JPWO2010101158A1 - クロストリジウムセルロボランス由来新規遺伝子及びその利用 - Google Patents
クロストリジウムセルロボランス由来新規遺伝子及びその利用 Download PDFInfo
- Publication number
- JPWO2010101158A1 JPWO2010101158A1 JP2011502768A JP2011502768A JPWO2010101158A1 JP WO2010101158 A1 JPWO2010101158 A1 JP WO2010101158A1 JP 2011502768 A JP2011502768 A JP 2011502768A JP 2011502768 A JP2011502768 A JP 2011502768A JP WO2010101158 A1 JPWO2010101158 A1 JP WO2010101158A1
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- seq
- base sequence
- activity
- amino acid
- protein
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2437—Cellulases (3.2.1.4; 3.2.1.74; 3.2.1.91; 3.2.1.150)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
- C07K14/33—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Clostridium (G)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2445—Beta-glucosidase (3.2.1.21)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2468—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1) acting on beta-galactose-glycoside bonds, e.g. carrageenases (3.2.1.83; 3.2.1.157); beta-agarase (3.2.1.81)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2477—Hemicellulases not provided in a preceding group
- C12N9/248—Xylanases
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2477—Hemicellulases not provided in a preceding group
- C12N9/248—Xylanases
- C12N9/2482—Endo-1,4-beta-xylanase (3.2.1.8)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2477—Hemicellulases not provided in a preceding group
- C12N9/2488—Mannanases
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2477—Hemicellulases not provided in a preceding group
- C12N9/2488—Mannanases
- C12N9/2491—Beta-mannosidase (3.2.1.25), i.e. mannanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage
- C12P7/065—Ethanol, i.e. non-beverage with microorganisms other than yeasts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage
- C12P7/08—Ethanol, i.e. non-beverage produced as by-product or from waste or cellulosic material substrate
- C12P7/10—Ethanol, i.e. non-beverage produced as by-product or from waste or cellulosic material substrate substrate containing cellulosic material
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01004—Cellulase (3.2.1.4), i.e. endo-1,4-beta-glucanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01008—Endo-1,4-beta-xylanase (3.2.1.8)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01021—Beta-glucosidase (3.2.1.21)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01023—Beta-galactosidase (3.2.1.23), i.e. exo-(1-->4)-beta-D-galactanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01024—Alpha-mannosidase (3.2.1.24)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01025—Beta-mannosidase (3.2.1.25), i.e. mannanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01032—Xylan endo-1,3-beta-xylosidase (3.2.1.32), i.e. endo-1-3-beta-xylanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01037—Xylan 1,4-beta-xylosidase (3.2.1.37)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01055—Alpha-N-arabinofuranosidase (3.2.1.55)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01072—Xylan 1,3-beta-xylosidase (3.2.1.72)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y402/00—Carbon-oxygen lyases (4.2)
- C12Y402/02—Carbon-oxygen lyases (4.2) acting on polysaccharides (4.2.2)
- C12Y402/02002—Pectate lyase (4.2.2.2)
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
このDNAは、配列番号188、192、196、197、198、199、200、201のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又はこのアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、機能未知のタンパク質、機能未知ドメイン、細胞表面タンパク質、セルロソームタンパク質 ドックリン タイプI又はCBM3−SLH−Cohタンパク質(Cellulose−binding Protein BあるいはCellulose−binding Protein C)をコードするDNAであってもよい。
このDNAは、配列番号272、286、287のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又はこのアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、エンドアラビナーゼ様タンパク質をコードするDNAであってもよい。
このDNAは、配列番号294に記載のアミノ酸配列、又はこのアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、アラビノオリゴサッカライド結合タンパク質をコードするDNAであってもよい。
このDNAは、配列番号337又は338に記載のアミノ酸配列、又はこのアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、パタチンをコードするDNAであってもよい。
これにより、クロストリジウム セルロボランスのセルロソーマルな酵素とノンセルロソーマルな酵素の組み合わせに類似した酵素活性を得ることができ、セルロース又はヘミセルロースを更に効率よく完全に分解することが可能となる。
本明細書における「相同性」には、「類似性」、「同一性」のいずれもが含まれ、「90%以上の相同性を有する塩基配列」は、90%以上の類似性を有する塩基配列であっても、90%以上の同一性を有する塩基配列であってもよい。さらに、80%以上の類似性又は同一性を有する塩基配列、85%以上の類似性又は同一性を有する塩基配列も、本発明の「相同性を有する塩基配列」に含むことができ、特に、「90%以上の相同性を有する塩基配列」が好ましい塩基配列とされる。
(クロストリジウム セルロボランスの培養)
培地に対して4(w/v)%のバガスを含む培地を用意し、クロストリジウム セルロボランスを接種して、37℃で嫌気的条件下で静置培養を行った。バガスは、サトウキビから砂糖をつくるときに得られる搾りかすである。クロストリジウム セルロボランスを接種していない培地も調製し、コントロールとした。図1に培養5日後の写真を示す。クロストリジウム セルロボランスを接種した培地においては、培養5日後においてバカスの体積の減少とともに、水素等の醗酵産物が観察された。この結果は、クロストリジウム セルロボランスが、バガスを構成するセルロースやヘミセルロースを分解したことを示す。
(クロストリジウム セルロボランスゲノムの塩基配列決定)
シークエンサーGS FLX(ロシュ社製)及びGAII(イルミナ社製)を用いて、クロストリジウム セルロボランスの全ゲノム塩基配列を決定した。まず、シークエンサーGS FLX(ロシュ社製)を用いて、精度が低いドラフト配列の決定を行なった。続いて、シークエンサーGAII(イルミナ社製)を用いて、より詳細な、一連の塩基配列であるコンティグ(contig)配列の決定を行なった。コンティグ配列をドラフト配列と比較し、塩基配列の精度の改善を行なった。これらのシークエンサーで決定できなかった繰り返し領域の塩基配列を、PCR及びサンガー法に基づいた塩基配列決定法により決定した。
(クロストリジウム セルロボランスゲノムの塩基配列の解析)
コンティグ配列の向きを揃えて順番どおりに並べることにより、30個のスキャホールド(scaffold)配列が得られた。これらのスキャホールド配列は、約5.1Mbpのほぼ完全なクロストリジウム セルロボランスの全ゲノムの塩基配列を構成し、4、220個の予想される遺伝子を含んでいた。興味深いことに、クロストリジウム セルロボランスのゲノムは、過去に塩基配列決定がなされたいずれのクロストリジウム属のゲノムよりも1.1〜1.3Mbp大きかった。このため、全ゲノムの塩基配列の決定は非常に困難であった。この塩基配列情報は、微生物を改良し、バイオマスからバイオプロセスにより化学品やエネルギー等を生産する、バイオリファイナリーを実現するために非常に有用である。
