JPS63248397A - Method for determining d-mannose - Google Patents
Method for determining d-mannoseInfo
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はD−マンノースの定量法、特に酵素反応を利用
した筒便かつ高精度のD−マンノースの定量法に関する
。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION (Industrial Application Field) The present invention relates to a method for quantifying D-mannose, and particularly to a method for quantifying D-mannose using an enzymatic reaction and with high precision.
(従来の技術)
D−マンノースは自然界においては多糖の構成成分とし
て植物の細胞壁などに;そしてリポ多糖や糖蛋白質の構
成成分として細菌や動物細胞の細胞膜などに含有されて
いる。このD−マンノースは、自然界に遊離状態で存在
することはまれであるが1例えば深部真菌症患者では血
清中に高ン農度で見出されるようになる。通常、血清中
のマンノース濃度は0.70±(1,02■/dlであ
るのに対し2例えばカンシタ感染症患者の場合は2.8
〜8.0 mg/aである。そのため血清などの試料中
のD−マンノースを測定することは各種疾患、特に上記
深部真菌症の診断に役立つと考えられる。(Prior Art) In nature, D-mannose is contained in the cell walls of plants as a constituent of polysaccharides; and in the cell membranes of bacteria and animal cells as a constituent of lipopolysaccharides and glycoproteins. Although D-mannose rarely exists in a free state in nature, it is found in high concentrations in the serum of patients with deep mycosis, for example. Normally, the concentration of mannose in serum is 0.70±(1,02μ/dl), whereas in patients with C. communis infection, for example, mannose concentration is 2.8
~8.0 mg/a. Therefore, measuring D-mannose in samples such as serum is considered useful for diagnosing various diseases, especially the deep mycoses mentioned above.
D−マンノースの定量法としては、ガスクロマトグラフ
ィーによる測定法および酵素を利用する測定法が知られ
ている。ガスクロマトグラフィーによる測定は操作法が
煩雑であり測定に長時間を要するため短時間に多くの検
体が処理できない。As methods for quantifying D-mannose, methods using gas chromatography and methods using enzymes are known. Measurement by gas chromatography requires a complicated operation method and requires a long time for measurement, so that many specimens cannot be processed in a short period of time.
特殊な技術や設備を必要とするため一般的臨床検査の方
法としては適切であるとはいえない。酵素を利用する測
定法では、まず5検体にヘキソキナーゼヲ加えてD−マ
ンノースをD−マンノース−6−リン酸に変化させ2次
いでマンノースホスフェートイソメラーゼを作用させて
D−フルクトース−6−リン酸に異性化させる。これに
グルコースホスフェートイソメラーゼを作用させてD−
グルコース−6−リン酸に変換し、さらにNAD+の存
在下でグルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナーゼ
を作用させる。この脱水素反応によりNAD”はNAD
llに変化するため、このN A D 11の量を測定
することにより間接的にD−マンノースが測定される。Because it requires special techniques and equipment, it cannot be said to be appropriate as a general clinical testing method. In the measurement method using an enzyme, first, hexokinase is added to five samples to convert D-mannose to D-mannose-6-phosphate, and then mannose phosphate isomerase is applied to convert isomerism to D-fructose-6-phosphate. to become This was treated with glucose phosphate isomerase to produce D-
It is converted into glucose-6-phosphate, and further subjected to the action of glucose-6-phosphate dehydrogenase in the presence of NAD+. Through this dehydrogenation reaction, NAD” becomes NAD
D-mannose can be measured indirectly by measuring the amount of N A D 11.
このような酵素法は、ガスクロマトグラフィー法に比較
して操作が簡単であり特殊な技術や機器を必要とせず比
色計があれば容易に定量が可能である。しかし、測定の
ためには4種の酵素を必要とし、その各々の調製が煩雑
である。さらに、上記酵素のうちへキソキナーゼはD−
マンノースの他グルコースにも作用するため、あらかじ
め検体中のグルコースを除去する予備操作が必要である
。Such an enzymatic method is easier to operate than a gas chromatography method, and does not require special techniques or equipment, and can be easily quantified with a colorimeter. However, four types of enzymes are required for measurement, and the preparation of each enzyme is complicated. Furthermore, among the enzymes mentioned above, hexokinase is D-
Since it acts on glucose as well as mannose, a preliminary operation is required to remove glucose from the sample in advance.
