JPWO2005106485A1 - 肝癌治療後の再発予測判定薬 - Google Patents

Abstract

肝癌治療後の再発予測方法の提供。抗ＧＰＣ３抗体を用いて被検試料中のＧＰＣ３を測定することを特徴とする肝癌治療後の再発予測方法。

Description

本発明は、肝癌治療後の再発を予測する方法および当該予測判定薬に関する。

原発性肝細胞癌（以下、肝癌という）の多くが、慢性肝炎から肝硬変に進行した後に生じる。ウイルス肝炎および肝硬変患者が多く認知される一方、肝癌の発生も近年増加傾向である。さらに、治療手段として肝切除、経皮的局所療法（ラジオ波焼灼療法・エタノール注入療法など）、肝動脈塞栓療法（ＴＡＥ）、持続動注化学療法、放射線療法等が行われている。

肝癌治療においては癌の分布、大きさに加え、背景の肝障害（肝炎や肝硬変）に応じて治療法が選択される。一方で、根治性の高い治療を行ったにも関わらず、治療後の肝内異所性再発率は年率１−３割と高く、治療後再発が担癌患者の予後を悪化させている。一方で高い異所性再発率をふまえて肝癌治療後の患者は頻回の画像診断、腫瘍マーカー検査によるフォローアップが行われている。

従来、肝癌の診断に用いる腫瘍マーカーとしては、αフェトプロテイン（ＡＦＰ）、αフェトプロテインレクチン分画（Ｌ３分画）、ＰＩＶＫＡ−ＩＩなどが用いられている。これらの腫瘍マーカーは、ウイルス肝炎、肝硬変などの高リスク患者における肝癌の診断、治療効果判定、治療後再発の診断にある程度有用であるが、偽陽性・偽陰性が多く、臨床においては他の画像診断（腹部超音波検査、ＣＴスキャン）などと組み合わせたり、時系列を追うことによって診断を行っているのが現状である。そのため治療後早期に背景肝組織の再発リスクを評価する腫瘍マーカーが存在すれば、再発の早期発見が可能となり、より根治的で背景肝障害を悪化させない治療が可能になること、再発リスクの低い患者で頻回の検査の負担を軽減させることなどのメリットが享受できることから、肝癌治療後の再発予測に有用な診断マーカーが求められている。

細胞表面上に存在するヘパラン硫酸プロテオグリカンの新しいファミリーとしてグリピカンファミリーの存在が報告されている。現在までのところ、グリピカンファミリーのメンバーとして、６種類のグリピカン（グリピカン１、グリピカン２、グリピカン３、グリピカン４、グリピカン５およびグリピカン６）が存在することが報告されている。このファミリーのメンバーは、均一なサイズ（約６０ｋＤａ）のコアタンパク質を持ち、特異的でよく保持されたシステインの配列を共有しており、グリコシルフォスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカーにより細胞膜に結合している。

グリピカン３（ＧＰＣ３）は、発生における細胞分裂やそのパターンの制御に深く関わっていることが知られている。又、ＧＰＣ３遺伝子が肝癌細胞において高発現しており、ＧＰＣ３遺伝子が肝細胞癌マーカーとして利用できる可能性があることが知られている。さらに、ＧＰＣ３を測定することによる癌を診断する方法として、既に特許文献１および特許文献２が知られている。しかし、ＧＰＣ３が肝癌治療後にどのように変化するか、さらには、その変化を解析することにより、治療方針がたてられるとは全く知られていなかった。
国際公開第０３／１００４２９号パンフレット 国際公開第２００４／０１８６６７号パンフレット

従って、本発明の目的は、従来予測が困難であった、肝癌治療後の再発予測手段を提供するものである。

本発明者らは、肝癌治療前後の患者体液中のＧＰＣ３濃度を測定し、再発との関係を長期間に渡って追跡調査した結果、通常の腫瘍マーカーであるＡＦＰ、ＡＦＰ−Ｌ３分画およびＰＩＶＫＡ−ＩＩでは再発との十分な相関関係は認められなかったにもかかわらず、血中ＧＰＣ３は再発予測因子として有用であることを見出し、本発明を完成した。

すなわち、本発明は、抗ＧＰＣ３抗体を含有する肝癌治療後の再発予測判定薬を提供するものである。
また、本発明は、抗ＧＰＣ３抗体を用いて被検試料中のＧＰＣ３を測定することを特徴とする肝癌治療後の再発予測方法を提供するものである。

本発明によれば、従来の腫瘍マーカーでは予測が困難であった肝癌治療後の再発予測が可能となり、新たな治療計画の策定が可能となる。

術前（Ａ）、術後１〜２週間後（早期）（Ｂ）、および術後２週間〜２ヶ月後（中期）（Ｃ）のＧＰＣ３値が１ｎｇ／ｍＬ以上の患者と１ｎｇ／ｍＬ未満の患者における無再発生存率を示す図である。右下の数値はＬｏｇ−ｒａｎｋ ｔｅｓｔの結果を示す。

以下、本発明について詳細に説明する。
本発明は、抗ＧＰＣ３抗体を用いて被検試料中のＧＰＣ３を測定することにより肝癌治療後の再発を予測する方法である。

測定とは、定量的又は非定量的な測定を含み、例えば、非定量的な測定としては、単にＧＰＣ３が存在するか否かの測定、ＧＰＣ３が一定の量以上存在するか否かの測定、ＧＰＣ３の量を他の試料（例えば、コントロール試料など）と比較する測定などを挙げることができ、定量的な測定としては、ＧＰＣ３の濃度の測定、ＧＰＣ３の量の測定などを挙げることができる。

被検試料とは、ＧＰＣ３が含まれる可能性のある試料であれば特に制限されないが、哺乳類などの生物の体から採取された試料が好ましく、さらに好ましくはヒトから採取された試料である。被検試料の具体的な例としては、例えば、血液、間質液、血漿、血管外液、脳脊髄液、滑液、胸膜液、血清、リンパ液、唾液、尿などを挙げることができるが、好ましいのは血液、血清、血漿である。又、生物の体から採取された細胞の培養液などの、被検試料から得られる試料も本発明の被検試料に含まれる。

本発明に用いられる被検試料としては、肝癌治療後の患者の血液、血清、血漿が特に好ましい。ここで肝癌治療後の患者としては、肝切除、ラジオ波焼灼療法、エタノール注入療法、肝動脈塞栓術、持続動注化学療法等の治療後の患者が挙げられるが、根治性の高い治療後、すなわち肝切除後あるいはラジオ波焼灼療法、エタノール注入療法後の患者が特に好ましい。

本発明に用いられる抗ＧＰＣ３抗体としては、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体のいずれでもよいが、モノクローナル抗体が特に好ましい。また、抗ＧＰＣ３抗体としては、血液、血清、血漿を被検試料とする点から、分泌型ＧＰＣ３に対する抗体、すなわち抗可溶性ＧＰＣ３抗体が好ましい。さらには、抗可溶性ＧＰＣ３モノクローナル抗体を用いるのが特に好ましい。以下抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体を用いた場合について詳細に説明する。