(酵母のセルロース及びヘミセルロース分解活性の検出)
酵母のセルロース及びヘミセルロース分解活性は、色素結合多糖を用いる方法により検出した(Biochem.J.(2001)355、167−177を参照)。色素結合多糖として、アゾ−ラムノガラクツロナン、アゾ−セルロース、アゾ−マンナン及びアゾ−キシラン(全てMegazyme社製)を使用した。これらは、それぞれ、ラムノガラクツロラン、セルロース、マンナン、キシランに青色色素であるレマゾールブリリアントブルーRを結合させたものであり、酵母が発現した酵素によって分解されると、色素が培地中に遊離拡散するため、酵素活性を検出することができる。
(新規マンナナーゼの活性の評価)
(酵母発現プラスミドの構築)
ベクターとしてpULD1を使用した(Appl.Microbiol.Biotechnol.(2009)82、713−719を参照)。pULD1の構造を図3(A)及び(B)に示す。このベクターには、細胞壁アンカリングドメインとして機能する、α−アグルチニンのC末端領域をコードする遺伝子が組み込まれているため、目的遺伝子をα−アグルチニンとの融合蛋白として酵母細胞表層に発現させることができる。
得られたプラスミドpULD1−man26A−DSを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法により酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−man26A−DSが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。この酵母を、GRI−117−U(man26A)と名付けた。
(新規セルラーゼ及びヘミセルラーゼの活性の評価)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1に、次の6種類のセルロソーマルな新規セルラーゼ及び新規ヘミセルラーゼ、すなわち、エンドグルカナーゼGH9−DS(配列番号1、ローカスタグ:TAO01.C48_CD000043_64055_62202)、エンドグルカナーゼGH5−DS(配列番号2、ローカスタグ:TAO01.C357_GL000002_943_2547)、マンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS(配列番号5、ローカスタグ:TAO01.C329_CD000024_35971_31775)、キシラナーゼGH8−DS(配列番号8、ローカスタグ:TAO01.C351_CD000007_11790_10336)、エンド−β−ガラクトシダーゼGH98−DS(配列番号15、ローカスタグ:TAO01.C342_CR000010_14103_11062)、ペクチン酸リアーゼ−DS(配列番号16、ローカスタグ:TAO01.C356_CD000011_13348_15075)をコードするDNA断片をサブクローニングした。
配列番号2の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTGAAACAACTACACCTGTAGC−3’(配列番号345)及び5’−CCCTCGAGAAGTTTTTTCTTAAGAACAGC−3’(配列番号346)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号5の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTGGCTTTGTATACAGAGAGGG−3’(配列番号347)及び5’−CCCTCGAGAATCACTTTTTTCAGCATTGC−3’(配列番号348)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号8の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−GGGCGGCCGCGCAGATACTGCAACTAATGG−3’(配列番号349)及び5’−CCCTCGAGAATCTTCTTTTTCAATAAAGC−3’(配列番号350)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号15の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTAATCTGCGACGCCCTGTG−3’(配列番号351)及び5’−CCCTCGAGTATAAAAACTTTCAAATTAGC−3’(配列番号352)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号16の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTAGTACTGTATATGCTGGAACCG−3’(配列番号353)及び5’−CCCTCGAGGATTTTCTTTGTCATTAGTGCC−3’(配列番号354)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
得られたプラスミドpULD1−EG9−DS及びpULD1−EG5−DSをそれぞれ単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−EG9−DSあるいはpULD1−EG5−DSが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。これらの酵母を、GRI−117−U(EG9)及びGRI−117−U(EG5)と名付けた。
得られたプラスミドpULD1−man5B−DSを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−man5B−DSが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。この酵母を、GRI−117−U(man5B)と名付けた。得られた酵母GRI−117−U(man5B)を0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD液体培地で培養し、遠心分離して培地と菌体とに分離し、それぞれのマンナナーゼ活性をアゾ−マンナン培地のハローの有無により観察した。コントロールとして、酵母GRI−117−Uを用いた。その結果、コントロールでは、培地及び菌体にマンナナーゼ活性は認められなかった。形質転換された酵母GRI−117−U(man5B)の培地中にはほとんどマンナナーゼ活性はみられなかったが、酵母GRI−117−U(man5B)菌体はマンナナーゼ活性を有していた。この結果は、酵母細胞表層にマンナナーゼが発現されたことを意味する。また、マンナンからマンノースが生産されたことを示す。
得られたプラスミドpULD1−Xyn8−DSを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−Xyn8−DSが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。この酵母を、GRI−117−U(Xyn8)と名付けた。得られた酵母GRI−117−U(Xyn8)を0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD液体培地で培養し、遠心分離して培地と菌体とに分離し、それぞれのキシラナーゼ活性をアゾ−キシラン培地のハローの有無により観察した。コントロールとして、酵母GRI−117−Uを用いた。その結果、コントロールでは、培地及び菌体にマンナナーゼ活性は認められなかった。形質転換された酵母GRI−117−U(Xyn8)の培地中にはほとんどキシラナーゼ活性はみられなかったが、酵母GRI−117−U(Xyn8)菌体はキシラナーゼ活性を有していた。この結果は、酵母細胞表層にキシラナーゼが発現されたことを意味する。また、キシランからキシロースが生産されたことを示す。
得られたプラスミドpULD1−Bgal98−DSを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−Bgal98−DSが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。この酵母を、GRI−117−U(Bgal98)と名付けた。得られた酵母GRI−117−U(Bgal98)を0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD液体培地で培養し、遠心分離して培地と菌体とに分離し、それぞれのβ−ガラクトシダーゼ活性をX−gal(5−Bromo−4−Chloro−3−Indolyl−β−D−Galactoside)を塗布した寒天培地におけるコロニーの色(ブルー/ホワイト)について観察した。コントロールとして、酵母GRI−117−Uを用いた。その結果、コントロールでは、培地及び菌体にβ−ガラクトシダーゼ活性は認められなかった。形質転換された酵母GRI−117−U(Bgal98)の培地中にはほとんどβ−ガラクトシダーゼ活性はみられなかったが、酵母GRI−117−U(Bgal98)菌体はβ−ガラクトシダーゼ活性を有していた。この結果は、酵母細胞表層にβ−ガラクトシダーゼが発現されたことを意味する。また、セルロースからグルコースが生産されたことを示す。
得られたプラスミドpULD1−PL1−DSを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−PL1−DSが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。
(新規キシラナーゼ、キシロシダーゼ及びキシロースイソメラーゼを用いたエタノール生産)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1に、セルロソーマルな新規キシラナーゼ、ノンセルロソーマルな新規キシラナーゼ、ノンセルロソーマルな新規キシロシダーゼ及びノンセルロソーマルな新規キシロースイソメラーゼ、すなわち、キシラナーゼGH8−DS(配列番号8、ローカスタグ:TAO01.C351_CD000007_11790_10336、セルロソーマル)、エンド−1、4−β−キシラナーゼGH43(配列番号70、ローカスタグ:TAO01.C356_CD000016_22132_21206、ノンセルロソーマル)、β−キシロシダーゼGH39(配列番号84、ローカスタグ:TAO01.C336_CD000043_52142_49647、ノンセルロソーマル)、キシロースイソメラーゼ(配列番号82、ローカスタグ:TAO01.C257_CR000006_6783_5464、ノンセルロソーマル)をコードするDNA断片をサブクローニングした。
配列番号70の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−GGGCGGCCGCCCTGTTCTATGGAGTGTAAAAGGG−3’(配列番号355)及び5’−CCCTCGAGTTTATCGATTATCCC−3’(配列番号356)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号84の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTATTTCTGAAAGTGTATGG−3’(配列番号357)及び5’−CCCTCGAGCTTTTTTAATTTAATGAAACAAACATC−3’(配列番号358)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号82の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTAAGAATCCACTTGCG−3’(配列番号359)及び5’−CCCTCGAGGTATTCTTGTCTTCCTGATTTG−3’(配列番号360)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
