JPS6284006A - 有用植物の保護方法、有用植物の種子及び該種子に保護被膜を形成する方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、土壌（ｓｏｉｌ−ｂｏｒｎｅ　）並びに種子
（ｓｅｅｄ−ｂｏｒｎｅ　）微生物によって引き起こさ
れる病気から、有用植物１％に砂糖大根及び綿花植物を
保護する方法に関する。該方法は菌類胞子。

とりわけケトミウム属グロボサム（ｃｈａｅ　ｔｏｍｉ
　ｕｍｇｌｏｂｏｓｕｍ　）　、菌糸体、バクテリアも
しくはそれらの培養抽出物の有効量を含む保護被膜を有
する種子を提供することよりなるものである。本発明は
また、ケトミウム属グロボサム嚢胞子で被覆された種子
、並びにそれらの生産方法にも関する。

本発明において種子とは、特に繁殖のために必要な植物
部分１例えば、穀粒１種子、塊茎。

さし木及び苗条として理解すべきである。

発芽した小さい植物体は、しばしば土壌の病原性微生物
によって攻撃されるので、該植物は朽ちたシまた枯れる
原因となシ、それによって農業（ばひどい損害を被る。

そのような病原体は通常化学殺菌剤で防除される。

病原体による攻撃に対して植物を保護するために微生物
自体を用いる試みもまた行なわれている。そういった試
み自体は、興味深いけれども、工業的に製造された殺菌
剤は、更に効果的で、取少扱いがよシ容易であるので、
適する方法は実際の施行において受諾されるのは不可能
であった。

本発明は、生体外で及び補場試験において。

有用植物、とりわけ砂糖大根及び綿花をケトミウム属グ
ロボサムの元胞子を含有する被膜で種子金粉衣すること
によシ商業的に入手しうる殺菌剤で被覆した種子の保護
作用と同等ないしより優る保護作用をうろことが可能で
あるという驚くべき観察に基づいている。用いられる胞
子は、培養することが簡単で、その胞子で被覆された種
子よりも乾きにくい。胞子は、簡単な方法で種子粉衣と
混合できる。それらはまた、どんな化学殺菌剤よ勺も取
扱いが容易である。胞子は、簡単な装置及びわずかな労
力で培養し、収穫することができる。

砂糖大根（ペタ　ブルガリス（Ｂｅｔａ　ｖｕＪｇａｒ
ｉｓ）　）は、土壌中で微生物種、最も重要なのは、例
えばフイチウム　ウルチ−＋ｒ　Ａ　（ＰｙｔｈｉＩｆ
ｒｌｕｌｔｉｍｕｍ　）、リゾクトニア　ソラニ（几ｈ
ｉｚｏｃｔｏｎｉａ　５ｏｌａｎｉ八ア７アノマイセス
　コクリオイデス（Ａｐｈａｎｏ−ｍｙｃｅｓ　ｃｏｃ
ｈｌｉｏｉｄｅｓ　）　、フォツ　　ベタｚ（Ｐｈｏｍ
ａｂｅｔａｅ　）　、　７ナリウム′ｓｉ（Ｆｕｓａｒ
ｉｕｍ　ｓｐ、　）並びにボトリティス種（Ｂｏｔｒｙ
ｔｉｓ　ｓｐ、　）のような病原性菌類によって攻撃さ
れる。これらの病原体は、根や茎の組織に感染し、その
結果植物を破壊し、最終的に枯らす。

砂糖大根の種子は、お互いにからみがちである平らな五
角形の星形をなしている０手間のかからない機械の播種
のために１種は種商人によって被覆され、ベレットにさ
れる■種子被覆は。

通常化学殺菌剤もしくは殺菌剤混合物を含有するＯ 綿花植物（ゴシピウム　ヒルストクム（Ｇｏｓｓｙ−ｐ
ｉ　ｕｍ　ｈｉｒｓ　ｔｕｒｎ　）　）は、チェラビオ
プシス　バシコラ（Ｔｈｉｅｌａｖｉｏｐｓｉｓ　ｂａ
ｓｉｃｏｌａ　）及びフサリウＡ　（Ｆｕｓａｒｉｕｍ
　ｓｐｐ、　）といっしょに菌類ピテクムウルチアム（
Ｐｙｔｈｉｕｍ　ｕｌｔｉｍｕｍ　）及びリゾクトニア
　ソラニ（几ｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ　５ｏｌａｎｉ　）
によって。