１．抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体の作製
本発明で用いられる抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体はＧＰＣ３タンパク質に特異的に結合すればよく、その由来および形状を問わない。具体的には、マウス抗体、ラット抗体、ヒト抗体、キメラ抗体、ヒト型化抗体などの公知のモノクローナル抗体を用いることができる。又、支持体に固定される抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体と標識物質で標識される抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体はＧＰＣ３分子の異なるエピトープを認識することが好ましく、部位は特に制限されない。

本発明で使用される抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体は、公知の手段を用いて得ることができる。本発明で使用される抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体は、ハイブリドーマに産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものを含む。

モノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、ＧＰＣ３又は可溶性ＧＰＣ３ならびにその断片ペプチドを感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。

具体的には、モノクローナル抗体を作製するには次のようにすればよい。
まず、抗体取得の感作抗原として使用されるＧＰＣ３は、ＨｕＨ６、ＨｅｐＧ２細胞株等を培養してその上清に含まれる天然のＧＰＣ３を精製して、得ることができる。さらに、Ｌａｇｅ，Ｈ．ｅｔａｌ．，Ｇｅｎｅ １８８（１９９７），１５１−１５６に開示されたＧＰＣ３（ＭＸＲ７）遺伝子／アミノ酸配列を発現することによっても得ることができる。すなわち、ＧＰＣ３をコードする遺伝子配列を公知の発現ベクター系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中又は培養上清中から目的のヒトＧＰＣ３タンパク質を公知の方法で精製する。
次に、この精製ＧＰＣ３を感作抗原として用いるが、ＧＰＣ３の部分ペプチドを感作抗原として使用することもできる。この際、部分ペプチドはヒトＧＰＣ３のアミノ酸配列より化学合成により得ることもできるし、ＧＰＣ遺伝子の一部を発現ベクターに組込んで得ることもでき、さらに天然のＧＰＣ３をタンパク質分解酵素により分解することによっても得ることができる。部分ペプチドとして用いるＧＰＣ３の部分および大きさは限られない。本発明においては、感作抗原として全長ＧＰＣ３を用いるのが好ましい。

感作抗原で免疫される哺乳動物としては、特に限定されるものではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するのが好ましく、一般的にはげっ歯類の動物、例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモットあるいはウサギ、サル、鶏等が使用される。

感作抗原を動物に免疫するには、公知の方法にしたがって行われる。例えば、一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内又は皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原をＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅ）や生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものに所望により通常のアジュバント、例えばフロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に４〜２１日毎に数回投与する。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することもできる。特に分子量の小さい部分ペプチドを感作抗原として用いる場合には、アルブミン、キーホールリンペットヘモシアニン等の担体タンパク質と結合させて免疫することが望ましい。

このように哺乳動物を免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合に付されるが、好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。

前記免疫細胞と融合される他方の親細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、Ｐ３（Ｐ３×６３Ａｇ８．６５３）（Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．（１９７９）１２３，１５４８−１５５０）、Ｐ３ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｔｏｐｉｃｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９７８）８１，１−７）、ＮＳ−１（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９７６）６，５１１−５１９）、ＭＰＣ−１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．Ｄ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ（１９７６）８，４０５−４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７８）２７６，２６９−２７０）、ＦＯ（ｄｅ Ｓｔ．Ｇｒｏｔｈ，Ｓ．Ｆ．ｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８０）３５，１−２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，Ｉ．Ｓ．Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９７８）１４８，３１３−３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１３１−１３３）等が好適に使用される。

前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、基本的には公知の方法、たとえば、ケーラーとミルステインらの方法（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８１）７３，３−４６）等に準じて行うことができる。

より具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウイルス（ＨＶＪ）等が使用され、さらに所望により融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。

免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定することができる。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を１〜１０倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なＲＰＭＩ１６４０培養液、ＭＥＭ培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、さらに、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。

細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液（例えば平均分子量１０００〜６０００程度）を通常３０〜６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することによって目的とする融合細胞（ハイブリドーマ）を形成する。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。

このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日〜数週間）継続する。ついで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよび単一クローニングを行う。

目的とする抗体のスクリーニングおよび単一クローニングは、公知の抗原抗体反応に基づくスクリーニング方法で行えばよい。例えば、ポリスチレン等でできたビーズや市販の９６ウェルのマイクロタイタープレート等の担体に抗原を結合させ、ハイブリドーマの培養上清と反応させ、担体を洗浄した後に酵素標識第２次抗体等を反応させることにより、培養上清中に感作抗原と反応する目的とする抗体が含まれるかどうか決定できる。目的とする抗体を産生するハイブリドーマを限界希釈法等によりクローニングすることができる。この際、抗原としては免疫に用いたものを用いればよい。

また、ヒト以外の動物に抗原を免疫して上記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球をｉｎ ｖｉｔｒｏでＧＰＣ３に感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久分裂能を有するミエローマ細胞と融合させ、ＧＰＣ３への結合活性を有する所望のヒト抗体を得ることもできる（特公平１−５９８７８号公報参照）。さらに、ヒト抗体遺伝子の全てのレパートリーを有するトランスジェニック動物に抗原となるＧＰＣ３を投与して抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体産生細胞を取得し、これを不死化させた細胞からＧＰＣ３に対するヒト抗体を取得してもよい（ＷＯ９４／２５５８５、ＷＯ９３／１２２２７、ＷＯ９２／０３９１８、ＷＯ９４／０２６０２参照）。

このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。

当該ハイブリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法に従い培養し、その培養上清として得る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。

本発明では、モノクローナル抗体として、抗体遺伝子をハイブリドーマからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた組換え型のものを用いることができる（例えば、Ｖａｎｄａｍｍｅ，Ａ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９９０）１９２，７６７−７７５，１９９０参照）。具体的には、抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマから、抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体の可変（Ｖ）領域をコードするｍＲＮＡを単離する。ｍＲＮＡの単離は、公知の方法、例えば、グアニジン超遠心法（Ｃｈｉｒｇｗｉｎ，Ｊ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（１９７９）１８，５２９４−５２９９）、ＡＧＰＣ法（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ，Ｐ．ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９８７）１６２，１５６−１５９）等により行って全ＲＮＡを調製し、ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）等を使用して目的のｍＲＮＡを調製する。また、ＱｕｉｃｋＰｒｅｐ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を用いることによりｍＲＮＡを直接調製することもできる。