得られたプラスミドpULD1−Xyn8−DS、pULD1−Xyn43、pULD1−Xyl39、及びpULD1−XIをそれぞれ単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−Xyn8−DS、pULD1−Xyn43、pULD1−Xyl39あるいはpULD1−XIが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。これらの酵母を、GRI−117−U(Xyn8)、GRI−117−U(Xyn43)、GRI−117−U(Xyl39)及びGRI−117−U(XI)と名付けた。
(新規エンドグルカナーゼ及びβ−グルコシダーゼを用いたエタノール生産)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1に、セルロソーマルな新規エンドグルカナーゼ及びノンセルロソーマルなβ−グルコシダーゼ、すなわち、エンドグルカナーゼGH9−DS(配列番号1、ローカスタグ:TAO01.C48_CD000043_64055_62202、セルロソーマル)、エンドグルカナーゼGH5−DS(配列番号2、ローカスタグ:TAO01.C357_GL000002_943_2547、セルロソーマル)、β−グルコシダーゼGH1(配列番号45、ローカスタグ:TAO01.C319_CR000012_14606_13170、ノンセルロソーマル)をコードするDNA断片をサブクローニングした。
配列番号2の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTGAAACAACTACACCTGTAGC−3’(配列番号345)及び5’−CCCTCGAGAAGTTTTTTCTTAAGAACAGC−3’(配列番号346)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号84の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−GGGCGGCCGCGGATACCAAATAGGTGCC−3’(配列番号361)及び5’−CCCTCGAGCTTTTCACCATTGCTTTGG−3’(配列番号362)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
得られたプラスミドpULD1−EG9−DS、pULD1−EG5−DS及びpULD1−BglBをそれぞれ単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−EG9−DS、pULD1−EG5−DSあるいはpULD1−BglBが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。これらの酵母を、GRI−117−U(EG9)、GRI−117−U(EG5)、及びGRI−117−U(BglB)と名付けた。
(新規アラビノフラノシダーゼを用いたエタノール生産)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1にノンセルロソーマルな新規アラビノフラノシダーゼ、すなわち、α−L−アラビノフラノシダーゼGH43(配列番号103、ローカスタグ:TAO01.C305_CD000011_21163_14138、ノンセルロソーマル)をコードするDNA断片をサブクローニングした。
得られたプラスミドpULD1−ArfBを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−ArfBが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。これらの酵母を、GRI−117−U(ArfB)と名付けた。
この結果は、アラビノキシランからアラビノース、キシロース、キシルロースが生産されたことを示す。また、アラビノキシランから連続糖化発酵工程によりエタノールが生産されたことを示す。また、セルロソーマルな酵素とノンセルロソーマルな酵素との組み合わせが相乗的に作用することを示す。また、複数の遺伝子組換え酵母を混合して糖化や連続糖化発酵工程を行なうことが有効であることを示す。
(新規マンナナーゼ及びα−ガラクトシダーゼによるガラクトマンナンの分解)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1に、ノンセルロソーマルな新規β−マンナナーゼ及びノンセルロソーマルな新規α−ガラクトシダーゼ、すなわち、β−マンナナーゼGH26(配列番号65、ローカスタグ:TAO01.C352_CR000028_41653_37775、ノンセルロソーマル)、α−ガラクトシダーゼGH4(配列番号90、ローカスタグ:TAO01.C375_CR000012_14083_15585、ノンセルロソーマル)、α−ガラクトシダーゼGH31(配列番号91、ローカスタグ:TAO01.C375_GL000025_31575_29359、ノンセルロソーマル)をコードする配列をサブクローニングした。
配列番号90の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTCTTTTAAGAGACATACTTTCAG−3’(配列番号367)及び5’−CCCTCGAGTTTTTCAGCAGGTCTTTCCATCGC−3’(配列番号368)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号91の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTTTAAATTTAAAATACATATC−3’(配列番号369)及び5’−CCCTCGAGTTTTATTTCTTTCAATCTCC−3’(配列番号370)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
得られたプラスミドpULD1−man26Bを単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−man26Bが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。この酵母を、GRI−117−U(man26B)と名付けた。
得られたプラスミドpULD1−AgalA及びpULD1−AgalBをそれぞれ単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o aminoacids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−AgalA及びpULD1−AgalBが染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。この酵母を、GRI−117−U(AgalA)及びGRI−117−U(AgalB)と名付けた。
(新規マンナナーゼ及びβ−マンノシダーゼを用いたエタノール生産)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1に、セルロソーマル及びノンセルロソーマルな新規マンナナーゼ並びにノンセルロソーマルな新規β−マンノシダーゼ、すなわち、マンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS(配列番号5、ローカスタグ:TAO01.C329_CD000024_35971_31775、セルロソーマル)、マンナナーゼGH26−DS(配列番号12、ローカスタグ:TAO01.C69_CD000024_38839_35999、セルロソーマル)、β−マンナナーゼGH26(配列番号65、ローカスタグ:TAO01.C352_CR000028_41653_37775、ノンセルロソーマル)、β−マンノシダーゼGH2(配列番号94、ローカスタグ:TAO01.C33_CR000027_33323_30837、ノンセルロソーマル)をコードする配列をサブクローニングした。
配列番号12の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−CCAGATCTGAAGCAGAAAAAGC−3’(配列番号341)及び5’−CCCTCGAGAAGTTTCTTTTTTAGAAGAGC−3’(配列番号342)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号65の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−GGGCGGCCGCGAAGGAACTACACAAACAG−3’(配列番号365)及び5’−CCCTCGAGCTTTTTTCTTCTTGCTAATCC−3’(配列番号366)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号94の塩基配列からなるDNA断片をPCR増幅するためには、プライマー5’−GGGCGGCCGCATGAAAAGTATTAATTTAAGTGG−3’(配列番号371)及び5’−CCCTCGAGCTCTTCTAAGGTAAAATCC−3’(配列番号372)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
得られたプラスミドpULD1−man5B−DS、pULD1−man26A−DS、pULD1−man26B及びpULD1−Bman2を単離し、制限酵素StuIで一カ所を切断して線状としたDNAを、酢酸リチウム法で酵母GRI−117−Uに導入した。0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、0.077%CSM−URA(BIO101社製)、2%グルコースを含むSD寒天培地で培養し、生育してきた酵母を選択した。本培地ではプラスミドpULD1−man5B−DS、pULD1−man26A−DS、pULD1−man26B及びpULD1−Bman2がそれぞれ染色体に導入され、ウラシル要求性が相補された株のみが生育できる。これらの酵母を、それぞれGRI−117−U(man5B)、GRI−117−U(man26A)、GRI−117−U(man26B)及びGRI−117−U(Bman2)と名付けた。
(各種セルロース又はヘミセルロースの存在下でのクロストリジウム セルロボランスの培養上清におけるセルロソーマル及びノンセルロソーマルな酵素群のプロテオーム解析)
セルロース又はキシラン、マンナン、ペクチン等の様々なヘミセルロースの存在下でクロストリジウム セルロボランスを培養したときに分泌されるセルロソームにおけるセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、糖質結合タンパク質等の構成成分の網羅的な定量的プロテオーム解析を行った。これらのセルロース及びヘミセルロースを約0.5(w/v)%含む培地でクロストリジウム セルロボランスを培養し、集菌後にタンパク質の抽出を行った。プロテオーム解析には、2D−LCシステムを用いた分離を行った。図5に2D−LCシステムの概要を示す。1次元目でイオン交換クロマトグラフィーを用いてタンパク質を等電点の差により分離し、2次元目で逆相クロマトグラフィーを用いて疎水性の差により分離した後、MSで同定することにより、タンパク質の同定及び定量を高速に行なった。図6に代表的な解析結果を示す。その結果、セルロース及びキシランの存在下では、セルロソームが主要な構成成分であり、それに加えてノンセルロソーマルな酵素も検出されることが明らかとなった。また、ペクチンの存在下では、セルロソームに加えて、ノンセルロソーマルな酵素の高い発現が検出された。
