JPWO2007097446A1 - Oligonucleic acid capping method - Google Patents

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由輝子 塩谷
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Abstract

本発明の目的は、いわゆるキャッピング工程において、5’位水酸基を効率的にアシル化する方法を提供することにある。次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体の各リボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることを特徴とする、次の一般式(12)で表されるオリゴ核酸誘導体の製造方法。An object of the present invention is to provide a method for efficiently acylating a 5 'hydroxyl group in a so-called capping step. A phenoxyacetic acid derivative represented by the following general formula (11a) as an acylating agent in a capping step in which the 5′-position hydroxyl group of each ribose of the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2) is protected with an acyl group An oligonucleic acid represented by the following general formula (12), characterized in that an anhydride is used as an activator for the acylation reaction, a pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c): A method for producing a derivative.

Description

本発明は、オリゴ核酸の固相合成法におけるキャッピング工程に関するものである。   The present invention relates to a capping step in a solid phase synthesis method of oligonucleic acid.

オリゴ核酸を製造する方法として、固相合成法が一般に知られている(非特許文献1)。
固相合成法は、固相担体に担持されたオリゴ核酸誘導体とホスホロアミダイト化合物とをカップリングさせることによって、所望の鎖長のオリゴ核酸を製造する方法であるが、全ての固相担体に担持されたオリゴ核酸誘導体に対してホスホロアミダイト化合物が完全に反応するとは限らない。そこで、高純度のオリゴ核酸を固相合成法で製造するため、固相担体に担持された未反応であるオリゴ核酸誘導体の5’位水酸基を保護し、上記カップリング反応に関与しないようにする工程、いわゆるキャッピング工程を経由する必要がある。
キャッピング工程では、オリゴ核酸誘導体の5’位水酸基を保護するためのアシル化剤として酸無水物(例えば、無水酢酸、フェノキシ酢酸無水物)を、アシル化反応の活性化剤として、例えば、4−ジメチルアミノピリジン(以下、「4−DMAP」という。)やN−メチルイミダゾール(以下、「NMI」という。)が一般に使用される。
しかし、アシル化反応の活性化剤として4−DMAPを使用した場合には、核酸塩基であるグアニンと4−DMAPとが反応し、グアニンが2,6−ジアミノプリン(以下、「2,6−DAP」という。)へ変換されることが報告されている(非特許文献2)。
Agrawalら,Methods in Molecular Biology:Protocols for Oligonucleotides and Analogs; Humana Press:Totowa,Vol.20,63(1993) J.Scottら,Nucleic Acids Research,Vol.17,NO.20,8333(1987)
As a method for producing an oligonucleic acid, a solid phase synthesis method is generally known (Non-patent Document 1).
The solid-phase synthesis method is a method of producing an oligonucleic acid having a desired chain length by coupling an oligonucleic acid derivative supported on a solid-phase carrier and a phosphoramidite compound. The phosphoramidite compound does not always react completely with the supported oligonucleic acid derivative. Therefore, in order to produce a high-purity oligonucleic acid by the solid phase synthesis method, the 5′-position hydroxyl group of the unreacted oligonucleic acid derivative supported on the solid phase carrier is protected so as not to participate in the coupling reaction. It is necessary to go through a process, a so-called capping process.
In the capping step, an acid anhydride (for example, acetic anhydride or phenoxyacetic anhydride) is used as an acylating agent for protecting the 5′-position hydroxyl group of the oligonucleic acid derivative, and an activator for the acylation reaction is, for example, 4- Dimethylaminopyridine (hereinafter referred to as “4-DMAP”) and N-methylimidazole (hereinafter referred to as “NMI”) are generally used.
However, when 4-DMAP is used as an activator for the acylation reaction, guanine, which is a nucleobase, reacts with 4-DMAP, and guanine is converted into 2,6-diaminopurine (hereinafter referred to as “2,6- (It is referred to as “DAP”) (non-patent document 2).
Agrawal et al., Methods in Molecular Biology: Protocols for Oligonucleotides and Analogs; Humana Press: Totowa, Vol. 20, 63 (1993) J. et al. Scott et al., Nucleic Acids Research, Vol. 17, NO. 20, 8333 (1987)

一方、NMIは、現在最も一般的に使用されているアシル化反応の活性化剤であるが、次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体につき、フェノキシ酢酸無水物と、NMIとを用いて、本発明者が、キャッピング工程を実施したところ、後述する試験例に示すように、満足できる効率で5’位水酸基にフェノキシアセチルが導入されず、その結果、高純度のオリゴ核酸を獲得するために、精製が煩雑になるという問題を見出した。
本発明の目的は、主として、いわゆるキャッピング工程において、リボースの5’位水酸基を効率的にアシル化する方法を提供することにある。
On the other hand, NMI is the most commonly used activator of acylation reaction. However, for the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2), phenoxyacetic anhydride and NMI As shown in the test examples described later, the present inventor did not introduce phenoxyacetyl into the 5′-position hydroxyl group with satisfactory efficiency, and as a result, obtained a high purity oligonucleic acid. Therefore, the problem that purification becomes complicated was found.
An object of the present invention is to provide a method for efficiently acylating a 5′-hydroxyl group of ribose mainly in a so-called capping step.

本発明者は、鋭意検討した結果、次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体のリボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることによって、次の一般式(12)で表されるオリゴ核酸誘導体を効率的に製造できることを見出し、本発明を完成するに至った。

Figure 2007097446
式(2)、(11a)、(11b)、(11c)及び(12)中、各Bxは、それぞれ独立して、保護基を有していてもよい核酸塩基又はその修飾体を表す。nは、1〜200の範囲内にある整数を表す。 nは、10〜100の範囲内にある整数が好ましく、また、より好ましくは、15〜50の範囲内にある整数である。各Qは、それぞれ独立して、O又はSを表す。R51、R52、R53は、それぞれ同一又は異なって、H、アルキル又はハロゲンを表す。R6a、R6b、R7a、R7b、R7c、R7dは、それぞれ同一又は異なって、アルキルを表す。R6c、R6dは、それぞれ同一又は異なって、H又はアルキルを表す。
各WGは、電子吸引性基を表す。各Rは、それぞれ独立して、H、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ又は次の一般式(3)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(3)中、WGは、電子吸引性基を表す。

Eは、アシル又は次の一般式(4)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(4)中、Eは、単結合又は次の一般式(5)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(5)中、Q、WGは、前記と同義である。

Tは、H、アシルオキシ、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ、上記一般式(3)で表される置換基又は上記一般式(4)で表される置換基を表す。但し、E又はTのどちらか一方は、置換基(4)である。

Bxに係る「核酸塩基」としては、核酸の合成に使用されるものであれば特に制限されず、例えば、シトシン、ウラシル、チミン等のピリミジン塩基、アデニン、グアニン等のプリン塩基を挙げることができる。
Bxに係る「核酸塩基」は、保護されていてもよく、なかでもアミノ基を有する核酸塩基、例えば、アデニン、グアニン、シトシンは、アミノ基が保護されているのが好ましい。 かかる「アミノ基の保護基」としては、核酸の保護基として使用されるものであれば特に制限されず、具体的には、例えば、ベンゾイル、4−メトキシベンゾイル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、フェニルアセチル、フェノキシアセチル、4−tert−ブチルフェノキシアセチル、4−イソプロピルフェノキシアセチル、(ジメチルアミノ)メチレン等を挙げることができる。とりわけ、グアニンのアミノ基の保護基としては、フェノキシアセチル、4−tert−ブチルフェノキシアセチル、4−イソプロピルフェノキシアセチルが好ましい。
の「修飾体」とは、核酸塩基が任意の置換基で置換されている基であり、かかる置換基としては、例えば、ハロゲン、アシル、アルキル、アリールアルキル、アルコキシ、アルコキシアルキル、ヒドロキシ、アミノ、モノアルキルアミノ、ジアルキルアミノ、カルボキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが任意の位置に1〜3個置換されている。
の修飾体に係る「ハロゲン」としては、例えば、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素を挙げることができる。
の修飾体に係る「アシル」としては、例えば、直鎖状又は分枝鎖状の炭素数1〜6のアルカノイル、炭素数7〜13のアロイルを挙げることができる。具体的には、例えば、ホルミル、アセチル、n−プロピオニル、イソプロピオニル、n−ブチリル、イソブチリル、tert−ブチリル、バレリル、ヘキサノイル、ベンゾイル、ナフトイル、レブリニル等を挙げることができる。
の修飾体に係る「アルキル」としては、例えば、直鎖状又は分枝鎖状の炭素数1〜5のアルキルを挙げることができる。具体的には、例えば、メチル、エチル、n−プロピル、イソプロピル、n−ブチル、イソブチル、sec−ブチル、tert−ブチル、n−ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、tert−ペンチル等を挙げることができる。当該アルキルは置換されていてもよく、かかる置換基としては、例えば、ハロゲン、アルキル、アルコキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが任意の位置に1〜3個置換されていてもよい。
の修飾体における「アリールアルキル」、「アルコキシアルキル」、「モノアルキルアミノ」及び「ジアルキルアミノ」の「アルキル」部分は、上記の「アルキル」と同じものを挙げることができる。
の修飾体に係る「アルコキシ」としては、例えば、直鎖状又は分枝鎖状の炭素数1〜4のアルコキシを挙げることができる。具体的には、例えば、メトキシ、エトキシ、n−プロポキシ、イソプロポキシ、n−ブトキシ、イソブトキシ、sec−ブトキシ、tert−ブトキシ等を挙げることができる。なかでも炭素数1〜3のものが好ましく、とりわけメトキシが好ましい。
の修飾体に係る「アルコキシアルキル」の「アルコキシ」部分は、上記の「アルコキシ」と同じものを挙げることができる。
の修飾体に係る「アリールアルキル」の「アリール」部分としては、例えば、炭素数6〜12のアリールを挙げることができる。具体的には、例えば、フェニル、1−ナフチル、2−ナフチル、ビフェニル等を挙げることができる。当該アリールは置換されていてもよく、かかる置換基としては、例えば、ハロゲン、アルキル、アルコキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが任意の位置に1〜3個置換されていてもよい。
の修飾体に係る「アルキル」、「アリール」の置換基である「ハロゲン」、「アルキル」及び「アルコキシ」としては、各々上記と同じものを挙げることができる。

WG、WGに係る「電子吸引性基」としては、例えば、シアノ、ニトロ、アルキルスルホニル、アリールスルホニル、ハロゲンを挙げることができる。なかでも、シアノが好ましい。
WG、WGの「電子吸引性基」に係る「ハロゲン」としては、上記Bの修飾体に係る「ハロゲン」と同じものを挙げることができる。
WG、WGに係る「アルキルスルホニル」の「アルキル」部分は、上記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
WG、WGに係る「アリールスルホニル」の「アリール」部分は、上記Bの修飾体に係る「アリールアルキル」の「アリール」部分と同じものを挙げることができる。

に係る「ハロゲン」、「アルコキシ」、「アルキルアミノ」又は「ジアルキルアミノ」は、前記Bの修飾体に係るそれらと同じものを挙げることができる。
に係る「アルコキシアルキルオキシ」、「アルキルチオ」の「アルキル」部分としては、前記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
に係る「アルコキシアルキルオキシ」の「アルコキシ」としては、前記Bの修飾体に係る「アルコキシ」と同じものを挙げることができる。
に係る「アルケニルオキシ」、「アルケニルチオ」、「アルケニルアミノ」、「ジアルケニルアミノ」の「アルケニル」部分としては、例えば、直鎖状又は分枝鎖状の炭素数2〜6のアルケニルを挙げることができる。具体的には、例えば、ビニル、アリル、1−プロペニル、イソプロペニル、1−ブテニル、2−ブテニル、1−ペンテニル、1−ヘキセニル等を挙げることができる。
に係る「アルキニルオキシ」、「アルキニルチオ」、「アルキニルアミノ」、「ジアルキニルアミノ」の「アルキニル」部分としては、例えば、直鎖状又は分枝鎖状の炭素数2〜4のアルキニルを挙げることができる。具体的には、例えば、エチニル、2−プロピニル、1−ブチニル等を挙げることができる。

51、R52、R53、R6a、R6b、R6c、R6d、R7a、R7b、R7c、R7dに係る「アルキル」は、上記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
51、R52、R53に係る「ハロゲン」は、上記Bの修飾体に係る「ハロゲン」と同じものを挙げることができる。

Eに係る「アシル」としては、前記Bの修飾体に係る「アシル」と同じものを挙げることができる。
Tの「アシルオキシ」に係る「アシル」部分は、前記Bの修飾体に係る「アシル」と同じものを挙げることができる。
Tに係る「ハロゲン」、「アルコキシ」、「アルキルアミノ」及び「ジアルキルアミノ」としては、前記Bの修飾体に係るそれらと同じものを挙げることができる。
Tに係る「アルコキシアルキルオキシ」及び「アルキルチオ」の「アルキル」部分としては、前記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
Tに係る「アルコキシアルキルオキシ」の「アルコキシ」部分としては、前記Bの修飾体に係る「アルコキシ」と同じものを挙げることができる。
Tに係る「アルケニルオキシ」、「アルケニルチオ」、「アルケニルアミノ」、「ジアルケニルアミノ」の「アルケニル」部分としては、前記Rに係る「アルケニル」と同じものを挙げることができる。
Tに係る「アルキニルオキシ」、「アルキニルチオ」、「アルキニルアミノ」、「ジアルキニルアミノ」の「アルキニル」部分としては、前記Rに係る「アルキニル」と同じものを挙げることができる。
Tに係る「アルキルアミノ」、「アルケニルアミノ」、「アルキニルアミノ」は保護されていてもよく、かかる保護基はアミノ基の保護基として使用されるものであれば特に制限されず、例えば、トリフルオロアセチル、ベンゾイル、4−メトキシベンゾイル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、フェニルアセチル、フェノキシアセチル、4−tert−ブチルフェノキシアセチル、4−イソプロピルフェノキシアセチル、(ジメチルアミノ)メチレンを挙げることができる。特に、トリフルオロアセチルが好ましい。

リボースの5’位水酸基をキャッピングするための「アシル化剤」としては、例えば、上記式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を挙げることができる。例えば、フェノキシ酢酸無水物、4−イソプロピルフェノキシ酢酸無水物、4−tert−ブチルフェノキシ酢酸無水物、4−クロロフェノキシ酢酸無水物を挙げることができる。
上記アシル化剤による「アシル化反応の活性化剤」としては、例えば、ピリジン誘導体(11b)及び(11c)を挙げることができる。例えば、2−ジメチルアミノピリジン(2−DMAP)、2,6−ジ−tert−ブチル−4−ジメチルアミノピリジン、2,6−ジメチル−4−ジメチルアミノピリジンを挙げることができる。

また、本発明として、次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体のリボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることによって、次の一般式(12)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程を含む、次の一般式(A)で表されるオリゴ核酸(以下、「オリゴ核酸(A)」という。)の製造方法を挙げることができる。
Figure 2007097446
式(2)、(11a)、(11b)、(11c)及び(12)中、各Bx、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R6a、R6b、R6c、R6d、R7a、R7b、R7c、R7d、R51、R52、R53、Tは、前記と同義である。

Figure 2007097446
式(A)中、各Q、各Rは、それぞれ独立して、前記と同義である。n、Zは、前記と同義である。各Bは、それぞれ独立して、核酸塩基又はその修飾体を表す。

Bで表される核酸塩基としては特に限定されるものではなく、例えば、シトシン、ウラシル、チミン等のピリミジン塩基、アデニン、グアニン等のプリン塩基を挙げることができる。
Bの「修飾体」とは、核酸塩基が任意の置換基で置換されている基であり、Bの「修飾体」に係る置換基としては、例えば、ハロゲン、アシル、アルキル、アリールアルキル、アルコキシ、アルコキシアルキル、ヒドロキシ、アミノ、モノアルキルアミノ、ジアルキルアミノ、カルボキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが任意の位置に1〜3個置換されている。
Bの修飾体に係る「ハロゲン」、「アシル」、「アルキル」、「アリールアルキル」、「アルコキシ」、「アルコキシアルキル」、「アミノ」、「モノアルキルアミノ」、「ジアルキルアミノ」としては、各々前記Bの修飾体に係るそれらと同じものを挙げることができる。
Rに係る「ハロゲン」、「アルコキシ」、「アルキルアミノ」及び「ジアルキルアミノ」としては、前記Bの修飾体に係るそれらと同じものを挙げることができる。
Rに係る「アルコキシアルキルオキシ」及び「アルキルチオ」の「アルキル」部分としては、前記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
Rに係る「アルコキシアルキルオキシ」の「アルコキシ」部分としては、前記Bの修飾体に係る「アルコキシ」と同じものを挙げることができる。
Rに係る「アルケニルオキシ」、「アルケニルチオ」、「アルケニルアミノ」、「ジアルケニルアミノ」の「アルケニル」部分としては、前記Rに係る「アルケニル」と同じものを挙げることができる。
Rに係る「アルキニルオキシ」、「アルキニルチオ」、「アルキニルアミノ」、「ジアルキニルアミノ」の「アルキニル」部分としては、前記Rに係る「アルキニル」と同じものを挙げることができる。
Rに係る「アルキルアミノ」、「アルケニルアミノ」、「アルキニルアミノ」は保護されていてもよく、かかる保護基はアミノ基の保護基として使用されるものであれば特に制限されず、例えば、トリフルオロアセチル、ベンゾイル、4−メトキシベンゾイル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、フェニルアセチル、フェノキシアセチル、4−tert−ブチルフェノキシアセチル、4−イソプロピルフェノキシアセチル、(ジメチルアミノ)メチレンを挙げることができる。特に、トリフルオロアセチルが好ましい。As a result of intensive studies, the present inventor has shown that the following general formula (2) is used as an acylating agent in the capping step of protecting the 5′-position hydroxyl group of ribose of an oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2) with an acyl group. By using the pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c) as the activator for the acylation reaction, the phenoxyacetic acid derivative anhydride represented by 11a) is used as the following general formula (12): It has been found that the oligonucleic acid derivative represented by the above can be efficiently produced, and the present invention has been completed.
Figure 2007097446
In the formulas (2), (11a), (11b), (11c) and (12), each Bx independently represents a nucleobase which may have a protecting group or a modified form thereof. n represents an integer in the range of 1 to 200. n is preferably an integer in the range of 10 to 100, and more preferably an integer in the range of 15 to 50. Each Q independently represents O or S. R 51 , R 52 and R 53 are the same or different and each represents H, alkyl or halogen. R 6a , R 6b , R 7a , R 7b , R 7c , and R 7d are the same or different and each represents alkyl. R 6c and R 6d are the same or different and each represents H or alkyl.
Each WG 2 represents an electron withdrawing group. Each R 4 is independently H, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, It represents a substituent represented by alkoxyalkyloxy or the following general formula (3).
Figure 2007097446
In formula (3), WG 1 represents an electron-withdrawing group.

E represents acyl or a substituent represented by the following general formula (4).
Figure 2007097446
In formula (4), E 1 represents a single bond or a substituent represented by the following general formula (5).
Figure 2007097446
In formula (5), Q and WG 2 are as defined above.

T is H, acyloxy, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, alkoxyalkyloxy, the above The substituent represented by the general formula (3) or the substituent represented by the general formula (4) is represented. However, either E or T is a substituent (4).

The “nucleobase” related to Bx is not particularly limited as long as it is used for nucleic acid synthesis, and examples thereof include pyrimidine bases such as cytosine, uracil and thymine, and purine bases such as adenine and guanine. .
The “nucleobase” according to Bx may be protected, and among them, a nucleic acid having an amino group, for example, adenine, guanine, and cytosine, preferably has an amino group protected. Such “amino-protecting group” is not particularly limited as long as it is used as a protecting group for nucleic acids. Specifically, for example, benzoyl, 4-methoxybenzoyl, acetyl, propionyl, butyryl, isobutyryl, Examples thereof include phenylacetyl, phenoxyacetyl, 4-tert-butylphenoxyacetyl, 4-isopropylphenoxyacetyl, (dimethylamino) methylene and the like. In particular, the protecting group for the amino group of guanine is preferably phenoxyacetyl, 4-tert-butylphenoxyacetyl, or 4-isopropylphenoxyacetyl.
The "modified form" of B X, is a group nucleobases are substituted with any substituent, and examples of such substituents include, for example, halogen, acyl, alkyl, arylalkyl, alkoxy, alkoxyalkyl, hydroxy, Mention may be made of amino, monoalkylamino, dialkylamino, carboxy, cyano, nitro, which are substituted 1 to 3 at any position.
According to modifications of B X "halogen" may include, for example, fluorine, chlorine, bromine, iodine.
According to modifications of B X "acyl" includes, for example, straight-chain or branched alkanoyl having 1 to 6 carbon atoms, may be mentioned aroyl of 7 to 13 carbon atoms. Specific examples include formyl, acetyl, n-propionyl, isopropionyl, n-butyryl, isobutyryl, tert-butyryl, valeryl, hexanoyl, benzoyl, naphthoyl, levulinyl and the like.
As "alkyl" of the modified form of B X, for example, a alkyl having 1 to 5 carbon atoms, straight-chain or branched. Specific examples include methyl, ethyl, n-propyl, isopropyl, n-butyl, isobutyl, sec-butyl, tert-butyl, n-pentyl, isopentyl, neopentyl, tert-pentyl and the like. The alkyl may be substituted, and examples of the substituent include halogen, alkyl, alkoxy, cyano, and nitro, and 1 to 3 of these may be substituted at an arbitrary position.
"Alkyl" portion of "arylalkyl", "alkoxyalkyl", "monoalkylamino" and "dialkylamino" in the modified form of B X may include the same as the "alkyl" above.
According to modifications of B X as "alkoxy", for example, a straight-chain or branched alkoxy having 1 to 4 carbon atoms. Specific examples include methoxy, ethoxy, n-propoxy, isopropoxy, n-butoxy, isobutoxy, sec-butoxy, tert-butoxy and the like. Of these, those having 1 to 3 carbon atoms are preferred, and methoxy is particularly preferred.
According to modifications of B X "alkoxy" moiety of the "alkoxyalkyl", it may include the same as the "alkoxy" above.
According to modifications of B X as "aryl" portion of "arylalkyl" includes, for example, aryl having 6 to 12 carbon atoms. Specific examples include phenyl, 1-naphthyl, 2-naphthyl, biphenyl, and the like. The aryl may be substituted, and examples of the substituent include halogen, alkyl, alkoxy, cyano, and nitro, and 1 to 3 of these may be substituted at any position.
According to modifications of B X "alkyl", as a substituent for the "aryl", "halogen", "alkyl" and "alkoxy" may each include the same as those described above.

Examples of the “electron withdrawing group” related to WG 1 and WG 2 include cyano, nitro, alkylsulfonyl, arylsulfonyl, and halogen. Of these, cyano is preferred.
Of WG 1, WG 2 according to the "electron-withdrawing group" as the "halogen" may include the same as the "halogen" related to the modified form of the B X.
WG 1, according to the WG 2 "alkyl" moiety of "alkylsulfonyl" may include the same as the "alkyl" related to the modified form of the B X.
"Aryl" portion of the according to the WG 1, WG 2 "arylsulfonyl" may include the same as the "aryl" portion of "arylalkyl" related to the modified form of the B X.

According to R 4 "halogen", "alkoxy", "alkylamino" or "dialkylamino" may include the same as those according to the modifications of the B X.
According to R 4 "alkoxy alkyloxy", the "alkyl" moiety of the "alkylthio" may include the same as the "alkyl" related to the modified form of the B X.
According to R 4 as "alkoxy" and "alkoxyalkyl alkyloxy" may include the same as "alkoxy" related to the modified form of the B X.
Examples of the “alkenyl” moiety of “alkenyloxy”, “alkenylthio”, “alkenylamino” and “dialkenylamino” according to R 4 include, for example, linear or branched alkenyl having 2 to 6 carbon atoms. Can be mentioned. Specific examples include vinyl, allyl, 1-propenyl, isopropenyl, 1-butenyl, 2-butenyl, 1-pentenyl, 1-hexenyl and the like.
Examples of the “alkynyl” part of “alkynyloxy”, “alkynylthio”, “alkynylamino” and “dialkynylamino” according to R 4 include, for example, linear or branched alkynyl having 2 to 4 carbon atoms. Can be mentioned. Specific examples include ethynyl, 2-propynyl, 1-butynyl and the like.

R 51, R 52, R 53 , R 6a, R 6b, R 6c, R 6d, R 7a, R 7b, R 7c, according to R 7d "alkyl", according to the modifications of the B X "alkyl" The same thing can be mentioned.
According to R 51, R 52, R 53 "halogen" may include the same as the "halogen" related to the modified form of the B X.