同様に感染させられる。これらは通常、病気として農薬
で集中的に処理される広範囲の作物であり、そして、損
失作物は、他の作物の収穫によって償うことのできない
財政上の損失を生じる。殺菌剤での作物及び／もしくは
種子の処理は、綿花の成長において通常行われることで
ある。

ケトミウム属グロボサムは、アスコマイセス網の菌類に
属する。これはケトミウム属の最も広範囲にわたる種で
ある。菌類は、土壌中で、並びに特に異なった植物の根
の領域に見られる。

セルロース腐生菌は、植物残留物上に見られる。

セルロース及び他の多糖類を退化させるための能力は、
研究されているが、技術的に役に立ってはいない。

植物病原体を防除するためにケトミウム属グロボサムを
使用することは、他の文献に記述されている０すなわち
、例えばトペイト及びウッド（Ｔｖｅｉｔ　ａｎｄ　Ｗ
ｏｏｄ　）は、　Ａｎｎ、　ａｐｐｌｎ、Ｂｉｏｌ　。

４３．５３８−５５２（１９５５）にカラスムギにおけ
る病原菌フサリウム　ニーパル（Ｆｕｓａｒｉｕｍｎｉ
ｖａｌｅ）の防除を記述している０；フサリウムロセク
ム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ　ｒｏｓｅｕｍ　）によって生じ
るトウモロコシの根の感染の防除は、チャン及びコメダ
ーＡ／　（Ｃｈａｎｇ　ａｎｄ　Ｋｏｍｍｅｄａｈｌ　
）によってフィトパソロジ４−　（Ｐｈｙｔｏｐａｔｈ
ｏｌｏｇｙ　）　５８　。

１３９５−１４０１（１９６８）に、及びコメダール及
びミュー　（Ｋｏｒｒｍｅｄａｈｌ　ａｎｄ　Ｍｅｗ　
）によってフィトパソロジ４−　（Ｐｈｙｔｏｐａｔｈ
ｏｌｏｇｙ）　６５．２９６−５００（１９７５）に記
述されている。最後に、ヘイとアンドクルーズ（Ｈｅｙ
ｅ　ａｎｄ　Ａｎｄｒｅｗｓ）はフィトバソロジイ−７
３，６５０−６５４（１９８３）でベントクリア　イネ
クアリス（Ｖｅｎｔｕｒｉａｉｎａｅｑｕａｌｉｓ　）
によって引き起こされたリンゴ斑点病（ａｐｐｌｅ　５
ｃａｂ　）の防除を記述している。

砂糖大根及び綿花の種子を保護するためにケトミウム属
グロボサムを用いて成功したことは。

新規なことである。

ケトミウム属グロポサムは、中性から酸性のｐｉ−１の
範囲で微量元素を含有する麦芽もしくはセルロース含有
培養媒体中、室温でさえ、容易に培養しうる〇 菌糸体は固体培地に粘着する組織マットとして、素早く
形成するかまたはもし菌糸体が、培地上に存在するろ紙
上で培養される場合には戸紙培地に付着する。嚢胞子を
含有するペリテシア（ｐｅｒｉ　ｔｈｅｃｉａ　）は、
その後菌糸上に形成し、そして、基体を黒色にする０ベ
リテシア（ｐｅｒｉｔｈｅｃｉａ　）をもたない菌糸体
は液体振とう培養で形成する。ろ紙培地上でのベリテシ
ア（ｐｅｒｉｔｈｅｃｉａ　）はろ紙をこすり落すこと
によシ単離し、その後乾燥させてそれを粉砕加工するこ
とによシ主に遊離嚢胞子並びに菌糸体及びベリテシア（
ｐｅｒｉｔｈｅｃｉａ　）断片からなる粉体にする・液
体培養中で菌糸体は培地をろ過することにより単離され
、該単離物は、その後高速ロータリープロペラ−ミル中
で粉細される。

