KR100457025B1

KR100457025B1 - 식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 패니바실러스 에스디 17 균주 및 이를 함유하는 항균제 조성물

Info

Publication number: KR100457025B1
Application number: KR10-2002-0014199A
Authority: KR
Inventors: 김달수; 배철용; 전삼재; 조윤경; 이연미; 강경구; 김태영; 조진호
Original assignee: 주식회사 엘지생명과학
Priority date: 2002-03-15
Filing date: 2002-03-15
Publication date: 2004-11-12
Also published as: KR20030075092A

Abstract

본 발명은 식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 패니바실러스 에스디17 균주(Paenibacillussp. SD17) 및 이를 함유하는 항균제 조성물에 관한 것으로, 잔디 피티움블라이트병, 잔디브라운벳취병, 잔디 라지벳취병, 토마토 역병, 오이 잿빛곰팡이병 등의 억제에 효과적이며, 입제 또는 액제로서 환경친화적인 생물농약으로 효과적으로 사용될 수 있다.

Description

식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 패니바실러스 에스디 17 균주 및 이를 함유하는 항균제 조성물{Paenibacillus sp. SD17 producing anti-fungal agents for biological control and composition containing them thereof}

본 발명은 식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 신규한 미생물 및 이를 함유하는 항균제 조성물에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 패니바실러스 에스디17 균주(Paenibacillussp. SD17) 및 이를 함유하는 항균제 조성물에 관한 것이다.

식물에 발생하는 각종 질병(이하, "식물병"이라 함)은 직접적으로는 식물을 죽게 하여 수량을 감소시킬 뿐만 아니라 품질에도 나쁜 영향을 미치므로 경제적으로 커다란 손실을 가져올 수 있다.

이러한 문제점을 해결하기 위한 방안으로서 현재까지는 이러한 식물병을 방제하기 위하여 주로 유기합성농약을 사용해 왔다. 그러나, 유기합성농약에 의한 방제법은 하기와 같은 문제점 등을 갖는다.

첫째, 인축에 대한 농약중독 및 생태계에 미치는 부정적인 영향 때문에, 세계적으로 그 사용을 까다롭게 규정하고 있다.

둘째, 유기합성농약을 토양에 처리할 경우 대부분 토양입자에 흡착되거나 분해되어 토양속 식물의 병원균을 억제하는 데에는 한계가 있다.

세째, 새로운 유기합성농약을 개발하기 위해서는 10년 정도의 오랜 기간과 400억원 수준의 막대한 비용이 요구되므로 병, 해충 및 잡초를 방제하기 위하여 신속하고 적극적으로 대처하는데 한계가 있다.

따라서, 인축에 대한 독성이 거의 없고 환경친화적이어서 상기 유기합성농약을 대체할 수 있는 방법의 하나로, 병, 해충 및 잡초를 방제하기 위하여 사용되는 길항생물(이하, "생물농약"이라 함)을 개발하려는 노력이 전 세계적으로 계속되고 있다.

지금까지 국내외에서 생물농약의 연구개발에 많은 관심을 갖고 투자하고 있으며, 우수한 미생물의 탐색 및 확보를 위해 꾸준히 노력하고 있다. 가장 대표적인 생물농약은 해충을 방제하기 위한 미생물인 생물공학제품으로, 이는 바실러스 투린기엔시스(Bacillus thuringiensis)라는 세균을 이용한 것이다. 해충 외에 식물병을 방제하는데 사용하는 길항미생물의 속(genus)으로는 아그로박테리움(Agrobacterium), 슈도모나스(Pseudomonas), 트리코데르마(Trichoderma), 바실러스(Bacillus) 등이 주를 차지하고 있고, 그 밖에 다른 미생물들도 탐색되고 있다. 이러한 생물농약은 대부분 진균(fungi), 세균(bacteria), 바이러스 또는 원생생물(protozoa)로 조성되어 있으며, 생물농약이 식물병을 억제하는 방법은 주로 숙주(host)에 대한 기생(parasitism), 포식(phagocytosis), 항생(antibiosis) 또는 유도 저항성(induced resistance)으로 구성되어 있다(Weller. 1998. Annual Review of Phytopathology 73: 1548-1553). 이들을 이용하여 2000년 12월 기준으로 미국의 경우 미생물살균제로 40여 제품이 등록되어 사용되고 있고, 국내의 경우 토양미생물제로 등록되어 50여 제품이 유통되고 있다.

더욱 구체적인 예로서, 미국특허 제5,972,689호에는 바실러스 스트레인 엔알알엘 비-21525(Bacillusstrain NRRL B-21525)를 이용하여 미국북서부에서 주요한 3종류의 토양병원균인 개우마노미세스(Gaeumannomyces), 리족토니아(Rhizoctonia), 피티움(Pythium)에 의해 발생되는 뿌리병을 동시에 방제하는 방법 및 조성물에 관하여 기재되어 있다. 또한, 한국특허공개 제1989-12544호에는 신규한 고추역병 방제용 길항미생물인 바실러스속 스트레인 에이시-1 균주(Bacillusstrain AC-1) 및 이를 이용한 고추역병의 방제방법에 관하여 기재되어 있으며, 상기 길항미생물의 배양액을 토양에 처리함으로써 고추역병을 억제할 수 있음을 발견하였다. 또한, 한국특허공개 제1999-1723호에는 신규한 식물 성장촉진용 균주인 바실러스 폴리믹사 이681 균주(Bacillus polymyxaE681) 및 이를 이용한 식물성장촉진방법에 관하여 기재되어 있으며, 상기 신규한 균주를 식물에 처리함으로써 식물의 발아율을 증대하고 발병율을 억제함으로써 농약사용량의 감소로 환경오염을 줄이는 효과가 있다.

상기한 생물농약은 유기합성농약과 비교하여 인축 및 환경에 대한 독성이 거의 없고, 유기합성농약에서 문제가 되는 병원균의 농약에 대한 저항성 발달이 없으며, 유기합성농약으로 어려운 토양속 식물의 병해충을 방제할 수 있는 장점이 있다.

그러나, 상기한 생물농약은 일반적으로 병, 해충 및 잡초에 대한 방제효과가 낮고, 생산 및 장기간 보관이 어려운 문제점을 가지고 있다.

