JPWO2017014176A1 - ソフォロリピッド高生産性変異株 - Google Patents

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Abstract

ソフォロリピッド生産能の高い微生物の提供。配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドが欠失又は不活性化した、ソフォロリピッド生産性酵母変異株。

Description

本発明は、ソフォロリピッド高生産性変異株、及び当該変異株を使用したソフォロリピッドの製造方法に関する。
ソフォロリピッドは、微生物、主に酵母により生産される、長鎖ヒドロキシ脂肪酸とソホロースが結合した糖脂質である。ソフォロリピッドは、強い界面活性をもち、且つ生分解性に優れた両親媒性脂質であるため、近年、バイオサーファクタントとしての用途が注目されている。ソフォロリピッドは、微生物生産物であり、かつノニオン成分が主体であるため皮膚親和性がよいことから、化粧品の浸透性向上剤として使用されている。またソフォロリピッドは、生分解性に優れ、少量の添加でも効果があることから、食器用洗剤等の洗浄剤の分野でも使用が進んでいる。
ソフォロリピッドを生産する酵母としては、非病原性の担子菌酵母であるスターメレラ・ボンビコーラ（Ｓｔａｒｍｅｒｅｌｌａ ｂｏｍｂｉｃｏｌａ）〔旧名称キャンディダ・ボンビコーラ（Ｃａｎｄｉｄａ ｂｏｍｂｉｃｏｌａ）〕がよく知られている。スターメレラ・ボンビコーラにより生産されるソフォロリピッドは、ラクトン型又は酸型の構造を有し、臨界ミセル濃度は４０〜１００ｍｇ／Ｌを示し、水の表面張力を７２．８ｍＮ／ｍから３０ｍＮ／Ｎまで低下させる（非特許文献１）。ソフォロリピッドは、その構造の違いにより物理化学的性質が異なる。ソフォロリピッドのラクトン型と酸型との間で、又はソフォロリピッドを構成する脂肪酸種が異なると、抗菌性、界面活性力などの性質が変化することが報告されている（非特許文献１、２）。
洗浄剤や化粧品材料としてソフォロリピッドを使用する場合には、現在使用されている界面活性剤との競争を余儀なくされる。従来一般的な界面活性剤はバルク化学薬品であるため、極めて低コストで製造されている。したがって、ソフォロリピッドの製造コストの低減が強く所望される。さらに、ソフォロリピッドの利用可能性を広げるためには、多様な鎖長の構成脂肪酸を有するソフォロリピッドの生産が望まれている。
ソフォロリピッドの生産プロセスに対しては、従来、主に収率、精製法、起泡性付与技術などの研究及び改善が行われてきた（特許文献１、２）。また、スターメレラ・ボンビコーラに対し遺伝子改変を加えることにより、細胞内でのβ酸化代謝を停止させて、主に炭素鎖長が１２の中鎖ソフォロリピッドを製造する方法が報告されている（非特許文献３、特許文献３）。この遺伝子改変では、酵母のペロキシソームでのβ酸化における水酸化反応及び脱水素反応の２つを担う遺伝子であるＭＦＥ−２（又はＦＯＸ−２）（非特許文献４）を欠損させて、β酸化反応を停止させている。
（特許文献１）特開２００３−９８９６号公報
（特許文献２）特開２０１４−１５０７７４号公報
（特許文献３）米国特許第８，５３０，２０６号公報
（非特許文献１）Ａｐｐｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｂｉｏｔｅｃｈ，２００７，７６（１）：２３−３４
（非特許文献２）Ｊ ＳＵＲＦＡＣＴ ＤＥＴＥＲＧ，２００６，９，ＱＴＲ １：５７−６２
（非特許文献３）ＦＥＭＳ Ｙｅａｓｔ Ｒｅｓ，２００９，９：６１０−６１７
（非特許文献４）Ｃｅｌｌ Ｍｏｌ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ，２００３，６０（９）：１８３８−１８５１
本発明は、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドが発現抑制又は不活性化した、ソフォロリピッド生産性酵母変異株を提供する。
また本発明は、ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドを発現抑制又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母変異株の製造方法を提供する。
また本発明は、ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドを発現抑制又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母のソフォロリピッド生産能の向上方法を提供する。
また本発明は、上記ソフォロリピッド生産性酵母変異株を培養することを含む、ソフォロリピッドの製造方法を提供する。
配列番号１に示す遺伝子を欠損したスターメレラ・ボンビコーラ変異株（Δｓｅｑ１株）におけるソフォロリピッド生産能の向上。ＰＥ；パルミチン酸エチル、ＳＬ；ソフォロリピッド。エラーバー＝標準偏差（ｎ＝２）。 異なるパルミチン酸エチル濃度条件下におけるΔｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産量。ＰＥ；パルミチン酸エチル、ＳＬ；ソフォロリピッド。エラーバー＝標準偏差（ｎ＝２）。 Ｊａｒ Ｆｅｒｍｅｎｔｏｒ培養におけるΔｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産量。
発明の詳細な説明
本発明は、ソフォロリピッドを高効率で生産することができる酵母変異株、及びそれを用いたソフォロリピッドの製造方法に関する。
（１．定義）
本明細書において、ヌクレオチド配列及びアミノ酸配列の同一性は、Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９８５，２２７：１４３５−１４４１）によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアＧｅｎｅｔｙｘ−Ｗｉｎ（Ｖｅｒ．５．１．１；ソフトウェア開発）のホモロジー解析（Ｓｅａｒｃｈ ｈｏｍｏｌｏｇｙ）プログラムを用いて、Ｕｎｉｔ ｓｉｚｅ ｔｏ ｃｏｍｐａｒｅ（ｋｔｕｐ）を２として解析を行うことにより算出される。
