JPS6124370B2 - - Google Patents

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JPS6124370B2
JPS6124370B2 JP53126751A JP12675178A JPS6124370B2 JP S6124370 B2 JPS6124370 B2 JP S6124370B2 JP 53126751 A JP53126751 A JP 53126751A JP 12675178 A JP12675178 A JP 12675178A JP S6124370 B2 JPS6124370 B2 JP S6124370B2
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Japan
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virus
coronavirus
diarrhea
bovine
vaccine
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JP53126751A
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Japanese (ja)
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Arubaato Mebusu Chaarusu
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BOODO OBU RIIJENTSU OBU ZA UNIV OBU NEBURASUKA ZA
Original Assignee
BOODO OBU RIIJENTSU OBU ZA UNIV OBU NEBURASUKA ZA
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Publication date
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Publication of JPS5531058A publication Critical patent/JPS5531058A/en
Publication of JPS6124370B2 publication Critical patent/JPS6124370B2/ja
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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は新生子牛下痢の発生原因である新しい
コロナウイルス状因子に対するワクチンならびに
このワクチンの製法に関する。より詳しくは、本
発明は牛胎児の腎臓細胞中で連続継代培養により
コロナウイルス状ウイルスを弱毒化させる方法な
らびにそれによつて得られるワクチンに関する。
さらに、該コロナワクチン状因子を細胞培養地上
にて増殖させた後、不活性化するワクチンの製法
に関する。 新生子牛下痢(neonatal calf diarrhea:NCD
と略称する)の病原学的要因は複雑である。この
病気の原因としては、多種の細菌類が関係してお
り、たとえばバクテリア、菌類(fungi)、ミコプ
ラズマ(mycoplasma)、クラミデア
(chlamydia)およびウイルス類が挙げられる。
特に列挙されるウイルス類としては、牛の下痢ウ
イルス、伝染性牛鼻気管炎ウイルス、アデイウイ
ルス、エンテロウイルスおよびヘーデン
(HADEN)ウイルスが挙げられる。NCDの病因
学的因子として報告されている他のウイルス類と
しては、牛肺炎腸炎ウイルスおよびNCDウイル
スといわれるレオウイルス状因子がある。この
NCDレオウイルス状因子に対して有効なワクチ
ンの製法については、米国特許出願第197520号、
1971年11月10日出願、に記されている。 レオウイルス状因子から製造されたワクチンの
野外試験の過程において、西部ネブラスカのある
動物群において牛の病気の不適当な抑制結果が認
められた〔Vet.Med./Small Anim.Clin.,67
(2)、173頁(1972)〕。代表例として、生後24時
間内にこのワクチンを投与された牛において、な
お牛が5〜20日に達したときでも数群に下痢の発
生がみられた。これらの牛の下痢便を螢光抗体法
を用いてレオウイルス状ウイルスの検査をした
が、陰性であつた。 生後7〜12日に達したときに牛の90%が感染し
たワクチンの投与群の一つにおける下痢便を子宮
切開(セザーリアン:Caesarean)で生まれ、初
乳を与えていない子牛に十二指腸注入により接種
した。この子牛は下痢を起こし、その下痢便から
無バクテリアの便液を調製し、ついでこれをグ
ノトビオシスの(gnotobictie)子牛に経口接種
した。これらの子牛は下痢を発生し、この際下痢
の原因として他のウイルス因子の存在が考慮され
た。実験子牛からの下痢便を電子顕微鏡試験に付
せば、コロナウイルス状因子が観察された。同種
のウイルス粒体が野外試験に付したワクチン投与
群およびワクチン不投与群の双方の下痢便中に認
められた。この新しいコロナウイルス状因子は精
製され、そしてきわめて詳細に同定された。本発
明者はこのコロナウイルス状ウイルスは増殖可能
であり、かつ細胞培養培地にて有効なワクチンに
変化可能であることを発見し、さらに有効なワク
チンがこのウイルスを細胞培養培地で増殖させた
のち、不活性化させて製造可能なことを発見し
た。よつて、本発明はこの新しいコロナウイルス
状因子に対して有効なワクチンならびにこのワク
チンの製造および投与方法に関するものである。
この因子の精製および特徴についてはAm.J.Vet.
Res.,33巻、1147〜1156頁(1972)に記載され
ている。 コロナウイルス状因子の精製: 便試料を西部ネブラスカの19の牧場動物群の下
痢症子牛から採取した。12〜19群の子牛にあらか
じめNCDレオウイルス状ウイルスワクチンを経
口接種し、一方その他の群の子牛はワクチン不投
与とした。下痢症子牛からの便塗〓標本をNCD
ウイルス試験のために免疫螢光配合体で染色し
〔ネブラカス州立大、Agri.Exper.Sta.Res.
