KR100302102B1 - 산소전달물질을첨가하는균체의고정화에의한l-소르보오스의생산방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 반응액에 용해되어 있는 산소가 고정화 담체내로 확산되는 속도를 증진시키기 위해서, 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans) 균체와 함께 산소전달물질인 도데칸(dodecane), 실리콘 오일(silicon oil), 퍼플루오르데칼린(perfluorodecalin) 또는 헤모글로빈(hemoglobin) 등을 알긴산(alginate)으로 포괄시켜 고정화 담체를 제조하고, 이를 배양하여 D-소르비톨(D-sorbitol)로부터 L-소르보오스를 발효생산하는 방법에 관한 것이다. 본 발명은 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)와 알긴산 용액을 혼합하고, 산소전달물질을 첨가하여 고정화 담체를 제조한 다음, 이를 배양하여 D-소르비톨로부터 L-소르보오스를 발효생산하는 방법을 제공한다. 본 발명에 따르면, 글루코노박터 서브옥시단스를 이용하여 D-소르비톨로부터 L-소르보오스를 발효생산할 때, 알긴산 담체 내에 산소전달물질을 균체와 함께 포괄시켜 고정화시킴으로써, 산소가 고정화 담체내로 확산되는 속도를 증진시켜 담체내에 존재하는 균체의 활성을 높게 유지하여 L-소르보오스 생산성을 증진시킬 수 있다.

Description

산소전달물질을 첨가하는 균체의 고정화에 의한 Ｌ-소르보오스의 생산방법
본 발명은 산소전달물질을 첨가하는 균체의 고정화에 의한 L-소르보오스(L-sorbose)의 생산방법에 관한 것이다. 좀 더 구체적으로, 본 발명은 반응액에 용해되어 있는 산소가 고정화 담체내로 확산되는 속도를 증진시키기 위해서, 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans) 균체와 함께 산소전달물질인 도데칸(dodecane), 실리콘 오일(silicon oil), 퍼플루오르데칼린(perfluorodecalin) 또는 헤모글로빈(hemoglobin) 등을 알긴산(alginate)으로 포괄시켜 고정화 담체를 제조하고, 이를 배양하여 D-소르비톨(D-sorbitol)로부터 L-소르보오스를 발효생산하는 방법에 관한 것이다.
비타민 C의 전구체인 L-소르보오스는 기질인 D-소르비톨로부터 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)와 같은 몇몇 미생물을 이용한 생물전환반응에 의하여 얻어지며(참조: Biotechnol. Lett., 9:475(1987); Appl. Biochem. Biotechnol., 28:397(1991)), 이들 반응은 산소를 비교적 많이 요구하므로, 반응 중에 산소의 공급은 생성물의 수율을 높히는데 매우 중요하다고 알려져 있다(참조: J. Ferment. Technol., 56:20(1978); J. Ferment. Technol., 57:210(1979)).
일반적으로, 반응기내의 산소의 공급을 늘리는 방법으로는, 공기의 공급속도를 증가시키거나 반응기내의 산소분압 및 교반속도를 높히는 방법이 이용되어 왔다. 그러나, 이러한 방법으로도 반응기내에 충분한 산소공급이 이루어지지 않아, 산소의 전달속도를 증진시키기 위한 또 다른 방법으로 산소가 쉽게 용해될 수 있는 탄화수소류(참조: Biotech. Bioeng., 35:427(1990)), 과탄화플루오르(perfluorocarbon)류(참조: Appl. Microbiol. Biotechnol., 43:206(1995)), 실리콘 오일 등의 산소전달물질을 반응액에 첨가하는 방법이 시도되어 왔다. 그러나, 이들 방법은 반응에 미생물 균체가 이용될 경우에 균체가 고정화(immobilization)되지 않은 자유 균체(free cells) 상태로 존재할 때만 효과적인 것으로 보고되었다.
한편, 균체를 회분식 반응에서 여러 번 반복 사용하거나, 연속 반응공정에서 이용하고자 할 때는, 반응시마다 균체를 매번 배양하는 것은 배지의 소모가 크고 번거로운 과정을 요구하므로, 자유 균체보다는 고정화 균체(immobilized cells)가 유리한데, 균체를 알긴산(alginate)으로 포괄하여 고정화하는 방법을 이용하여 고정화 균체를 제조하게 되면, 반복사용의 장점은 있으나, 고정화담체를 통한 산소의 전달속도가 감소되어 균체가 산소결핍에 처하여 반응수율이 떨어지고 반응속도가 저하되는 문제점이 발생하였다. 이와 같은 고정화 균체를 이용하는 반응의 경우, 단순히 반응액에 산소전달물질을 첨가하여 반응액의 용존 산소농도를 높게 유지하여도, 산소가 고정화 담체를 통하여 균체에 도달되는 확산속도는 일반적으로 매우 낮으므로, 담체 내에 고정화되어 있는 균체들은 산소 결핍상태로 존재하게 된다.