本明細書において、ヌクレオチド配列及びアミノ酸配列に関する「少なくとも８０％の同一性」とは、８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、さらにより好ましくは９８％以上、なお好ましくは９９％以上の同一性をいう。
本明細書において、「ソフォロリピッド生産性酵母」とは、ソフォロリピッドを生産する能力を備えた酵母をいう。ソフォロリピッド生産性酵母の例としては、スターメレラ属（Ｓｔａｒｍｅｒｅｌｌａ）、カンジダ属（Ｃａｎｄｉｄａ）及びウイッカーハミーラ属（Ｗｉｃｋｅｒｈａｍｉｅｌｌａ）などの子嚢菌類が挙げられ、好ましくは、スターメレラ・ボンビコーラ（Ｓｔａｅｒｍｅｒｅｌｌａ ｂｏｍｂｉｃｏｌａ）、カンジダ・ボゴリエンシス（Ｃａｎｄｉｄａ ｂｏｇｏｒｉｅｎｓｉｓ）、カンジダ・バチステ（Ｃａｎｄｉｄａ ｂａｔｉｓｔａｅ）、カンジダ・アピコラ（Ｃａｎｄｉｄａ ａｐｉｃｏｌａ）及びウィッカーハミーラ・ドメルキー（Ｗｉｃｋｅｒｈａｍｉｅｌｌａ ｄｏｍｅｒｉｃｑｉａｅ）が挙げられる。より好ましい例としては、スターメレラ・ボンビコーラが挙げられる。
本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株において欠失又は不活性化されるポリペプチドは、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドである。配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドは、アミノ酸残基１０１位から１２３位、及び１２９位から１５２位に、それぞれＺｉｎｃ Ｆｉｎｇｅｒ Ｃ２Ｈ２タイプのＤＮＡ結合ドメインを有しており、転写因子として機能すると推察される。ＳＧＤ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ Ｇｅｎｏｍｅ Ｄａｔａｂａｓｅ）及びＳｗｉｓｓ Ｐｒｏｔデータベースにおける検索の結果、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドに対して最も相同性の高いタンパク質は、Ｘｅｎｏｐｕｓ ｔｒｏｐｉｃａｌｉｓ由来ＺＢＴ８ＡというＺｉｎｃ ｆｉｎｇｅｒ ドメインとＢＴＢドメインを有するタンパク質であったが、配列番号２で示されるアミノ酸配列に対するＣｏｖｅｒａｇｅは１１．１％、配列同一性は３９％と低かった。配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドは、これまで知られていない新規タンパク質であると考えられる。
本明細書において、「配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドに相当するポリペプチド」とは、配列番号２で示されるアミノ配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドである。好ましくは、該「配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドに相当するポリペプチド」は、推定転写因子タンパク質であり、より好ましくは、２個のＺｉｎｃ Ｆｉｎｇｅｒ Ｃ２Ｈ２タイプのＤＮＡ結合ドメインを有する推定転写因子タンパク質である。
本明細書において、「配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子」とは、好ましくは、配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子である。
本明細書において、「配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子に相当する遺伝子」とは、配列番号１で示されるヌクレオチド配列と少なくとも８０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつ上記配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドをコードする遺伝子である。
（２．ソフォロリピッド生産性酵母変異株）
本発明者らは、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドを発現抑制又は不活性化したソフォロリピッド生産性酵母が、そのソフォロリピッド生産能を向上させることを見出した。
本発明は、ソフォロリピッド生産能の高い酵母変異株を提供する。本発明の酵母変異株によれば、ソフォロリピッドを効率よく生産することができる。
本発明のホロリピッド生産性酵母変異株は、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドが欠失又は不活性化した変異株である。好ましくは、本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株は、ソフォロリピッド生産性酵母において、人工的な改変により、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドを欠失させるか又は不活性化することによって製造された変異株である。
