JPS61120058A - Method and instrument for analyzing intended component - Google Patents

Method and instrument for analyzing intended component

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Publication number
JPS61120058A
JPS61120058A JP59241679A JP24167984A JPS61120058A JP S61120058 A JPS61120058 A JP S61120058A JP 59241679 A JP59241679 A JP 59241679A JP 24167984 A JP24167984 A JP 24167984A JP S61120058 A JPS61120058 A JP S61120058A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
protein
target component
column
exchange resin
eluent
Prior art date
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Pending
Application number
JP59241679A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Junkichi Miura
順吉 三浦
Yoshitada Takada
高田 芳矩
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hitachi Ltd
Original Assignee
Hitachi Ltd
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Filing date
Publication date
Application filed by Hitachi Ltd filed Critical Hitachi Ltd
Priority to JP59241679A priority Critical patent/JPS61120058A/en
Publication of JPS61120058A publication Critical patent/JPS61120058A/en
Pending legal-status Critical Current

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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing

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  • Microbiology (AREA)
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  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
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  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

PURPOSE:To analyze a physiological material conjugated with protein, etc. in a short period with high accuracy by controlling the pH of the soln. of a material to be detected conjugated with the intended component and protein, electrifying said material and adsorbing such material to a macro-network ion exchange resin then eluting only the intended component. CONSTITUTION:A sample soln. of the material to be detected consisting of the protein conjugated with the component to be analyzed, for example, serum, etc. is adjusted in pH to decrease the pH by the protein. Such sample soln. is supplied from an injection part 2 into a column 3 packed with the cation exchange resin and in the case of increasing the pH, anion exchange resin having respectively the macro-network structure. The elutes of which the pH is changed according to the intended component are thus supplied from respective storage tanks 8A, 8B, 8C to the column 3 adsorbed with the protein in the above-mentioned manner. The eluted component is separated by a column 4 and the absorbancy of, for example, the separated component is measured by an analyzing instrument 6 the result thereof is displayed on a recorder 7. The protein removal is thus quickly and substantially executed and the exact analysis is executed.

Description

【発明の詳細な説明】 〔発明の利用分野] 本発明は溶液中で蛋白質と結合している低分子量の生理
物質、薬物、その代謝物などの目的成分を蛋白質から分
離して分析する分析方法及びその分析装置に関する。
[Detailed Description of the Invention] [Field of Application of the Invention] The present invention provides an analysis method for separating and analyzing target components such as low molecular weight physiological substances, drugs, and their metabolites bound to proteins in solution from proteins. and its analysis device.

〔発明の背景〕[Background of the invention]

従来、蛋白質と結合した目的成分を分析するには、被検
溶液中に含有される蛋白質を除去せずに行う生物学的方
法と、また、蛋白質を物理的、化学的操作により除去し
た後に分析を行う物理的方法、化学的方法がある。
Conventionally, to analyze target components bound to proteins, there are biological methods that do not remove the proteins contained in the test solution, and methods that are performed after removing the proteins by physical or chemical manipulation. There are physical and chemical methods to do this.

上記生物学的方法は目的成分と特異的に反応を行う酵素
を用いて目的成分の分析を行うものであるが、酵素の安
定性に問題があ)、分析結果の再限性、分析の操作性等
において不利となる場合が多い。
The above biological method analyzes the target component using an enzyme that specifically reacts with the target component, but there are problems with the stability of the enzyme), the relimitability of the analysis results, and the manipulation of the analysis. There are many disadvantages in terms of gender etc.

また、上記化学的分析法は、蛋白質と結合した目的成分
に塩酸を作用させて蛋白質を変性沈澱する際に目的成分
と分離してその分析を行おうとするものである。この分
析法では蛋白質が沈澱する際に、目的成分も蛋白質と一
緒に沈澱する虞れがあシ分析のデータの精度上問題があ
る。
In addition, the above chemical analysis method attempts to separate the target component from the target component when hydrochloric acid is applied to the target component bound to the protein to denature and precipitate the protein, and then perform analysis on the target component. In this analysis method, when the protein is precipitated, there is a risk that the target component will also be precipitated together with the protein, which poses a problem in terms of the accuracy of the analysis data.

そこで、物理的方法として蛋白質を酸または塩基で荷電
し、この荷電した蛋白質をイオン交換樹脂に通過させて
吸着する。そして吸着後pHの条件を変化させて蛋白質
から目的成分のみを除去するものがある。
Therefore, as a physical method, proteins are charged with acids or bases, and the charged proteins are passed through an ion exchange resin and adsorbed. There is also a method that removes only the target component from proteins by changing the pH conditions after adsorption.