(新規セルラーゼ及びヘミセルラーゼの活性の評価)
(酵母発現プラスミドの構築)
プラスミドpULD1に、次の19種類のセルロソーマルな新規セルラーゼ及び新規ヘミセルラーゼ、すなわち、マンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS(配列番号5、ローカスタグ:TAO01.C329_CD000024_35971_31775)、マンナナーゼGH26−DS(配列番号12、ローカスタグ:TAO01.C69_CD000024_38839_35999)、β−マンナナーゼGH26(配列番号65、ローカスタグ:TAO01.C352_CR000028_41653_37775)、エンドグルカナーゼGH9−DS(配列番号1、ローカスタグ:TAO01.C48_CD000043_64055_62202)、エンドグルカナーゼGH5−DS(配列番号2、ローカスタグ:TAO01.C357_GL000002_943_2547)、キシラナーゼGH8−DS(配列番号8、ローカスタグ:TAO01.C351_CD000007_11790_10336)、エンド−1、4−β−キシラナーゼGH43(配列番号70、ローカスタグ:TAO01.C356_CD000016_22132_21206)、β−キシロシダーゼGH39(配列番号84、ローカスタグ:TAO01.C336_CD000043_52142_49647)、キシロースイソメラーゼ(配列番号82、ローカスタグ:TAO01.C257_CD000006_6783_5464)、ペクチン酸リアーゼ−DS(配列番号16、ローカスタグ:TAO01.C356_CD000011_13348_15075)、α−L−アラビノフラノシダーゼGH43(配列番号103、ローカスタグ:TAO01.C344_CR000001_605_3)、α−ガラクトシダーゼGH4(配列番号90、ローカスタグ:TAO01.C375_CR000012_14083_15585)、α−ガラクトシダーゼGH31(配列番号91、ローカスタグ:TAO01.C375_GL000025_31575_29359)、β−グルコシダーゼGH1(配列番号45、ローカスタグ:TAO01.C319_CR000012_14606_13170)、β−マンノシダーゼGH2(配列番号94、ローカスタグ:TAO01.C33_CR000027_33323_30837)、ペクチン酸リアーゼPL1(配列番号135、ローカスタグ:TAO01.C351_CD000009_14861_13623)、ペクチン酸リアーゼPL9(配列番号133、ローカスタグ:TAO01.C248_CD000004_4230_3226)、ペクチン酸リアーゼPL10(配列番号134、ローカスタグ:TAO01.C61_CD000044_46515_45550)又はエキソポリガラクツロン酸リアーゼPL9(配列番号139、ローカスタグ:TAO01.C356_CD000011_13348_15075)をコードするDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をそれぞれサブクローニングした。
配列番号12の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCCAGATCTGAAACTACTGCTACACCTGTAAG‐3’(配列番号375)及び5’‐CCCTCGAGGCTAAGAAGTTTCTTTTTTAGAAGAGC‐3’(配列番号376)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号65の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTGCGGCCGCACGGTATTGGAGGTTAAAGCAGAAG‐3’(配列番号377)及び5’‐CAGTCTCGAGTTCTCTTTCTTTTCTTCTTGCTAATCCAACAAC‐3’(配列番号378)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号1の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐GGGCGGCCGCGGTACTACAGGATCAATAAACG‐3’(配列番号379)及び5’‐CCCTCGAGTTTACTTGGTGTACTCGGTAA‐3’(配列番号380)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号2の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCCAGATCTGAAACAACTACACCTGTAGC‐3’(配列番号381)及び5’‐CCCTCGAGGCTTAAAAGTTTTTTCTTAAGAACAGCTAAATC‐3’(配列番号382)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号8の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐GGGCGGCCGCGCAGATACTGCAACTAATGGTGC‐3’(配列番号383)及び5’‐CCCTCGAGTCCTAAAATCTTCTTTTTCAATAAAGCTAAATCAATTGC‐3’(配列番号384)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号70の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTGCGGCCGCAACGCATATTTATTTGTGCATTTTAAGG‐3’(配列番号385)及び5’‐CAGTCTCGAGTTTTTGCTTAATTCTACTATATTCCTCC‐3’(配列番号386)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号84の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTAGATCTAAGGGATTAGTTAACAATGGGGG‐3’(配列番号387)及び5’‐CAGTCTCGAGTATCTTTTTTAATTTAATGAAACAAACATCATTTTCACGC‐3’(配列番号388)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号82の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTAGATCTAGAGAATATTTTGCAAATGTACCG‐3’(配列番号389)及び5’‐CAGTCTCGAGGTCGTTGAAGATGTATTGGTTAAC‐3’(配列番号390)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号16の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCCAGATCTTATAATAGTAGTACTGTATATGCTGGAACC‐3’(配列番号391)及び5’‐CCCTCGAGCTGGCTAAGGATTTTCTTTGTCATTAG‐3’(配列番号392)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号103の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTGCGGCCGCGCAGATAATATGAAAACAGGATTAATTCTTAACTATGATTTTGATAC‐3’(配列番号393)及び5’‐CAGTCTCGAGTCCTCGTATTGATTTTTTTCTTGATATTAGAACTACTC‐3’(配列番号394)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号90の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTAGATCTTCATTTAAGGTTACATTTATAGGTGCTGGAAG‐3’(配列番号395)及び5’‐CAGTGCATGCTTTTTCAGCAGGTCTTTCCATCGC‐3’(配列番号396)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びSphIの認識配列が導入されている。
配列番号91の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CAGTAGATCTATAATTATTAAGGAGAAAGTTATGGGTATTATATTTCAAGAAAAGG‐3’(配列番号397)及び5’‐CAGTGCATGCTTTTATTTCTTTCAATCTCCACATATAGCTTTGGAAG‐3’(配列番号398)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びSphIの認識配列が導入されている。
配列番号45の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐GGGCGGCCGCATACACAAGCATTTGAAGCCATTCCCG‐3’(配列番号399)及び5’‐CCCTCGAGTAGCTTTTCACCATTGCTTTGGATAACATCTC‐3’(配列番号400)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号94の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐GGGCGGCCGCATGAAAAGTATTAATTTAAGTGG‐3’(配列番号401)及び5’‐CCCTCGAGCTCTTCTAAGGTAAAATCC‐3’(配列番号402)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素NotI及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号135の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCAGATCTACTCAAAATGTAAATGCAGC‐3’(配列番号403)及び5’‐CCCTCGAGTTTACCTGCTCCAGCATTATTAACAATTTCTTGCGC‐3’(配列番号404)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号133の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCAGATCTGCTGGTGATGCTACTGGTGTTACAGCAGACATGGC‐3’(配列番号405)及び5’‐CCCTCGAGTTTTATCAAAGAAGCAGGACTTGTATTATACCATGC‐3’(配列番号406)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号134の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCAGATCTGGGGCAAGCTTAATACCAGC‐3’(配列番号407)及び5’‐CCCTCGAGGAAACCTGTGTTAGTTCCTTTGAATGTTACACC‐3’(配列番号408)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
配列番号139の塩基配列からなるDNA断片のうち、分泌シグナルを除いた部位をPCR増幅するためには、プライマー5’‐CCAGATCTTATAATAGTAGTACTGTATATGCTGGAACCG‐3’(配列番号409)及び5’‐CCCTCGAGCTGGCTAAGGATTTTCTTTGTCATTAGTGCCAGGTCC‐3’(配列番号410)を用いた。これらのプライマーには、それぞれ制限酵素BglII及びXhoIの認識配列が導入されている。
