JPS6251598B2 - - Google Patents

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JPS6251598B2
JPS6251598B2 JP55055106A JP5510680A JPS6251598B2 JP S6251598 B2 JPS6251598 B2 JP S6251598B2 JP 55055106 A JP55055106 A JP 55055106A JP 5510680 A JP5510680 A JP 5510680A JP S6251598 B2 JPS6251598 B2 JP S6251598B2
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JP
Japan
Prior art keywords
coenzyme
per
culture
bacterial cells
medium
Prior art date
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Application number
JP55055106A
Other languages
Japanese (ja)
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JPS56151493A (en
Inventor
Tomohisa Nagasaki
Yohei Natori
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Nisshin Seifun Group Inc
Original Assignee
Nisshin Seifun Group Inc
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Publication date
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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は補酵素Q10の製造法に関する。さらに
詳しくは本発明はシユードモナス属に属する補酵
素Q10生産性微生物をトマトまたはニンジンの破
砕物もしくはそれらの水溶性画分を添加した培地
に培養して補酵素Q10を生成せしめそしてこれを
採取することよりなる補酵素Q10の製造法に関す
る。 補酵素Q10は下記の構造式で示される化合物で
あり、生体内では電子伝早系の一要素として極め
て重要な役割を果している。 本物質が各種疾病に対して優れた薬理作用およ
び生理作用を示すことはすでに明らかとされてい
る。しかしながらこれを動物の心臓筋肉等から抽
出することは原料が高価なうえに大規膜生産が困
難であり、また合成法によつてもその収率はその
複雑な操作からみて必ずしも満足できるものでは
ない。この点微生物を用いる補酵素Q10の製造は
その比較的簡単な工程の故に経済的方法たりうる
ものである。 醗酵法についても従来ロードトルラ、スポロボ
ロマイセス、カンデイダ、トルロプシスに属する
酵母、ノイロスポラ、アスペルギルスに属する糸
状菌、シユードモナス、アグロバクテリウム、ロ
ードスピリラム、ロードシユードモナスに層する
細菌に補酵素Q10が含有されることが知られてい
るが、その生成量は極めて低く、およそ工業的規
模で補酵素Q10を生産するにはほど遠い。 本発明者等はシユードモナス属に属する細菌を
用いる培養の場合に単位菌体当りの補酵素Q10
含量を著しく増大させうる化合物について種種検
討を重ねた結果、トマトまたはニンジン破砕物も
しくはその水溶性画分を生育培地に添加すると単
位菌体あたりの補酵素Q10含量を著しく増大させ
うることを見出して本発明を完成した。本発明に
使用する微生物は、シユードモナス属に属する補
酵素Q10生産能を有する細菌であるが、特にシユ
ードモナスN842(微工研菌寄第3154号、特願昭
50−122452号参照)またはそれより得られた変異
株シユードモナスN842−M16(微工研菌寄第
3155号、特願昭50−122453号参照)またはシユー
ドモナスC1−36(微工研菌寄第5209号、特願昭
54−124727号参照)などは補酵素Q10を高収率で
生産するので好ましい。 本発明における培養培地は特に制限はなく、た
とえば炭素源としてはグルコース等の含水炭素、
クエン酸等の有機酸、メタノール、グリセリン等
のアルコール類が使用でき、窒素源として硫酸ア
ンモニウム、尿素、硫酸アンモニウム、りん酸ア
ンモニウム、塩化アンモニウム、アンモニアガス
等、無機物としてりん酸塩、マグネシウム塩、カ
ルシウム塩、鉄塩、マンガン塩およびその他必要
に応じて微量金属塩等、そしてさらに生育促進物
質としてアミノ酸、ビタミン、大豆蛋白加水分解
物、酵母エキス、ペプトン、カザミノ酸等を使用
できる。 培養に当つては、PH5〜8で20〜40℃において
約2〜10日間程度、好気的に振盪または撹拌培養
する。本発明で使用するトマトまたはニンジン破
砕物もしくはその水溶性画分としてはミキサー等
による破砕物そのままか、あるいは破砕物より固
形物を除去した上澄液もしくは上澄液をイオン交
換樹脂等で分画して得られる画分のような水溶性
画分のいずれでもよく、また市販のトマトジユー
スをそのままかまたは適当に分画して使用するこ
ともできる。添加物の添加方法および添加時期は
任意であり、例えば培養の開始前あるいは培養途
中で一度に添加するか、または醗酵状態に応じて
分割して加える。添加量は培地量の2〜80%、好
ましくは20〜40%である。 培養の終了後、培養液から常法により遠心また
は過などの操作で菌体を分離する。ここで得ら
れた菌体中には、補酵素Q10が豊富に含有されて
いるので、菌体を適当に処理後、菌体と共に補酵
素Q10を栄養剤、医薬または飼料に供することも
できる。 本発明において使用するに適当な代表的な菌株
の菌学的性状を示すと次のとおりである。
The present invention relates to a method for producing coenzyme Q10 . More specifically, the present invention involves culturing coenzyme Q 10 -producing microorganisms belonging to the genus Pseudomonas in a medium supplemented with crushed tomatoes or carrots or their water-soluble fractions to produce coenzyme Q 10, and then collecting the coenzyme Q 10 . The present invention relates to a method for producing coenzyme Q 10 , which comprises the steps of: Coenzyme Q 10 is a compound represented by the following structural formula, and plays an extremely important role as a component of the electron transport system in living organisms. It is already clear that this substance exhibits excellent pharmacological and physiological effects against various diseases. However, extracting it from animal heart muscles requires expensive raw materials and it is difficult to produce large-scale membranes, and