しかし、この物理的方法によると目的成分とともに蛋白
質が溶出する虞れがある。そこでこれらの問題点を考慮
し、特開昭58−2230614+、特開昭58−22
3062号に開示されているように、蛋白質をコーティ
ングした分離材が充填されたカラムを利用して、このカ
ラムに分析試料を通過させ、蛋白質と結合した目的成分
を吸着し、一方蛋白質は吸着しないで除蛋白を行う方法
もある。
However, with this physical method, there is a possibility that the protein will be eluted together with the target component. Therefore, considering these problems, Japanese Patent Application Laid-Open No. 58-2230614+, Japanese Patent Laid-Open No. 58-22
As disclosed in No. 3062, a column filled with protein-coated separation material is used, and an analysis sample is passed through this column, and target components bound to proteins are adsorbed, while proteins are not adsorbed. There is also a method of removing protein.

しかし、上記従来例は目的成分の回収率等において優れ
ているが、除蛋白用のカラムと目的成分の分離1分析を
行う分離カラムのそれぞれに送液ポンプが必要とな夛、
装置構成か複雑なために分析の精度が低下するという問
題点があった。
However, although the conventional example described above is excellent in the recovery rate of the target component, it requires a liquid pump for each of the column for protein removal and the separation column for separation and analysis of the target component.
There was a problem in that the accuracy of analysis decreased due to the complicated device configuration.

すなわち、上記の種々の方法では目的成分と結合した蛋
白の除蛋白を行って目的成分の分析行うについては、有
効な除蛋白法がないために蛋白質と結合した目的成分の
分離1分析の精度が十分でなかった。
In other words, in the various methods described above, the accuracy of separation 1 analysis of the target component bound to protein is low because there is no effective protein removal method for analyzing the target component by deproteinizing the protein bound to the target component. It wasn't enough.

〔発明の目的〕[Purpose of the invention]

本発明の目的は目的成分と結合した蛋白の除蛋白を迅速
かつ十分、簡便に行い、従って、目的成分の分析を精度
よく行うことのできる目的成分の分析方法およびその分
析装置を提供することにある。
An object of the present invention is to provide a method and an apparatus for analyzing a target component, which can quickly, sufficiently, and easily remove proteins bound to the target component, and can therefore analyze the target component with high precision. be.

〔発明の概要〕[Summary of the invention]

本発明者らは巨大網状イオン交換樹脂(スチレントジビ
ニルベンゼンの共重合体で、主に粒径が3〜100μm
の微粒子ゲルにイオン交換基が結合したものとアルブミ
ン(主に血液等の生体液中の蛋白質であって、糧々の活
性物質と結合している。)との相互作用について糧々の
検討を行った結果、次のような知見を得るに致った。
The present inventors have developed a giant reticular ion exchange resin (a copolymer of styrene divinylbenzene, mainly with a particle size of 3 to 100 μm).
We have conducted extensive studies on the interaction between microparticle gels with ion-exchange groups bound to albumin (a protein mainly found in biological fluids such as blood, which is bound to active substances in our daily lives). As a result, we obtained the following knowledge.

すなわち、蛋白質は両性電解質であるため、このものの
総電荷はpHによって変化し、等電点より低いpHでは
正になり陽イオン交換体に吸着され、等電点より高いp
Hで負になるため陰イオン交換体に吸着される。ところ
が、このイオン交換体に巨大網状イオン交換樹脂を用い
ると% pHを調整して蛋白質が吸着し得る条件で上記
巨大網状イオン交換樹脂に吸着させると%(1)pHを
変えて上記蛋白質の吸着しない条件にしても、(2)イ
オン強度を3 mot/ L (Na CL )以上に
しても、(3)アセトントリル等の有機溶媒t7o1(
V/Vlに上げても、もはや上記蛋白質は溶出しない現
象を見出した。蛋白質としては比較的分子量の小さいチ
トクローム(分子量約12000トルトン)、ミオグロ
ビン(同17500ドルトン)においても同様でおった
In other words, since proteins are ampholytes, their total charge changes depending on the pH; at a pH lower than the isoelectric point, it becomes positive and is adsorbed on a cation exchanger, and at a pH higher than the isoelectric point, it becomes positive.
Since it becomes negative with H, it is adsorbed on an anion exchanger. However, when a giant reticulated ion exchange resin is used as the ion exchanger, the adsorption of the protein increases by changing the pH. (2) Even if the ionic strength is set to 3 mot/L (Na CL ) or higher, (3) organic solvents such as acetone tril (
We have found that the above protein no longer elutes even when the concentration is increased to V/Vl. The same was true for cytochrome (molecular weight approximately 12,000 toltons) and myoglobin (molecular weight approximately 17,500 toltons), which have relatively small molecular weights as proteins.

このように、蛋白質が巨大網状イオン交換樹脂から容易
に脱離しないのは、この樹脂内の100人程度の分子内
穴部に蛋白質が入り込むためであると考えられる。
The reason why proteins are not easily desorbed from the giant reticular ion exchange resin is thought to be because the proteins enter into the pores within the molecules of about 100 molecules within this resin.