その結果生じた嚢胞子及び菌糸の一片からなる粉体は、
安定であシ、そして温度範囲１０℃ないし３０℃、相対
湿度２０ないし６０チで貯蔵できる０胞子が湿気のある
土壌及び／もしくは栄養のある培地と接触するとき、相
当な期間貯蔵されている胞子でさえ、数時間で発芽する
。

有用植物の種子は、乾燥できる液体被覆物質で公知の方
法によシ湿らせる・その後、種子を乾燥させている間、
まだ粘着性であるときに、例えば表面に塗布するべき粉
体層上に該種子を振るかもしくはころがすことにより嚢
胞子粉体に接触させ、最後にはその被膜が完全に乾燥す
るまで乾燥させる・ 種子粉衣のための被覆組成物は、適当な溶液である。こ
れらの溶液は、水もしくは有機溶媒を含有してもよく、
並びに保護被膜を形成する物質は、有機もしくは無機溶
媒であってよい〇典型的なそのような溶液の例ヲ埜げる
０　：遊離インシアネート末端基金含有するポリウレタ
ンプレポリマー　１８部（Ａ、Ｗ、２３０９ｊ。

Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇ　Ｐｌａｔｅ　Ｇｌａｓｓ　Ｃｏ、
）ポリケチミン　９部（Ａ、Ｗ、　２５０９２．　Ｐ　
ｉｔ　ｔｓｂｕｒｇＰｌａｔｅ　Ｇｌａｓｓ　Ｃｏ、） アセトン　７３部 高分子ポリビニルアセテートホモポリマー（Ｓ−６９５
０、Ｈ，Ｂ、Ｆｕｌｌｅｒ　Ｃｏ、）　５０部水　　　
　２０部 メチルセルロース　１−２部 水　　　２００部 キサ／タン　１−２部 水　　　　１００　部 アラビアゴム　１５−３０部 水　　　１００部 粘土粒子、アルギネート（ａｌｇｉｎａｔｅ　）及び更
に配合基材を含有する被覆組成物もまた使用される〇 種子は、該溶液で湿らすかまたは噴霧され。

その、後、ふるい上で空気流中もしくは流動床ドライヤ
ー中で乾燥させ、そして、嚢胞子粉体全まだ粘性である
間にふシかける。それぞれの植物に適用される胞子の数
は、十分な効果を得るためには、１．５Ｘ１０Ｓないし
６×１０５であるべきである。胞子の密度は、水中にい
くつかの種子を溶解させ、そして比色計または血球針で
懸濁液を分析することにより測定される。

胞子で被覆された種子は、真に未処理種子と同様に貯蔵
できる。発芽の間、該種子は、土壌病原体によって引き
起こされる感染に対して保護されている。

ケトミウム属グロボサムの培養及びその嚢胞子の収穫は
、きわめて簡単で、専門器具を使わずに小規模でさえも
効果をあげることができるＯひとつの理由もしくは別の
理由で化学殺菌剤を使用せずに行なうときは、このこと
はと９わけ興味深いことであり得る。