得られたｍＲＮＡから逆転写酵素を用いて抗体Ｖ領域のｃＤＮＡを合成する。ｃＤＮＡの合成は、ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ Ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ（生化学工業社製）等を用いて行う。また、ｃＤＮＡの合成および増幅を行うには、５’−Ａｍｐｌｉ ＦＩＮＤＥＲ ＲＡＣＥ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）およびＰＣＲを用いた５’−ＲＡＣＥ法（Ｆｒｏｈｍａｎ，Ｍ．Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８８）８５，８９９８−９００２、Ｂｅｌｙａｖｓｋｙ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９８９）１７，２９１９−２９３２）等を使用することができる。

得られたＰＣＲ産物から目的とするＤＮＡ断片を精製し、ベクターＤＮＡと連結する。さらに、これより組換えベクターを作製し、大腸菌等に導入してコロニーを選択して所望の組換えベクターを調製する。そして、目的とするＤＮＡの塩基配列を公知の方法、例えば、ジデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法等により確認する。

目的とする抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体のＶ領域をコードするＤＮＡを得たのち、これを、所望の抗体定常領域（Ｃ領域）をコードするＤＮＡを含有する発現ベクターへ組み込む。

本発明で使用される抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体を製造するには、抗体遺伝子を発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクターに組み込む。次に、この発現ベクターにより、宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させる。

抗体遺伝子の発現は、抗体重鎖（Ｈ鎖）又は軽鎖（Ｌ鎖）をコードするＤＮＡを別々に発現ベクターに組み込んで宿主細胞を同時形質転換させてもよいし、あるいはＨ鎖およびＬ鎖をコードするＤＮＡを単一の発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転換させてもよい（ＷＯ９４／１１５２３参照）。

また、組換え型抗体の産生には上記宿主細胞だけではなく、トランスジェニック動物を使用することができる。例えば、抗体遺伝子を、乳汁中に固有に産生されるタンパク質（ヤギβカゼインなど）をコードする遺伝子の途中に挿入して融合遺伝子として調製する。抗体遺伝子が挿入された融合遺伝子を含むＤＮＡ断片をヤギの胚へ注入し、この胚を雌のヤギへ導入する。胚を受容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギ又はその子孫が産生する乳汁から所望の抗体を得る。また、トランスジェニックヤギから産生される所望の抗体を含む乳汁量を増加させるために、適宜ホルモンをトランスジェニックヤギに使用してもよい（Ｅｂｅｒｔ，Ｋ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９４）１２，６９９−７０２）。

本発明では、上記抗体のほかに、人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ抗体、ヒト型化（Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ）抗体を使用できる。これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。

キメラ抗体は、前記のようにして得た抗体Ｖ領域をコードするＤＮＡをヒト抗体Ｃ領域をコードするＤＮＡと連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。この既知の方法を用いて、本発明に有用なキメラ抗体を得ることができる。

ヒト型化抗体は、再構成（ｒｅｓｈａｐｅｄ）ヒト抗体とも称され、これは、ヒト以外の哺乳動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ；ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）をヒト抗体の相補性決定領域へ移植したものであり、その一般的な遺伝子組換え手法も知られている（ＥＰ１２５０２３、ＷＯ９６／０２５７６参照）。

具体的には、マウス抗体のＣＤＲとヒト抗体のフレームワーク領域（ｆｒａｍｅｗｏｒｋ ｒｅｇｉｏｎ；ＦＲ）とを連結するように設計したＤＮＡ配列を、ＣＤＲおよびＦＲ両方の末端領域にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いてＰＣＲ法により合成する（ＷＯ９８／１３３８８に記載の方法を参照）。

ＣＤＲを介して連結されるヒト抗体のフレームワーク領域は、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように、抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Ｓａｔｏ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１９９３）５３，８５１−８５６）。

キメラ抗体およびヒト型化抗体のＣ領域には、ヒト抗体のものが使用され、例えばＨ鎖では、Ｃγ１、Ｃγ２、Ｃγ３、Ｃγ４を、Ｌ鎖ではＣκ、Ｃλを使用することができる。また、抗体又はその産生の安定性を改善するために、ヒト抗体Ｃ領域を修飾してもよい。

キメラ抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の可変領域とヒト抗体由来の定常領域とからなる。一方、ヒト型化抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の相補性決定領域と、ヒト抗体由来のフレームワーク領域およびＣ領域とからなる。

本発明で使用される抗体は、抗体の全体分子に限られず、ＧＰＣ３に結合する限り、抗体の断片又はその修飾物であってもよく、二価抗体も一価抗体も含まれる。例えば、抗体の断片としては、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、１個のＦａｂと完全なＦｃを有するＦａｂ／ｃ、又はＨ鎖若しくはＬ鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させたシングルチェインＦｖ（ｓｃＦｖ）が挙げられる。具体的には、抗体を酵素、例えばパパイン、ペプシンで処理し抗体断片を生成させるか、又は、これら抗体断片をコードする遺伝子を構築し、これを発現ベクターに導入した後、適当な宿主細胞で発現させる（例えば、Ｃｏ，Ｍ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９４）１５２，２９６８−２９７６、Ｂｅｔｔｅｒ，Ｍ．＆Ｈｏｒｗｉｔｚ，Ａ．Ｈ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１７８，４７６−４９６，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．、Ｐｌｕｅｃｋｔｈｕｎ，Ａ．＆Ｓｋｅｒｒａ，Ａ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１７８，４７６−４９６，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．、Ｌａｍｏｙｉ，Ｅ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１２１，６５２−６６３、Ｒｏｕｓｓｅａｕｘ，Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１２１，６６３−６６９、Ｂｉｒｄ，Ｒ．Ｅ．ｅｔ ａｌ．，ＴＩＢＴＥＣＨ（１９９１）９，１３２−１３７参照）。

ｓｃＦｖは、抗体のＨ鎖Ｖ領域とＬ鎖Ｖ領域とを連結することにより得られる。このｓｃＦｖにおいて、Ｈ鎖Ｖ領域とＬ鎖Ｖ領域は、リンカー、好ましくはペプチドリンカーを介して連結される（Ｈｕｓｔｏｎ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８８）８５，５８７９−５８８３）。ｓｃＦｖにおけるＨ鎖Ｖ領域およびＬ鎖Ｖ領域は、本明細書に抗体として記載されたもののいずれの由来であってもよい。Ｖ領域を連結するペプチドリンカーとしては、例えばアミノ酸１２〜１９残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。

ｓｃＦｖをコードするＤＮＡは、前記抗体のＨ鎖又はＨ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡ、およびＬ鎖又はＬ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡのうち、それらの配列のうちの全部又は所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ部分を鋳型とし、その両端を規定するプライマー対を用いてＰＣＲ法により増幅し、次いで、さらにペプチドリンカー部分をコードするＤＮＡ、およびその両端が各々Ｈ鎖、Ｌ鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合せて増幅することにより得られる。

また、一旦ｓｃＦｖをコードするＤＮＡが作製されると、それらを含有する発現ベクター、および該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いることにより、常法に従ってｓｃＦｖを得ることができる。

これら抗体の断片は、前記と同様にしてその遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体の断片も包含される。