이에, 본 발명은 앞서 설명한 바와 같은 종래 기술의 문제점을 효율적으로 해결하기 위하여 제공된 것으로서, 그 목적은 유기합성 농약의 폐해를 대체할 수 있는 환경친화적 생물농약으로 사용이 가능한, 식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 신규한 미생물 및 이를 함유하는 항균제 조성물을 제공하는 것이다.

도 1 내지 도 4는 본 발명 패니바실러스 에스디17 균주의 형태적 특성을 전자현미경 사진을 이용하여 조사한 도면으로, 도 1은 상기 균주세포의 밀집형태, 도 2는 복수편모, 도 3은 생장세포의 절단면, 도 4는 내생포자의 절단면을 나타낸다.

상기한 목적을 달성하기 위하여 본 발명에 따른 신규한 미생물은 식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 패니바실러스 에스디17 균주(Paenibacillussp. SD17)임을 특징으로 한다.

또한, 상기한 균주의 상기 항진균 물질이 방제하는 식물병원균은 피티움 종(Pythiumspp.), 리족토니아 솔라니 에이지1-1(Rhizoctonia solaniAG1-1), 리족토니아 솔라니 에이지2-2(Rhizoctonia solaniAG2-2), 피토프토라 인페스탄스(Phytophthora infestans) 또는 보트리티스 시네레아(Botrytis cinerea)임을 특징으로 한다.

또한, 본 발명의 항균제 조성물은 조립식 입제로서 패니바실러스 SD17 균주가 포함되어 있는 미생물 배양액 5 내지 30중량%, 포자 발아촉진제 0.2 내지 3.0 중량%, 수용성 색소 0.02 내지 0.5중량%, 계면활성제 1 내지 5 중량% 및 잔량으로서 첨가제 또는 담체를 포함하여 이루어짐을 특징으로 한다.

또한, 본 발명의 항균제 조성물은 조립식 입제로서 패니바실러스 SD17 균주가 포함되어 있는 건조분말 5 내지 80중량%, 포자 발아촉진제 0.2 내지 3.0중량%, 수용성 색소 0.02 내지 0.5중량%, 계면활성제 1 내지 5중량% 및 잔량으로서 첨가제 또는 담체를 포함하여 이루어짐을 특징으로 한다.

이하, 본 발명에 따른 패니바실러스 SD17 균주의 선별·분리방법에 대하여 먼저 설명한 후, 균주의 형태적, 생리적, 생화학적 및 분자생물학적 특성 분석결과에 대하여 설명한다.

SD17 균주의 분리

전국에서 채집한 각종 식물뿌리를 각각 물로 세척한 후, 80℃ 온도에서 물에 30분간 열처리하였다. 상기 열처리한 뿌리들을 막자사발을 이용하여 분쇄한 다음, 멸균수에 희석하여 10% 티에스에이(TSA, Triptic Soy Agar) 배지에서 분주한 후, 30℃ 온도에서 5일간 배양시켰다. 이렇게 분리한 미생물 각각을 식물병원균인 리족토니아 솔라니 에이지4(Rhizoctonia solaniAG4)와 대치배양하여, 측정된 병원균 생육저지능력을 기준으로 길항미생물을 일차적으로 선발하였다. 일차 선발된 길항미생물 각각을 각종 식물의 입고병(Damping-off)의 병원균인 피티움 아파니데르마툼(Pythium aphanidermatum)과 푸사리움 옥시스포룸 바르 리코페르시시(Fusarium oxysporumvar.lycopersici)를 병원균으로서 사용한 점을 제외하고는 상기와 동일한 방법에 따라 배양한 후 생육저지능력을 평가하여 길항미생물을 이차적으로 선발하였다. 이차 선발된 길항미생물의 배양액을 생장조정실(Growth chamber)에서 서양잔디인 아그로스티스 팔루스트리스(Agrostis palustris)에 살포하고, 잔디병원균인 피티움 블라이트 병원균(Pythium blight pathogen)인 피티움 아파니데르마툼(Pythium aphanidermatum)을 접종하여 피티움블라이트 질병을 억제하는 효과가 우수한 미생물을 삼차적으로 선발하였다. 이들 삼차 선발 미생물의 배양액을 다시 브라운벳치 병원균(Brown patch pathogen)인 리족토니아 솔라니 에이지1-1(Rhizoctonia solaniAG 1-1)에 대하여 조사하여 브라운벳취 질병을 억제하는 효과가 우수한 미생물을 사차적으로 선발하였다. 최종적으로, 사차 선발된 미생물의 배양액을 라지벳취병원균(Large patch pathogen)인 리족토니아 솔라니 에이지 2-2(Rhizoctonia solaniAG 2-2)에 대하여 조사하여 라지벳취 질병을 억제하는 효과가 우수한 미생물을 최종 선발하였다. 이러한 과정을 거쳐 최종적으로 질병의 발생을 억제하는 능력이 종합적으로 가장 우수한 SD17 균주[충청남도 서천에서 채집한 들깨(Perilla frutescensvar.japonica)의 뿌리에서 유래]를 선발하였다.

선발된 SD17 균주는 상기 분리시 검증된 바와 같이, 피티움 블라이트 병원균(Pythium blight pathogen)인 피티움 아파니데르마툼(Pythium aphanidermatum), 브라운벳치 병원균(Brown patch pathogen)인 리족토니아 솔라니에이지1-1(Rhizoctonia solaniAG1-1), 라지벳취병원균(Large patch pathogen)인 리족토니아 솔라니 에이지 2-2(Rhizoctonia solaniAG 2-2)의 세 가지 잔디병에 우수한 방제효과를 갖는 균주임을 알 수 있다.

형태적 특성 분석

전자현미경을 이용하여 SD17 균주의 세포형태, 크기, 포자 및 편모를 조사하였고, 10% 티에스에이 배지에서 자라는 모습을 육안으로 관찰하여 콜로니(Colony)를 조사하였다. 전자현미경을 이용하여 측정된 사진을 도 1 내지 도 4에 도시하였으며, 하기 표 1에는 이들 네 가지 특성을 구체적으로 나타내었다.