Bull.233頁(1969)〕、そしてNCDウイルス陰性の
試料のみを試験に供した。牧場で自然感染した子
牛および人工的感染させた子牛から採取した下痢
便材料をウイルス精製に着手するまで−20℃〜−
60℃で貯蔵した。 シヨ糖濃度勾配(グレデイエント)液を各種調
製し、使用前に直線勾配を形成せしめるために一
液4℃にて放置した。各勾配液は蒸留脱イオン水
1ml当りシヨ糖をそれぞれ400,300,200および
100mg含む8mlよりなつている。濃度の高い順に
各液を2.5×8.9cmのニトロセルロース製遠心管に
入れた。 すべてのウイルス精製操作は4℃で行い、医療
用遠心法および超遠心法を使用した。 下痢便材料を脱イオン水3容と混合し、30分間
5000Gで遠心分離した。ついでこの上澄液を3時
間25000rpmにてタイプ30回転子(ローター)中
で遠心分離した。得た塊状物(ペレツト)を5%
(w/v)シヨ糖溶液中で30秒間超音波処理して
分散させた。この懸濁液を粗製ウイルス懸濁液と
いう。 粗製ウイルス懸濁液5mlを管中の勾配液上に注
加成層させ、25000rpmにて2時間SW27回転子中
で遠心分離した。遠心分離後、各帯層を光散乱法
により位置確認した。各帯層中の物質を遠心管の
頂部よりプロピペツトをそなえたパスツールピペ
ツトを用いて捕集した。各試料を、電子顕微鏡検
査を行う前に1%酢酸アンモニウム溶液に対して
透析した。ウイルス(液面から6cmにある帯層か
らの半精製のウイルス)を含むフラクシヨンをシ
ヨ糖濃度勾配遠心法または塩化セシウム
(CsCl)勾配遠心法によりさらに精製する。 半精製ウイルス調製物を上記したシヨ糖濃度勾
配遠心法の繰返しによつてさらに精製した。再び
帯層を位置確認し、液面から6.0cmにある帯層を
捕集し、1%酢酸アンモニウムに対して、透析す
れば、精製したウイルスを得る。 半精製ウイルス調製物の同濃度勾配遠心処理を
30%溶液(CsCl 15g+脱イオン水35ml)で開始
して行つた。この溶液(4ml)をニトロセルロー
ス遠心管に分取し、つぎに各管にウイルスの懸濁
液1.4mlを注加した。SW65回転子を用い
60000rpmにて18時間遠心分離すれば、この時点
で完全な平衝に達している。ウイルスが存在して
いる帯層におけるCsClの屈折率をTSメーターに
より測定する。液面から2.9cmの帯層を捕集し、
1%酢酸アンモニウム溶液に対して透析して精製
ウイルスを得る。 また、前記した粗製ウイルス懸濁液(15ml)を
4.2×42cmのゲルカラム(Sepharose 2B:
Pharmacia Fine Chemicals,Inc.、ピスカタウ
エイ、ニユージヤージー洲)上にてゲル過に付
して分別した。カラムはあらかじめ0.9%NaClで
平衝させておき、この食塩溶液で展開した。流速
6.0ml/時間で行つた。5mlのフラクシヨンを捕
集し、吸光度を260μmで分光光度計により測定
した。各ピークの物質をそれぞれ合併し、つぎに
限外過により別々に濃縮する。 また、試験用子牛からの下痢便材料からウイル
スを調製するのに簡略化した方法も適用される。
便材料を直接3400Gにて30分間遠心分離する。上
澄液部分の一部をジクロロジフルオロメタンで2
回抽出する。水溶液層(5ml)および未処理上澄
液(5ml)材料を前記のごときシヨ糖濃度勾配遠
心法に付する。 濃度勾配遠心分離法により濃縮されたウイルス
は電子顕微鏡による研究に用いられ、また免疫螢
光分析用の配合体調製のためのウサギの免疫用抗
原として用いられる。生後約6ケ月の白色家ウサ
ギの必臓から採血(14ml)し、ついで抗原0.4ml
および完全フロインド捕助液0.6mlの混合液を1
カ所当り0.25mlにて4カ所に筋肉内注射した。接
種5週間後に、血液40mlを心臓穿刺により採血す
る。フルオレセインでラベルしたガンマグロブリ
ンを既知方法(Proc.U.S.Livestoek San.Assn.
,1968年10月、139〜144頁)により接種後の血清
から調製する。 コロナウイルス状因子の存在は上記で調製した
配合体を用いる免疫螢光法により感染した腸にお
いて検出可能である。コロナウイルス状因子に対
するこの配合体の特異性は以下に示す試験法によ
り明確に示される。コロナウイルス状因子に感染
させた下痢症子牛の腸の切片を配合体にて染色す
ると絨毛細胞の螢光が観察された。同じ子牛の腸
は前記したレオウイルス状因子に対する配合体で
染色した場合には螢光を示さなかつた。レオウイ
ルス状ウイルスに感染した下痢症子牛の腸の切片
はレオウイルス状因子に対する配合体で染色した
場合は陽性を示し、コロナウイルス状因子に対す
る配合体で染色した場合は陰性を示した。正常な
グノトビオシスの子牛の腸の切片はコロナウイル
ス状因子に対する配合体で染色した場合には螢光
を示さなかつた。 ウイルスの形態学: 勾配濃度超遠心分離精製法により得られるウイ
ルス含有帯層を電子顕微鏡により検査する。帯層
からの小滴を、あらかじめコロジオンで被覆しか
つ蒸着カーボンで補強した200メツシユの銅格子
に加える。これらの小滴は試験中の帯層の光散乱
度に従つて3〜25分間格子上に残留させる。過剰
の液体を紙で吸い取り、ついでモリブデン酸バ
ナジウム−リンタングステン酸溶液の小滴を格子
上に加える。この染料はその過剰量を吸取紙とし
ての液で除去する前、1〜1.5分間にわたり格
子上に蒸留させる。 試料は倍率32000倍またはそれ以上の性能をも
つ電子顕微鏡により検査する。寸法測定は試料の
電子顕微鏡写真の寸法分析ならびに機器のセツト
を変えずに試料の電子顕微鏡写真撮影の直後にと
つた回析格子レプリカにより行う。 完全なウイルス粒体の寸法は同じ顕微鏡写真に
おいて107〜160μmの範囲にあり、そしてコロナ
ウイルスに見られるものと類似の表面突起を有し
ていた。電子顕微鏡検査で測定されたと同様に、
表面突起を包含した粒体の平均寸法は126μmで
あつた。核キヤプシド(nueleocapsid)は多形性
であり、寸法および形状は円形ないし長円形に変
化していた。キヤプシドの外皮は外縁(fringe)
が失なわれると特に明瞭となる。外縁の巾は最大
23μmまで変化する。良好に保持された粒体の表
面突起は花弁形をなし、細長い莖状部により粒体
に結合され、そして長さは平均11μmである。 本発明に記したコロナウイルス状因子は新生子
牛の子牛の病原学的要因として証明され、あるい
は提案されている他種のウイルスからは寸法およ
び形態学的特徴に基いて容易に識別される。ここ
に記したコロナウイルス状因子はエンテロウイル
ス、牛−肺炎−腸炎ウイルス、牛下痢ウイルス、
新生子牛下痢ウイルス(イオ状)、およびヘーデ
ンウイルスとは異なつた形態学的特徴を有し、こ