制限酵素で切断した各PCR産物をプラスミドpULD1のBglII及びXhoI切断部位、BglII及びSphI部位又はNotI及びXhoI切断部位に挿入して、それぞれ、プラスミドpULD1−ManGH5−DS(マンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS、配列番号5由来)、pULD1−ManGH26A−DS(マンナナーゼGH26−DS、配列番号12由来)、pULD1−ManGH26B(β―マンナナーゼGH26、配列番号65由来)、pULD1−EngGH9−DS(エンドグルカナーゼGH9−DS、配列番号1由来)、pULD1−EngGH5−DS(エンドグルカナーゼGH5−DS、配列番号2由来)、pULD1−XynGH8−DS(キシラナーゼGH8−DS、配列番号8由来)、pULD1−XynGH43(エンド−1、4−β−キシラナーゼGH43、配列番号70由来)、pULD1−XylGH39(β−キシロシダーゼGH39、配列番号84由来)、pULD1−Xyi(キシロースイソメラーゼ、配列番号82由来)、pULD1−Pel1A−DS(ペクチン酸リアーゼ、配列番号16由来)、pULD1−ArfGH43(α−L−アラビノフラノシダーゼGH43、配列番号103由来)、pULD1−AgalGH4(α−ガラクトシダーゼGH4、配列番号90由来)、pULD1−AgalGH31(α−ガラクトシダーゼGH31、配列番号91由来)、pULD1−BglGH1(β−グルコシダーゼGH1、配列番号45由来)、pULD1−BmanGH2(β−マンノシダーゼGH2、配列番号94由来)、pULD1−Pel1B(ペクチン酸リアーゼPL1、配列番号135由来)、pULD1−Pel9B(ペクチン酸リアーゼPL9、配列番号133由来)、pULD1−Pel10A(ペクチン酸リアーゼPL10、配列番号134由来)及びpULD1−EplA(エキソポリガラクツロン酸リアーゼPL9、配列番号139由来)を得た。
上記により構築されたプラスミドを大腸菌内にて増幅、精製後、酢酸リチウム法でそれぞれ酵母Saccharomyces cerevisiae BY4741(Δsed1)株に導入した。本酵母株はEuroscarfから入手したものであり、導入した遺伝子の細胞表層への提示効率向上のため、SED1遺伝子が破壊されたものである(Appl. Microbiol. Biotechnol.、 82、 713−719、 2009)。
各プラスミドを導入した酵母をそれぞれ0.67%Yeast nitrogen base w/o amino acids(Difco社製)、2%Casamino acids(Difco社製)、0.002%Histidine、0.003%Leucine、0.003%Methionine、2% グルコースからなるSD寒天培地で30℃で培養し、生育してきた酵母を形質転換体として選択した。
その結果、いずれの酵母においても、細胞表層上に2次抗体由来の緑色蛍光が検出されたことから、マンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS、マンナナーゼGH26−DS、β−マンナナーゼGH26、エンドグルカナーゼGH9−DS、エンドグルカナーゼGH5−DS、キシラナーゼGH8−DS、エンド−1、4−β−キシラナーゼGH43、β−キシロシダーゼGH39、キシロースイソメラーゼ、ペクチン酸リアーゼ−DS、α−L−アラビノフラノシダーゼGH43、α−ガラクトシダーゼGH4、α−ガラクトシダーゼGH31、β−グルコシダーゼGH1、β−マンノシダーゼGH2、ペクチン酸リアーゼPL1、ペクチン酸リアーゼPL9、ペクチン酸リアーゼPL10又はエキソポリガラクツロン酸リアーゼPL9が各酵母の細胞表層に提示されていることが確認できた。
細胞表層提示した酵素の活性を3、5−Dinitrosalicylic acid (DNS)法によって測定した。本活性測定法では、0.5%DNS(和光純薬社製)、1.6%水酸化ナトリウム(ナカライテスク社製)、30%酒石酸カリウムナトリウム(和光純薬社製)からなるDNS試薬を用いて、酵素反応により生成する還元糖量を定量する。
マンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS提示酵母、マンナナーゼGH26−DS提示酵母又はマンナナーゼGH26提示酵母をそれぞれSD液体培地で、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう0.5%のローカストビーンガム(シグマ社製)を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここにDNS試薬1mlを加え、5分間煮沸した後、氷冷し、525nmの吸光度を測定した。
その結果、コントロール株と比べてマンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS提示酵母、マンナナーゼGH26−DS提示酵母及びマンナナーゼGH26提示酵母はいずれも高い吸光度の値を示したことから、細胞表層に提示したマンナナーゼGH5−GH5−CBM11−DS、マンナナーゼGH26−DS及びマンナナーゼGH26がいずれもマンナナーゼ活性をもつことが確認された。
細胞表層提示した酵素の活性を、マンナナーゼと同様に3、5−Dinitrosalicylic acid(DNS)法によって測定した。
その結果、コントロール株と比べてエンドグルカナーゼGH9−DS提示酵母及びエンドグルカナーゼGH5−DS提示酵母はいずれも高い吸光度の値を示したことから、細胞表層に提示したエンドグルカナーゼGH9−DS及びエンドグルカナーゼGH5−DSがいずれもエンドグルカナーゼ活性をもつことが確認された。
細胞表層提示した酵素の活性を、マンナナーゼと同様に3、5−Dinitrosalicylic acid(DNS)法によって測定した。
その結果、コントロール株と比べてキシラナーゼGH8−DS提示酵母及びエンド−1、4−β−キシラナーゼGH43提示酵母はいずれも高い吸光度の値を示したことから、細胞表層に提示したキシラナーゼGH8−DS及びエンド−1、4−β−キシラナーゼGH43がいずれもキシラナーゼ活性をもつことが確認された。
β−キシロシダーゼGH39提示酵母をSD液体培地で、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう2mMの2−ニトロフェニル−β−D−キシロピラノシドを含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに2M炭酸ナトリウム1mlを加えて反応停止後、遊離した2−ニトロフェノールに由来する400nmの吸光度を測定することによりキシロシダーゼ活性を評価した。
その結果、コントロール株と比べてβ−キシロシダーゼGH39提示酵母は高い吸光度の値を示したことから、細胞表層に提示したβ−キシロシダーゼGH39がキシロシーゼ活性をもつことが確認された。
キシロースイソメラーゼ提示酵母をSD液体培地で、30℃にて24時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう反応溶液I(10mMトリエタノールアミン、250mMキシロース、10mM硫酸マグネシウム、pH8.0)500μlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清200μlをサンプリングした。ここに反応溶液II(10mM1トリエタノールアミン、0.15mMNADH、0.5Uソルビトールデヒドロゲナーゼ、pH7.0)700μl、イオン交換水300μlを加え、35℃で5分間インキュベートし、340nmの吸光度を測定することにより、NADHの減少を調べた。
その結果、コントロール株と比べてキシロースイソメラーゼ提示酵母はより大きく吸光度が減少したことから、キシロースからキシルロースヘの変換が示され、キシロースイソメラーゼ活性をもつことが確認された。
ペクチン酸リアーゼ−DS提示酵母、ペクチン酸リアーゼPL1提示酵母、ペクチン酸リアーゼPL9提示酵母又はペクチン酸リアーゼPL10提示酵母をそれぞれSD液体培地で、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう0.3mM塩化カルシウム、0.2%ポリガラクツロン酸を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに20mMEDTA 25μlを加えて反応停止後、235nmの吸光度を測定することにより活性を評価した。
その結果、コントロール株と比べてペクチン酸リアーゼ−DS提示酵母、ペクチン酸リアーゼPL1提示酵母、ペクチン酸リアーゼPL9提示酵母及びペクチン酸リアーゼPL10提示酵母はいずれも高い吸光度の値を示したため、細胞表層に提示したペクチン酸リアーゼ−DS、ペクチン酸リアーゼPL1、ペクチン酸リアーゼPL9及びペクチン酸リアーゼPL10がいずれもペクチン酸リアーゼ活性をもつことが明らかとなった。
α−L−アラビノフラノシダーゼGH43提示酵母をSD液体培地、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう2mM 4−ニトロフェニル−α−L−アラビノフラノシド(シグマ社製)を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに2M炭酸ナトリウム1mlを加えて反応停止後、遊離した4−ニトロフェノールに由来する400nmの吸光度を測定することにより活性を評価した。
その結果、コントロール株と比べてα−L−アラビノフラノシダーゼGH43提示酵母は高い吸光度の値を示したため、細胞表層に提示したα−L−アラビノフラノシダーゼGH43がアラビノフラノシダーゼ活性をもつことが明らかとなった。
α−ガラクトシダーゼGH4提示酵母又はα−ガラクトシダーゼGH31提示酵母をSD液体培地、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう2mM 4−ニトロフェニル−α−D−ガラクトピラノシド(シグマ社製)を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに2M 炭酸ナトリウム1mlを加えて反応停止後、遊離した4−ニトロフェノールに由来する400nmの吸光度を測定することにより活性を評価した。 その結果、コントロール株と比べてα−ガラクトシダーゼGH4提示酵母及びα−ガラクトシダーゼGH31提示酵母はいずれも高い吸光度の値を示したため、細胞表層に提示したα−ガラクトシダーゼGH4及びα−ガラクトシダーゼGH31がいずれもガラクトシダーゼ活性をもつことが明らかとなった。
β−グルコシダーゼGH1提示酵母をSD液体培地、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう2mM 4−ニトロフェニル−β−D−グルコピラノシド(シグマ社製)を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに2M 炭酸ナトリウム1mlを加えて反応停止後、遊離した4−ニトロフェノールに由来する400nmの吸光度を測定することにより活性を評価した。
その結果、コントロール株と比べてβ−グルコシダーゼGH1提示酵母は高い吸光度の値を示したため、細胞表層に提示したβ−グルコシダーゼGH1がグルコシダーゼ活性をもつことが明らかとなった。
β−マンノシダーゼGH2提示酵母をSD液体培地で、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう2mM 4−ニトロフェニル−β−D−マンノピラノシド(シグマ社製)を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに2M 炭酸ナトリウム1mlを加えて反応停止後、遊離した4−ニトロフェノールに由来する400nmの吸光度を測定することにより活性を評価した。
