JPWO2014057997A1 - 初期化ペプチド及びその用途 - Google Patents
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Abstract
Description
しかしながら、報告された初期化因子の組み合わせがなぜ体細胞を人工多能性幹細胞に誘導することを可能にするのか明らかでないし、その作用機序についても明らかにされていない。
ここで「多能性スフェロイド細胞」とは、初期化ペプチドを分化細胞内に導入することによって得られる、多能性幹細胞としての性質をもつスフェロイド形成能のある細胞をいう。核移行シグナルを導入する分化細胞により、その性質は異なるが、形成されたスフェロイドは、多能性幹細胞マーカーであるアルカリフォスファターゼ、抗SSEA-3抗体、抗Tra-1-81抗体、抗Oct3/4抗体、抗Sox2抗体、 抗Nanog抗体の陽性像を示し、初期化された多能性状態を呈する。
[1] 分化細胞に初期化ペプチドを導入することを含む、多能性スフェロイド細胞を製造する方法。
[2] 初期化ペプチドが核移行シグナルを有するペプチドである[1]記載の方法。
[3] 初期化ペプチドが核移行シグナルおよび細胞膜透過機能を持つペプチドである[1]に記載の方法。
[4] 初期化ペプチドを含んでなる培地中で分化細胞を培養することにより、分化細胞に初期化ペプチドを導入する、[1]に記載の方法。
[5] リバーストランスフェクション法を用いて分化細胞に初期化ペプチドを導入する、[1]に記載の方法。
[6] 多能性スフェロイドがペリサイトマーカー陽性である細胞である、[1]〜[5]のいずれかに記載の方法。
[7] [1]〜[6]のいずれかに記載の方法で得られる多能性スフェロイド細胞。
[8] 初期化ペプチドを含んでなる、分化細胞からの多能性スフェロイド細胞誘導製剤。
[9] 初期化ペプチドが核移行シグナルを有するペプチドである[8]に記載の製剤。
[10] [7]に記載の多能性スフェロイド細胞を含む医薬組成物。
[11] 初期化ペプチドを含む、組織の損傷に伴う疾患の治療剤。
[12] 組織の損傷に伴う疾患において、初期化ペプチドを、組織の損傷部位に投与することを含む、当該疾患の治療方法。
[13] 組織の損傷に伴う疾患の治療に使用するための、初期化ペプチド。
[14] [7]記載の多能性スフェロイド細胞を分化培地で培養することを含む、分化細胞の製造方法。
[15] [14]記載の方法により得られる分化細胞。
また、例えば、単純組成のサイトカイン添加低血清培地で培養を続けると約2週間で、抗プロインスリン抗体、抗c-peptide抗体での陽性細胞が得られる。通常、インスリン産生β細胞作製には、ES細胞やiPS細胞から胚様体(EB)を作製した後、各種濃度のブドウ糖、複数のサイトカイン、薬剤を加えた数種類の培地で、数ステップ、1〜2ヶ月の経過で分化誘導する方法が取られているが、今回発明した方法によれば、1〜2週間という短期間で高率に、多能性スフェロイドからインスリン産生β細胞の作製が可能となる。
このようにして得られた細胞は、糖尿病治療用の自家または他家のインスリンを分泌するβ細胞や糖尿病治療薬のスクリーニング用に用いることができる。
1. 定義
本明細書中で使用される用語は、以下の意味を包含する。その他の用語は、当業界で一般的に使用される意味を含むことが意図されている。
本発明の多能性スフェロイド細胞は、多能性(pluripotency)を持つ細胞であり、以下の特性を有する。
(1) Nanog、Oct3/4、SSEA-3、Tra−1−81及びSox2等の多能性マーカー(Pluripotent marker)を発現する。
(2) 1細胞から増殖し、自己のクローンを作り続けるクローナリティー(Clonality)を有する。
(3) 自己複製(セルフリニューアル)能を有する。
(4) 3胚葉系(内胚葉系、中胚葉系及び外胚葉系)へin vitro及びin vivoで分化し得る。
(5) マウスの精巣や皮下に移植した場合、腫瘍を形成しない。
(6) アルカリフォスファターゼ染色で陽性となる。
(7) 細胞が多数凝集して3次元状態になったものであり、接着細胞が初期化ペプチドを導入することによりスフェロイド状に変化し、多分化能を有する細胞となる。
また、本発明の多能性スフェロイド細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪由来間葉系幹細胞等、神経幹細胞の一般的な体性幹細胞とは異なるが、MUSE細胞と類似の性質を有する。
