JPS6347649A - グルタミン酸測定用酵素センサ - Google Patents
グルタミン酸測定用酵素センサInfo
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、試料中のし一グルタミン酸の濃度測定に用い
られる酵素センサに関するものである。
られる酵素センサに関するものである。
(従来の技術)
L−グルタミン酸の定量は2食品やアミノ酸工業の分野
での工程管理や製品分析に重要な項目の一つである。ま
た、臨床化学検査分野において。
での工程管理や製品分析に重要な項目の一つである。ま
た、臨床化学検査分野において。
特に肝機能及び心筋梗塞の診断に使われる血中のグルタ
ミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ(GOT)と
グルタミン酸−ピルピン酸トランスアミナーゼ(GPT
)の活性測定では、生成するし一グルタミン酸の簡便な
定量法が要望されている。
ミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ(GOT)と
グルタミン酸−ピルピン酸トランスアミナーゼ(GPT
)の活性測定では、生成するし一グルタミン酸の簡便な
定量法が要望されている。
食品やアミノ酸工業の分野では、アミノ酸分析機を代表
とする液体クロマトグラフィを用いた機器分析法による
定量が主であるが、最近、酵素を用いた定量用試薬の利
用が注目されるようになってきた。酵素を用いた定量用
試薬での測定は、検体の前処理が簡単で、かつ基質特異
性に優れているため、正確な定量が可能である。その酵
素としては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、グルタミ
ン酸オキシダーゼ、あるいはグルタミン酸デカルボキシ
ラーゼなどが用いられている。その中でも。
とする液体クロマトグラフィを用いた機器分析法による
定量が主であるが、最近、酵素を用いた定量用試薬の利
用が注目されるようになってきた。酵素を用いた定量用
試薬での測定は、検体の前処理が簡単で、かつ基質特異
性に優れているため、正確な定量が可能である。その酵
素としては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、グルタミ
ン酸オキシダーゼ、あるいはグルタミン酸デカルボキシ
ラーゼなどが用いられている。その中でも。
グルタミン酸デヒドロゲナーゼを用いた定量用試薬が実
用化されている。また、臨床検査における重要な項目の
一つであるGOTやGPTの活性測定には、現在ではL
−グルタミン酸を定量するよりも、もう一方の生成物で
あるオキサロ酢酸あるいはピルビン酸を、それぞれリン
ゴ酸デヒドロゲナーゼあるいは乳酸デヒドロゲナーゼを
用いた定量用試薬にて測定する方法が採用されている。
用化されている。また、臨床検査における重要な項目の
一つであるGOTやGPTの活性測定には、現在ではL
−グルタミン酸を定量するよりも、もう一方の生成物で
あるオキサロ酢酸あるいはピルビン酸を、それぞれリン
ゴ酸デヒドロゲナーゼあるいは乳酸デヒドロゲナーゼを
用いた定量用試薬にて測定する方法が採用されている。
この方法は、検体の前処理が比較的簡単で、かつ正確な
定量が可能であるが、測定に時間を要すること、及び試
薬溶液調製後の寿命が短いことが問題とされている。
定量が可能であるが、測定に時間を要すること、及び試
薬溶液調製後の寿命が短いことが問題とされている。
このため、基質特異性に優れた酵素と、筒便で迅速な分
析が可能である電極とからなる酵素センサが近年盛んに
開発されており、L−グルタミン酸測定用酵素センサと
しては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼとアンモニアイ
オン電極とを組み合わせた酵素センサが提案されている