따라서, 균체를 회분식 반응에서 여러 번 반복 사용하거나, 연속 반응공정에서 이용하는 경우에도 고정화 담체 내에서의 산소 전달속도를 근본적으로 증진시켜 균체가 충분하게 산소를 공급받도록 하여, D-소르비톨로부터 L-소르보오스의 생물전환반응과 같은 산소가 요구되는 생물전환반응에서 반응의 수율을 획기적으로 높일 수 있는 균체의 고정화 방법을 개발하여야 할 필요성이 급격히 대두되었다.
이에, 본 발명자들은 D-소르비톨로부터 L-소르보오스로의 생물전환반응에 있어서, 고정화 담체 내에서의 산소 전달속도를 근본적으로 증진시켜 균체가 충분하게 산소를 공급받도록 하여 반응의 수율을 획기적으로 높일 수 있는 균체의 고정화 방법을 개발하기 위하여 예의 연구 노력한 결과, 균체의 고정화시에 균체와 산소전달물질을 알긴산으로 함께 포괄시켜 고정화담체를 제조하여 D-소르비톨로부터 L-소르보오스로의 전환반응에 사용함으로써, 균체로의 산소공급이 원활해져 L-소르보오스의 생산수율이 상당히 증가함을 확인하고, 본 발명을 완성하기에 이르렀다.
결국, 본 발명의 목적은 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)와 알긴산 용액을 혼합하고, 산소전달물질을 첨가하여 고정화 담체를 제조한 다음, 이를 배양하여 D-소르비톨로부터 L-소르보오스를 발효생산하는 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 균체의 고정화 방법은 미생물 균체와 산소전달물질을 함께 알긴산(alinate) 용액에 혼합하고, CaCl2용액에 적하시키는 단계를 포함한다. 산소전달물질로서는 도데칸(dodecane), 실리콘 오일(silicon oil), 퍼플루오로데칼린(perfluorodecalin) 또는 헤모글로빈(hemoglobin) 등을 이용하여, 산소를 원활히 고정화 담체내로 공급시켜 산소가 요구되는 생물전환반응에서 반응의 수율을 높일 수 있는 균체의 고정화 방법이다.
이하에서는, 본 발명의 균체의 고정화 방법을 이용한 L-소르보오스의 생산방법을 설명하고자 한다.
본 발명의 L-소르보오스 생산균주로는 바람직하게는 글루코박터 서브옥시단스(KFCC 21182)를 사용하며, 보존용 사면배지에서 배양하여 4℃에서 보존하며 사용하는데, 전기 균주를 D-소르비톨 5 내지 20% 및 옥수수 침지액(corn steep liquor) 0.5 내지 1.0%의 조성의 배양배지에서 종배양한 다음, 고정화에 이용할 균체를 얻기 위해 종배양과 같은 배지에서 본배양을 한다. 전기 배양된 본배양액을 원심분리하여 균체만을 취한 후, 나트륨-아세트산 완충액에 현탁하고, 90 내지 110℃로 가열한 후 냉각시킨 4% 나트륨-알긴산(Na-alginate) 용액과 1:1로 혼합한 다음, 산소전달물질을 5 내지 20%의 농도로 첨가하여 주사기에 넣고 바늘을 통하여 CaCl2용액에 적하시켜 겔 상태의 고정화 담체를 제조한다. 이때, D-소르비톨로부터 L-소르보오스로의 생물전환반응은 삼각플라스크 또는 거품관(bubble column) 반응기에서 이루어지며, D-소르비톨을 포함하는 본배양 배지가 들어있는 플라스크 또는 거품관 반응기에, 상기에서 제조된 고정화 담체를 본배양액를 기준으로 30 내지 40%(부피비)가 되게 첨가한 후, 25 내지 35℃에서 30 내지 60시간동안, 보다 바람직하게는 40 내지 50시간동안 배양시켜 L-소르보오스를 제조한다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 이들 실시예는 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 국한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.
실시예 1: 글루코박터 서브옥시단스의 배양
L-소르보오스 생산균주로 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)(KFCC 21182)를 보존용 사면배지에서 배양하여 4℃에서 보존하며 사용하였다. 전기 균주의 종배양과 본배양은 동일한 배지를 사용하였으며, 배지조성은 D-소르비톨 10% 및 옥수수 침지액(corn steep liquor) 0.8% 으로 이루어져 있으며, pH 6.0으로 조절하여 사용하였다. 종배양은 배지 5㎖이 포함된 20㎖ 시험관을 30℃의 회전식 진탕기에서 180rpm에서 48시간 배양하였고, 본배양은 고정화에 이용할 균체를 얻기 위한 것으로, 배지 3ℓ를 포함한 5ℓ 발효조에 전기 배양된 종배양액을 배지의 5%(부피비)가 되게 접종한 후, 30℃에서 교반속도 600rpm, 공기공급속도 1.5vvm의 조건으로 48시간 배양하였다.
