KR100377921B1 - 엑시머레이저 각막절제술에서의 안연고 제조방법 - Google Patents

Abstract

본 발명은 엑시머레이저 각막절제술후 각막 상피하 혼탁 등의 후유증을 억제하기 위해 항염증, 항섬유화, 조직유착 및 반흔형성억제라는 용도를 가지는 양막을 유효성분으로하는 약학적 조성물에 관한 것이다. 더욱 구체적으로 본 발명은 양막을 마쇄, 동결건조 및 멸균 처리 후 약학적 조성물로 제조하여 여러 다양한 안과 수술 및 피부의 창상부위에 도포 함으로서 생리적인 항염증, 항섬유화작용및 외과수술시 조직유착이나 반흔형성을 부작용없이 억제할수 있다.

Description

엑시머레이저 각막절제술에서의 안연고 제조방법 {manufacture method for eye unguent in photorefractive keratectomy}

엑시머레이저 각막절제술은 근시 및 난시 같은 굴절이상과 표층각막혼탁을 교정하기 위한 레이저 수술로 1995년 미국 FDA에서 공인된 안전하고 정교한 수술법이다. 그러나 수술 후 심한 통증, 각막 상피하 혼탁과 근시로의 퇴행같은 합병증 및 후유증이 문제점으로 지적되고 있다. 이러한 각막혼탁과 근시로의 퇴행은 엑시머레이저 각막절제술 직후 각막실질세포의 소실과 밀접한 연관성이 있는 것으로 알려져 있다.

Dohlman 등 [C.H. Dohlman et al., Invest. Opthalmol. Vis. Sci., 1968: 16, P520-534]이 각막상피제거 후 각막실질세포의 소실을 처음 발견하였고. 최근 Wilson 등 [S.E. Wilson et al., Exp.Eye Res., 1996: 62, P325-337] 과 Gao 등 [J. Gao et al., Cornea, 1997: 16, P200-208]은 엑시머레이저 각막절제술 후 각막 실질세포의 소실이 apoptosis에 의해 유발된다고 주장하였다. 또 Wilson 등 [S.E. Wilson and Kim W.J., Invest. Opthalmol. Vis. Sci., 1998: 59, P220-226]은 각막실질세포의 apoptosis가 초기 창상 치유과정에서 방아쇠 역할을 하는 중요한 유발 인자이며 apoptosis(세포사멸)의 정도가 엑시머레이저 근시교정술(photorefractive keratectomy) 이후 각막 혼탁과 밀접한 관계가 있다고 하였다. Apoptosis는 특징적인 조직변화를 보이는 계획된 세포의 자살로서, 조직의 분화, 발달, 감염과 창상 치료반응에 중요한 역할을 하는 생리학적 과정이다. 엑시머레이저 근시교정술 후 각막 실질세포의 apoptosis에 대해 여러 가설이 있는데, 엑시머레이저 자체에 의한 각막실질의 직접적인 손상과 국소 발열반응, 염증세포침윤, 손상된 상피세포로부터 유리되는 interleukin-1(인터루킨-1)등의 여러가지 요인이 복합적으로 관여하는 것으로 알려져 있다.

이전에 발명자들은 엑시머레이저 근시교정술 후 양막이식이 각막상피 재생을 촉진시키고 염증세포침윤을 억제하며, cell membrane(세포막)의 oxidative damage(산화적 손상)를 반영하는 세포막 지질과산화(lipid peroxidation)을 억제하여 궁극적으로 keratocyte apoptosis(섬유 세포사멸)와 각막혼탁을 줄일 수 있는 방법을 연구한 바 있다.

양막은 태반에 붙어있으며 태아를 싸고 있는 안쪽의 얇은 반 투명한 막으로 simple cuboidal epithelium(단순입방상피세포)과 두꺼운 basement membrane(기저막)과 avascular mesenchymal stroma(혈관 중간 엽기질)로 구성되어 있다. 양막이식은 안과영역에서 상피화를 촉진시키고 염증을 감소시키며, 신생 혈관형성을 억제하여 반흔형성을 최소화하는 효과가 있으며 이식하여도 거부반응이 없다. 발명자들의 연구 결과 염증세포의 침윤과 keratocyte apoptosis(섬유세포사멸)는 밀접한 연관관계가 있으며, 양막은 염증세포를 흡착시켜 각막 실질 내로 침윤되지 못하게 하는 효과가 있음을 알아내었다. 기존 연구에서는 가토에서 엑시머레이저 각막절제술 후 양막을 각막 위에 10-0 nylon 봉합사로 봉합하여 봉합에 의한 인위적인 염증이 유발되는 문제점이 있었고, 임상 적용 시에는 술 후 양막을 고정시키기 위해 장시간 양막을 창상부위에서 부착 건조시키고 콘택트렌즈를 착용시켜야 하는 문제점이 있었다.