好ましくは、本発明の酵母変異株は、変異前の株（親株）と比べて、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドの発現が抑制されている変異株である。一実施形態において、本発明の変異株は、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドの発現量が、親株と比べて５０％以下、好ましくは４０％以下、より好ましくは３０％以下、さらに好ましくは２０％以下、さらにより好ましくは１０％以下、なお好ましくは５％以下に低下している変異株であり得る。タンパク質又はポリペプチドの発現量は、通常使用されるタンパク質発現定量法、例えば、これらに限定されないが、定量ＰＣＲによるｍＲＮＡ量測定、比色定量法、蛍光法、ウェスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ、ラジオイムノアッセイ等により測定することができる。
配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドの欠失又は不活性化のための手段としては、それらをコードする遺伝子を欠失又は不活性化する方法、それらをコードする遺伝子のｍＲＮＡの翻訳を抑制する方法、それらをコードする遺伝子を変異させて該ポリペプチドの活性を低下させる方法、などが挙げられる。したがって、一実施形態において、本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株は、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子又はこれに相当する遺伝子が欠失又は不活性化した変異株である。
酵母細胞の遺伝子を欠失又は不活性化する手段としては、標的の遺伝子のヌクレオチド配列上の１つ以上のヌクレオチドに対する突然変異導入（欠失、挿入、置換若しくは付加）、該ヌクレオチド配列に対する別のヌクレオチド配列の置換若しくは挿入、又は該ヌクレオチド配列の一部若しくは全部の削除などが挙げられる。あるいは、該標的の遺伝子のプロモーター領域等の制御領域に対して、同様の突然変異導入やヌクレオチド配列の置換、挿入又は削除を行ってもよい。例えば、該標的の遺伝子の発現を制御するプロモーターに対する突然変異導入、又はより低発現性プロモーターへの置き換えにより、プロモーター活性を低下若しくは消失させ、該標的の遺伝子を不活性化させることができる。ポリペプチドの活性を低下させる遺伝子変異は、上述した突然変異導入等により行うことができる。ｍＲＮＡの翻訳抑制は、ｓｉＲＮＡを用いたＲＮＡ干渉等により行うことができる。
上記突然変異導入や、ヌクレオチド配列の置換、挿入又は削除のための具体的な手法としては、当該分野で公知の微生物の遺伝的改変のための方法を用いることができる。当該方法の例としては、紫外線照射、部位特異的変異導入、ＳＯＥ−ＰＣＲ法（ｓｐｌｉｃｉｎｇ ｂｙ ｏｖｅｒｌａｐ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ＰＣＲ：Ｇｅｎｅ，１９８９，７７：６１−６８）を用いた相同組換え法などを挙げることができるが、これらに限定されない。
上記突然変異導入やヌクレオチド配列の置換、挿入又は削除の後、遺伝子解析、又は標的遺伝子にコードされるポリペプチドの発現量若しくは活性の評価を行って、所望の変異を有する細胞を選択すれば、本発明の変異株を取得することができる。
あるいは、遺伝子又は制御領域を欠失又は不活性化する手段がＳＯＥ−ＰＣＲを用いた相同組換え法の場合、標的遺伝子ＤＮＡと置換する遺伝子欠失用ＤＮＡ断片に薬剤耐性マーカー遺伝子を組み込み、該欠失用ＤＮＡ断片を導入した細胞を薬剤を含む培地上で培養し、生育するコロニーを分離することにより、標的遺伝子又は制御領域が欠失した変異株を得ることができる。さらに、上述した遺伝子解析又はポリペプチドの発現量若しくは活性評価を行って、変異を確認してもよい。以上の手順により、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子又はこれに相当する遺伝子が欠失又は不活性化した本発明の酵母変異株を得ることができる。
あるいは、上記の手順で作製した酵母変異株におけるソフォロリピッドの生産能向上を確認することによっても、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドが欠失又は不活性化した本発明の酵母変異株を得ることができる。
（３．変異株におけるソフォロリピッド生産能の向上）
上述した配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドの欠失又は不活性化により製造された本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株は、変異前の株（親株）と比べて、ソフォロリピッド生産能が向上している。したがって、本発明の一実施形態は、ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ配列からなるポリペプチド又はこれに相当するポリペプチドを欠失又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母のソフォロリピッド生産能の向上方法であり得る。
（４．ソフォロリピッドの製造）
本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株は、ソフォロリピッド生産能が向上している。また本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株は、種々の鎖長の炭化水素鎖、脂肪酸等を基質としてソフォロリピッドを生産することができる。したがって、本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株を適切な鎖長の基質とともに培養すれば、所望の鎖長の構成脂肪酸を含むソフォロリピッドを効率よく製造することができる。したがって、本発明はまた、上記本発明のソフォロリピッド生産性酵母変異株を培養することを含む、ソフォロリピッドの製造方法を提供する。