ケトミウム属グロボサムは、該セルロースもしくはポリ
サッカライドのどこでも、事実上生育し、湿気はそれに
役立つことができるＯ培養することは、異なった培地中
、１０°−３０℃の温度範囲で可能であった。液体及び
固形培地の例を挙げる。　＝ 麦芽抽出物（Ｏｘｏｉｄ　）　（ｐＨ５，３に調整）２
部水　　１００部 （４日間、２４℃で低速で攪拌して培養する０）グルコ
ース　１部 イースト抽出物（Ｄｉｒｃｏ）　　　０．３部寒天（Ｓ
ｉｇｆｒｉｅｄ）　　２部 水　　１００部 セｙｖ　ｏ　−ス（Ｍｅｒｃｋ　、微小結晶）　１部寒
天　２部 イースト抽出物（１）ｉｆｃｏ）　　　α５部水　　１
００部 ＫＨ２ＰＯ４（Ｃｚａｐｅｌ　−Ｄｏｘ　）　　　１　
９ＭｇＳＯ４［１５？ ＫＣｌ　　　　　　α５２ ＮａＮＯ３２ｙ ＦｅＳＯ４α　１２ グルコース　　２０２ イースト抽出物　１１Ｆ 麦芽抽出物（とうもろこし浸漬液）　　１２２水で１６
に調整する ベリテシア（Ｐｅｒｉ　ｔｈｅｃｉａ　）で密集してい
る菌糸体は、４−６週間後、培地から静かに移すかまた
は単離し、そして乾燥させるＯ 嚢胞子培養物は壕だ、培養希薄液中で、’１ｍｌ当り１
０４−１０’の胞子を含有する懸濁液にろ紙を浸し、そ
の後、ベトリ皿中温度範囲１０°−２５℃、高相対湿度
で培養することによって得られる。約４週間後、ろ紙を
乾燥させて、菌類バイオマスは、スパチユラでこすシ落
すことができる。

本発明を、以下に示す非限定的な実施例によシ説明する
。

実施例１： 子培養 セルロース源としてそれぞれろ紙を添加したペトリ皿を
、麦芽（２％）−寒天（２ｅｓ）からなる栄養溶液で半
分溝たす０その後栄養溶液にケトミニラム属グロボサム
で感染した土壌の懸濁液２〜３滴を接種する＠ペトリ皿
は２２℃の気候室に放置しておく◎菌糸体は培養地上に
形成し、約１０口径菌糸体上に黒い点として目に見える
ベリテシア（ｐｅｒｉｔｈｅｃｉａ　）　ｆ形成する０
４週間後、いくつかのベリテシアを、培養地から除去し
、１−当シ１０４−１０’　嚢胞子を含有する懸濁液に
加工される。その後、Ｆ紙をこの懸濁液中に浸漬し、ベ
トリ皿中の麦芽抽出物栄養培地におき、気候室中２２℃
で４−６週間培養する。ろ紙は、この間に菌糸体及びペ
リテシアで一面いっばいになる。該ろ紙を乾燥し、並び
に菌糸体及び胞子をスバチーラでかきおとし。

菌類バイオマスを砕くかまたはミキサー中。

５００ｒｐｍで粉砕すると、Ｗｉ子被被膜適している胞
子及び菌糸の断片からなる黒色粉体を得る。

直径ａ７αの円形ろ紙は＄　　１０’−１０’簸胞子及
び菌糸の断片からなる平均して１２０ｑの粉体を生じる
。

実施例２： 粘着性溶液は１次のものから製造される。

メチルセルロース　　α５部　　　１部アラビアゴム　
　　１５０部　　３０部水で１００容量部に調整。

これらの溶液はオートクレーブ中、１２０’Ｃで２０分
間殺菌され、その後砂糖大根種子を含む流動床ドライヤ
ーの空気流中の噴出口を通して吹きつけるＯ　ＣＬ７ｍ
の溶液を五２ｆの種子（ｃ。

種子２６０個］に吹きっける０その後、べとつく被膜を
備えた種子ｔ−嚢胞子粉体と一緒に振りまぜ、ふるいに
かけてふるｈの上で乾燥させる・それぞれの種子は、１
５０，０００ないし６００，０００の胞子で被覆される
０測定は、水１〇−中に１０個の種子を懸濁させること
によシ行ない、血球針でそこに含有される胞子の数の懸
濁から決定する。

実施例３ニ トリ皿中の嚢胞子粉体上にころがし、並びにふるいの上
で乾燥させる。

２５０−エルレンマイヤーフラスコｔ２％麦芽抽出液（
Ｏｘｏｉｄ　）　１５０−で満たし、この栄養溶液に、
１−当Ｉ）１０８嚢胞子を含有する胞子懸濁液１−で接
種する０培養は、２４℃で４日間行なう◎ その後、１０−の油状培養液を取シ除き、砂糖大根の種
子１．６ｆをそこに加える０種子及び液を室温で１０分
間混合し、その後ふるい上で種子の液を滴下させる０処
理した種子は、まだ湿っている間に播く。