따라서 본발명은 엑시머레이저 각막절제후 임상적으로 나타나는 여러가지 후유증을 부작용없이 억제할수 잇는 임상약물의 개발을 위한 것이다.

본 발명의 목적은 염증세포 흡착작용과 상피화 촉진작용 및 항섬유화작용이 있는 양막을 마세, 동결건조 및 멸균처리 후 안연고로 제조하여 엑시머레이저 근시조정술후 점안하여 각막실질에 염증세포의 침윤과 각막실질세포의 초기 apoptosis(세포사멸)와 cell membrane(세포막)의 lipid peroxidation(지질과산화)을 억제하는데 있다.

실시예. 양막제제(안연고) 제조

양막을 얻기 위해 HIV(인체면역결핍바이러스) , HBV(B형간염바이러스), HCV(C형간염바이러스), syphilis(매독균)가 없는 산모의 제왕절개 후 얻은 태반을 lamina flow hood(클린벤치)내에서 항생제가 첨가된 sterile PBS로 세척한 후 양막(amnion)을 chorion(융모막)으로부터 박리하고 nitrocellulose paper(니트로셀룰로스지)에 양막의 basement membrane(기저막)이 위로(stroma side down)(즉, 세포간질쪽이 아래에 가도록) 가도록 펴서 부착시킨 후 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)과 glycerol이 1:1 (vol/vol)로 혼합된 용액에 넣어 -80'C에 보관한 후 연고 제조를 위해 사용한다.상기 보관된 양막을 -80'C 냉동실에서 꺼내 실온에서 녹인 후 nitrocellulose paper(니트로셀룰로스지)에서 양막을 떼어내고 묻어 있는 배양액을 생리식염수로 세척한다. 양막의 무게를 측정한 후 조직 마쇄기에 넣고 잘게 분쇄시킨 후 동결건조기에서 건조시킨다. 5 ㎛ 이하만 여과되는 filter에 통과시킨 후 멸균과정을 거친다. 안연고의 기질이 되는 바셀린(75%), 파라핀(15%), 라놀린(5%)에 만들어진 양막분말(5%)을 첨가하고, 안구표면에 잘 퍼지게 하기 위해 융점 35℃로 맞추어 안연고를 제조한다.

- 약효비교 실험

ⅰ) 가토 엑시머레이저 시술

체중 2-3kg인 백색 가토 20마리 40안을 대상으로 하였고, 마취를 위해 실험동물에 각각 50mg의 ketamine hydrochloride(염산케타민)와 xylazine hydrochloride(염산실라진)를 근육주사하였다. 각막상피를 기계적으로 제거한 후 엑시머레이저 각막절제술을 시술 한 후 한 쪽 눈에는 양막연고를, 반대측 눈에는 기질만 들어있는 연고를 점안하여 대조군으로 한다. 자세히 방법을 기술하면, 각막상피의 기계적 제거를 위해 개검기로 각막을 노출시킨 후 7 mm marker로 각막 중심부를 표시한 후, AMOILS Epithelial scrubber(AMOILS상피세척기)(Innova, USA)에 6 mm 직경의 brush를 부착하여 각막상피를 7 mm 직경으로 제거한다. 엑시머레이저는 flying spot(후라잉 스팟)방식의 193 nm 레이저 시스템(Telco, Australia)을 사용하여 직경 5 mm, -9 D(디옵터, 도수의 단위), single zone(단일 존)으로 96 ㎛ 깊이로 각막실질을 절제한다. 우안은 양막연고를 점안한 실험군으로, 좌안은 양막성분만 빠진 기질연고를 점안하여 대조군으로 하였다. 모든 실험동물은 시술후 상하안검을 반창고로 붙이고 마취가 깰때까지 눈을 감겨놓아 각막의 건조를 방지하였다. 시술후 8시간, 16시간후 추가로 연고를 점안하고 24시간때 과용량의 phenobarbital(페노바르비탈)을 귀정맥에 주사하여 희생시키고, 각막윤부를 포함하여 각막을 적출 하였다. 각막을 평평하게 유지시키기 위해 4 곳에 방사상 이완 절개를 한 후, 수술현미경하에서 상피결손부위가 중심에 오도록 하여 각막을 반으로 잘라 10 X 10 mm 크기의 cryoblock(냉각조, 얼리는 통)에 넣고 OCT ( 오씨티 컴파운드, 물질이름임, Sakura Finetek, USA) 컴파운드(Sakura Finetek, USA)에 포매 시킨 후 액체질소에 넣어 급속 냉동한다. 냉동 조직을 microtome(박편절단기)으로 6 ㎛ 두께로 잘라 염색에 사용한다.