従って、巨大網状イオン交換樹脂を充填剤として例えば
、蛋白吸着カラムとして用いることによシ、溶離液のp
Hを調整するだけで目的成分と結合した蛋白質から目的
成分のみを分離して、その分析を行うことができる。
Therefore, by using a giant reticulated ion exchange resin as a packing material, for example, in a protein adsorption column, the eluent's p.
By simply adjusting H, only the target component can be separated from the protein bound to the target component and analyzed.

本発明はかかる知見に基づいてなされたものである。具
体的には本願第1の発明は目的成分と結合した蛋白質か
らなる被検物質を含有する溶液のpHを調節することに
よシ前記蛋白質を帯電状態にする第1工程と、巨大網状
イオン交換樹脂で前記帯電状態の蛋白質を吸着する第2
工程と、前記巨大網状イオン交換樹脂によって吸着され
た蛋白質から目的成分のみを分離する第3工程と、当該
第3工程において分離された目的成分の分析を行う第4
工程とからなることを特徴とする目的成分の分析方法で
あり、本願第2の発明は所定のpHを有するキャリア液
が供給されるキャリア液供給手段と、前記キャリア液に
目的成分と結合した蛋白質からなる被検物質を供給する
被検物質供給手段と、前記キャリア液中の所定のpHに
よって帯電した被検物質に含まれる蛋白質を吸着する巨
大網状イオン交換樹脂が充電された除蛋白カラムと、該
除蛋白カラム中に吸着された蛋白質から目的成分を溶離
する溶離液を前記除蛋白カラムに供給する溶離液供給手
段と、前記溶離液によって溶離された目的成分の分析を
行う分析手段とを備えたことを特徴とする目的成分の分
析装置である。
The present invention has been made based on this knowledge. Specifically, the first invention of the present application includes a first step of bringing the protein into a charged state by adjusting the pH of a solution containing a test substance consisting of a protein bound to a target component, and a giant reticular ion exchange process. A second layer adsorbs the charged protein with a resin.
a third step of separating only the target component from the protein adsorbed by the giant reticular ion exchange resin; and a fourth step of analyzing the target component separated in the third step.
A second invention of the present application is a method for analyzing a target component, which is characterized by comprising steps of: a carrier liquid supply means to which a carrier liquid having a predetermined pH is supplied; and a protein bonded to the target component in the carrier liquid. a protein removal column charged with a giant reticular ion exchange resin that adsorbs proteins contained in the charged test substance according to a predetermined pH in the carrier liquid; An eluent supply means for supplying an eluent to the protein removal column to elute the target component from the protein adsorbed in the protein removal column, and an analysis means for analyzing the target component eluted by the eluent. This is a target component analysis device characterized by the following.

〔発明の実施例〕[Embodiments of the invention]

次に本発明の好ましい実施例を添付図面に従って詳説す
る。
Preferred embodiments of the present invention will now be described in detail with reference to the accompanying drawings.

第1図は、本願第2の発明である目的成分の分析装置の
一実施例を示す全体構成図である。
FIG. 1 is an overall configuration diagram showing an embodiment of an apparatus for analyzing a target component, which is the second invention of the present application.

図において、キャリア液、または溶離液を貯留する貯留
槽8A、8B、8Cにはそれぞれ配管11、配管12.
配管13が接続されている。配管12と配管13は流路
切刃替え弁15で接続されており、配管13が接続され
た配管12は前記配管11を流路切シ替え弁5で接続さ
れている。
In the figure, storage tanks 8A, 8B, and 8C that store carrier liquid or eluent have piping 11, piping 12.
Piping 13 is connected. The pipes 12 and 13 are connected by a channel switching valve 15, and the pipe 12 to which the pipe 13 is connected is connected to the pipe 11 by a channel switching valve 5.

この流路切シ替え弁5には配管14が接続されており、
この配管14は巨大網状イオン交換樹脂が充填された除
蛋白カラム3に接続されている。配管14の途中にはポ
ンプ1、圧力計9A、および試料を注入するインジェク
ション部2が設けられている。除蛋白カラム3には配管
16が接続されておプ、この配管16は蛋白質から分離
された目的成分の分離を行う分離カラム4が接続されて
いる。1九、配管16には圧力計9Bが接続されている
。分離カラム4から出た配管17は検出器6に接続され
ており、検出器6内には分析結果を表示する記録計7が
接続され゛ている。
A pipe 14 is connected to this flow path switching valve 5,
This piping 14 is connected to a protein removal column 3 filled with a giant reticular ion exchange resin. A pump 1, a pressure gauge 9A, and an injection section 2 for injecting a sample are provided in the middle of the pipe 14. A piping 16 is connected to the protein removal column 3, and this piping 16 is connected to a separation column 4 for separating target components separated from proteins. 19. A pressure gauge 9B is connected to the pipe 16. A pipe 17 coming out of the separation column 4 is connected to a detector 6, and a recorder 7 for displaying analysis results is connected within the detector 6.