れらよりも大型である。この新しい因子は牛伝染
性鼻気管炎ウイルスより小型でその代表的でその
代表的な形態学的特徴を欠いている。精製したコ
ロナウイルス状因子の浮揚性密度(buoyant
density)はCsClを用いれば1.24であり、一方レ
オウイルス状因子は浮揚性密度1.359である
〔Can.J.Comp.Med.,35頁(1971)〕。 コロナウイルス状因子の生理学的作用はまたレ
オ状ウイルスの作用とは異なる。レオウイルス状
因子をノトビオシスの牛に経口接種した後の潜伏
期間は13.5〜14時間の短期であり得るが、一方コ
ロナウイルス状因子について認められる最小潜伏
期間は18時間である。さらに、レオウイルスに感
染したノトビオシスの牛は5〜8時間下痢症状を
示し、ついで下痢開始24時間後には正常に復す
る。これに反し、コロナウイルス状因子に感染し
たノトビオシスの牛は下痢が激化し、5日間また
はそれ以上の日数にわたり下痢を続け、あるいは
下痢開始後2〜3日後に死亡することすらある。 ワクチンの製法および使用法: 本発明を実施するに有効な方法を以下に例によ
り説明するが、これらは本発明を何ら限定するも
のではない。 前記の感染した牛から得られるコロナウイルス
状因子は牛胎児腎臓細胞上で増殖する。また、こ
のウイルスは牛その他由来の組識または細胞系か
らの細胞上でも増殖しうる。既知方法により単層
の細胞培地を調製し、コロナウイルス状因子を接
種する。通常、単層培地をハンクス(Hanks)の
平衡塩溶液で洗浄し、ついでウイルス接種物を加
え、数時間、通常2時間、約37℃で吸収させる。
0.5%ラクトアルブミン水解物(LAHと略称す
る)、0.1%イースト抽出物、および1ml当りペニ
シリン100単位ならびにストレプトマイシン200μ
gを含有するアール(Earle)の平衡塩溶液の保
存培地を加え、ついで30〜40℃、好ましくは約37
℃、で2〜10日間培養する。ウイルスを、たとえ
ば細胞から上澄液を流出させて採集する。ウイル
ス接種物はコロナウイルス感染牛から採取した便
またはコロナウイルス状ウイルス培地からの培地
液でさしつかえない。便は採取したままあるいは
リン酸塩緩衝液(PH7.2)稀釈して、これを
1000Gで20分間遠心分離し、上澄液を接種物とし
て用いることができる。 他の保存培地、たとえばラクトアルブミン水解
物含有の変形イーグル(Eagle)培地を用いるこ
とができる。培地の選択は当技術者の常識に従え
ばよい。 効果的に弱毒化されたコロナ状ウイルスワクチ
ンは接種された牛が有毒なウイルスに攻撃された
ときに病気にかからないように十分な回数牛胎児
腎臓細胞中で精製ウイルスを継代培養して得られ
る。通常はウイルスを5〜60回継代培養する必要
があり、この継代は一次または二次細胞(一次細
胞は1回継代されたもの)あるいは高次継代細胞
または細胞系にて行う。10回以上継代培養した高
次継代細胞は細胞系と考えてよい。好ましい方法
には一次または二次細胞と高次継代細胞または細
胞系上での継代培養の組合せがある。ウイルス力
価(titer)は標準方法により測定する。たとえ
ば、ウイルス稀釈物を接種された細胞を牛胎児腎
臓細胞を入れた管中で5日間培養する。ウイルス
の存在は、たとえば細胞変性効果、免疫螢光法、
または血液吸収法によつて測定する。さらに詳し
くは、効果的に弱毒化されたワクチンが以下に示
す方法により製造される。牛胎児を準備し、大量
の一次腎臓細胞を調製する。数個のビンおよびカ
バーグラス培地を一次細胞から調製し、残つた一
次細胞に0.5%LAH、10%成年牛血清、および10
%ジメチルスルホキシドを含有するアールの平衡
塩溶液を加えて凍結する。このビンおよびカバー
グラス培地にここに記したごときウイルス含有溶
液を接種し、37℃で培養する。数個の螢光細胞が
カバーグラス培地上で観察されたならば、同じ胎
児からの凍結一次細胞を解凍し、標準方法により
単層培地を形成させる。感染させたこの一次細胞
培地からの液体をこれらの二次細胞培地で継代培
養する。接種してから6〜7日後に、二次細胞培
地からの液体を別の二次細胞培地に接種するのに
用いる。1代から15代の継代培養においては、前
記のごとく液体2mlを8オンスビンに接種するた
めに用いる。15代から25代の継代培養において
は、液体2mlをビン中の保存培地に加える。25代
継代後、各ビン中の保存培地に1mlの接種物を加
える。コロナウイルス状因子を5代〜20代組織培
地中で継代培養したら、二次細胞からの細胞で一
連の連続的継代培養を始める。各継代において、
細胞はごく一部のみが感染し、他の未感染細胞は
二次培養して以後の高次継代培養水準の細胞とす
る。この種の細胞培地は継代細胞培地と称され
る。継代細胞培地でウイルスの連続的二次培養継
代を続けることによつて、適当な細胞−ウイルス
系が形成される。二次細胞培地にてビールスを5
〜20回継代培養した後、ウイルスを継代細胞培地
で5〜40回またはそれ以上継代培養すれば、効果
的に弱毒化されたコロナウイルス状ウイルスワク
チンを得る。ウイルスの継代培養における培養期
間は継代回数の増加につれて減少し、そして高次
継代細胞または細胞系上での継代培養は2〜7日
間で行うことができる。各継代は細胞変性効果が
起こるまで行う。ワクチンは牛胎児の腎臓または
牛その他由来の他の組織または細胞系からの細胞
系、たとえば牛の肺、牛鼻介骨細胞系またはブタ
腎臓細胞または細胞系を用い、該組織培地に約37
℃で適当なウイルス力価が得られるまで培養し、
ついでウイルスを採集することにより製造するこ
とができる。102〜106.5、好ましくは104〜106
力価が得られる。ワクチンは液状でもまたは凍結
乾燥したものでも用いることができる。後の使用
時において、蒸留水のごとき減菌稀釈剤で稀釈し
て復元させることができる。 好適な生成物は二次細胞上で12回、ついで自体
が9〜27回継代培養された細胞上で15回継代培養
して弱毒化したウイルスよりなつている。全部の
継代培養水準はかくして27回である。35回まで継
代培養されたワクチンが製造されている。 さらに、効果的な不活性化ワクチンがコロナウ
イルス状因子を不活性化して製造される。通常、
これはまずこの因子を前記のごとく適当な力価が
得られるまで牛胎児腎臓細胞上で培養して製造さ
れる。力価は前記の範囲内でできるだけ高くすべ
きである。いかなる細胞継代培養水準にあるウイ
ルスはもちろん、非弱毒化ウイルスでさえも、用
いることができる。ついでウイルスはそれを当技
術者に既知の、ホルマリン、β−プロピオラクト
ン、紫外線、または熱のごとき、不活性化剤また
は手段を用いて20〜40℃で、ウイルスを効果的に
不活性化するような時間および濃度で処理して不
活性化せしめる。これらの詳細は当技術者に既知