抗体の修飾物として、標識物質等の各種分子と結合した抗ＧＰＣ３抗体を使用することもできる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体修飾物も包含される。このような抗体修飾物は、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。なお、抗体の修飾方法はこの分野においてすでに確立されている。

さらに、本発明で使用される抗体は、二重特異性抗体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ）であってもよい。二重特異性抗体はＧＰＣ３分子上の異なるエピトープを認識する抗原結合部位を有する二重特異性抗体であってもよいし、一方の抗原結合部位がＧＰＣ３を認識し、他方の抗原結合部位が標識物質等を認識してもよい。二重特異性抗体は２種類の抗体のＨＬ対を結合させて作製することもできるし、異なるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを融合させて二重特異性抗体産生融合細胞を作製し、得ることもできる。さらに、遺伝子工学的手法により二重特異性抗体を作製することも可能である。

前記のように構築した抗体遺伝子は、公知の方法により発現させ、取得することができる。哺乳類細胞の場合、常用される有用なプロモーター、発現させる抗体遺伝子、その３’側下流にポリＡシグナルを機能的に結合させて発現させることができる。例えばプロモーター／エンハンサーとしては、ヒトサイトメガロウイルス前期プロモーター／エンハンサー（ｈｕｍａｎ ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ ｉｍｍｅｄｉａｔｅ ｅａｒｌｙ ｐｒｏｍｏｔｅｒ／ｅｎｈａｎｃｅｒ）を挙げることができる。

また、その他に本発明で使用される抗体発現に使用できるプロモーター／エンハンサーとして、レトロウイルス、ポリオーマウイルス、アデノウイルス、シミアンウイルス４０（ＳＶ４０）等のウイルスプロモーター／エンハンサー、あるいはヒトエロンゲーションファクター１ａ（ＨＥＦ１ａ）などの哺乳類細胞由来のプロモーター／エンハンサー等が挙げられる。

ＳＶ４０プロモーター／エンハンサーを使用する場合はＭｕｌｌｉｇａｎらの方法（Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１０８）により、また、ＨＥＦ１ａプロモーター／エンハンサーを使用する場合はＭｉｚｕｓｈｉｍａらの方法（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９０）１８，５３２２）により、容易に遺伝子発現を行うことができる。

大腸菌の場合、常用される有用なプロモーター、抗体分泌のためのシグナル配列および発現させる抗体遺伝子を機能的に結合させて当該遺伝子を発現させることができる。プロモーターとしては、例えばｌａｃｚプロモーター、ａｒａＢプロモーターを挙げることができる。ｌａｃｚプロモーターを使用する場合はＷａｒｄらの方法（Ｎａｔｕｒｅ（１０９８）３４１，５４４−５４６；ＦＡＳＥＢ Ｊ．（１９９２）６，２４２２−２４２７）により、あるいはａｒａＢプロモーターを使用する場合はＢｅｔｔｅｒらの方法（Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２４０，１０４１−１０４３）により発現することができる。

抗体分泌のためのシグナル配列としては、大腸菌のペリプラズムに産生させる場合、ｐｅｌＢシグナル配列（Ｌｅｉ，Ｓ．Ｐ．ｅｔ ａｌ Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．（１９８７）１６９，４３７９）を使用すればよい。そして、ペリプラズムに産生された抗体を分離した後、抗体の構造を適切に組み直して（ｒｅｆｏｌｄ）使用する。

複製起源としては、ＳＶ４０、ポリオーマウイルス、アデノウイルス、ウシパピローマウイルス（ＢＰＶ）等の由来のものを用いることができ、さらに、宿主細胞系で遺伝子コピー数増幅のため、発現ベクターは、選択マーカーとしてアミノグリコシドトランスフェラーゼ（ＡＰＨ）遺伝子、チミジンキナーゼ（ＴＫ）遺伝子、大腸菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｅｃｏｇｐｔ）遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素（ｄｈｆｒ）遺伝子等を含むことができる。

本発明で使用される抗体の製造のために、任意の発現系、例えば真核細胞又は原核細胞系を使用することができる。真核細胞としては、例えば樹立された哺乳類細胞系、昆虫細胞系、真糸状菌細胞および酵母細胞などの動物細胞等が挙げられ、原核細胞としては、例えば大腸菌細胞等の細菌細胞が挙げられる。

好ましくは、本発明で使用される抗体は、哺乳類細胞、例えばＣＨＯ、ＣＯＳ、ミエローマ、ＢＨＫ、Ｖｅｒｏ、ＨｅＬａ細胞中で発現される。
次に、形質転換された宿主細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏ又はｉｎ ｖｉｖｏで培養して目的とする抗体を産生させる。宿主細胞の培養は公知の方法に従い行う。例えば、培養液として、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、ＲＰＭＩ１６４０、ＩＭＤＭを使用することができ、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。

前記のように発現、産生された抗体は、細胞、宿主動物から分離し均一にまで精製することができる。本発明で使用される抗体の分離、精製はアフィニティーカラムを用いて行うことができる。例えば、プロテインＡカラムを用いたカラムとして、Ｈｙｐｅｒ Ｄ、ＰＯＲＯＳ、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆ．Ｆ．（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）等が挙げられる。その他、通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよく、何ら限定されるものではない。例えば、上記アフィニティーカラム以外のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析等を適宜選択、組み合わせることにより、抗体を分離、精製することができる（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ，Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８）。

本発明に使用される抗体のエピトープは特に限定されないが、全長ＧＰＣ３又はそのペプチド断片を認識すれば良い。より具体的には、ＷＯ０３／１００４９、ＷＯ２００４／０１８６６７、ＰＣＴ／ＪＰ２００２／００８９９０等に記載のハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体が利用できるが、実施例２および３にて作製したモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体を使用するのが特に好ましい。

２．ＧＰＣ３の測定
本発明において測定するＧＰＣ３は、ヘパラン硫酸などが付加されたＧＰＣ３タンパク質でも、ＧＰＣ３コアタンパク質でもよい。
被検試料に含まれるＧＰＣ３の測定は、抗ＧＰＣ３抗体を用いた免疫学的方法により測定される。免疫学的方法としては、例えば、ラジオイムノアッセイ、エンザイムイムノアッセイ、蛍光イムノアッセイ、発光イムノアッセイ、免疫沈降法、免疫比濁法、ウエスタンブロット、免疫染色、免疫拡散法などを挙げることができるが、好ましくはエンザイムイムノアッセイであり、特に好ましいのは酵素結合免疫吸着定量法（ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ：ＥＬＩＳＡ）（例えば、ｓａｎｄｗｉｃｈ ＥＬＩＳＡ）である。ＥＬＩＳＡなどの上述した免疫学的方法は当業者に公知の方法により行うことが可能である。