형태적 특성
세포형태(Cell)	단간균
크기(Size; ㎛)	1.3∼2.0(두께)2.5∼4.0(길이)
포자(Spore)	내생포자 형성
편모(Flagella)	복수편모 있음

상기 표 1 및 도 1 내지 도 4에서 알 수 있는 바와 같이, SD17 균주는 단간균 형태(Rod shape)를 가지며(도 1 및 도 3에 도시), 내생포자(Endospore; 30)를 형성하고(도 4에 도시), 복수편모(Peritrichous; 10)가 존재한다(도 2에 도시). 한편, 도 3에는 생장세포(20)를 도시하고 있다.

생리적 특성 분석

SD17 균주의 생리적 특성을 분석하기 위하여 그람염색반응, 생육온도, 생육산도, 산소요구성 각각을 측정하였다. 그람염색반응은 통상의 방법에 따라 크리스탈 바이올렛 염색용액(Crystal violet stain solution)을 이용하여조사하였고(Dhingra & Sinclair, 1985. Basic Plant Pathology Method. Page 264, CRC Press), 생육온도범위 및 최적생육온도는 10% 티에스비(10% Tryptic Soy Broth) 액체배지를 이용하여 30℃ 온도, 150rpm, 초기 pH 7 조건하에서 자라는 SD17 균주의 밀도를 조사하여 결정하였으며, 생육산도범위 및 최적생육산도는 10% 티에스비 액체배지의 산도를 조절하여, 30℃ 온도, 150rpm에서 자라는 SD17 균주의 밀도를 조사하여 결정하였고, 산소요구성은 10% 티에스에이 배지에 SD17 균주를 접종시킨 후 밀폐된 용기에 질소를 주입하여 무산소 조건에서 SD17 균주의 생육여부를 조사하여 결정하였다. 그 결과를 하기 표 2에 나타내었다.

생리적 특성
그람염색(Gram stain)	양성
생육온도범위(℃)	20∼45
최적생육온도(℃)	25∼30
생육산도범위(pH)	4.0∼9.0
최적생육산도(pH)	6.0∼7.0
산소요구성	호기성

상기 표 2에서 알 수 있는 바와 같이, SD17 균주는 그람염색반응에서 양성(Positive)이며, 생육온도범위는 20∼45℃, 더욱 바람직하게는 25∼30℃이고, 생육산도범위는 pH 4.0∼9.0, 더욱 바람직하게는 pH 6.0∼7.0이며, 호기성(Aerobic)임을 알 수 있다.

생화학적 특성 분석

엠아이디아이(MIDI)의 미생물 동정방법(Microbial identification system)을 이용하여, 지방산메틸에스테르를 사용설명서(Operating manual. Version 6. MIDI Inc., USA)에 따라 준비한 후, 기체크로마토그래피를 이용하여 분석을 실시하고,그 결과(세포지방산 구성비)를 하기 표 3에 나타내었다.

생화학적 특성
C14:0 iso	2.61
C14:0	2.05
C15:0 iso	9.20
C15:0 anteiso	50.49
C15:0	1.21
C16:0 iso	8.16
C16:1 w11c	5.38
C16:0	9.96
C17:0 iso	3.23

분자생물학적 특성 분석

먼저 DNA 염기조성을 측정한 후, 16S 리보솜 DNA 염기서열(16S Ribosomal DNA)을 분석하고, DNA-DNA 혼화성 실험(Hybridization test)을 하였다.

(1) DNA 염기조성

스펙트로포토미터(Spectrophotometer, Ultrospec 2000, Pharmacia Biotech)를 이용하여 열변성양상(Thermal denaturation profile)을 분석한 후 중간점(midpoint)를 측정한 다음, 데라이의 공식(De Lay. 1970. Journal of Bacteriology 101: 738-754)을 이용하여 SD17 균주의 G+C 염기 함량을 결정하였다. 상기 방법을 통해 측정된 SD17의 G+C 함량은 51.7mol%(Tm=79.9)이었다.

(2) 16S 리보솜 DNA(16S Ribosomal DNA) 염기서열 분석

모든 종류의 세균에서 공통되는 염기서열의 빈도가 높은 16S 리보솜 DNA를 대상으로 하여 염기서열을 분석하였다. 5'-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3'(27F), 5'-AAGGAGGTGWTCCARCC-3'(1522R), 5'-GCTCGTTGCGGGACTTAACC-3'(1088R)인 3개의 올리고뉴클레오티드를 프라이머(Primer)로 이용하여 피씨알(PCR) 방법에 의해, 상기 16S리보솜 DNA가 94℃ 온도에서 변성(Denaturation), 55℃ 온도에서 어닐링(Annealing), 72℃ 온도에서 합성(Extension)하는 조건을 이용하여 효소적인 방법으로 상기 DNA를 증폭시켰다. 증폭된 DNA를 제한효소BamHI를 이용하여 절단한 다음, 이를 피블루스크립트 Ⅱ 에스케이(플러스)[pBluescript Ⅱ SK(＋)] 벡터에 클로닝시켰다. 이어, 상기 DNA를 엑소뉴크레아제 Ⅲ(Exonuclease Ⅲ)를 이용하여 다시 절단하여 서브클론(Subclone)을 만든 후, 자동염기서열분석기(ABI Prism 377 DNA sequencer, Applied Biosystems, USA)를 사용설명서에 따라 이용하여 염기서열을 결정하였다. 그 결과 SD17 균주는 서열 1에 작성된 바와 같은 염기서열을 가지며, 이때 결정된 총 염기쌍(Base pair) 수는 1481쌍임을 알 수 있었다.

서열 1의 염기서열을 이용하여 알디피(RDP, Ribosomal Database Project) 데이터베이스를 이용하여 유사도(Similarity Index)를 조사한 결과, 바실러스 에히멘시스 스트레인 아이에프오 15659티(Bacillus ehimensisstrain IFO 15659T)와 유사도가 98.92%로서 총 1479 염기쌍 중 16쌍이 달랐으며, 패니바실러스 코린시스 스트레인 와이씨300티(Paenibacillus koreensisstrain YC300T)와는 유사도가 97.97%로서 총 1479 염기쌍 중 30쌍이 달랐다. 상기 바실러스 에히멘시스는 분류학적으로 신규한 속으로 분리한 패니바실러스속에 속하지만, 아직 공식적으로 속명의 전환이 이루어지지 않고 있으므로, 상기 SD17은 패니바실러스속에 속하는 것임을 알 수 있다.