실시예 2: 도데칸 첨가 고정화 담체를 이용한 균체의 고정화
실시예 1에서 배양된 본배양액을 10,000rpm에서 10분간 원심분리하여 균체만을 취한 후, 나트륨-아세트산 완충액(0.05M Na-acetate buffer, pH 6.0)에 현탁하여 균체농도가 2.8 x 108/㎖ 되게 조절하여 100℃로 가열한 후 냉각시킨 4% 나트륨-알긴산(Na-alginate) 용액과 1:1(부피비)로 혼합하고, 산소전달물질로 n-도데칸을 농도가 각각 0, 5, 10, 15, 20% 되도록 첨가한 다음, 주사기에 넣고 바늘을 통하여 0.1M CaCl2용액에 적하시켜 겔 상태의 지름이 2.3㎜인 고정화 담체를 제조하였다.
액체발효의 본배양배지(10% D-소르비톨, 0.8% 옥수수 침지액) 50㎖을 포함한 500㎖ 삼각플라스크에 상기에서 제조된 고정화 담체를 배지의 33%(부피비)(균체농도로 21.6g/ℓ)가 되게 첨가한 후, 30℃, 180rpm의 회전진탕기에서 48시간 반응을 진행하여 각각의 도데칸 첨가농도에 따라 D-소르비톨로부터 생성된 L-소르보오스 양을 분석하였다. 반응액의 D-소르비톨 및 L-소르보오스 농도는 반응액 1㎖을 원심분리한 후, 상등액을 취하여 RI 검출기(Waters, U.S.A.)가 장착된 HPLC로 분석하였다. 그 결과, 도데칸 없이 균체만을 고정화한 담체를 이용한 경우에 50 g/ℓ의 L-소르보오스가 생성되었고, 이에 비해 고정화 담체내의 도데칸 농도가 증가됨에 따라 L-소르보오스의 생산량은 증가하였으며, 도데칸 농도가 15% 및 20%인 경우에서 동일하게 L-소르보오스 농도가 44% 증가한 72g/ℓ가 얻어졌다. 이러한 결과로부터, 도데칸과 같은 산소전달물질을 균체와 함께 고정화하여 사용하는 경우 산소를 요구하는 생물전환반응에서 생산 수율을 높히는데 매우 효과적임을 알 수 있었다.
실시예 3: 퍼플루오르데칼린 첨가 고정화 담체를 이용한 균체의 고정화
실시예 2에서와 동일하게 실시예 1에서 배양된 본배양액을 10,000rpm에서 10분간 원심분리하여 균체만을 취한 후, 나트륨-아세트산 완충액(0.05M Na-acetate buffer, pH 6.0)에 현탁하여 균체농도가 2.8 x 108/㎖ 되게 조절하여 100℃로 가열한 후 냉각시킨 4% 나트륨-알긴산(Na-alginate) 용액과 1:1(부피비)로 혼합하고, 산소전달물질로 퍼플루오르데칼린(perfluorodecalin)을 농도가 각각 0, 5, 10, 15, 20% 되도록 첨가한 다음, 주사기에 넣고 바늘을 통하여 0.1M CaCl2용액에 적하시켜 겔 상태의 지름이 2.3㎜인 고정화 담체를 제조하였다.
액체발효의 본배양배지(10% D-소르비톨, 0.8% corn steep liquor) 50㎖을 포함한 500㎖ 삼각플라스크에 상기 제조된 고정화 담체를 배지의 33%(부피비)(균체농도로 21.6g/ℓ)되게 첨가한 후, 30℃, 180rpm의 회전진탕기에서 48시간 반응을 진행하여 각각의 퍼플루오르데칼린 첨가농도에 따라 D-소르비톨로부터 생성된 L-소르보오스 양을 분석하였다. 그 결과, 퍼플루오르데칼린 농도가 증가함에 따라 생성되는 L-소르보오스 농도도 증가하였으며, 20% 퍼플루오르데칼린 농도에서 대조구인 퍼플루오르데칼린을 첨가하지 않은 경우에 비교하여 24% 증가된 값인 62g/ℓ를 나타내었다.