このように何段階もの操作を必要とするため測定に要す
るコストが高くなるという欠点もある。Since many steps of operations are required in this way, there is also the drawback that the cost required for measurement is high.
(発明が解決しようとする問題点) 本発明は上記従来の欠点を解決するものであり。(Problem to be solved by the invention) The present invention solves the above-mentioned conventional drawbacks.
その目的とするところは、D−マンノースを精度よく、
簡便かつ安価に定量する方法を提供することにある。The purpose is to accurately extract D-mannose.
The object of the present invention is to provide a simple and inexpensive method for quantitative determination.
(問題点を解決するための手段)
本発明のD−マンノースの定量法は、D−マンノースを
含む試料にD−マンノースイソメラーゼを作用させ、生
成するD−フルクトースを測定することを特徴とする。(Means for Solving the Problems) The method for quantifying D-mannose of the present invention is characterized by allowing D-mannose isomerase to act on a sample containing D-mannose and measuring the produced D-fructose.
上記本発明方法により生成するD−フルクトースは任意
の方法により測定しうる。例えば、下記の2方法が挙げ
られる。第1の方法は生成したD−フルクトースにD−
フルクトースデヒドロゲナーゼおよび酸化型電子受容体
を酸素の存在下で作用させ、該反応における5−ケトー
D−フルクトースの生成量、還元型電子受容体の生成量
、スーパーオキサイドアニオン(oz” )の生成量、
該酸化型電子受容体の減少量または該酸素の減少量を測
定する方法である。第2の方法は、生成したD −フル
クトースにNADHの存在下で、D−ソルビトールデヒ
ドロゲナーゼを作用させ、該NADHをNAD”に変換
し9反応系内のNADIIの減少量を測定する方法であ
る。D-fructose produced by the above method of the present invention can be measured by any method. For example, the following two methods may be mentioned. The first method is to add D-fructose to the produced D-fructose.
Fructose dehydrogenase and an oxidized electron acceptor are allowed to act in the presence of oxygen, and the amount of 5-keto D-fructose produced, the amount of reduced electron acceptor produced, the amount of superoxide anion (oz") produced in the reaction,
This method measures the amount of decrease in the oxidized electron acceptor or the amount of oxygen. The second method is to treat the generated D-fructose with D-sorbitol dehydrogenase in the presence of NADH, convert the NADH into NAD'', and measure the amount of decrease in NADII in the reaction system.
本発明方法に用いられるD−マンノースイソメラーゼは
、 EC番号5.3.1.7に分類されるD−マンノー
スイソメラーゼであればいかなる起源のものも使用され
得る。例えば、シュードモナス属、キサントモナス属、
ストレプトマイセス属、ミコバクテリウム属に属する微
生物が産生ずるD−マンノースイソメラーゼなどがある
。D−フルクトースデヒドロゲナーゼは、 EC番号1
.1.99.11に分類されるD−フルクトースデヒド
ロゲナーゼであればいかなる起源のものも使用され得る
。例えば。D-mannose isomerase used in the method of the present invention may be of any origin as long as it is a D-mannose isomerase classified as EC number 5.3.1.7. For example, Pseudomonas, Xanthomonas,
Examples include D-mannose isomerase produced by microorganisms belonging to the genus Streptomyces and Mycobacterium. D-fructose dehydrogenase has EC number 1
.. Any origin of D-fructose dehydrogenase classified as 1.99.11 can be used. for example.
酢酸菌が産生ずるD−フルクトースデヒドロゲナーゼな
どがある。D−ソルビトールデヒドロゲナーゼは、 E
C番号1,1.1.14に分類されるD−ソルビトール
デヒドロゲナーゼであればいかなる起源のものも使用さ
れ得る。例えば、バチラス属の微生物;またはヒツジ、
ネズミなどの動物が産生ずるD−ソルビトールデヒドロ
ゲナーゼなどがある。Examples include D-fructose dehydrogenase produced by acetic acid bacteria. D-sorbitol dehydrogenase is E
Any origin of D-sorbitol dehydrogenase classified as C number 1, 1.1.14 may be used. For example, microorganisms of the genus Bacillus; or sheep,
Examples include D-sorbitol dehydrogenase produced by animals such as rats.