According to E "acyl" may include the same "acyl" related to the modified form of the B X.
"Acyl" moiety of the "acyloxy" of T may include the same as the "acyl" related to the modified form of the B X.
According to T "halogen", as "alkoxy", "alkylamino" and "dialkylamino" may include the same as those according to the modifications of the B X.
According to T as an "alkyl" moiety of "alkoxyalkyloxy" and "alkylthio" may include the same as the "alkyl" related to the modified form of the B X.
According to T as "alkoxy" moiety of the "alkoxy alkyloxy" may include the same as "alkoxy" related to the modified form of the B X.
According to T "alkenyloxy", as the "alkenyl" moiety of "alkenylthio", "alkenylamino", "dialkenylamino amino" may include the same as "alkenyl" related to the R 4.
Examples of the “alkynyl” part of “alkynyloxy”, “alkynylthio”, “alkynylamino”, and “dialkynylamino” according to T include the same as “alkynyl” according to R 4 .
“Alkylamino”, “alkenylamino”, and “alkynylamino” according to T may be protected, and the protecting group is not particularly limited as long as it is used as a protecting group for an amino group. Fluoroacetyl, benzoyl, 4-methoxybenzoyl, acetyl, propionyl, butyryl, isobutyryl, phenylacetyl, phenoxyacetyl, 4-tert-butylphenoxyacetyl, 4-isopropylphenoxyacetyl, (dimethylamino) methylene. In particular, trifluoroacetyl is preferred.

Examples of the “acylating agent” for capping the 5′-position hydroxyl group of ribose include phenoxyacetic acid derivative anhydrides represented by the above formula (11a). Examples thereof include phenoxyacetic anhydride, 4-isopropylphenoxyacetic anhydride, 4-tert-butylphenoxyacetic anhydride, and 4-chlorophenoxyacetic anhydride.
Examples of the “activator for acylation reaction” by the acylating agent include pyridine derivatives (11b) and (11c). Examples thereof include 2-dimethylaminopyridine (2-DMAP), 2,6-di-tert-butyl-4-dimethylaminopyridine, and 2,6-dimethyl-4-dimethylaminopyridine.

In the capping step of protecting the 5′-position hydroxyl group of ribose of the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2) with an acyl group, the present invention can be represented by the following general formula (11a) as an acylating agent. By using a pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c) as an activator of the acylation reaction, the phenoxyacetic acid derivative anhydride represented by the following general formula (12) The manufacturing method of the oligonucleic acid (henceforth "oligonucleic acid (A)") represented by the following general formula (A) including the process of manufacturing an oligonucleic acid derivative can be mentioned.
Figure 2007097446
In formulas (2), (11a), (11b), (11c), and (12), each Bx, each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R 6a , R 6b , R 6c , R 6d , R 7a , R 7b , R 7c , R 7d , R 51 , R 52 , R 53 , and T are as defined above.

Figure 2007097446
In formula (A), each Q and each R are independently the same as defined above. n and Z are as defined above. Each B independently represents a nucleobase or a modified form thereof.

The nucleobase represented by B is not particularly limited, and examples thereof include pyrimidine bases such as cytosine, uracil and thymine, and purine bases such as adenine and guanine.
The “modified product” of B is a group in which the nucleobase is substituted with an arbitrary substituent. Examples of the substituents related to the “modified product” of B include, for example, halogen, acyl, alkyl, arylalkyl, alkoxy , Alkoxyalkyl, hydroxy, amino, monoalkylamino, dialkylamino, carboxy, cyano, nitro, which are substituted 1 to 3 at any position.
As the “halogen”, “acyl”, “alkyl”, “arylalkyl”, “alkoxy”, “alkoxyalkyl”, “amino”, “monoalkylamino” and “dialkylamino” related to the modified form of B, it can be cited the same as those according to the modifications of the B X.
According to R "halogen", as "alkoxy", "alkylamino" and "dialkylamino" may include the same as those according to the modifications of the B X.
According to R as "alkyl" portions of "alkoxy alkyloxy" and "alkylthio" may include the same as the "alkyl" related to the modified form of the B X.
According to R as "alkoxy" moiety of the "alkoxy alkyloxy" may include the same as "alkoxy" related to the modified form of the B X.
According to R "alkenyloxy", as the "alkenyl" moiety of "alkenylthio", "alkenylamino", "dialkenylamino amino" may include the same as "alkenyl" related to the R 4.
Examples of the “alkynyl” part of “alkynyloxy”, “alkynylthio”, “alkynylamino” and “dialkynylamino” according to R include the same “alkynyl” as the above-mentioned R 4 .
“Alkylamino”, “alkenylamino”, and “alkynylamino” according to R may be protected, and the protecting group is not particularly limited as long as it is used as a protecting group for an amino group. Fluoroacetyl, benzoyl, 4-methoxybenzoyl, acetyl, propionyl, butyryl, isobutyryl, phenylacetyl, phenoxyacetyl, 4-tert-butylphenoxyacetyl, 4-isopropylphenoxyacetyl, (dimethylamino) methylene. In particular, trifluoroacetyl is preferred.

以下、本発明を詳細に説明する。
Hereinafter, the present invention will be described in detail.

以下に示す製法において、原料が反応に影響を及ぼす置換基(例えば、ヒドロキシ、アミノ、カルボキシ)を有する場合は、原料をあらかじめ公知の方法に従い、適当な保護基で保護した後に反応を行う。保護基は、最終的に、接触還元、アルカリ処理、酸処理などの公知の方法に従い保護基を脱離することができる。
In the production method shown below, when the raw material has a substituent (for example, hydroxy, amino, carboxy) that affects the reaction, the reaction is performed after protecting the raw material with an appropriate protective group in accordance with a known method in advance. The protecting group can finally be removed according to a known method such as catalytic reduction, alkali treatment, acid treatment or the like.

I.オリゴ核酸(A)の製造方法
オリゴ核酸(A)の製造方法について、以下に詳述する。

Figure 2007097446
式(A)中、各B、各Q、各Rは、それぞれ独立して、前記と同義である。n、Zは、前記と同義である。

オリゴ核酸(A)の製法は、公知の方法に従い行うことができるが、例えば、次に示す工程A〜工程Hの操作を実施することにより、段階的に3’から5’の方向へ核酸モノマー化合物を縮合することにより行うことができる。
下記工程に使用されている化合物及び試薬は、オリゴ核酸の合成に一般的に使用されているものであれば特に限定されない。また、既存の核酸合成試薬を用いた場合と同様、すべての工程をマニュアル又は市販のDNA自動合成機を用いて製造することができる。自動合成機で行うことにより操作法の簡便化、また合成の正確性の点から自動合成機を用いる方法が望ましい。
I. Production method of oligonucleic acid (A) The production method of oligonucleic acid (A) is described in detail below.
Figure 2007097446
In formula (A), each B, each Q, and each R are independently the same as defined above. n and Z are as defined above.

The production method of the oligonucleic acid (A) can be carried out according to a known method. For example, by performing the operations of the following steps A to H, the nucleic acid monomer is stepwise from 3 ′ to 5 ′. This can be done by condensing the compounds.
The compounds and reagents used in the following steps are not particularly limited as long as they are generally used for oligonucleic acid synthesis. Further, as in the case of using an existing nucleic acid synthesis reagent, all the steps can be produced using a manual or a commercially available DNA automatic synthesizer. A method using an automatic synthesizer is desirable from the viewpoint of simplification of the operation method by using an automatic synthesizer and the accuracy of synthesis.

(1)工程A:
次の一般式(1)で表される(オリゴ)核酸誘導体に酸を作用させることによって、5’位の水酸基の保護基を脱離して、次の一般式(2)で表される(オリゴ)核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(1)及び(2)中、n、E、Tは前記と同義である。各Bx、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。 Rは、次の一般式(10)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(10)中、R11、R12、R13は、同一又は異なって、水素又はアルコキシを表す。
11、R12、R13に係る「アルコキシ」としては、前記Bの修飾体に係る「アルコキシ」と同じものを挙げることができる。
本工程は、固相担体に担持されている次の一般式(6a)、(6b)で表される核酸誘導体(n=1である核酸誘導体(1))、又は、工程A〜工程Dの操作を行うことにより製造される固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体(n=2〜100であるオリゴ核酸誘導体(1))(以下、「固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体」という。)に酸を作用させることにより実施することができる。
Figure 2007097446
式(6a)及び(6b)中、B、Rは、前記と同義である。R2L、R4Lは、前記置換基(4)を表す。Rは、アシルオキシを表す。R4aは、H、アシルオキシ、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ又は前記置換基(3)を表す。

、R4aの「アシルオキシ」に係る「アシル」部分としては、例えば、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、ベンゾイル、4−メトキシベンゾイル、フェニルアセチル、フェノキシアセチル、4−tert−ブチルフェノキシアセチル、4−イソプロピルフェノキシアセチルを挙げることができる。
4aに係る「ハロゲン」、「アルコキシ」、「アルキルアミノ」及び「ジアルキルアミノ」としては、前記Bxの修飾体に係るそれらと同じものを挙げることができる。
4aに係る「アルコキシアルキルオキシ」及び「アルキルチオ」の「アルキル」部分としては、前記Bxの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
4aに係る「アルコキシアルキルオキシ」の「アルコキシ」部分としては、前記Bxの修飾体に係る「アルコキシ」と同じものを挙げることができる。
4aに係る「アルケニルオキシ」、「アルケニルチオ」、「アルケニルアミノ」、「ジアルケニルアミノ」の「アルケニル」部分としては、前記Rに係る「アルケニル」と同じものを挙げることができる。
4aに係る「アルキニルオキシ」、「アルキニルチオ」、「アルキニルアミノ」、「ジアルキニルアミノ」の「アルキニル」部分としては、前記Rに係る「アルキニル」と同じものを挙げることができる。
4aに係る「アミノ」、「アルキルアミノ」、「アルケニルアミノ」、「アルキニルアミノ」は保護されていてもよく、かかる保護基はアミノ基の保護基として使用されるものであれば特に制限されず、例えば、トリフルオロアセチル、ベンゾイル、4−メトキシベンゾイル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、フェニルアセチル、フェノキシアセチル、4−tert−ブチルフェノキシアセチル、4−イソプロピルフェノキシアセチル、(ジメチルアミノ)メチレンを挙げることができる。特に、トリフルオロアセチルが好ましい。
「固相担体」としては、例えば、定孔ガラス(controlled pore glass;CPG)、オキサリル化−定孔ガラス(例えば、Alulら,Nucleic Acids Research,Vol.19,1527(1991)を参照)、TentaGel支持体−アミノポリエチレングリコール誘導体化支持体(例えば、Wrightら,Tetrahedron Letters,Vol.34,3373(1993)を参照)、Poros−ポリスチレン/ジビニルベンゼンのコポリマーを挙げることができる。
「リンカー」としては、例えば、3−アミノプロピル、スクシニル、2,2’−ジエタノールスルホニル、ロングチェーンアルキルアミノ(LCAA)を挙げることができる。
核酸誘導体(6a)、核酸誘導体(6b)は、公知の方法に従い製造される又は市販品として入手できる固相担体に担持されている核酸誘導体であり、好ましい態様としては、例えば、次の一般式(7)、(8)で表される核酸化合物を挙げることができる。
Figure 2007097446
式(7)及び(8)中、B、Q、R、R、WGは、前記と同義である。

が置換基(3)である核酸化合物(7)、(8)は、後述するホスホロアミダイト化合物(B)から公知の方法に従い製造することができる。

本工程に使用しうる「酸」としては、例えば、トリフルオロ酢酸、ジクロロ酢酸、トリクロロ酢酸を挙げることができる。本工程に使用しうる酸は、1〜5%の濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することもできる。溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、ジクロロメタン、アセトニトリル、水又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。上記反応における反応温度は、20℃〜50℃が好ましい。反応時間は、(オリゴ)核酸誘導体(1)の種類、使用する酸の種類、反応温度等によって異なるが、通常1分〜1時間が適当である。使用する試薬の量は固相担体に担持されている(オリゴ)核酸誘導体に対して0.8〜100倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。
(1) Process A:
By reacting an acid with the (oligo) nucleic acid derivative represented by the following general formula (1), the protecting group for the hydroxyl group at the 5′-position is eliminated, and represented by the following general formula (2) (oligo) ) A step of producing a nucleic acid derivative.
Figure 2007097446
In the formulas (1) and (2), n, E, and T are as defined above. Each Bx, each Q, each R 4 and each WG 2 are independently the same as described above. R 1 represents a substituent represented by the following general formula (10).
Figure 2007097446
In formula (10), R 11 , R 12 and R 13 are the same or different and each represents hydrogen or alkoxy.
According to R 11, R 12, R 13 as "alkoxy" may include the same as "alkoxy" related to the modified form of the B X.
In this step, the nucleic acid derivative represented by the following general formulas (6a) and (6b) supported on the solid phase carrier (the nucleic acid derivative (1) where n = 1), or the steps A to D Oligonucleic acid derivative (oligonucleic acid derivative (1) where n = 2 to 100) carried on a solid phase carrier produced by performing the operation (hereinafter referred to as “oligonucleic acid derivative carried on a solid phase carrier”) It can be carried out by allowing an acid to act on.
Figure 2007097446
In formulas (6a) and (6b), B X and R 1 are as defined above. R 2L and R 4L represent the substituent (4). R 2 represents acyloxy. R 4a is H, acyloxy, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, alkoxyalkyloxy or The said substituent (3) is represented.

Examples of the “acyl” moiety related to “acyloxy” of R 2 and R 4a include acetyl, propionyl, butyryl, isobutyryl, benzoyl, 4-methoxybenzoyl, phenylacetyl, phenoxyacetyl, 4-tert-butylphenoxyacetyl, 4 Mention may be made of -isopropylphenoxyacetyl.
Examples of “halogen”, “alkoxy”, “alkylamino” and “dialkylamino” according to R 4a include the same as those related to the modified form of Bx.
Examples of the “alkyl” part of “alkoxyalkyloxy” and “alkylthio” according to R 4a include the same “alkyl” as the modified Bx.
Examples of the “alkoxy” part of the “alkoxyalkyloxy” according to R 4a include the same “alkoxy” as the modified Bx.
Examples of the “alkenyl” moiety of “alkenyloxy”, “alkenylthio”, “alkenylamino”, and “dialkenylamino” according to R 4a include the same “alkenyl” as the above R 4 .
Examples of the “alkynyl” part of “alkynyloxy”, “alkynylthio”, “alkynylamino”, and “dialkynylamino” according to R 4a include the same “alkynyl” as the above R 4 .
“Amino”, “alkylamino”, “alkenylamino” and “alkynylamino” according to R 4a may be protected, and the protecting group is not particularly limited as long as it is used as a protecting group for an amino group. Examples include trifluoroacetyl, benzoyl, 4-methoxybenzoyl, acetyl, propionyl, butyryl, isobutyryl, phenylacetyl, phenoxyacetyl, 4-tert-butylphenoxyacetyl, 4-isopropylphenoxyacetyl, and (dimethylamino) methylene. be able to. In particular, trifluoroacetyl is preferred.
As the “solid phase carrier”, for example, controlled pore glass (CPG), oxalylated-constant glass (see, for example, Alul et al., Nucleic Acids Research, Vol. 19, 1527 (1991)), TentaGel Supports-aminopolyethylene glycol derivatized supports (see, for example, Wright et al., Tetrahedron Letters, Vol. 34, 3373 (1993)), Poros-polystyrene / divinylbenzene copolymers.
Examples of the “linker” include 3-aminopropyl, succinyl, 2,2′-diethanolsulfonyl, and long chain alkylamino (LCAA).
The nucleic acid derivative (6a) and the nucleic acid derivative (6b) are nucleic acid derivatives produced according to known methods or supported on a solid phase carrier that can be obtained as a commercial product. Preferred embodiments include, for example, the following general formula: The nucleic acid compound represented by (7), (8) can be mentioned.
Figure 2007097446
In formulas (7) and (8), B X , Q, R 1 , R 4 , and WG 2 are as defined above.

The nucleic acid compounds (7) and (8) in which R 4 is the substituent (3) can be produced from the phosphoramidite compound (B) described later according to a known method.

Examples of the “acid” that can be used in this step include trifluoroacetic acid, dichloroacetic acid, and trichloroacetic acid. The acid that can be used in this step can be used after diluting with an appropriate solvent so as to have a concentration of 1 to 5%. The solvent is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, acetonitrile, water, and any mixed solvent thereof. The reaction temperature in the above reaction is preferably 20 ° C to 50 ° C. The reaction time varies depending on the type of (oligo) nucleic acid derivative (1), the type of acid used, the reaction temperature, etc., but usually 1 minute to 1 hour is appropriate. The amount of the reagent to be used is suitably 0.8 to 100-fold mol amount, preferably 1 to 10-fold mol amount based on the (oligo) nucleic acid derivative supported on the solid phase carrier.

(2)工程B:
工程Aにおいて製造される(オリゴ)核酸誘導体(2)に、活性化剤を用いて核酸モノマー化合物を縮合させ、次の一般式(9)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(2)及び(9)中、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R、Tは、前記と同義である。

本工程は、固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体に核酸モノマー化合物と活性化剤とを作用させることにより実施することができる。

「核酸モノマー化合物」としては、次の一般式(B)で表されるホスホロアミダイト化合物(以下、「ホスホロアミダイト化合物(B)」という。)又は次の一般式(C)で表される核酸化合物を挙げることができる。
Figure 2007097446
式(B)及び(C)中、B、Bzは、それぞれ保護基を有していてもよい核酸塩基又はその修飾体を表す。R、R4aは、前記と同義である。
2a、R2bは、同一若しくは異なって、アルキルを表すか、又は、R2a、R2bが隣接する窒素原子と一緒になって形成する、5〜6員の飽和アミノ環基を表す。かかる飽和アミノ環基は、窒素原子の他に環構成原子として酸素原子又は硫黄原子を1個有していてもよい。WG、WGは、それぞれ、電子吸引性基を表す。(2) Process B:
A step of producing an oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (9) by condensing a nucleic acid monomer compound with the activator to the (oligo) nucleic acid derivative (2) produced in the step A.
Figure 2007097446
In formulas (2) and (9), each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R 1 and T are as defined above.

This step can be performed by causing a nucleic acid monomer compound and an activator to act on the oligonucleic acid derivative supported on the solid phase carrier.

The “nucleic acid monomer compound” is represented by the following general formula (B) phosphoramidite compound (hereinafter referred to as “phosphoramidite compound (B)”) or the following general formula (C). A nucleic acid compound can be mentioned.
Figure 2007097446
In formulas (B) and (C), B Y and Bz each represent a nucleobase which may have a protecting group or a modified form thereof. R 1 and R 4a are as defined above.
R 2a and R 2b are the same or different and each represents alkyl, or represents a 5- to 6-membered saturated amino ring group formed by R 2a and R 2b together with the adjacent nitrogen atom. Such a saturated amino ring group may have one oxygen atom or sulfur atom as a ring constituent atom in addition to the nitrogen atom. WG 1 and WG 2 each represent an electron-withdrawing group.

Bzに係る「核酸塩基」としては、核酸の合成に使用されるものであれば特に制限されず、例えば、シトシン、ウラシル等のピリミジン塩基、アデニン、グアニン等のプリン塩基を挙げることができる。
に係る「核酸塩基」としては、核酸の合成に使用されるものであれば特に制限されず、例えば、シトシン、ウラシル、チミン等のピリミジン塩基、アデニン、グアニン等のプリン塩基を挙げることができる。
Bz、Bに係る「核酸塩基」は、保護されていてもよく、なかでもアミノ基を有する核酸塩基、例えば、アデニン、グアニン、シトシンは、アミノ基が保護されているのが好ましい。かかる「アミノ基の保護基」としては、前記Bの修飾体に係る「アミノ基の保護基」と同じものを挙げることができる。
Bz、Bの「修飾体」とは、核酸塩基が任意の置換基で置換されている基であり、かかる置換基としては、例えば、ハロゲン、アシル、アルキル、アリールアルキル、アルコキシ、アルコキシアルキル、ヒドロキシ、アミノ、モノアルキルアミノ、ジアルキルアミノ、カルボキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが任意の位置に1〜3個置換されている。
Bz、Bの修飾体に係る「ハロゲン」、「アシル」、「アルキル」、「アリールアルキル」、「アルコキシ」、「アルコキシアルキル」、「モノアルキルアミノ」、「ジアルキルアミノ」としては、各々前記Bxのそれらと同じものを挙げることができる。
The “nucleobase” related to Bz is not particularly limited as long as it is used for nucleic acid synthesis, and examples thereof include pyrimidine bases such as cytosine and uracil, and purine bases such as adenine and guanine.
The “nucleic acid base” according to BY is not particularly limited as long as it is used for nucleic acid synthesis, and examples thereof include pyrimidine bases such as cytosine, uracil and thymine, and purine bases such as adenine and guanine. it can.
“Nucleobase” according to Bz and BY may be protected, and among them, nucleobase having an amino group, for example, adenine, guanine and cytosine, preferably have an amino group protected. Examples of the "protecting group of amino group" may include the same as the "protective group for amino group" related to the modified form of the B X.
The “modified product” of Bz and BY is a group in which a nucleobase is substituted with an arbitrary substituent. Examples of such a substituent include halogen, acyl, alkyl, arylalkyl, alkoxy, alkoxyalkyl, Mention may be made of hydroxy, amino, monoalkylamino, dialkylamino, carboxy, cyano, nitro, which are substituted 1 to 3 at any position.
The “halogen”, “acyl”, “alkyl”, “arylalkyl”, “alkoxy”, “alkoxyalkyl”, “monoalkylamino” and “dialkylamino” related to the modified Bz and BY are The same thing as those of Bx can be mentioned.


2a、R2bに係る「アルキル」としては、前記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
2a、R2bに係る「5〜6員の飽和アミノ環基」としては、例えば、ピロリジン−1−イル、ピペリジン−1−イル、モルホリン−1−イル、チオモルホリン−1−イルを挙げることができる。

R 2a, according to R 2b as "alkyl" may include the same as the "alkyl" related to the modified form of the B X.
Examples of the “5- to 6-membered saturated amino ring group” according to R 2a and R 2b include pyrrolidin-1-yl, piperidin-1-yl, morpholin-1-yl, and thiomorpholin-1-yl. Can do.

「活性化剤」としては、例えば、1H−テトラゾール、5−エチルチオテトラゾール、5−ベンジルメルカプト−1H−テトラゾール、4,5−ジクロロイミダゾール、4,5−ジシアノイミダゾール、ベンゾトリアゾールトリフラート、イミダゾールトリフラート、ピリジニウムトリフラート、N,N−ジイソプロピルエチルアミン、2,4,6−コリジン/N−メチルイミダゾールを挙げることができる。
反応溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、アセトニトリル、テトラヒドロフラン(以下、「THF」という。)を挙げることができる。上記反応における反応温度は、20℃〜50℃が好ましい。反応時間は、オリゴ核酸誘導体(2)の種類、使用する活性化剤の種類、反応温度等によって異なるが、通常1分〜1時間が適当である。使用する試薬の量は固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体に対して1〜100倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。
Examples of the “activator” include 1H-tetrazole, 5-ethylthiotetrazole, 5-benzylmercapto-1H-tetrazole, 4,5-dichloroimidazole, 4,5-dicyanoimidazole, benzotriazole triflate, imidazole triflate, Mention may be made of pyridinium triflate, N, N-diisopropylethylamine, 2,4,6-collidine / N-methylimidazole.
The reaction solvent is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include acetonitrile and tetrahydrofuran (hereinafter referred to as “THF”). The reaction temperature in the above reaction is preferably 20 ° C to 50 ° C. The reaction time varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (2), the type of activator used, the reaction temperature, and the like, but usually 1 minute to 1 hour is appropriate. The amount of the reagent to be used is appropriately 1 to 100 times, preferably 1 to 10 times the molar amount of the oligonucleic acid derivative supported on the solid phase carrier.

ホスホロアミダイト化合物(B)は、2’位の水酸基に中性条件下において脱離可能なエーテル型保護基を有するホスホロアミダイト化合物である。また、2’位の水酸基に導入された基が直鎖状の置換基であり、3’位の水酸基に結合するリン原子の周りにおける立体が混み合っていないため、従来から使用されているホスホロアミダイト化合物と比較して、オリゴRNAを合成する際、非常に短時間に縮合反応が進行し、縮合収率がよいという特徴を有する。
The phosphoramidite compound (B) is a phosphoramidite compound having an ether-type protecting group that can be removed under a neutral condition at the 2′-position hydroxyl group. In addition, since the group introduced into the hydroxyl group at the 2′-position is a linear substituent and the three-dimensional structure around the phosphorus atom bonded to the hydroxyl group at the 3′-position is not crowded, the conventionally used phospho Compared to loamidite compounds, when synthesizing oligo RNA, the condensation reaction proceeds in a very short time and the condensation yield is good.