抗ＧＰＣ３抗体を用いた一般的な測定方法としては、例えば、抗ＧＰＣ３抗体を支持体に固定し、ここに被検試料を加え、インキュベートを行い抗ＧＰＣ３抗体とＧＰＣ３タンパク質を結合させた後に洗浄して、抗ＧＰＣ３抗体を介して支持体に結合したＧＰＣ３タンパク質を測定することにより、被検試料中のＧＰＣ３タンパク質の測定を行う方法を挙げることができる。

本発明において用いられる支持体としては、例えば、アガロース、セルロースなどの不溶性の多糖類、シリコン樹脂、ポリスチレン樹脂、ポリアクリルアミド樹脂、ナイロン樹脂、ポリカーボネイト樹脂などの合成樹脂や、ガラスなどの不溶性の支持体を挙げることができる。これらの支持体は、ビーズやプレートなどの形状で用いることが可能である。ビーズの場合、これらが充填されたカラムなどを用いることができる。プレートの場合、マルチウェルプレート（９６穴マルチウェルプレート等）や、バイオセンサーチップなどを用いることができる。抗ＧＰＣ３抗体と支持体との結合は、化学結合や物理的な吸着などの通常用いられる方法により結合することができる。これらの支持体はすべて市販のものを用いることができる。

抗ＧＰＣ３抗体とＧＰＣ３タンパク質との結合は、通常、緩衝液中で行われる。緩衝液としては、例えば、リン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液、クエン酸緩衝液、ホウ酸塩緩衝液、炭酸塩緩衝液、などが使用される。また、インキュベーションの条件としては、すでによく用いられている条件、例えば、４℃〜室温にて１時間〜２４時間のインキュベーションが行われる。インキュベート後の洗浄は、ＧＰＣ３タンパク質と抗ＧＰＣ３抗体の結合を妨げないものであれば何でもよく、例えば、Ｔｗｅｅｎ２０等の界面活性剤を含む緩衝液などが使用される。

本発明のＧＰＣ３タンパク質測定方法においては、ＧＰＣ３タンパク質を測定したい被検試料の他に、コントロール試料を設置してもよい。コントロール試料としては、ＧＰＣ３タンパク質を含まない陰性コントロール試料やＧＰＣ３タンパク質を含む陽性コントロール試料などがある。この場合、ＧＰＣ３タンパク質を含まない陰性コントロール試料で得られた結果、ＧＰＣ３タンパク質を含む陽性コントロール試料で得られた結果と比較することにより、被検試料中のＧＰＣ３タンパク質を測定することが可能である。また、濃度を段階的に変化させた一連のコントロール試料を調製し、各コントロール試料に対する測定結果を数値として得て、標準曲線を作成し、被検試料の数値から標準曲線に基づいて、被検試料に含まれるＧＰＣ３タンパク質を定量的に測定することも可能である。

抗ＧＰＣ３抗体を介して支持体に結合したＧＰＣ３タンパク質の測定の好ましい態様として、標識物質で標識された抗ＧＰＣ３抗体を用いる方法を挙げることができる。

例えば、支持体に固定された抗ＧＰＣ３抗体に被検試料を接触させ、洗浄後に、ＧＰＣ３タンパク質を特異的に認識する標識抗体を用いて測定する。

抗ＧＰＣ３抗体の標識は通常知られている方法により行うことが可能である。標識物質としては、蛍光色素、酵素、補酵素、化学発光物質、放射性物質などの当業者に公知の標識物質を用いることが可能であり、具体的な例としては、ラジオアイソトープ（^３２Ｐ、^１４Ｃ、^１２５Ｉ、^３Ｈ、^１３１Ｉなど）、フルオレセイン、ローダミン、ダンシルクロリド、ウンベリフェロン、ルシフェラーゼ、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、β−グルコシダーゼ、ホースラディッシュパーオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、リゾチーム、サッカリドオキシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、ビオチンなどを挙げることができる。標識物質としてビオチンを用いる場合には、ビオチン標識抗体を添加後に、アルカリホスファターゼなどの酵素を結合させたアビジンをさらに添加することが好ましい。標識物質と抗ＧＰＣ３抗体との結合には、グルタルアルデヒド法、マレイミド法、ピリジルジスルフィド法、過ヨウ素酸法、などの公知の方法を用いることができる。

具体的には、抗ＧＰＣ３抗体を含む溶液をプレートなどの支持体に加え、抗ＧＰＣ３抗体を支持体に固定する。プレートを洗浄後、タンパク質の非特異的な結合を防ぐため、例えばＢＳＡ、ゼラチン、アルブミンなどでブロッキングする。再び洗浄し、被検試料をプレートに加える。インキュベートの後、洗浄し、標識抗ＧＰＣ３抗体を加える。適度なインキュベーションの後、プレートを洗浄し、プレートに残った標識抗ＧＰＣ３抗体を測定する。測定は当業者に公知の方法により行うことができ、例えば、放射性物質による標識の場合には液体シンチレーションやＲＩＡ法により測定することができる。酵素による標識の場合には基質を加え、基質の酵素的変化、例えば発色を吸光度計により測定することができる。基質の具体的な例としては、２，２−アジノビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸）ジアンモニウム塩（ＡＢＴＳ）、１，２−フェニレンジアミン（オルソ−フェニレンジアミン）、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＥ）などを挙げることができる。蛍光物質の場合には蛍光光度計により測定することができる。

本発明のＧＰＣ３タンパク質測定方法の特に好ましい態様として、ビオチンで標識された抗ＧＰＣ３抗体およびアビジンを用いる方法を挙げることができる。

具体的には、抗ＧＰＣ３抗体を含む溶液をプレートなどの支持体に加え、抗ＧＰＣ３抗体を固定する。プレートを洗浄後、タンパク質の非特異的な結合を防ぐため、例えばＢＳＡなどでブロッキングする。再び洗浄し、被検試料をプレートに加える。インキュベートの後、洗浄し、ビオチン標識抗ＧＰＣ３抗体を加える。適度なインキュベーションの後、プレートを洗浄し、アルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼなどの酵素と結合したアビジンを加える。インキュベーション後、プレートを洗浄し、アビジンに結合している酵素に対応した基質を加え、基質の酵素的変化などを指標にＧＰＣ３タンパク質を測定する。

本発明のＧＰＣ３タンパク質測定方法の他の態様として、ＧＰＣ３タンパク質を特異的に認識する一次抗体を一種類以上、および該一次抗体を特異的に認識する二次抗体を一種類以上用いる方法を挙げることができる。

例えば、支持体に固定された一種類以上の抗ＧＰＣ３抗体に被検試料を接触させ、インキュベーションした後、洗浄し、洗浄後に結合しているＧＰＣ３タンパク質を、一次抗ＧＰＣ３抗体および該一次抗体を特異的に認識する一種類以上の二次抗体により測定する。この場合、二次抗体は好ましくは標識物質により標識されている。

