JP2559535B2 - Inorganic anion analysis method and analyzer - Google Patents

Inorganic anion analysis method and analyzer

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JP2559535B2 JP2408448A JP40844890A JP2559535B2 JP 2559535 B2 JP2559535 B2 JP 2559535B2 JP 2408448 A JP2408448 A JP 2408448A JP 40844890 A JP40844890 A JP 40844890A JP 2559535 B2 JP2559535 B2 JP 2559535B2
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俊樹 川辺
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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、液体クロマトグラフィ
ーにより、生体試料中の無機陰イオンを分析する方法お
よび分析装置に関し、特に、除タンパク処理を自動化し
得る構成を備えた分析方法および分析装置に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method and an analyzer for analyzing inorganic anions in a biological sample by liquid chromatography, and more particularly to an analyzer and a analyzer having a constitution capable of automating deproteinization. Regarding

【0002】[0002]

【従来の技術】従来より、液体クロマトグラフィーを利
用して生体試料中の無機陰イオンを分析する方法とし
て、イオンクロマトグラフィーを利用した分析方法が知
られている。もっとも、生体試料中のイオンを測定対象
とするイオンクロマトグラフィーについての報告はさほ
ど多くはなかった。「イオンクロマトグラフィー」(機
器分析実技シリーズ 日本分析化学会編、共立出版 第
204−205頁(1988))には、試料として血清
を用いた陰イオン測定例が挙げられている。この測定法
では、アセトニトリルによって血清試料を除タンパク
し、しかる後、試料中に含まれている過剰の塩素イオン
を除去するための処理を施し、注入試料として用意して
いる。そして、陰イオン分析カラムを用い、電気伝導度
計により陰イオンを検出している。この測定法では、溶
出順に、亜硝酸イオン、硝酸イオン、リン酸イオンおよ
び硫酸イオンの測定が可能である。
2. Description of the Related Art Conventionally, an analysis method utilizing ion chromatography has been known as a method for analyzing inorganic anions in a biological sample using liquid chromatography. However, there have been few reports on ion chromatography in which ions in biological samples are measured. "Ion Chromatography" (Instrument Analysis Practical Series, Japan Society for Analytical Chemistry, Kyoritsu Shuppan, pp. 204-205 (1988)) gives an example of anion measurement using serum as a sample. In this measuring method, a serum sample is deproteinized with acetonitrile, and thereafter, a treatment for removing excess chlorine ions contained in the sample is performed, and the sample is prepared as an injection sample. Then, an anion analysis column is used to detect anions by an electric conductivity meter. According to this measuring method, nitrite ion, nitrate ion, phosphate ion and sulfate ion can be measured in the order of elution.

【0003】上記のように、試料が血清等の生体試料の
場合には、予め除タンパク処理を施さねばならない。さ
もないと、生体試料中には多くのタンパク質が含有され
ているため、そのままカラムに注入すると、タンパク質
がカラムに不可逆的に吸着し、カラムを劣化させるから
である。従って、生体試料の分析にあたっては、上記の
ように予め除タンパク処理を施し、該除タンパク処理が
施された試料をカラムに注入しなければならない。除タ
ンパク処理としては、過塩素酸もしくはトリクロロ酢酸
のような酸、又はエタノールもしくはアセトニトリルの
ような有機溶媒を試料に添加し、タンパク質を変性さ
せ、遠心分離により変性されたタンパク質を除去し、上
澄みを注入試料として用いる方法が一般的である。しか
しながら、これらの除タンパク処理では、添加された酸
に由来する妨害ピークを発生させたり、あるいはリン酸
イオンやカルシウムイオン等が試料中に沈澱したりする
といった問題があった。
As described above, when the sample is a biological sample such as serum, deproteinization must be performed in advance. Otherwise, a large amount of protein is contained in the biological sample, and if the protein is directly injected into the column, the protein is irreversibly adsorbed to the column and deteriorates the column. Therefore, in the analysis of the biological sample, it is necessary to perform the deproteinization treatment in advance as described above and to inject the sample subjected to the deproteinization treatment into the column. As the deproteinization treatment, an acid such as perchloric acid or trichloroacetic acid, or an organic solvent such as ethanol or acetonitrile is added to the sample to denature the protein, and the denatured protein is removed by centrifugation, and the supernatant is removed. The method used as an injection sample is general. However, these deproteinization treatments have problems that an interfering peak derived from the added acid is generated, or that phosphate ions, calcium ions, etc. are precipitated in the sample.