(3) DNA-DNA 혼성화 실험

상기 균주와의 정확한 분류학적 동정을 위하여 디아이지 하이 프라임 DNA 라벨링 및 검출 스타터 키트 Ⅱ(DIG High Prime DNA labeling and detection starter kit Ⅱ; Roche Diagnostics GmbH, Germany)를 이용하여 사용설명서에 따라 DNA-DNA 혼성화 실험을 수행하였다. 먼저 SD17 균주의 전체 DNA를 분리한 후, 분리 DNA를 상기 사용설명서에 따라 프로브(Probe)를 디아이지-하이 프라임(DIG-High Prime)을 이용하여 라벨링하고 멤브레인(Membrane)에 부착시킨 DNA와 혼성화한 다음, 안티-딕옥시제닌-에이피 컨쥬게이트(Anti-Digoxigenin-AP Conjugate)를 이용하여 면역학적 검출(Immunological detection) 방법을 통하여 혼성화도를 조사하였다. 유사도가 바실러스 에히멘시스(Bacillus ehimensis)와는 19.7%, 그리고 패니바실러스 코린시스(Paenibacillus koreensis)와는 17.6%이었다. DNA-DNA 혼성화의 유사도가 70% 이상이어야 동일한 종으로 판명하는 관행적인 동정기준에 따라, SD17 균주는 신규한 종임을 알 수 있다.

따라서, 본 발명자들은 이 균주를 "패니바실러스 엘지씨-32714 에스디17(Paenibacillussp. LGC-32714 SD17)"로 명명하고, 2001년 7월 18일자로 한국생명공학연구원 유전자원센터 유전자은행(KCTC)에 기탁하여 수탁번호 KCTC-10016BP를 부여받았다.

이하, 상기 패니바실러스 SD17 균주의 배양방법 및 이를 포함하는 생물농약 조성물에 관한 실시예를 들어 설명하지만, 본 발명이 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.

패니바실러스 SD17 균주의 배양

증류수 1ℓ에 가용전분 2.0g, 황산마그네슘(MgSO₄·7H₂O) 0.05g, 효모추출물(Yeast extract) 0.2g, 인산칼륨(KH₂PO₄) 0.05g, 황산암모늄((NH₄)₂SO₄) 0.4g, 탄산칼슘(CaCO₃) 0.2g, 염화나트륨(NaCl) 0.1g을 혼합한 후 pH를 7.2로 조정한 다음, 121℃ 온도에서 15분간 고압살균하여 CM5 배지를 준비하였다. 10% TSA 배지에서 25℃ 온도하에서 3일간 자란 SD17 균총을 루프를 이용하여 100㎖의 CM5에 접종한 다음, 25℃ 온도에서 3일간 진탕배양(회전속도 150rpm)한 배양액을 사용하였다. 이렇게 배양된 SD17 균주의 농도는 1.0×10⁷∼10⁸cfu/㎖ 범위에 속하였다.

SD17 균주를 포함하는 항균제 조성물

본 발명의 항균제 조성물은 SD17 균주의 뛰어난 경시적 안정성으로 인하여 통상의 화학농약의 제형을 이용하여 제조될 수 있다. 특히, 조립식 입제로 제조되는 경우에도 제조과정에서 발생하는 고온에 대한 안정성이 뛰어나다.

본 발명에서 SD17 균주를 함유하는 액체배양액을 이용하여 입제를 생산하는 경우, SD17 균주가 포함되어 있는 미생물 배양액 5 내지 30중량%, 포자 발아촉진제 0.2 내지 3.0중량%, 수용성 색소 0.02 내지 0.5중량%, 계면활성제 1 내지 5중량% 및 잔량으로서 첨가제 또는 담체를 첨가하여 제조된다. 이때 상기 배양액이 5중량% 미만인 경우에는 제제 중의 균수의 감소로 인하여 충분한 약효가 발휘되지 못하거나 제제의 포장처리량이 커지는 등의 문제가 발생하며, 30중량%를 초과하는 경우는 입제를 제조하는 공정에서 조립이 곤란한 문제점이 있어, 5 내지 30중량%의 양으로 사용되는 것이 바람직하다.

또한, SD17 균주를 함유하는 액체배양액의 건조분말을 이용하여 입제를 생산하는 것이 가능하며, 이러한 경우 SD17 균주가 포함되어 있는 건조분말 5 내지 80중량%, 포자 발아촉진제 0.2 내지 3.0중량%, 수용성 색소 0.02 내지 0.5중량%, 계면활성제 1 내지 5중량% 및 잔량으로서 첨가제 또는 담체를 첨가하여 제조된다. 이때 상기 건조분말이 5중량% 미만인 경우에는 액체배양액을 이용하는 경우와 마찬가지로 제제 중의 균수의 감소로 인하여 충분한 약효가 발휘되지 못하거나 제제의 포장처리량이 커지는 등의 문제가 발생하며, 80중량%를 초과하는 경우는 입제를 제조하는 공정에서 조립이 곤란하거나, 제품의 품질이 떨어질 우려가 있어, 5 내지 80중량%의 양으로 사용되는 것이 바람직하다.

SD17 균주를 함유하는 액체배양액 5 내지 86.5중량%, 계면활성제 0.5 내지 3중량%에 부동제 5 내지 10중량%, 증점제 0.02 내지 0.5중량% 및 잔량으로서 물을 첨가함으로써 액상수화제로 제조될 수 있다. 이때 SD17의 액체배양액이 5 중량% 미만인 경우에는 제제 중의 균수의 감소로 인하여 충분한 약효가 발휘되지 못하거나 제제의 포장처리량이 커지는 등의 문제가 발생하며, 86.5중량%를 초과하는 경우는 제제의 물성을 유지하기가 곤란한 문제점이 있어, 5 내지 86.5중량%의 양으로 사용되는 것이 바람직하다.