その結果、コントロール株と比べてβ−マンノシダーゼGH2提示酵母は高い吸光度の値を示したため、細胞表層に提示したβ−マンノシダーゼGH2がマンノシダーゼ活性をもつことが明らかとなった。
エキソポリガラクツロン酸リアーゼPL9提示酵母をSD液体培地で、30℃にて36時間培養した後、遠心分離により酵母細胞を集菌した。これをイオン交換水で洗浄した後、OD600=40になるよう0.3mM 塩化カルシウム、0.2%ポリガラクツロン酸を含むリン酸緩衝液(PBS)1mlに懸濁した。30℃、24時間で振とうさせながら反応を行った後、遠心分離し、上清500μlをサンプリングした。ここに20mM EDTA25μlを加えて反応停止後、235nmの吸光度を測定することにより活性を評価した。
その結果、コントロール株と比べてエキソポリガラクツロン酸リアーゼPL9提示酵母は高い吸光度の値を示したため、細胞表層に提示したエキソポリガラクツロン酸リアーゼPL9がペクチン酸リアーゼ活性をもつことが明らかとなった。
(新規ペプチダーゼ阻害因子の活性評価)
(酵母発現プラスミドの構築)
新規ペプチダーゼ阻害因子の活性を評価するため、新規ペプチダーゼ阻害因子の酵母細胞表層への発現提示を行った。細胞表層提示のためのカセットベクターとしてプラスミドpULD1を使用した。
上記により構築されたプラスミドpULD1−inhibitor19522を大腸菌内にて増幅、精製後、酢酸リチウム法によって酵母Saccharomyces cerevisiae BY4741(Δsed1)株に導入した。0.67% Yeast nitrogen base w/o amino acids (Difco社製)、2% Casamino acids(Difco社製)、0.002% Histidine、0.003% Leucine、0.003% Methionine、2% グルコースからなるSD寒天培地上にて30℃で培養し、生育してきたクローンを形質転換体として選抜した。
シャーガシン(Chagasin)ペプチダーゼ阻害因子I42−DS提示酵母において、細胞表層提示されたシャーガシン(Chagasin)ペプチダーゼ阻害因子の阻害活性を評価するため、細胞懸濁液にPapain(和光純薬社製)、及びCathepsinL(和光純薬社製)をそれぞれ終濃度が5μg/mL、5ng/mLとなるよう添加し、30℃で10分間インキュベートした。その後、基質Z−Phe−Arg−MCA(ペプチド研究所製)を終濃度5μMとなるよう添加し、Papain及びCathepsinLによる切断で生じる蛍光を、励起光355nm、放射光460nmにて経時的に測定した。
その結果、コントロール株と比べてシャーガシン(Chagasin)ペプチダーゼ阻害因子I42−DS提示酵母では蛍光強度の傾きが小さくなったことから、細胞表層に提示したシャーガシン(Chagasin)ペプチダーゼ阻害因子がプロテアーゼ阻害活性を有することが確認された。
Claims (57)
- 配列番号1〜170のいずれか1つに記載の、クロストリジウム セルロボランス(Clostridium Cellulovorans)由来新規塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、セルロース又はヘミセルロース分解活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなるDNA。
- 配列番号1〜31のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、セルロソーム形成活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1に記載のDNA。
- 配列番号32〜170のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、セルロソーム形成活性を有さないタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1に記載のDNA。
- 配列番号5、12、13、63、64、65のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、マンナナーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のDNA。
- 配列番号1、2、3、4、6、7、9、10、11、32、33、34、35、36、42、43、111、164のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、エンドグルカナーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のDNA。
- 配列番号8又は70に記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、キシラナーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のDNA。
- 配列番号15、59、90、91、92、93、95、96、97、98、99のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、ガラクトシダーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のDNA。
- 配列番号16、47、133、134、135、136、137、138、144のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、ペクチン酸リアーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のDNA。
- 配列番号58、77、79、80、81、83、84、86、87、88、101、122のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、キシロシダーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は3に記載のDNA。
- 配列番号82又は85に記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、キシロースイソメラーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は3に記載のDNA。
- 配列番号45、48、50、52、53、54、56、57、60のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、β−グルコシダーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は3に記載のDNA。
- 配列番号78、103、122、127のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、アラビノフラノシダーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は3に記載のDNA。
- 配列番号94に記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、β−マンノシダーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は3に記載のDNA。
- 配列番号139、140、141のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、ポリガラクツロン酸リアーゼ活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は3に記載のDNA。
- 配列番号23、24、25のいずれか1つに記載の塩基配列、又は当該塩基配列と90%以上の相同性を有し、ペプチダーゼ阻害活性を有するタンパク質をコードする塩基配列からなる、請求項1又は2に記載のDNA。
- 配列番号171〜340のいずれか1つに記載の、クロストリジウム セルロボランス由来新規アミノ酸配列、又は配列番号1〜170のいずれか1つに記載の新規塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、セルロース又はヘミセルロース分解活性を有するタンパク質。
- 配列番号171〜201のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号1〜31のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、セルロソーム形成活性を有する、請求項16に記載のタンパク質。
- 配列番号202〜340のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号32〜170のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、セルロソーム形成活性を有さない、請求項16に記載のタンパク質。
- 配列番号175、182、183、233、234、235のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号5、12、13、63、64、65のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、マンナナーゼ活性を有する、請求項16〜18のいずれか一項に記載のタンパク質。
- 配列番号171、172、173、174、176、177、179、180、181、202、203、204、205、206、212、213、281、334のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号1、2、3、4、6、7、9、10、11、32、33、34、35、36、42、43、111、164のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、エンドグルカナーゼ活性を有する、請求項16〜18のいずれか一項に記載のタンパク質。
- 配列番号178又は240に記載のアミノ酸配列、又は配列番号8又は70に記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、キシラナーゼ活性を有する、請求項16〜18のいずれか一項に記載のタンパク質。
- 配列番号185、229、260、261、262、263、265、266、267、268、269のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号15、59、90、91、92、93、95、96、97、98、99のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、ガラクトシダーゼ活性を有する、請求項16〜18のいずれか一項に記載のタンパク質。
- 配列番号186、217、303、304、305、306、307、308、314のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号16、47、133、134、135、136、137、138、144のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、ペクチン酸リアーゼ活性を有する、請求項16〜18のいずれか一項に記載のタンパク質。
- 配列番号228、247、249、250、251、253、254、256、257、258、271、292のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号58、77、79、80、81、83、84、86、87、88、101、122のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、キシロシダーゼ活性を有する、請求項16又は18に記載のタンパク質。