次に、本実施例の動作について説明する。Next, the operation of this embodiment will be explained.

先ず流路切シ替え弁の全てを閉鎖して、ポンプ1を駆動
することによりキャリア液貯留槽(図示せず)からキャ
リア液を除蛋白カラム3に導入する。次に、試料注入イ
ンジェクション部2から目的成分を結合し丸蓋白質から
なる被検物質を、キャリア液が除蛋白カラム3に行く上
流側に供給する。
First, all flow path switching valves are closed and the pump 1 is driven to introduce carrier liquid from a carrier liquid storage tank (not shown) into the protein removal column 3. Next, from the sample injection section 2, the target component is bound and the test substance consisting of round white matter is supplied to the upstream side where the carrier liquid goes to the protein removal column 3.

キャリア液は所定のpHを有しており、このpHによシ
被検物質に含まれる蛋白質は帯電し除蛋白カラム3内の
巨大網状イオン交換樹脂に吸着される。巨大網状イオン
交換樹脂は、スチレンとジビニルベンゼンの共重合体か
らなる微粒子ゲルに、蛋白質の帯電状態に対応したイオ
ン交換基が結合し7たものである。例えば、蛋白質が正
に帯電する場合には、陽イオン交換基をスチレンとジビ
ニルベンゼンに結合する必要がある。
The carrier liquid has a predetermined pH, and the proteins contained in the analyte are charged and adsorbed by the giant reticular ion exchange resin in the protein removal column 3 due to this pH. The giant reticular ion exchange resin is made by bonding ion exchange groups corresponding to the charged state of proteins to a microparticle gel made of a copolymer of styrene and divinylbenzene. For example, if the protein is positively charged, cation exchange groups need to be attached to styrene and divinylbenzene.

帯電した蛋白質が除蛋白カラム3に吸着した後には、流
路切り替え弁15t−閉鎖する一方で、流路切シ替え弁
5を開放することにより、貯留槽8入内の溶離液が除蛋
白カラム3に流入するようにする。
After the charged protein is adsorbed to the protein removal column 3, the flow path switching valve 15t is closed and the flow path switching valve 5 is opened, so that the eluent in the storage tank 8 is transferred to the protein removal column 3. so that it flows into

次に、所定時間経過後流路切シ替え弁15の調整により
、貯留MsB内の溶離液が貯留槽8A内の溶離液式りに
流れるようにする。同様にして、貯留槽8B内の溶離液
を除蛋白カラム3に導入して所定時間経過後、貯留槽8
C内の溶離液が貯留槽8B内の溶離液の代りに分離カラ
ムに導入される。
Next, after a predetermined period of time has elapsed, the flow path switching valve 15 is adjusted so that the eluent in the storage MsB flows in the same manner as the eluent in the storage tank 8A. Similarly, the eluent in the storage tank 8B is introduced into the protein removal column 3, and after a predetermined period of time has elapsed, the eluent in the storage tank 8B is
The eluent in C is introduced into the separation column instead of the eluent in reservoir 8B.

除蛋白カラム3で吸着された蛋白質に結合された目的成
分は、このカラム3に流れてくる溶離液により蛋白質と
分離される。そして、蛋白質と分離され木目的成分は分
離カラム4に導入された後、各目的成分に応じた保持時
間が決定され分析される。保持時間は予め標準試料を用
いて決定することができる。
The target component bound to the protein adsorbed by the protein removal column 3 is separated from the protein by the eluent flowing into the column 3. After the target wood components separated from proteins are introduced into the separation column 4, the retention time corresponding to each target component is determined and analyzed. The retention time can be determined in advance using a standard sample.

各1目的成分は溶離液の液性(pH)の違いによって、
各目的成分ごとに蛋白質から分離される。
Each target component is different depending on the liquid properties (pH) of the eluent.
Each target component is separated from the protein.

上記分離カラム4は蛋白質を吸着した除蛋白カラム3が
短いために、目的成分の分離能を高める目的で使用され
るものである。従って、この分離カラム4には、6稲の
クロマトグラフィーを用いることができる。
The separation column 4 is used for the purpose of increasing the separation ability of the target component, since the protein removal column 3 on which proteins are adsorbed is short. Therefore, this separation column 4 can be used for 6 types of chromatography.

分離カラム4で分離された各1目的成分は、検出器6に
導入され、各穐目的成分ごとに検出ピークが検出される
。この検出器6には例えば吸光度計、電位差計等が用い
ることができる。
Each target component separated by the separation column 4 is introduced into a detector 6, and a detection peak is detected for each target component. For example, an absorbance meter, a potentiometer, or the like can be used as the detector 6.