本発明方法によりD−マンノースを定量するには、D−
マンノースを含む試料中にD−マンノースイソメラーゼ
を加えて該酵素によりD−マンノースをD−フルクトー
スに異性化させる。1分子のD−マンノースからは1分
子のD−フルクトースが生じる。このようにして生成し
たD−フルクトースを測定することによりD−マンノー
スを定量する。D−フルクトースを測定する第1の方法
では、D−フルクトースに酸化型受容体の存在下にD−
フルクトースデヒドロゲナーゼを作用させることにより
1次式のようにD−フルクトースから5−ケト−ローフ
ルクトースが生成する。このとき酸化型電子受容体は還
元され還元型の電子受容体が生成する。To quantify D-mannose by the method of the present invention, D-
D-mannose isomerase is added to a sample containing mannose, and the enzyme isomerizes D-mannose to D-fructose. One molecule of D-fructose is produced from one molecule of D-mannose. D-mannose is quantified by measuring the D-fructose thus produced. The first method for measuring D-fructose involves adding D-fructose to D-fructose in the presence of oxidized receptors.
By allowing fructose dehydrogenase to act, 5-keto-lowfructose is produced from D-fructose according to the linear equation. At this time, the oxidized electron acceptor is reduced to produce a reduced electron acceptor.
D−711り)−ス+酸化型電子受容体+還元型電子受
容体 (1)
電子受容体としては、フェナジンメトサルフェート(P
MS) 、 1−メトキシ−5−メチルフェナゾニウム
メチルサルフェート、9−ジメチルアミノベンゾ−α−
フェナゾキソニウムクロライドをはじめ。D-711)-su + oxidized electron acceptor + reduced electron acceptor (1) As the electron acceptor, phenazine methosulfate (P
MS), 1-methoxy-5-methylphenazonium methyl sulfate, 9-dimethylaminobenzo-α-
Including phenazoxonium chloride.
フェリシアン化カリウムなどの化合物も使用される。こ
のような系において5−ケト−ローフルクトースの生成
量、酸化型電子受容体の減少量または還元型電子受容体
の生成量を定量することができる。上記5−ケトーD−
フルクトースの定量法としては、ペーパークロマトグラ
フィーや薄層クロマトグラフィーを用いる方法;5−ケ
トーD−フルクトース還元酵素を用いた酵素法による定
量法などがある。酸化型電子受容体の減少量を測定する
方法としては1例えば酸化型電子受容体としてフェリシ
アン化カリウムを用いる場合にはその吸収(420nm
)の減少の度合を測定する方法などが挙げられる。Compounds such as potassium ferricyanide are also used. In such a system, the amount of 5-keto-lowfructose produced, the amount of decrease in oxidized electron acceptors, or the amount of reduced electron acceptors produced can be quantified. The above 5-keto D-
Methods for quantifying fructose include a method using paper chromatography or thin layer chromatography; and an enzymatic method using 5-keto D-fructose reductase. Methods for measuring the amount of decrease in oxidized electron acceptors include 1. For example, when potassium ferricyanide is used as the oxidized electron acceptor, its absorption (420 nm
), etc. can be used to measure the degree of decrease in
上記還元型電子受容体の生成量を測定する方法としては
、使用する電子受容体の種類によりいくつかの方法が採
用され得る。例えば電子受容体のうちフェナジンメトサ
ルフェート、1−メトキシ−5−メチルフェナゾニウム
メチルサルフェ−1・および9−ジメチルアミノベンゾ
−α−フェナゾキソニウムクロライドは、0□に電子を
供与することが可能であるため、系内のOtと作用して
次式の反応が進行する。As a method for measuring the amount of the reduced electron acceptor produced, several methods can be adopted depending on the type of electron acceptor used. For example, among electron acceptors, phenazine methosulfate, 1-methoxy-5-methylphenazonium methylsulfe-1 and 9-dimethylaminobenzo-α-phenazoxonium chloride donate electrons to 0□. is possible, so the reaction of the following formula proceeds by acting with Ot in the system.