である。補助薬を抗原性の促進のために加えるこ
とができる。補助薬は当技術者に既知のいずれで
もよく、たとえば水酸化アルミニウムゲル、カリ
ウム明ばん、アルギン酸塩、または油基剤あるい
は鉱油または有機物油のごとき他の補助薬が挙げ
られる。 不活性化ワクチンを製造する代表的な方法は以
下の通りである。前記のごとき27回継代培養水準
にあるコロナウイルス状因子を用いる。ホルマリ
ンを0.2%濃度になるまでウイルス含有培養液に
加える。つぎにこれらの液体を1〜2日間37℃に
て放置する。この不活性化ウイルスに水酸化アル
ミニウムゲル補助薬を10%濃度まで加える。PHを
水酸化アルミニウムで約7.2に調節する。 この弱毒化ワクチンは102〜106.5TCID/mlを
含有した1〜5mlの投与量にて子牛、好ましくは
新生子牛に投与して有毒なウイルスに対する免疫
を付与することができる。不活性化ワクチンは生
産30〜90日前の妊娠牛または出産後できるだけ早
い新生子牛に対し1〜5mlの投与量で非経口的に
投与され、コロナウイルス状因子に対する保護効
果を付与する。 さらに、好ましくは不活性化したコロナウイル
スと他のいずれかのウイルス因子からなる複合ワ
クチンが子牛または成牛に免疫を付与するのに用
いられる。好ましい複合例としては不活性化され
たコロナウイルスおよびレオウイルスが挙げら
れ、これらの両者ともに非弱毒化または弱毒化生
ウイルスを化学薬剤、放射線または熱により不活
性化して製造される。また、コロナウイルスは牛
アデノウイルス、生下痢ウイルス、またはエシエ
リヒア・コリ(Escherichia coli)あるいはクロ
ストリジウム層の菌(Clostridia Sp.)のごとき
他の牛病原体と複合させることができる。 コロナウイルスおよびレオウイルスを含有する
複合ワクチンは両方の不活性化ウイルス因子の等
量を混合して製造する。ついで、これにホルマリ
ンを0.2%濃度および水酸化アルミニウムゲルを
10容量%添加する。このワクチンの投与は妊娠牛
に対し非経口的に1〜5mlの投与とする。この複
合ワクチンは子牛ならびに妊娠牛のいずれにも投
与できる。複合ワクチンは、初乳および/または
牛乳抗体を経由して、新生子牛に対し保護効果を
付与する。さらに、両因子に対する保護効果は妊
娠牛を不活性化レオウイルス状ワクチンで免疫を
付与し、ついで弱毒化コロナウイルス状ワクチン
を子牛に投与することにより行うことができる。
また、両因子に対する保護効果は妊娠牛を不活性
化コロナウイルス状ワクチンで免疫を付与し、つ
いで弱毒化レオウイルス状ワクチンを子牛に投与
することによつても与えることができる。さら
に、弱毒化コロナウイルスおよびレオウイルス状
因子を含有せしめた複合ワクチンは妊娠牛に投与
することができる。 種々の細胞培地継代培養水準で製造されたワク
チンを生後約7時間のグノトビオシスの子牛に投
与し、その後、子牛を有毒なウイルス(感染牛の
下痢便から採取した毒力コロナウイルス状ウイル
ス)で攻撃して弱毒化ウイルスワクチンの効力を
試験した。これらの試験結果を第1表および第2
表に示す。 二次牛胎児腎臓細胞上でウイルスを14回継代培
養して得た細胞培養液10mlを経口接種した子牛1
は下痢を起こし、ついで回復した。生後9日目
に、この子牛に下痢便(有毒ウイルス)10mlを
PBS20mlに加えたものを経口接種したが、発病し
なかつた。二次牛胎児腎臓細胞上でウイルスを15
回継代培養したもの10mlを子牛2に接種したが下
痢を起こさず、そして有毒ウイルスの接種で攻め
られた後でも発病しなかつた。二次牛胎児腎臓細
胞上で16回継代培養したウイルス10mlを子牛3お
よび4に接種すれば弱い下痢発病がみられた。子
牛3を下痢開始後しばらくしてから殺し、小腸お
よび結腸の切片をコロナウイルス状因子に対する
配合体で染色すれば、腸絨毛および結腸の上皮に
免疫螢光が認められた。子牛4を生後6日目に下
痢便中の有毒ウイルスを接種したが、発病しなか
つた。二次牛胎児腎臓細胞上で19回継代培養した
ウイルス5mlを子牛6に経口接種すれば、下痢発
病した。高次継代牛胎児腎臓細胞上で少なくとも
5回継代培養したウイルスを13回〜25回継代培養
したもの5mlを12頭の子牛(No.7〜13およびNo.15
〜19)に経口接種したところ下痢発病せず、そし
て、子牛18を除いて、有毒ウイルスを含む便を
経口接種した後でも発病しなかつた。 不活性化コロナウイルスおよびレオウイルスを
含有する複合ワクチンを2つの牧場(毒力コロナ
ウイルス状ウイルスで汚染された牧場)の成牛に
ついて試験した。このワクチンはホルマリンで不
活性化した27回継代培養したコロナウイルスおよ
びホルマリンで不活性化した201回継代培養(一
次牛腎臓および牛腎臓細胞系上)したレオウイル
スより製造した。この不活性化した各ウイルスを
等量ずつ互いに混合し、水酸化アルミニウムゲル
を10%添加した。 第1表および第2表の試験結果について表の説
明: D=下痢発病、N=異常なし、 b=ウイルスの継代培養回数は一次または二次細
胞上+より高次の継代培養細胞上での継代の回
数。
The present invention relates to a vaccine against a new coronavirus-like agent that causes diarrhea in newborn calves, and a method for producing this vaccine. More particularly, the present invention relates to a method for attenuating a coronavirus-like virus by serial passage culture in fetal bovine kidney cells, and a vaccine obtained thereby.
Furthermore, the present invention relates to a method for producing a vaccine in which the corona vaccine-like factor is grown on a cell culture surface and then inactivated. Neonatal calf diarrhea (NCD)
(abbreviated as )) are complex. Many types of bacteria are implicated as causes of this disease, including bacteria, fungi, mycoplasma, chlamydia, and viruses.