- 配列番号252又は255に記載のアミノ酸配列、又は配列番号82又は85に記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、キシロースイソメラーゼ活性を有する、請求項16又は18に記載のタンパク質。
- 配列番号215、218、220、222、223、224、226、227、230のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号45、48、50、52、53、54、56、57、60のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、β−グルコシダーゼ活性を有する、請求項16又は18に記載のタンパク質。
- 配列番号248、273、292、297のいずれか1つに記載のアミノ酸配列、又は配列番号78、103、122、127のいずれか1つに記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、アラビノフラノシダーゼ活性を有する、請求項16又は18に記載のタンパク質。
- 配列番号264に記載のアミノ酸配列、又は配列番号94に記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、β−マンノシダーゼ活性を有する、請求項16又は18に記載のタンパク質。
- 配列番号309、310、311のいずれか1つに記載のアミノ酸配列に記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、ポリガラクツロン酸リアーゼ活性を有する、請求項16又は18に記載のタンパク質。
- 請求項193、194、195のいずれか1つに記載のアミノ酸配列に記載の塩基配列と90%以上の相同性を有する塩基配列にコードされるアミノ酸配列からなり、ペプチダーゼ阻害活性を有する、請求項16又は17に記載のタンパク質。
- 請求項1〜15のいずれか一項に記載のDNAを含むベクター。
- 請求項31に記載のベクターで形質転換された、遺伝子組換え体。
- 以下の(a)及び(b)のDNA:
(a)請求項2に記載のDNA;及び
(b)請求項3に記載のDNA
の組み合わせを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。 - セルロース又はヘミセルロースの存在下で、請求項33に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、セルロース又はヘミセルロースから単糖を製造する方法。
- セルロース又はヘミセルロースの存在下で、請求項33に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、セルロース又はヘミセルロースから低級アルコールを製造する方法。
- 請求項4に記載のDNAを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。
- 以下の(a)及び(b)のDNA:
(a)請求項4に記載のDNA;及び
(b)請求項13に記載のDNA
の組み合わせを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。 - マンナンの存在下で、請求項36又は37に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、マンナンからマンノースを製造する方法。
- マンナンの存在下で、請求項36又は37に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、マンナンから低級アルコールを製造する方法。
- 請求項8に記載のDNAを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。
- ペクチンの存在下で、請求項40に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、ペクチンからガラクツロン酸を製造する方法。
- ペクチンの存在下で、請求項40に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、ペクチンから低級アルコールを製造する方法。
- 以下の(a)〜(c)のDNA:
(a)請求項6に記載のDNA;
(b)請求項9に記載のDNA;及び
(c)請求項10に記載のDNA
の組み合わせを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。 - キシランの存在下で、請求項43に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、キシランからキシルロースを製造する方法。
- キシランの存在下で、請求項43に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、キシランから低級アルコールを製造する方法。
- 以下の(a)及び(b)のDNA:
(a)請求項5に記載のDNA;及び
(b)請求項11に記載のDNA
の組み合わせを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。 - セルロースの存在下で、請求項46に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、セルロースからグルコースを製造する方法。
- セルロースの存在下で、請求項46に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、セルロースから低級アルコールを製造する方法。
- 請求項12に記載のDNAを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。
- アラビノースを含むヘミセルロースの存在下で、請求項49に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、アラビノースを含むヘミセルロースからアラビノースを製造する方法。
- アラビノースを含むヘミセルロースの存在下で、請求項49に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、アラビノースを含むヘミセルロースから低級アルコールを製造する方法。
- 以下の(a)及び(b)のDNA:
(a)請求項4に記載のDNA;及び
(b)請求項7に記載のDNA
の組み合わせを発現可能に保持する、遺伝子組換え体。 - ガラクトマンナンの存在下で、請求項52に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、ガラクトマンナンからガラクトース及びマンノースを製造する方法。
- ガラクトマンナンの存在下で、請求項52に記載の遺伝子組換え体を培養する工程を含む、ガラクトマンナンから低級アルコールを製造する方法。
- 前記DNA又はDNAの組み合わせを、細胞表層への発現及び細胞外への分泌の組み合わせで発現する、請求項32、33、36、37、40、43、46、49及び52のいずれか一項に記載の遺伝子組換え体。
- セルロース又はヘミセルロースの存在下で、以下の(a)〜(j)の遺伝子組換え体:
(a)請求項32に記載の遺伝子組換え体;
(b)請求項33に記載の遺伝子組換え体;
(c)請求項36に記載の遺伝子組換え体;
(d)請求項37に記載の遺伝子組換え体;
(e)請求項40に記載の遺伝子組換え体;
(f)請求項43に記載の遺伝子組換え体;
(g)請求項46に記載の遺伝子組換え体;
(h)請求項49に記載の遺伝子組換え体;
(i)請求項52に記載の遺伝子組換え体;及び
(j)請求項55に記載の遺伝子組換え体
からなる群から選択される、2種類以上の遺伝子組換え体を混合して培養する工程を含む、セルロース又はヘミセルロースから単糖を製造する方法。 - セルロース又はヘミセルロースの存在下で、以下の(a)〜(j)の遺伝子組換え体:
(a)請求項32に記載の遺伝子組換え体;
(b)請求項33に記載の遺伝子組換え体;
(c)請求項36に記載の遺伝子組換え体;
(d)請求項37に記載の遺伝子組換え体;
(e)請求項40に記載の遺伝子組換え体;
(f)請求項43に記載の遺伝子組換え体;
(g)請求項46に記載の遺伝子組換え体;
(h)請求項49に記載の遺伝子組換え体;
(i)請求項52に記載の遺伝子組換え体;及び
(j)請求項55に記載の遺伝子組換え体
からなる群から選択される、2種類以上の遺伝子組換え体を混合して培養する工程を含む、セルロース又はヘミセルロースから低級アルコールを製造する方法。
Applications Claiming Priority (7)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US15662409P | 2009-03-02 | 2009-03-02 | |
US61/156,624 | 2009-03-02 | ||
US16172609P | 2009-03-19 | 2009-03-19 | |
US61/161,726 | 2009-03-19 | ||
JP2009100117 | 2009-04-16 | ||
JP2009100117 | 2009-04-16 | ||
PCT/JP2010/053363 WO2010101158A1 (ja) | 2009-03-02 | 2010-03-02 | クロストリジウム セルロボランス由来新規遺伝子及びその利用 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPWO2010101158A1 true JPWO2010101158A1 (ja) | 2012-09-10 |
Family
ID=42709714
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2011502768A Pending JPWO2010101158A1 (ja) | 2009-03-02 | 2010-03-02 | クロストリジウムセルロボランス由来新規遺伝子及びその利用 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPWO2010101158A1 (ja) |
WO (1) | WO2010101158A1 (ja) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20140356923A1 (en) * | 2011-12-23 | 2014-12-04 | Deinove | Bacteria with reconstructed transcriptional units and the uses thereof |
CN104837991A (zh) * | 2012-08-16 | 2015-08-12 | 孟加拉朱特研究所 | 来自菜豆壳球孢菌的果胶降解酶及其用途 |
ES2640978T3 (es) * | 2012-10-31 | 2017-11-07 | Jennewein Biotechnologie Gmbh | Proceso de producción de monosacáridos |
JPWO2018207889A1 (ja) | 2017-05-11 | 2020-05-14 | 関西化学機械製作株式会社 | α−ガラクトシダーゼ表層提示微生物およびその使用 |