입제 제조시 사용되는 포자 발아촉진제로는 효모추출액이 바람직하다. 그외, 첨가제로서는 입제의 입자형태를 유지시켜 주는 결합제, 예를 들면, 잔탄검, 덱스트린 등의 고분자물질이 이용될 수 있으며, 고체 담체로서는 활석, 탈크, 벤토아니트, 카올린, 탄산칼슘, 규조토, 납석과 같은 미세하게 분쇄된 천연광물이나 포도당, 유당 등의 유기화합물 등이 이용될 수 있다. 그 외, 수용성 색소로는 여러 가지 색상의 색소가 이용될 수 있으나, 특히 초록색의 식용색소를 첨가하는 경우, 처리후에 육안으로 구별이 되지 않기 때문에 미관상 장점을 줄 뿐만 아니라, 식용색소가 사용됨으로써 SD-17의 활성에 아무런 영향을 주지 않으며, 환경적인 관점에서도 미생물제제의 장점이 유지되므로, 가장 바람직하게 사용될 수 있다.

또한, 입제 및 용제 모두에서 계면활성제로는 제제제의 물리화학적 특성을 양호하게 하기 위해 제형에 따라 다양한 특성을 가지는 것이 사용되나, 주로 양호한 습윤, 분산력을 가지는 비이온 및/또는 음이온 계면활성제를 예로 들 수 있다. 본원에서 계면활성제는 계면활성제 혼합물도 의미한다.

그외, 습윤제로서는 라우릴 황산나트륨, 폴리옥시알킬렌알킬 페닐 에테르 술폰산의 염, 디알킬 설포숙시네이트의 염, 디알킬 나프탈렌 술폰산의 염, 폴리옥시알킬렌 알킬 에테르 설페이트의 염 등의 음이온성 습윤제 및 아세틸렌 계열의 비이온성 계면활성제, 비이온성 계면활성제의 요소복합체 등이 사용가능하나, 라우릴 황산나트륨, 폴리옥시알킬렌 알킬 아릴 에테르 술폰산의 염, 폴리옥시알킬렌 알킬 에테르 설페이트의 염, 비이온성 계면활성제의 요소 복합체 등이 가장 바람직하며, 분산제로서는 리그닌 술폰산의 염, 나프탈렌 술폰산의 염, 라우릴 황산의 염, 라우릴 술폰산의 염, 폴리옥시알킬렌 알킬 아릴 에테르 설페이트의 염, 폴리옥시알킬렌 알킬 에테르 설페이트의 염과 같은 음이온성 분산제 및 폴리옥시알킬렌 알킬 아릴 에테르, 폴리옥시알킬렌 알킬 에테르, 아크릴 그래프트 중합체(acrylic graft copolymer)와 같은 비이온성 분산제 등이 사용될 수 있다. 그러나, 상기 습윤제및 분산제는 상술된 것에 한정되지 않으며 비이온성, 음이온성 계면활성제 중에서 적당한 것을 사용할 수 있다.

한편, SD-17의 액상수화제에 사용되는 부동제로는 에틸렌 글리콜, 프로필렌 글리콜이 사용될 수 있으나, 보다 유용한 것으로는 글리세린이며, SD-17의 균주에 아무런 영향을 주지 않는 장점이 있으며, 증점제로는 잔탄검, 구아검 등의 다양한 검종류와 몬트모리오나이트 등의 정제된 점토광물 등이 사용될 수 있다.

본 발명의 SD-17의 조성물에 사용되는 부자재의 종류 및 첨가농도는 상술된 것에 한정되지 않고 필요에 따라 적절히 조절가능하다. 또한, 본 발명에 따른 생물농약 조성물은 제형에 제한을 받지 않으며, 다른 보조성분을 적절히 사용하여 입상수화제 등의 여러 가지 제형으로 제조될 수 있다.

[실시예 1]

길항미생물 SD17의 배양액을 제외한 하기 표 4에 기재된 모든 성분(중량%)을 리본믹서를 이용하여 혼합한 후, 물과 SD17의 배양액을 첨가하여 반죽하였다. 반죽된 시료를 1.0㎜ 스크린이 장착된 조립기를 이용하여 조립한 다음, 유동충 건조기에 의해 건조시켜 입제를 제조하였다.

성분	조성(중량%)
SD17함유 배지	10
덱스트린	2.5
식용색소	0.1
효모추출물	1.0
폴리아크릴산나트륨	2.0
벤토나이트	40.0
탈크	잔량
물(건조 후 잔류분)	2

[실시예 2]

잔탄검을 제외한 하기 표 5에 기재된 모든 성분(중량%)을 적절한 혼합기를 이용하여 혼합한 후 잔탄검을 첨가하여 균일하게 혼합한 다음, 액제를 제조하였다.

성분	조성(중량%)
SD17 배양액	80
폴리아크릴산나트륨	2
디옥틸호박산나트륨	1
글리세롤	10
잔탄검	0.1
물	6.9

이하, SD17의 항진균 효과 및 다양한 식물의 질병을 억제하는 효과에 대하여 시험한 결과를 나타낸다.

[시험예 1]

각종 식물병원균에 대한 생육저지 효과를 시험하기 위하여, 토양으로부터 전염되는 병원균 중 식물에 많은 피해를 주는 병원균인 입고병균(Pythiumspp.,Rhizoctoniaspp.,Fusariumspp.), 잿빛곰팡이병균(Botrytis cinerea), 역병균(Phytophthoraspp.)과 SD17이 동시에 자랄 수 있는 감자한천배지를 이용하여 항진균효과를 평가하였다. 병원균을 플레이트의 중앙에 접종한 후, SD17이 충분히 자란 CM5 배양액에 30분간 침지한 페이퍼디스크(직경 8㎜)를 병원균과 3㎝ 떨어진 곳에 대치하였다. 이를 병원균에 따라 각각 다른 하기 표 6의 생육적온에서 하기 표 6의 조사기간동안 배양하면서, 병원균과 SD17 사이에 형성되는 저지원(Inhibition zone) 간격(㎜)에 의해 생육저지효과를 평가하고, 그 결과를 하기 표 6에 나타내었다.