Particularly mentioned viruses include bovine diarrhea virus, infectious bovine rhinotracheitis virus, Aday virus, enterovirus and HADEN virus. Other viruses that have been reported as etiological factors for NCD include bovine pneumonia enteritis virus and a reovirus-like agent called NCD virus. this
For methods of making vaccines effective against NCD reovirus-like agents, see U.S. Patent Application No. 197520;
Filed on November 10, 1971. During field trials of vaccines produced from reovirus-like agents, inadequate control of disease in cattle was observed in some herds in western Nebraska [Vet.Med./Small Anim.Clin., 67
(2), p. 173 (1972)]. As a typical example, cases of diarrhea were observed in several groups of cows that were administered this vaccine within the first 24 hours of birth, even when the cows were 5 to 20 days old. The diarrheal feces of these cows were tested for reovirus-like viruses using the fluorescent antibody method, but the results were negative. Diarrhea in one of the vaccinated groups, in which 90% of the cows were infected when they reached 7 to 12 days of age, was removed by duodenal infusion into calves born by uterine incision (Caesarean) and not fed colostrum. Inoculated. The calf developed diarrhea and bacteria-free faecal fluid was prepared from the diarrheal stool, which was then orally inoculated into the gnotobictie calf. These calves developed diarrhea, and the presence of other viral agents was considered as the cause of the diarrhea. When diarrheal stool from laboratory calves was subjected to electron microscopy, coronavirus-like agents were observed. The same type of virus particles were found in the diarrheal stools of both the vaccinated and non-vaccinated groups in the field test. This new coronavirus-like agent has been purified and identified in great detail. The inventors have discovered that this coronavirus-like virus can be propagated and transformed into an effective vaccine in a cell culture medium, and that an effective vaccine can be obtained by growing this virus in a cell culture medium. discovered that it can be manufactured by inactivating it. Accordingly, the present invention relates to a vaccine effective against this new coronavirus-like agent and methods for producing and administering this vaccine.
The purification and characterization of this factor is described in Am.J.Vet.
Res., Vol. 33, pp. 1147-1156 (1972). Purification of coronavirus-like agents: Stool samples were collected from diarrheal calves from 19 ranch herds in western Nebraska. Calves in groups 12-19 were pre-vaccinated orally with NCD reovirus-like virus vaccine, while calves in other groups were not vaccinated. Faecal smears from calves with diarrhea = NCD
Stained with immunofluorescent complex for virus testing [Nebracas State University, Agri.Exper.Sta.Res.
Bull. p. 233 (1969)] and only samples negative for NCD virus were subjected to the test. Diarrheal fecal material collected from naturally infected and artificially infected calves on the farm was kept at −20°C to −20°C until virus purification began.
Stored at 60°C. Various sucrose concentration gradient solutions were prepared and each solution was left at 4° C. to form a linear gradient before use. Each gradient contains 400, 300, 200 and 400 sucrose per ml of distilled deionized water, respectively.
It is made up of 8ml containing 100mg. Each solution was placed in a 2.5 x 8.9 cm nitrocellulose centrifuge tube in descending order of concentration. All virus purification procedures were performed at 4°C and used medical centrifugation and ultracentrifugation. Mix diarrheal stool material with 3 volumes of deionized water for 30 minutes.
Centrifuged at 5000G. The supernatant was then centrifuged for 3 hours at 25000 rpm in a type 30 rotor. 5% of the obtained pellets
(w/v) in sucrose solution by sonication for 30 seconds to disperse. This suspension is called a crude virus suspension. 5 ml of the crude virus suspension was layered onto the gradient in the tube and centrifuged at 25000 rpm for 2 hours in an SW27 rotor. After centrifugation, each zone was located using a light scattering method. The material in each zone was collected from the top of the centrifuge tube using a Pasteur pipette equipped with a propipette. Each sample was dialyzed against a 1% ammonium acetate solution before electron microscopy. The fraction containing the virus (semi-purified virus from the zone 6 cm above the liquid surface) is further purified by sucrose gradient centrifugation or cesium chloride (CsCl) gradient centrifugation. The semi-purified virus preparation was further purified by repeated sucrose gradient centrifugation as described above. Locate the zone again, collect the zone 6.0 cm from the liquid surface, and dialyze against 1% ammonium acetate to obtain purified virus. Isogradient centrifugation of semi-purified virus preparations
This was done starting with a 30% solution (15 g CsCl + 35 ml deionized water). This solution (4 ml) was aliquoted into nitrocellulose centrifuge tubes, and then 1.4 ml of the virus suspension was added to each tube. Using SW65 rotor
If centrifuged at 60,000 rpm for 18 hours, complete equilibrium has been reached at this point. The refractive index of CsCl in the zone where the virus exists is measured using a TS meter. A layer of 2.9 cm from the liquid surface was collected,
Purified virus is obtained by dialysis against 1% ammonium acetate solution. In addition, the crude virus suspension (15 ml) described above was added to
4.2 x 42 cm gel column (Sepharose 2B:
The fractions were fractionated by gel filtration on Pharmacia Fine Chemicals, Inc., Piscataway, New Jersey). The column was equilibrated with 0.9% NaCl in advance and developed with this saline solution. flow rate
The flow rate was 6.0ml/hour. 5 ml of fraction was collected and the absorbance was measured spectrophotometrically at 260 μm. The material from each peak is combined and then separately concentrated by ultrafiltration. A simplified method for preparing virus from diarrheal stool material from test calves is also applied.
Centrifuge the stool material directly at 3400G for 30 minutes. A portion of the supernatant liquid was diluted with dichlorodifluoromethane.
Extract times. The aqueous layer (5 ml) and untreated supernatant (5 ml) material are subjected to sucrose gradient centrifugation as described above. Virus concentrated by concentration gradient centrifugation is used for electron microscopy studies and as an antigen for immunization of rabbits for the preparation of formulations for immunofluorescence analysis. Blood was collected (14 ml) from the viscera of a 6-month-old white rabbit, and then 0.4 ml of antigen was collected.
and 0.6ml of complete Freund's auxiliary solution.
Intramuscular injections were given at 4 sites at 0.25 ml per site. Five weeks after inoculation, 40 ml of blood is collected by cardiac puncture. Gamma globulin labeled with fluorescein was prepared using a known method (Proc.USLivestoek San.Assn.