本実施例では、溶離液を3つの流路系により分離カラム
3に導入しているが、目的成分の性質により所定の溶離
液を用い、また、所定の溶離液の流路系を採ることがで
きる。
In this example, the eluent is introduced into the separation column 3 through three channel systems, but depending on the properties of the target components, it is possible to use a predetermined eluent and to adopt a predetermined flow channel system for the eluent. can.

次に上記実施例にかかる分析装置を用いた分析の実験例
について説明する。
Next, an experimental example of analysis using the analyzer according to the above embodiment will be explained.

(実験例1) 本実験例では血清中にタンパクと結合して存在するアロ
プリノールの分析を行った。
(Experimental Example 1) In this experimental example, allopurinol present in serum bound to protein was analyzed.

除蛋白カラム3には内径4頭、長さ1cntのステンレ
ス鋼製クロマト管に巨大網状陰イオン交換樹脂(日立ゲ
ル◆3013−N)を充填し、分離カラム4には内径4
6+aw、長さ25crnのステンレス鋼製クロマトf
に蛋白吸着カラムに用いたと同じ充填剤を充填した。分
離カラム4に用いる充填剤はこの例に限られるものでは
なく分析目的物質に応じて、種々の充填剤をも用いるこ
とができる。
The protein removal column 3 is a stainless steel chromatography tube with an inner diameter of 4 heads and a length of 1 cnt packed with a giant reticular anion exchange resin (Hitachi Gel◆3013-N), and the separation column 4 has an inner diameter of 4 heads and a length of 1 cnt.
6+aw, length 25 crn stainless steel chromato f
The column was packed with the same packing material used for the protein adsorption column. The packing material used in the separation column 4 is not limited to this example, and various packing materials can be used depending on the substance to be analyzed.

約1μgのアロプリノールとヒボキサンチンを人血清2
rr1tに溶解したものを被検物質とし、その20μt
をインジェクション2より注入し、キャリア液に混入し
たのち、アロプリノール、ヒボキサンチンと結合した血
清中の蛋白質を除蛋白カラム3に吸着させて、アロプリ
ノール等の分離・分析を行った。
Approximately 1 μg of allopurinol and hyboxanthin in human serum 2
The test substance is dissolved in rr1t, and 20μt of it is
was injected through injection 2 and mixed into the carrier liquid, and then the proteins in the serum bound to allopurinol and hyboxanthin were adsorbed to the protein removal column 3, and allopurinol and the like were separated and analyzed.

検出は250nmの波長の吸光光度法により行った。使
用した溶離液については8Aに0.001mot/ t
のリン醒衝液(1)H6,Ol、8Bには0、06 m
ol/ を塩化アンモニウム−0,01mol/l−リ
ン酸2水素アンモニウム−6%fV/V)アセトニトリ
ル混合液(pH4,8)を、8Cには、8Bの溶離液の
2倍の濃度のものを用いた。溶離液の流速は0.8ml
/mとし、8分間8人の溶離液を流した後、次に、10
分間8Bの溶離液を流し、次いで、15分間8Cの溶離
液を流す。分析結果を第2図(B)に示す。尚、比較の
ためにタン・くり質を含まないヒボキサンチンとアロプ
リノールの分析結果を第2図(A)に示す。第2図(A
)および同(B)によれば、検出ピークに差がなく、除
タンパクの前処理が不要であることが明らかである。
Detection was performed by spectrophotometry at a wavelength of 250 nm. The eluent used was 0.001 mot/t for 8A.
Phosphate buffer solution (1) H6,Ol, 0.06 m for 8B
ol/ ammonium chloride - 0,01 mol/l - ammonium dihydrogen phosphate - 6% fV/V) acetonitrile mixture (pH 4,8), and for 8C, use one twice the concentration of the eluent of 8B. Using. The eluent flow rate is 0.8ml
/m, and after running 8 eluents for 8 minutes, then 10
Run the eluent at 8B for minutes, then run the eluent at 8C for 15 minutes. The analysis results are shown in FIG. 2(B). For comparison, the analysis results of hyboxanthin and allopurinol, which do not contain protein or protein, are shown in FIG. 2(A). Figure 2 (A
) and (B), there is no difference in the detected peaks, and it is clear that pretreatment for protein removal is unnecessary.

なお、参考までに血清サンプルを数十回繰返して分析し
たあと除蛋白カラム3と分離カラム4の充填剤を取り出
し、血清蛋白の定量分析用キットであるフロムクレゾー
ルグリーン試薬で染色してみたところ、除蛋白カラム3
の充填剤のみが緑色に染色された。この事実から血清中
の蛋白質は除蛋白カラム3に保持され分離カラム4に到
達していないことが分った。
For reference, after repeatedly analyzing a serum sample several dozen times, we removed the packing materials from protein removal column 3 and separation column 4 and stained them with Fromcresol Green Reagent, a kit for quantitative analysis of serum proteins. Deproteinization column 3
Only the filling material was stained green. This fact revealed that the proteins in the serum were retained in the protein removal column 3 and did not reach the separation column 4.