(3)工程C:
工程Bにおいて未反応である(オリゴ)核酸誘導体(2)のリボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることによって、次の一般式(12)で表される(オリゴ)核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(2)、(11a)、(11b)、(11c)及び(12)中、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R6a、R6b、R6c、R6d、R7a、R7b、R7c、R7d、R51、R52、R53、Tは、前記と同義である。

本工程は、工程Bにおいて未反応である(オリゴ)核酸誘導体(2)の5’位水酸基を保護する反応であり、固相担体に担持されている未反応であるオリゴ核酸誘導体(2)にフェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)とアシル化反応の活性化剤(11b)又は(11c)と塩基とを作用させることにより実施することができる。
アシル化剤は、0.05〜1Mの濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することもできる。アシル化剤の使用量の使用量としては、固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体(2)の種類等によって異なるが、固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体(2)のモル量に対して0.8〜100倍モル量が適当であり、好ましくは10〜30倍モル量である。
アシル化反応の活性化剤の使用量としては、フェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)のモル量に対して、0.8〜50倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。
また、必要であれば、本工程における副生成物であるフェノキシ酢酸誘導体を捕捉するために、フェノキシ酢酸誘導体の捕捉剤として、例えば、ピリジン、2,6−ルチジン,2,4,6−コリジン又はこれら任意の混合物を添加することができる。とりわけ、2,6−ルチジンが好ましい。塩基の使用量としては、固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体(2)の種類、フェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)等によって異なるが、フェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)のモル量に対して、0.8〜100倍モル量が適当であり、好ましくは1〜20倍モル量である。
反応に使用する溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、ジクロロメタン、アセトニトリル、THF又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。上記工程における反応温度は、20℃〜50℃が好ましい。反応時間は、オリゴ核酸誘導体(2)の種類、使用するアシル化剤の種類、使用するアシル化反応の活性化剤、塩基、反応温度等によって異なるが、通常1分〜30分が適当である。
(3) Process C:
A phenoxyacetic acid derivative represented by the following general formula (11a) as an acylating agent in the capping step of protecting the 5′-position hydroxyl group of ribose of the (oligo) nucleic acid derivative (2) unreacted in step B with an acyl group (Oligo) nucleic acid derivative represented by the following general formula (12) by using an anhydride as a pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c) as an activator for the acylation reaction Manufacturing process.

Figure 2007097446
In the formulas (2), (11a), (11b), (11c), and (12), each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R 6a , R 6b , R 6c , R 6d , R 7a , R 7b , R 7c , R 7d , R 51 , R 52 , R 53 , and T are as defined above.

This step is a reaction for protecting the 5′-position hydroxyl group of the (oligo) nucleic acid derivative (2) that has not been reacted in step B, and the unreacted oligonucleic acid derivative (2) carried on the solid phase carrier The reaction can be carried out by allowing the phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a), the acylation reaction activator (11b) or (11c), and a base to act.
The acylating agent can be used by diluting with an appropriate solvent so as to have a concentration of 0.05 to 1M. The amount of the acylating agent used varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (2) supported on the solid support, but the molar amount of the oligonucleic acid derivative (2) supported on the solid support. The amount is 0.8 to 100 times the molar amount, preferably 10 to 30 times the molar amount.
The amount of the activator used for the acylation reaction is suitably 0.8 to 50 times, preferably 1 to 10 times the molar amount of the phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a). is there.
Further, if necessary, in order to capture the phenoxyacetic acid derivative which is a by-product in this step, as a phenoxyacetic acid derivative capturing agent, for example, pyridine, 2,6-lutidine, 2,4,6-collidine or Any of these mixtures can be added. In particular, 2,6-lutidine is preferable. The amount of base used varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (2) supported on the solid phase carrier, phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a), etc., but relative to the molar amount of phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a). In addition, 0.8 to 100-fold molar amount is appropriate, and preferably 1 to 20-fold molar amount.
The solvent used in the reaction is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, acetonitrile, THF, and any mixed solvent thereof. As for the reaction temperature in the said process, 20 to 50 degreeC is preferable. The reaction time varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (2), the type of acylating agent used, the activator of the acylation reaction used, the base, the reaction temperature, etc., but usually 1 to 30 minutes is appropriate. .

(4)工程D:
工程Bにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(9)に酸化剤を作用させることによって亜リン酸基をリン酸基又はチオリン酸基に変換する工程。

Figure 2007097446
式(9)及び(13)中、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R、Tは、前記と同義である。

本工程は、3価のリンから5価のリンに酸化剤を使用して変換する反応であり、固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体に酸化剤を作用させることにより実施することができる。
「リンを酸素で酸化する場合には、「酸化剤」として、例えば、ヨウ素、tert−ブチルヒドロペルオキシドを使用することができる。該酸化剤は、0.05〜2Mの濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することができる。反応に使用する溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、ピリジン、THF、水又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。例えば、ヨウ素/水/ピリジン―THFあるいはヨウ素/ピリジン―酢酸や過酸化剤(t−ブチルヒドロパーオキシド/メチレンクロリドなど)を用いることができる。
また、リンを硫黄で酸化する場合には、「酸化剤」として、例えば、硫黄、Beaucage試薬(3H−1,2−ベンゾジチオール−3−オン−1,1−ジオキシド)、3−アミノ−1,2,4−ジチアゾール−5−チオン(ADTT)を使用することができる。該酸化剤は、0.05〜2Mの濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することができる。反応に使用する溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、アセトニトリル、ピリジン又はこれら任意の混合溶媒が挙げられる。
反応温度は、20℃〜50℃が好ましい。反応時間は、オリゴ核酸誘導体(9)の種類、使用する酸化剤の種類、反応温度等によって異なるが、通常1分〜30分が適当である。使用する試薬の量は固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体に対して1〜100倍モル量が適当であり、好ましくは10〜50倍モル量である。
(4) Process D:
A step of converting a phosphite group into a phosphate group or a thiophosphate group by allowing an oxidizing agent to act on the oligonucleic acid derivative (9) produced in Step B.
Figure 2007097446
In formulas (9) and (13), each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R 1 and T are as defined above.

This step is a reaction for converting trivalent phosphorus to pentavalent phosphorus using an oxidizing agent, and can be carried out by allowing an oxidizing agent to act on an oligonucleic acid derivative supported on a solid phase carrier. .
“When phosphorus is oxidized with oxygen, iodine, tert-butyl hydroperoxide, for example, can be used as the“ oxidant ”. The oxidizing agent can be used after being diluted with a suitable solvent so as to have a concentration of 0.05 to 2M. The solvent used in the reaction is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include pyridine, THF, water, and any mixed solvent thereof. For example, iodine / water / pyridine-THF or iodine / pyridine-acetic acid or a peroxide (t-butyl hydroperoxide / methylene chloride, etc.) can be used.
When phosphorus is oxidized with sulfur, examples of the “oxidant” include sulfur, Beaucage reagent (3H-1,2-benzodithiol-3-one-1,1-dioxide), 3-amino-1 2,4-dithiazole-5-thione (ADTT) can be used. The oxidizing agent can be used after being diluted with a suitable solvent so as to have a concentration of 0.05 to 2M. The solvent used in the reaction is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, acetonitrile, pyridine, and any mixed solvent thereof.
The reaction temperature is preferably 20 ° C to 50 ° C. The reaction time varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (9), the type of oxidizing agent used, the reaction temperature, and the like, but usually 1 to 30 minutes is appropriate. The amount of the reagent to be used is appropriately 1 to 100-fold mol amount, preferably 10 to 50-fold mol amount based on the oligonucleic acid derivative supported on the solid phase carrier.

(5)工程E:
工程Dにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(13)を固相担体から切り出し、各核酸塩基部及び各リン酸基の保護基を脱離する工程。

Figure 2007097446
式(13)及び(14)中、各B、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R、R、T、Zは、前記と同義である。

切り出し工程は、所望の鎖長のオリゴRNAを切り出し剤によって、固相担体及びリンカーから外す反応であり、所望の鎖長のオリゴ核酸誘導体が担持された固体担体に切り出し剤を添加することにより実施することができる。本工程において、核酸塩基部の保護基を脱離することができる。
「切り出し剤」としては、例えば、濃アンモニア水、メチルアミンを挙げることができる。本工程に使用しうる「切り出し剤」は、例えば、水、メタノール、エタノール、イソプロピルアルコール、アセトニトリル、THF又はこれら任意の混合溶媒で希釈して使用することもできる。なかでも、エタノールが好ましい。
反応温度は、15℃〜75℃が適当であり、好ましくは15℃〜30℃であり、より好ましくは18℃〜25℃である。脱保護反応時間は、10分〜30時間が適当であり、好ましくは30分〜24時間であり、より好ましくは1〜4時間である。脱保護に使用される溶液中の水酸化アンモニウムの濃度は、20〜30重量%が適当であり、好ましくは25〜30重量%であり、より好ましくは28〜30重量%である。使用する試薬の量は、固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体(13)に対して1〜100倍モル量が適当であり、好ましくは10〜50倍モル量である。
(5) Process E:
A step of cleaving the oligonucleic acid derivative (13) produced in Step D from the solid phase carrier and removing the protecting groups for each nucleobase and each phosphate group.
Figure 2007097446
In the formulas (13) and (14), each B, each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R, R 1 , T, and Z are as defined above.

The cleaving step is a reaction in which oligo RNA having a desired chain length is removed from the solid phase carrier and linker by a cleaving agent, and is performed by adding a cleaving agent to a solid carrier carrying an oligonucleic acid derivative having a desired chain length. can do. In this step, the protecting group of the nucleobase can be removed.
Examples of the “cutting agent” include concentrated aqueous ammonia and methylamine. The “cleaving agent” that can be used in this step can be used after diluted with water, methanol, ethanol, isopropyl alcohol, acetonitrile, THF, or any mixed solvent thereof. Of these, ethanol is preferred.
The reaction temperature is suitably 15 ° C to 75 ° C, preferably 15 ° C to 30 ° C, more preferably 18 ° C to 25 ° C. The deprotection reaction time is suitably 10 minutes to 30 hours, preferably 30 minutes to 24 hours, and more preferably 1 to 4 hours. The concentration of ammonium hydroxide in the solution used for deprotection is appropriately 20 to 30% by weight, preferably 25 to 30% by weight, and more preferably 28 to 30% by weight. The amount of the reagent to be used is suitably 1 to 100-fold mol amount, preferably 10 to 50-fold mol amount based on the oligonucleic acid derivative (13) supported on the solid phase carrier.

(6)工程F:
工程Eにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(14)に、各リボースの2’位水酸基の保護基を脱離するための試薬を作用させることによって、次の一般式(15)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(14)及び(15)中、各B、各Q、各R、各Rは、それぞれ独立して、前記と同義である。n、R、Zは、前記と同義である。

本工程は、オリゴ核酸誘導体(14)に2’位の水酸基の保護基を脱離する試薬を作用させることにより実施することができる。2’位の水酸基の保護基を脱離する工程は、「2’位の水酸基の保護基を脱離する試薬」として、例えば、テトラブチルアンモニウムフロリド、トリエチルアミントリハイドロフロリドを作用させることにより行うことができる。使用する「2’位の水酸基の保護基を脱離する試薬」の量は除去される保護基に対して1〜500倍モル量が適当であり、好ましくは5〜10倍モル量である。使用する溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、THF、N−メチルピロリドン、ピリジン、ジメチルスルホキシド又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。反応溶媒の使用量は、「2’位の水酸基の保護基を脱離する試薬」に対して、0.8〜100倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。反応温度は、20℃〜80℃が好ましい。反応時間は、オリゴ核酸誘導体(14)の種類、使用する2’位の水酸基の保護基を脱離する試薬の種類、反応温度等によって異なるが、通常1時間〜100時間が適当である。
また、必要であれば、本工程における副生成物であるアクリロニトリルを捕捉するために、アクリロニトリルの捕捉剤として、例えば、ニトロアルカン、アルキルアミン、アミジン、チオール、チオール誘導体又はこれら任意の混合物を添加することができる。「ニトロアルカン」としては、直鎖状の炭素数1〜6のニトロアルカンを挙げることができる。具体的には、例えば、ニトロメタン等を挙げることができる。例えば、「アルキルアミン」としては、例えば、直鎖状の炭素数1〜6のアルキルアミンを挙げることができる。具体的には、例えば、メチルアミン、エチルアミン、n−プロピルアミン、n−ブチルアミン、n−ペンチルアミン、n−ヘキシルアミンを挙げることができる。「アミジン」としては、例えば、ベンズアミジン、ホルムアミジンを挙げることができる。「チオール」としては、例えば、直鎖状の炭素数1〜6のチオールを挙げることができる。具体的には、例えば、メタンチオール、エタンチオール、1−プロパンチオール、1−ブタンチオール、1−ペンタンチオール、1−ヘキサンチオールを挙げることができる。「チオール誘導体」としては、例えば、同一又は異なる直鎖状の炭素数1〜6のアルキルチオール基を有するアルコール又はエーテルを挙げることができる。具体的には、例えば、2−メルカプトエタノール、4−メルカプト−1−ブタノール、6−メルカプト−1−ヘキサノール、メルカプトメチルエーテル、2−メルカプトエチルエーテル、3−メルカプトプロピルエーテル、4−メルカプトブチルエーテル、5−メルカプトペンチルエーテル、6−メルカプトヘキシルエーテルを挙げることができる。
「アクリロニトリルの捕捉剤」の使用量としては、オリゴ核酸誘導体(14)の種類等によって異なるが、オリゴ核酸誘導体(14)の各リボースの2’位水酸基を保護している2−シアノエトキシメチルに対して、0.8〜500倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。
(6) Process F:
An oligonucleic acid represented by the following general formula (15) is allowed to act on the oligonucleic acid derivative (14) produced in step E by acting a reagent for removing the protecting group for the 2′-position hydroxyl group of each ribose. Producing a derivative;
Figure 2007097446
In formulas (14) and (15), each B, each Q, each R, and each R 4 are independently the same as defined above. n, R 1 and Z are as defined above.

This step can be performed by causing a reagent that removes the protecting group for the 2′-position hydroxyl group to act on the oligonucleic acid derivative (14). The step of removing the protecting group at the 2′-position hydroxyl group is performed by, for example, acting tetrabutylammonium fluoride or triethylamine trihydrofluoride as a “reagent for removing the protecting group at the 2′-position hydroxyl group”. It can be carried out. The amount of the “reagent for removing the protecting group for the hydroxyl group at the 2′-position” to be used is appropriately 1 to 500 times, preferably 5 to 10 times the amount of the protecting group to be removed. The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include THF, N-methylpyrrolidone, pyridine, dimethyl sulfoxide, and any mixed solvent thereof. The amount of the reaction solvent used is suitably 0.8 to 100-fold molar amount, preferably 1 to 10-fold molar amount with respect to the “reagent for removing the protecting group at the 2′-position hydroxyl group”. The reaction temperature is preferably 20 ° C to 80 ° C. The reaction time varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (14), the type of reagent for removing the protecting group of the 2′-position hydroxyl group used, the reaction temperature, etc., but usually 1 hour to 100 hours is appropriate.
If necessary, for example, nitroalkane, alkylamine, amidine, thiol, thiol derivative, or any mixture thereof is added as an acrylonitrile scavenger to capture acrylonitrile as a by-product in this step. be able to. Examples of the “nitroalkane” include linear nitroalkanes having 1 to 6 carbon atoms. Specifically, nitromethane etc. can be mentioned, for example. For example, examples of the “alkylamine” include linear alkylamines having 1 to 6 carbon atoms. Specific examples include methylamine, ethylamine, n-propylamine, n-butylamine, n-pentylamine, and n-hexylamine. Examples of “amidine” include benzamidine and formamidine. Examples of the “thiol” include linear thiols having 1 to 6 carbon atoms. Specific examples include methanethiol, ethanethiol, 1-propanethiol, 1-butanethiol, 1-pentanethiol, and 1-hexanethiol. Examples of the “thiol derivative” include alcohols or ethers having the same or different linear alkyl thiol group having 1 to 6 carbon atoms. Specifically, for example, 2-mercaptoethanol, 4-mercapto-1-butanol, 6-mercapto-1-hexanol, mercaptomethyl ether, 2-mercaptoethyl ether, 3-mercaptopropyl ether, 4-mercaptobutyl ether, 5 -Mercaptopentyl ether and 6-mercaptohexyl ether can be mentioned.
The amount of the “acrylonitrile scavenger” used varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (14) and the like, but 2-cyanoethoxymethyl protecting the 2′-position hydroxyl group of each ribose of the oligonucleic acid derivative (14) is used. On the other hand, 0.8-500 times mole amount is suitable, Preferably it is 1-10 times mole amount.

(7)工程G:
オリゴ核酸誘導体(15)の5’位の水酸基を脱離する工程。

Figure 2007097446
式(15)及び(A)中、各B、各Q、各Rは、それぞれ独立して、前記と同義である。n、R、Zは、前記と同義である。

本工程は、最終的にオリゴ核酸誘導体(15)の5’位水酸基の保護基を脱離する反応であり、固体担体から切り出されたオリゴRNAに酸を作用させることにより実施することができる。
本工程において使用しうる「酸」としては、例えば、トリクロロ酢酸、ジクロロ酢酸、酢酸を挙げることができる。本工程に使用しうる酸は、適当な溶媒で希釈して使用することもできる。溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、ジクロロメタン、アセトニトリル、水、pHが2〜5の緩衝液又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。緩衝液としては、例えば、酢酸緩衝液を挙げることができる。上記反応における反応温度は、20℃〜50℃が好ましい。反応時間は、オリゴ核酸誘導体(15)の種類、使用する酸の種類、反応温度等によって異なるが、通常1分〜1時間が適当である。使用する試薬の量は固相担体に担持されているオリゴ核酸誘導体に対して0.8〜100倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。
(7) Process G:
Removing the 5′-position hydroxyl group of the oligonucleic acid derivative (15).
Figure 2007097446
In formulas (15) and (A), each B, each Q, and each R are independently the same as defined above. n, R 1 and Z are as defined above.

This step is a reaction that finally eliminates the protecting group for the 5′-position hydroxyl group of the oligonucleic acid derivative (15), and can be carried out by allowing an acid to act on the oligo RNA cleaved from the solid support.
Examples of the “acid” that can be used in this step include trichloroacetic acid, dichloroacetic acid, and acetic acid. The acid that can be used in this step can be diluted with an appropriate solvent. The solvent is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, acetonitrile, water, a buffer solution having a pH of 2 to 5, or any mixed solvent thereof. Examples of the buffer solution include an acetate buffer solution. The reaction temperature in the above reaction is preferably 20 ° C to 50 ° C. The reaction time varies depending on the type of oligonucleic acid derivative (15), the type of acid used, the reaction temperature, etc., but usually 1 minute to 1 hour is appropriate. The amount of the reagent to be used is suitably 0.8 to 100 times, preferably 1 to 10 times the molar amount of the oligonucleic acid derivative supported on the solid phase carrier.

(8)工程H:
工程Gにおいて製造されるオリゴ核酸(A)を分離精製する工程。

「分離精製工程」とは、上記反応混合物から通常の分離精製手段、例えば、抽出、濃縮、中和、濾過、遠心分離、再結晶、CからC18の逆相カラムクロマトグラフィー、CからC18逆相カートリッジカラム、陽イオン交換カラムクロマトグラフィー、陰イオン交換カラムクロマトグラフィー、ゲルろ過カラムクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、透析、限界ろ過などの手段を単独若しくは組み合わせて用いることにより、所望のオリゴRNAを単離精製する工程である。
「溶出溶媒」としては、例えば、アセトニトリル、メタノール、エタノール、イソプロピルアルコール、水の単独溶媒もしくは任意の比率の混合溶媒を挙げることができる。この場合添加物として、例えば、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、酢酸アンモニウム、酢酸トリエチルアンモニウム、酢酸ナトリウム、酢酸カリウム、トリス塩酸、エチレンジアミン四酢酸を1mM〜2Mの濃度で添加し、溶液のpHを1〜9の範囲で調整することもできる。
(8) Process H:
A step of separating and purifying the oligonucleic acid (A) produced in the step G.

The “separation and purification step” refers to the usual separation and purification means from the above reaction mixture, for example, extraction, concentration, neutralization, filtration, centrifugation, recrystallization, C 8 to C 18 reverse phase column chromatography, C 8 By using means such as C18 reverse phase cartridge column, cation exchange column chromatography, anion exchange column chromatography, gel filtration column chromatography, high performance liquid chromatography, dialysis, ultrafiltration, etc. alone or in combination, the desired This is a step of isolating and purifying oligo RNA.
Examples of the “elution solvent” include acetonitrile, methanol, ethanol, isopropyl alcohol, water alone, or a mixed solvent of any ratio. In this case, for example, sodium phosphate, potassium phosphate, sodium chloride, potassium chloride, ammonium acetate, triethylammonium acetate, sodium acetate, potassium acetate, tris hydrochloric acid, ethylenediaminetetraacetic acid are added at a concentration of 1 mM to 2 M. The pH of the solution can be adjusted in the range of 1-9.

工程A〜工程Dの操作を繰り返すことにより、所望の鎖長のオリゴ核酸(A)を製造することができる。
また、上記オリゴ核酸の製造方法の工程Bにおいて、核酸モノマー化合物として少なくとも1回はホスホロアミダイト化合物(B)を用いることによって、各Rのうち少なくとも1つが水酸基であるオリゴ核酸(A)を製造することができる。さらに、上記オリゴ核酸の製造方法の工程Bにおいて、核酸モノマー化合物として、全てホスホロアミダイト化合物(B)を用いることによって、各Rが全てOHであるオリゴ核酸(A)を製造することができる。

II.ホスホロアミダイト化合物(B)の製法
ホスホロアミダイト化合物(B)は、次のようにして製造することができる。
以下に示す製法において、原料が反応に影響を及ぼす置換基(例えば、ヒドロキシ、アミノ、カルボキシ)を有する場合は、原料をあらかじめ公知の方法に従い、適当な保護基で保護した後に反応を行うことが一般的である。保護基は、反応後に、接触還元、アルカリ処理、酸処理などの公知の方法に従い保護基を脱離することができる。
ホスホロアミダイト化合物(B)は、公知化合物又は容易に製造可能な中間体から、例えば、次の工程a〜工程hの操作を実施することにより製造することができる。

以下、詳細に説明する。
By repeating the operations of Step A to Step D, an oligonucleic acid (A) having a desired chain length can be produced.
Further, in step B of the oligonucleic acid production method, at least one phosphoramidite compound (B) is used as the nucleic acid monomer compound to produce an oligonucleic acid (A) in which at least one of each R is a hydroxyl group. can do. Furthermore, in step B of the above oligonucleic acid production method, an oligonucleic acid (A) in which each R is all OH can be produced by using all phosphoramidite compounds (B) as nucleic acid monomer compounds.

II. Production Method of Phosphoramidite Compound (B) The phosphoramidite compound (B) can be produced as follows.
In the production method shown below, when the raw material has a substituent that affects the reaction (for example, hydroxy, amino, carboxy), the reaction may be performed after protecting the raw material with an appropriate protecting group in accordance with a known method in advance. It is common. The protecting group can be removed after the reaction according to a known method such as catalytic reduction, alkali treatment, acid treatment or the like.
The phosphoramidite compound (B) can be produced from a known compound or an easily manufacturable intermediate by carrying out the operations of the following steps a to h, for example.

Details will be described below.

(1)工程a:
次の一般式(16)で表されるリボ核酸誘導体にアルキル化試薬を作用させることによって、中性条件下において脱離するエーテル型保護基を2’位の水酸基に導入する、次の一般式(17)で表されるリボ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(16)、(17)及び(17’)中、Bz、R、WGは、前記と同義である。
「アルキル化試薬」として、例えば、次の一般式(18)で表されるエーテル化合物を挙げることができる。
Figure 2007097446
式(18)中、Lは、ハロゲン、アリールチオ基、アルキルスルホキシド基又はアルキルチオ基を表す。WGは、前記と同義である。
Lに係る「ハロゲン」、「アリールチオ基」の「アリール」、「アルキルスルホキシド基」及び「アルキルチオ基」の「アルキル」としては、前記Bの修飾体に係るそれらと同じものを挙げることができる。
エーテル化合物(18)の具体例としては、次の1.〜2.の化合物を挙げることができる。
1.クロロメチル 2−シアノエチルエーテル
2.2−シアノエチル メチルチオメチルエーテル
エーテル化合物(18)は、中性条件下において脱離可能なエーテル型置換基を、2’位の水酸基に塩基性条件下において導入することができる新規なアルキル化試薬であり、ホスホロアミダイト化合物(B)を製造するための試薬として有用である。
(1) Step a:
An ether-type protecting group that is eliminated under neutral conditions is introduced into the hydroxyl group at the 2 ′ position by allowing an alkylating reagent to act on the ribonucleic acid derivative represented by the following general formula (16): A step of producing a ribonucleic acid derivative represented by (17).
Figure 2007097446
In formulas (16), (17) and (17 ′), Bz, R 1 and WG 1 have the same meanings as described above.
Examples of the “alkylating reagent” include ether compounds represented by the following general formula (18).
Figure 2007097446
In formula (18), L represents a halogen, an arylthio group, an alkyl sulfoxide group or an alkylthio group. WG 1 has the same meaning as described above.
According to L "halogen", "aryl" of the "arylthio group", the "alkyl" of the "alkylsulfoxide group" and "alkylthio group" may include the same as those according to the modifications of the B X .
Specific examples of the ether compound (18) include the following 1. ~ 2. Can be mentioned.
1. Chloromethyl 2-cyanoethyl ether 2.2-cyanoethyl methylthiomethyl ether In ether compound (18), an ether-type substituent that can be eliminated under neutral conditions is introduced into the hydroxyl group at the 2′-position under basic conditions. And is useful as a reagent for producing the phosphoramidite compound (B).