US11124784B2 (en) * | 2019-07-09 | 2021-09-21 | Korea University Research And Business Foundation | Chitinolytic enzyme derived from Clostridium cellulovorans |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2001079483A1 (fr) * | 2000-04-17 | 2001-10-25 | Kansai Chemical Engineering Co., Ltd. | Procede de fabrication d'alcool a partir de fibre cellulosique |
JP2008086310A (ja) * | 2006-09-04 | 2008-04-17 | Gekkeikan Sake Co Ltd | セルロース分解酵素を表層提示する酵母及びその利用 |
-
2010
- 2010-03-02 WO PCT/JP2010/053363 patent/WO2010101158A1/ja active Application Filing
- 2010-03-02 JP JP2011502768A patent/JPWO2010101158A1/ja active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2001079483A1 (fr) * | 2000-04-17 | 2001-10-25 | Kansai Chemical Engineering Co., Ltd. | Procede de fabrication d'alcool a partir de fibre cellulosique |
JP2008086310A (ja) * | 2006-09-04 | 2008-04-17 | Gekkeikan Sake Co Ltd | セルロース分解酵素を表層提示する酵母及びその利用 |
Non-Patent Citations (9)
Title |
---|
JPN6010015929; HAN SO., et al.: 'Isolation and expression of the xynB gene and its product, XynB, a consistent component of the Clost' J. Bacteriol. vol.186, no.24, 2004, p.8347-8355 * |
JPN6010015931; ARAI T., et al.: 'Properties of cellulosomal family 9 cellulases from Clostridium cellulovorans' Appl. Microbiol. Biotechnol. vol.71, no.5, 2006, p.654-660 * |
JPN6010015933; HAN SO., et al.: 'Regulation of expression of cellulosomes and noncellulosomal (hemi)cellulolytic enzymes in Clostridi' J. Bacteriol. vol.186, no.13, 2004, p.4218-4227 * |
JPN6010026229; AHSAN MM., et al.: 'Cloning, DNA sequencing, and expression of the gene encoding Clostridium thermocellum cellulase CelJ' J. Bacteriol. vol.178, no.19, 1996, p.5732-5740 * |
JPN6010026231; AHSAN MM., et al.: 'Purification and characterization of the family J catalytic domain derived from the Clostridium ther' Biosci. Biotechnol. Biochem. vol.61, no.3, 1997, p.427-431 * |
JPN6010026234; GOLD ND., et al.: 'Global view of the Clostridium thermocellum cellulosome revealed by quantitative proteomic analysis' J. Bacteriol. vol.189, no.19, 2007, p.6787-6795 * |
JPN6010026241; NOLLING J., et al.: 'Genome sequence and comparative analysis of the solvent-producing bacterium Clostridium acetobutylic' J. Bacteriol. vol.183, no.16, 2001, p.4823-4838 * |
JPN6010026258; Database GenBank [online], Accessin No. AAK78891,<http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sviewer/viewer.fcgi?15 * |
JPN6014003655; Bio Industry, Aug.2008, Vol.25, No.8, p.13-19 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2010101158A1 (ja) | 2010-09-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Guerriero et al. | Destructuring plant biomass: focus on fungal and extremophilic cell wall hydrolases | |
Liu et al. | Development of highly efficient, low-cost lignocellulolytic enzyme systems in the post-genomic era | |
Lochner et al. | Use of label-free quantitative proteomics to distinguish the secreted cellulolytic systems of Caldicellulosiruptor bescii and Caldicellulosiruptor obsidiansis | |
US9080163B2 (en) | Cellobiohydrolase variants | |
US20180265853A1 (en) | Yeast strains for the expression and secretion of heterologous proteins at high temperatures | |
KR20120106774A (ko) | 동시 당화 발효 반응의 효율을 향상시키는 방법 | |
WO2014081700A1 (en) | Recombinant fungal polypeptides | |
US9512416B2 (en) | Endoglucanase variants | |
WO2012027374A2 (en) | Novel fungal carbohydrate hydrolases | |
US10457925B2 (en) | Process for the production of cellulolytic and/or hemicellulolytic enzymes | |
US20160168553A1 (en) | Thermostable beta-glucosidase | |
JP6335161B2 (ja) | 細胞表層発現用ポリヌクレオチド | |
Chen et al. | A highly active beta-glucanase from a new strain of rumen fungus Orpinomyces sp. Y102 exhibits cellobiohydrolase and cellotriohydrolase activities | |
WO2010101158A1 (ja) | クロストリジウム セルロボランス由来新規遺伝子及びその利用 | |
Wei et al. | Recombinant protein production in the filamentous fungus Trichoderma | |
Zhang et al. | Reformulating the hydrolytic enzyme cocktail of Trichoderma reesei by combining XYR1 overexpression and elimination of four major cellulases to improve saccharification of corn fiber | |
Meng et al. | Molecular engineering to improve lignocellulosic biomass based applications using filamentous fungi | |
US9611462B2 (en) | Endoglucanase 1B (EG1B) variants | |
US10266814B2 (en) | Systems and methods for production and use of fungal glycosyl hydrolases | |
Sami et al. | Digestive Cellulose Hydrolyzing Enzyme Activity (endo-β-1, 4-D-glucanase) in the Gut and Salivary Glands of Blister Beetle, Mylabris pustulata. | |
KR101106061B1 (ko) | 바이오 에탄올 생산능이 향상된 재조합 벡터 및 그 형질 전환체 | |
EP2995686B1 (en) | Thermostable beta-glucosidase | |
KR102155046B1 (ko) | 고활성 셀룰레이스를 생산하는 트리코더마 속 kmf006 균주 | |
CN111757939A (zh) | 突变β-葡萄糖苷酶 | |
JP2011160727A (ja) | 高温でセルロースからエタノールを生産する方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20130128 |
|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20130128 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20130128 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20130322 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20140617 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140815 |
|
A711 | Notification of change in applicant |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711 Effective date: 20140901 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20140901 |
|
A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20150304 |