실시예 4: 실리콘 오일 첨가 고정화 담체를 이용한 균체의 고정화
실시예 2에서와 동일하게 실시예 1에서 배양된 본배양액을 10,000rpm에서 10분간 원심분리하여 균체만을 취한 후, 나트륨-아세트산 완충액(0.05M Na-acetate buffer, pH 6.0)에 현탁하여 균체농도가 2.8 x 108/㎖ 되게 조절하여 4% 나트륨-알긴산(Na-alginate) 용액과 1:1(부피비)로 혼합하고, 산소전달물질로 실리콘 오일(silicon oil)을 농도가 각각 0, 5, 10, 15, 20% 되도록 첨가한 다음, 주사기에 넣고 바늘을 통하여 0.1M CaCl2용액에 적하시켜 겔 상태의 지름이 2.3㎜인 고정화 담체를 제조하였다.
액체발효의 본배양배지(10% D-소르비톨, 0.8% 옥수수 침지액) 50㎖을 포함한 500㎖ 삼각플라스크에 상기 제조된 고정화 담체를 배지의 33%(부피비)(균체농도로 21.6g/ℓ)가 되게 첨가한 후, 30℃, 180rpm의 회전진탕기에서 48시간 반응을 진행하여 각각의 실리콘 오일 첨가농도에 따라 D-소르비톨로부터 생성된 L-소르보오스 양을 분석하였다. 그 결과, 기질인 D-소르비톨로부터 L-소르보오스의 생산량은 15%의 실리콘 오일 농도에서 최대농도인 66g/ℓ이 수득되어, 실리콘 오일을 첨가하지 않은 대조구에 비하여 32% 증가하였다.
실시예 5: 컬럼 반응기에서의 고정화 균체를 이용한 L-소르보오스 생산
실시예 1에서 배양된 본배양액을 10,000rpm에서 10분간 원심분리하여 균체만을 취한 후, 나트륨-아세트산 완충액(Na-acetate buffer: 0.05M, pH6.0)에 현탁하여 균체농도가 2.8 x 108/㎖ 되게 조절하여 4% 나트륨-알긴산(Na-alginate) 용액과 1:1(부피비)로 혼합하고, 산소전달물질로 n-도데칸을 농도가 각각 0, 5, 10, 15, 20% 되도록 첨가한 다음, 주사기에 넣고 바늘을 통하여 0.1M CaCl2용액에 적하시켜 겔 상태의 지름이 2.3㎜인 고정화 담체를 제조하였다.
액체발효의 본배양배지(10% D-소르비톨, 0.8% 옥수수 침지액) 100㎖을 포함한 150㎖ 컬럼 반응기(D 3.1cm x H 20cm)에 상기 제조된 고정화 담체를 배지의 33%(부피비)(균체농도로 21.6g/ℓ)가 되게 첨가한 후, 반응기내의 온도를 30℃로 유지하고, 공기공급속도를 2 또는 6 vvm 되게 조절하면서 24시간 반응을 진행하였다. 공기공급속도가 2vvm일 때, 도데칸을 첨가한 경우 85g/ℓ의 L-소르보오스가 얻어져 도데칸을 첨가하지 않은 대조구의 62g/ℓ에 비하여 37% 증가하였다. 한편, 공기공급속도가 6vvm일 때, 도데칸을 첨가한 경우 98g/ℓ의 L-소르보오스가 얻어져 도데칸을 첨가하지 않은 대조구의 78g/ℓ에 비하여 26% 증가하였다.
이상에서 상세히 설명하고 입증하였듯이, 본 발명은 글루코노박터 서브옥시단스를 이용하여 D-소르비톨로부터 L-소르보오스를 발효생산할 때, 알긴산 담체 내에 산소전달물질을 균체와 함께 포괄시켜 고정화시킴으로써, 산소가 고정화 담체내로 확산되는 속도를 증진시켜 담체내에 존재하는 균체의 활성을 높게 유지하여 L-소르보오스 생산성을 증진시킬 수 있다.

Claims (1)

  1. 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)와 도데칸(dodecane), 실리콘 오일(silicon oil), 퍼플루오로데칼린(perfluorodecaline) 및 헤모글로빈(hemoglobin)으로 구성된 그룹으로부터 선택되는 1종을 5 내지 20%의 농도로 함께 알긴산(alginate) 용액에 혼합하고, CaCl2용액에 적하시켜 전기 균체를 고정화한 다음, 이를 D-소르비톨이 포함된 배지에 30 내지 40%(부피비)가 되게 첨가하고, 20 내지 35℃에서 30 내지 60시간 배양시키는 단계를 포함하는 L-소르보오스의 생산 방법.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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CN114045243A (zh) * 2021-12-03 2022-02-15 山东天力药业有限公司 一种缩短生黑葡萄糖酸杆菌发酵周期的方法
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