even with synthetic methods, the yield is not always satisfactory due to the complicated operations involved. . In this respect, the production of coenzyme Q 10 using microorganisms can be an economical method because of its relatively simple process. Regarding the fermentation method, coenzyme Q 10 has been added to yeasts belonging to Rhodotorula, Sporobolomyces, Candida, Torulopsis, filamentous fungi belonging to Neurospora, Aspergillus, Pseudomonas, Agrobacterium, Rhodospirillum, and Rhodoseudomonas. Although it is known that coenzyme Q10 is contained in coenzyme Q10, the amount produced is extremely low, and it is far from being able to produce coenzyme Q10 on an industrial scale. The present inventors have repeatedly investigated various compounds that can significantly increase the content of coenzyme Q10 per unit bacterial cell in the case of culturing using bacteria belonging to the genus Pseudomonas. The present invention was completed based on the discovery that the content of coenzyme Q 10 per unit cell can be significantly increased by adding the fraction to the growth medium. The microorganism used in the present invention is a bacterium belonging to the genus Pseudomonas that has the ability to produce coenzyme Q10 .
50-122452) or the mutant strain Pseudomonas N842-M16 obtained therefrom (see
3155, Patent Application No. 122453) or Pseudomonas C1-36 (Feikoken Bacterial Serial No. 5209, Patent Application No. 1983)
No. 54-124727) and the like are preferable because they produce coenzyme Q 10 in high yield. The culture medium in the present invention is not particularly limited; for example, carbon sources include hydrated carbon such as glucose,
Organic acids such as citric acid, methanol, alcohols such as glycerin can be used, nitrogen sources include ammonium sulfate, urea, ammonium sulfate, ammonium phosphate, ammonium chloride, ammonia gas, etc., and inorganic substances include phosphates, magnesium salts, calcium salts, Iron salts, manganese salts, and other trace metal salts can be used as necessary, and amino acids, vitamins, soybean protein hydrolysates, yeast extracts, peptones, casamino acids, and the like can be used as growth-promoting substances. For culturing, culture is carried out aerobically with shaking or stirring at pH 5 to 8 and 20 to 40°C for about 2 to 10 days. The crushed tomato or carrot or its water-soluble fraction used in the present invention may be crushed as is by a mixer or the like, or the supernatant obtained by removing solids from the crushed substance, or the supernatant can be fractionated using an ion exchange resin or the like. Any water-soluble fraction such as the fraction obtained by the above method may be used, and commercially available tomato juice may be used as it is or after being appropriately fractionated. The method and timing of addition of the additives are arbitrary; for example, they may be added all at once before the start of culture or during culture, or they may be added in portions depending on the fermentation state. The amount added is 2 to 80%, preferably 20 to 40% of the amount of the medium. After completion of the culture, the bacterial cells are separated from the culture solution by centrifugation or filtration using a conventional method. The cells obtained here contain abundant coenzyme Q 10 , so after appropriately treating the cells, coenzyme Q 10 can be used together with the cells in nutrients, medicines, or feeds. can. The mycological properties of representative strains suitable for use in the present invention are as follows.