(8) 増殖速度が比較的緩やかで、分裂周期が1日以上、例えば1.2〜1.5日である。ただし、ES細胞やiPS細胞が示すような無限増殖は示さない。
(9) 増殖の際に非対称分裂を伴う。
(10) 核型は正常である。
成体組織幹細胞とされる各組織に分散する多能性幹細胞には、代表的なものとして、間葉系幹細胞MSCや脂肪組織由来幹細胞があげられるが、その他にSKPs(skin-derived precursor cells; 皮膚由来前駆細胞)、毛包幹細胞(HFSC; Hair follicle stem cell)も存在する。
最近では、全身各組織に入り込む大小の血管の周囲に存在する周皮細胞(ペリサイト(Pericytes))が、間葉系幹細胞や脂肪由来幹細胞等の多能性幹細胞のソースであり、全身各組織の再生・修復に深く関与しているのではないかと考えられている。
ここで、本発明の多能性スフェロイド細胞が、CD105およびCD146の両マーカーがダブル陽性であると言うことは、初期化ペプチドによって作成された多能性スフェロイドおよび細胞は、すでに各種臨床試験の段階に入っている間葉系幹細胞の臨床応用のように各種組織における再生・修復の細胞ソースとして活用でき、その間葉系幹細胞のオリジンと考えられる周皮細胞の性格も有するとなれば、さらに生理的な組織再生に応用できる。
リバーストランスフェクション法を用いるときは、その量は初期化ペプチドの種類、分化細胞の種類、培地の組成等の培養条件により異なるが、固相表面面積あたり概ね1 μg/cm2〜50 μg/cm2の濃度で加える。好ましくは2.5 μg/cm2〜10 μg/cm2である。
体細胞の培養は、例えばDMEM(Dulbecco’s modified Eagle medium)、MEM (minimum essential medium)、α-MEM(minimum essential medium alpha modification)、Ham’s F12、RPMI1640、それらの混合培地などの基本培地に、血清(10% FBS等)、抗生物質(penicillin、streptomycin等)、ピルビン酸Na、グルタミン、非必須アミノ酸、L-デキストロースなどの物質を適宜選択して含有させた培地上で約37℃の温度、5% CO2存在下にて行うことができる。
体細胞が由来する哺乳動物は、特に制限されずいかなる種類の動物も包含する。好ましい哺乳動物は、霊長類(例えばヒト、サル、チンパンジー等)、げっ歯類(例えばマウス、ラット、ハムスター、モルモット等)、及び有蹄類(ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ等)、ペット動物(イヌ、ネコ等)から選択され、さらに好ましい哺乳動物はヒト及びマウスである。
体細胞には、非限定的に、胎児(仔)期の体細胞、新生児(仔)の体細胞、及び成熟した体細胞のいずれも包含されるし、また、初代培養細胞、継代細胞、及び株化細胞のいずれも包含されるし、さらにまた、組織幹細胞や組織前駆細胞も包含される。
具体的には、体細胞は、非限定的に、例えば(1)神経幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、歯髄幹細胞等の組織幹細胞(体性幹細胞)、(2)組織前駆細胞、(3)リンパ球、上皮細胞、内皮細胞、筋肉細胞、線維芽細胞(皮膚細胞等)、毛細胞、肝細胞、胃粘膜細胞、腸細胞、脾細胞、膵細胞(膵外分泌細胞等)、脳細胞、肺細胞、腎細胞、皮膚細胞等の分化した細胞などを包含する。
また、例えばヒストンデアセチラーゼ(HDAC)阻害剤、例えばバルプロ酸(VPA)(Huangfu, D.ら,Nat. Biotechnol., 26(7):795-797 (2008))、ヒストンメチルトランスフェラーゼ(G9a)阻害剤、例えばBIX-01294 (BIX) (Shi, Y.ら,Cell Stem Cell, 2:525-528 (2008);Kubicek, S.ら,Mol. Cell 25:473-481 (2007);Shi, Y.ら, Cell Stem Cell, 3, 568-574 (2008))、DNAメチル化酵素(Dnmt)阻害剤、例えば5’-アザシチジン(Huangfu, D.ら,上記)などの低分子化合物が含まれる。またp53に対するshRNAやsiRNAなどのp53阻害剤や、UTF1を細胞内に導入してもよい(Yang Zhaoら, Cell Stem Cell, 3, pp475-479, 2008)。