還元型電子受容体+0□
酸化型電子受容体+0□−(2)
このような系においては、0□の減少量もしくはスーパ
ーオキサイドアニオン(Oz−)の生成量を測定するこ
とにより還元型電子受容体、つまり(1)式におけるD
−フルクトースの量が定量される。O2の減少量は例え
ば、酸素!極性により定量され得る。スーパーオキサイ
ドアニオン(O□−)を測定する方法としては、チトク
ロームCの還元量を測定する方法;ルミノールの酸化に
よる化学発光を酸化触媒の非存在下で測定する方法が知
られている。この他にも、上記0□−を含む(2)式の
反応系にさらに還元剤、または還元剤とその補助剤とを
加え、 02−を過酸化水素に変化させ、該過酸化水素
を測定することにより間接的に02−を測定してもよい
。上記Oz−をH2O2に変化させる方法で使用される
還元剤としては金属塩、金属錯体、金属を含む蛋白など
がある。H20□の測定としては、ペルオキシダーゼ系
反応を利用する方法が採用される。Reduced electron acceptor +0□ Oxidized electron acceptor +0□- (2) In such a system, reduced electron acceptor can be determined by measuring the amount of decrease in 0□ or the amount of superoxide anion (Oz-) produced. field, that is, D in equation (1)
- The amount of fructose is determined. The amount of decrease in O2 is, for example, oxygen! It can be quantified by polarity. Known methods for measuring superoxide anion (O□-) include a method of measuring the amount of reduction of cytochrome C; and a method of measuring chemiluminescence due to oxidation of luminol in the absence of an oxidation catalyst. In addition, a reducing agent or a reducing agent and its auxiliary agent are further added to the reaction system of formula (2) containing the above 0□- to convert 02- into hydrogen peroxide, and the hydrogen peroxide is measured. By doing so, 02- may be measured indirectly. Examples of the reducing agent used in the method for converting Oz- into H2O2 include metal salts, metal complexes, and proteins containing metals. For the measurement of H20□, a method using a peroxidase reaction is adopted.
例えば、ペルオキシダーゼ存在下で++20□により色
原体を酸化縮合させて発色させ、その吸光度を測定する
方法(発色法);ペルオキシダーゼ存在下で11□02
によりp−ヒドロキシフェニル酢酸、ホモバニリン酸、
ロイコジクロロフルオレセインなどを酸化縮合させて生
じる螢光を測定する方法(螢光法);ペルオキシダーゼ
存在下で820□によりルミノールやイソルミノールを
酸化させて生じる発光を測定する方法(発光法)などが
挙げられる。For example, in the presence of peroxidase, the chromogen is oxidized and condensed with ++20□ to form a color, and the absorbance is measured (color method); in the presence of peroxidase, 11□02
p-hydroxyphenylacetic acid, homovanillic acid,
Examples include a method of measuring the fluorescence produced by oxidative condensation of leucodichlorofluorescein, etc. (fluorescence method); a method of measuring the luminescence produced by oxidizing luminol or isoluminol with 820□ in the presence of peroxidase (luminescence method). It will be done.
(11式において生成する還元型電子受容体を測定する
別法としては、電子受容体からの電子を還元発色性色素
(ここでは還元されると発色する性質を有する化合物を
指す)に供与し、生成する色素を測定する方法がある。(Another method for measuring the reduced electron acceptor produced in Formula 11 is to donate electrons from the electron acceptor to a reduced color-forming dye (herein refers to a compound that has the property of developing color when reduced), There is a method to measure the pigment produced.
還元型電子受容体+還元発色性色素
酸化型電子受容体十色素 (3)
このように(1)式における5−ケ)−n−フルクトー
スの生成量、還元型電子受容体の生成量(スーパーオキ
サイドアニオンの生成量や上記(3)式の色素の生成量
を包含する)、酸化型電子受容体の減少量または02の
減少量を測定することによりD −フルクトースの量、
つまりD−マンノースの量が測定される。Reduced electron acceptor + reduced chromogenic dye oxidized electron acceptor ten dyes (including the amount of oxide anion produced and the amount of dye of formula (3) above), the amount of D-fructose by measuring the amount of decrease in oxidized electron acceptor or the amount of decrease in 02,
That is, the amount of D-mannose is measured.