【表】【table】

【表】 なおシユードモナスN842−M16菌株の菌学的
性質はシユードモナスN842に比してカロチノイ
ド産生が少ないことを除いてはシユードモナス
N842とほぼ同様である。 補酵素Q10の単離のための処理原料である菌体
は生菌体、乾燥菌体または菌体処理物のいずれで
も使用できる。補酵素Q10の単離方法の一例を示
すと、まずけん化するためにメタノール、苛性ソ
ーダおよびピロガロールの混液を菌体含有液に添
加し、そして60〜90℃において1〜2時間還流加
熱抽出する。次いで抽出液をn−ヘキサン等の溶
媒で抽出し、溶媒層を水洗および脱水後に濃縮
し、これをシリカゲル等のカラムに添加しそして
ベンゼンなどで展開すると補酵素Q10が溶出す
る。溶出画分を濃縮乾固しそしてエタノール可溶
部分を冷却放置すると、赤黄色の補酵素Q10の粗
結晶が得られる。さらに再結晶を繰返すと補酵素
Q10の純粋な結晶が得られるが包接化合物による
分離、分子蒸留等を行うことも効果的である。 補酵素Q10の同定はUVスペクトル、融点測定、
アセトン/水(95:5)を展開溶媒とする逆相薄
層クロマトグラフイー、IR、NMR、マススペク
トル等によつて標準品と比較することにより行つ
た。 次に本発明を実施例により具体的に説明するが
本発明はこれらに限定されるものではない。 実施例 1 グルコース、300g、りん酸二水素カリウム
(KH2PO4)15g、りん酸水素ニカリウム
(K2HPO4)15g、塩化アンモニウム(NH4Cl)
75g、硫酸マグネシウム7水塩(MgSO4
7H2O)1.5g、硫酸ナトリウム(Na2SO4)7.5
g、コーンステイープリカー75g(PH6.5)、およ
び市販のトマトをジユーサーで破砕し固形物を
過除去したトマトジユース3.75に水道水を加え
て全量15とした培地に、シユードモナスN842
(微工研菌寄第3154号)をグルコース2%、ペプ
トン1%およびイーストエキス1%(PH6.5)を
含有する水性培地300mlで48時間培養した培養液
を種菌として接種した。30容ジヤーフアーメン
ターを用いて30℃で毎分15の空気を通気して撹
拌培養した。PHが低下したらアンモニア水により
PH6.5に調節した。培養の終了後、遠心分離によ
り湿菌体ペーストを得た。これは乾燥菌体として
68gであり、この菌体には乾物1g当り2.2mgの
補酵素Q10が含まれていた。すなわち培養液1
当りの補酵素Q10生産量は9.97mgであつた。得ら
れた湿菌体を水300ml、メタノール2、ピロガ
ロール40gおよび水酸化ナトリウム300gと混合
し、そして85℃で1時間加熱還流した。放冷後2
のn−ヘキサンで2回抽出し、n−ヘキサン層
をとり、水洗後芒硝で乾燥し、そして濃縮乾固し
た。乾固物のアセトン可溶部をとり、アセトンを
留去しそして残渣をn−ヘキサンに溶解する。こ
の溶液をシリカゲルカラムを用いてエーテル/n
−ヘキサン混液で展開して補酵素Q10を含む画分
を採取する。この溶出液より溶媒を留去し、残渣
を少量のエタノールに溶解して冷所に放置すると
補酵素Q10の結晶が析出した。エタノールから再
結晶を3回繰返して補酵素Q10の結晶57mgを得
た。 一方トマトジユースを添加しない上記培地15
に前記と同様の培養を行い、前記と同様の方法に
より湿菌体ペーストを得た。乾燥菌体として60g
であり、菌体1g当り1.6mgの補酵素Q10を含有し
ていた。すなわち培養液1当りの補酵素Q10
産量は6.40mgであつた。前記と同様の方法により
補酵素Q10を抽出精製して補酵素Q10結晶38mgを