他にもシグナル伝達に関して、Wntシグナルの活性化(Marson A.ら, Cell Stem Cell, 3, pp132-135, 2008)や、マイトジェン活性化プロテインキナーゼおよびグリコーゲン合成酵素キナーゼ-3シグナル伝達の阻害(Silva J.ら, PloS Biology, 6, pp2237-2247 2008)など、さらにはES細胞特異的miRNA (例えば、miR-302-367クラスター (Mol. Cell Biol. Doi:10. 1128/MCB. 00398-08), miR-302 (RNA 14:1-10 (2008)), miR-291-3p, Mir-294及びmiR-295 (Nat. Biotechnol. 27:459-461 (2009))の導入などによっても、多能性スフェロイド細胞の樹立効率を改善することができる。
ヒト成人線維芽細胞株TIG113を、10%ウシ胎児血清を含むEMEMを主体とした培地中、37℃、5% CO2、加湿条件下において1x107細胞数に到達するまで培養した。リバーストランスフェクション用のプレートは、表1に示された各ペプチドを12ウェルプレートのそれぞれのウェルに30μg/ウェルの濃度でコーティングした後、風乾によって固相化することで準備した。増殖したTIG113をCMF−PBSで洗浄した後、0.25% トリプシン溶液で37℃、10−15分インキュベートすることで細胞を解離し、遠心とPBSによる洗浄を2回繰り返した後iPS培地(リプロセル社製)に懸濁した。その細胞懸濁液を用いて2x104細胞数のヒト線維芽細胞を、リバーストランスフェクション用のプレートに播種した。リバーストランスフェクション培地として、10%ウシ胎児血清を含みbFGFを含まないiPS培地を用いた。形成されたESコロニー様スフェロイド数を7−10日後に計測しスフェロイド形成度を判定した(表1)。H11,H16,H29のペプチドを用いた実験ではスフェロイドを形成する細胞の割合を計測した。
1)gp41のアミノ酸;HIVgp41=GALFLGFLGAAGSTMGA(配列番号21)が変異するとスフェロイド形成能が無くなることがH1−H4の実験結果から分かった。よってHIVgp41の細胞膜透過機能はスフェロイド形成に重要である。
2)H13にスフェロイド形成能がない。よってHIVgp41の細胞膜透過機能だけではスフェロイド形成はしない。
3)H18(SV40 Large T antigen NLS)のみではスフェロイド形成しない。よって核膜貫通機能だけではスフェロイド形成はしない。
4)H13とH18を単純に一緒に固相化した場合スフェロイド形成される。よってHIVgp41ペプチドとSV40 Large T antigen NLSペプチドが同時に作動することがスフェロイド形成に重要である。
5)細胞膜貫通機能および核膜貫通機能があるH16(penetratin)は、単独でスフェロイド形成が認められた。
6)H29にスフェロイド形成能がある。よってH2B NLSにもスフェロイド形成能がある。
7)スフェロイド形成に参加する細胞数はH11,H16,H29では80−90%以上である。
結論
細胞膜透過機能と核膜貫通機能があるペプチドやペプチドの組み合わせにスフェロイド形成活性がある。
実施例1において、初期化ペプチドを分化細胞に導入することにより得られた多能性スフェロイド細胞についての未分化、神経マーカー等の発現を調べた。
表1で示したH11ペプチドを用い、実施例1で示した方法により細胞をスフェロイド形成させ、1% H2O2を含むメタノールを用い室温で5分間でインキュベートして細胞を固定した。その細胞をPBSで5回洗浄後、5% FBS/0.05% ゼラチン/3% スキムミルク/1% BSAを含むPBS(以下ブロックエース)で室温中1〜2時間ブロッキングした。さらにその細胞をブロックエースに適宜希釈された表2に示される1次抗体と室温2時間反応させた。そしてその細胞をPBSで5回洗浄した後、HPR標識された二次抗体をブロックエースに適宜希釈し室温1時間反応させた。最後にその細胞をPBSで5回洗浄した後、Peroxidase Stain DAB Kit &エンハンサー(ナカライテスク)のプロトコールに従って抗原を可視化した。
アルカリフォスファターゼ染色のため、前記方法で固定した細胞をBCIP/NBT Color Development Substrate(Promega)を用いて室温で30分インキュベートした。PBSで5回洗浄することで反応を停止させた。