エーテル化合物(18)は、次に示す工程1〜工程4を実施することにより製造することができる。

工程1:
次の一般式(19)で表されるアルコール化合物をアルキルチオメチル化し、次の一般式(20)で表される化合物を製造する工程。

Figure 2007097446
式(19)及び(20)中、WGは、前記と同義である。Rは、アルキル又はアリールを表す。
化合物(20)は、Lがアルキルチオ基であるエーテル化合物(18)である。
に係る「アルキル」としては、前記Bの修飾体に係る「アルキル」と同じものを挙げることができる。
がメチルである場合、アルキルチオメチル化試薬としては、例えば、ジメチルスルホキシド、無水酢酸及び酢酸の混合溶液を挙げることができる。「ジメチルスルホキシド」の使用量は、化合物(19)のモル量に対して、10〜200倍モル量が適当であり、好ましくは20〜100倍モル量である。「酢酸」の使用量は、化合物(19)のモル量に対して、10〜150倍モル量が適当であり、好ましくは20〜100倍モル量である。「無水酢酸」の使用量は、化合物(19)のモル量に対して、10〜150倍モル量が適当であり、好ましくは20〜100倍モル量である。反応温度は、0℃〜100℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常1〜48時間が適当である。

工程2:
化合物(20)をハロゲン化し、次の一般式(21)で表される化合物を製造する工程。
Figure 2007097446
式(20)及び(21)中、WG、Rは、前記と同義である。Xは、ハロゲンを表す。
化合物(21)は、エーテル化合物(18)におけるLがハロゲンである化合物である。
に係る「ハロゲン」としては、前記Bの修飾体に係る「ハロゲン」と同じものを挙げることができる。
本工程は、公知の方法(例えば、T.Bennecheら、Synthesis 762(1983))により実施することができる。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタンなどのハロゲン系炭化水素を挙げることができる。ハロゲン化試薬としては、例えば、塩化スルフリル、オキシ塩化リンを挙げることができる。「ハロゲン化試薬」の使用量は、化合物(20)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。反応温度は、0℃〜100℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。

工程3:
化合物(21)をアリールチオ化し、次の一般式(22)で表される化合物を製造する工程。
Figure 2007097446
式(21)及び(22)中、WG、Xは、前記と同義である。R3aは、アリールを表す。
化合物(22)は、エーテル化合物(18)におけるLがアリールチオ基である化合物である。
3aに係る「アリール」としては、前記Bの修飾体に係る「アリール」と同じものを挙げることができる。
本工程は、公知の方法により実施することができる。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、アセトニトリルを挙げることができる。アリールチオ化試薬としては、例えば、チオフェノール、4−メチルベンゼンチオールを挙げることができる。「アリールチオ化試薬」の使用量は、化合物(21)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜5倍モル量である。反応温度は、0℃〜100℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常1〜48時間が適当である。

工程4:
化合物(20)を酸化し、次の一般式(23)で表される化合物を製造する工程。
Figure 2007097446
式(20)及び(23)中、WG、Rは、前記と同義である。
化合物(23)は、エーテル化合物(18)におけるLがアルキルスルホキシド基である化合物である。
に係る「アルキル」としては、ホスホロアミダイト化合物(B)における「アルキル」と同じものを挙げることができる。
本工程は、公知の方法により実施することができる。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、メタノールを挙げることができる。酸化剤としては、例えば、メタクロロ過安息香酸、メタ過ヨウ素酸塩、過酸化水素を挙げることができる。「酸化剤」の使用量は、化合物(20)のモル量に対して、0.8〜10倍モル量が適当であり、好ましくは1〜2倍モル量である。反応温度は、0℃〜100℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常1〜48時間が適当である。
The ether compound (18) can be produced by performing the following steps 1 to 4.

Step 1:
A step of alkylating an alcohol compound represented by the following general formula (19) to produce a compound represented by the following general formula (20).
Figure 2007097446
In formulas (19) and (20), WG 1 is as defined above. R 3 represents alkyl or aryl.
Compound (20) is an ether compound (18) in which L is an alkylthio group.
According to R 3 as "alkyl" may include the same as the "alkyl" related to the modified form of the B X.
When R 3 is methyl, examples of the alkylthiomethylating reagent include a mixed solution of dimethyl sulfoxide, acetic anhydride and acetic acid. The amount of “dimethyl sulfoxide” used is suitably 10 to 200 times the molar amount, preferably 20 to 100 times the molar amount of the compound (19). The amount of “acetic acid” used is suitably 10 to 150 times the molar amount, preferably 20 to 100 times the molar amount of the compound (19). The amount of “acetic anhydride” used is suitably 10 to 150 times the molar amount, preferably 20 to 100 times the molar amount of the compound (19). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 100 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw material used, reaction temperature, and the like, but is usually 1 to 48 hours.

Step 2:
A step of producing a compound represented by the following general formula (21) by halogenating the compound (20).
Figure 2007097446
In formulas (20) and (21), WG 1 and R 3 are as defined above. X 2 represents halogen.
The compound (21) is a compound in which L in the ether compound (18) is a halogen.
According to X 2 "halogen" may include the same as "halogen" related to the modified form of the B X.
This step can be performed by a known method (for example, T. Benneche et al., Synthesis 762 (1983)). The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include halogen-based hydrocarbons such as dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, and 1,2-dichloroethane. Examples of the halogenating reagent include sulfuryl chloride and phosphorus oxychloride. The amount of the “halogenating reagent” to be used is suitably 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the amount of the compound (20). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 100 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.

Step 3:
A step of producing a compound represented by the following general formula (22) by arylthiolating the compound (21).
Figure 2007097446
In formulas (21) and (22), WG 1 and X 2 are as defined above. R 3a represents aryl.
Compound (22) is a compound in which L in the ether compound (18) is an arylthio group.
According to R 3a as "aryl" may include the same as the "aryl" related to the modified form of the B X.
This step can be performed by a known method. The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane and acetonitrile. Examples of the arylthiolation reagent include thiophenol and 4-methylbenzenethiol. The amount of the “arylthiolation reagent” to be used is suitably 0.8 to 20 times, preferably 1 to 5 times the amount of the compound (21). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 100 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw material used, reaction temperature, and the like, but is usually 1 to 48 hours.

Step 4:
A step of oxidizing the compound (20) to produce a compound represented by the following general formula (23).
Figure 2007097446
In formulas (20) and (23), WG 1 and R 3 are as defined above.
The compound (23) is a compound in which L in the ether compound (18) is an alkyl sulfoxide group.
Examples of the “alkyl” related to R 3 include the same “alkyl” in the phosphoramidite compound (B).
This step can be performed by a known method. The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, chloroform, and methanol. Examples of the oxidizing agent include metachloroperbenzoic acid, metaperiodate, and hydrogen peroxide. The amount of the “oxidant” used is suitably 0.8 to 10 times the molar amount, preferably 1 to 2 times the molar amount of the compound (20). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 100 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw material used, reaction temperature, and the like, but is usually 1 to 48 hours.

「アルキル化試薬」として、化合物(21)を使用する場合、以下のように実施することができる。
本工程は、公知の方法に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能である化合物(16)にアルキル化試薬と塩基とを作用させることにより実施することができる。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタンなどのハロゲン系炭化水素を挙げることができる。「アルキル化試薬」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。本工程において、必要に応じて、化合物(16)に金属試薬と塩基を作用させ製造される中間体を経由した後、アルキル化試薬を作用させることもできる。かかる「金属試薬」として、例えば、二塩化ジブチルスズを挙げることができる。「金属試薬」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。「塩基」としては、ピリジン、2,6−ジメチルピリジン、2,4,6−トリメチルピリジン、N−メチルイミダゾール、トリエチルアミン、トリブチルアミン、N,N−ジイソプロピルエチルアミン、1,8−ジアザビシクロ[5.4.0]−7−ウンデセンなどの有機塩基を挙げることができる。「塩基」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。反応温度は、0℃〜120℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。
When compound (21) is used as the “alkylating reagent”, it can be carried out as follows.
This step can be performed by reacting an alkylating reagent and a base with compound (16), which is available as a commercial product or can be synthesized according to a method described in the literature, according to a known method. The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include halogen-based hydrocarbons such as dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, and 1,2-dichloroethane. The amount of the “alkylating reagent” to be used is appropriately 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the amount of the compound (16). In this step, if necessary, an alkylating reagent can be allowed to act on the compound (16) via an intermediate produced by reacting a metal reagent and a base. Examples of such “metal reagent” include dibutyltin dichloride. The amount of the “metal reagent” to be used is suitably 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the amount of the compound (16). Examples of the “base” include pyridine, 2,6-dimethylpyridine, 2,4,6-trimethylpyridine, N-methylimidazole, triethylamine, tributylamine, N, N-diisopropylethylamine, 1,8-diazabicyclo [5.4. And organic bases such as .0] -7-undecene. The amount of the “base” used is suitably 0.8 to 20 times the molar amount, preferably 1 to 10 times the molar amount of the molar amount of the compound (16). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 120 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.

「アルキル化試薬」として、化合物(20)又は化合物(22)を使用する場合、以下のように実施することができる。
本工程は、公知の方法(例えば、M.Matteucci,Tetrahedron Letters,Vol.31,2385(1990))に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能である化合物(16)に、アルキル化試薬と酸と硫黄原子に対するハロゲン化剤とを作用させることにより実施することができる。「アルキル化試薬」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.8〜5倍モル量が適当であり、好ましくは1〜3倍モル量である。「酸」としては、例えば、トリフルオロメタンスルホン酸、トリフルオロメタンスルホン酸銀、トリメチルシリルトリフルオロメタンスルホネートを挙げることができる。「酸」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.01〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.02〜10倍モル量である。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタン、ベンゼン、トルエン、キシレン、THF、アセトニトリル又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。本工程において使用する「硫黄原子に対するハロゲン化剤」として、例えば、N−ブロモスクシンイミド(NBS)、N−ヨードスクシンイミド(NIS)を挙げることができる。「硫黄原子に対するハロゲン化剤」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.8〜10倍モル量が適当であり、好ましくは1〜5倍モル量である。反応温度は、−78℃〜30℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常5分〜5時間が適当である。
When compound (20) or compound (22) is used as the “alkylating reagent”, it can be carried out as follows.
This step is carried out according to a known method (for example, M. Matteucci, Tetrahedron Letters, Vol. 31, 2385 (1990)). It can be carried out by reacting a oxidant, an acid and a halogenating agent for the sulfur atom. The amount of the “alkylating reagent” to be used is appropriately 0.8 to 5 times, preferably 1 to 3 times the amount of the compound (16). Examples of the “acid” include trifluoromethanesulfonic acid, silver trifluoromethanesulfonate, and trimethylsilyl trifluoromethanesulfonate. The amount of the “acid” used is suitably 0.01 to 20 times the molar amount, preferably 0.02 to 10 times the molar amount of the compound (16). The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, 1,2-dichloroethane, benzene, toluene, xylene, THF, acetonitrile, or any mixed solvent thereof. Can do. Examples of the “halogenating agent for sulfur atom” used in this step include N-bromosuccinimide (NBS) and N-iodosuccinimide (NIS). The amount of the “halogenating agent for sulfur atom” to be used is suitably 0.8 to 10 times, preferably 1 to 5 times the amount of the compound (16). The reaction temperature is suitably -78 ° C to 30 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, the reaction temperature, etc., but usually 5 minutes to 5 hours is appropriate.

「アルキル化試薬」として、化合物(23)を使用する場合、以下のように実施することができる。
本工程は、公知の方法に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能である化合物(16)に、アルキル化試薬と酸無水物と塩基とを作用させることにより実施することができる。「アルキル化試薬」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.8〜5倍モル量が適当であり、好ましくは1〜3倍モル量である。「酸無水物」としては、例えば、トリフルオロメタンスルホン酸無水物、無水酢酸を挙げることができる。「酸無水物」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.01〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.02〜10倍モル量である。塩基としては、例えば、テトラメチルウレア、コリジンを挙げることができる。「塩基」の使用量は、化合物(16)のモル量に対して、0.01〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.02〜10倍モル量である。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタン又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。反応温度は、−78℃〜30℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常5分〜24時間が適当である。
When the compound (23) is used as the “alkylating reagent”, it can be carried out as follows.
This step can be performed by reacting an alkylating reagent, an acid anhydride, and a base with compound (16), which is available as a commercial product or can be synthesized according to a method described in the literature, according to a known method. . The amount of the “alkylating reagent” to be used is appropriately 0.8 to 5 times, preferably 1 to 3 times the amount of the compound (16). Examples of the “acid anhydride” include trifluoromethanesulfonic acid anhydride and acetic anhydride. The amount of the “acid anhydride” to be used is suitably 0.01 to 20-fold mol amount, preferably 0.02 to 10-fold mol amount based on the mol amount of Compound (16). Examples of the base include tetramethylurea and collidine. The amount of the “base” used is suitably 0.01 to 20 times the molar amount, preferably 0.02 to 10 times the molar amount of the compound (16). The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, 1,2-dichloroethane, and any mixed solvent thereof. The reaction temperature is suitably -78 ° C to 30 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 5 minutes to 24 hours is appropriate.

(2)工程b:
工程aにおいて製造されるリボ核酸誘導体(17)を単離精製する工程。
本工程は、工程aにおいて製造される混合物から通常の分離精製手段、例えば、薄層クロマトグラフィー、シリガゲルクロマトグラフィーなどの手段を用いることにより単離精製することができる。
(2) Step b:
A step of isolating and purifying the ribonucleic acid derivative (17) produced in step a.
This step can be isolated and purified from the mixture produced in step a by using usual separation and purification means such as thin layer chromatography, silica gel chromatography and the like.

(3)工程c:
工程bとは別に、次の一般式(24)で表されるリボ核酸誘導体にアルキル化試薬を作用させることによって、中性条件下において脱離するエーテル型保護基を2’位の水酸基に導入した、次の一般式(25)で表されるリボ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(24)及び(25)中、Bz、WGは、前記と同義である。
Aは、次の一般式(26a)又は(26b)で表されるケイ素置換基を表す。
Figure 2007097446
式(26a)及び(26b)中、Rは、アルキルを表す。
に係る「アルキル」としては、ホスホロアミダイト化合物(B)における「アルキル」と同じものを挙げることができる。
「アルキル化試薬」としては、前記と同じものを挙げることができる。(3) Step c:
Separately from step b, by introducing an alkylating reagent to the ribonucleic acid derivative represented by the following general formula (24), an ether-type protecting group that is eliminated under neutral conditions is introduced to the 2′-position hydroxyl group. The process of manufacturing the ribonucleic acid derivative represented by following General formula (25).
Figure 2007097446
In the formulas (24) and (25), Bz and WG 1 are as defined above.
A represents a silicon substituent represented by the following general formula (26a) or (26b).
Figure 2007097446
In formulas (26a) and (26b), R 6 represents alkyl.
Examples of the “alkyl” related to R 6 include the same “alkyl” in the phosphoramidite compound (B).
Examples of the “alkylating reagent” include the same as described above.

「アルキル化試薬」として、化合物(21)を使用する場合、以下のように実施することができる。
本工程は、公知の方法に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能である化合物(24)にアルキル化試薬と塩基とを作用させることにより実施することができる。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタンなどのハロゲン系炭化水素を挙げることができる。「アルキル化試薬」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。本工程において、必要に応じて、化合物(24)に金属試薬と塩基を作用させ製造される中間体を経由した後、アルキル化試薬を作用させることもできる。かかる「金属試薬」として、例えば、二塩化ジブチルスズ、tert−ブチルマグネシウムクロリドを挙げることができる。「金属試薬」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。「塩基」としては、ピリジン、2,6−ジメチルピリジン、2,4,6−トリメチルピリジン、N−メチルイミダゾール、トリエチルアミン、トリブチルアミン、N,N−ジイソプロピルエチルアミン、1,8−ジアザビシクロ[5.4.0]−7−ウンデセンなどの有機塩基を挙げることができる。「塩基」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。反応温度は、0℃〜120℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。
When compound (21) is used as the “alkylating reagent”, it can be carried out as follows.
This step can be performed according to a known method by reacting an alkylating reagent and a base with compound (24) which is available as a commercial product or can be synthesized according to a method described in the literature. The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include halogen-based hydrocarbons such as dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, and 1,2-dichloroethane. The amount of the “alkylating reagent” to be used is suitably 0.8 to 20-fold mol amount, preferably 1 to 10-fold mol amount based on the mol amount of Compound (24). In this step, if necessary, an alkylating reagent can be allowed to act after passing through an intermediate produced by reacting compound (24) with a metal reagent and a base. Examples of such “metal reagent” include dibutyltin dichloride and tert-butylmagnesium chloride. The amount of the “metal reagent” to be used is appropriately 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the amount of the compound (24). Examples of the “base” include pyridine, 2,6-dimethylpyridine, 2,4,6-trimethylpyridine, N-methylimidazole, triethylamine, tributylamine, N, N-diisopropylethylamine, 1,8-diazabicyclo [5.4. And organic bases such as .0] -7-undecene. The amount of the “base” to be used is suitably 0.8 to 20-fold mol amount, preferably 1 to 10-fold mol amount based on the mol amount of Compound (24). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 120 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.

「アルキル化試薬」として、化合物(20)又は化合物(22)を使用する場合、以下のように実施することができる。
本工程は、公知の方法(例えば、M.Matteucci,Tetrahedron Letters,Vol.31,2385(1990))に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能である化合物(24)に、アルキル化試薬と酸と硫黄原子に対するハロゲン化剤とを作用させることにより実施することができる。「アルキル化試薬」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.8〜5倍モル量が適当であり、好ましくは1〜3倍モル量である。「酸」としては、例えば、トリフルオロメタンスルホン酸、トリフルオロメタンスルホン酸銀、トリメチルシリルトリフルオロメタンスルホネートを挙げることができる。「酸」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.01〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.02〜10倍モル量である。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタン、ベンゼン、トルエン、キシレン、THF、アセトニトリル又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。本工程において使用する「硫黄原子に対するハロゲン化剤」として、例えば、N−ブロモスクシンイミド(NBS)、N−ヨードスクシンイミド(NIS)を挙げることができる。「硫黄原子に対するハロゲン化剤」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.8〜10倍モル量が適当であり、好ましくは1〜5倍モル量である。反応温度は、−78℃〜30℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常5分〜5時間が適当である。
When compound (20) or compound (22) is used as the “alkylating reagent”, it can be carried out as follows.
This step is carried out according to a known method (for example, M. Matteucci, Tetrahedron Letters, Vol. 31, 23, 385 (1990)), to a compound (24) that is commercially available or can be synthesized according to literature methods. It can be carried out by reacting a oxidant, an acid and a halogenating agent for the sulfur atom. The amount of the “alkylating reagent” to be used is appropriately 0.8 to 5 times, preferably 1 to 3 times the amount of the compound (24). Examples of the “acid” include trifluoromethanesulfonic acid, silver trifluoromethanesulfonate, and trimethylsilyl trifluoromethanesulfonate. The amount of the “acid” used is suitably 0.01 to 20 times the molar amount, preferably 0.02 to 10 times the molar amount of the compound (24). The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, 1,2-dichloroethane, benzene, toluene, xylene, THF, acetonitrile, or any mixed solvent thereof. Can do. Examples of the “halogenating agent for sulfur atom” used in this step include N-bromosuccinimide (NBS) and N-iodosuccinimide (NIS). The amount of the “halogenating agent for sulfur atom” is suitably 0.8 to 10 times, preferably 1 to 5 times the amount of the compound (24). The reaction temperature is suitably -78 ° C to 30 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, the reaction temperature, etc., but usually 5 minutes to 5 hours is appropriate.

「アルキル化試薬」として、化合物(23)を使用する場合、以下のように実施することができる。
本工程は、公知の方法に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能である化合物(24)に、アルキル化試薬と酸無水物と塩基とを作用させることにより実施することができる。「アルキル化試薬」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.8〜5倍モル量が適当であり、好ましくは1〜3倍モル量である。「酸無水物」としては、例えば、トリフルオロメタンスルホン酸無水物、無水酢酸を挙げることができる。「酸無水物」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.01〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.02〜10倍モル量である。塩基としては、例えば、テトラメチルウレア、コリジンを挙げることができる。「塩基」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、0.01〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.02〜10倍モル量である。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタン又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。反応温度は、−78℃〜30℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常5分〜24時間が適当である。
When the compound (23) is used as the “alkylating reagent”, it can be carried out as follows.
This step can be carried out by reacting an alkylating reagent, an acid anhydride, and a base with compound (24) that is available as a commercial product or can be synthesized according to a method described in the literature, according to a known method. . The amount of the “alkylating reagent” to be used is appropriately 0.8 to 5 times, preferably 1 to 3 times the amount of the compound (24). Examples of the “acid anhydride” include trifluoromethanesulfonic acid anhydride and acetic anhydride. The amount of the “acid anhydride” used is suitably 0.01 to 20 times the molar amount, preferably 0.02 to 10 times the molar amount of the compound (24). Examples of the base include tetramethylurea and collidine. The amount of the “base” used is suitably 0.01 to 20-fold mol amount, preferably 0.02 to 10-fold mol amount based on the mol amount of Compound (24). The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, 1,2-dichloroethane, and any mixed solvent thereof. The reaction temperature is suitably -78 ° C to 30 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 5 minutes to 24 hours is appropriate.

(4)工程d:
工程a〜工程cとは別に、リボ核酸誘導体(24)にジメチルスルホキシドと酢酸と無水酢酸とを作用させることによって、次の一般式(27)で表されるリボ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(24)及び(27)中、A、Bzは、前記と同義である。
本工程は、公知の方法に従い、市販品として入手可能又は文献記載の方法に従い合成可能であるリボ核酸誘導体(24)に、ジメチルスルホキシドと酢酸と無水酢酸とを作用させることにより実施することができる。
「ジメチルスルホキシド」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、10〜200倍モル量が適当であり、好ましくは20〜100倍モル量である。「酢酸」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、10〜150倍モル量が適当であり、好ましくは20〜100倍モル量である。「無水酢酸」の使用量は、化合物(24)のモル量に対して、10〜150倍モル量が適当であり、好ましくは20〜100倍モル量である。反応温度は、10℃〜50℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。
(4) Step d:
A step of producing a ribonucleic acid derivative represented by the following general formula (27) by allowing dimethyl sulfoxide, acetic acid and acetic anhydride to act on the ribonucleic acid derivative (24) separately from the steps a to c.
Figure 2007097446
In formulas (24) and (27), A and Bz are as defined above.
This step can be performed according to a known method by allowing dimethyl sulfoxide, acetic acid and acetic anhydride to act on a ribonucleic acid derivative (24) which is available as a commercial product or can be synthesized according to a method described in the literature. .
The amount of “dimethyl sulfoxide” used is suitably 10 to 200-fold mol amount, preferably 20 to 100-fold mol amount based on the mol amount of Compound (24). The amount of “acetic acid” used is suitably 10 to 150 times the molar amount, preferably 20 to 100 times the molar amount of the compound (24). The amount of “acetic anhydride” used is suitably 10 to 150 times the molar amount, preferably 20 to 100 times the molar amount of the compound (24). The reaction temperature is suitably 10 ° C to 50 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.

(5)工程e:
工程dにおいて製造されるリボ核酸誘導体(27)に次の一般式(28)で表されるアルコール化合物と酸と硫黄原子に対するハロゲン化剤とを作用させることによって、中性条件下において脱離するエーテル型保護基を2’位の水酸基に導入した、次の一般式(25)で表されるリボ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(25)、(27)及び(28)中、A、Bz、WGは、前記と同義である。

本工程は、公知の方法に従い、リボ核酸誘導体(27)に、アルコール化合物(28)と酸と硫黄原子に対するハロゲン化剤とを作用させることにより実施することができる。
使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、1,2−ジクロロエタン、ベンゼン、トルエン、キシレン、THF、アセトニトリル又はこれら任意の混合溶媒を挙げることができる。「アルコール化合物(28)」の使用量は、化合物(27)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。「酸」としては、例えば、トリフルオロメタンスルホン酸、トリフルオロメタンスルホン酸銀、トリメチルシリルトリフルオロメタンスルホネートを挙げることができる。「硫黄原子に対するハロゲン化剤」としては、例えば、N−ブロモスクシンイミド(NBS)、N−ヨードスクシンイミド(NIS)を挙げることができる。「硫黄原子に対するハロゲン化剤」の使用量は、化合物(27)のモル量に対して、0.1〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.2〜10倍モル量である。反応温度は、−100℃〜20℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常5分〜12時間が適当である。
(5) Step e:
The ribonucleic acid derivative (27) produced in step d is eliminated under neutral conditions by allowing an alcohol compound represented by the following general formula (28), an acid and a halogenating agent for a sulfur atom to act. A step of producing a ribonucleic acid derivative represented by the following general formula (25) in which an ether-type protecting group is introduced into the 2′-position hydroxyl group.
Figure 2007097446
In formulas (25), (27), and (28), A, Bz, and WG 1 have the same meanings as described above.