, October 1968, pp. 139-144) from post-inoculation serum. The presence of the coronavirus-like agent can be detected in the infected intestine by immunofluorescence using the formulation prepared above. The specificity of this formulation against coronavirus-like agents is clearly demonstrated by the test method described below. When sections of the intestines of calves with diarrhea infected with a coronavirus-like agent were stained with the combination, fluorescence of trophoblastic cells was observed. Intestines from the same calf showed no fluorescence when stained with the complex for the reovirus-like factor described above. Intestinal sections from diarrheal calves infected with reovirus-like viruses were positive when stained with a complex for reovirus-like factors and negative when stained with a complex for coronavirus-like factors. Intestinal sections from calves with normal gnotobiosis showed no fluorescence when stained with a complex for coronavirus-like agents. Virus morphology: The virus-containing zone obtained by concentration gradient ultracentrifugation purification method is examined by electron microscopy. Droplets from the band are applied to a 200 mesh copper grid previously coated with collodion and reinforced with vapor deposited carbon. These droplets remain on the grid for 3 to 25 minutes depending on the degree of light scattering of the band under test. Excess liquid is blotted with paper and then a small drop of vanadium molybdate-phosphotungstic acid solution is added onto the grid. The dye is allowed to distill over the grid for 1 to 1.5 minutes before the excess is removed with a blotter. The sample is examined using an electron microscope with a magnification of 32,000x or higher. Dimension measurements are performed by dimensional analysis of the electron micrograph of the sample and by using a diffraction grating replica taken immediately after taking the electron micrograph of the sample without changing the equipment set. The dimensions of the complete virus particles ranged from 107 to 160 μm in the same micrograph and had surface protrusions similar to those seen on coronaviruses. As measured by electron microscopy,
The average size of the particles including surface protrusions was 126 μm. The nuclear capsid was plesiomorphic, varying in size and shape from circular to oblong. The outer skin of the capsid is the fringe.
This becomes especially clear when the The width of the outer edge is maximum
It varies up to 23μm. The surface projections of the well-retained grains are petal-shaped, connected to the grains by elongated pods, and have an average length of 11 μm. The coronavirus-like agents described in this invention are easily distinguished from other viruses that have been demonstrated or proposed to be pathogenic in newborn calves on the basis of size and morphological characteristics. . The coronavirus-like agents mentioned here include enterovirus, bovine pneumonia-enteritis virus, bovine diarrhea virus,
It has morphological characteristics different from neonatal calf diarrhea virus (ioform) and Haeden virus, and is larger than these. This new agent is smaller than bovine infectious rhinotracheitis virus and lacks its typical morphological features. Buoyant density of purified coronavirus-like agent
density) is 1.24 using CsCl, while the buoyant density of reovirus-like factor is 1.359 [Can.J.Comp.Med., p. 35 (1971)]. The physiological effects of coronavirus-like agents are also different from those of reoviruses. The incubation period after oral inoculation of reovirus-like agents to gnotobiotic cattle can be as short as 13.5-14 hours, whereas the minimum incubation period observed for coronavirus-like agents is 18 hours. Furthermore, gnotobiosis cows infected with reovirus exhibit symptoms of diarrhea for 5 to 8 hours, and then return to normal 24 hours after the onset of diarrhea. In contrast, gnotobiosis cows infected with coronavirus-like agents may have severe diarrhea, continue to have diarrhea for five or more days, or even die two to three days after the onset of diarrhea. Methods for producing and using vaccines: Effective methods for carrying out the present invention will be explained below by way of examples, but these are not intended to limit the present invention in any way. The coronavirus-like agent obtained from infected cattle multiplies on fetal bovine kidney cells. The virus can also be grown on cells from tissues or cell lines of bovine or other origin. A monolayer cell culture medium is prepared by known methods and inoculated with the coronavirus-like agent. Typically, the monolayer medium is washed with Hanks' balanced salt solution, then the virus inoculum is added and allowed to absorb for several hours, usually 2 hours, at about 37°C.
0.5% lactalbumin hydrolyzate (abbreviated as LAH), 0.1% yeast extract, and 100 units of penicillin and 200μ of streptomycin per ml.
Earle's Balanced Salt Solution storage medium containing 100 g is then added to 30-40°C, preferably about
Incubate for 2-10 days at ℃. The virus is collected, for example, by draining the supernatant from the cells. The virus inoculum can be feces collected from coronavirus-infected cows or culture fluid from coronavirus-like virus cultures. Stool can be collected as is or diluted with phosphate buffer (PH7.2).
Centrifuge at 1000G for 20 minutes and the supernatant can be used as inoculum. Other storage media can be used, such as modified Eagle's medium containing lactalbumin hydrolyzate. The selection of the medium can be done according to the common sense of those skilled in the art. Effectively attenuated coronavirus vaccines are obtained by subculturing purified virus in fetal bovine kidney cells a sufficient number of times to ensure that inoculated cattle do not become ill when challenged with the virulent virus. . Typically, the virus needs to be passaged 5 to 60 times, and this passage is carried out in primary or secondary cells (primary cells have been passaged once) or in higher passage cells or cell lines. High-passage cells that have been subcultured 10 times or more may be considered cell lines. Preferred methods include a combination of subculturing on primary or secondary cells and higher passage cells or cell lines. Virus titer is determined by standard methods. For example, cells inoculated with virus dilutions are cultured for 5 days in tubes containing fetal bovine kidney cells. The presence of viruses can be detected by e.g. cytopathic effects, immunofluorescence,
Or measured by blood absorption method. More specifically, an effectively attenuated vaccine is produced by the method described below. Prepare bovine fetuses and prepare large amounts of primary kidney cells. Several bottle and coverslip media were prepared from the primary cells and the remaining primary cells were treated with 0.5% LAH, 10% adult bovine serum, and 10% LAH.
Add Earle's balanced salt solution containing % dimethyl sulfoxide and freeze. The bottles and coverslip medium are inoculated with a virus-containing solution as described herein and incubated at 37°C. Once a few fluorescent cells are observed on the coverslip medium, thaw the frozen primary cells from the same fetus and form a monolayer medium by standard methods. Fluid from this infected primary cell culture is subcultured into these secondary cell cultures. Six to seven days after inoculation, the liquid from the secondary cell medium is used to inoculate another secondary cell medium. For passages 1 through 15, 2 ml of liquid is used to inoculate 8 oz. bottles as described above. For passages 15 to 25, add 2 ml of liquid to the storage medium in the bottle. After 25 passages, add 1 ml of inoculum to the storage medium in each bottle. Once the coronavirus-like agent has been passaged in tissue culture for passages 5-20, a series of serial passages is begun with cells from the secondary cells. At each passage,
Only a small portion of the cells are infected, and the remaining uninfected cells are subcultured to serve as cells at a subsequent high-passage culture level. This type of cell culture medium is called a passage cell culture medium. A suitable cell-virus system is formed by continuing to subculture the virus in continuous cell culture medium. Virus in secondary cell culture medium
After ~20 passages, the virus can be passaged 5 to 40 times or more in subculture cell culture to obtain an effectively attenuated coronavirus-like virus vaccine. The culture period for subculturing the virus decreases as the number of passages increases, and subculturing on higher passage cells or cell lines can be performed for 2 to 7 days. Each passage is carried out until cytopathic effects occur. The vaccine uses cell lines from fetal bovine kidney or other tissues or cell lines of bovine or other origin, such as bovine lung, bovine nasal turbinate cell lines or porcine kidney cells or cell lines, in which the tissue culture contains approximately 37
Culture at °C until an appropriate virus titer is obtained.