ⅱ) 염색 및 cell count(세포수 측정)

냉동 조직을 microtome으로 6 ㎛ 두께로 잘라 표본 슬라이드를 제작하였는데 매 5번째 슬라이드를 Hematoxylin-Eosin(HE) 염색하여 광학 현미경으로 각막 상피 결손 부위와 엑시머레이저 각막절제 부위를 확인한 후 엄선돤 표본슬라이드는 다른 염색을 위해 사용하였다. HE 염색된 조직에서 광학현미경을 이용하여 연속된 5 개의 고배율시야(×400)에서 각막실질에 침윤된 다형핵백혈구(polymorphonuclear cell, PMN) 수를 더하여 계산하였다. Apoptosis를 분석하기 위해서 fluorescein based in situ-death detection kit(Boehringer Mannheim., USA)를 이용하여 TUNEL(터널염색, 염색방법의 일종임)(terminal deozyribonucleotidyl transferase mediated dUTP-digoxigenin nick end labeling)염색을 하고 대조염색을 위해 propidium iodide/antifade(요오드화 프로피딘)(Oncor, USA)를 사용한다. 형광현미경(Carl Zeiss, Germany)의 excitation(여기)과 emission(방출) 필터를 적절히 조합하여 apoptosis를 일으킨 세포는 초록색형광으로, 대조염색인 propidium iodide(요오드화 프로피딘)에 염색된 세포는 붉은색형광으로 나타나게 하여 apoptotic nucleous(세포사멸이 진행중인 세포핵)를 관찰하고, 연속한 5개의 고배율시야(×400) 에서 각막실질세포 apoptosis 수를 측정하여 합한다.

엑시머레이저 조사에 의해 생성된 산소유리기에 의한 세포막 지질 과산화(lipid peroxidation) 정도를 알아보기 위해 지질 과산화의 최종 산물인 malondialdehyde (MDA)을 Vectastain Elite ABC Kit (Vector, USA)을 이용하여 특수 면역 화학 염색하였다. 일차항체는 MDA에 대한 쥐의 다크론성의 항체를, 이차항체는 biotinylated goat derived anti-rat IgG(비오틴 결합 양유래의 항 래트 면역글로부린-지)를 사용하였으며, diaminobenzidine terta hydrochloride(DAB)를 과산화효소 기질로 사용하여 발색반응을 시키고 이를 광학현미경으로 관찰하였다. 각 측정치는 ANOVA(통계의 일종임)와 Wilkoson signed rank test(통계의 일종임 ) 로 통계처리 하여 양막연고의 항 염증작용과 각막실질세포의 apoptosis 억제작용, lipid peroxidation(지질과산화) 억제작용을 알아본다.

ⅲ) 결과

각막실질에 침윤된 염증세포와 TUNEL positive Apoptotic keratocyte 수는 실험군인 양막연고군이 대조군에 비해 통계적으로 의미있게 적었다. lipid peroxiation을반영하는 MDA stain도 양막연고군이 대조군에 비해 염색의 강도가 적었다.