D−フルクトースを測定する第2の方法としては、D−
ソルビトールデヒドロゲナーゼを用いる方法が挙げられ
る。この方法によれば、D−マンノースからD−マンノ
ースイソメラーゼにより生成するD−フルクトースは次
式(4)のようにN/IDIIの存在下でD−ソルビト
ールデヒドロゲナーゼと反応させる。A second method for measuring D-fructose is to measure D-fructose.
A method using sorbitol dehydrogenase is mentioned. According to this method, D-fructose produced from D-mannose by D-mannose isomerase is reacted with D-sorbitol dehydrogenase in the presence of N/IDII as shown in the following formula (4).
D−ソルビトール十NAD” (4,)弐(
4)のようにD−フルクトース1分子は還元されてD−
ソルビトール1分子となりNAD)I 1分子からはN
AD’ 1分子が生じる。そのため(4)式の系にお
けるN A D Hの減少量を測定することによりD−
フルクトースが、つまり1間接的にD−マンノースが定
量される。NADllは、それ自身で340nmに吸収
を有するためその吸光度を測定することによりその存在
量を知ることができる。さらにNADllを他の化合物
に変換することにより高感度の測定が可能である。例え
ば、フェナジンメトサルフェート、1−メトキシ−5−
メチルフェナゾニウムサルフェート ジアホラーゼなど
の電子受容体の存在下でテトラゾリウム塩を作用させ、
該テトラゾリウム塩を還元してホルマザン色素に変換し
、このホルマザン色素を測定する方法がある。さらに、
レサズリンによる螢光を測定する方法もある。D-Sorbitol Ten NAD” (4,) 2 (
As shown in 4), one molecule of D-fructose is reduced to D-
One molecule of sorbitol becomes NAD) I One molecule becomes N
One molecule of AD' is produced. Therefore, by measuring the amount of decrease in N A D H in the system of equation (4), D-
Fructose, and thus indirectly D-mannose, is quantified. Since NADll itself has absorption at 340 nm, its abundance can be determined by measuring its absorbance. Furthermore, highly sensitive measurements are possible by converting NADll to other compounds. For example, phenazine methosulfate, 1-methoxy-5-
Methylphenazonium sulfate acts with a tetrazolium salt in the presence of an electron acceptor such as diaphorase,
There is a method in which the tetrazolium salt is reduced and converted into a formazan dye, and this formazan dye is measured. moreover,
Another method is to measure the fluorescence caused by resazurin.
上記D−マンノースをD−フルクト−スに異性化させる
反応系、および生じたD−フルクトースを測定する系の
いずれにおいても、酵素反応は。In both the reaction system for isomerizing D-mannose to D-fructose and the system for measuring the resulting D-fructose, the enzymatic reaction is carried out.
通常、適当な緩衝液中で行われる。反応液のpl+は通
常、4〜10.好ましくは4.5〜6.0の範囲である
。使用される酵素の濃度は特に制限されず2反応条件や
測定時間により適宜設定される。通常。It is usually carried out in a suitable buffer. The pl+ of the reaction solution is usually 4 to 10. Preferably it is in the range of 4.5 to 6.0. The concentration of the enzyme used is not particularly limited and is appropriately set depending on the reaction conditions and measurement time. usually.
D−マンノースイソメラーゼは10〜100OLI/
ml 、 D−フルクトースデヒドロゲナーゼは10
〜100OU/mf。D-mannose isomerase is 10-100 OLI/
ml, D-fructose dehydrogenase is 10
~100OU/mf.