병원균	저지원간격(㎜)	배양온도(℃)	조사일(일)
피티움 아파니데르마튬(Pythium aphanidermatum)	10	25	5
피티움 그라미니콜라(Pythium graminicola)	12	25	5
피티움 아르헤노마네스(Pythium arrhenomanes)	8	25	5
리족토니아 솔라니 에이지1-1(Rhizoctonia solani AG1-1)	10	25	5
리족토니아 솔라니 에이지2-2(Rhizoctonia solani AG2-2)	13	25	7
파이토프토라 인페스탄스(Phytophthora infestans)	15	20	10
파이토프토라 캡시시(Phytophthora capsici)	15	25	7
푸사리움 옥시스포룸 바르 리코퍼시시(Fusarium oxysporum var. lycopersici)	5	25	7
보트리티스 시네레아(Botrytis cinerea)	8	25	7

상기 표 6에서 알 수 있는 바와 같이, SD17는 항진균 물질을 생산함으로써 상기 식물병원균 중 각종 식물에 대한 입고병과 다른 질병의 병원균인 피티움, 리족토니아 및 푸사리움 병원균에 대한 생육저지효과가 뚜렷이 나타났고, 그 외 역병균과 잿빛곰팡이병균에 대해서도 뚜렷한 생육저지효과를 나타냈다.

[시험예 2]

서양잔디 피티움블라이트병에 대한 실내 방제효과를 시험하기 위하여, 서양잔디인 아그로스티스 팔루스트리스(Agrostis palustris)의 카페트((주)엘그린 제품)를 포트(길이 45㎝×넓이 30㎝×깊이 5.5㎝)에서 1주일간 온실에서 재배하였다. 상기 실시예 1의 입제를 기준으로 SD17의 농도를 1.0∼3.0×10⁶cfu/g로 조정하고, 단위면적당 2.5, 5.0, 10.0g/㎡으로 포트의 잔디 위에 살포한 후생장조정실(Growth chamber)에서 키웠다. 잔디 피티움블라이트 병원균인 피티움 아파니데르마툼(Pythirum aphanidermatum)을 25℃ 배양기에서 감자한천배지 위에 3일간 배양하였다. 한천디스크(직경 10㎜)를 3개씩 잔디에 구멍(직경 10㎜, 깊이 20㎜)를 파고 길항미생물을 살포한 3일 후에 접종하였다. 병원균에 의한 발병 수준에 따라 병원균 접종 후 1주일 경과시에, 처리면적 중 발병면적과 방제가를 기준으로 환산하여 방제효과를 평가하였다. 방제가는 무처리의 병반면적율에서 각 처리의 병반면적율을 뺀 다음 이를 무처리 병반면적율로 나누고 이를 백분율로 환산한 것이다. 그 결과를 하기 표 7에 나타내었다.

처리 SD17 농도(g/㎡)	병반면적율(%)	방제가(%)
2.5(0.5배 농도)	25	65
5.0(추천농도)	15	81
10.0(2배 농도)	10	87
무처리	80	-

상기 표 7에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 피티움블라이트병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 피티움블라이트병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 3]

서양잔디 브라운벳취병에 대한 실내 방제효과를 시험하기 위하여, 서양잔디인 아그로스티스 팔루스트리스(Agrostis palustris)의 카페트((주)엘그린 제품)를 포트(길이 45㎝×넓이 30㎝×깊이 5.5㎝)에서 1주일간 온실에서 재배하였다. 상기 실시예 1의 입제를 기준으로 SD17의 농도를 1.0∼3.0×10⁶cfu/g로 조정하고, 단위면적당 2.5, 5.0, 10.0g/㎡으로 포트의 잔디 위에 살포한 후 생장조정실에서 키웠다. 잔디 브라운벳취 병원균인 리족토니아 솔라니 에이지1-1(Rhizoctonia solaniAG1-1)을 25℃ 배양기에서 감자한천배지 위에 3일간 배양하였다. 한천디스크(직경 10㎜)를 3개씩 잔디에 구멍(직경 10㎜, 깊이 20㎜)를 파고 길항미생물을 살포한 3일 후에 접종하였다. 병원균에 의한 발병 수준에 따라 병원균 접종 후 1주일 경과시에 시험예 2에서와 동일한 방법에 따라 방제효과를 평가하고, 그 결과를 하기 표 8에 나타내었다.

처리 SD17 농도(g/㎡)	병반면적율(%)	방제가(%)
2.5(0.5배 농도)	25	54
5.0(추천농도)	20	63
10.0(2배 농도)	15	72
무처리	55	-

상기 표 8에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 브라운벳취병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 브라운벳취병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 4]

한국잔디 라지벳취병에 대한 실내 방제효과를 시험하기 위하여, 한국잔디인 조이시아 자포니카(Joysia japonica)의 카페트를 포트(길이 45㎝×넓이 30㎝×깊이 5.5㎝)에서 1주일간 온실에서 재배하였다. 상기 실시예 1의 입제를 기준으로 SD17의 농도를 1.0∼3.0×10⁶cfu/g로 조정하고, 단위면적당 2.5, 5.0, 10.0g/㎡으로 포트의 잔디 위에 살포한 후 생장조정실에서 키웠다. 잔디 라지벳취 병원균인 리족토니아 솔라니 에이지2-2(Rhizoctonia solaniAG2-2)를 25℃ 배양기에서 감자한천배지 위에 3일간 배양하였다. 한천디스크(직경 10㎜)를 3개씩 잔디에 구멍(직경 10㎜, 깊이 20㎜)를 파고 길항미생물을 살포한 3일 후에 접종하였다. 병원균에 의한 발병 수준에 따라 병원균 접종 후 1주일 경과시에 시험예 2에서와 동일한 방법에 따라 방제효과를 평가하고, 그 결과를 하기 표 9에 나타내었다.

처리 SD17 농도(g/㎡)	병반면적율(%)	방제가(%)
2.5(0.5배 농도)	15	66
5.0(추천농도)	10	77
10.0(2배 농도)	10	77
무처리	45	-

상기 표 9에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 라지벳취병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 라지벳취병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 5]

토마토역병에 대한 실내 방제효과를 시험하기 위하여, 토마토(품종: 서광)를 포트(직경 6㎝)의 원예용 상토에 파종하고 4주간 온실에서 재배하였다. 상기 실시예 2의 액제를 기준으로 SD17의 농도를 하기 표 10에 기재된 바와 같이 0.5×10⁶, 1.0×10⁶, 2.0×10⁶cfu/㎖로 각각 조정하고, 포트의 토마토 위에 살포한 후 생장조정실에서 키웠다. 3일 경과시 토마토 역병균인 파이토프토라 인페스탄스(Phytophthora infestans)를 1×10⁴유주자/㎖로 준비한 후,아토마이저(atomizer)를 이용하여 식물체에 접종한 다음, 생장조정실(20℃, 12시간 형광/일, 상대습도 100%)에서 발병을 유도하였다. 무처리의 병반면적율이 50% 정도 되었을 때 병반면적율을 조사하였다. 방제가는 시험예 2에서와 동일한 방법에 따라 산출하고, 그 결과를 하기 표 10에 나타내었다.