It can then be produced by collecting the virus. A titer of 10 2 to 10 6 .5 , preferably 10 4 to 10 6 is obtained. Vaccines can be used in liquid or lyophilized form. For subsequent use, it can be reconstituted by diluting with a sterile diluent such as distilled water. A preferred product consists of a virus that has been attenuated by being passaged 12 times on secondary cells and then 15 times on cells that have themselves been passaged between 9 and 27 times. The total subculture level is thus 27 times. Vaccines have been produced that have been passaged up to 35 times. Additionally, effective inactivated vaccines are produced by inactivating coronavirus-like agents. usually,
It is produced by first culturing this factor on fetal bovine kidney cells as described above until a suitable titer is obtained. The titer should be as high as possible within the above range. Viruses at any level of cell subculture, even non-attenuated viruses, can be used. The virus is then inactivated using inactivating agents or means known to those skilled in the art, such as formalin, β-propiolactone, ultraviolet light, or heat, at 20-40°C to effectively inactivate the virus. It is inactivated by treatment for a time and concentration. These details are known to those skilled in the art. Adjuvants can be added to promote antigenicity. The adjuvants may be any known to those skilled in the art, such as aluminum hydroxide gel, potassium alum, alginates, or other adjuvants such as oil bases or mineral or organic oils. A typical method for producing an inactivated vaccine is as follows. A coronavirus-like agent at the level of 27 passages as described above is used. Add formalin to the virus-containing culture medium to a concentration of 0.2%. These liquids are then left at 37° C. for 1 to 2 days. Add aluminum hydroxide gel adjuvant to this inactivated virus to a 10% concentration. Adjust the pH to approximately 7.2 with aluminum hydroxide. This attenuated vaccine can be administered to calves, preferably newborn calves, in doses of 1 to 5 ml containing 10 2 to 10 6.5 TCID/ml to confer immunity against virulent viruses. The inactivated vaccine is administered parenterally in a dose of 1 to 5 ml to pregnant cows 30 to 90 days before production or to newborn calves as soon as possible after birth, and confers a protective effect against coronavirus-like agents. Additionally, a combination vaccine, preferably consisting of an inactivated coronavirus and any other viral agent, is used to immunize calves or adult cattle. Preferred composites include inactivated coronaviruses and reoviruses, both of which are produced by inactivating non-attenuated or live attenuated viruses by chemical agents, radiation or heat. Coronaviruses can also be complexed with bovine adenovirus, live diarrhea virus, or other bovine pathogens such as Escherichia coli or Clostridia Sp. Combined vaccines containing coronavirus and reovirus are produced by mixing equal amounts of both inactivated viral agents. Next, formalin at a concentration of 0.2% and aluminum hydroxide gel were added to this.
Add 10% by volume. This vaccine is administered parenterally in 1 to 5 ml to pregnant cows. This combination vaccine can be administered to both calves and pregnant cows. Combined vaccines confer protection to newborn calves via colostrum and/or milk antibodies. Furthermore, protection against both factors can be achieved by immunizing pregnant cows with an inactivated reovirus-like vaccine and then administering an attenuated coronavirus-like vaccine to the calf.
Protective effects against both factors can also be conferred by immunizing pregnant cows with an inactivated coronavirus-like vaccine and then administering an attenuated reovirus-like vaccine to the calves. Additionally, a combination vaccine containing an attenuated coronavirus and a reovirus-like agent can be administered to pregnant cows. Vaccines prepared at various cell culture subculture levels were administered to approximately 7-hour-old gnotobiotic calves, and the calves were then exposed to a virulent virus (a virulent coronavirus-like virus collected from the diarrheal feces of infected cows). ) to test the efficacy of the attenuated virus vaccine. These test results are shown in Tables 1 and 2.
Shown in the table. Calf 1 was orally inoculated with 10 ml of cell culture fluid obtained by subculturing the virus 14 times on secondary fetal bovine kidney cells.
The patient developed diarrhea and then recovered. On the 9th day of life, this calf was given 10 ml of diarrheal stool (toxic virus).
The animal was orally inoculated with 20ml of PBS, but no symptoms occurred. 15 Virus on Secondary Bovine Fetal Kidney Cells
When calf 2 was inoculated with 10 ml of the subculture, it did not cause diarrhea and did not become ill even after being challenged with the virulent virus. When calves 3 and 4 were inoculated with 10 ml of the virus that had been cultured 16 times on secondary fetal bovine kidney cells, a weak onset of diarrhea was observed. When calf 3 was sacrificed some time after the onset of diarrhea and sections of the small intestine and colon were stained with a compound for coronavirus-like agents, immunofluorescence was observed in the intestinal villi and epithelium of the colon. Calf 4 was inoculated with a toxic virus found in diarrheal stool on the 6th day after birth, but did not develop any disease. When calf 6 was orally inoculated with 5 ml of the virus that had been cultured 19 times on secondary fetal bovine kidney cells, diarrhea developed. Viruses cultured at least 5 times on high-passage fetal bovine kidney cells, 13 to 25 times cultured, and 5 ml were added to 12 calves (No. 7 to 13 and No. 15).
-19) did not develop diarrhea after oral inoculation, and, with the exception of calf 18, no disease occurred even after oral inoculation with feces containing the toxic virus. A combined vaccine containing inactivated coronavirus and reovirus was tested on adult cattle from two farms (farms contaminated with virulent coronavirus-like viruses). The vaccine was produced from formalin-inactivated 27-passage cultured coronavirus and formalin-inactivated 201-passage cultured reovirus (on primary bovine kidney and bovine kidney cell lines). Equal amounts of each inactivated virus were mixed with each other, and 10% aluminum hydroxide gel was added. Explanation of the table for the test results in Tables 1 and 2: D = Diarrhea onset, N = No abnormality, b = Number of passages of virus on primary or secondary cells + on higher passage cells Number of passages at.