本発明のソフォロリピッドの製造方法においては、上記本発明の変異株を、脂肪酸、脂肪酸アルキルエステル、アルカン、アルケン、アルキン、アルコール、トリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール、モノアシルグリセロール、油脂等の基質を含む培地で培養する。培養後の培地からソフォロリピッドを回収し、必要に応じて適宜精製することにより、ソフォロリピッドを製造することができる。
上記培養に用いる培地としては、炭素源、窒素源、無機塩類、及び必要に応じてアミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養素を含有する通常の培地を用いることができる。また該培地は、合成培地及び天然培地のいずれであってもよい。
上記培地に含まれる炭素源および窒素源は、培養する変異株が利用可能ないずれの種類であってもよい。炭素源の例としては、グルコース、グリセロール、フラクトース、スクロース、マルトース、マンノース、ガラクトース、澱粉加水分解物、糖蜜等の糖類；酢酸、クエン酸等の有機酸；エタノール等のアルコール類、などが挙げられる。これらの炭素源は、いずれか単独又は２種以上の組み合わせで用いることができる。窒素源の例としては、アンモニア；硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等のアンモニウム塩；硝酸塩、などが挙げられる。
上記無機塩類の例としては、リン酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等が挙げられる。上記有機微量栄養素の例としては、アミノ酸、ビタミン、脂肪酸、核酸、及びこれらを含有するペプトン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆たん白分解物等が挙げられる。生育にアミノ酸などを要求する栄養要求性変異株を使用する場合には、要求される栄養素を補添することが好ましい。
上記培地に含まれ得る基質の好ましい例としては、Ｃ１２〜２０脂肪酸及びそのアルキルエステル、Ｃ１２〜２０アルカン、Ｃ１２〜２０アルケン、Ｃ１２〜２０アルキン、Ｃ１２〜２０アルコール、Ｃ１２〜２０脂肪酸又はそのアルキルエステルを含むトリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール及びモノアシルグリセロール、ならびにＣ１２〜２０脂肪酸又はそのアルキルエステルを含む油脂が挙げられる。より好ましい例としては、Ｃ１２〜１８脂肪酸及びそのアルキルエステル、Ｃ１２〜１８アルカン、Ｃ１２〜１８アルケン、Ｃ１２〜１８アルキン、Ｃ１２〜１８アルコール、Ｃ１２〜Ｃ１８脂肪酸又はそのアルキルエステルを含むトリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール及びモノアシルグリセロール、ならびにＣ１２〜Ｃ１８脂肪酸又はそのアルキルエステルを含む油脂が挙げられる。さらに好ましい例としては、Ｃ１２〜Ｃ１８脂肪酸及びそのアルキルエステルが挙げられる。
上記基質のより詳細な例としては、限定ではないが、上記Ｃ１２〜２０脂肪酸としては、ドデカン酸（ラウリン酸）、トリデカン酸、テトラデカン酸（ミリスチン酸）、ペンタデカン酸（ペンタデシル酸）、ヘキサデカン酸（パルミチン酸）、ヘキサデセン酸、ヘプタデカン酸（マルガリン酸）、オクタデカン酸（ステアリン酸）、オクタデセン酸、オクタデカジエン酸、オクタデカントリデカエン酸、ノナデカン酸、エイコサン酸、エイコサジエン酸、エイコサトリエン酸、エイコサテトラエン酸などが挙げられ；上記Ｃ１２〜２０のアルカン、アルケン、アルキン及びアルコールとしては、ドデカン、トリデカン、テトラデカン、ペンタデカン、ヘキサデカン、ヘキサデセン、へプタデカン、オクタデカン、オクタデセン、オクタデシン、ノナデカン、エイコサン、エイコセン、エイコシンドデカノール、トリデカノール、テトラデカノール、ペンタデカノール、ヘキサデカノール、ヘキサデセナール、へプタデカノール、オクタデカノール、オクタデセノール、オクタデシノール、ノナデカノール、エイコサノールなどが挙げられ；上記Ｃ１２〜２０脂肪酸又はそのアルキルエステルを含む油脂としては、やし油、パーム油、パーム核油、オリーブ油、菜種油、米ぬか油、大豆油、ヒマシ油、マフア油などが挙げられる。
上記脂肪酸のアルキルエステルとしては、上記に挙げた脂肪酸の炭素数１〜４のアルキルエステル、好ましくはメチルエステル及びエチルエステルが挙げられる。
上記に挙げた基質は、いずれか単独又は２種以上の組み合わせで用いることができる。好ましくは、Ｃ１２〜Ｃ１８のいずれかの鎖長の脂肪酸若しくはそのアルキルエステル、又はそれらを含むトリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール、モノアシルグリセロール若しくは油脂、あるいはＣ１２〜１８のいずれかの鎖長のアルカン、アルケン、アルキン又はアルコールが使用され、より好ましくはＣ１２〜Ｃ１８のいずれかの鎖長の脂肪酸又はそのアルキルエステルが使用される。
培地中に含まれ得る上記基質の含有量（培養開始時）は、好ましくは１質量％以上、より好ましくは３質量％以上、さらに好ましくは５質量％以上で、かつ好ましくは３０質量％以下、より好ましくは２０質量％以下、さらに好ましくは１５質量％以下である。あるいは、好ましくは１〜３０質量％、１〜２０質量％、１〜１５質量％、３〜３０質量％、３〜２０質量％、３〜１５質量％、５〜３０質量％、５〜２０質量％、若しくは５〜１５質量％である。
培養の条件は、本発明の変異株によりソフォロリピッドが発酵生産される条件であればよい。培養は、好気的条件下が好ましく、通気攪拌培養、振盪培養等の一般的な方法を適用することができる。培養温度は、２０〜３３℃が好ましく、２５〜３０℃がより好ましく、２８〜３０℃がさらに好ましい。培地の初発ｐＨ（３０℃）は２〜７が好ましく、３〜６がより好ましい。培養時間は、２４時間〜２００時間程度が好ましく、５０〜２００時間がより好ましい。
上記培養では、本発明の変異株を細胞が増殖する条件下で培養して、ソフォロリピッドを発酵生産させてもよく、また、本発明の変異株が休止菌体の状態、すなわち生育及び増殖を止めた状態で培養して、ソフォロリピッドを発酵生産させてもよい。