実施例５： 砂糖大根の種子五２ｆをＰＨ５，４の［１Ｌ５６モルの
シェラ酸溶液２〇−中のリン酸鉄１５６　ｔのろ過溶液
中で、室温で２０分間攪拌する０該種子をふるい上に注
ぎ、空気流で乾燥させる。乾燥後１種子を実施例２で記
述したように嚢胞子で被覆する。

実施例６： 化学殺菌剤を有する被覆種子 ４，７．７α−テトラヒドロ−２〔（トリクロロメチル
フチオフ−１Ｈ−イノインドール−１、５（２Ｈ）−ジ
オｙ　（Ｃａｐｔａｎ、　（１２％オルトシト５ｏ中に
溶解して製造する。　Ｓｉｅｇｆｒｉｅｄ社製）のα１
チ溶液２〇−中、室温で２０分間攪拌する。その後、ふ
るい上に該種子を集めて、空気流中で乾燥させる。

実施例７： 哲一 種子被膜中に封入されて貯蔵した胞子の発芽能力を、新
しく収穫した胞子能力と比較した。

培地から新しく収穫された胞子と１００−３０℃及び相
対湿度２０−６０％で１ないし１５力月間貯蔵されたサ
ンプルの胞子を、寒天板上に置き。

発芽能力を気候室で２２℃において検査する。

発芽した種子を保護しうろことのできる７時間以内に試
験したほとんど全ての胞子が発芽したＯ 実施例８： 未処理並びに化学的に処理した砂糖大根及び綿花種子を
、ペトリ皿の湿ったろ紙の厚い層上にまく（ペトリ皿１
枚につき種子１０個）０その後、ベトリ皿を気候室に置
き、観察を続ける。

発芽に対する基準は、根の形成にある。

砂糖大根の種子は、日中２０℃で１２時間放置し、暗所
で１４℃、相対湿度８０−９０　％で１２時間放置する
。未処理種子の発芽は、３日から８日の間で７５％、２
０日目では９０係まで達する０処理した種子は、６日後
に発芽しはじめ。

同様に２０日までに発芽が８５％までに達する。

綿花種子は１日中２５℃で１４時間放置し、暗所で２０
℃で１０時間放置する０未処理種子の発芽は、２日から
８日の間にほぼ１００％である。処理した種子の発芽は
９０％以上である。

実施例９： 町 未処理の砂糖大根の種子及び実施例２で記述したような
嚢胞子で被覆した種子を１１０Ｘ１２ＸｔＳＩのグラス
チック皿に播き、土で埋める◇それぞれの皿に２０個の
種子をまくのに、土壌中に、個々に９鰭の空洞をつくる
。該土壌は消毒（１００℃）した土壌で、土壌にはビチ
ウムウルチアＡ　（Ｐｙｔｈｉｕｍ　ｕｌ　ｔｉｍｕｍ
　）及びリゾクトニア　ンラニ（几ｈｉｚｏｃｔｏｎｉ
ａ　５ｏｌａｎｉ）を接極する。その後、稲子皿は、気
候室に日中、２０’Ｃで１２時間放置し、暗所で１４℃
、相対湿度８゜−９０チで１２時間放置する＠感染した
土壌で満たした種子皿は播種３日前に、気候室中で調整
する。それぞれ１００個の種子を含有する５枚の皿は、
評価ごとに用いられる。該皿は、毎日観察を続け、死滅
した植物を除去し、病原体の真菌学研究のために用いら
れる。