This step can be performed by reacting the ribonucleic acid derivative (27) with an alcohol compound (28), an acid, and a halogenating agent for a sulfur atom according to a known method.
The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include dichloromethane, chloroform, carbon tetrachloride, 1,2-dichloroethane, benzene, toluene, xylene, THF, acetonitrile, or any mixed solvent thereof. Can do. The amount of the “alcohol compound (28)” to be used is suitably 0.8 to 20-fold mol amount, preferably 1 to 10-fold mol amount based on the mol amount of the compound (27). Examples of the “acid” include trifluoromethanesulfonic acid, silver trifluoromethanesulfonate, and trimethylsilyl trifluoromethanesulfonate. Examples of the “halogenating agent for sulfur atom” include N-bromosuccinimide (NBS) and N-iodosuccinimide (NIS). The amount of the “halogenating agent for sulfur atom” is suitably 0.1 to 20 times the molar amount, preferably 0.2 to 10 times the molar amount of the compound (27). The reaction temperature is suitably -100 ° C to 20 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 5 minutes to 12 hours is appropriate.

(6)工程f:
工程c又は工程eにおいて製造されるリボ核酸誘導体(25)の3’位と5’位の水酸基の保護基を脱離する反応を行うことによって、次の一般式(29)で表されるリボ核酸誘導体を製造する工程。

Figure 2007097446
式(25)及び(29)中、A、Bz、WGは、前記と同義である。

本工程は、化合物(25)を有機溶媒に溶解し、フッ素化剤単独又はフッ素化剤と酸(例えば、酢酸、塩酸、硫酸)とを任意の混合比の混合試薬として反応させることにより実施することができる。本工程に使用しうる「フッ素化剤」としては、例えば、フッ化アンモニウム、テトラブチルアンモニウムフロリド(以下、「TBAF」という。)、トリエチルアミントリヒドロフロリド、フッ化水素ピリジンを挙げることができる。「フッ素化剤」の使用量としては、化合物(25)のモル量に対して、0.1〜20倍モル量が適当であり、好ましくは0.2〜10倍モル量である。反応温度は、0℃〜120℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。
混合試薬におけるフッ素化剤と酸との混合比は、1:0.1〜1:2が適当であり、好ましくは1:1〜1:1.2である。
(6) Step f:
A ribonucleic acid derivative (25) produced in step c or step e is subjected to a reaction for eliminating the protecting groups at the 3′-position and the 5′-position of the ribonucleic acid derivative (25). Producing a nucleic acid derivative;
Figure 2007097446
In the formulas (25) and (29), A, Bz, and WG 1 are as defined above.

This step is carried out by dissolving compound (25) in an organic solvent and reacting the fluorinating agent alone or a fluorinating agent with an acid (for example, acetic acid, hydrochloric acid, sulfuric acid) as a mixed reagent in any mixing ratio. be able to. Examples of the “fluorinating agent” that can be used in this step include ammonium fluoride, tetrabutylammonium fluoride (hereinafter referred to as “TBAF”), triethylamine trihydrofluoride, and hydrogen fluoride pyridine. . The amount of the “fluorinating agent” to be used is suitably 0.1 to 20 times the molar amount, preferably 0.2 to 10 times the molar amount of the compound (25). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 120 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.
The mixing ratio of the fluorinating agent and the acid in the mixed reagent is suitably from 1: 0.1 to 1: 2, and preferably from 1: 1 to 1: 1.2.

(7)工程g:
工程fにおいて製造されるリボ核酸誘導体(29)の5’位の水酸基に酸性条件下において脱離する保護基(R)を導入する、リボ核酸誘導体(17)を製造する工程。

Figure 2007097446
式(17)、(29)及び(30)中、Bz、R、WGは、前記と同義である。Xは、ハロゲンを表す。

に係る「ハロゲン」としては、前記Bの修飾体に係る「ハロゲン」と同じものを挙げることができる。
本工程は、公知の方法に従い、化合物(29)にR(30)を作用させることにより実施することができる。Rの使用量は、化合物(29)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、アセトニトリル、THFを挙げることができる。「塩基」としては、ピリジン、2,6−ジメチルピリジン、2,4,6−トリメチルピリジン、N−メチルイミダゾール、トリエチルアミン、トリブチルアミン、N,N−ジイソプロピルエチルアミン、1,8−ジアザビシクロ[5.4.0]−7−ウンデセンなどの有機塩基を挙げることができる。「塩基」の使用量は、化合物(29)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。反応温度は、0℃〜120℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。
(7) Step g:
A step of producing a ribonucleic acid derivative (17), wherein a protecting group (R 1 ) that is eliminated under acidic conditions is introduced into the 5′-position hydroxyl group of the ribonucleic acid derivative (29) produced in the step f.
Figure 2007097446
In the formulas (17), (29) and (30), Bz, R 1 and WG 1 are as defined above. X 3 represents a halogen.

According to X 3 "halogen" may include the same as "halogen" related to the modified form of the B X.
This step can be performed by reacting compound (29) with R 1 X 3 (30) according to a known method. The amount of R 1 X 3 used is suitably 0.8 to 20-fold mol amount, preferably 1 to 10-fold mol amount based on the mol amount of Compound (29). The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include acetonitrile and THF. Examples of the “base” include pyridine, 2,6-dimethylpyridine, 2,4,6-trimethylpyridine, N-methylimidazole, triethylamine, tributylamine, N, N-diisopropylethylamine, 1,8-diazabicyclo [5.4. And organic bases such as .0] -7-undecene. The amount of the “base” to be used is suitably 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the amount of the compound (29). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 120 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.

(8)工程h:
工程b又は工程fにおいて製造されるリボ核酸誘導体(17)にホスホロアミダイト化試薬と、必要に応じて活性化剤とを作用させることによって、3’位の水酸基がホスホロアミダイト化されたホスホロアミダイト化合物(B)を製造する工程。

Figure 2007097446
式(17)及び(A)中、Bz、R、R2a、R2b、WG、WGは、前記と同義である。

「ホスホロアミダイト化試薬」としては、例えば、次の一般式(31a)、(31b)で表される化合物を挙げることができる。
Figure 2007097446
式(31a)及び(31b)中、R2a、R2b、WGは、前記と同義である。Xは、ハロゲンを表す。

に係る「ハロゲン」としては、前記Bの修飾体に係る「ハロゲン」と同じものを挙げることができる。
本工程は、化合物(17)にホスホロアミダイト試薬を作用させて、3’位の水酸基をホスホロアミダイト化する反応であり、公知の方法に従い実施することができる。必要に応じて、活性化剤を使用することもできる。使用する溶媒は、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、アセトニトリル、THFを挙げることができる。
「ホスホロアミダイト化試薬」の使用量は、化合物(17)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。「活性化剤」としては、例えば、1H−テトラゾール、5−エチルチオテトラゾール、5−ベンジルメルカプト−1H−テトラゾール、4,5−ジクロロイミダゾール、4,5−ジシアノイミダゾール、ベンゾトリアゾールトリフラート、イミダゾールトリフラート、ピリジニウムトリフラート、N,N−ジイソプロピルエチルアミン、2,4,6−コリジン/N−メチルイミダゾールを挙げることができる。「活性化剤」の使用量は、化合物(17)のモル量に対して、0.8〜20倍モル量が適当であり、好ましくは1〜10倍モル量である。反応温度は、0℃〜120℃が適当である。反応時間は、使用する原料の種類、反応温度等によって異なるが、通常30分〜24時間が適当である。

このようにして、製造されるホスホロアミダイト化合物(B)は、それ自体公知の手段、例えば、濃縮、液性変換、転溶、溶媒抽出、結晶化、再結晶、分留、クロマトグラフィー等により分離精製することができる。
(8) Step h:
A phosphoramidite-modified phosphonucleic acid derivative (17) produced in step b or step f is allowed to react with a phosphoramidite-forming reagent and, if necessary, an activator, so that the 3′-position hydroxyl group is phosphoramidite-modified. The process of manufacturing a loamidite compound (B).
Figure 2007097446
In formulas (17) and (A), Bz, R 1 , R 2a , R 2b , WG 1 , WG 2 are as defined above.

Examples of the “phosphoramidation reagent” include compounds represented by the following general formulas (31a) and (31b).
Figure 2007097446
In formulas (31a) and (31b), R 2a , R 2b and WG 2 have the same meanings as described above. X 1 represents halogen.

According to X 1 "halogen" may include the same as "halogen" related to the modified form of the B X.
This step is a reaction in which a phosphoramidite reagent is allowed to act on compound (17) to convert the hydroxyl group at the 3 ′ position to phosphoramidite, and can be performed according to a known method. An activator can also be used as needed. The solvent to be used is not particularly limited as long as it does not participate in the reaction, and examples thereof include acetonitrile and THF.
The amount of the “phosphoramidation reagent” used is suitably 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the molar amount of the compound (17). Examples of the “activator” include 1H-tetrazole, 5-ethylthiotetrazole, 5-benzylmercapto-1H-tetrazole, 4,5-dichloroimidazole, 4,5-dicyanoimidazole, benzotriazole triflate, imidazole triflate, Mention may be made of pyridinium triflate, N, N-diisopropylethylamine, 2,4,6-collidine / N-methylimidazole. The amount of the “activator” used is suitably 0.8 to 20 times, preferably 1 to 10 times the amount of the compound (17). The reaction temperature is suitably from 0 ° C to 120 ° C. The reaction time varies depending on the type of raw materials used, reaction temperature, etc., but usually 30 minutes to 24 hours is appropriate.

Thus, the produced phosphoramidite compound (B) is obtained by means known per se, for example, concentration, liquid conversion, phase transfer, solvent extraction, crystallization, recrystallization, fractional distillation, chromatography, etc. It can be separated and purified.

以下に参考例及び試験例を揚げて本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれらのみに限定されない。
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference examples and test examples, but the present invention is not limited thereto.

参考例1 クロロメチル 2−シアノエチルエーテル
工程1 メチルチオメチル 2−シアノエチルエーテルの製造
3−ヒドロキシプロピオニトリル32g(450mmol)をジメチルスルホキシド450mlに溶解し、無水酢酸324mL、酢酸231mLを加え室温で24時間攪拌した。炭酸水素ナトリウム990gを水4.5Lに溶解したものを調製し、これに反応液を一時間かけて滴下した。そのまま一時間攪拌し、反応液を酢酸エチルにて抽出し、無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し得られた油状物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、無色油状物のメチルチオメチル 2−シアノエチルエーテルを41g得た(収率70%)。

H−NMR(CDCl): 2.18(s,3H);2.66(t,2H,J=6.3Hz);3.77(t,2H,J=6.3Hz);4.69(s,2H)

工程2 クロロメチル 2−シアノエチルエーテルの製造
工程1で得られたメチルチオメチル 2−シアノエチルエーテル3.3g(25mmol)を70mLの塩化メチレンに溶解させ、氷冷下2mL(25mmol)の塩化スルフリルを滴下し、さらに室温にて一時間反応させた。反応後、溶媒を留去し真空中にて蒸留し、目的化合物を無色油状物として2.5g得た(収率85%)。

沸点:84−85℃(0.3Torr)

H−NMR(CDCl): 2.72(t,2H,J=6.3Hz);3.92(t,2H,J=6.3Hz);5.52(s,2H)
Reference Example 1 Chloromethyl 2-cyanoethyl ether Step 1 Preparation of methylthiomethyl 2-cyanoethyl ether 32 g (450 mmol) of 3-hydroxypropionitrile was dissolved in 450 ml of dimethyl sulfoxide, and 324 mL of acetic anhydride and 231 mL of acetic acid were added to room temperature. For 24 hours. What melt | dissolved 990 g of sodium hydrogencarbonate in the water 4.5L was prepared, and the reaction liquid was dripped at this over 1 hour. The reaction solution was extracted with ethyl acetate, dried over anhydrous magnesium sulfate, and the solvent was distilled off. The resulting oily product was purified by silica gel column chromatography to obtain a colorless oily methylthiomethyl 2- 41 g of cyanoethyl ether was obtained (yield 70%).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 2.18 (s, 3H); 2.66 (t, 2H, J = 6.3 Hz); 3.77 (t, 2H, J = 6.3 Hz); 69 (s, 2H)

Step 2 Preparation of Chloromethyl 2 -Cyanoethyl Ether 3.3 g (25 mmol) of methylthiomethyl 2-cyanoethyl ether obtained in Step 1 was dissolved in 70 mL of methylene chloride, and 2 mL (25 mmol) of sulfuryl chloride was added dropwise under ice cooling. The mixture was further reacted at room temperature for 1 hour. After the reaction, the solvent was distilled off and distilled in a vacuum to obtain 2.5 g of the target compound as a colorless oil (yield 85%).

Boiling point: 84-85 ° C. (0.3 Torr)

1 H-NMR (CDCl 3 ): 2.72 (t, 2H, J = 6.3 Hz); 3.92 (t, 2H, J = 6.3 Hz); 5.52 (s, 2H)

参考例2 5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)
工程1 5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジンの製造
5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)ウリジン546mg(1mmol)を1,2−ジクロロエタン4mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン452mg(3.5mmol)を加え、ついで365mg(1.2mmol)の二塩化ジブチルスズを加えた後、室温で一時間反応した。その後80℃にしクロロメチル 2−シアノエチルエーテル155.4mg(1.3mmol)を滴下、そのまま30分間攪拌した。反応終了後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液に反応液を加え塩化メチレンにて抽出を行い無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物を30gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジンを得た(197mg;収率34%)。

H−NMR(CDCl): 2.47(d,1H,J=7.8Hz);2.69(t,2H,J=6.3Hz);3.55(dd,1H,11.3,2.2Hz);3.62(dd,1H,11.3,2.2Hz);3.83(s,6H);3.87(t,2H,J=6.3Hz);4.07−4.08(m,1H);4.32(dd,1H,J=5.3,1.9Hz);4.54(q,1H,J=5.3Hz);4.94,5.11(2d,2H,J=6.9Hz);5.32(d,1H,J=8.2Hz);6.00(d,1H,J=1.9Hz);6.85−6.88(m,4H);7.29−7.41(m,9H);8.02(d,1H,J=8.2Hz);8.53(br.s,1H)

ESI−Mass:652[M+Na]

工程2 5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)の製造
工程1で得られた5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン209mg(0.332mmol)、テトラゾール23mg(0.332mmol)をアセトニトリル2mLに溶解し150mgの(0.498mmol)の2−シアノエチル N,N,N’,N’−テトライソプロピルホスホロジアミダイトを滴下し、45℃で1.5時間反応させた。反応後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え酢酸エチルにて抽出し、無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し得られた混合物を20gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(200mg;収率73%)。

ESI−Mass:852[M+Na]
Reference Example 2 5'-O- (4,4'-dimethoxytrityl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 3'-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropyl phosphoramidite)
Step 1 Preparation of 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl ) uridine 546 mg (1 mmol) of 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) uridine ) Was dissolved in 4 mL of 1,2-dichloroethane, 452 mg (3.5 mmol) of diisopropylethylamine was added, and then 365 mg (1.2 mmol) of dibutyltin dichloride was added, followed by reaction at room temperature for 1 hour. Thereafter, the temperature was raised to 80 ° C., and 155.4 mg (1.3 mmol) of chloromethyl 2-cyanoethyl ether was added dropwise, followed by stirring for 30 minutes. After completion of the reaction, the reaction solution was added to a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, extracted with methylene chloride, dried over anhydrous magnesium sulfate, the solvent was distilled off, and the resulting mixture was purified by 30 g of silica gel column chromatography. '-O- (4,4'-dimethoxytrityl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine was obtained (197 mg; yield 34%).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 2.47 (d, 1H, J = 7.8 Hz); 2.69 (t, 2H, J = 6.3 Hz); 3.55 (dd, 1H, 11.3) 2.22); 3.62 (dd, 1H, 11.3, 2.2 Hz); 3.83 (s, 6H); 3.87 (t, 2H, J = 6.3 Hz); 4.07 -4.08 (m, 1H); 4.32 (dd, 1H, J = 5.3, 1.9 Hz); 4.54 (q, 1H, J = 5.3 Hz); 4.94, 5. 11 (2d, 2H, J = 6.9 Hz); 5.32 (d, 1H, J = 8.2 Hz); 6.00 (d, 1H, J = 1.9 Hz); 6.85-6.88 (M, 4H); 7.29-7.41 (m, 9H); 8.02 (d, 1H, J = 8.2 Hz); 8.53 (br.s, 1H)

ESI-Mass: 652 [M + Na] +

Step 2 Production of 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropyl phosphoramidite) 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 209 mg (0.332 mmol) obtained in Step 1 and tetrazole 23 mg (0.332 mmol) were mixed with acetonitrile. It melt | dissolved in 2 mL and 150 mg (0.498 mmol) 2-cyanoethyl N, N, N ', N'-tetraisopropyl phosphorodiamidite was dripped, and it was made to react at 45 degreeC for 1.5 hours. After the reaction, a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution was added, the mixture was extracted with ethyl acetate, dried over anhydrous magnesium sulfate, and the solvent was distilled off. The resulting mixture was purified by 20 g of silica gel column chromatography to obtain the target compound ( 200 mg; yield 73%).

ESI-Mass: 852 [M + Na] +

参考例3 2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン
工程1 3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジンの製造
3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)ウリジン150mg(0.3mmol)をアルゴン雰囲気下THF7mLに溶解し、メチルチオメチル 2−シアノエチルエーテル54mg(0.4mmol)、モレキュラーシーブス4A100mgを加え、10分攪拌した。0℃にしトリフルオロメタンスルホン酸10mg(0.06mmol)のTHF2mL溶液を加え攪拌した後、N−ヨードスクシンイミド92mg(0.4mmol)を加え、1時間攪拌した。反応液をセライトろ過し、塩化メチレンにて洗浄した後、有機相を1Mのチオ硫酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄し、無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去した。得られた残渣を薄層クロマトグラフィーにて精製し、3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジンを得た(150mg;収率85%)。

H−NMR(CDCl): 0.97−1.12(m,28H);2.68−2.73(m,2H);3.78−3.86(m,1H);3.96−4.05(m,2H);4.12−4.30(m,4H);5.0−5.04(m,2H);5.70(d,1H,J=8.2Hz);5.75(s,1H);7.90(d,1H,J=8.2Hz);9.62(br.s,1H)

ESI−Mass:570[M+H]

工程2 2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジンの製造
工程1で得られた3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン200mg(0.35mmol)をメタノール2mLに溶解し、フッ化アンモニウム65mg(1.76mmol)を加え50℃にて5時間加熱攪拌した。放冷後アセトニトリルを加え攪拌し、ろ過濃縮した。得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(108mg;収率94%)。

H−NMR(CDOD): 2.72−2.76(t,2H,J=6.2Hz);3.68−3.92(m,4H);4.00−4.03(m,1H);4.26−4.32(m,2H);4.81−4.95(m,2H);5.71(d,1H, J=8.1Hz);6.00(d,1H,J=3.3Hz);8.10(d,1H,J=8.1Hz)

ESI−Mass:350[M+Na]
Reference Example 3 2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine Step 1 3 ', 5'-O- (Tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2'-O- (2 -Production of cyanoethoxymethyl ) uridine 3 ', 5'-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) uridine 150 mg (0.3 mmol) was dissolved in 7 mL of THF under an argon atmosphere, and methylthiomethyl 2-cyanoethyl ether 54 mg (0.4 mmol) and 100 mg of molecular sieves 4A were added and stirred for 10 minutes. The mixture was brought to 0 ° C., 2 mL of THF solution of 10 mg (0.06 mmol) of trifluoromethanesulfonic acid was added and stirred, and then 92 mg (0.4 mmol) of N-iodosuccinimide was added and stirred for 1 hour. The reaction solution was filtered through Celite and washed with methylene chloride, and then the organic phase was washed with 1M aqueous sodium hydrogensulfate solution, washed with saturated aqueous sodium hydrogencarbonate solution, dried over anhydrous magnesium sulfate and evaporated. . The obtained residue was purified by thin layer chromatography to obtain 3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine. (150 mg; 85% yield).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 0.97-1.12 (m, 28H); 2.68-2.73 (m, 2H); 3.78-3.86 (m, 1H); 96-4.05 (m, 2H); 4.12-4.30 (m, 4H); 5.0-5.04 (m, 2H); 5.70 (d, 1H, J = 8.2 Hz) ); 5.75 (s, 1 H); 7.90 (d, 1 H, J = 8.2 Hz); 9.62 (br. S, 1 H)

ESI-Mass: 570 [M + H] +

Step 2 Production of 2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 3 ', 5'-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2'-O- ( 200 mg (0.35 mmol) of 2-cyanoethoxymethyl) uridine was dissolved in 2 mL of methanol, 65 mg (1.76 mmol) of ammonium fluoride was added, and the mixture was heated and stirred at 50 ° C. for 5 hours. After allowing to cool, acetonitrile was added, stirred, and concentrated by filtration. The obtained residue was purified by silica gel column chromatography to obtain the target compound (108 mg; yield 94%).

1 H-NMR (CD 3 OD): 2.72-2.76 (t, 2H, J = 6.2 Hz); 3.68-3.92 (m, 4H); 4.00-4.03 ( m, 1H); 4.26-4.32 (m, 2H); 4.81-4.95 (m, 2H); 5.71 (d, 1H, J = 8.1 Hz); 6.00 ( d, 1H, J = 3.3 Hz); 8.10 (d, 1H, J = 8.1 Hz)

ESI-Mass: 350 [M + Na] +

参考例4 5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジンの製造
2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン14g(43mmol)をピリジンで共沸し真空ポンプで30分乾燥した。THF300mLに溶解し、アルゴン雰囲気下ピリジン68g(856mmol)、モレキュラーシーブス4A20gを加え10分攪拌した。これに4,4’−ジメトキシトリチルクロライド19.6g(57.8mmol)を3回に分けて1時間ごとに加え、さらに1時間攪拌した。メタノール10mLを加え2分攪拌した後、セライトろ過し酢酸エチルにて洗浄した。ろ液を濃縮後、残渣を酢酸エチルに溶解し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と分液した。有機相を飽和塩化ナトリウム水溶液にて洗浄、無水硫酸マグネシウムにて乾燥後溶媒留去した。得られた残渣をシリカゲルクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(26.5g;収率98%)。
Reference Example 4 Production of 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 14 g (43 mmol) Was azeotroped with pyridine and dried with a vacuum pump for 30 minutes. It melt | dissolved in THF300mL, 68 g (856 mmol) of pyridines and 20 g of molecular sieves 4A were added under argon atmosphere, and it stirred for 10 minutes. To this, 19.6 g (57.8 mmol) of 4,4′-dimethoxytrityl chloride was added in 3 portions every 1 hour and further stirred for 1 hour. After adding 10 mL of methanol and stirring for 2 minutes, the mixture was filtered through Celite and washed with ethyl acetate. After the filtrate was concentrated, the residue was dissolved in ethyl acetate and partitioned with a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution. The organic phase was washed with a saturated aqueous sodium chloride solution, dried over anhydrous magnesium sulfate, and the solvent was distilled off. The obtained residue was purified by silica gel chromatography to obtain the target compound (26.5 g; yield 98%).

参考例5 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)
工程1 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジンの製造
−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)シチジン588mg(1mmol)を1,2−ジクロロエタン4mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン452mg(3.5mmol)を加え、ついで365mg(1.2mmol)の二塩化ジブチルスズを加えた後、室温で一時間反応した。その後80℃にしクロロメチル 2−シアノエチルエーテル155.4mg(1.3mmol)を滴下、そのまま60分間攪拌した。反応終了後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液に反応液を加え塩化メチレンにて抽出を行い無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物を30gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジンを得た(219mg;収率35%)。

H−NMR(CDCl): 2.19(s,3H);2.56(d,1H,J=8.8Hz);2.65(t,2H,J=6.2Hz);3.55(dd,1H,10.5,2.5Hz);3.63(dd,1H,10.5,2.5Hz);3.82(s,6H);3.86(t,2H,J=6.2Hz);4.09−4.14(m,1H);4.28(d,1H,J=5.1Hz);4.44−4.49(m,1H);4.97,5.24(2d,2H,J=6.9Hz);5.96(s,1H);6.86−6.88(m,4H);7.09(d,1H,J=6.9Hz);7.26−7.42(m,9H);8.48(d,1H,J=6.9Hz);8.59(br.s,1H)

ESI−Mass:693[M+Na]

工程2 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)の製造
工程1で得られたN−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル) シチジン205mg(0.306mmol)を塩化メチレン2mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン105mg(0.812mmol)を加え2−シアノエチルN,N−ジイソプロピルクロロホスホロアミダイト116mg(0.49mmol)を滴下し、室温で1時間反応させた。反応後、溶媒を留去し得られた混合物を20gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(242mg;収率91%)。

ESI−Mass:871[M+H]
Reference Example 5 N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropyl Phosphoramidite)
Step 1 Preparation of N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine N 4 -acetyl-5′-O— (4 588 mg (1 mmol) of 4′-dimethoxytrityl) cytidine is dissolved in 4 mL of 1,2-dichloroethane, 452 mg (3.5 mmol) of diisopropylethylamine is added, and then 365 mg (1.2 mmol) of dibutyltin dichloride is added. For 1 hour. Thereafter, the temperature was raised to 80 ° C., and 155.4 mg (1.3 mmol) of chloromethyl 2-cyanoethyl ether was added dropwise, followed by stirring for 60 minutes. After completion of the reaction, the reaction solution was added to a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, extracted with methylene chloride, dried over anhydrous magnesium sulfate, the solvent was distilled off, and the resulting mixture was purified by 30 g of silica gel column chromatography. 4 -Acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine was obtained (219 mg; yield 35%).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 2.19 (s, 3H); 2.56 (d, 1H, J = 8.8 Hz); 2.65 (t, 2H, J = 6.2 Hz); 55 (dd, 1H, 10.5, 2.5 Hz); 3.63 (dd, 1H, 10.5, 2.5 Hz); 3.82 (s, 6H); 3.86 (t, 2H, J 4.09-4.14 (m, 1H); 4.28 (d, 1H, J = 5.1 Hz); 4.44-4.49 (m, 1H); 4.97. 5.24 (2d, 2H, J = 6.9 Hz); 5.96 (s, 1H); 6.86-6.88 (m, 4H); 7.09 (d, 1H, J = 6. 7.26-7.42 (m, 9H); 8.48 (d, 1H, J = 6.9 Hz); 8.59 (br.s, 1H)

ESI-Mass: 693 [M + Na] +

Step 2 N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropylphospho N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine 205 mg (0.306 mmol) obtained in production step 1 Was dissolved in 2 mL of methylene chloride, 105 mg (0.812 mmol) of diisopropylethylamine was added, 116 mg (0.49 mmol) of 2-cyanoethyl N, N-diisopropylchlorophosphoramidite was added dropwise, and the mixture was reacted at room temperature for 1 hour. After the reaction, the solvent was distilled off and the resulting mixture was purified by 20 g of silica gel column chromatography to obtain the target compound (242 mg; yield 91%).