培養後の培地からソフォロリピッドを回収する方法は、特に限定されず、公知の回収方法に従って行えばよい。例えば、酢酸エチル等を用いた溶剤抽出、分別沈殿、液液分配、カラムクロマトグラフ、高速液体クロマトグラフ等を単独又は適宜組み合わせることによって、培地中のソフォロリピッドを回収又は精製することができる。
（５．例示的実施形態）
本発明の例示的実施形態として、さらに以下の物質、製造方法、用途あるいは方法等を本明細書に開示する。ただし、本発明はこれらの実施形態に限定されない。
〔１〕配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドが欠失又は不活性化した、ソフォロリピッド生産性酵母変異株。
〔２〕好ましくは、上記配列番号２で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドが推定転写因子タンパク質である、〔１〕記載の変異株。
〔３〕好ましくは、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子、又はこれに相当する遺伝子が欠失又は不活性化している、〔１〕又は〔２〕記載の変異株。
〔４〕好ましくは、
上記配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子が、配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子であり、かつ
上記相当する遺伝子が、配列番号１で示されるヌクレオチド配列と少なくとも８０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつ上記配列番号２で示されるアミノ配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である、
〔３〕記載の変異株。
〔５〕上記配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドの発現量が、親株と比べて、好ましくは５０％以下、より好ましくは４０％以下、さらに好ましくは３０％以下、さらに好ましくは２０％以下、さらに好ましくは１０％以下、なお好ましくは５％以下に低下している、〔１〕〜〔４〕のいずれか１項記載の変異株。
〔６〕上記少なくとも８０％の同一性が、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、さらにより好ましくは９８％以上、なお好ましくは９９％以上の同一性である、〔１〕〜〔５〕のいずれか１項記載の変異株。
〔７〕上記ソフォロリピッド生産性酵母が、
好ましくは、スターメレラ属微生物であり、
より好ましくはスターメレラ・ボンビコーラである、〔１〕〜〔６〕のいずれか１項記載の変異株。
〔８〕変異前の株と比べてソフォロリピッド生産性が向上している、〔１〕〜〔７〕のいずれか１項記載の変異株。
〔９〕ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドを欠失又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母変異株の製造方法。
〔１０〕ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドを欠失又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母のソフォロリピッド生産能の向上方法。
〔１１〕好ましくは、上記配列番号２で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドが推定転写因子タンパク質である、〔９〕又は〔１０〕記載の方法。
〔１２〕好ましくは、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子、又はこれに相当する遺伝子を欠失又は不活性化することを含む、〔９〕〜〔１１〕のいずれか１項記載の方法。
〔１３〕好ましくは、
上記配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子が、配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子であり、かつ
上記相当する遺伝子が、配列番号１で示されるヌクレオチド配列と少なくとも８０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつ上記配列番号２で示されるアミノ配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である、
〔１２〕記載の方法。
〔１４〕上記ソフォロリピッド生産性酵母変異株が、上記配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドの発現量が、親株と比べて、好ましくは５０％以下、より好ましくは４０％以下、さらに好ましくは３０％以下、さらに好ましくは２０％以下、さらに好ましくは１０％以下、なお好ましくは５％以下に低下している株である、〔９〕、〔１１〕〜〔１３〕のいずれか１項記載の方法。
〔１５〕上記少なくとも８０％の同一性が、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、さらにより好ましくは９８％以上、なお好ましくは９９％以上の同一性である、〔９〕〜〔１４〕のいずれか１項記載の方法。
〔１６〕上記ソフォロリピッド生産性酵母が、
好ましくは、スターメレラ属微生物であり、
より好ましくはスターメレラ・ボンビコーラである、〔９〕〜〔１５〕のいずれか１項記載の方法。
〔１７〕上記ソフォロリピッド生産性酵母変異株が、ソフォロリピッド生産性が向上した変異株である、〔９〕、〔１１〕〜〔１６〕のいずれか１項記載の方法。