【0004】そこで、上記のような除タンパク処理に基
づく問題を解決するものとして、近年、限外濾過膜を用
いた除タンパク法が行われている。最近では、ディスポ
ーザブル型の限外濾過器も市販されており、シリンジ加
圧タイプと遠心タイプの2つの形式のものが存在する。
このような限外濾過膜を用いた除タンパク法によれば、
酸や有機溶媒を用いた除タンパク処理で問題となってい
た点を改善することができる。
Therefore, in order to solve the above problems associated with the deproteinization treatment, a deproteinization method using an ultrafiltration membrane has been performed in recent years. Recently, disposable type ultrafilters are also on the market, and there are two types, syringe pressurized type and centrifugal type.
According to the deproteinization method using such an ultrafiltration membrane,
It is possible to improve the problem that has been caused by the deproteinization treatment using an acid or an organic solvent.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】しかしながら、限外濾
過膜を用いて除タンパク処理を行う場合、処理にかなり
の時間がかかり、かつコストがかなり高くつくといった
問題があった。また、酸や有機溶媒による除タンパク処
理、並びに限外濾過膜による除タンパク処理の何れにお
いても、一般に分析時間が非常に長くなり、分析を自動
化することが難しく、測定の再現性も十分でないといっ
た問題もあった。
However, when the deproteinization treatment is carried out using the ultrafiltration membrane, there are problems that the treatment requires a considerable amount of time and the cost is considerably high. In addition, in both the deproteinization treatment with an acid or an organic solvent and the deproteinization treatment with an ultrafiltration membrane, generally the analysis time becomes very long, it is difficult to automate the analysis, and the reproducibility of the measurement is not sufficient. There was also a problem.

【0006】よって、本発明の目的は、生体試料をその
まま液体クロマトグラフィーに注入することを可能と
し、除タンパク処理の自動化を図ることにより短時間で
分析を行うことができ、さらに再現性に優れた無機陰イ
オンの分析方法および分析装置を提供することにある。
Therefore, an object of the present invention is to allow a biological sample to be directly injected into liquid chromatography, and to automate the deproteinization process so that analysis can be performed in a short time, and further excellent reproducibility is achieved. Another object of the present invention is to provide a method and an analyzer for analyzing inorganic anions.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】本願の第1発明は、液体
クロマトグラフィーにより生体試料中の無機陰イオンを
分析する方法であって、除タンパク用移動相によりヒド
ロキシアパタイトが充填されたタンパク質保持カラムに
試料中の無機陰イオンを保持させることなく、該生体試
料中のタンパク質成分を保持させ、試料中の無機陰イオ
ンをタンパク質保持カラムよりも下流側に配置された陰
イオン保持カラムに保持させる工程と、分析用移動相に
より、陰イオン保持カラムから無機陰イオンを脱着させ
て陰イオン分析カラムに導き、該無機陰イオンを陰イオ
ン分析カラムで分離する工程とを備える。
The first invention of the present application is a method for analyzing inorganic anions in a biological sample by liquid chromatography, which comprises using a mobile phase for deproteinization to remove a hydrate.
The protein component in the biological sample is retained without retaining the inorganic anion in the sample in the protein retaining column packed with loxyapatite, and the inorganic anion in the sample is arranged on the downstream side of the protein retaining column. And a step of desorbing the inorganic anions from the anion holding column by an analytical mobile phase to guide them to the anion analysis column, and separating the inorganic anions with the anion analysis column. Equipped with.