처리 SD17 농도(cfu/㎖)	병반면적율(%)	방제가(%)
0.5×10⁶(0.5배 농도)	30	53
1.0×10⁶(추천농도)	15	76
2.0×10⁶(2배 농도)	10	84
무처리	65	-

상기 표 10에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 토마토역병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 토마토역병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 6]

오이잿빛곰팡이병에 대한 실내 방제효과를 시험하기 위하여, 오이(품종: 백다다기)를 포트(직경 6㎝)의 원예용 상토에 파종하고 4주간 온실에서 재배하였다. 상기 실시예 2의 액제를 기준으로 SD17의 농도를 하기 표 11에 기재된 바와 같이 0.5×10⁶, 1.0×10⁶, 2.0×10⁶cfu/㎖로 각각 조정하고, 포트의 오이 위에 살포한 후 생장조정실에서 키웠다. 3일 경과시 토마토 역병균인 보트리티스 시네레아(Botrytis cinerea)를 1×10⁵분생포자/㎖로 준비한 후, 아토마이저를 이용하여 식물체에 접종한 다음, 생장조정실(20℃, 12시간 형광/일, 상대습도 100%)에서 계속 키웠다. 무처리의 병반면적율이 50% 정도 되었을 때 병반면적율을 조사하였다. 방제가는 시험예 2에서와 동일한 방법에 따라 산출하고, 그 결과를 하기 표 11에 나타내었다.

처리 SD17 농도(cfu/㎖)	병반면적율(%)	방제가(%)
0.5×10⁶(0.5배 농도)	25	54
1.0×10⁶(추천농도)	20	63
2.0×10⁶(2배 농도)	18	67
무처리	55	-

상기 표 11에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 오이잿빛곰팡이병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 오이잿빛곰팡이병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 7]

서양잔디 피티움블라이트병에 대한 현장 실증시험을 위하여, 대전 유성컨트리클럽 및 경기도 화산컨트리클럽의 서양잔디인 아그로스티스 팔루스트리스(Agrostis palustris)를 시험대상으로 하여, 상기 실시예 1의 입제를 기준으로 SD17의 농도를 하기 표 12에 기재된 바와 같이 잔디의 단위면적당 2.5, 5.0, 10.0g/㎡로 각각 조정하여 살포하였다. 잔디 피티움블라이트 병원균인 피티움 아파니데르마툼(Pythium aphanidermatum)을 25℃ 배양기에서 감자한천배지 위에 3일간 배양하였다. 3일 경과시, 잔디밭에 사방 50㎝ 간격으로 10개의 구멍(직경 10㎜, 깊이 20㎜)을 파고, 병원균을 키운 한천디스크(직경 10㎜)를 3개씩 각 구멍에 접종하였다. 관행방법에 따라 길항미생물을 처음 처리한 이후 길항미생물을 일주일 간격으로 4회 살포한 후 방제효과를 평가하였다. 그 결과를 하기 표 12에 나타내었다.

처리 SD17 농도(g/㎡)	유성컨트리클럽	화산컨트리클럽
처리 SD17 농도(g/㎡)	병반면적율(%)	방제가(%)	병반면적율(%)	방제가(%)
2.5(0.5배 농도)	17	57	25	62
5.0(추천농도)	12	70	15	77
10.0(2배 농도)	8	80	13	80
무처리	40	-	66	-

상기 표 12에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 피티움블라이트병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 피티움블라이트병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 8]

서양잔디 브라운벳취병에 대한 현장 실증시험을 위하여, 대전 유성컨트리클럽 및 경기도 화산컨트리클럽의 서양잔디인 아그로스티스 팔루스트리스(Agrostis palustris)를 시험대상으로 하여, 상기 실시예 1의 입제를 기준으로 SD17의 농도를 하기 표 13에 기재된 바와 같이 잔디의 단위면적당 2.5, 5.0, 10.0g/㎡로 각각 조정하여 살포하였다. 잔디 브라운벳취 병원균인 리족토니아 솔라니 에이지1-1(Rhizoctonia solaniAG1-1)을 25℃ 배양기에서 감자한천배지 위에 3일간 배양하였다. 3일 경과시, 잔디밭에 사방 50㎝ 간격으로 10개의 구멍(직경 10㎜, 깊이 20㎜)을 파고, 병원균을 키운 한천디스크(직경 10㎜)를 3개씩 각 구멍에 접종하였다. 관행방법에 따라 길항미생물을 처음 처리한 이후 길항미생물을 일주일 간격으로 4회 살포한 후 방제효과를 평가하였다. 그 결과를 하기 표 13에 나타내었다.

상기 표 13에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 브라운벳취병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 브라운벳취병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

[시험예 9]

한국잔디 라지벳취병에 대한 현장 실증시험을 위하여, 대전 유성컨트리클럽의 한국잔디인 조이시아 자포니카(Joysia japonica)를 시험대상으로 하여, 상기 실시예 1의 입제를 기준으로 SD17의 농도를 하기 표 14에 기재된 바와 같이 잔디의 단위면적당 2.5, 5.0, 10.0g/㎡로 각각 조정하여 살포하였다. 잔디 라지벳취 병원균인 리족토니아 솔라니 에이지2-2(Rhizoctonia solaniAG2-2)를 25℃ 배양기에서 감자한천배지 위에 3일간 배양하였다. 3일 경과시, 잔디밭에 사방 50㎝ 간격으로 10개의 구멍(직경 10㎜, 깊이 20㎜)을 파고, 병원균을 키운 한천디스크(직경 10㎜)를 3개씩 각 구멍에 접종하였다. 관행방법에 따라 길항미생물을 처음 처리한 이후 길항미생물을 일주일 간격으로 4회 살포한 후 방제효과를 평가하였다. 그 결과를 하기 표 14에 나타내었다.