そしてD−ソルビトールデヒドロゲナーゼは10〜10
00U/mff1の割合で反応液中に含有される。電子
受容体の濃度も特に制限はないが、好ましくは0.1m
M以上であり、ジアホラーゼを使用する場合は5通常0
.IU/mf以上である。上記D−ソルビトールデヒド
ロゲナーゼを使用する測定系におけるN A D II
?H度は、該D−ソルビトールデヒドロゲナーゼの反
応が円滑に進行し、かつ全体の酵素反応が阻害されない
濃度であればよく、好ましくは0.1〜1mMである。and D-sorbitol dehydrogenase is 10-10
It is contained in the reaction solution at a rate of 00 U/mff1. The concentration of the electron acceptor is also not particularly limited, but is preferably 0.1 m
M or higher, and when using diaphorase, 5 usually 0
.. IU/mf or more. N A D II in the measurement system using the above D-sorbitol dehydrogenase
? The H degree may be such that the D-sorbitol dehydrogenase reaction proceeds smoothly and the overall enzymatic reaction is not inhibited, and is preferably 0.1 to 1 mM.
反応温度も特に制限されないが1通常20〜40℃の範
囲である。上記D−マンノースをD−フルクトースに異
性化させる反応、D−フルクトースをD−フルクトース
デヒドロゲナーゼにより5−ケト−0−フルクトースに
変換する反応などの酵素反応およびさらに色素の生成に
導く発色反応は1同一の反応系で同時に行われてもよい
。The reaction temperature is also not particularly limited, but is usually in the range of 20 to 40°C. The enzymatic reactions such as the isomerization of D-mannose to D-fructose, the reaction of converting D-fructose to 5-keto-0-fructose by D-fructose dehydrogenase, and the coloring reaction that leads to the production of pigments are the same. may be carried out simultaneously in two reaction systems.
このように、従来4種類の酵素を用いて定量していたD
−マンノースが1本発明によれば、 D −マンノー
スをD−フルクトースに異性化させることにより容易に
定量され得る。D−フルクトースの定量のための酵素を
含めて2種(p−マンノースイソメラーゼおよびD−フ
ルクトースデヒドロゲナーゼ;またはD−マンノースイ
ソメラーゼおよびD−ソルビト−ルデヒドロゲナーゼ)
の酵素の使用によりD−マンノースが定量可能である。In this way, D
According to the present invention, D-mannose can be easily quantified by isomerizing D-mannose to D-fructose. Two types including enzymes for quantifying D-fructose (p-mannose isomerase and D-fructose dehydrogenase; or D-mannose isomerase and D-sorbitol dehydrogenase)
D-mannose can be quantified using the following enzyme.
その精度は高く、かつ操作法が簡単であることから各種
臨床検査に好適に利用され得る。It has high accuracy and is easy to operate, so it can be suitably used in various clinical tests.
(実施例) 以下に本発明を実施例を用いて説明する。(Example) The present invention will be explained below using examples.
D −マンノースイソメラーゼ (1000/ml)
0.1 mlD −フルクト−ステ
ヒトUケナーゼ(5001J/mff1)
0.1−フェリシアン化カリウム?g’lfl (
O,1M) 0.1mlmツマ
)パイン 緩得j液 (pH5,0)
’ 0.5ml上記組成の反応液を35℃で予
備加熱した後、D−マンノース溶液(濃度を1〜10■
/aの範囲で変化させる) 0.2mlを加え、同温
度で反応を行った。D-mannose isomerase (1000/ml)
0.1 ml D-fructo-stecht U kenase (5001J/mff1)
0.1-Potassium ferricyanide? g'lfl (
O, 1M) 0.1mlm) Pine mild liquid (pH 5,0)
' After preheating 0.5 ml of the reaction solution with the above composition at 35°C, add a D-mannose solution (with a concentration of 1 to 10 cm).
0.2 ml was added and the reaction was carried out at the same temperature.
20分後にFew(SOn)s ・デュバノール液を
9 、5 mll加えて酵素反応を止め、20分間静置
後3 、5 mlの蒸留水を加えて、 660nmの吸
光度を分光光度計で測定した。D−マンノース濃度とO
D値(ブランクをさし引いた値;Δ00660で示す)
との関係を第1図に示す。第1図からD−マンノース溶
液濃度が10■/d!までD−マンノース濃度とOD値
とは直線的な関係となり、D−マンノースが定量可能で
あることがわかる。After 20 minutes, 9.5 ml of Few(SOn)s Duvanol solution was added to stop the enzyme reaction, and after standing for 20 minutes, 3.5 ml of distilled water was added and the absorbance at 660 nm was measured using a spectrophotometer. D-mannose concentration and O
D value (value after subtracting the blank; shown as Δ00660)
Figure 1 shows the relationship between From Figure 1, the concentration of D-mannose solution is 10μ/d! It can be seen that there is a linear relationship between the D-mannose concentration and the OD value up to this point, and that D-mannose can be quantified.