。また、酵素に代えて微生物と電極とからなる微生物セ
ンサの研究も行われており、ニジエリチアコリ(Esc
he−richia coli)と炭酸ガス電極とか
らなるし一グルタミン酸を定量する酵素センサが提案さ
れている(蛋白質 核酸 酵素、30巻、4号、245
〜298頁、 1985年)。しかしながら、この酵素
センサや微生物センサは、寿命と測定対象物に対する選
択性が低いなどの問題があり、これを改良するため、好
熱菌由来のグルタミンシンテターゼとアンモニアガス電
極とからなる酵素センサが提案されている(DEN[K
AGAXυ、 54. N[L3 (1986)2
91〜292頁)。
析が可能である電極とからなる酵素センサが近年盛んに
開発されており、L−グルタミン酸測定用酵素センサと
しては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼとアンモニアイ
オン電極とを組み合わせた酵素センサが提案されている
。また、酵素に代えて微生物と電極とからなる微生物セ
ンサの研究も行われており、ニジエリチアコリ(Esc
he−richia coli)と炭酸ガス電極とか
らなるし一グルタミン酸を定量する酵素センサが提案さ
れている(蛋白質 核酸 酵素、30巻、4号、245
〜298頁、 1985年)。しかしながら、この酵素
センサや微生物センサは、寿命と測定対象物に対する選
択性が低いなどの問題があり、これを改良するため、好
熱菌由来のグルタミンシンテターゼとアンモニアガス電
極とからなる酵素センサが提案されている(DEN[K
AGAXυ、 54. N[L3 (1986)2
91〜292頁)。
(発明が解決しようとする問題点)
上記の好熱菌由来のグルタミンシンテターゼとアンモニ
アガス電極とからなる酵素センサは、寿命が飛躍的に向
上したが、低濃度のグルタミン酸には応答性が十分では
なかった。さらに、酵素センサはできるだけ微小である
ことが望まれているが、一般のガラス製の各種電極を用
いる場合には。
アガス電極とからなる酵素センサは、寿命が飛躍的に向
上したが、低濃度のグルタミン酸には応答性が十分では
なかった。さらに、酵素センサはできるだけ微小である
ことが望まれているが、一般のガラス製の各種電極を用
いる場合には。
微小化に限界があった。
(問題点を解決するための手段)
本発明者らは、このような問題点を解決すべく鋭意研究
の結果、酵素としてグルタミンシンテターゼを用い、か
つトランスデユーサとしてp Hガラス電極又はイオン
感応性電界効果トランジスタ(ISFET)を用いた酵
素センサが、低濃度のグルタミン酸に良好な応答性を示
すとともに微小化できることを見い出し1本発明を完成
した。
の結果、酵素としてグルタミンシンテターゼを用い、か
つトランスデユーサとしてp Hガラス電極又はイオン
感応性電界効果トランジスタ(ISFET)を用いた酵
素センサが、低濃度のグルタミン酸に良好な応答性を示
すとともに微小化できることを見い出し1本発明を完成
した。
すなわち1本発明は、基質に特異的に作用する固定化酵
素と、酵素反応によって消費あるいは生成する物質の濃
度変化又は熱量変化を電気信号に変えるトランスデユー
サとからなる酵素センサにおいて、酵素がグルタミンシ
ンテターゼであり。
素と、酵素反応によって消費あるいは生成する物質の濃
度変化又は熱量変化を電気信号に変えるトランスデユー
サとからなる酵素センサにおいて、酵素がグルタミンシ
ンテターゼであり。
トランスデユーサがpHガラス電極又はI 5FETで
あることを特徴とするグルタミン酸測定用酵素センサを
要旨とするものである。
あることを特徴とするグルタミン酸測定用酵素センサを
要旨とするものである。
本発明に用いられるpHガラ°ス電極としては。
例えば、ガラス電極と比較電極とを組み合わせたもの、
複合型のものなどがあげられるが、微小化のためには複
合型pHガラス電極が好ましい。また、l5FETとし