【0008】また、本願の第2発明は、上記第1発明を
実施するための分析装置であり、第1移動相送液手段、
流路切換手段、陰イオン分析カラムおよび検出手段がこ
の順序で直列に接続されてなる第1流路と、第2移動相
送液手段、試料注入手段およびヒドロキシアパタイトが
充填されたタンパク質保持カラムがこの順序で直列に接
続されており、かつ前記流路切換手段に下流側が接続さ
れた第2流路と、前記流路切換手段に入口側および出口
側が接続された陰イオン保持カラムとを備え、流路切換
手段が、陰イオン保持カラムを第2流路の下流端に接続
した状態と、陰イオン保持カラムを第1流路に接続した
状態とを切り換え得るように構成されているものであ
る。
A second invention of the present application is an analyzer for carrying out the above-mentioned first invention, which comprises a first mobile phase liquid feeding means,
The flow path switching means, the anion analysis column and the detection means are connected in series in this order, the first flow path, the second mobile phase liquid feeding means, the sample injection means and the hydroxyapatite.
The packed protein-retaining columns are connected in series in this order, and the second flow path is connected to the flow path switching means on the downstream side, and the shadow is connected to the flow path switching means on the inlet side and the outlet side. An ion retention column is provided so that the flow channel switching means can switch between a state in which the anion retention column is connected to the downstream end of the second flow channel and a state in which the anion retention column is connected to the first flow channel. It is configured.

【0009】[0009]

【作用】本発明の分析方法では、生体試料がヒドロキシ
アパタイトが充填されたタンパク質保持カラムにそのま
まの状態で導かれ、該タンパク質保持カラムにおいて試
料中の無機陰イオンは保持されることなく、タンパク質
が保持される。タンパク質保持カラムに保持されなかっ
た無機陰イオンを含む試料は、陰イオン保持カラムに保
持される。他方、分析用移動相により該陰イオン保持カ
ラムから無機陰イオンが脱着され、陰イオン分析カラム
に導かれて、該陰イオン分析カラムで無機陰イオンが分
離される。即ち、本発明では、除タンパク処理は、上記
タンパク質保持カラムで行われるため、分析に先立って
予め生体試料を除タンパク処理する必要がない。また、
限外濾過膜を用いた従来の除タンパク法のように、処理
に長時間を要せず、また比較的高価なディスポーザブル
型の製品を使用する必要もない。
In the analysis method of the present invention, the biological sample is hydroxy.
The protein is introduced as it is to the protein holding column packed with apatite , and the protein is held in the protein holding column without holding the inorganic anion in the sample. The sample containing the inorganic anion that was not retained in the protein retention column is retained in the anion retention column. On the other hand, the inorganic anion is desorbed from the anion holding column by the mobile phase for analysis and guided to the anion analysis column to separate the inorganic anion in the anion analysis column. That is, in the present invention, the deproteinization treatment is performed in the protein retention column, and therefore, it is not necessary to deproteinize the biological sample in advance prior to the analysis. Also,
Unlike the conventional deproteinization method using an ultrafiltration membrane, the treatment does not take a long time and it is not necessary to use a relatively expensive disposable type product.

【0010】すなわち、本発明の分析方法および装置
は、従来の生体試料中の無機陰イオンの分析方法および
装置において種々の問題を引き起こしていた除タンパク
処理を、ヒドロキシアパタイトが充填されたタンパク質
保持カラムを用いて自動化することにより解決したこと
に、一つの特徴を有する。また、本発明の分析装置で
は、生体試料中からタンパク質を除去するにあたって
は、ヒドロキシアパタイトが充填されたタンパク質保持
カラムでタンパク質を保持させ、無機陰イオンについて
は陰イオン保持カラムに保持させ、しかる後、流路切換
手段を切り換えることにより陰イオン保持カラムに吸着
されていた無機陰イオンを分析用移動相により脱着し、
陰イオン分析カラムに導くことが可能とされている。従
って、流路切換手段により陰イオン保持カラムを第1流
路に接続して無機陰イオンの分離および分析を行ってい
る間に、第2流路に接続されたタンパク質保持カラムを
再生することができる。よって、生体試料中の無機陰イ
オンの分析時間を大幅に短縮することができると共に、
分析系全体を自動化することも容易である。
That is, the analysis method and apparatus of the present invention is a protein-retaining column packed with hydroxyapatite for deproteinization treatment which has caused various problems in the conventional method and apparatus for analyzing inorganic anions in biological samples. It has one feature in that it is solved by automating using. Further, in the analyzer of the present invention, when removing proteins from a biological sample, the proteins are held by a protein holding column filled with hydroxyapatite , and inorganic anions are held by an anion holding column, and then, , Desorbing the inorganic anions adsorbed on the anion holding column by the mobile phase for analysis by switching the flow path switching means,
It is possible to lead to an anion analysis column. Therefore, it is possible to regenerate the protein holding column connected to the second flow path while the anion holding column is connected to the first flow path by the flow path switching means to perform the separation and analysis of the inorganic anions. it can. Therefore, it is possible to significantly reduce the analysis time of inorganic anions in a biological sample, and
It is easy to automate the whole analysis system.