評価は、播種後３Ｊｆ４間で終らせ、植物体の数と状態
を測定する〇 結果を以下に示す。

残存植物 種　　　子　　　　　消毒した土壌　　　接　椎　体未
処理　　　　　　　　　７９ｑＩ０１８％　　　７４評
価 １０Ｘ１２Ｘ４．５ｃ！ｎのプラスチック皿を土壌で満
タシ、ヒｆｆｙムウルｆ−ｑｈ　（Ｐｙｔｈｉｕｍ　ｕ
ｌｔｉ　−ｍｕｍ　）及びリゾクトニア　ンラニ（Ｒｈ
１ｚｏｃｔｏｎｉａｓｏｌａｎｉ　）を接種し、相対湿
度８０−９０％で気候室中に３日間放置し、日中２６℃
で１６時間並びに暗所中２０℃で８時間放置するＯその
後、それぞれの皿の土壌に作った１５■の空洞に９個の
綿花種子を播く０１０枚の皿もしくは９０個の種子は、
それぞれの評価分析に用いられる。

該皿は、規則的に観察を続け、死滅した植物は取シ除い
て病原体の真菌学研究に用いられるＯ評価分析は３週間
後に終わらせ、発芽した植物体の数及び状態（チ）全測
定するＯ 残存植物 種子　　消毒し辷壌　接種体 未処理　　　　　　　　７６チ　　１６チ　　２０チ作
用 異種の粘着溶液を用いて、実施例２の方法に従い砂糖大
根の種子を被覆し１次いで、鍾胞子の粉体で被覆する０
該種子は、未処理種子及びカプタン（Ｃａｐｔａｎ　）
　（実施例６参照）で処理した種子と比較する・ 種子皿は、ピチウム　ウルチマムで自然に感染した土壌
で満たす・その後、２０個の砂糖大根をそれぞれの種子
皿に９ｍの深さに播き、該皿は、気候室で同様の状態に
置き、規則的に水をまく。種子の発芽を観測し、死滅し
た植物は取シ除く。保護被覆の活性は、残存植物の数を
数えることにより、播種後２８日目に評価する０種子被
覆　　　　　　　　　　消毒した土壌中　ピチウムウル
チマムで感染した土壌 なし　　　　　　　　　　　　９１％　　　　　　５１
チなし　　　　　　　　　　　　９％ 同様の評価を、ピチウム　ウルチマムを接種した土壌で
実施する０種子は処理せず、実施例２に従ったケトニウ
ム属グロボサムの嚢胞子１．５Ｘ１０５，１７ン酸鉄及
び実施例５に従った嚢胞子または実施例６に従ったカプ
タン（Ｃａｐｔａｎ　）を被覆する。

を接種した土壌 なし　　　　　　　　　　８６チ　　　　　　９％カプ
タンα１チ　　　　　　　　　　　　　　　　　８８係
砂糖大根をスイス国、コールセレスの啼場に種まき機で
４月に播種した０該植物は、３５日後に測定し、評価し
た。それぞれの種子被覆は。

６試験プロツト中の１２ｍの列の１本で試験した。

プロットは、生物学的にしらべ、以下に示す病原性微生
物が観察された。：アファノマイセテス　コクリオイデ
ス（Ａｐｈａｎｏｍｙｃｅ　ｔｅｓ　ｃｏｃｈｌ　ｉ　
−ｏｉｄｅｓ　、　）　＊リゾクトニア（几ｈｉｚｏｃ
ｔｏｎｉａ　ｓｐｐ、ン、７サリウ、１４　（Ｆｕｓａ
ｒｉｕｍ　ｓｐｐ　、　）、ピチウム　デノ（リナム（
Ｐｙｔｈｉｕｍ　ｄｅｂａｒｙｎｕｍ）未処理種子及び
実施例２によりケトミウム属つルチウムの胞子で被覆し
た種子もしくはチラーム（Ｔｈｉｒａｍ）　　（ＴＭＴ
Ｄ）で工業的に被覆した種子が試験に用いられた０残存
植物は、３５日後側定した〇 種子被覆　　　　　　残存植物 なし　　　　　　　　　　　　　　　４２憾　　　５５
チ１．５Ｘ１０Ｓ嚢胞子と実施例２の手順　　　６４チ
　　　　６１優工業的な殺菌剤なし　　　　　　　　　
　３２４　　　　３７チ＊チラーム（Ｔｈｉｒａｍ）も
しくはＴＭＴＤとは。