(実験例2) 実験例1で用いたのと同じ除蛋白カラム3に巨大網状陽
イオン交換樹脂1臼立ゲル÷3013−8を充填し、分
離カラム4には内径4w++ms長さ15副のステンレ
ス鋼製クロマト管に陽イオン交換樹脂日立カスタムイオ
ン交換樹脂す2619Fを充填したものを用いた。肝炎
患者の分離血漿10μtを検体とし、上記実施例に示す
分析装置に注入し、含有アミノ酸の分析を行った。検出
はオルトフタルアルデヒド(OPA)の発蛍光反応を利
用し、励起波長360nm、蛍光波長440nmとじた
溶離液は表1に示す試薬を蒸留水1tに溶解したものを
用いた。
(Experimental Example 2) The same protein removal column 3 used in Experimental Example 1 was filled with giant reticular cation exchange resin 1 millimeter gel ÷ 3013-8, and the separation column 4 was filled with a stainless steel column with an inner diameter of 4 W++ ms and a length of 15. A steel chromato tube filled with cation exchange resin Hitachi Custom Ion Exchange Resin 2619F was used. 10 μt of isolated plasma from a hepatitis patient was used as a sample and injected into the analyzer shown in the above example, and the amino acids contained therein were analyzed. The detection utilized the fluorescence reaction of orthophthalaldehyde (OPA), and the eluent used was an excitation wavelength of 360 nm and a fluorescence wavelength of 440 nm. The reagents shown in Table 1 were dissolved in 1 ton of distilled water.

表1 アミノ酸分析用溶離組成 流速はO,tm//腫とし、8A、8Bの混合割合は表
2に示すようにした。
Table 1 Elution composition for amino acid analysis The flow rates were O, tm//, and the mixing ratio of 8A and 8B was as shown in Table 2.

表2 溶離液の混合割合 なお、本実験例では貯留槽8C内には除蛋白カラム3で
吸着された蛋白質の溶離を行う洗浄液が貯留されている
。この洗浄液はアセトンに濃アルカリが加えられたもの
である。低濃度あるいは中濃度アルカリでは除蛋白カラ
ム3で吸着された蛋白質の溶離を行うことができない。
Table 2 Mixing ratio of eluent Note that in this experimental example, a cleaning solution for eluating the protein adsorbed by the protein removal column 3 is stored in the storage tank 8C. This cleaning solution is acetone with concentrated alkali added. The protein adsorbed by the protein removal column 3 cannot be eluted with low or medium concentration alkali.

上記OPA試薬はその流速i0.6m/―とじ、0、3
3 ws I D X 3 mのコイル中、35Cで分
離カラム4の溶出液と反応させた。この結果を第3図に
示す。
The above OPA reagent has a flow rate of 0.6 m/-, 0.3
It was reacted with the eluate of separation column 4 at 35C in a coil of 3 ws IDX 3 m. The results are shown in FIG.

第3図によれば各種アミノ酸が精度良く分離されている
ことができる。なお、本実験例においても実験例1と同
様に夕/バクを含まない標準試料を用いて比較試験を行
った。その比較試験の結果は第3図の結果と同様である
ので図示を省略する。
According to FIG. 3, various amino acids can be separated with high accuracy. In addition, in this experimental example, as in Experimental Example 1, a comparative test was conducted using a standard sample that does not contain Yu/Baku. The results of the comparative test are the same as those shown in FIG. 3, so illustration is omitted.

本実験例によっても、蛋白質が除蛋白カラムで完全に除
却されていることがわかる。
This experimental example also shows that proteins are completely removed by the protein removal column.

(実験例3) 実験例1で用いた除蛋白カラムと同様のカラムを、分離
カラムには内径4.6wx、長さ25cmのステ/レス
鋼製クロマト管に逆相・分配用シリカゲル日立ゲルφ3
053を充填したものを用い、痛風患者血漿成分の分析
を行った。
(Experimental Example 3) A column similar to the protein removal column used in Experimental Example 1 was used as a separation column, and a stainless steel chromatography tube with an inner diameter of 4.6 wx and a length of 25 cm was filled with silica gel Hitachi gel φ3 for reverse phase and distribution.
Using a sample filled with 053, gout patient plasma components were analyzed.