【0011】以下、本発明の分析方法および装置を、図
1を参照して、より具体的に説明する。図1は、本発明
の分析方法および装置の概略を説明するための概略構成
図である。第1流路Aは、第1移動相送液手段1、流路
切換手段2、陰イオン分析カラム3および検出手段4を
直列に接続することにより構成されている。また、第2
流路Bは、第2移動相送液手段5、試料注入手段6およ
ヒドロキシアパタイトが充填されたタンパク質保持カ
ラム7を直列に接続することにより構成されており、そ
の下流端が流路切換手段2に接続されている。さらに、
流路切換手段2には、陰イオン保持カラム8が接続され
ている。
Hereinafter, the analysis method and apparatus of the present invention will be described more specifically with reference to FIG. FIG. 1 is a schematic configuration diagram for explaining the outline of the analysis method and apparatus of the present invention. The first flow path A is configured by connecting the first mobile phase liquid sending means 1, the flow path switching means 2, the anion analysis column 3 and the detection means 4 in series. Also, the second
The flow path B is configured by connecting the second mobile phase liquid sending means 5, the sample injection means 6 and the protein holding column 7 filled with hydroxyapatite in series, and the downstream end thereof is the flow path switching means 2 It is connected to the. further,
An anion holding column 8 is connected to the flow path switching means 2.

【0012】流路切換手段2は、第2流路Bに陰イオン
保持カラム8を接続した状態、すなわち図1の流路a−
陰イオン保持カラム8−流路cを接続した状態と、第1
流路Aに陰イオン保持カラム8を接続した状態、すなわ
ち陰イオン保持カラム8を流路d,e間に接続した状態
とを切り換え得るように構成されている。次に、図1を
参照しつつ本発明の分析方法を説明する。
The flow path switching means 2 is in a state where the anion holding column 8 is connected to the second flow path B, that is, the flow path a- in FIG.
A state in which the anion holding column 8-the flow path c is connected,
It is configured so that the state where the anion holding column 8 is connected to the channel A, that is, the state where the anion holding column 8 is connected between the channels d and e can be switched. Next, the analysis method of the present invention will be described with reference to FIG.

【0013】試料の注入 流路切換手段2による接続状態を、陰イオン保持カラム
8が第2流路Bに接続された状態とする。すなわち、流
路a−陰イオン保持カラム8−流路cを接続した状態と
する。この状態で、第2移動相送液手段5より除タンパ
ク用移動相を送液し、試料注入手段6から試料を第2流
路Bに注入する。
The connection state of the sample injection flow path switching means 2 is a state in which the anion holding column 8 is connected to the second flow path B. That is, the flow path a-anion holding column 8-flow path c are connected. In this state, the mobile phase for deproteinization is sent from the second mobile phase sending means 5, and the sample is injected into the second channel B from the sample injection means 6.

【0014】除タンパク処理 第2流路Bに注入された試料を、タンパク質保持カラム
7に導き、該タンパク質保持カラム7において試料中の
タンパク質を保持させる。この場合、試料中の無機陰イ
オンはタンパク質保持カラム7に保持されることなく、
陰イオン保持カラム8に導かれ、該陰イオン保持カラム
8に保持される。
[0014] The deproteinized second passage injected sample B, leading to a protein holding column 7, to retain the protein in the sample in the protein holding column 7. In this case, the inorganic anions in the sample are not retained by the protein retention column 7,
It is guided to the anion holding column 8 and held in the anion holding column 8.

【0015】無機陰イオンの分離 次に、流路切換手段2の接続状態を切り換え、陰イオン
保持カラム8を第1流路Aに接続する。すなわち、流路
d−陰イオン保持カラム8−流路eが接続された状態と
する。そして、第1移動相送液手段1により、分析用移
動相を送液し、陰イオン保持カラム8から無機陰イオン
を脱着し、陰イオン分析カラム3に導き、該陰イオン分
析カラム3において各陰イオンに分離する。
Separation of Inorganic Anions Next, the connection state of the flow path switching means 2 is switched to connect the anion holding column 8 to the first flow path A. That is, the flow path d-anion holding column 8-flow path e is connected. Then, the mobile phase for analysis is sent by the first mobile phase sending means 1, the inorganic anions are desorbed from the anion holding column 8 and led to the anion analyzing column 3, and each of the anion analyzing columns 3 Separate into anions.