표 1. TUNEL( keratocyte apoptosis 수: 연속된 X 400 high power field 5곳에서

count))

Rabbits	OD(AM oint group)					sum	평균	p
1	1	1	1	1	1	5	1.00
2	6	6	9	1	1	23	4.60
3	3	2	2	1	2	10	2.00
4	1	1	1	2	1	6	1.20
5	3	1	1	2	1	8	2.00
6	3	5	1	2	4	15	3.00
7	2	2	1	3	1	9	1.80
8	1	2	3	2	1	9	1.80
9	3	4	3	2	2	14	2.80
10	8	2	2	2	2	16	3.20
							2.34	0.000116

	OS(Control)						평균
1	4	8	9	10	12	43	8.60
2	22	11	23	23	28	107	21.40
3	10	12	8	7	5	42	8.40
4	2	1	8	7	4	22	4.40
5	12	9	7	13	7	48	9.60
6	3	9	17	16	3	48	9.60
7	18	17	6	7	13	61	12.20
8	12	3	5	7	15	42	8.40
9	18	16	12	5	17	68	13.60
10	13	5	4	7	6	35	7.00
							10.32

《t-검정: 쌍체 비교》

	변수 1	변수 2
평균	11.5	51.6
분산	30.0556	540.2667
관측수	10	10
피어슨 상관 계수	0.72982
가설 평균차	0
자유도	9
t 통계량	-6.4684
P(T<=t) 단측 검정	5.8E-05
t 기각치 단측 검정	1.83311
P(T<=t) 양측 검정	0.00012
t 기각치 양측 검정	2.26216

표 2. HE( 각막내 염증세포수: 연속된 X400 high power field 5곳에서

count)

Rabbits	OD(AM oint group)					sum	평균	p
1	32	53	78	44	27	234	46.8
2	15	17	21	28	27	108	21.6
3	14	27	30	19	25	115	23
4	45	48	62	34	85	274	54.8
5	17	16	16	14	29	92	18.4
6	24	27	33	24	27	135	27
7	42	94	60	78	77	351	70.2
8	8	7	9	8	5	37	7.4
9	14	15	15	17	12	73	14.6
10	54	48	66	78	40	286	57.2
							34.1	0.003578949

	OS(Control)						평균
1	58	77	88	97	100	420	84
2	87	44	58	98	87	374	74.8
3	27	29	44	22	21	143	28.6
4	77	95	85	121	88	466	93.2
5	18	21	27	45	13	124	24.8
6	52	23	30	31	37	173	34.6
7	122	115	38	44	52	371	74.2
8	42	17	13	22	27	121	24.2
9	38	42	41	35	27	183	36.6
10	37	55	61	87	131	371	74.2
							54.92

《t-검정: 쌍체 비교》

	변수 1	변수 2
평균	170.5	274.6
분산	11378.05556	18727.4
관측수	10	10
피어슨 상관 계수	0.788075766
가설 평균차	0
자유도	9
t 통계량	-3.907387395
P(T<=t) 단측 검정	0.001789475
t 기각치 단측 검정	1.833113856
P(T<=t) 양측 검정	0.003578949
t 기각치 양측 검정	2.262158887

이상에서 설명한 바와같이 본 발명은, 사용하기 간편한 양막연고는 엑시머레이저 각막절제술등 여러 다양한 안과수술 및 피부의 창상부위에 도포 함으로서 부작용없이 생리적인 항염증, 항섬유화작용을 나타내며, 외과수술시 조직유착이나 반흔형성을 억제할 수 있다.

Claims (2)

1. 삭제
2. 양막을 얻기 위해 태반을 lamina flow hood 내에서 항생제가 첨가된 sterile PBS로 세척하는 단계와,

   양막(amnion)을 융모막(chorion)으로부터 박리하고 nitrocellulose paper에 양막의 basement membrane이 위로(stroma side down) 가도록 펴서 부착시키는 단계와,

   DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)과 glycerol이 1:1로 혼합된 용액에 넣어 -80'C에 보관하는 단계와,

   상기 보관된 양막을 -80'C 냉동실에서 꺼내 실온에서 녹인 후 nitrocellulose paper에서 양막을 떼어내고 묻어 있는 배양액을 생리식염수로 세척하는 단계와,

   양막의 무게를 측정한 후 조직 마쇄기에 넣고 잘게 분쇄시킨 후 동결건조기에서 건조시키는 단계와,

   5 ㎛ 이하만 여과되는 필터에 양막을 통과시킨 후 멸균하는 단계와,

   바셀린 75중량%, 파라핀 15중량%, 라놀린 5중량%에 양막분말 5중량%을 첨가하는 단계와,

   안구표면에 잘 퍼지게 하기 위해 융점 35℃로 맞추어 제조하는 단계를 포함하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 안연고 제조방법.