得た。 以上の結果に基づいて補酵素Q10の生成蓄積に
及ぼすトマトジユースの効果を考察すると、培地
にトマトジユースを添加したことにより補酵素
Q10は培養液1当り約56%増加し、乾燥菌体1
g当りでは約38%増加した。 実施例 2 実施例1の培地においてトマトジユースのかわ
りにニンジン1.5Kgを破砕して固形物を除去した
水溶性画分を加え、実施例1と同様の方法でシユ
ードモナスN842を培養した。菌体を分離して菌
体ペーストを得た。乾燥菌体として56gであり、
この菌体には乾物1g当り2.7mgの補酵素Q10が含
まれていた。菌体より実施例1と同様の方法で抽
出精製を行つて純粋な補酵素Q10の結晶59mgを得
た。ニンジン破砕物またはその水溶性画分を無添
加の場合と比較して本発明方法による場合には、
補酵素Q10は培養液1当り約57%増加し、乾燥
菌体1g当りでは約69%の増加があつた。 実施例 3 実施例1の培地においてトマトジユースのかわ
りに実施例1と同量のトマトジユースを透析し、
透析外液を得そしてこれを更にカチオン交換樹脂
Amberlite IRC 50H+を通過させた液を添加した
培地で実施例1と同様なシユードモナスN842−
M16(微工研菌寄第3155号)を培養して菌体を分
離して菌体ペーストを得た。乾燥菌体として77g
であり、この菌体には乾物1g当り3.8mgの補酵
素が含まれていた。菌体より実施例1と同様の方
法で抽出精製を行つて補酵素Q10の結晶110mgを
得た。 一方トマトジユースの分画物を添加しない上記
培地で実施例1と同様の方法でシユードモナス
N842−M16を培養して菌体を分離して菌体ペー
ストを得た。乾燥菌体として78gであり、この菌
体には乾物1g当り3.0mgの補酵素Q10が含まれて
いた。菌体より実施例1と同様の方法で抽出精製
を行つて補酵素Q10の結晶80mgを得た。 以上の結果に基づいて補酵素Q10の生成蓄積に
及ぼすトマトジユース分画物の効果を考察する
と、培地にトマトジユースを添加したことにより
補酵素Q10は培養液1当り約30%増加し、そし
て菌体1の当り約28%増加した。 実施例 4 実施例1の培地から塩化アンモニウムを除いた
培地20mlを試験管に入れ、シユードモナスN842
−M16を植えつけて30℃で4日間振盪培養した。
この培養により得られた補酵素Q10の定量値は培
地1当り20mgであり、乾燥菌体1g当り3.4mg
であつた。 一方トマト分画物を加えない上記培地で前記と
同じ方法でシユードモナスN842−M16を培養し
た。得られた補酵素Q10の定量値は培地1当り
14.5mgであり、乾燥菌体1g当り2.4mgであつ
た。 実施例 5 実施例2の培地から塩化アンモニウムを除いた
培地を用い、実施例4と同様の方法でシユードモ
ナスC1−36(微工研菌寄第5209号)を培養し
た。この培養により得られた補酵素Q10の定量値
は培地1当り95mgであり、乾燥菌体1g当り
15.5mgであつた。ニンジン分画物を添加しない上
記と同様の方法で培養した。この培養により得ら
れた補酵素Q10の定量値は培地1当り72mgあ
り、そして乾燥菌体1g当り13mgであつた。
[Table] The mycological properties of Pseudomonas N842-M16 strain are similar to Pseudomonas except that carotenoid production is lower than that of Pseudomonas N842.