【0016】タンパク質保持カラムの洗浄および再生 上記無機陰イオンの分離工程と並行して、第2移動相送
液手段5によって洗浄用移動相を送液し、それによって
タンパク質保持カラム7に保持されているタンパク質を
溶出させる。洗浄終了後、タンパク質保持カラム7の再
生を行うために、第2移動相送液手段5により送液する
移動相を、除タンパク用移動相に切り換える。
Washing and Regeneration of Protein Retaining Column In parallel with the above-mentioned step of separating inorganic anions, the mobile phase for washing is sent by the second mobile phase sending means 5, whereby it is held in the protein holding column 7. The protein that is present is eluted. After the washing is completed, in order to regenerate the protein holding column 7, the mobile phase fed by the second mobile phase liquid feeding means 5 is switched to the deproteinization mobile phase.

【0017】次測定の準備 タンパク質保持カラム7の再生終了後、流路切換手段2
の接続状態を陰イオン保持カラム8が第2流路Bに接続
されるように切り換える。上記のように、本発明の分析
方法では、流路切換手段2を切り換えることにより、陰
イオン保持カラム8が第2流路Bに接続された状態と、
第1流路Aに接続された状態とを切り換えることがで
き、それによって無機陰イオンの分離工程を実施しつ
つ、次測定の試料注入工程および除タンパク処理工程を
同時に実施することができる。従って、多数の生体試料
を順次測定する場合、1検体あたりの分析時間を大幅に
短縮することができる。
Preparation for the next measurement After the regeneration of the protein retention column 7 is completed, the flow path switching means 2
The connection state is switched so that the anion holding column 8 is connected to the second flow path B. As described above, in the analysis method of the present invention, by switching the flow path switching means 2, the state in which the anion holding column 8 is connected to the second flow path B,
The state of being connected to the first flow path A can be switched, whereby the sample injection step and the deproteinization treatment step of the next measurement can be simultaneously performed while performing the inorganic anion separation step. Therefore, when a large number of biological samples are sequentially measured, the analysis time per sample can be significantly shortened.

【0018】本発明の分析方法および分析装置において
用いられるタンパク質保持カラム7の充填剤としては、
試料中に含まれるタンパク質を保持することができ、か
つ無機陰イオンを殆ど保持しない充填剤であるヒドロキ
シアパタイトに限定される。ヒドロキシアパタイトは、
歯や骨の無機成分と同じ化学組成を有し、生体親和性に
優れた材料として知られており、クロマトグラフィー用
の充填剤としては、医学や生化学分野でタンパク質、核
酸、酵素等の高分子物質の分離や精製に使用されてい
る。本発明で用い得るヒドロキシアパタイトについて
は、比表面積、細孔分布およびカルシウムとリン酸の比
(Ca/P比)等は特に問わないが、生体試料の不可逆
的吸着がなく、カラム化したときに通液できる形状や粒
径および通液したときにつぶれない程度の機械的強度を
有するものを用いることが必要である。陰イオン分析カ
ラム3の充填剤としては、無機陰イオンを分離できる充
填剤であれば任意のものを用いることができる。たとえ
ば、官能基として第4級アンモニウム基が導入されたイ
オン交換体を挙げることができる。具体的には、イオン
クロマトグラフィー用陰イオン分析用カラムとして、種
々のメーカーから市販されているものを用いることがで
きる。
The packing material for the protein retention column 7 used in the analytical method and analytical apparatus of the present invention is:
It can hold proteins contained in the sample, and fillers der Ru hydroxy hardly retain inorganic anion
Limited to sheapatite. Hydroxyapatite
It has the same chemical composition as the inorganic components of teeth and bones, and is known as a material with excellent biocompatibility.It is used as a packing material for chromatography in the fields of medicine and biochemistry, such as proteins, nucleic acids, and enzymes. Used for separation and purification of molecular substances. Regarding the hydroxyapatite that can be used in the present invention, the specific surface area, the pore distribution, the ratio of calcium to phosphoric acid (Ca / P ratio) and the like are not particularly limited, but there is no irreversible adsorption of a biological sample and when it is columnized. It is necessary to use a material having a shape and particle size that allow liquid to pass through and a mechanical strength that does not collapse when passing through the liquid. As the packing material of the anion analysis column 3, any packing material that can separate inorganic anions can be used. For example, an ion exchanger having a quaternary ammonium group introduced as a functional group can be mentioned. Specifically, as the anion analysis column for ion chromatography, those commercially available from various manufacturers can be used.