本発明のＧＰＣ３タンパク質の測定方法の他の態様としては、凝集反応を利用した測定方法を挙げることができる。該方法においては、抗ＧＰＣ３抗体を感作した担体を用いてＧＰＣ３を測定することができる。抗体を感作する担体としては、不溶性で、非特異的な反応を起こさず、かつ安定である限り、いかなる担体を使用してもよい。例えば、ラテックス粒子、ベントナイト、コロジオン、カオリン、固定羊赤血球等を使用することができるが、ラテックス粒子を使用するのが好ましい。ラテックス粒子としては、例えば、ポリスチレンラテックス粒子、スチレン−ブタジエン共重合体ラテックス粒子、ポリビニルトルエンラテックス粒子等を使用することができるが、ポリスチレンラテックス粒子を使用するのが好ましい。感作した粒子を試料と混合し、一定時間攪拌する。試料中に抗ＧＰＣ３抗体が高濃度で含まれるほど粒子の凝集度が大きくなるので、凝集を肉眼でみることによりＧＰＣ３を測定することができる。また、凝集による濁度を分光光度計等により測定することによってもＧＰＣ３を測定可能である。

本発明のＧＰＣ３タンパク質の測定方法の他の態様としては、例えば、表面プラズモン共鳴現象を利用したバイオセンサーを用いた方法を挙げることができる。表面プラズモン共鳴現象を利用したバイオセンサーはタンパク質−タンパク質間の相互作用を微量のタンパク質を用いてかつ標識することなく、表面プラズモン共鳴シグナルとしてリアルタイムに観察することが可能である。例えば、ＢＩＡｃｏｒｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）等のバイオセンサーを用いることによりＧＰＣ３タンパク質と抗ＧＰＣ３抗体の結合を測定することが可能である。具体的には、抗ＧＰＣ３抗体を固定化したセンサーチップに、被検試料を接触させ、抗ＧＰＣ３抗体に結合するＧＰＣ３タンパク質を共鳴シグナルの変化として測定することができる。

本発明の測定方法は、種々の自動検査装置を用いて自動化することもでき、一度に大量の試料について検査を行うことも可能である。

本発明は、肝癌治療後の再発予測判定薬の提供を目的とするが、該判定薬は少なくとも抗ＧＰＣ３抗体を含む。該判定薬がＥＬＩＳＡ法に基づく場合は、抗体を固相化する担体を含んでいてもよく、抗体があらかじめ担体に結合していてもよい。該判定薬がラテックス等の担体を用いた凝集法に基づく場合は抗体が吸着した担体を含んでいてもよい。また、該判定薬は、適宜、ブロッキング溶液、反応溶液、反応停止液、試料を処理するための試薬等を含むキットとしてもよい。

肝癌治療後の肝癌再発を予測するには、肝癌治療前、治療後早期（１〜２週間後）又は治療後中期（２週間〜２ヶ月後）のＧＰＣ濃度を測定すればよい。これらの時期の血清中ＧＰＣ３濃度が高ければ高いほど肝癌が再発する。例えば、治療前、治療後早期又は治療後中期の血清ＧＰＣ３濃度が１ｎｇ／ｍＬ以上の場合には、再発する可能性が高く、１ｎｇ／ｍＬ未満の場合には、再発しない可能性が高いと予測できる。

以下、実施例により、本発明を具体的に説明する。但し、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。

実施例１ 可溶性リコンビナントＧＰＣ３の取得
完全長ヒトＧＰＣ３ ｃＤＮＡを含むプラスミドＤＮＡを用い、ｆｌａｇ付加可溶型ＧＰＣ３、すなわちリコンビナントＧＰＣ３ ｃＤＮＡ発現プラスミドＤＮＡを構築した。Ｃ末端側の疎水領域（５６４−５８０アミノ酸）を除くように設計した下流プライマー（５’−ＡＴＡＧＡＡＴＴＣＣＡＣＣＡＴＧＧＣＣＧＧＧＡＣＣＧＴＧＣＧＣ−３’（配列番号１））とＥｃｏＲＩ認識配列、Ｋｏｚａｋ配列を加えた上流プライマー（５’−ＡＴＡＧＧＡＴＣＣＣＴＴＣＡＧＣＧＧＧＧＡＡＴＧＡＡＣＧＴＴＣ−３’（配列番号２））を用いてＰＣＲを行った。得られたＰＣＲ断片（１７１１ｂｐ）をｐＣＸＮＤ２−Ｆｌａｇにクローニングした。作製された発現プラスミドＤＮＡをＣＨＯ細胞ＤＸＢ１１株へ導入し、５００μｇ／ｍＬ Ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ での選抜により、可溶型ＧＰＣ３高発現ＣＨＯ株を得た。

１７００ｃｍ^２ローラーボトルを用いｆｌａｇ付加可溶型ＧＰＣ３高発現ＣＨＯ株の大量培養を行い、培養上清を回収し精製を行った。培養上清をＤＥＡＥ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ（Ａｍｅｒｓｈａｍ ＣＡＴ＃ １７−０７０９−０１）にチャージし、洗浄後、５００ｍＭ ＮａＣｌを含むバッファーにより溶出した。次に、Ａｎｔｉ−Ｆｌａｇ Ｍ２ ａｇａｒｏｓｅ ａｆｆｉｎｉｔｙ ｇｅｌ（ＳＩＧＭＡ ＣＡＴ＃Ａ−２２２０）を用いてアフィニティー精製を行った。溶出は２００μｇ／ｍＬのＦＬＡＧペプチドにより行った。Ｃｅｎｔｒｉｐｒｅｐ−１０（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ ＣＡＴ＃４３０４）による濃縮後、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００ ＨＲ １０／３０（Ａｍｅｒｓｈａｍ ＣＡＴ＃ １７−１０８８−０１）によるゲルろ過を行いＦＬＡＧペプチドを除去した。最後にＤＥＡＥ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗカラムを用いて濃縮し、同時にＴｗｅｅｎ２０を含まないＰＢＳ（５００ｍＭのＮａＣｌを含む）で溶出を行うことによりバッファー置換を行うことにより、可溶性リコンビナントＧＰＣ３を得た。

実施例２ 可溶性天然型ＧＰＣ３の取得
可溶性ＧＰＣ３の産生細胞として、肝芽腫由来細胞株であるＨｕＨ６細胞を理研細胞バンクよりより購入し、１０％ ＦＢＳ／ダルベッコの改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ Ｍｅｄｉｕｍ，ＤＭＥＭ）（ＳＩＧＭＡ ＣＡＴ＃ Ｄ６４２９）／ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ・ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ（ＧＩＢＣＯ ＢＲＬ ＣＡＴ＃ １５１４０−１２２）で培養を行った。すなわち、直径１５０ｍｍのディシュを用い、ＨｕＨ６細胞の大量培養を行い、培養上清を回収し精製を行った。培養上清をＤＥＡＥ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ（Ａｍｅｒｓｈａｍ ＣＡＴ＃１７−０７０９−０１）にチャージし、洗浄後、５００ｍＭ ＮａＣｌを含むバッファーにより溶出した。次に、Ｃｅｎｔｒｉｐｒｅｐ−１０（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ ＣＡＴ＃４３０４）で濃縮後、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００ ＨＲ １０／３０（Ａｍｅｒｓｈａｍ ＣＡＴ＃ １７−１０８８−０１）によるゲルろ過にて精製することにより粗精製天然型ＧＰＣ３を得た。