ては、水素イオン濃度を測定するものであればどのよう
なものでもよいが、特にS OS / I S F E
T(Silicon on 5apphire/ l5
FET)が好ましい。
複合型のものなどがあげられるが、微小化のためには複
合型pHガラス電極が好ましい。また、l5FETとし
ては、水素イオン濃度を測定するものであればどのよう
なものでもよいが、特にS OS / I S F E
T(Silicon on 5apphire/ l5
FET)が好ましい。
本発明に用いられるグルタミンシンテターゼとしては5
微生物由来のもの、動物由来のものなど。
微生物由来のもの、動物由来のものなど。
各種のものを使用することができる。中でも、最適生育
温度が50℃ないし85℃である微生物の産出するもの
が好ましい。そのような微生物としては2例えば、バチ
ルス・ステアロサーモフィルス、バチルス・サーモプロ
テオリテイクス、バチルス・アシドカルダリウスなどの
バチルス属、サーモアクチノマイセス属、サーマス属、
サーモミクロビウム属などの微生物があげられる。これ
らの中でも特に好ましい微生物としては、バチルス・ス
テアロサーモフィルスであり、その具体例としては、A
TCC?933,7954,10194゜12980、
NCAl3O3,UK563株(微工研菌寄第7275
号、FERMP−7275,昭和58年9月29日寄託
)などがある。
温度が50℃ないし85℃である微生物の産出するもの
が好ましい。そのような微生物としては2例えば、バチ
ルス・ステアロサーモフィルス、バチルス・サーモプロ
テオリテイクス、バチルス・アシドカルダリウスなどの
バチルス属、サーモアクチノマイセス属、サーマス属、
サーモミクロビウム属などの微生物があげられる。これ
らの中でも特に好ましい微生物としては、バチルス・ス
テアロサーモフィルスであり、その具体例としては、A
TCC?933,7954,10194゜12980、
NCAl3O3,UK563株(微工研菌寄第7275
号、FERMP−7275,昭和58年9月29日寄託
)などがある。
本発明において、グルタミンシンテターゼとpHガラス
電極又はl5FETとから酵素センサを調製するには3
例えば、膜状の水不溶性担体にグルタミンシンテターゼ
を固定化した状態で。
電極又はl5FETとから酵素センサを調製するには3
例えば、膜状の水不溶性担体にグルタミンシンテターゼ
を固定化した状態で。
pHガラス電極又はl5FETの感応面に直接被覆する
方法が用いられる。被覆膜は薄いほど応答時間が速くな
るため2例えば、1〜100μ、好ましくは10〜50
μの厚さにすればよい。
方法が用いられる。被覆膜は薄いほど応答時間が速くな
るため2例えば、1〜100μ、好ましくは10〜50
μの厚さにすればよい。
本発明において、グルタミンシンテターゼを水不溶性担
体に固定化させるには1例えば、千畑一部著「固定化酵
素」講談社(1975)に記載されているような、従来
より公知の共有結合法や吸着法を採用することができる
し、また、架橋化法あるいは包括法など、いずれの方法
も採用することができる。
体に固定化させるには1例えば、千畑一部著「固定化酵
素」講談社(1975)に記載されているような、従来
より公知の共有結合法や吸着法を採用することができる
し、また、架橋化法あるいは包括法など、いずれの方法
も採用することができる。
共有結合法としては1例えば、アガロース膜やデキスト
ラン膜などを臭化シアンで活性化し、これにグルタミン
シンテターゼのアミノ基を結合させるペプチド法、芳香
族アミノ基を有する水不溶性膜を亜硝酸塩によりジアゾ
ニウム塩とし、これにグルタミンシンテターゼのチロシ
ン残基をカップリングさせるジアゾ法、アミノ基を有す
る水不溶性膜にグルタルアルデヒドを結合させ、これに
グルタミンシンテターゼのアミノ基を結合させるシッフ
塩基形成法などがあげられる。
ラン膜などを臭化シアンで活性化し、これにグルタミン