【0019】陰イオン保持カラム8の充填剤としては、
上記陰イオン分析カラム3の充填剤と同一の充填剤、あ
るいは陰イオン分析カラム3で用いた充填剤よりも保持
力が弱い充填剤を用いればよい。検出手段4としては、
測定対象物質である各種無機陰イオンを検出できるもの
を適宜選択することができる。イオンクロマトグラフィ
ーでは、電気伝導度検出器を使用するのが一般的であ
る。無機陰イオンのうち、亜硝酸イオンや硝酸イオンの
ように紫外吸収を有するものを分析する場合には、紫外
吸光度検出器を使用することも可能である。
As a packing material for the anion holding column 8,
The same packing material as the packing material of the anion analysis column 3 or a packing material having a weaker retention than the packing material used in the anion analysis column 3 may be used. As the detection means 4,
A substance that can detect various inorganic anions that are measurement target substances can be appropriately selected. In ion chromatography, it is common to use a conductivity detector. In the case of analyzing inorganic anions having ultraviolet absorption such as nitrite ion and nitrate ion, it is possible to use an ultraviolet absorbance detector.

【0020】除タンパク用移動相としては、ヒドロキシ
アパタイトが充填されたタンパク質保持カラム7におい
てタンパク質だけを保持させ、無機陰イオンを保持させ
ないものを用いることが必要であり、例えば、濃度が1
0mM以下のリン酸緩衝液あるいは脱イオン水が用いら
れ、洗浄用移動相としては、タンパク質保持カラムに保
持されているタンパク質を溶出し得るものを用いること
が必要であり、例えば、濃度が100mM以上、600
mM以下のリン酸緩衝液が用いられる。
The mobile phase for deproteinization is hydroxy
Apatite is held by the protein in the protein holding column 7 which is filled, will require an be those that do not retain the inorganic anion, if example embodiment, concentration is 1
0mM used following phosphate buffer or deionized water, as the cleaning mobile phase, will require an be those capable of eluting the protein retained in the protein holding column, for example, concentration 100mM Above 600
A phosphate buffer of mM or less is used.

【0021】分析用移動相としては、陰イオン保持カラ
ム8に保持されている無機陰イオンを溶出することがで
き、陰イオン分析カラム3で各陰イオンに分離できるも
のが用いられる。例えば濃度が0.1mM以上、50m
M以下の緩衝液が用いられる。
As the mobile phase for analysis, those which can elute the inorganic anions held in the anion holding column 8 and can be separated into each anion in the anion analysis column 3 are used. For example, the concentration is 0.1 mM or more, 50 m
A buffer solution of M or less is used.

【0022】[0022]