先ず、痛風患者血漿20μtを第1図で示す装置のイン
ジェクション部2に注入し、貯留槽8人に50 m m
ol/ lのリン醗緩衝液(りH6,0)を流速1.0
m/−でカラム3に導入し、その他の貯留槽8B、8C
を用いない単一溶離法を採った。
First, 20 μt of gout patient plasma was injected into the injection section 2 of the device shown in Fig. 1, and 50 m
ol/l phosphorus buffer (RIH6,0) at a flow rate of 1.0
m/- into column 3, and other storage tanks 8B and 8C.
A single elution method was used without using.

検出は25Qnmの吸光光度法によった。分析の結果を
第4図に示す。
Detection was by spectrophotometry at 25Qnm. The results of the analysis are shown in Figure 4.

第4図によれば、痛風患者血漿に含まれる各遣成分が精
度良く分析されていることがわかる。従って、本実験は
実験例2と同様に臨床検査部門への有用性が大きいもの
となっている。
According to FIG. 4, it can be seen that each constituent contained in gout patient plasma has been analyzed with high accuracy. Therefore, like Experimental Example 2, this experiment is highly useful to clinical testing departments.

なお、本実験例においても、蛋白質を含まない標準試料
の比較試験を行ったが、その結果はに4図に示す結果と
同様であるので図示を省略しである。
In addition, in this experimental example, a comparative test was also conducted using a standard sample that does not contain protein, but the results are the same as those shown in FIG. 4, so illustration is omitted.

次に分析装置の他の実施例について説明する。Next, another embodiment of the analyzer will be described.

第5図は分析装置の他の一実施例を示す全体構成図であ
る。
FIG. 5 is an overall configuration diagram showing another embodiment of the analyzer.

本実施例において、除蛋白カラム3の圧力上昇を測定す
るために差圧計10が設置されているほかは第1図で示
した実施例と同様である。本実施例によれば蛋白吸着カ
ラムの劣化の状態が差圧計により把掘できるという効果
がある。
This embodiment is the same as the embodiment shown in FIG. 1, except that a differential pressure gauge 10 is installed to measure the pressure increase in the protein removal column 3. According to this embodiment, the state of deterioration of the protein adsorption column can be ascertained using a differential pressure gauge.

第6図は第5図と同様、分析装置の他の一実施例を示す
全体構成図である。
Similar to FIG. 5, FIG. 6 is an overall configuration diagram showing another embodiment of the analyzer.

本実施例において、上記の実施例と異なる点は、差圧#
IOの前後に多方切換弁21A、21Bを設置し、21
Bには実験例2で説明した洗浄液(再生液)24を除蛋
白カラム3に送液するポンプ22が設けられている点に
ある。
This embodiment differs from the above embodiments in that the differential pressure #
Multi-way switching valves 21A and 21B are installed before and after the IO,
B is provided with a pump 22 for feeding the washing liquid (regenerating liquid) 24 described in Experimental Example 2 to the protein removal column 3.

差圧計10の表示がある所定値を示したら切換弁21A
及び21Bを切換え、再生液24をポンプ22で蛋白吸
着カラム3に送り再生する。本実施例によれば蛋白吸着
カラム3を系からはずさないで再生できるという効果が
ある。
When the differential pressure gauge 10 shows a predetermined value, the switching valve 21A
and 21B, and the regenerating liquid 24 is sent to the protein adsorption column 3 using the pump 22 for regeneration. According to this embodiment, there is an effect that the protein adsorption column 3 can be regenerated without being removed from the system.

第7図はさらに、分析装置の他の一実施例を示す全体構
成図である。
FIG. 7 is an overall configuration diagram showing another embodiment of the analyzer.

本実施例において、第6図の実施例と異なる点は、イン
ジェクション部2と分離カラム4との間に制御装置25
、および自動6方切換弁23を設け、該自動6方切換弁
23を介して除蛋白カラム3、再生液24及び再生液送
液ポンプ22が接続されている点でろる。通常の分析で
は、溶離液24は自動6方切換弁23内の破線で示した
流路71′t−通シ、除蛋白カラム3を経由して分離カ
ラム4に至るようになっている。一方、分析を繰返た制
御装(ii25は信号Sz ’i:上記自動6方切換弁
23と再生液送液ポンプ22に出力し、それらを駆動さ
せる。この時には、溶離液は自動6方切換弁23内の実
線で示した流路?スΔり、除蛋白カラム3を経由しない
で分離カラム4に達する。そして、制御装置25によ逆
作動された再生液送液ポンプ22により再生液24が除
蛋白カラム3に送られ、このカラム3が再生される。本
実施例によれば分析と蛋白吸着カラムの再生が自動で行
えるという効果がある。
This embodiment is different from the embodiment shown in FIG.
, and an automatic six-way switching valve 23 are provided, and the protein removal column 3, the regenerating liquid 24, and the regenerating liquid feeding pump 22 are connected through the automatic six-way switching valve 23. In a normal analysis, the eluent 24 passes through a flow path 71' shown by a broken line in the automatic six-way switching valve 23, passes through the protein removal column 3, and reaches the separation column 4. On the other hand, the control device (ii25 is a signal Sz 'i) which is used to repeat the analysis and outputs the signal to the automatic six-way switching valve 23 and the regenerating liquid feed pump 22 to drive them. At this time, the eluent is The flow path shown by the solid line in the valve 23 travels through the flow path and reaches the separation column 4 without passing through the protein removal column 3.Then, the regeneration liquid 24 is supplied by the regeneration liquid feed pump 22 which is reversely operated by the control device 25. is sent to the protein removal column 3, and this column 3 is regenerated.According to this embodiment, analysis and regeneration of the protein adsorption column can be performed automatically.