シンテターゼのアミノ基を結合させるペプチド法、芳香
族アミノ基を有する水不溶性膜を亜硝酸塩によりジアゾ
ニウム塩とし、これにグルタミンシンテターゼのチロシ
ン残基をカップリングさせるジアゾ法、アミノ基を有す
る水不溶性膜にグルタルアルデヒドを結合させ、これに
グルタミンシンテターゼのアミノ基を結合させるシッフ
塩基形成法などがあげられる。
吸着法としては2例えば、DEAE−セルロース膜やフ
ェノキシアセチルセルロース膜などの水不溶性膜に、グ
ルタミンシンテターゼをイオン結合的あるいは物理的な
力で固定する方法があげられる。
ェノキシアセチルセルロース膜などの水不溶性膜に、グ
ルタミンシンテターゼをイオン結合的あるいは物理的な
力で固定する方法があげられる。
架橋化法としては2例えば、グルタミンシンテターゼと
アルブミンのアミノ基をグルタルアルデヒドで架橋して
固定化する方法があげられる。
アルブミンのアミノ基をグルタルアルデヒドで架橋して
固定化する方法があげられる。
包括法としては1例えば、アクリルアミドモノマに架橋
剤であるN、N’−メチレンビスアクリルアミド、重合
開始剤であるリボフラビン、ベルオキソニ硫酸塩9重合
促進剤であるN、 N、 N’、 N’−テトラメチル
エチレンジアミンなどをグルタミンシンテターゼ溶液に
加えて、窒素気流中で光照射して重合させてグルタミン
シンテターゼを包括固定化する方法、コラーゲンフィブ
リル懸濁液にグルタミンシンテターゼを加えて風乾する
方法などがあげられる。
剤であるN、N’−メチレンビスアクリルアミド、重合
開始剤であるリボフラビン、ベルオキソニ硫酸塩9重合
促進剤であるN、 N、 N’、 N’−テトラメチル
エチレンジアミンなどをグルタミンシンテターゼ溶液に
加えて、窒素気流中で光照射して重合させてグルタミン
シンテターゼを包括固定化する方法、コラーゲンフィブ
リル懸濁液にグルタミンシンテターゼを加えて風乾する
方法などがあげられる。
本発明の酵素センサを用いてL−グルタミン酸を測定す
るには5例えば、固定化グルタミンシンテターゼをpH
ガラス電極又はl5FET感応面に直接被覆したものを
、アンモニウムイオンを含む塩とアデノシン−5′−三
リン酸(ATP)とを溶解した緩衝液に浸し、試料とし
てのし一グルタミン酸溶液の添加により生ずるpH変化
を測定すればよい。すなわち1次の反応 L−グルタミン酸十 NH4”+A’l’p−−−−−
−−−−−−→L−グルタミン+ADP 十無機リン
+H4により生ずるH4によるpi−1変化をpHガラ
ス電極又はl5FETで測定すればよい。
るには5例えば、固定化グルタミンシンテターゼをpH
ガラス電極又はl5FET感応面に直接被覆したものを
、アンモニウムイオンを含む塩とアデノシン−5′−三
リン酸(ATP)とを溶解した緩衝液に浸し、試料とし
てのし一グルタミン酸溶液の添加により生ずるpH変化
を測定すればよい。すなわち1次の反応 L−グルタミン酸十 NH4”+A’l’p−−−−−
−−−−−−→L−グルタミン+ADP 十無機リン
+H4により生ずるH4によるpi−1変化をpHガラ
ス電極又はl5FETで測定すればよい。
測定用の溶液としては2例えば、ATPを0.1〜30
mM、好ましくは0.5〜10mM、 アンモニウム
イオンを含む塩を0.5〜50mM、好ましくは2〜2
0mM、マグネシウムを含む塩を2〜200mM、好ま
しくは10〜100mMとなるように、1〜200mM
、好ましくは3〜100mMのトリス−塩酸、イミダゾ
ール酢酸などの緩衝液(pH4〜10.好ましくは5.
5〜9.5)に溶解したものを用いればよい。
mM、好ましくは0.5〜10mM、 アンモニウム
イオンを含む塩を0.5〜50mM、好ましくは2〜2
0mM、マグネシウムを含む塩を2〜200mM、好ま
しくは10〜100mMとなるように、1〜200mM
、好ましくは3〜100mMのトリス−塩酸、イミダゾ
ール酢酸などの緩衝液(pH4〜10.好ましくは5.