高純度の天然型ＧＰＣ３の取得には、抗マウスモノクローナル抗体あるいは抗モルモットポリクローナル抗体を用いてアフィニティーカラムを作製し、それにＨｕＨ６細胞株培養上清をチャージした後、ｐＨ３．５、０．１Ｍグリシン塩酸にて洗浄後、４ＭのＭｇＣｌ_２・６Ｈ_２Ｏにて溶出し、ついで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭ ＮａＣｌに対して透析を行い、高純度の可溶性天然型ＧＰＣ３を得た。

実施例３ 抗可溶性ＧＰＣ３ポリクローナル抗体の作製
可溶性リコンビナントＧＰＣ３あるいは可溶性天然型ＧＰＣ３を用いて、モルモットポリクローナル抗体の作製を行った。作製には、公知の方法を用いた。ＧＰＣ３を、アジュバントを用いてエマルジョン化したものを皮下に投与し、免疫を行った。これを数回繰り返し、抗体価が上昇したのを確認した後、採血を行い、血清を得た後、硫安沈殿によりポリクローナル抗体を取得した。

実施例４ 抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体の作製
Ｂａｌｂ／Ｃマウス（ＣＲＬ）５匹に、可溶性リコンビナントＧＰＣ３あるいは可溶性天然型ＧＰＣ３を免疫した。初回免疫には免疫タンパク質を、可溶性天然型ＧＰＣ３の場合は１０μｇ／匹、可溶性リコンビナントＧＰＣ３の場合は１００μｇ／匹となるように調製し、ＦＣＡ（フロイント完全アジュバント（Ｈ３７ Ｒａ）、Ｄｉｆｃｏ（３１１３−６０）、ベクトンディッキンソン（ｃａｔ＃２３１１３１））を用いてエマルジョン化したものを皮下に投与した。２週間後に可溶性天然型ＧＰＣ３の場合は５μｇ／匹、可溶性リコンビナントＧＰＣ３の場合は５０μｇ／匹となるように調製したものをＦＩＡ（フロイント不完全アジュバント、Ｄｉｆｃｏ（０６３９−６０）、ベクトンディッキンソン（ｃａｔ＃２６３９１０））でエマルジョン化したものを皮下に投与した。以降１週間間隔で追加免疫を合計５回行った。最終免疫については、可溶性天然型ＧＰＣ３の場合は５μｇ／匹、可溶性リコンビナントＧＰＣ３の場合は５０μｇ／匹となるようにＰＢＳに希釈し尾静脈内に投与した。ＧＰＣ３コアタンパク質をコートしたイムノプレートを用いたＥＬＩＳＡによりＧＰＣ３に対する血清中の抗体価が飽和しているのを確認後、マウスミエローマ細胞Ｐ３Ｕ１とマウス脾臓細胞を混合し、ＰＥＧ１５００（ロシュ・ダイアグノスティック、ｃａｔ＃７８３ ６４１）により細胞融合を行った。９６穴培養プレートに播種し、翌日よりＨＡＴ培地で選択後培養上清をＥＬＩＳＡでスクリーニングした。陽性クローンについては限界希釈法によりモノクローン化した後、拡大培養を行い培養上清を回収した。ＥＬＩＳＡによるスクリーニングは、ＧＰＣ３コアタンパク質との結合活性を指標に行い、強い結合能を有する抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体を得た。

抗体の精製はＨｉ Ｔｒａｐ ＰｒｏｔｅｉｎＧ ＨＰ（Ａｍｅｒｓｈａｍ ＣＡＴ＃１７−０４０４−０１）を用いて行った。ハイブリドーマ培養上清を直接カラムにチャージし、結合バッファー（２０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．０））にて洗浄後、溶出バッファー（０．１Ｍ グリシン−ＨＣｌ（ｐＨ２．７））で溶出した。溶出は中和バッファー（１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．０））を加えたチューブに行い直ちに中和した。抗体画分をプールした後、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０／ＰＢＳで一昼夜透析を行いバッファー置換した。精製された抗体は０．０２％となるようにＮａＮ_３を添加した後、４℃で保管した。
可溶性天然型ＧＰＣ３より得られたハイブリドーマは、ＰＰＭＸ００８及びＰＰＭＸ００９と命名した。また、可溶性リコンビナントＧＰＣ３より得られたハイブリドーマは、ＰＰＭＸ００１０およびＰＰＭＸ０３１と命名した。
なお、複数得られたハイブリドーマのうち以下に示すＥＬＩＳＡにて高感度・特異性に優れたＰＰＭＸ００９をＭ１８Ｄ０４と命名し、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託した（日本国 〒３０５−８５６６ 茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６、原寄託日；２００４年９月７日、受託番号；ＦＥＲＭ ＡＢＰ−１０３２５）。

実施例５ 抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体の解析
抗体濃度はヤギ抗マウス ＩｇＧ（ｇａｍｍａ）（ＺＹＭＥＤ ＣＡＴ＃ ６２−６６００）とアルカリホスファターゼ−ヤギ抗マウス ＩｇＧ（ｇａｍｍａ）（ＺＹＭＥＤ ＣＡＴ＃ ６２−６６２２）を用いたマウスＩｇＧサンドイッチＥＬＩＳＡを行い、市販の精製マウスＩｇＧ１抗体（ＺＹＭＥＤ ＣＡＴ＃０２−６１００）をスタンダードとして定量した。
抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体のアイソタイピングは、ＩｍｍｕｎｏＰｕｒｅ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ Ｋｉｔ ＩＩ（ＰＩＥＲＣＥ ＣＡＴ＃ ３７５０２）を用い、方法は添付のマニュアルに従った。アイソタイピングの結果全てＩｇＧ１タイプであった。

実施例６ サンドイッチＥＬＩＳＡ系の構築
血中のＧＰＣ３を測定するため、ＧＰＣ３のサンドイッチＥＬＩＳＡ系を多数構築し、感度および特異性に優れた測定系を選択した。最も優れた結果は、ポリクローナル抗体であるＰＰＭＸ０４２抗体を９６ウェルプレートにコートし、Ｍ１８Ｄ０４抗体をビオチンで標識した系であった。尚、発色には高い測定感度を達成するためＳｃｙｔｅｋ社のＴＭＢを用いた。