(発明の効果)
本発明によれば、D−マンノースを煩雑な操作を必要と
せず、かつ高精度で定量する方法が提供される。特殊な
技術や設備2機器を必要としないため一般の臨床検査に
利用され得、特に深部真菌症の診断や治療におおいに貢
献し得る。(Effects of the Invention) According to the present invention, a method for quantifying D-mannose with high accuracy without requiring complicated operations is provided. Since it does not require special techniques or equipment, it can be used in general clinical tests, and can particularly contribute to the diagnosis and treatment of deep mycoses.
−L−回訓91戸〔むW班
第1図は本発明方法に゛よりD−マンノースの定量を行
うときのD−マンノース濃度と吸光度との関係を示すグ
ラフである。-L- Training 91 households [W group] Figure 1 is a graph showing the relationship between D-mannose concentration and absorbance when D-mannose is determined by the method of the present invention.
以上that's all
Claims (1)
ラーゼを作用させ、生成するD−フルクトースを測定す
ることを特徴とするD−マンノースの定量法。 2、生成するD−フルクトースにD−フルクトースデヒ
ドロゲナーゼおよび酸化型電子受容体を、酸素の存在下
で作用させ、該反応における5−ケト−D−フルクトー
スの生成量、還元型電子受容体の生成量、スーパーオキ
サイドアニオン(O_2^−)の生成量、該酸化型電子
受容体の減少量、または該酸素の減少量を測定すること
を特徴とする特許請求の範囲第1項に記載のD−マンノ
ースの定量法。 3、生成するD−フルクトースにNADHの存在下で、
D−ソルビトールデヒドロゲナーゼを作用させ、反応系
内の該NADHの減少量を測定することを特徴とする特
許請求の範囲第1項に記載のD−マンノースの定量法。[Scope of Claims] 1. A method for quantifying D-mannose, which comprises allowing D-mannose isomerase to act on a sample containing D-mannose and measuring the produced D-fructose. 2. Let D-fructose dehydrogenase and an oxidized electron acceptor act on the generated D-fructose in the presence of oxygen, and determine the amount of 5-keto-D-fructose produced and the amount of reduced electron acceptor produced in this reaction. , the amount of superoxide anion (O_2^-) produced, the amount of decrease in the oxidized electron acceptor, or the amount of decrease in oxygen is measured. quantitative method. 3. In the presence of NADH to the generated D-fructose,
2. The method for quantifying D-mannose according to claim 1, which comprises activating D-sorbitol dehydrogenase and measuring the amount of decrease in NADH in the reaction system.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP8227887A JPS63248397A (en) | 1987-04-02 | 1987-04-02 | Method for determining d-mannose |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP8227887A JPS63248397A (en) | 1987-04-02 | 1987-04-02 | Method for determining d-mannose |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63248397A true JPS63248397A (en) | 1988-10-14 |
Family
ID=13770035
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP8227887A Pending JPS63248397A (en) | 1987-04-02 | 1987-04-02 | Method for determining d-mannose |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63248397A (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002119298A (en) * | 2000-10-16 | 2002-04-23 | Toyobo Co Ltd | Method for assaying inulin |
US6541215B1 (en) | 1999-11-10 | 2003-04-01 | Daiichi Pure Chemicals Co., Ltd. | Quantitative determination method of mannose and reagent therefor |
US7198905B2 (en) * | 2001-03-15 | 2007-04-03 | Daiichi Pure Chemicals Co., Ltd. | Method of screening methods prediabetic state and screening reagent |
WO2018056431A1 (en) * | 2016-09-26 | 2018-03-29 | 池田食研株式会社 | Method for measuring l-kynurenine and measurement kit |
-
1987
- 1987-04-02 JP JP8227887A patent/JPS63248397A/en active Pending
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