5〜9.5)に溶解したものを用いればよい。
また、測定温度は5〜75℃、好ましくは15〜55℃
が用いられる。
が用いられる。
(作 用)
本発明の酵素センサは5次の反応
L−グルタミン酸十NH4”+ATP
−−−−−−−−−−−→L−グルタミシ+ADP
+無七隻すン+ Hoにより生ずるH4によるpH変化
を、pHガラス電極又はl5FETで検出することによ
り構成されている。
+無七隻すン+ Hoにより生ずるH4によるpH変化
を、pHガラス電極又はl5FETで検出することによ
り構成されている。
(実施例)
次に9本発明を実施例によって具体的に説明する。
実施例1
バチルス・ステアロサーモフィルス由来のグルタミンシ
ンテターゼ10μ!!(1,4ユニツト)と25tm/
v−%の牛血清アルブミン溶液5μl及びIW/V−%
のグルタルアルデヒド し.その混合液4μβをISFETのゲート上に滴下し
た。これを4℃で一昼夜反応させ,固定化膜を形成させ
たのち、pH8,5の0.1 Mグリシンーカ性ソーダ
緩衝液に15分間浸し、最後に蒸溜水で洗浄することに
より、グルタミンシンテターゼを固定化したl5FET
を調製した。
ンテターゼ10μ!!(1,4ユニツト)と25tm/
v−%の牛血清アルブミン溶液5μl及びIW/V−%
のグルタルアルデヒド し.その混合液4μβをISFETのゲート上に滴下し
た。これを4℃で一昼夜反応させ,固定化膜を形成させ
たのち、pH8,5の0.1 Mグリシンーカ性ソーダ
緩衝液に15分間浸し、最後に蒸溜水で洗浄することに
より、グルタミンシンテターゼを固定化したl5FET
を調製した。
次いで、pH7,0の10mM)リス−塩酸緩衝液、7
.6mMのATP、10mMの塩化アンモニウム及び5
0mMの塩化マグネシウムからなる反応溶液25m!!
に、グルタミンシンテターゼ固定化l5FET及び対照
としてグルタミンシンテターゼを固定化していないl5
FET(対照用l5FET)を浸し、さらに、溶液の電
位の一定に保つため、Ag/AgCε電極を漫した。こ
れらの各電極は、第1図に示した測定回路を形成し1両
l5FETI、2のソース・ドレイン間の電圧は3、O
Vに、また、Ag/AgCj!電極3への印加電圧は6
.5Vとした。これにL−グルタミン酸溶液を添加する
と、l5FET界面で反応が起こり。
.6mMのATP、10mMの塩化アンモニウム及び5
0mMの塩化マグネシウムからなる反応溶液25m!!
に、グルタミンシンテターゼ固定化l5FET及び対照
としてグルタミンシンテターゼを固定化していないl5
FET(対照用l5FET)を浸し、さらに、溶液の電
位の一定に保つため、Ag/AgCε電極を漫した。こ
れらの各電極は、第1図に示した測定回路を形成し1両
l5FETI、2のソース・ドレイン間の電圧は3、O
Vに、また、Ag/AgCj!電極3への印加電圧は6
.5Vとした。これにL−グルタミン酸溶液を添加する
と、l5FET界面で反応が起こり。
局部的にpHが変化するので、2本のl5FETの差動
出力値として測定することができる。
出力値として測定することができる。
なお、温度は30℃一定とし、また9反応液の攪拌は2
00rpm一定にて行った。
00rpm一定にて行った。
試料として用いたし一グルタミン酸溶液の濃度を1.2
,5,10.20.50mMにて行い。
,5,10.20.50mMにて行い。
それぞれ得られた差動出力との関係を第2図に示した。
このように、L−グルタミン酸濃度1〜50mMの範囲
において、L−グルタミン酸濃度の対数と出力との間に
良好な直線関係が得られ。
において、L−グルタミン酸濃度の対数と出力との間に
良好な直線関係が得られ。
L−グルタミン酸の定量が可能であることが判明した。
なお、応答時間は8分程度であった。
比較例1
グルタミンシンテターゼとアンモニアガス電極とを組み
合わせたグルタミン酸センサを2文献(DENKI K
AGAKU、 54. m3 (1986) 290〜
291頁)に従って調製し、L−グルタミン酸が低濃度
領域での感度を調べた。
合わせたグルタミン酸センサを2文献(DENKI K
AGAKU、 54. m3 (1986) 290〜
291頁)に従って調製し、L−グルタミン酸が低濃度
領域での感度を調べた。
すなわち、0.04モルのジイソシアン酸トリレンと0
.01モルのポリエチレングリコールを混合し、80℃
で30分間反応させてウレタンプレポリマを合成した。
.01モルのポリエチレングリコールを混合し、80℃
で30分間反応させてウレタンプレポリマを合成した。
次に、1gの融解状態にしたウレタンプレポリマに1.