It is almost the same as N842. The bacterial cells that are the raw material for the treatment for the isolation of coenzyme Q 10 can be either live bacterial cells, dried bacterial cells, or processed bacterial cells. An example of a method for isolating coenzyme Q10 is to first add a mixture of methanol, caustic soda and pyrogallol to a solution containing microbial cells for saponification, and then extract under reflux at 60 to 90°C for 1 to 2 hours. Next, the extract is extracted with a solvent such as n-hexane, and the solvent layer is washed with water and dehydrated, then concentrated, and this is added to a column such as silica gel, and when developed with benzene etc., coenzyme Q 10 is eluted. The eluted fraction is concentrated to dryness and the ethanol-soluble portion is left to cool, yielding red-yellow crude crystals of coenzyme Q 10 . If recrystallization is repeated further, the coenzyme
Although pure crystals of Q 10 can be obtained, separation using clathrate compounds, molecular distillation, etc. are also effective. Identification of coenzyme Q 10 is done by UV spectrum, melting point measurement,
The results were compared with standard products using reverse phase thin layer chromatography using acetone/water (95:5) as a developing solvent, IR, NMR, mass spectra, etc. EXAMPLES Next, the present invention will be specifically explained with reference to Examples, but the present invention is not limited thereto. Example 1 Glucose, 300 g, potassium dihydrogen phosphate (KH 2 PO 4 ) 15 g, dipotassium hydrogen phosphate (K 2 HPO 4 ) 15 g, ammonium chloride (NH 4 Cl)
75g, magnesium sulfate heptahydrate ( MgSO4 .
7H 2 O) 1.5g, sodium sulfate (Na 2 SO 4 ) 7.5
Pseudomonas N842 was added to a medium containing 75 g of corn staple liquor (PH6.5), and 3.75 g of commercially available tomatoes crushed with a juicer to remove the solids, and tap water added to make a total volume of 15.
(Feikoken Bibori No. 3154) was cultured for 48 hours in 300 ml of an aqueous medium containing 2% glucose, 1% peptone, and 1% yeast extract (PH6.5), and the culture was inoculated as a seed. A 30-volume jar fermentor was used for agitation culture at 30° C. with air aerated at a rate of 15 per minute. If the pH drops, use ammonia water.
The pH was adjusted to 6.5. After completion of the culture, a wet bacterial cell paste was obtained by centrifugation. This is as a dried bacterial cell.
68g, and the bacterial cells contained 2.2mg of coenzyme Q10 per 1g of dry matter. That is, culture solution 1
The amount of coenzyme Q 10 produced per serving was 9.97 mg. The obtained wet bacterial cells were mixed with 300 ml of water, 2 methanol, 40 g of pyrogallol, and 300 g of sodium hydroxide, and heated under reflux at 85° C. for 1 hour. After cooling 2
The extract was extracted twice with n-hexane, and the n-hexane layer was taken, washed with water, dried over Glauber's salt, and concentrated to dryness. The acetone-soluble portion of the dried solid product is taken, the acetone is distilled off, and the residue is dissolved in n-hexane. This solution was mixed with ether/n using a silica gel column.