テトラメチルチウラム　ジスルフィド（ＣＨｓ　）２　
Ｎ−Ｃ８−８−８−Ｃ８−Ｎ（ＣＨ３）、、ＩＧ　Ｂａ
ｙｅｒ社製。処理した種子は、ドイツ国アインペック（
Ｅ　１ｎｂｅｃｋ　）社規、クライングアンンレベナー
　ザーツッ７ト（Ｋｌｅｉｎｗａｎｚｌｅｂｅｎｅｒ　
５ａａｔｚｕｃｈｔ）から得られる。

特　許　出　願　人　チバーガイギー アクチェンゲゼルシャフト

Claims (16)

【特許請求の範囲】
1. （１）菌類もしくはバクテリアの培養抽出物の有効量を
   含有する保護被膜を有する有用植物の種子を供給するこ
   とからなる、土壌（ｓｏｉｌ−ｂｏｒｎｅ）及び種子（
   ｓｅｅｄ−ｂｏｒｎｅ）微生物によつて引き起こされる
   病気に対して有用植物を保護する方法。
2. （２）土壌微生物によって引き起こされる病気に対して
   有用植物を保護することよりなる特許請求の範囲第１項
   記載の方法。
3. （３）ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）の
   嚢胞子を含有する保護被膜を有する有用植物の種子を供
   給することよりなる、土壌（ｓｏｉｌ−ｂｏｒｎｅ）及
   び種子（ｓｅｅｄ−ｂｏｒｎｅ）微生物によつて引き起
   こされる病気に対して有用植物を保護する特許請求の範
   囲第１項記載の方法。
4. （４）ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）の
   嚢胞子を含有する保護被膜を有する砂糖大根の種子を供
   給することよりなる菌性の病気から該植物を保護する特
   許請求の範囲第１項記載の方法。
5. （５）ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）の
   嚢胞子を含有する保護被膜を有する綿花種子を処理する
   ことよりなる菌性の病気から該植物を保護する特許請求
   の範囲第１項記載の方法。
6. （６）保護被膜が１０＾４−６×１０＾５の嚢胞子の有
   効量を含有する特許請求の範囲第１項記載の方法。
7. （７）ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）の
   嚢胞子の有効量を含有する保護被膜を有してなる有用植
   物の種子。
8. （８）ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）の
   嚢胞子の有効量を含有する保護被膜を有してなる特許請
   求の範囲第７項記載の砂糖大根の種子。
9. （９）ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）の
   嚢胞子の有効量を含有する保護被膜を有してなる特許請
   求の範囲第７項記載の綿花の種子。
10. （１０）１０＾４−６×１０＾５の嚢胞子を含有する保
    護被膜を有してなる特許請求の範囲第７項記載の種子。
11. （１１）ａ）乾燥しうる液体の有機もしくは無機溶液で
    種子を湿らせ、 ｂ）該種子を乾燥させ、 ｃ）完全に乾燥する前、まだ粘着性である ときに、ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏｓｕｍ）
    の嚢胞子からなる粉体と種子を混合し、そして、 ｄ）被覆した種子を完全に乾燥させること からなる、ケトミウム属グロボサム（ｇｌｏｂｏ−ｓｕ
    ｍ）の嚢胞子を含有する被膜を有用植物の種子に形成す
    る方法。
12. （１２）種子が砂糖大根の種子である特許請求の範囲第
    １１項記載の方法。
13. （１３）種子が綿花の種子である特許請求の範囲第１１
    項記載の方法。
14. （１４）乾燥しうる溶液が、水、メチルセルロース及び
    アラビアゴムを含有する特許請求の範囲第１１項記載の
    方法。
15. （１５）乾燥しうる溶液が、水及びリン酸鉄を含有する
    特許請求の範囲第１１項記載の方法。
16. （１６）乾燥しうる溶液が、水、粘土粒子、アルギネー
    ト（ａｌｇｉｎａｔｅ）及び他の配合物質を含有する特
    許請求の範囲第１１項記載の方法。