5mj!(15ユニツト)のグルタミンシンテターゼ溶
液を加えて室温でかきまぜた後9発泡し、ウレタンプレ
ポリマが生成したところで、ガラス板上に広げて固定化
膜を作成した。この固定化膜をアンモニアガス電極(電
気化学工業 7161−IP型)に装着し、pHメータ
(電気化学工業 HGC−10)を用いてグルタミン酸
センサの電位変化を30℃で測定した。
5mj!(15ユニツト)のグルタミンシンテターゼ溶
液を加えて室温でかきまぜた後9発泡し、ウレタンプレ
ポリマが生成したところで、ガラス板上に広げて固定化
膜を作成した。この固定化膜をアンモニアガス電極(電
気化学工業 7161−IP型)に装着し、pHメータ
(電気化学工業 HGC−10)を用いてグルタミン酸
センサの電位変化を30℃で測定した。
グルタミン酸の定量に用いた溶液の組成は、7.6mM
のATP、10mMの塩化アンモニウム、50mMの塩
化マグネシウム、50mMのイミダゾール−塩a、pH
s、sであった。試料として用いたL−グルタミン酸溶
液は2反応液中の濃度として1.2,5.10.20.
50mMであった。L−グルタミン酸濃度t度と得られ
た電位変化の関係を第3図に示した。
のATP、10mMの塩化アンモニウム、50mMの塩
化マグネシウム、50mMのイミダゾール−塩a、pH
s、sであった。試料として用いたL−グルタミン酸溶
液は2反応液中の濃度として1.2,5.10.20.
50mMであった。L−グルタミン酸濃度t度と得られ
た電位変化の関係を第3図に示した。
第3図より、10mM以下のし一グルタミン酸濃度域に
おいては、全く応答性を示さなかった。
おいては、全く応答性を示さなかった。
実施例2
0.04モルのジイソシアン酸トリレンと0.01モル
のポリエチレングリコールを混合し、80℃で30分間
反応させてウレタンプレポリマを合成した。次に、1g
の融解状態にしたウレタンプレポリマに1.5mj!(
15ユニツト)のグルタミンシンテターゼ溶液を加えて
室温でかきまぜた後。
のポリエチレングリコールを混合し、80℃で30分間
反応させてウレタンプレポリマを合成した。次に、1g
の融解状態にしたウレタンプレポリマに1.5mj!(
15ユニツト)のグルタミンシンテターゼ溶液を加えて
室温でかきまぜた後。
発泡し、ウレタンプレポリマが生成したところで。
ガラス板上に広げて固定化膜を作成した。この固定化膜
を極微量用複合型pHガラス電極(セントラル科学社製
、検体測定用5E−16000C)に装着することによ
り酵素セン斗を構築し、その電位変化を30℃で測定し
た。
を極微量用複合型pHガラス電極(セントラル科学社製
、検体測定用5E−16000C)に装着することによ
り酵素セン斗を構築し、その電位変化を30℃で測定し
た。
なお、グルタミン酸の定量に用いた溶液の組成は=7.