なお、本実施例で示した除蛋白カラムの再生の制御は従
来の塊々のカラムクロマトグラフィー装置に用いること
もできる。
Note that the control of regeneration of the protein removal column shown in this example can also be applied to a conventional bulk column chromatography apparatus.

〔発明の効果〕〔Effect of the invention〕

以上説明したように本発明によれば、巨大網状イオン交
換樹脂を用いているために、目的成分と結合した蛋白質
を該目的成分から除却するのを十分に、ヤ)つ迅速に行
うことができる。従って、目的成分の分析を迅速かつ十
分に行うことができる。
As explained above, according to the present invention, since a giant reticular ion exchange resin is used, proteins bound to a target component can be removed sufficiently and quickly from the target component. . Therefore, analysis of the target component can be performed quickly and sufficiently.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図は本発明にかかる分析装置の一実施例を示す全体
構成図、第2図は本発明にかかる分析装置による分析実
験の結果を示すグラフ、第3図は肝炎患者血漿の分析実
験の結果を示すグラフ、第4図は痛風患者血漿の分析実
験の結果を示すグラフ、第5図ないし第7図は分析装置
の除蛋白カラムに差圧計10が設けられた実施例を示す
構成図である。 2・・・インジェクション部、3・・・除蛋白カラム、
4・・・分離カラム、6・・・分析装置、8A、8B、
8C・・・溶離液貯留槽、10・・・差圧計。
FIG. 1 is an overall configuration diagram showing one embodiment of the analyzer according to the present invention, FIG. 2 is a graph showing the results of an analysis experiment using the analyzer according to the present invention, and FIG. 3 is an example of an analysis experiment for hepatitis patient plasma. Graphs showing the results, FIG. 4 is a graph showing the results of an analysis experiment on gout patient plasma, and FIGS. 5 to 7 are configuration diagrams showing an embodiment in which a differential pressure gauge 10 is provided in the protein removal column of the analyzer. be. 2... Injection part, 3... Protein removal column,
4... Separation column, 6... Analyzer, 8A, 8B,
8C... Eluent storage tank, 10... Differential pressure gauge.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1、目的成分と結合した蛋白質からなる被検物質を含有
する溶液のpHを調節することにより前記蛋白質を帯電
状態にする第1工程と、巨大網状イオン交換樹脂で前記
帯電状態の蛋白質を吸着する第2工程と、前記巨大網状
イオン交換樹脂によつて吸着された蛋白質から目的成分
のみを分離する第3工程と、当該第3工程において分離
された目的成分の分析を行う第4工程とからなることを
特徴とする目的成分の分析方法。 2、所定のpHを有するキャリア液が供給されるキャリ
ア液供給手段と、前記キャリア液に目的成分と結合した
蛋白質からなる被検物質を供給する被検物質供給手段と
、前記キャリア液中の所定のpHによつて帯電した被検
物質に含まれる蛋白質を吸着する巨大網状イオン交換樹
脂が充電された除蛋白カラムと、該除蛋白カラム中に吸
着された蛋白質から目的成分を溶離する溶離液を前記除
蛋白カラムに供給する溶離液供給手段と、前記溶離液に
よつて溶離された目的成分の分析を行う分析手段とを備
えたことを特徴とする目的成分の分析装置。
[Scope of Claims] 1. A first step in which the protein is brought into a charged state by adjusting the pH of a solution containing a test substance consisting of a protein bound to a target component, and a step in which the protein is charged with a giant reticular ion exchange resin a second step of adsorbing the protein in the state, a third step of separating only the target component from the protein adsorbed by the giant reticular ion exchange resin, and an analysis of the target component separated in the third step A method for analyzing a target component, comprising a fourth step. 2. A carrier liquid supply means for supplying a carrier liquid having a predetermined pH; a test substance supply means for supplying a test substance consisting of a protein bound to a target component to the carrier liquid; A protein removal column charged with a giant reticular ion exchange resin that adsorbs proteins contained in a test substance charged by the pH of An apparatus for analyzing a target component, comprising: an eluent supply means for supplying the eluent to the protein removal column; and an analysis means for analyzing the target component eluted by the eluent.
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