; AA935508; AA447781; AA287695; AI356106; AA017383; N35888; AI871588; AI365075; AI635529; AA701652; AA991346; AI984082; AA935273; AI360385; AA725397; AA436152; AA292226; AA025276; AA446259; AI254559; AA488075; AI438930; AA418674; AI302139; AA488084; AI299348; AI302661; AI056417; AA911832; AA676471; AA427954; AA453015; AA913197; AA700876; AI146764; AA916857; AI439171; AA491209; AI739498; AA436479; AI473896; AA496792; AA775616; AA457114; W73874; AA172400; H60549; R55786; AI925568; AA598865; AI922341; AI493478; AA046430; AA418104; AI971229; AI382541; AA629591; AA863149; AA489246; AA857101; AI361897; N33920; AA702193; AI081973; R02085; R47893; AA457084; AA281929; AA863125; AA088420; AI652076; R05416; AI160757; N39161; AI310461; AA214530; AA913079; AA489587; AI654147; AI654494; AA669689; AI272002; AA425022; AA700060; AA873499; AI884731; AI337099; AI337428; AA292410; AI346147; AA426025; AI521155; AA432084; AA911705; AA427561; AA598478; AW082097; R56149; H17883; AI299378; AA777410; N81029; AA279396; AI475805; AI950312; AA598610; T96082; T61948; AA149987; AA497002; AI985398; AI318311; AA458878; AA461118; AI862416; AI361715; AA425450; AI675311; W73790; AI769340; AA452278; AA598965; AI655392; AA400464; AA988586; AA047567; AW008721; AI681849; AA455111; AI300810; AA432063; AI492016; AI291184; AA699469; H25917; AI423445; AA490011; AW072762; AI263104; AA504465; AA278534; AW003596; AI076929; AA489666; AA458634; AI299221; AA887320; AA454588; AA989217; 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