ESI-Mass: 871 [M + H] +

参考例6 −アセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン
工程1 −アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジンの製造
−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)シチジン1.00g(1.89mmol)とメチルチオメチル 2−シアノエチルエーテル500mg(3.79mmol)を混合し、トルエン10mLとTHF10mLの混合溶媒に溶解した。ついでトリフルオロメタンスルホン酸銀975mg(3.79mmol)を加え、モレキュラーシーブス4Aを加え、乾燥した。氷冷下、N−ブロモスクシンイミド370mg(2.08mmol)を加え、反応容器を遮光し、10分間撹拌した。さらにN−ブロモスクシンイミド70mg(0.39mmol)を追加し、25分間撹拌した。反応終了後、塩化メチレンを加えて希釈し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄を行い、無水硫酸ナトリウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジンを得た。(936mg;収率81%)。

H−NMR(CDCl): 0.90−1.11(m,28H);2.28(s,3H);2.62−2.79(m,2H);3.78−3.89(m,1H);3.96−4.04(m,2H);4.19−4.23(m,3H);4.30(d,1H,J=13.6Hz);5.00(d,1H,J=6.8Hz);5.09(d,1H,J=6.8Hz);5.77(s,1H);7.44(d,1H,J=7.5Hz);8.30(d,1H,J=7.5Hz);10.13(s,1H)

ESI−Mass:611[M+H]

工程2 −アセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジンの製造
工程1で得られたN−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン500mg(0.819mmol)をTHF2.5mLとメタノール2.5mLの混合溶媒に溶解し、フッ化アンモニウム150mg(4.10mmol)を加え、50℃で4時間反応させた。反応終了後、アセトニトリルにて希釈、濾過し、溶媒を留去し得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(210mg;収率70%)。

H−NMR(DO): 2.13(s,3H);2.66−2.71(m,2H);3.72−3.78(m,3H);3.90(dd,1H,13.0,2.6Hz);4.06−4.11(m,1H);4.20(dd,1H,J=7.1,5.2Hz);4.29(dd,1H,J=5.1,2.9Hz);4.83(d,1H,J=7.2Hz);4.94(d,1H,J=7.2Hz);5.95(d,1H,J=2.9Hz);7.25(d,1H,J=7.6Hz);8.25(d,1H,J=7.6Hz)

ESI−Mass:391[M+Na]
Reference Example 6 N 4 - acetyl -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) cytidine <br/> Step 1 N 4 - acetyl -3 ', 5'-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3 Preparation of diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl ) cytidine 1.00 g of N 4 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) cytidine (1. 89 mmol) and 500 mg (3.79 mmol) of methylthiomethyl 2-cyanoethyl ether were mixed and dissolved in a mixed solvent of 10 mL of toluene and 10 mL of THF. Then, 975 mg (3.79 mmol) of silver trifluoromethanesulfonate was added, and molecular sieves 4A was added and dried. Under ice cooling, 370 mg (2.08 mmol) of N-bromosuccinimide was added, and the reaction vessel was shielded from light and stirred for 10 minutes. Further, 70 mg (0.39 mmol) of N-bromosuccinimide was added and stirred for 25 minutes. After completion of the reaction, the reaction mixture was diluted with methylene chloride, washed with a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, dried over anhydrous sodium sulfate, the solvent was distilled off, and the resulting mixture was purified by silica gel column chromatography. 4 -Acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine was obtained. (936 mg; 81% yield).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 0.90-1.11 (m, 28H); 2.28 (s, 3H); 2.62-2.79 (m, 2H); 3.78-3. 4.89 (m, 1H); 3.96-4.04 (m, 2H); 4.19-4.23 (m, 3H); 4.30 (d, 1H, J = 13.6 Hz); 00 (d, 1H, J = 6.8 Hz); 5.09 (d, 1H, J = 6.8 Hz); 5.77 (s, 1H); 7.44 (d, 1H, J = 7.5 Hz) ); 8.30 (d, 1H, J = 7.5 Hz); 10.13 (s, 1H)

ESI-Mass: 611 [M + H] +

Step 2 Production of N 4 -acetyl-2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine N 4 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane -1,3) obtained in Step 1 -Diyl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine 500 mg (0.819 mmol) was dissolved in a mixed solvent of THF 2.5 mL and methanol 2.5 mL, and 150 mg (4.10 mmol) of ammonium fluoride was added. And reacted at 50 ° C. for 4 hours. After completion of the reaction, the mixture was diluted with acetonitrile and filtered, and the solvent was distilled off. The resulting mixture was purified by silica gel column chromatography to obtain the target compound (210 mg; yield 70%).

1 H-NMR (D 2 O): 2.13 (s, 3H); 2.66-2.71 (m, 2H); 3.72-3.78 (m, 3H); 3.90 (dd , 1H, 13.0, 2.6 Hz); 4.06-4.11 (m, 1H); 4.20 (dd, 1H, J = 7.1, 5.2 Hz); 4.29 (dd, 1H, J = 5.1, 2.9 Hz); 4.83 (d, 1H, J = 7.2 Hz); 4.94 (d, 1H, J = 7.2 Hz); 5.95 (d, 1H) , J = 2.9 Hz); 7.25 (d, 1H, J = 7.6 Hz); 8.25 (d, 1H, J = 7.6 Hz)

ESI-Mass: 391 [M + Na] +

参考例7 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジンの製造
2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン9.9g(26.8mmol)をピリジンで共沸し真空ポンプで30分乾燥した。THF190mLに溶解し、アルゴン雰囲気下ピリジン43g(538mmol)、モレキュラーシーブス4A20gを加え10分攪拌した。これに4,4’−ジメトキシトリチルクロライド11.8g(34.9mmol)を3回に分けて1時間ごとに加え、さらに1時間攪拌した。メタノール2mLを加え2分攪拌した後、セライトろ過し酢酸エチルにて洗浄した。ろ液をエバポレーターで濃縮後残渣を酢酸エチルに溶解し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と分液した。有機相を飽和塩化ナトリウム水溶液にて洗浄、無水硫酸マグネシウムにて乾燥後溶媒留去した。得られた残渣をシリカゲルクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(15g;収率83%)。
Reference Example 7 Production of N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) cytidine 2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) Cytidine (9.9 g, 26.8 mmol) was azeotroped with pyridine and dried with a vacuum pump for 30 minutes. It melt | dissolved in THF190mL, 43 g (538 mmol) of pyridine and 20 g of molecular sieves 4A were added and stirred for 10 minutes under argon atmosphere. To this, 11.8 g (34.9 mmol) of 4,4′-dimethoxytrityl chloride was added in 3 portions every 1 hour and further stirred for 1 hour. After adding 2 mL of methanol and stirring for 2 minutes, the mixture was filtered through Celite and washed with ethyl acetate. The filtrate was concentrated with an evaporator and the residue was dissolved in ethyl acetate and separated with a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution. The organic phase was washed with a saturated aqueous sodium chloride solution, dried over anhydrous magnesium sulfate, and the solvent was distilled off. The obtained residue was purified by silica gel chromatography to obtain the target compound (15 g; yield 83%).

参考例8 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)
工程1 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンの製造
−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)グアノシン627mg(1mmol)を1,2−ジクロロエタン4mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン452mg(3.5mmol)を加え、ついで365mg(1.2mmol)の二塩化ジブチルスズを加えた後、室温で一時間反応した。その後80℃にしクロロメチル 2−シアノエチルエーテル155.4mg(1.3mmol)を滴下、そのまま60分間攪拌した。反応終了後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液に反応液を加え塩化メチレンにて抽出を行い無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物を30gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンを得た(450mg;収率63%)。

H−NMR(CDCl): 1.92(s,3H);2.47−2.51(m,2H);2.68(br.s,1H);3.30(dd,1H,10.7,3.8Hz);3.47(dd,1H,10.7,3.8Hz);3.55−3.60(m,1H);3.65−3.70(m,1H);3.74,3.75(2s,6H);4.22−4.23(m,1H);4.55−4.58(m,1H);4.78,4.83(2d,2H,J=7.0Hz);5.01(t,1H,J=5.1Hz);5.99(d,1H,J=5.1Hz);6.76−6.79(m,4H);7.17−7.44(m,9H);7.88(s,1H);8.36(br.s,1H);12.06(br.s,1H)

工程2 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)の製造
工程1で得られたN−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン400mg(0.563mmol)を塩化メチレン2mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン181mg(1.4mmol)を加え2−シアノエチルN,N−ジイソプロピルクロロホスホロアミダイト161mg(0.68mmol)を滴下し、室温で1時間反応させた。反応後、溶媒を留去し得られた混合物を20gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(471mg;収率92%)。
Reference Example 8 N 2 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropyl Phosphoramidite)
Step 1 N 2 - acetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) production of guanosine N 2 - acetyl -5'-O- (4, 627 mg (1 mmol) of 4′-dimethoxytrityl) guanosine is dissolved in 4 mL of 1,2-dichloroethane, 452 mg (3.5 mmol) of diisopropylethylamine is added, and then 365 mg (1.2 mmol) of dibutyltin dichloride is added. For 1 hour. Thereafter, the temperature was raised to 80 ° C., and 155.4 mg (1.3 mmol) of chloromethyl 2-cyanoethyl ether was added dropwise, followed by stirring for 60 minutes. After completion of the reaction, the reaction solution was added to a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, extracted with methylene chloride, dried over anhydrous magnesium sulfate, the solvent was distilled off, and the resulting mixture was purified by 30 g of silica gel column chromatography. 2 -Acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine was obtained (450 mg; yield 63%).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 1.92 (s, 3H); 2.47-2.51 (m, 2H); 2.68 (br.s, 1H); 3.30 (dd, 1H, 3.47 (dd, 1H, 10.7, 3.8 Hz); 3.55-3.60 (m, 1H); 3.65-3.70 (m, 1H) 3.74, 3.75 (2s, 6H); 4.22-4.23 (m, 1H); 4.55-4.58 (m, 1H); 4.78, 4.83 (2d) , 2H, J = 7.0 Hz); 5.01 (t, 1H, J = 5.1 Hz); 5.99 (d, 1H, J = 5.1 Hz); 6.76-6.79 (m, 4H); 7.17-7.44 (m, 9H); 7.88 (s, 1H); 8.36 (br.s, 1H); 12.06 (br.s, 1H)

Step 2 N 2 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropylphospho Ramidite) 400 mg (0.563 mmol) of N 2 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine obtained in production step 1 Was dissolved in 2 mL of methylene chloride, 181 mg (1.4 mmol) of diisopropylethylamine was added, and 161 mg (0.68 mmol) of 2-cyanoethyl N, N-diisopropylchlorophosphoramidite was added dropwise and reacted at room temperature for 1 hour. After the reaction, the solvent was distilled off and the resulting mixture was purified by 20 g of silica gel column chromatography to obtain the target compound (471 mg; yield 92%).

参考例9 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)
工程1 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンの製造
−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)アデノシン22.0g(36.0mmol)を1,2−ジクロロエタン170mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン16.3g(126mmol)を加え、ついで12.1g(39.7mmol)の二塩化ジブチルスズを加えた後、室温で一時間反応した。その後80℃にし15分間撹拌後、クロロメチル 2−シアノエチルエーテル4.30g(36.0mmol)を滴下、そのまま30分間撹拌した。反応終了後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液に反応液を加え塩化メチレンにて抽出を行い無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンを得た。(7.47g;収率33%)

H−NMR(CDCl): 2.51(t,2H,J=6.2Hz);2.58(d,1H,J=5.5Hz);2.61(s,3H);3.45(dd,1H,J=10.7,4.0Hz);3.54(dd,1H,J=10.7,3.2Hz);3.62−3.79(m,2H);3.79(s,6H);4.25(br.q,1H,J〜4.6Hz);4.59(q,1H,J=5.2Hz);4.87−4.94(m,3H);6.23(d,1H,J=4.4Hz);6.80−6.83(m,4H);7.22−7.32(m,7H);7.40−7.43(m,2H);8.20(s,1H);8.61(br.s,1H);8.62(s,1H)

ESI−Mass:695[M+H]

工程2 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)の製造
工程1で得られたN−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン10.0g(14.4mmol)を塩化メチレン75mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン4.7g(36mmol)を加え2−シアノエチルN,N−ジイソプロピルクロロホスホロアミダイト4.82g(20.3mmol)を滴下し、室温で1時間反応させた。反応後、溶媒を30mL程度残して留去し得られた反応混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(12.0g;収率93%)。

ESI−Mass:895[M+H]
Reference Example 9 N 6 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropyl Phosphoramidite)
Step 1 Preparation of N 6 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine N 6 -acetyl-5′-O— (4 4'-dimethoxytrityl) adenosine (22.0 g, 36.0 mmol) was dissolved in 1,2-dichloroethane (170 mL), diisopropylethylamine (16.3 g, 126 mmol) was added, and then 12.1 g (39.7 mmol) dibutyltin dichloride. And then reacted at room temperature for 1 hour. Thereafter, the mixture was heated to 80 ° C. and stirred for 15 minutes, and then 4.30 g (36.0 mmol) of chloromethyl 2-cyanoethyl ether was added dropwise and stirred as it was for 30 minutes. After completion of the reaction, the reaction solution was added to a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, extracted with methylene chloride, dried over anhydrous magnesium sulfate, the solvent was distilled off, the resulting mixture was purified by silica gel column chromatography, and N 6- Acetyl-5'-O- (4,4'-dimethoxytrityl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine was obtained. (7.47 g; 33% yield)

1 H-NMR (CDCl 3 ): 2.51 (t, 2H, J = 6.2 Hz); 2.58 (d, 1H, J = 5.5 Hz); 2.61 (s, 3H); 45 (dd, 1H, J = 10.7, 4.0 Hz); 3.54 (dd, 1H, J = 10.7, 3.2 Hz); 3.62-3.79 (m, 2H); 3 .79 (s, 6H); 4.25 (br. Q, 1 H, J to 4.6 Hz); 4.59 (q, 1 H, J = 5.2 Hz); 4.87-4.94 (m, 3H); 6.23 (d, 1H, J = 4.4 Hz); 6.80-6.83 (m, 4H); 7.22-7.32 (m, 7H); 7.40-7. 43 (m, 2H); 8.20 (s, 1H); 8.61 (br.s, 1H); 8.62 (s, 1H)

ESI-Mass: 695 [M + H] +

Step 2 N 6 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropylphospho N obtained in the production process 1 of Roamidaito) 6 - acetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) adenosine 10.0 g (14. 4 mmol) is dissolved in 75 mL of methylene chloride, 4.7 g (36 mmol) of diisopropylethylamine is added, and 4.82 g (20.3 mmol) of 2-cyanoethyl N, N-diisopropylchlorophosphoramidite is added dropwise and reacted at room temperature for 1 hour. It was. After the reaction, the reaction mixture obtained by distilling off the solvent leaving about 30 mL was purified by silica gel column chromatography to obtain the target compound (12.0 g; yield 93%).

ESI-Mass: 895 [M + H] +

参考例10 −アセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン
工程1 −アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンの製造
N−ヨードスクシンイミド245mg(1.09mmol)とトリフルオロメタンスルホン酸銀280mg(1.09mmol)を塩化メチレン8mLに懸濁させ、モレキュラーシーブス4Aを加え、乾燥した。ここに、N−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)アデノシン400mg(0.73mmol)とメチルチオメチル 2−シアノエチルエーテル145mg(1.11mmol)を塩化メチレン4mLに溶解し、氷冷下で加えた。そのまま3時間撹拌した。反応終了後、塩化メチレンを加えて希釈し、チオ硫酸ナトリウム水溶液と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄を行い、無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンを得た。(201mg;収率45%)

H−NMR(CDCl): 0.98−1.11(m,28H);2.62(s,3H);2.69(td,2H,6.5,J=1.5Hz);3.81−3.89(m,1H);4.02−4.09(m,2H);4.17(d,1H,J=9.4Hz);4.28(d,1H,J=13.4Hz);4.50(d,1H,J=4.5Hz);4.67(dd,1H,J=8.8,4.5Hz);5.02(d,1H,J=7.0Hz);5.08(d,1H,J=7.0Hz);6.10(s,1H);8.34(s,1H);8.66(s,1H);8.67(s,1H)

ESI−Mass:636[M+H]

工程2 −アセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンの製造
工程1で得られたN−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン300mg(0.47mmol)を、酢酸0.1mLと0.5MTBAFのTHF溶液2mLの混合溶液に溶解し、室温で2時間撹拌した。反応終了後、得られた反応混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た。(160mg;収率86%)。

H−NMR(DMSO−d6): 2.25(s,3H);2.53−2.68(m,2H);3.41−3.46(m,1H);3.56−3.64(m,2H);3.69−3.73(m,1H);4.00−4.01(m,1H);4.36−4.37(m,1H);4.72−4.78(m,3H);5.20(bt,2H);5.41(d,1H,J=5.2Hz);6.17(d,1H,J=5.7Hz);8.66(s,1H);8.72(s,1H);10.72(s,1H)

ESI−Mass:415[M+Na]
Reference Example 10 N 6 - acetyl -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) adenosine <br/> Step 1 N 6 - acetyl -3 ', 5'-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3 Preparation of diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine 245 mg (1.09 mmol) of N-iodosuccinimide and 280 mg (1.09 mmol) of silver trifluoromethanesulfonate were suspended in 8 mL of methylene chloride and molecular. Sieves 4A was added and dried. To this, 400 mg (0.73 mmol) of N 6 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) adenosine and 145 mg (1.11 mmol) of methylthiomethyl 2-cyanoethyl ether were chlorinated. Dissolved in 4 mL of methylene and added under ice cooling. The mixture was stirred for 3 hours. After completion of the reaction, the reaction mixture is diluted with methylene chloride, washed with an aqueous sodium thiosulfate solution and a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, dried over anhydrous magnesium sulfate, and the solvent is distilled off. The resulting mixture is subjected to silica gel column chromatography. To obtain N 6 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine. (201 mg; yield 45%)

1 H-NMR (CDCl 3 ): 0.98-1.11 (m, 28H); 2.62 (s, 3H); 2.69 (td, 2H, 6.5, J = 1.5 Hz); 3.81-3.89 (m, 1H); 4.02-4.09 (m, 2H); 4.17 (d, 1H, J = 9.4 Hz); 4.28 (d, 1H, J = 13.4 Hz); 4.50 (d, 1 H, J = 4.5 Hz); 4.67 (dd, 1 H, J = 8.8, 4.5 Hz); 5.02 (d, 1 H, J = 7.0 Hz); 5.08 (d, 1H, J = 7.0 Hz); 6.10 (s, 1H); 8.34 (s, 1H); 8.66 (s, 1H); 8.67 (S, 1H)

ESI-Mass: 636 [M + H] +

Step 2 Production of N 6 -acetyl-2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine N 6 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane -1,3) obtained in Step 1 -Diyl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine (300 mg, 0.47 mmol) was dissolved in a mixed solution of acetic acid (0.1 mL) and 0.5 MTBAF in THF (2 mL) and stirred at room temperature for 2 hours. . After completion of the reaction, the obtained reaction mixture was purified by silica gel column chromatography to obtain the target compound. (160 mg; 86% yield).

1 H-NMR (DMSO-d6): 2.25 (s, 3H); 2.53 to 2.68 (m, 2H); 3.41 to 3.46 (m, 1H); 3.56-3 .64 (m, 2H); 3.69-3.73 (m, 1H); 4.00-4.01 (m, 1H); 4.36-4.37 (m, 1H); 4.72 −4.78 (m, 3H); 5.20 (bt, 2H); 5.41 (d, 1H, J = 5.2 Hz); 6.17 (d, 1H, J = 5.7 Hz); 8 .66 (s, 1H); 8.72 (s, 1H); 10.72 (s, 1H)

ESI-Mass: 415 [M + Na] +

参考例11 −アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンの製造
−アセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン9.50g(24.2mmol)を脱水ピリジン100mLに溶解し、濃縮して乾燥した後、アルゴン雰囲気下、脱水ピリジン100mLに溶解した。氷冷下、4,4’−ジメトキシトリチルクロリド10.7g(31.2mmol)を加え、室温で1時間20分反応した。反応終了後、塩化メチレンにて希釈し、水にて洗浄を行い無水硫酸ナトリウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た。(13.8g;収率82%)
Reference Example 11 Production of N 6 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine N 6 -acetyl-2′-O— (2 -Cyanoethoxymethyl) adenosine 9.50 g (24.2 mmol) was dissolved in 100 mL of dehydrated pyridine, concentrated and dried, and then dissolved in 100 mL of dehydrated pyridine under an argon atmosphere. Under ice-cooling, 10.7 g (31.2 mmol) of 4,4′-dimethoxytrityl chloride was added and reacted at room temperature for 1 hour and 20 minutes. After completion of the reaction, the reaction mixture was diluted with methylene chloride, washed with water, dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off. The resulting mixture was purified by silica gel column chromatography to obtain the target compound. (13.8 g; 82% yield)

参考例12 −フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイト)
工程1 −フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンの製造
−フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)グアノシン720mg(1mmol)を1,2−ジクロロエタン4mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン452mg(3.5mmol)を加え、ついで365mg(1.2mmol)の二塩化ジブチルスズを加えた後、室温で一時間反応した。その後80℃にしクロロメチル 2−シアノエチルエーテル155.4mg(1.3mmol)を滴下、そのまま60分間攪拌した。反応終了後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液に反応液を加え塩化メチレンにて抽出を行い無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物を30gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンを得た(384mg;収率48%)。

H−NMR(CDCl): 2.47−2.51(m,2H);2.58(br.s,1H);3.42(dd,1H,10.1,3.8Hz);3.46(dd,1H,10.1,3.8Hz);3.53−3.57(m,1H);3.69−3.73(m,1H);3.77(s,6H);4.24−4.26(m,1H);4.48−4.50(m,1H);4.61−4.65(m,2H);4.83,4.87(2d,2H,J=7.0Hz);4.88(t,1H,J=5.7Hz);6.05(d,1H,J=5.7Hz);6.80−6.82(m,4H);6.92−6.96(m,3H);7.07−7.11(m,2H);7.20−7.42(m,9H);7.84(s,1H);8.99(s,1H);11.81(br.s,1H)

ESI−Mass:825[M+Na]

工程2 −フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスホロアミダイトの製造
工程1で得られたN−フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン320mg(0.399mmol)を塩化メチレン4mLに溶解し、ジイソプロピルエチルアミン128.8mg(0.996mmol)を加え2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルクロロホスホロアミダイト141.5mg(0.598mmol)を滴下し、室温で1時間反応させた。反応後、溶媒を留去し得られた混合物を30gのシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(316mg;収率79%)。

ESI−Mass:1003[M+H]
Reference Example 12 N 2 - phenoxyacetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) guanosine 3'-O- (2- cyanoethyl N, N- Diisopropyl phosphoramidite)
Step 1 Preparation of N 2 -phenoxyacetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine N 2 -phenoxyacetyl-5′-O— ( After 720 mg (1 mmol) of 4,4′-dimethoxytrityl) guanosine was dissolved in 4 mL of 1,2-dichloroethane, 452 mg (3.5 mmol) of diisopropylethylamine was added, and then 365 mg (1.2 mmol) of dibutyltin dichloride was added. For 1 hour at room temperature. Thereafter, the temperature was raised to 80 ° C., and 155.4 mg (1.3 mmol) of chloromethyl 2-cyanoethyl ether was added dropwise, followed by stirring for 60 minutes. After completion of the reaction, the reaction solution was added to a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, extracted with methylene chloride, dried over anhydrous magnesium sulfate, the solvent was distilled off, and the resulting mixture was purified by 30 g of silica gel column chromatography. 2 -Phenoxyacetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine was obtained (384 mg; 48% yield).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 2.47-1.51 (m, 2H); 2.58 (br.s, 1H); 3.42 (dd, 1H, 10.1, 3.8 Hz); 3.46 (dd, 1H, 10.1, 3.8 Hz); 3.53-3.57 (m, 1H); 3.69-3.73 (m, 1H); 3.77 (s, 6H) 4.24-4.26 (m, 1H); 4.48-4.50 (m, 1H); 4.61-4.65 (m, 2H); 4.83, 4.87 (2d) , 2H, J = 7.0 Hz); 4.88 (t, 1H, J = 5.7 Hz); 6.05 (d, 1H, J = 5.7 Hz); 6.80-6.82 (m, 4H); 6.92-6.96 (m, 3H); 7.07-7.11 (m, 2H); 7.20-7.42 (m, 9H); 7.84 (s, 1H) 8.99 (s, 1H); 11 .81 (br.s, 1H)

ESI-Mass: 825 [M + Na] +

Step 2 N 2 -phenoxyacetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N-diisopropyl 320 mg (0.399 mmol) of N 2 -phenoxyacetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine obtained in production step 1 of phosphoramidite ) Is dissolved in 4 mL of methylene chloride, 128.8 mg (0.996 mmol) of diisopropylethylamine is added, and 141.5 mg (0.598 mmol) of 2-cyanoethyl N, N-diisopropylchlorophosphoramidite is added dropwise and reacted at room temperature for 1 hour. After the reaction, the solvent was distilled off, and the resulting mixture was subjected to 30 g of silica gel column chromatography. , To thereby obtain the desired compound (316 mg; 79% yield).