〔１８〕上記〔１〕〜〔８〕のいずれか１項記載のソフォロリピッド生産性酵母変異株を培養することを含む、ソフォロリピッドの製造方法。
〔１９〕好ましくは、上記培養のための培地が下記基質を含有する、〔１８〕記載の方法：
Ｃ１２〜Ｃ２０脂肪酸及びそのアルキルエステル、Ｃ１２〜Ｃ２０アルカン、Ｃ１２〜Ｃ２０アルケン、Ｃ１２〜Ｃ２０アルキン、Ｃ１２〜Ｃ２０アルコール、Ｃ１２〜Ｃ２０脂肪酸又はそのアルキルエステルを含むトリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール及びモノアシルグリセロール、ならびにＣ１２〜Ｃ２０脂肪酸又はそのアルキルエステルを含む油脂からなる群より選択される少なくとも１種の基質；
Ｃ１２〜Ｃ１８脂肪酸及びそのアルキルエステル、Ｃ１２〜Ｃ１８アルカン、Ｃ１２〜Ｃ１８アルケン、Ｃ１２〜Ｃ１８アルキン、Ｃ１２〜Ｃ１８アルコール、Ｃ１２〜Ｃ１８脂肪酸又はそのアルキルエステルを含むトリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール及びモノアシルグリセロール、ならびにＣ１２〜Ｃ１８脂肪酸又はそのアルキルエステルを含む油脂からなる群より選択される少なくとも１種の基質；
又は、
Ｃ１２〜１８脂肪酸及びそのアルキルエステルからなる群より選択される少なくとも１種の基質。
〔２０〕上記培地中の基質の含有量が、
好ましくは、１質量％以上、より好ましくは３質量％以上、さらに好ましくは５質量％以上で、かつ好ましくは３０質量％以下、より好ましくは２０質量％以下、さらに好ましくは１５質量％以下であるか、又は
好ましくは、１〜３０質量％、１〜２０質量％、１〜１５質量％、３〜３０質量％、３〜２０質量％、３〜１５質量％、５〜３０質量％、５〜２０質量％、若しくは５〜１５質量％である、〔１９〕記載の方法。
〔２１〕好ましくは、上記培養後の培地からソフォロリピッドを回収することをさらに含む、〔１８〕〜〔２０〕のいずれか１項記載の方法。
以下、実施例を示し、本発明をより具体的に説明する。
実施例１ 遺伝子欠損変異株の作製
（１）遺伝子欠失用断片の構築
ＳＯＥ−ＰＣＲ法を用いた相同組換え法により、配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子を欠損した変異株を作製した。
形質転換の選抜にはハイグロマイシン耐性遺伝子（配列番号３）を使用した。ハイグロマイシン耐性遺伝子断片は、ハイグロマイシン耐性遺伝子を有するプラスミドｌｏｘＰ−ＰＧＫ−ｇｂ２−ｈｙｇｒｏ−ｌｏｘＰ（Ｇｅｎｅ Ｂｒｉｄｇｅｓ）をテンプレートとして、配列番号８と９のプライマーを用いてＰＣＲにより調製した。ＵＲＡ３遺伝子のプロモーター及びターミネーターの断片は、スターメレラ・ボンビコーラのゲノムをテンプレートとして、それぞれ配列番号１０と１１のプライマー、及び配列番号１２と１３のプライマーを用いてＰＣＲにより調製した。ＳＯＥ−ＰＣＲにて、ハイグロマイシン耐性遺伝子断片をＵＲＡ３遺伝子のプロモーター断片及びターミネーター断片に連結した。
配列番号１に示す遺伝子を欠損させるための遺伝子欠失用断片を調製した。スターメレラ・ボンビコーラのゲノムをテンプレートとして、配列番号１に示す遺伝子の上流領域の断片を配列番号４と５のプライマーを用いて、下流領域の断片を配列番号６と７のプライマーを用いて、それぞれＰＣＲにより調製した。また、プロモーター断片及びターミネーターを含むハイグロマイシン耐性遺伝子断片を、上記ＳＯＥ−ＰＣＲ産物をテンプレートに、配列番号１０と１３のプライマーを用いたＰＣＲにより調製した。得られた上流領域断片と下流領域断片、及びハイグロマイシン耐性遺伝子断片の３断片を、ＳＯＥ−ＰＣＲにて連結した。得られた断片を、配列番号１に示す遺伝子の欠失用断片として使用した。
（２）遺伝子欠損株の作製
スターメレラ・ボンビコーラを、５ｍＬのＹＰＤ Ｂｒｏｔｈを含む１００ｍＬ形試験管に一白金耳植菌し、３０℃、２５０ｒｐｍで４８時間培養した。得られた培養液を、ＹＰＤ培地５０ｍＬを含む坂口フラスコに１％（ｖ／ｖ）植菌し、３０℃、１２０ｒｐｍでＯＤ６００＝１〜２になるまで培養した。増殖した菌体を３０００ｒｐｍ、４℃で５分間遠心して集菌した後、氷上で冷やした滅菌水２０ｍＬで２回洗浄した。菌体を氷冷した１ｍＬの１Ｍソルビトール溶液に懸濁し、５０００ｒｐｍ、４℃で５分間遠心した。上清を捨てたのち、４００μＬの１Ｍソルビトール溶液を加えて氷上におき、ピペッティングで懸濁した。この酵母懸濁液を５０μＬずつ分注し、形質転換用のＤＮＡ溶液（配列番号１に示す遺伝子の欠失用断片を含む）を１μｇ加え、氷冷した０．２ｃｍギャップのチャンバーに移したのち、ＧＥＮＥ ＰＵＬＳＥＲ ＩＩ（ＢＩＯ−ＲＡＤ）を用いて２５μＦ、３５０Ω、２．５ｋＶのパルスをかけた。パルス印加した液に氷冷した１Ｍソルビトール入りＹＰＤ Ｂｒｏｔｈを加えて１．５ｍＬ容チューブに移し、３０℃で２時間振とうした後、５０００ｒｐｍ、４℃で５分間遠心して菌体を回収した。回収した菌体を２００μＬの１Ｍソルビトール溶液に再懸濁して１００μＬずつ選択培地に塗抹し、３０℃で約１週間培養した。選択培地には、イーストエクストラクト１％（ｗ／ｖ）、ペプトン２％（ｗ／ｖ）、グルコース２％（ｗ／ｖ）、ハイグロマイシン５００ｐｐｍを含む寒天培地を使用した。生育したコロニーをコロニーＰＣＲにかけ、欠損標的遺伝子の領域から増幅される配列長が変化していることを確認して、配列番号１に示す遺伝子の欠損した変異株（Δｓｅｑ１株）を得た。
実施例２ Δｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産性
（１）変異株の培養
予め滅菌した酵母エキス１％（ｗ／ｖ）、ペプトン２％（ｗ／ｖ）、グルコース２％（ｗ／ｖ）を含む培地を大型試験管に５ｍＬ注入し、これへ実施例１で得られたΔｓｅｑ１株及びそれらの親株のいずれかを一白金耳接種し、３０℃、２５０ｒｐｍにて４８時間振とう培養を行い、これを種培養液とした。上記種培養液を酵母エキス２％（ｗ／ｖ）、パルミチン酸エチル５％（ｗ／ｖ）、グルコース１２．５％（ｗ／ｖ）を含む混合培地５ｍＬに１％（ｖ／ｖ）となるように接種し、３０℃、２５０ｒｐｍにて９６時間振とう培養を行った。