その結果、該細胞は、多能性マーカーであるアルカリフォスファターゼ,Oct3/4,Sox2,Nanog,SSEA−3,Tra−1−81を発現していることを確認した。培養期間が長くなると、神経幹細胞マーカーのマーカーであるネスチン、神経マーカーであるニューロフィラメント160,ベータIIIチューブリン,MAP2,GFAPが発現していることを確認した。さらに、インスリン産生細胞マーカーであるプロインシュリン,C−ペプチドも発現していることを確認した。
結論
当該スフェロイド形成細胞は、各種マーカー発現において対応する公知細胞は存在せず、新規細胞である。
実施例1と同様の方法を用いて、ヒト線維芽細胞(倉敷紡績社製)にH11のペプチドを導入した。細胞は、上皮-間葉細胞分化転換様の変化を示し、最終的にはスフェロイドを形成した。
調製したスフェロイドについて、実施例2の方法で多能性マーカー及び分化マーカーの発現解析を行った。その結果、アルカリフォスファターゼ、SSEA−3、TRA−1−61、Oct3/4、Sox2、Nanogの多能性マーカーは陽性であった。さらに、培養を続けることにより神経幹細胞マーカーであるネスチン、神経マーカーであるニューロフィラメント160,ベータIIIチューブリン,MAP2,GFAPが発現していることを確認した。さらに、インスリン産生細胞マーカーであるプロインシュリン,C−ペプチドも発現していることを確認した。
また、アルファフェトプロテインおよびアルブミンの発現も確認した。さらにオイルレッドO染色法でも染まり、脂肪組織にも分化していることが分かった。
実施例1と同様の方法で、BHK21、A549、H293細胞、マウスフィーダー細胞(コスモバイオ社:RCHEFC003)、ウシ血管内皮細胞(東洋紡社:CAB300K05)、ブタ血管内皮細胞(東洋紡社:CAP300K05)にH11のペプチドを導入した。いずれの細胞もスフェロイドを形成し、アルカリフォスファターゼ、SSEA-3陽性の細胞を得られた。
実施例1において、初期化ペプチドを分化細胞に導入することにより得られた多能性スフェロイド細胞についての未分化、神経マーカー等の発現を調べた。
表1で示したH11ペプチドを用い、実施例1で示した方法により細胞をスフェロイド形成させ、1% H2O2を含むメタノールを用い、室温で5分間インキュベートして細胞を固定した。
表3記載の抗体を用いて、添付文書に従い染色した。2次抗体としてHRP標識ヤギ抗マウスIgG抗体(Promega製Goat Anti-Mouse IgG (H+L), HRP Conjugate)を用いた。
その結果、間葉系幹細胞のマーカーCD105及び,周皮細胞PericytesのマーカーであるCD146がともに陽性であった。血管内皮細胞マーカーであるCD31に関しては陰性であった。
Claims (15)
- 分化細胞に初期化ペプチドを導入することを含む、多能性スフェロイド細胞を製造する方法。
- 初期化ペプチドが核移行シグナルを有するペプチドである、請求項1に記載の方法。
- 初期化ペプチドが核移行シグナルおよび細胞膜透過機能を持つペプチドである、請求項1に記載の方法。
- 初期化ペプチドを含んでなる培地中で分化細胞を培養することにより、分化細胞に初期化ペプチドを導入する、請求項1に記載の方法。
- リバーストランスフェクション法を用いて分化細胞に初期化ペプチドを導入する、請求項1に記載の方法。
- 多能性スフェロイドがペリサイトマーカー陽性である細胞である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法で得られる多能性スフェロイド細胞。
- 初期化ペプチドを含んでなる、分化細胞からの多能性スフェロイド細胞誘導製剤。
- 初期化ペプチドが核移行シグナルを有するペプチドである、請求項8に記載の製剤。
- 請求項7に記載の多能性スフェロイド細胞を含む医薬組成物。
- 初期化ペプチドを含む、組織の損傷に伴う疾患の治療剤。
- 組織の損傷に伴う疾患において、初期化ペプチドを、組織の損傷部位に投与することを含む、当該疾患の治療方法。
- 組織の損傷に伴う疾患の治療に使用するための、初期化ペプチド。
- 請求項7に記載の多能性スフェロイド細胞を分化培地で培養することを含む、分化細胞の製造方法。
- 請求項14に記載の方法により得られる分化細胞。
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