ESI-Mass: 1003 [M + H] +

参考例13 −フェノキシアセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン
工程1 −フェノキシアセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンの製造
−フェノキシアセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)グアノシン2.0g(3.0mmol)をTHF16mLに溶解し、メチルチオメチル 2−シアノエチルエーテル0.99g(7.6mmol)、モレキュラーシーブス4A1.0gを加え、アルゴン雰囲気下−45℃で10分攪拌した。トリフルオロメタンスルホン酸0.68g(4.5mmol)のTHF5mL溶液を加え攪拌した後、N−ヨードスクシンイミド1.02g(4.5mmol)を加え、15分攪拌した。反応液に飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、ろ過後酢酸エチルにて抽出、有機相を1Mのチオ硫酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄、水、次いで飽和塩化ナトリウム水溶液にて洗浄し、無水硫酸マグネシウムにて乾燥、溶媒留去した。得られた残渣をシリカゲルクロマトグラフィーにて精製し、N−フェノキシアセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンを得た(2.0g;収率89%)。

H−NMR(CDCl): 0.99−1.11(m,28H);2.59−2.77(m,2H);3.82−4.05(m,3H);4.15(d,1H,J=9.3Hz);4.25−4.35(m,2H);4.52−4.56(dd,1H,J=9.3,4.3Hz);5.00,5.07(2d,2H,J=7.2Hz);5.95(s,1H)6.99−7.12(m,3H);7.35−7.40(m,2H);8.09(s,1H);9.38(br.s,1H);11.85(br.s,1H)

ESI−Mass:766[M+Na]

工程2 −フェノキシアセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンの製造
1MTBAF/THF溶液2.83mL(2.83mmol)に酢酸0.14mL(0.14mmol)を加えた溶液を調整する。工程1で得られたN−フェノキシアセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン1.0g(1.35mmol)をTHF2.83mLに溶解し、上で調整した溶液を加えアルゴン雰囲気下室温で1時間攪拌した。反応液を減圧下濃縮後、塩化メチレンに溶解しシリカゲルクロマトグラフィーにのせ精製し、目的化合物を得た。(0.67g;収率99%)。

H−NMR(DMSO−d6): 2.59−2.66(m,2H);3.41−3.63(m,4H);3.98(m,1H);4.32(m,1H);4.58−4.62(t,1H,J=5.3Hz);4.71−4.78(dd,2H,J=13.1,6.8Hz);4.87(s,2H);5.12(s,1H)5.37(s,1H);5.97(d,1H,J=6.1Hz)6.96−6.99(m,3H);7.28−7.34(m,2H);8.30(s,1H);11.78(br.s,2H)

ESI−Mass:500[M−H]
Reference Example 13 N 2 - phenoxyacetyl -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) guanosine <br/> Step 1 N 2 - phenoxyacetyl -3 ', 5'-O- (tetraisopropyldisiloxane-1, Preparation of 3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl ) guanosine 2.0 g of N 2 -phenoxyacetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) guanosine (3.0 mmol) was dissolved in 16 mL of THF, 0.99 g (7.6 mmol) of methylthiomethyl 2-cyanoethyl ether and 1.0 g of molecular sieves 4A were added, and the mixture was stirred at −45 ° C. for 10 minutes in an argon atmosphere. A solution of 0.68 g (4.5 mmol) of trifluoromethanesulfonic acid in 5 mL of THF was added and stirred, and then 1.02 g (4.5 mmol) of N-iodosuccinimide was added and stirred for 15 minutes. Saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution was added to the reaction solution, and after filtration, extracted with ethyl acetate, the organic phase was washed with 1M aqueous sodium thiosulfate solution, washed with water, then saturated aqueous sodium chloride solution, and anhydrous magnesium sulfate. Dried and evaporated. The obtained residue was purified by silica gel chromatography, and N 2 -phenoxyacetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxy) was obtained. Methyl) guanosine was obtained (2.0 g; yield 89%).

1 H-NMR (CDCl 3 ): 0.99-1.11 (m, 28H); 2.59-2.77 (m, 2H); 3.82-4.05 (m, 3H); 15 (d, 1H, J = 9.3 Hz); 4.25-4.35 (m, 2H); 4.52-4.56 (dd, 1H, J = 9.3, 4.3 Hz); 5 0.000, 5.07 (2d, 2H, J = 7.2 Hz); 5.95 (s, 1H) 6.99-7.12 (m, 3H); 7.35-7.40 (m, 2H) 8.09 (s, 1H); 9.38 (br.s, 1H); 11.85 (br.s, 1H)

ESI-Mass: 766 [M + Na] +

Step 2 Production of N 2 -phenoxyacetyl-2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine adjust. N 2 -phenoxyacetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine 1.0 g obtained in step 1 ( 1.35 mmol) was dissolved in 2.83 mL of THF, the solution prepared above was added, and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour under an argon atmosphere. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, dissolved in methylene chloride and purified by silica gel chromatography to obtain the target compound. (0.67 g; yield 99%).

1 H-NMR (DMSO-d6): 2.59-2.66 (m, 2H); 3.41-3.63 (m, 4H); 3.98 (m, 1H); 4.32 (m , 1H); 4.58-4.62 (t, 1H, J = 5.3 Hz); 4.71-4.78 (dd, 2H, J = 13.1, 6.8 Hz); 4.87 ( s, 2H); 5.12 (s, 1H) 5.37 (s, 1H); 5.97 (d, 1H, J = 6.1 Hz) 6.96-6.99 (m, 3H); 7 28-7.34 (m, 2H); 8.30 (s, 1H); 11.78 (br.s, 2H)

ESI-Mass: 500 [M−H]

参考例14 −フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシンの製造
−フェノキシアセチル−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン660mg(1.32mmol)をピリジンで共沸し真空ポンプで30分乾燥した。THF9mLに溶解し、アルゴン雰囲気下ピリジン2.1g(26.4mmol)、モレキュラーシーブス4A600mgを加え10分攪拌した。これに4,4’−ジメトキシトリチルクロライド540mg(1.58mmol)を3回に分けて1時間ごとに加え、さらに1時間攪拌した。メタノール2mLを加え2分攪拌した後、セライトろ過し酢酸エチルにて洗浄した。ろ液をエバポレーターで濃縮後残渣を酢酸エチルに溶解し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と分液した。有機相を飽和塩化ナトリウム水溶液にて洗浄、無水硫酸マグネシウムにて乾燥後溶媒留去した。得られた残渣をシリカゲルクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た(800mg;収率75%)。
Reference Example 14 Production of N 2 -phenoxyacetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) guanosine N 2 -phenoxyacetyl-2′-O— 660 mg (1.32 mmol) of (2-cyanoethoxymethyl) guanosine was azeotroped with pyridine and dried with a vacuum pump for 30 minutes. It melt | dissolved in THF9mL, 2.1g (26.4 mmol) of pyridine and 600 mg of molecular sieves 4A were added under argon atmosphere, and it stirred for 10 minutes. To this, 540 mg (1.58 mmol) of 4,4′-dimethoxytrityl chloride was added in three portions every hour, and the mixture was further stirred for 1 hour. After adding 2 mL of methanol and stirring for 2 minutes, the mixture was filtered through Celite and washed with ethyl acetate. The filtrate was concentrated with an evaporator and the residue was dissolved in ethyl acetate and separated with a saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution. The organic phase was washed with a saturated aqueous sodium chloride solution, dried over anhydrous magnesium sulfate, and the solvent was distilled off. The obtained residue was purified by silica gel chromatography to obtain the target compound (800 mg; yield 75%).

参考例15 −アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン
工程1 −アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−メチルチオメチルアデノシンの製造
−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)アデノシン2.00g(3.62mmol)をジメチルスルホキシド25mLに溶解し、無水酢酸17.5mL、酢酸12.5mLを加え室温で14時間撹拌した。反応終了後、水200mLに反応液を加え、酢酸エチルにて抽出を行い、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄を行い、無水硫酸ナトリウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、N−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−メチルチオメチルアデノシンを得た。(1.36g;収率61%)

H−NMR(CDCl): 0.96−1.11(m,28H);2.20(s,3H);2.61(s,3H);4.03(dd,1H,J=13.4,2.4Hz);4.18(d,1H,J=9.1Hz);4.27(d,1H,J=13.4Hz);4.63−4.71(m,2H);5.00(d,1H,J=11.5Hz);5.07(d,1H,J=11.5Hz);6.09(s,1H);8.31(s,1H);8.65(s,1H);8.69(s,1H)

ESI−Mass:635[M+Na]

工程2 −アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシンの製造
工程1で得られたN−アセチル−3’,5’−O−(テトライソプロピルジシロキサン−1,3−ジイル)−2’−O−メチルチオメチルアデノシン1.00g(1.63mmol)を、THF25mLに溶解した。3−ヒドロキシプロピオニトリル5.88g(82.7mmol)を加え、モレキュラーシーブス4Aを加えて乾燥し、−45℃に冷却した。N−ヨードスクシンイミド440mg(1.96mmol)を加え、ついでトリフルオロメタンスルホン酸490mg(3.26mmol)を加えた後、−45℃で15分間撹拌した。反応終了後、冷却したままトリエチルアミンを加えて中和し、塩化メチレンにて希釈、チオ硫酸ナトリウム水溶液と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液にて洗浄を行い、無水硫酸ナトリウムにて乾燥、溶媒留去し、得られた混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、目的化合物を得た。(722mg;収率71%)。

試験例1 キャッピング工程において使用するアシル化反応の活性化剤及びフェノキシ酢酸誘導体の捕捉剤の効果1

市販の5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)チミジンを担持したCPG固相担体(333mg,15μmol)をグラスフィルター付きカラムに入れ、核酸自動合成機(ExpediteTM:アプライドバイオシステムズ社)を使用して、オリゴ核酸(アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−チミジン)の合成を行った。
核酸モノマー化合物として、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)、5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)、N−フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)を、縮合触媒としてベンジルメルカプトテトラゾールを、酸化剤としてヨウ素溶液を、キャッピング工程に使用する試薬として次の表1に記載の4種類の試薬を使用し、核酸モノマー化合物を20回縮合させた。

Figure 2007097446
上記条件で製造した各オリゴ核酸に対し、切り出し剤としてアンモニア水:エタノール=3:1を使用して、40℃で4時間かけてCPG固相担体からの切り出し及び各リン酸部位、塩基部位の保護基の脱離反応を行った。各反応混合物をろ過後、ろ液を減圧下、濃縮後、ニトロメタン1%を含む1MTBAFのTHF溶液を用いて室温下、3時間反応させ、2’位の水酸基の保護基の脱離反応を行った。上記各条件において製造したオリゴ核酸を未精製のまま一部取り出し、HPLC分析を行った。

図1は、上記1の試薬を使用して製造した未精製のオリゴ核酸について、図2は、上記2の試薬を使用して製造した未精製のオリゴ核酸について、図3は、上記3の試薬を使用して製造した未精製のオリゴ核酸について、図4は、上記4の試薬を使用して製造した未精製のオリゴ核酸について、それぞれ下記測定条件によりHPLC分析を行った結果である。

測定条件:
HPLC装置
送液ユニット:LC−10AT VP(島津製作所社製)
検出器:SPD−10AVP (島津製作所社製)
陰イオン交換HPLCカラム
DNAPac PA−100<4mmφ x 250 mm>(DIONEX社製)
カラム温度:50℃
移動相
グラジエント:リニアグラジエント20分(B液:5−25%)
A液:10%アセトニトリルを含む25mM トリス−塩酸緩衝液
B液:10%アセトニトリル、700mM 過塩素酸ナトリウムを含む25mM トリス−塩酸緩衝液
移動相の流量:1ml/分
紫外線可視分光器検出波長:260nm

次に、各反応溶液をエタノール中に滴下し、沈殿を生成させた後、母液と沈殿を遠心分離した。デカンテーションによって母液を除去し、沈殿を陰イオン交換カラム(DEAE)にて不要ピークを除去後、溶出溶媒(1.0M塩化ナトリウム水溶液を含む10mMリン酸緩衝液)を用いて精製した。溶液を透析処理後、目的化合物を得た。滅菌水でおよそ20 OD/ml程度に希釈したサンプル200μlに対し、nuclease P1(0.5units)を添加し、37°Cで48時間反応させた後、alkaline phosphatase(5units)と緩衝液(1mM MgCl,0.1mM ZnCl,1mM スペルミジンを含む50mM Tris−HCl緩衝液,pH 9.3)を37°Cで24時間反応させて酵素分解を行った。それぞれについて酵素分解したものを下記測定条件によりHPLC分析を行った(図5,6,7参照)。

図5は、上記2の試薬を使用して製造したオリゴ核酸の酵素分解生成物について、図6は、上記3の試薬を使用して製造したオリゴ核酸の酵素分解生成物について、図7は、上記4の試薬を使用して製造した製造したオリゴ核酸の酵素分解生成物について、それぞれ下記測定条件によりHPLC分析を行った結果である。

測定条件:
HPLC装置
送液ユニット:LC−10AS(島津製作所社製)
検出器:SPD−6AV(島津製作所社製)
逆相HPLCカラム
Develosil ODS−UG−5 reverse−phase column <4.6mmφ x 250 mm>(野村化学社製)
カラム温度:40℃
移動相
グラジエント:アイソクラティック20分
50mM リン酸二水素カリウム水溶液(pH3.0):メタノール=20:1
移動相の流量:1ml/分
紫外線可視分光器検出波長:260nm

図1〜4の結果から、アシル化反応を促進するための活性化剤として2−DMAPを使用した場合、NMIや4−DMAPを使用した場合と比較してキャッピング効率が良好であることが明らかである。また、フェノキシ酢酸誘導体の捕捉剤としてピリジンを使用するよりも2,6−ルチジンを使用したほうが、キャッピング効率が優れていることも確認された。

図5〜7の結果から、アシル化反応の活性化剤としてNMIや4−DMAPを使用した場合、少量ではあるが、保持時間が約8.5分のところに見られるグアノシン由来の2,6−ジアミノプリン体の生成が確認できた。一方、アシル化反応の活性化剤として2−DMAPを使用した場合、顕著に2,6−ジアミノプリン体の生成が低減され、さらに、塩基をピリジンから2,6−ルチジンに変更することによって、2,6−ジアミノプリン体の生成が確認できなかった。

試験例2 キャッピング工程において使用するアシル化反応の活性化剤及びフェノキシ酢酸誘導体の捕捉剤の効果2

市販の5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)チミジンを担持したCPG固相担体(333mg,15μmol)をグラスフィルター付きカラムに入れ、核酸自動合成機(ExpediteTM:アプライドバイオシステムズ社)を使用して、オリゴ核酸(シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−ウリジリル−[3’→5’]−シチジリル−[3’→5’]−グアニリル−[3’→5’]−アデニリル−[3’→5’]−チミジル−[3’→5’]−チミジン)の合成を行った。
核酸モノマー化合物として、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)アデノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)、N−アセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)シチジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)、5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)ウリジン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)、N−フェノキシアセチル−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)−2’−O−(2−シアノエトキシメチル)グアノシン 3’−O−(2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルホスオロアミダイト)を、縮合触媒としてベンジルメルカプトテトラゾールを、酸化剤としてヨウ素溶液を、キャッピング工程に使用する試薬として下記表2に記載の3種類の試薬を使用し、核酸モノマー化合物を20回縮合させた。

上記条件で製造した各オリゴRNAに対し、切り出し剤としてアンモニア水:エタノール=3:1を用いて、40℃で4時間かけてCPG固相担体からの切り出し及び各リン酸部位、塩基部位の保護基の脱離反応を行った。各反応混合物をろ過後、ろ液を減圧下、濃縮後、ニトロメタン1%を含む1MのTBAF THF溶液を用いて室温下、3時間反応させ、2’位水酸基の保護基の脱離反応を行った。次に、各反応溶液をエタノール中に滴下し、沈殿を生成させた後、母液と沈殿を遠心分離した。デカンテーションによって母液を除去し、沈殿を陰イオン交換カラム(DEAE)にて不要ピークを除去後、溶出溶媒(1.0M 塩化ナトリウム水溶液を含む10mM リン酸緩衝液)を用いて精製した。溶液を透析処理後、目的化合物を得た。上記各試薬を使用した場合におけるオリゴ核酸の収量及び収率を以下に示す。

Figure 2007097446
得られた化合物が目的化合物であることは、MALDI−TOF−MSにより、確認した。それぞれ、計算値:6607.06 [M+H]に対して、各々実測値が、6607.69 [M+H]、6609.97 [M+H]、6607.91 [M+H]であった。

以上から、キャッピング工程において、アシル化反応の活性化剤として2−DMAPを、フェノキシ酢酸誘導体の捕捉剤として2,6−ルチジンを使用することにより、オリゴ核酸の単離収率が格段に向上することが明らかとなった。
Reference Example 15 N 6 - acetyl -3 ', 5'-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) adenosine <br/> Step 1 N 6 Preparation of N-acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane- 1,3-diyl) -2′-O-methylthiomethyladenosine N 6 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyl Disiloxane-1,3-diyl) adenosine (2.00 g, 3.62 mmol) was dissolved in dimethyl sulfoxide (25 mL), acetic anhydride (17.5 mL) and acetic acid (12.5 mL) were added, and the mixture was stirred at room temperature for 14 hours. After completion of the reaction, the reaction solution was added to 200 mL of water, extracted with ethyl acetate, washed with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off. Purification by chromatography gave N 6 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O-methylthiomethyladenosine. (1.36 g; 61% yield)

1 H-NMR (CDCl 3 ): 0.96-1.11 (m, 28H); 2.20 (s, 3H); 2.61 (s, 3H); 4.03 (dd, 1H, J = 13.4, 2.4 Hz); 4.18 (d, 1H, J = 9.1 Hz); 4.27 (d, 1H, J = 13.4 Hz); 4.63-4.71 (m, 2H) ); 5.00 (d, 1H, J = 11.5 Hz); 5.07 (d, 1H, J = 11.5 Hz); 6.09 (s, 1H); 8.31 (s, 1H); 8.65 (s, 1H); 8.69 (s, 1H)

ESI-Mass: 635 [M + Na] +

Step 2 N 6 -Acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine produced in Step 1 1.00 g (1.63 mmol) of 6 -acetyl-3 ′, 5′-O- (tetraisopropyldisiloxane-1,3-diyl) -2′-O-methylthiomethyladenosine was dissolved in 25 mL of THF. 3-Hydroxypropionitrile (5.88 g, 82.7 mmol) was added, and molecular sieves 4A was added, dried, and cooled to -45 ° C. After adding 440 mg (1.96 mmol) of N-iodosuccinimide, and then adding 490 mg (3.26 mmol) of trifluoromethanesulfonic acid, the mixture was stirred at −45 ° C. for 15 minutes. After completion of the reaction, the reaction mixture was cooled and neutralized by adding triethylamine, diluted with methylene chloride, washed with aqueous sodium thiosulfate and saturated aqueous sodium bicarbonate, dried over anhydrous sodium sulfate, and the solvent was distilled off. The resulting mixture was purified by silica gel column chromatography to obtain the target compound. (722 mg; 71% yield).

Test Example 1 Effect 1 of acylation reaction activator and phenoxyacetic acid derivative scavenger used in the capping step 1

A commercially available CPG solid phase carrier (333 mg, 15 μmol) supporting 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) thymidine was placed in a column with a glass filter, and an automatic nucleic acid synthesizer (Expedite : Applied Biosystems). Is used to generate oligonucleic acid (adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl [3 ′ → 5 ′]-guanyl Anilyl- [3 ′ → 5 ′]-thymidine) was synthesized.
As a nucleic acid monomer compound, N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N - diisopropylphosphoramidite Oro amidite), N 4 - acetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) cytidine 3'-O- (2- cyanoethyl N , N-diisopropyl phosphoramidite), 5'-O- (4,4'-dimethoxytrityl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 3'-O- (2-cyanoethyl N, N- diisopropylphosphoramidite Oro amidite), N 4 - phenoxyacetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) guanosine 3'-O- (2 Cyanoethyl N, N-diisopropyl phosphoramidite), benzyl mercaptotetrazole as a condensation catalyst, iodine solution as an oxidizing agent, and four types of reagents listed in Table 1 below as reagents used in the capping step, The monomer compound was condensed 20 times.

Figure 2007097446
For each oligonucleic acid produced under the above conditions, using ammonia water: ethanol = 3: 1 as a cleaving agent, cleaving from the CPG solid phase carrier at 40 ° C. for 4 hours, and each phosphate site and base site The elimination reaction of the protecting group was performed. After each reaction mixture was filtered, the filtrate was concentrated under reduced pressure, and then reacted at room temperature for 3 hours using 1MTBAF in THF containing 1% nitromethane to remove the 2'-position hydroxyl protecting group. It was. A part of the oligonucleic acid produced under the above conditions was taken out unpurified and subjected to HPLC analysis.

FIG. 1 shows an unpurified oligonucleic acid produced using the reagent 1 above, FIG. 2 shows an unpurified oligonucleic acid produced using the reagent 2 above, and FIG. 3 shows the reagent 3 above. FIG. 4 shows the results of HPLC analysis of the unpurified oligonucleic acid manufactured using the above reagent 4 under the following measurement conditions.

Measurement condition:
HPLC equipment
Liquid feeding unit: LC-10AT VP (manufactured by Shimadzu Corporation)
Detector: SPD-10AVP (manufactured by Shimadzu Corporation)
Anion exchange HPLC column DNAPac PA-100 <4 mmφ x 250 mm> (manufactured by DIONEX)
Column temperature: 50 ° C
Mobile phase Gradient: Linear gradient 20 minutes (Liquid B: 5-25%)
Solution A: 25 mM Tris-HCl buffer containing 10% acetonitrile Solution B: 25 mM Tris-HCl buffer containing 10% acetonitrile, 700 mM sodium perchlorate Mobile phase flow rate: 1 ml / min UV-visible spectrometer Detection wavelength: 260 nm

Next, each reaction solution was dropped into ethanol to form a precipitate, and then the mother liquor and the precipitate were centrifuged. The mother liquor was removed by decantation, and the precipitate was purified with an elution solvent (10 mM phosphate buffer containing 1.0 M sodium chloride aqueous solution) after removing unnecessary peaks with an anion exchange column (DEAE). The target compound was obtained after dialysis treatment of the solution. Nuclease P1 (0.5 units) is added to 200 μl of a sample diluted to about 20 OD / ml with sterilized water, reacted at 37 ° C. for 48 hours, then alkaline phosphatase (5 units) and buffer (1 mM MgCl 2). 2 , 50 mM Tris-HCl buffer (pH 9.3) containing 0.1 mM ZnCl 2 and 1 mM spermidine was reacted at 37 ° C. for 24 hours for enzymatic degradation. Each of them was subjected to HPLC analysis under the following measurement conditions (see FIGS. 5, 6 and 7).

FIG. 5 shows an enzymatic degradation product of an oligonucleic acid produced using the reagent 2 above, FIG. 6 shows an enzymatic degradation product of an oligonucleic acid produced using the reagent 3 above, and FIG. It is the result of having performed the HPLC analysis on the following measuring conditions about the enzymatic degradation product of the manufactured oligonucleic acid manufactured using said 4 reagent, respectively.