【表】【table】

【表】【table】

【表】 以下に本発明の実施態様を列記する。 1 コロナウイルス状牛下痢ウイルスを該ウイル
スの生育を維持する組織培地にて、該ウイルス
を新生子牛に接種した場合に有毒ウイルスの攻
撃に対して発病を抑制せしめるまで5〜約60回
継代接種することを特徴とするコロナウイルス
状牛下痢ウイルスの弱毒化方法。 2 前記1において、継代培養を牛胎児腎臓細胞
の組織培地にて30〜40℃で行う方法。 3 前記2において、全継代培養回数が10〜40回
であり、そのうち5〜10回の継代培養を一次ま
たは二次牛胎児腎臓細胞培地にて行ない、残余
の継代培養を高次継代培養した牛胎児腎臓細胞
培地にて行なう方法。 4 前記1の方法により製造した、弱毒化したコ
ロナウイルス状牛下痢ウイルスを含有してなる
牛下痢ワクチン。 5 前記2の方法により製造され、弱毒化したコ
ロナウイルス状牛下痢ウイルスを含有してなる
牛下痢ワクチン。 6 前記3の方法により製造され、弱毒化したコ
ロナウイルス状牛下痢ウイルスを含有してなる
牛下痢ワクチン。 7 コロナウイルス状牛下痢ウイルスを牛胎児腎
臓細胞培地で、該ウイルスの大量を増殖させる
に十分な期間増殖せしめ、ついで生成するウイ
ルス性物質を採集することを特徴とする弱毒化
したコロナウイルス状牛下痢ウイルスの大量製
造方法。 8 前記7の方法により製造され、弱毒化したコ
ロナウイルス状牛下痢ウイルスを含有させた牛
下痢ワクチン。 9 コロナウイルス状牛下痢ウイルスを不活性化
し、これを補助薬に配合することを特徴とする
不活性化コロナウイルス状牛下痢ワクチンの製
造方法。 10 前記9において、不活性化剤がホルマリンで
ある方法。 11 前記9の方法により製造され、不活性化した
コロナウイルス状牛下痢ウイルスおよびその補
助薬を含有させた不活性化コロナウイルス状牛
下痢ワクチン。 12 不活性化コロナウイルス状牛下痢ウイルスお
よび牛の病原に対し効果的な他の免疫剤を含有
させた複合牛下痢ワクチン。 13 不活性化コロナウイルス状牛下痢ウイルスお
よび不活性化レオウイルス状牛下痢ウイルスを
含有させた複合牛下痢ワクチン。 14 前記1に記したワクチンを新生牛に経口投与
することを特徴とする、コロナウイルス状牛下
痢ウイルスにより起こされる新生牛下痢に対す
る新生牛の免疫方法。 15 前記9に記したワクチンを新生牛出産前に成
年の妊娠牛に非経口的投与することを特徴とす
る、コロナウイルス状牛下痢ウイルスにより起
こされる新生牛下痢に対する新生牛の免疫方
法。 16 前記13に記した複合ワクチンを新生牛出産前
に成年の妊娠牛に非経口的投与することを特徴
とする、コロナウイルス状またはレオウイルス
状牛下痢ウイルスにより起こされる新生牛下痢
に対する新生牛の免疫方法。
[Table] Embodiments of the present invention are listed below. 1. Passage the coronavirus-like bovine diarrhea virus 5 to about 60 times in a tissue culture medium that maintains the growth of the virus until the virus is inoculated into newborn calves and the onset of the disease is suppressed against attack by the virulent virus. A method for attenuating coronavirus-like bovine diarrhea virus, which comprises inoculation. 2. The method according to 1 above, wherein the subculture is carried out in a tissue culture medium of fetal bovine kidney cells at 30 to 40°C. 3 In 2 above, the total number of subcultures is 10 to 40 times, of which 5 to 10 subcultures are performed in primary or secondary bovine fetal kidney cell culture medium, and the remaining subcultures are carried out in high-order subcultures. A method performed using subcultured bovine fetal kidney cell culture medium. 4. A bovine diarrhea vaccine containing an attenuated coronavirus-like bovine diarrhea virus produced by the method in 1 above. 5. A bovine diarrhea vaccine produced by the method of 2 above and containing an attenuated coronavirus-like bovine diarrhea virus. 6. A bovine diarrhea vaccine produced by the method of 3 above and containing an attenuated coronavirus-like bovine diarrhea virus. 7. An attenuated coronavirus-like bovine diarrhea virus characterized by growing the coronavirus-like bovine diarrhea virus in a fetal bovine kidney cell culture medium for a period sufficient to proliferate a large amount of the virus, and then collecting the generated viral material. A method for mass production of diarrhea virus. 8. A bovine diarrhea vaccine produced by the method described in 7 above and containing an attenuated coronavirus-like bovine diarrhea virus. 9. A method for producing an inactivated coronavirus-like bovine diarrhea vaccine, which comprises inactivating the coronavirus-like bovine diarrhea virus and incorporating it into an adjuvant. 10 The method according to 9 above, wherein the inactivating agent is formalin. 11. An inactivated coronavirus-like bovine diarrhea vaccine produced by the method described in 9 above, containing an inactivated coronavirus-like bovine diarrhea virus and its adjuvant. 12 A combined bovine diarrhea vaccine containing inactivated coronavirus-like bovine diarrhea virus and other immunizing agents effective against the pathogen in cattle. 13 A combined bovine diarrhea vaccine containing inactivated coronavirus-like bovine diarrhea virus and inactivated reovirus-like bovine diarrhea virus. 14. A method for immunizing newborn cows against newborn cow diarrhea caused by coronavirus-like bovine diarrhea virus, which comprises orally administering the vaccine described in 1 above to newborn cows. 15. A method for immunizing newborn cows against newborn cow diarrhea caused by coronavirus-like bovine diarrhea virus, which comprises parenterally administering the vaccine described in 9 above to adult pregnant cows before the birth of the newborn cow. 16 A method for treating newborn cow diarrhea caused by coronavirus-like or reovirus-like bovine diarrhea virus, which is characterized by parenterally administering the combination vaccine described in 13 above to adult pregnant cows before the birth of the new cow. Immunization methods.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 非弱毒化コロナウイルス状牛下痢ウイルスを
ホルマリン、β.プロピオラクトン、紫外線照射
または熱により処理して不活性化し、これを、水
酸化アルミニウムゲル、カリウム明ばん、アルギ
ン酸塩、油基剤、鉱油および有機物油からなる群
から選ばれる補助薬と合することを特徴とする新
生子牛下痢ワクチンの製法。
1. A non-attenuated coronavirus-like bovine diarrhea virus was treated with formalin, β. Propiolactone, inactivated by treatment with UV irradiation or heat, and combined with adjuvants selected from the group consisting of aluminum hydroxide gel, potassium alum, alginates, oil bases, mineral oils and organic oils. A method for producing a newborn calf diarrhea vaccine characterized by the following.
JP12675178A 1972-10-30 1978-10-13 Manufacture of newly born calf diarrhea vaccine Granted JPS5531058A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US30217972A 1972-10-30 1972-10-30

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