（２）ソフォロリピッド生産性評価
培養終了後、培養液中のパルミチン酸エチル（ＰＥ）とソフォロリピッド（ＳＬ）を抽出し、その量を測定した。ＰＥの抽出では、まず（１）で培養した大型試験管中の培養液全量をファルコンチューブ（グライナー）に移し、次いで該大型試験管にヘキサンを４ｍＬ加えボルテックスで５秒間撹拌し、その全量を同じファルコンチューブに移した。ボルテックスを５秒行って液をよく混合した後、３０００ｒｐｍ、２５℃、５分間遠心分離した。上清のヘキサン画分をパスツールピペットにてガラスチューブに全量回収した。残った液に対して上記と同じヘキサン抽出をもう一度繰り返すことで、ＰＥ全量を抽出した。ＳＬの抽出では、（１）で培養した大型試験管に酢酸エチル６ｍＬを加え５秒間ボルテックスし、全量をファルコンチューブへ回収した。その後、３０００ｒｐｍ、２５℃、５分間遠心分離し、上清の酢酸エチル画分をパスツールピペットにて新しいガラスチューブに全量回収した。
回収したヘキサン画分又は酢酸エチル画分から、窒素ガスの吹き付けによりヘキサン又は酢酸エチルを揮発させ、溶存していたＰＥ又はＳＬを抽出した。抽出したＰＥ又はＳＬを含むガラスチューブの重量と、回収前のガラスチューブの重量との差を、培養液中のＰＥ量又はＳＬ量として算出した。
結果を図１に示す。また、親株のソフォロリピッド生産性を１００％とした場合のΔｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産性の相対値を表２に示す。Δｓｅｑ１株は親株と比べてソフォロリピッド生産性が向上した。
実施例３ 異なるパルミチン酸エチル濃度条件下におけるΔｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産性
実施例２と同様の手順で、Δｓｅｑ１株及びそれらの親株を培養し、培養液中のパルミチン酸エチルとソフォロリピッドの量を測定した。ただし、混合培地中のパルミチン酸エチルの量は、０、１、５、又は１０％（ｗ／ｖ）に調整した。
結果を図２に示す。また、親株における各パルミチン酸エチルの濃度におけるソフォロリピッド生産性を１００％とした場合のΔｓｅｑ１株におけるソフォロリピッド生産性の相対値を表３に示す。Δｓｅｑ１株は、ソフォロリピッドの基質となるパルミチン酸エチルの濃度に関わらず、親株と比べてソフォロリピッド生産性が向上していた。さらにΔｓｅｑ１株は、パルミチン酸エチルが添加されていない培地においても、親株よりも高いホロリピッド生産性を示した。
実施例４ Ｊａｒ Ｆｅｒｍｅｎｔｏｒ培養におけるΔｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産性
予め滅菌した酵母エキス２％（ｗ／ｖ）、グルコース１％（ｗ／ｖ）を含む培地を坂口フラスコ３０ｍＬへ注入し、実施例１で得られたΔｓｅｑ１株又は親株を一白金耳接種し、３０℃、１２０ｒｐｍにて４８時間往復振とう培養を行い、これを種培養液とした。酵母エキス２％（ｗ／ｖ）、パルミチン酸エチル５％（ｗ／ｖ）、グルコース１２．５％（ｗ／ｖ）、尿素０．１％（ｗ／ｖ）を含む混合培地１２００ｍＬを２Ｌ ＪａｒＦｅｒｍｅｎｔｏｒ培養器に投入し、ここに上記種培養液を１％（ｖ／ｖ）となるように接種し、３０℃、８００ｒｐｍにて１６８時間培養を行った。培養９６時間でパルミチン酸エチル５％（ｗ／ｖ）及びグルコース１０％（ｗ／ｖ）を培養器に流加した。
適時培養液をサンプリングし、培養液中のパルミチン酸エチル（ＰＥ）とソフォロリピッド（ＳＬ）の量を測定した。ＰＥ又はＳＬの量の測定では、培養液をファルコンチューブ（グライナー）に５ｍＬほど回収した後、実施例２と同様の手順でＰＥ又はＳＬの全量をガラスチューブに回収し、回収前後のガラスチューブの重量差より培養液ｋｇあたりのＰＥ又はＳＬの量を算出した。
結果を図３に示す。また、培養１６８時間目の親株のソフォロリピッド生産性を１００％とした場合の、同培養時間におけるΔｓｅｑ１株のソフォロリピッド生産性の相対値を表４に示す。Δｓｅｑ１株は、Ｊａｒ Ｆｅｒｍｅｎｔｏｒを用いた大量培養の場合でも、親株と比べてソフォロリピッド生産性が向上していた。

Claims (22)

  1. 配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドが欠失又は不活性化した、ソフォロリピッド生産性酵母変異株。
  2. 配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子、又はこれに相当する遺伝子が欠失又は不活性化している、請求項１記載の変異株。
  3. 配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子、又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつ前記配列番号２で示されるアミノ配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子が欠失又は不活性化している、請求項２記載の変異株。
  4. 前記配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドの発現量が、親株と比べて５０％以下に低下している、請求項１〜３のいずれか１項記載の変異株。
  5. 前記少なくとも９０％の同一性が９５％以上の同一性である、請求項１〜４のいずれか１項記載の変異株。
  6. 前記ソフォロリピッド生産性酵母がスターメレラ属微生物である、請求項１〜５のいずれか１項記載の変異株。
  7. ソフォロリピッド生産性が向上している、請求項１〜６のいずれか１項記載の変異株。
  8. ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドを欠失又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母変異株の製造方法。