【実施例の説明】図2は、本発明の一実施例の無機陰イ
オン分析装置を示す構成図である。図2において、第1
流路Aには、分析用移動相11が貯留された移動相容器
11aおよび送液ポンプ12からなる第1移動相送液手
段、流路切換手段としての高圧流路切換バルブ13、陰
イオン分析カラム14並びに検出器15がこの順序で直
列に接続されている。また、第2流路Bの基端部には低
圧流路切換バルブ16が接続されている。低圧流路切換
バルブ16には、除タンパク用移動相17またはタンパ
ク質脱着(洗浄)用移動相18が供給されるように、移
動相容器17a,18aが接続されている。低圧流路切
換バルブ16の下流側には送液ポンプ19が接続されて
いる。除タンパク用移動相17、移動相容器17a、タ
ンパク質脱着用移動相18、移動相容器18a、低圧流
路切換バルブ16および送液ポンプ19により第2移動
相送液手段が構成されている。送液ポンプ19の下流側
には、試料注入手段としてのインジェクター20が接続
されている。インジェクター20の下流側には、タンパ
ク質保持カラムとしてのヒドロキシアパタイト充填カラ
ム21が接続されており、該ヒドロキシアパタイト充填
カラム21の下流側は、高圧流路切換バルブ13に接続
されている。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS FIG. 2 is a block diagram showing an inorganic anion analyzer according to an embodiment of the present invention. In FIG. 2, the first
In the flow path A, a first mobile phase liquid sending means including a mobile phase container 11a storing a mobile phase 11 for analysis and a liquid sending pump 12, a high pressure flow path switching valve 13 as a flow path switching means, anion analysis. The column 14 and the detector 15 are connected in series in this order. A low-pressure flow passage switching valve 16 is connected to the base end of the second flow passage B. The low-pressure flow path switching valve 16 is connected to mobile phase containers 17a and 18a so that the deproteinization mobile phase 17 or the protein desorption (washing) mobile phase 18 is supplied. A liquid feed pump 19 is connected to the downstream side of the low pressure flow path switching valve 16. The mobile phase 17 for deproteinization, the mobile phase container 17a, the mobile phase 18 for protein desorption, the mobile phase container 18a, the low-pressure flow path switching valve 16 and the liquid feed pump 19 constitute a second mobile phase liquid feed means. An injector 20 as sample injection means is connected to the downstream side of the liquid feed pump 19. A hydroxyapatite packed column 21 as a protein holding column is connected to the downstream side of the injector 20, and a downstream side of the hydroxyapatite packed column 21 is connected to a high-pressure flow path switching valve 13.

【0023】また、陰イオン保持カラム22が高圧流路
切換バルブ13のポートh,k間に接続されている。高
圧流路切換バルブ13は、六方バルブで構成されてお
り、上記ヒドロキシアパタイト充填カラム21の出口側
が、該六方バルブのポートgに接続されている。また、
第1流路A中の送液ポンプ12の下流側がポートiに、
陰イオン分析カラム14の入口側がポートjに接続され
ている。上記高圧流路切換バルブ13の各ポートg〜l
間は、図示の実線で示す接続状態Iと、破線で示す接続
状態IIとに切換られるように構成されている。
Further, the anion holding column 22 is connected between the ports h and k of the high pressure flow path switching valve 13. The high-pressure flow path switching valve 13 is composed of a hexagonal valve, and the outlet side of the hydroxyapatite packed column 21 is connected to the port g of the hexagonal valve. Also,
The downstream side of the liquid feed pump 12 in the first flow path A is a port i,
The inlet side of the anion analysis column 14 is connected to the port j. Each port g to l of the high-pressure flow path switching valve 13
In the meantime, the connection state I shown by the solid line in the figure and the connection state II shown by the broken line are configured to be switched.

【0024】なお、23はデータ処理器を示し、検出器
15で得られる検出量から測定値を計算するために設け
られている。また、図示しないコントローラーにより、
送液ポンプ12,19のオン・オフ、低圧流路切換バル
ブ16の切り換え、インジェクター20の動作、高圧流
路切換バルブ13の切り換え、検出器15の動作等が制
御される。
Reference numeral 23 denotes a data processor, which is provided to calculate a measurement value from the detection amount obtained by the detector 15. Also, with a controller not shown,
On / off of the liquid feed pumps 12 and 19, switching of the low pressure flow passage switching valve 16, operation of the injector 20, switching of the high pressure flow passage switching valve 13, operation of the detector 15 and the like are controlled.