Measurement condition:
HPLC equipment
Liquid feeding unit: LC-10AS (manufactured by Shimadzu Corporation)
Detector: SPD-6AV (manufactured by Shimadzu Corporation)
Reversed phase HPLC column Develosil ODS-UG-5 reverse-phase column <4.6 mmφ x 250 mm> (manufactured by Nomura Chemical Co., Ltd.)
Column temperature: 40 ° C
Mobile phase Gradient: Isocratic 20 min 50 mM Potassium dihydrogen phosphate aqueous solution (pH 3.0): Methanol = 20: 1
Mobile phase flow rate: 1 ml / min UV-visible spectrometer detection wavelength: 260 nm

From the results of FIGS. 1 to 4, it is clear that when 2-DMAP is used as an activator for promoting the acylation reaction, the capping efficiency is better than when NMI or 4-DMAP is used. It is. It was also confirmed that capping efficiency was better when 2,6-lutidine was used than when pyridine was used as a scavenger for the phenoxyacetic acid derivative.

From the results of FIGS. 5 to 7, when NMI or 4-DMAP is used as an activator for the acylation reaction, a small amount of guanosine-derived 2,6 can be seen at a retention time of about 8.5 minutes. -Formation of diaminopurine was confirmed. On the other hand, when 2-DMAP is used as an activator for the acylation reaction, the production of 2,6-diaminopurine is significantly reduced, and further, by changing the base from pyridine to 2,6-lutidine, The production of 2,6-diaminopurine could not be confirmed.

Test Example 2 Effect 2 of the acylation reaction activator and the phenoxyacetic acid derivative scavenger used in the capping step 2

A commercially available CPG solid phase carrier (333 mg, 15 μmol) supporting 5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) thymidine was placed in a column with a glass filter, and an automatic nucleic acid synthesizer (Expedite : Applied Biosystems). Is used to generate oligonucleic acid (cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-guanylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-Uridylyl- [3 ′ → 5 ′]-Cytidylyl- [3 ′ → 5 ′]-g Anilyl- [3 ′ → 5 ′]-adenylyl- [3 ′ → 5 ′]-thymidyl- [3 ′ → 5 ′]-thymidine) was synthesized.
As a nucleic acid monomer compound, N 4 -acetyl-5′-O- (4,4′-dimethoxytrityl) -2′-O- (2-cyanoethoxymethyl) adenosine 3′-O- (2-cyanoethyl N, N - diisopropylphosphoramidite Oro amidite), N 4 - acetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) cytidine 3'-O- (2- cyanoethyl N , N-diisopropyl phosphoramidite), 5'-O- (4,4'-dimethoxytrityl) -2'-O- (2-cyanoethoxymethyl) uridine 3'-O- (2-cyanoethyl N, N- diisopropylphosphoramidite Oro amidite), N 4 - phenoxyacetyl -5'-O- (4,4'- dimethoxytrityl) -2'-O- (2- cyano ethoxymethyl) guanosine 3'-O- (2 Cyanoethyl N, N-diisopropyl phosphoramidite), benzyl mercaptotetrazole as a condensation catalyst, iodine solution as an oxidizing agent, and three types of reagents listed in Table 2 below as reagents used in the capping step, The compound was condensed 20 times.

For each oligo RNA produced under the above conditions, using ammonia water: ethanol = 3: 1 as a cleaving agent, cleaving from a CPG solid phase carrier at 40 ° C. for 4 hours and protecting each phosphate site and base site A group elimination reaction was performed. After each reaction mixture was filtered, the filtrate was concentrated under reduced pressure, and then reacted at room temperature for 3 hours using 1M TBAF THF solution containing 1% of nitromethane to remove the protecting group at the 2′-position hydroxyl group. It was. Next, each reaction solution was dropped into ethanol to form a precipitate, and then the mother liquor and the precipitate were centrifuged. The mother liquor was removed by decantation, and the precipitate was purified by using an elution solvent (10 mM phosphate buffer containing 1.0 M sodium chloride aqueous solution) after removing unnecessary peaks with an anion exchange column (DEAE). The target compound was obtained after dialysis treatment of the solution. The yield and yield of oligonucleic acid when each of the above reagents is used are shown below.

Figure 2007097446
It was confirmed by MALDI-TOF-MS that the obtained compound was the target compound. With respect to the calculated value: 6607.06 [M + H] + , the actually measured values were 6607.69 [M + H] + , 6609.97 [M + H] + and 6607.91 [M + H] + , respectively.

From the above, by using 2-DMAP as an activator for acylation reaction and 2,6-lutidine as a phenoxyacetic acid derivative scavenger in the capping step, the isolation yield of oligonucleic acid is remarkably improved. It became clear.

本発明のキャッピング工程によれば、オリゴ核酸誘導体(2)に対して、十分満足できる効率でリボース5’位水酸基がアシル基で保護されたオリゴ核酸誘導体(12)を製造することができる。
また、本発明のキャッピング工程によれば、アシル化反応の活性化剤として4−DMAPを使用する場合のように、副生成物である2,6−DAPを生じない。
以上のとおり、本発明のキャッピング工程によれば、高純度でかつ簡便なオリゴ核酸の製造が可能である。
According to the capping step of the present invention, the oligonucleic acid derivative (12) in which the ribose 5′-hydroxyl group is protected with an acyl group can be produced with sufficient efficiency with respect to the oligonucleic acid derivative (2).
In addition, according to the capping step of the present invention, 2,6-DAP which is a by-product is not generated as in the case where 4-DMAP is used as an activator for the acylation reaction.
As described above, according to the capping step of the present invention, a highly pure and simple oligonucleic acid can be produced.

図1は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 1 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity. 図2は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 2 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity. 図3は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 3 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity. 図4は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 4 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity. 図1は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 1 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity. 図2は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 2 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity. 図3は、HPLC分析により得られたクロマトグラムを表す。図中、縦軸は、時間(分)を示し、横軸は、吸収強度を示す。FIG. 3 represents a chromatogram obtained by HPLC analysis. In the figure, the vertical axis represents time (minutes) and the horizontal axis represents absorption intensity.

Claims (17)

次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体のリボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることを特徴とする、次の一般式(12)で表されるオリゴ核酸誘導体の製造方法。
Figure 2007097446
式(2)、(11a)、(11b)、(11c)及び(12)中、各Bxは、それぞれ独立して、保護基を有していてもよい核酸塩基又はその修飾体を表す。nは、1〜200の範囲内にある整数を表す。各Qは、それぞれ独立して、O又はSを表す。各WGは、電子吸引性基を表す。R51、R52、R53は、それぞれ同一又は異なって、H、アルキル又はハロゲンを表す。R6a、R6b、R7a、R7b、R7c、R7dは、それぞれ同一又は異なって、アルキルを表す。R6c、R6dは、それぞれ同一又は異なって、H又はアルキルを表す。
各Rは、それぞれ独立して、H、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ又は次の一般式(3)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(3)中、WGは、電子吸引性基を表す。
Eは、アシル又は次の一般式(4)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(4)中、Eは、単結合又は次の一般式(5)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(5)中、Q、WGは、前記と同義である。
Tは、H、アシルオキシ、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ、上記一般式(3)で表される置換基又は上記一般式(4)で表される置換基を表す。但し、E又はTのどちらか一方は、置換基(4)である。
In the capping step of protecting the 5′-position hydroxyl group of ribose of the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2) with an acyl group, an anhydrous phenoxyacetic acid derivative represented by the following general formula (11a) is used as an acylating agent. An oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (12), wherein a pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c) is used as an activator for an acylation reaction Manufacturing method.
Figure 2007097446
In the formulas (2), (11a), (11b), (11c) and (12), each Bx independently represents a nucleobase which may have a protecting group or a modified form thereof. n represents an integer in the range of 1 to 200. Each Q independently represents O or S. Each WG 2 represents an electron withdrawing group. R 51 , R 52 and R 53 are the same or different and each represents H, alkyl or halogen. R 6a , R 6b , R 7a , R 7b , R 7c , and R 7d are the same or different and each represents alkyl. R 6c and R 6d are the same or different and each represents H or alkyl.
Each R 4 is independently H, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, It represents a substituent represented by alkoxyalkyloxy or the following general formula (3).
Figure 2007097446
In formula (3), WG 1 represents an electron-withdrawing group.
E represents acyl or a substituent represented by the following general formula (4).
Figure 2007097446
In formula (4), E 1 represents a single bond or a substituent represented by the following general formula (5).
Figure 2007097446
In formula (5), Q and WG 2 are as defined above.
T is H, acyloxy, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, alkoxyalkyloxy, the above The substituent represented by the general formula (3) or the substituent represented by the general formula (4) is represented. However, either E or T is a substituent (4).
ピリジン誘導体(11b)が2−ジメチルアミノピリジンである、請求項1に記載のオリゴ核酸誘導体の製造方法。 The method for producing an oligonucleic acid derivative according to claim 1, wherein the pyridine derivative (11b) is 2-dimethylaminopyridine. フェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)がフェノキシ酢酸無水物である、請求項1に記載のオリゴ核酸誘導体の製造方法。 The method for producing an oligonucleic acid derivative according to claim 1, wherein the phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a) is phenoxyacetic acid anhydride. WGがシアノである、請求項1に記載のオリゴ核酸誘導体の製造方法。WG 1 is cyano, the production method of the oligo nucleic acid derivative according to claim 1. さらに、ピリジン又は2,6−ルチジンを用いることを特徴とする、請求項1〜4のいずれかに記載のオリゴ核酸誘導体の製造方法。 Furthermore, pyridine or 2, 6- lutidine is used, The manufacturing method of the oligonucleic acid derivative in any one of Claims 1-4 characterized by the above-mentioned. 下記工程を含む、次の一般式(A)で表されるオリゴ核酸の製造方法。
Figure 2007097446
式(A)中、各Bは、それぞれ独立して、核酸塩基又はその修飾体を表す。nは、1〜200の範囲内にある整数を表す。各Qは、それぞれ独立して、O又はSを表す。各Rは、それぞれ独立して、H、水酸基、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ又はアルコキシアルキルオキシを表す。Zは、H、リン酸基又はチオリン酸基を表す。
工程:
次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体のリボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることを特徴とする、次の一般式(12)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程。
Figure 2007097446
式(2)、(11a)、(11b)、(11c)及び(12)中、各Qは、それぞれ独立して、前記と同義である。nは前記と同義である。各Bxは、それぞれ独立して、保護基を有していてもよい核酸塩基又はその修飾体を表す。各WGは、電子吸引性基を表す。R51、R52、R53は、それぞれ同一又は異なって、H、アルキル又はハロゲンを表す。R6a、R6b、R7a、R7b、R7c、R7dは、それぞれ同一又は異なって、アルキルを表す。R6c、R6dは、それぞれ同一又は異なって、H又はアルキルを表す。
各Rは、それぞれ独立して、H、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ又は次の一般式(3)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(3)中、WGは、電子吸引性基を表す。

Eは、アシル又は次の一般式(4)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(4)中、Eは、単結合又は次の一般式(5)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(5)中、Q、WGは、前記と同義である。

Tは、H、アシルオキシ、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ、上記一般式(3)で表される置換基又は上記一般式(4)で表される置換基を表す。但し、E又はTのどちらか一方は、置換基(4)である。
The manufacturing method of the oligonucleic acid represented by the following general formula (A) including the following process.
Figure 2007097446
In the formula (A), each B independently represents a nucleobase or a modified form thereof. n represents an integer in the range of 1 to 200. Each Q independently represents O or S. Each R is independently H, hydroxyl group, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino Or represents alkoxyalkyloxy. Z represents H, a phosphate group, or a thiophosphate group.
Process:
In the capping step of protecting the 5′-position hydroxyl group of ribose of the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2) with an acyl group, an anhydrous phenoxyacetic acid derivative represented by the following general formula (11a) is used as an acylating agent. An oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (12), wherein a pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c) is used as an activator for an acylation reaction Manufacturing process.
Figure 2007097446
In formulas (2), (11a), (11b), (11c) and (12), each Q is independently the same as defined above. n is as defined above. Each Bx independently represents a nucleobase which may have a protecting group or a modified form thereof. Each WG 2 represents an electron withdrawing group. R 51 , R 52 and R 53 are the same or different and each represents H, alkyl or halogen. R 6a , R 6b , R 7a , R 7b , R 7c , and R 7d are the same or different and each represents alkyl. R 6c and R 6d are the same or different and each represents H or alkyl.
Each R 4 is independently H, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, It represents a substituent represented by alkoxyalkyloxy or the following general formula (3).
Figure 2007097446
In formula (3), WG 1 represents an electron-withdrawing group.

E represents acyl or a substituent represented by the following general formula (4).
Figure 2007097446
In formula (4), E 1 represents a single bond or a substituent represented by the following general formula (5).
Figure 2007097446
In formula (5), Q and WG 2 are as defined above.

T is H, acyloxy, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, alkoxyalkyloxy, the above The substituent represented by the general formula (3) or the substituent represented by the general formula (4) is represented. However, either E or T is a substituent (4).
ピリジン誘導体(11b)が2−ジメチルアミノピリジンである、請求項6に記載のオリゴ核酸の製造方法。 The method for producing an oligonucleic acid according to claim 6, wherein the pyridine derivative (11b) is 2-dimethylaminopyridine. フェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)がフェノキシ酢酸無水物である、請求項6に記載のオリゴ核酸の製造方法。 The method for producing an oligonucleic acid according to claim 6, wherein the phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a) is phenoxyacetic acid anhydride. WGがシアノである、請求項6に記載のオリゴ核酸の製造方法。WG 1 is cyano, the production method of the oligo nucleic acid according to claim 6. さらに、ピリジン又は2,6−ルチジンを用いることを特徴とする、請求項6〜9のいずれかに記載のオリゴ核酸の製造方法。 Furthermore, pyridine or 2, 6- lutidine is used, The manufacturing method of the oligonucleic acid in any one of Claims 6-9 characterized by the above-mentioned. 下記工程A〜Hを含む、次の一般式(A)で表されるオリゴ核酸の製造方法。
Figure 2007097446
式(A)中、各Bは、それぞれ独立して、核酸塩基又はその修飾体を表す。nは、1〜200の範囲内にある整数を表す。各Qは、それぞれ独立して、O又はSを表す。各Rは、それぞれ独立して、H、水酸基、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ又はアルコキシアルキルオキシを表す。Zは、H、リン酸基又はチオリン酸基を表す。
工程A:
次の一般式(1)で表されるオリゴ核酸誘導体に酸を作用させることによって、5’位の水酸基の保護基を脱離して、次の一般式(2)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程、
Figure 2007097446
式(1)及び(2)中、各Qは、それぞれ独立して、前記と同義である。nは前記と同義である。各Bxは、それぞれ独立して、保護基を有していてもよい核酸塩基又はその修飾体を表す。Rは、次の一般式(10)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(10)中、R11、R12、R13は、同一又は異なって、水素又はアルコキシを表す。
各WGは、電子吸引性基を表す。各Rは、それぞれ独立して、H、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ又は次の一般式(3)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(3)中、WGは、電子吸引性基を表す。
Eは、アシル又は次の一般式(4)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(4)中、Eは、単結合又は次の一般式(5)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(5)中、Q、WGは、前記と同義である。
Tは、H、アシルオキシ、ハロゲン、アルコキシ、アルキルチオ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルケニルオキシ、アルケニルチオ、アルケニルアミノ、ジアルケニルアミノ、アルキニルオキシ、アルキニルチオ、アルキニルアミノ、ジアルキニルアミノ、アルコキシアルキルオキシ、上記一般式(3)で表される置換基又は上記一般式(4)で表される置換基を表す。但し、E又はTのどちらか一方は、置換基(4)である。
工程B:
工程Aにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(2)に、活性化剤を用いて核酸モノマー化合物を縮合させ、次の一般式(9)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程、
Figure 2007097446
式(2)及び(9)中、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R、Tは、前記と同義である。
工程C:
工程Bにおいて未反応であるオリゴ核酸誘導体(2)のリボースの5’位水酸基をアシル基で保護するキャッピング工程において、アシル化剤として次の一般式(11a)で表されるフェノキシ酢酸誘導体無水物を、アシル化反応の活性化剤として次の一般式(11b)又は(11c)で表されるピリジン誘導体を用いることを特徴とする、次の一般式(12)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程、
Figure 2007097446
式(2)、(11a)、(11b)、(11c)及び(12)中、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、Tは、前記と同義である。R51、R52、R53は、それぞれ同一又は異なって、H、アルキル又はハロゲンを表す。R6a、R6b、R7a、R7b、R7c、R7dは、それぞれ同一又は異なって、アルキルを表す。R6c、R6dは、それぞれ同一又は異なって、H又はアルキルを表す。
工程D:
工程Bにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(9)に酸化剤を作用させることによって亜リン酸基をリン酸基又はチオリン酸基に変換する工程、
Figure 2007097446
式(9)及び(13)中、各B、各Q、各R、各WGは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R、Tは、前記と同義である。
工程E:
工程Dにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(13)を固相担体から切り出し、各核酸塩基部及び各リン酸基の保護基を脱離する工程、
Figure 2007097446
式(13)及び(14)中、各B、各B、各Q、各R、各WG、Zは、それぞれ独立して、前記と同義である。E、n、R、R、T、Zは、前記と同義である。
工程F:
工程Eにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(14)に、各リボースの2’位水酸基の保護基を脱離するための試薬を作用させることによって、次の一般式(15)で表されるオリゴ核酸誘導体を製造する工程、
Figure 2007097446
式(14)及び(15)中、各B、各Q、各R、各Rは、それぞれ独立して、前記と同義である。n、R、Zは、前記と同義である。
工程G:
工程Fにおいて製造されるオリゴ核酸誘導体(15)の5’位の水酸基を脱離する工程、
Figure 2007097446
式(15)及び(A)中、各B、各Q、各Rは、それぞれ独立して、前記と同義である。n、R、Zは、前記と同義である。工程H:
工程Gにおいて製造されるオリゴ核酸(A)を分離精製する工程。
The manufacturing method of the oligonucleic acid represented by the following general formula (A) including the following process AH.
Figure 2007097446
In the formula (A), each B independently represents a nucleobase or a modified form thereof. n represents an integer in the range of 1 to 200. Each Q independently represents O or S. Each R is independently H, hydroxyl group, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino Or represents alkoxyalkyloxy. Z represents H, a phosphate group, or a thiophosphate group.
Process A:
By reacting the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (1) with an acid, the 5′-position hydroxyl protecting group is eliminated, and the oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (2) is obtained. Manufacturing process,
Figure 2007097446
In formulas (1) and (2), each Q is independently the same as defined above. n is as defined above. Each Bx independently represents a nucleobase which may have a protecting group or a modified form thereof. R 1 represents a substituent represented by the following general formula (10).
Figure 2007097446
In formula (10), R 11 , R 12 and R 13 are the same or different and each represents hydrogen or alkoxy.
Each WG 2 represents an electron withdrawing group. Each R 4 is independently H, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, It represents a substituent represented by alkoxyalkyloxy or the following general formula (3).
Figure 2007097446
In formula (3), WG 1 represents an electron-withdrawing group.
E represents acyl or a substituent represented by the following general formula (4).
Figure 2007097446
In formula (4), E 1 represents a single bond or a substituent represented by the following general formula (5).
Figure 2007097446
In formula (5), Q and WG 2 are as defined above.
T is H, acyloxy, halogen, alkoxy, alkylthio, alkylamino, dialkylamino, alkenyloxy, alkenylthio, alkenylamino, dialkenylamino, alkynyloxy, alkynylthio, alkynylamino, dialkynylamino, alkoxyalkyloxy, the above The substituent represented by the general formula (3) or the substituent represented by the general formula (4) is represented. However, either E or T is a substituent (4).
Process B:
A step of condensing a nucleic acid monomer compound with an activating agent to the oligonucleic acid derivative (2) produced in step A to produce an oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (9);
Figure 2007097446
In formulas (2) and (9), each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R 1 and T are as defined above.
Process C:
An phenoxyacetic acid derivative anhydride represented by the following general formula (11a) as an acylating agent in the capping step of protecting the 5′-position hydroxyl group of ribose of the oligonucleic acid derivative (2) unreacted in step B with an acyl group An oligonucleic acid derivative represented by the following general formula (12), wherein a pyridine derivative represented by the following general formula (11b) or (11c) is used as an activator for the acylation reaction: Manufacturing process,
Figure 2007097446
In the formulas (2), (11a), (11b), (11c), and (12), each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, and T are as defined above. R 51 , R 52 and R 53 are the same or different and each represents H, alkyl or halogen. R 6a , R 6b , R 7a , R 7b , R 7c , and R 7d are the same or different and each represents alkyl. R 6c and R 6d are the same or different and each represents H or alkyl.
Process D:
A step of converting a phosphite group into a phosphate group or a thiophosphate group by allowing an oxidant to act on the oligonucleic acid derivative (9) produced in the step B,
Figure 2007097446
In formulas (9) and (13), each B X , each Q, each R 4 , and each WG 2 are independently the same as described above. E, n, R 1 and T are as defined above.
Process E:
Cleaving the oligonucleic acid derivative (13) produced in the step D from the solid phase carrier, and removing the protecting group of each nucleobase and each phosphate group,
Figure 2007097446
In formulas (13) and (14), each B, each B X , each Q, each R 4 , each WG 2 , and Z are independently the same as described above. E, n, R, R 1 , T, and Z are as defined above.
Process F:
An oligonucleic acid represented by the following general formula (15) is allowed to act on the oligonucleic acid derivative (14) produced in step E by acting a reagent for removing the protecting group for the 2′-position hydroxyl group of each ribose. Producing a derivative;
Figure 2007097446
In formulas (14) and (15), each B, each Q, each R, and each R 4 are independently the same as defined above. n, R 1 and Z are as defined above.
Process G:
Removing the 5′-position hydroxyl group of the oligonucleic acid derivative (15) produced in step F,
Figure 2007097446
In formulas (15) and (A), each B, each Q, and each R are independently the same as defined above. n, R 1 and Z are as defined above. Process H:
A step of separating and purifying the oligonucleic acid (A) produced in the step G.
工程Bにおいて、少なくとも1つは、核酸モノマー化合物として次の一般式(B)で表される化合物を用いることを特徴とする、請求項11に記載のオリゴ核酸の製法。
Figure 2007097446
式(B)中、Bzは、保護基を有していてもよい核酸塩基又はその修飾体を表す。
は、次の一般式(10)で表される置換基を表す。
Figure 2007097446
式(10)中、R11、R12、R13は、同一又は異なって、水素又はアルコキシを表す。
2a、R2bは、同一若しくは異なって、アルキルを表すか、又は、R2a、R2bが隣接する窒素原子と一緒になって形成する、5〜6員の飽和アミノ環基を表す。かかる飽和アミノ環基は、窒素原子の他に環構成原子として酸素原子又は硫黄原子を1個有していてもよい。WG、WGは、同一又は異なって、電子吸引性基を表す。
In the process B, at least one uses the compound represented by the following general formula (B) as a nucleic acid monomer compound, The manufacturing method of the oligonucleic acid of Claim 11 characterized by the above-mentioned.
Figure 2007097446
In formula (B), Bz represents a nucleobase which may have a protecting group or a modified form thereof.
R 1 represents a substituent represented by the following general formula (10).
Figure 2007097446
In formula (10), R 11 , R 12 and R 13 are the same or different and each represents hydrogen or alkoxy.
R 2a and R 2b are the same or different and each represents alkyl, or represents a 5- to 6-membered saturated amino ring group formed by R 2a and R 2b together with the adjacent nitrogen atom. Such a saturated amino ring group may have one oxygen atom or sulfur atom as a ring constituent atom in addition to the nitrogen atom. WG 1 and WG 2 are the same or different and represent an electron-withdrawing group.
工程A〜Dを繰り返すことにより所望の鎖長のオリゴ核酸を製造する、請求項11又は12のいずれかに記載のオリゴ核酸の製法。 The method for producing an oligonucleic acid according to any one of claims 11 and 12, wherein an oligonucleic acid having a desired chain length is produced by repeating steps A to D. ピリジン誘導体(11b)が2−ジメチルアミノピリジンである、請求項11〜13のいずれかに記載のオリゴ核酸の製造方法。 The method for producing an oligonucleic acid according to any one of claims 11 to 13, wherein the pyridine derivative (11b) is 2-dimethylaminopyridine. フェノキシ酢酸誘導体無水物(11a)がフェノキシ酢酸無水物である、請求項11〜13のいずれかに記載のオリゴ核酸の製造方法。 The method for producing an oligonucleic acid according to any one of claims 11 to 13, wherein the phenoxyacetic acid derivative anhydride (11a) is phenoxyacetic acid anhydride. WGがシアノである、請求項11〜13のいずれかに記載のオリゴ核酸の製造方法。WG 1 is cyano, the production method of the oligo nucleic acid according to any of claims 11 to 13. さらに、ピリジン又は2,6−ルチジンを用いることを特徴とする、請求項11〜16のいずれかに記載のオリゴ核酸の製造方法。 Furthermore, pyridine or 2, 6- lutidine is used, The manufacturing method of the oligonucleic acid in any one of Claims 11-16 characterized by the above-mentioned.
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