９６ウェルイムノプレートに１０μｇ／ｍＬとなるように抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体あるいはポリクローナル抗体をＰＢＳ（−）で希釈したものをコートし、４℃で一晩インキュベートした。翌日３００μＬ／ｗｅｌｌのＰＢＳで３回洗浄後、ＡＢＩ社のイムノアッセイスタビライザー（ＡＢＩ ＃１０−６０１−００１）を１５０μＬ加え、ブロッキングを行った。室温で数時間後、あるいは４℃で一晩保管後、精製タンパク質、ヒト血清などを、動物血清などを含む希釈バッファー（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−Ｃｌ ｐＨ８．０， ０．１５Ｍ ＮａＣｌ）で適当に希釈したものを加え２時間室温でインキュベートした。次いで、動物血清などを含むＰＢＳ（−）で２０μｇ／ｍＬとなるように希釈したビオチン標識した抗ＧＰＣ３モノクローナル抗体あるいはポリクローナル抗体を加え２時間室温でインキュベートした。反応液を捨てた後、動物血清を適当量含んだＣｙｇｎｕｓ社のＳｔａｂ−ＥＬＩＳＡ−ｒ（Ｃｙｇｎｕｓ＃Ｉ−０３０）を用いて、Ｖｅｃｔｏｒ社のストレプトアビジン−ＨＲＰＯ（Ｖｅｃｔｏｒ＃ＳＡ−５００４）を３ｕｇ／ｍＬに希釈したものを加え、０．５時間室温でインキュベートした。３００μＬ／ｗｅｌｌの洗浄バッファーで５回洗浄した後、添付のプロトコールに従いＳｃｙｔｅｋ社のＴＭＢ（Ｃａｔ＃ＴＭ４９９９）を用いて発色させ、マイクロプレートリーダーで吸光度を測定した。

抗体のビオチン化にはＰｉｅｒｃｅ社のＳｕｌｆｏ−ＮＨＳ−ＬＣ−Ｂｉｏｔｉｎ （ＣＡＴ＃ ２１３３５）を用いた。また、サンプル中のＧＰＣ３濃度の換算には、表計算ソフトＧｌａｐｈＰａｄ ＰＲＩＳＭ（ＧｌａｐｈＰａｄ ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ． ｖｅｒ．３．０）を用いて解析した。精製ＧＰＣ３を用いてスタンダードカーブを作製した結果、標準品未添加時吸光度が低いのみならずＧＰＣ３添加時の吸光度が高い測定系を構築することができた。

実施例７ 肝動脈塞栓術後の患者ＧＰＣ３濃度と再発との関係
（１）対象および方法
実施例５で得られたＥＬＩＳＡ系（ポリクローナル抗体であるＰＰＭＸ０４２抗体を９６ウェルプレートにコートし、Ｍ１８Ｄ０４抗体をビオチンで標識した系）を用い、下記検体を測定した。
肝癌手術例６７例（初発４８例、再発１９例）で、断端陰性かつ術前診断にて脈管浸潤および遠隔転移を認めなかった症例を対象とした（平均年齢６４．２歳（２６−８８歳）、男：女＝５５：１２例）。無再発生存に寄与する因子について、Ｃｏｘ比例ハザードモデルを用いて検討を行った。
（検討因子）年齢、性別、病因、腫瘍因子（最大腫瘍径、個数）、病理所見（分化度、背景肝、娘結節、脈管侵襲の有無）、術前、術後早期（１〜２週間）、術後中期（２週間〜２ヶ月後）ＧＰＣ３値。
血清ＧＰＣ３濃度の測定は、前記実施例５に記載の方法に従い実施した。

（２）結果
再発症例は３０例でリンパ節再発、遠隔転移、断端周囲再発をそれぞれ１例、２７例は肝内異所性再発であった。観察期間は０．５〜３２ヶ月、平均観察期間は９．０ヶ月であった。６ヶ月間の無再発生存率は７３％であった。図１に、術前（Ａ）、術後１〜２週間後（Ｂ）および術後２週間〜２ヶ月後（Ｃ）のＧＰＣ３値が１ｎｇ／ｍＬ未満の患者およびＧＰＣ３値が１ｎｇ／ｍＬ以上の患者の無再発生存率を比較した結果を示す。統計解析は、Ｌｏｇ−ｒａｎｋ ｔｅｓｔで行った。その結果、術前、術後早期および術後中期のいずれの場合にもＧＰＣ３濃度が１ｎｇ／ｍＬ未満の患者の再発率は、１ｎｇ／ｍＬ以上の患者の再発率よりも有意に高かった。（Ｌｏｇ−ｒａｎｋ ｔｅｓｔで術前Ｐ＝０．０４４３、術後早期Ｐ＝０．０４１５、術後中期Ｐ＝０．０００７。）従って、その結果、ＧＰＣ３濃度測定は手術後再発の予測に有用であり、肝癌治療後の再発の予測因子として血清ＧＰＣ３が有用なマーカーとなりうることが判明した。

実施例８ 肝動脈塞栓術後ＧＰＣ３濃度と再発との関係を示す典型症例
実施例６にて解析した症例のうち他の腫瘍マーカーであるＡＦＰ、ＰＩＶＫＡ−ＩＩおよびＡＦＰ−Ｌ３分画を測定した症例の一部を表１に示した。いずれの症例も術後のＧＰＣ３濃度がｃｕｔ ｏｆｆ値０．４以上を示した症例である。他の腫瘍マーカーのうち、ＡＦＰに関しては、症例８３４において２回目のＴＡＥ後、症例２８７においては全般にｃｕｔ ｏｆｆ値２０以上を示すものの全体的に低値であった。ＰＩＶＫＡ−ＩＩにおいては症例９７５の術後でｃｕｔ ｏｆｆ値４０以上を示すものの、他の症例では低値であった。ＡＦＰ−Ｌ３分画においては症例１８４の３回目ＴＡＥ後および症例９７５の再発時にｃｕｔ ｏｆｆ値１５以上を示したに過ぎなかった。これら、症例からも他の腫瘍マーカーでは肝癌再発の予知が不可能であるにもかかわらず、ＧＰＣ３では再発が予知できることが示された。

Claims (6)

1. 抗ＧＰＣ３抗体を含有する肝癌治療後の再発予測判定薬。
2. 抗ＧＰＣ３抗体が、抗可溶性ＧＰＣ３抗体である請求項１記載の予測判定薬。
3. 抗ＧＰＣ３抗体を用いて被検試料中のＧＰＣ３を測定することを特徴とする肝癌治療後の再発予測方法。
4. 抗ＧＰＣ３抗体が、抗可溶性ＧＰＣ３抗体である請求項３記載の予測方法。
5. 被検試料が、血液、血清又は血漿である請求項３又は４記載の予測方法。
6. 支持体に固定した抗ＧＰＣ３抗体と標識物質で標識された抗ＧＰＣ３抗体を用いる請求項３〜５のいずれか１項記載の予測方法。

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