처리 SD17 농도(g/㎡)	유성컨트리클럽
처리 SD17 농도(g/㎡)	병반면적율(%)	방제가(%)
2.5(0.5배 농도)	10	71
5.0(추천농도)	5	85
10.0(2배 농도)	3	91
무처리	35	-

상기 표 14에서 알 수 있는 바와 같이, SD17은 무처리 포트와 비교하여 라지벳취병을 억제할 수 있으며, SD17의 처리농도를 달리한 상기 처리군 모두에서 라지벳취병 발병을 억제할 수 있음을 알 수 있다.

이상에서 알 수 있는 바와 같이, 본 발명의 패니바실러스 SD17 균주는 식물병의 치료에 이용가능한 길항미생물로서, 잔디 피티움블리이트병, 잔디브라운벳취병, 잔디 라지벳취병, 토마토 역병, 오이 잿빛곰팡이병 등의 억제에 효과적이며, 입자제형(입제) 또는 용액(액제)으로서 환경친화적인 생물농약으로 효과적으로 사용될 수 있다.

<110> SUNG Jae kap; LG CHEM INVESTMENT, LTD. <120> Paenibacillus sp. SD17 producing anti-fungal agents for biologica l control and composition containing them thereof <130> NK-0282 <160> 1 <170> KOPATIN 1.5 <210> 1 <211> 1481 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Paenibacillus sp. SD17 producing anti-fungal agents for biologica l control, origined in Perilla frutescens var. japonica <400> 1 cgaacgctgg cggcgtgcct aatacatgca agtcgagcgg acccttcggg gttagcggcg 60 gacgggtgag taacacgtag gcaacctgcc tgtaagactg ggataactac cggaaacggt 120 agctaagacc ggataagtga ttctttcgca tgagaggatc aagaaacacg gggcaacctg 180 tgacttacag atgggcctgc ggcgcattag ctagttggtg gggtaacggc tcaccaaggc 240 gacgatgcgt agccgacctg agagggtgat cggccacact gggactgaga cacggcccag 300 actcctacgg gaggcagcag tagggaatct tccgcaatgg acgcaagtct gacggagcaa 360 cgccgcgtga gtgatgaagg ttttcggatc gtaaagctct gttgccaggg aagaacgtcg 420 tggagagtaa ctgctctgcg aatgacggta cctgagaaga aagccccggc taactacgtg 480 ccagcagccg cggtaatacg tagggggcaa gcgttgtccg gaattattgg gcgtaaagcg 540 cgcgcaggcg gccgcttaag tctggtgttt aagcccgagg ctcaacctcg gttcgcactg 600 gaaactgggt ggcttgagtg caggagagga aagcggaatt ccacgtgtag cggtgaaatg 660 cgtagagatg tggaggaaca ccagtggcga aggcggcttt ctggcctgta actgacgctg 720 aggcgcgaaa gcgtggggag caaacaggat tagataccct ggtagtccac gccgtaaacg 780 atgagtgcta ggtgttaggg gtttcgatac ccttggtgcc gaagtaaaca caataagcac 840 tccgcctggg gagtacgctc gcaagagtga aactcaaagg aattgacggg gacccgcaca 900 agcagtggag tatgtggttt aattcgaagc aacgcgaaga accttaccag gtcttgacat 960 ccctctgaat atcctagaga tagggtaggc cttcgggaca gaggagacag gtggtgcatg 1020 gttgtcgtca gctcgtgtcg tgagatgttg ggttaagtcc cgcaacgagc gcaacccttg 1080 aacttagttg ccagcattga gttgggcact ctaagttgac tgccggtgac aaaccggagg 1140 aaggtgggga tgacgtcaaa tcatcatgcc ccttatgacc tgggctacac acgtactaca 1200 atggccggta caacgggaag cgaagtcgcg agatggagcc aatcctaaga aagccggtct 1260 cagttcggat tgcaggctgc aactcgcctg catgaactcg gaattgctag taatcgcgga 1320 tcagcatgcc gcggtgaata cgttcccggg tcttgtacac accgcccgtc acaccacgag 1380 agtttacaac acccgaagtc ggtggggtaa ccgcaaggag ccagccgccg aaggtggggt 1440 agatgattgg ggtgaagtcg taacaaggta gccgtatcgg a 1481

Claims

식물병 방제활성을 갖는 항진균 물질을 생성하는 패니바실러스 에스디17 균주(Paenibacillussp. SD17)(KCTC-10016BP).
제 1항에 있어서,

상기 항진균 물질이 방제하는 식물병원균은 피티움 종(Pythiumspp.), 리족토니아 솔라니 에이지1-1(Rhizoctonia solaniAG1-1), 리족토니아 솔라니 에이지2-2(Rhizoctonia solaniAG 2-2), 피토프토라 인페스탄스(Phytophthora infestans) 또는 보트리티스 시네레아(Botrytis cinerea)임을 특징으로 하는 패니바실러스 SD17 균주(KCTC-10016BP).
패니바실러스 SD17 균주가 포함되어 있는 미생물 배양액 5 내지 30중량%, 포자 발아촉진제 0.2 내지 3.0 중량%, 수용성 색소 0.02 내지 0.5중량%, 계면활성제 1 내지 5 중량% 및 잔량으로서 첨가제 또는 담체를 포함하여 이루어짐을 특징으로 하는 조립식 입제의 항균제 조성물.
제 3항에 있어서, 상기 포자 발아촉진제가 효모추출액임을 특징으로 하는 항균제 조성물.
패니바실러스 SD17 균주가 포함되어 있는 건조분말 5 내지 80중량%, 포자 발아촉진제 0.2 내지 3.0 중량%, 수용성 색소 0.02 내지 0.5중량%, 계면활성제 1 내지 5 중량% 및 잔량으로서 첨가제 또는 담체를 포함하여 이루어짐을 특징으로 하는 조립식 입제의 항균제 조성물.
제 5항에 있어서, 상기 포자 발아촉진제가 효모추출액임을 특징으로 하는 항균제 조성물.