6mMのATP、10mMの塩化アンモニウム、50m
Mの塩化マグネシウム、10mMのトリス−塩酸緩衝液
(pH7,0)であった。試料として用いたし一グルタ
ミン酸溶液の濃度を1゜2.5,10,20.50mM
にて行い、L−グルタミン酸濃度と得られた電位変化の
関係を第4図に示した。
6mMのATP、10mMの塩化アンモニウム、50m
Mの塩化マグネシウム、10mMのトリス−塩酸緩衝液
(pH7,0)であった。試料として用いたし一グルタ
ミン酸溶液の濃度を1゜2.5,10,20.50mM
にて行い、L−グルタミン酸濃度と得られた電位変化の
関係を第4図に示した。
(発明の効果)
本発明の酵素センサは、微小化を可能にし、低濃度のグ
ルタミン酸の定量も可能にするという優れた性能を有し
ている。
ルタミン酸の定量も可能にするという優れた性能を有し
ている。
第1図は、グルタミンシンテターゼ固定化l5FETI
、グルタミンシンテターゼを固定していないl5FET
2及びAg/Ag(l電極3からなる測定回路を示す図
であり、第2図は、グルタミンシンテターゼとl5FE
Tとを組み合わせた本発明の酵素センサを用いた場合の
グルタミン酸濃度と差動出力との関係を示す図で、第3
図は。 グルタミンシンテターゼとアンモニアガス電極とを組み
合わせた公知の酵素センサを用いた場合のグルタミン酸
濃度と差動出力との関係を示す図であり、第4図は、グ
ルタミンシンテターゼと複合型pHガラス電極とを組み
合わせた本発明の酵素センサを用いた場合のグルタミン
酸濃度と差動出力との関係を示す図である。 特許出願人 二二亭力株式会社 矛3図
、グルタミンシンテターゼを固定していないl5FET
2及びAg/Ag(l電極3からなる測定回路を示す図
であり、第2図は、グルタミンシンテターゼとl5FE
Tとを組み合わせた本発明の酵素センサを用いた場合の
グルタミン酸濃度と差動出力との関係を示す図で、第3
図は。 グルタミンシンテターゼとアンモニアガス電極とを組み
合わせた公知の酵素センサを用いた場合のグルタミン酸
濃度と差動出力との関係を示す図であり、第4図は、グ
ルタミンシンテターゼと複合型pHガラス電極とを組み
合わせた本発明の酵素センサを用いた場合のグルタミン
酸濃度と差動出力との関係を示す図である。 特許出願人 二二亭力株式会社 矛3図
Claims (1)
- (1)基質に特異的に作用する固定化酵素と、酵素反応
によって消費あるいは生成する物質の濃度変化又は熱量
変化を電気信号に変えるトランスデユーサとからなる酵
素センサにおいて、酵素がグルタミンシンテターゼであ
り。 トランスデユーサがpHガラス電極又はイオン感応性電
界効果トランジスタであることを特徴とするグルタミン
酸測定用酵素センサ。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61190840A JPS6347649A (ja) | 1986-08-14 | 1986-08-14 | グルタミン酸測定用酵素センサ |
DE8787307126T DE3779706T2 (de) | 1986-08-14 | 1987-08-12 | Enzymsensor zur bestimmung von glutaminat-konzentration. |
EP87307126A EP0257919B1 (en) | 1986-08-14 | 1987-08-12 | Enzyme sensor for determining a concentration of glutamate |
US07/084,570 US4812220A (en) | 1986-08-14 | 1987-08-12 | Enzyme sensor for determining a concentration of glutamate |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61190840A JPS6347649A (ja) | 1986-08-14 | 1986-08-14 | グルタミン酸測定用酵素センサ |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6347649A true JPS6347649A (ja) | 1988-02-29 |
JPH0421138B2 JPH0421138B2 (ja) | 1992-04-08 |
Family
ID=16264642
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61190840A Granted JPS6347649A (ja) | 1986-08-14 | 1986-08-14 | グルタミン酸測定用酵素センサ |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4812220A (ja) |
EP (1) | EP0257919B1 (ja) |
JP (1) | JPS6347649A (ja) |
DE (1) | DE3779706T2 (ja) |
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