  9. 配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子又はこれに相当する遺伝子を欠失又は不活性化することを含む、請求項８記載の方法。
  10. 配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子、又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつ前記配列番号２で示されるアミノ配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子を欠失又は不活性化することを含む、請求項９記載の方法。
  11. 前記ソフォロリピッド生産性酵母変異株が、前記配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドの発現量が、親株と比べて５０％以下に低下している株である、請求項８〜１０のいずれか１項記載の方法。
  12. 前記少なくとも９０％の同一性が９５％以上の同一性である、請求項８〜１１のいずれか１項記載の方法。
  13. 前記ソフォロリピッド生産性酵母がスターメレラ属微生物である、請求項８〜１２のいずれか１項記載の方法。
  14. 前記ソフォロリピッド生産性酵母変異株が、ソフォロリピッド生産性が向上した変異株である、請求項８〜１３のいずれか１項記載の方法。
  15. ソフォロリピッド生産性酵母において、配列番号２で示されるアミノ酸配列又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドを欠失又は不活性化することを含む、ソフォロリピッド生産性酵母のソフォロリピッド生産能の向上方法。
  16. 配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子又はこれに相当する遺伝子を欠失又は不活性化することを含む、請求項１５記載の方法。
  17. 配列番号１で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子、又は当該配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつ前記配列番号２で示されるアミノ配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子を欠失又は不活性化することを含む、請求項１６記載の方法。
  18. 前記少なくとも９０％の同一性が９５％以上の同一性である、請求項１５〜１７のいずれか１項記載の方法。
  19. 前記ソフォロリピッド生産性酵母がスターメレラ属微生物である、請求項１５〜１８のいずれか１項記載の方法。
  20. 請求項１〜７のいずれか１項記載のソフォロリピッド生産性酵母変異株を培養することを含む、ソフォロリピッドの製造方法。
  21. 前記培養のための培地が、Ｃ１２〜Ｃ２０脂肪酸及びそのアルキルエステル、Ｃ１２〜Ｃ２０アルカン、Ｃ１２〜Ｃ２０アルケン、Ｃ１２〜Ｃ２０アルキン、Ｃ１２〜Ｃ２０アルコール、ならびにＣ１２〜Ｃ２０脂肪酸又はそのアルキルエステルを含むトリアシルグリセロール、ジアシルグリセロール、モノアシルグリセロール及び油脂からなる群より選択される少なくとも１種の基質を含有する、請求項２０記載の方法。
  22. 前記培地中の前記基質の含有量が、培養開始時において１〜３０質量％である、請求項２１記載の方法。
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Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP7268386B2 (ja) * 2019-02-13 2023-05-08 マックス株式会社 結束機
CN117025610A (zh) * 2023-06-28 2023-11-10 百葵锐(深圳)生物科技有限公司 熊蜂生假丝酵母诱导型Picl启动子及其应用

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4714377B2 (ja) 2001-06-29 2011-06-29 サラヤ株式会社 ソホロースリピッドの精製方法
US8530206B2 (en) 2008-05-21 2013-09-10 Ecover Coordination Center N.V. Method for the production of medium-chain sophorolipids
DE102010014680A1 (de) * 2009-11-18 2011-08-18 Evonik Degussa GmbH, 45128 Zellen, Nukleinsäuren, Enzyme und deren Verwendung sowie Verfahren zur Herstellung von Sophorolipiden
WO2012080116A1 (en) * 2010-12-15 2012-06-21 Universiteit Gent Producing unacetylated sophorolipids by fermentation
JP6171229B2 (ja) 2013-02-12 2017-08-02 アライドカーボンソリューションズ株式会社 ソホロリピッドの製造方法および該製造方法により得られたソホロリピッドを含有するソホロリピッド含有組成物
WO2015028278A1 (en) * 2013-08-26 2015-03-05 Universiteit Gent Methods to produce bolaamphiphilic glycolipids

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