- Develop with a hexane mixture and collect the fraction containing coenzyme Q10 . The solvent was distilled off from this eluate, and the residue was dissolved in a small amount of ethanol and left in a cool place to precipitate coenzyme Q 10 crystals. Recrystallization from ethanol was repeated three times to obtain 57 mg of coenzyme Q 10 crystals. On the other hand, the above medium 15 without the addition of tomato youth
The same culture as above was carried out, and a wet bacterial cell paste was obtained by the same method as above. 60g as dried bacterial cells
It contained 1.6 mg of coenzyme Q10 per gram of bacterial cells. That is, the production amount of coenzyme Q 10 per culture solution was 6.40 mg. Coenzyme Q 10 was extracted and purified by the same method as above to obtain 38 mg of coenzyme Q 10 crystals. Considering the effect of tomato youth on the production and accumulation of coenzyme Q 10 based on the above results, we found that the addition of tomato youth to the culture medium
Q10 increases by approximately 56% per 1 culture solution, and 1 dry bacterial cell
Per gram, it increased by about 38%. Example 2 In the same manner as in Example 1, Pseudomonas N842 was cultured in the same manner as in Example 1 except that instead of tomato juice, a water-soluble fraction obtained by crushing 1.5 kg of carrots and removing solid matter was added. The cells were separated to obtain a cell paste. It weighs 56g as dry bacterial cells,
This bacterial cell contained 2.7 mg of coenzyme Q 10 per gram of dry matter. The bacterial cells were extracted and purified in the same manner as in Example 1 to obtain 59 mg of pure coenzyme Q 10 crystals. When using the method of the present invention, compared to using crushed carrots or their water-soluble fractions without additives,
Coenzyme Q 10 increased by about 57% per 1 culture solution, and by about 69% per 1 g of dry bacterial cells. Example 3 In the medium of Example 1, the same amount of tomato youth as in Example 1 was dialyzed instead of tomato youth,
Obtain the external dialysis fluid and use this as a cation exchange resin.
Pseudomonas N842− as in Example 1 using a medium supplemented with a solution passed through Amberlite IRC 50H + .
M16 (Feikoken Bacteria No. 3155) was cultured and the bacterial cells were isolated to obtain a bacterial paste. 77g as dried bacterial cells
This bacterial cell contained 3.8 mg of coenzyme per gram of dry matter. The bacterial cells were extracted and purified in the same manner as in Example 1 to obtain 110 mg of coenzyme Q 10 crystals. On the other hand, Pseudomonas was grown in the same manner as in Example 1 using the above medium without adding the tomato youth fraction.
N842-M16 was cultured and the bacterial cells were separated to obtain a bacterial cell paste. The dry bacterial mass was 78 g, and this bacterial cell contained 3.0 mg of coenzyme Q 10 per gram of dry matter. The bacterial cells were extracted and purified in the same manner as in Example 1 to obtain 80 mg of coenzyme Q 10 crystals. Considering the effect of tomato youth fractions on the production and accumulation of coenzyme Q 10 based on the above results, the addition of tomato youth to the culture medium increased coenzyme Q 10 by about 30% per culture solution. The amount increased by about 28% per bacterial cell. Example 4 20 ml of the medium from Example 1 except ammonium chloride was placed in a test tube, and Pseudomonas N842
-M16 was planted and cultured with shaking at 30°C for 4 days.
The quantitative value of coenzyme Q10 obtained by this culture was 20 mg per 1 medium, and 3.4 mg per 1 g of dry bacterial cells.
It was hot. On the other hand, Pseudomonas N842-M16 was cultured in the same manner as above in the above medium without tomato fraction added. The obtained quantitative value of coenzyme Q 10 is per 1 medium.
The amount was 14.5 mg, and 2.4 mg per gram of dry bacterial cells. Example 5 Pseudomonas C1-36 (Feikoken Bacteria Serial No. 5209) was cultured in the same manner as in Example 4 using the medium of Example 2 except that ammonium chloride was removed. The quantitative value of coenzyme Q10 obtained by this culture was 95 mg per 1 medium, and per 1 g of dry bacterial cells.
It was 15.5 mg. Culture was performed in the same manner as above without adding the carrot fraction. The quantitative value of coenzyme Q 10 obtained by this culture was 72 mg per 1 medium and 13 mg per 1 g of dry bacterial cells.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 菌体内に補酵素Q10の蓄積生産能を有するシ
ユードモナス属の微生物をトマトまたはニンジン
の破砕物もしくはそれらの水溶性画分を添加した
培地に培養して補酵素Q10を生成蓄積せしめ、そ
して次いでこれを採取することを特徴とする、補
酵素Q10の製造法。
1. A microorganism of the genus Pseudomonas that has the ability to accumulate and produce coenzyme Q 10 within the bacterial body is cultured in a medium supplemented with crushed tomato or carrot or their water-soluble fraction to produce and accumulate coenzyme Q 10 , and A method for producing coenzyme Q 10, which comprises then collecting the coenzyme Q 10 .
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