【0025】次に、図2に示した実施例の分析装置を用
いて行った具体的な実験例につき説明する。使用した各
装置は以下の通りである。 送液ポンプ12,19…島津製作所製LC−9A インジェクター20 …島津製作所製SIL−6B 検出器15 …島津製作所製、紫外吸光度検出器(SPD−6AV) 低圧流路切換バルプ16…積水化学工業社製SGR−720 高圧流路切換バルブ13…島津製作所製FCV−2AH データ処理器23 …島津製作所製C−R3A コントローラー …島津製作所製SCL−6B ヒドロキシアパタイト充填カラム21 …三井東圧化学社製ヒドロキシアパタイト充填カラム HCA−Column A−4007,(カラム径 4.0mm×長さ75mm) 陰イオン分析カラム14…日本ミリポア社製IC−Pak Anion 陰イオン保持カラム22…東ソー社製IC−Conc−A(イオン交換基は第 4級アンモニウム基) また、使用した移動相は、以下の通りである。
Next, a description will be given of a concrete experimental example performed by using the analyzer of the embodiment shown in FIG. Each device used is as follows. Liquid-sending pumps 12, 19 ... Shimadzu LC-9A injector 20 ... Shimadzu SIL-6B detector 15 ... Shimadzu ultraviolet absorption detector (SPD-6AV) Low pressure flow path switching valve 16. Sekisui Chemical Co., Ltd. SGR-720 high pressure flow path switching valve 13 ... Shimadzu FCV-2AH data processor 23 ... Shimadzu C-R3A controller ... Shimadzu SCL-6B hydroxyapatite packed column 21 ... Mitsui Toatsu Chemicals hydroxyapatite Packed column HCA-Column A-4007, (column diameter 4.0 mm x length 75 mm) Anion analysis column 14 ... Japan Millipore's IC-Pak Anion anion holding column 22 ... Tosoh's IC-Conc-A (ion Exchange group is quaternary ammonium group) Also, transfer used The phases are as follows:

【0026】 除タンパク用移動相17…脱イオン水(比抵抗16MΩ−cm) タンパク質脱着(洗浄)用移動相18 …300mMリン酸カリウム緩衝液(pH6.8) 分析用移動相11…2mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.8) また、上記各移動相の送液速度は、以下の通りとした。
分析用移動相11については1.2ml/分、除タンパ
ク用移動相17については1.0ml/分、タンパク質
脱着用移動相18については1.0ml/分とした。
Mobile phase for deproteinization 17: Deionized water (specific resistance 16 MΩ-cm) Mobile phase for protein desorption (washing) 18: 300 mM potassium phosphate buffer (pH 6.8) Mobile phase for analysis 11: 2 mM phosphoric acid Potassium buffer solution (pH 7.8) The liquid feed rate of each mobile phase was as follows.
The analytical mobile phase 11 was 1.2 ml / min, the deproteinization mobile phase 17 was 1.0 ml / min, and the protein desorption mobile phase 18 was 1.0 ml / min.

【0027】測定にあたっては、高圧流路切換バルブ1
3の接続状態および送液ポンプ19で送液する第2移動
相の種類を下記の表1に示すように時間と共に切り換え
た。
For the measurement, the high pressure flow path switching valve 1
The connection state of No. 3 and the type of the second mobile phase to be fed by the liquid feed pump 19 were changed over time as shown in Table 1 below.

【0028】[0028]

【表1】 [Table 1]

【0029】測定に際しては、先ず亜硝酸イオン濃度が
5ppmおよび硝酸イオン濃度が5ppmの標準試料を
用意し、波長を220nm、注入量を10μlとして上
記条件で測定した。検量線は一点検量線法(ピーク面積
値で計算)により作成した。結果を、図3に示す。次
に、生体試料を用いた実施例を説明する。実施例 健常人の血液を、分離剤入り真空採血管(積水化学工業
社製、インセパックSI−0706S)を用いて採血
し、凝固後、遠心分離し血清を得た。得られた血清のう
ち、200μlを試料瓶に採取し、インジェクター20
にセットした。次に、標準試料を測定した場合と同一の
測定条件に従って測定を行った。なお、血清試料の注入
量は10μlとした。結果を、図4に示す。比較例1 実施例1で用いた血清と、脱イオン水とを容量比で1対
1の割合で混合し、混合試料1mlを限外濾過膜(ミリ
ポア社製、モルカットII、LGC分画分子量1万)によ
り除タンパク処理した。濾過液0.5mlを得るのに1
7分を要した。次に、この濾過液を試料として注入量を
20μlに設定して、実施例1と同様に測定を行った。
結果を、図5に示す。
In the measurement, first, a standard sample having a nitrite ion concentration of 5 ppm and a nitrate ion concentration of 5 ppm was prepared, and the wavelength was 220 nm and the injection amount was 10 μl, and the measurement was carried out under the above conditions. The calibration curve was prepared by the one-check curve method (calculated by the peak area value). The results are shown in FIG. Next, an example using a biological sample will be described. Example Blood of a healthy person was collected using a vacuum blood collection tube containing a separating agent (Insepack SI-0706S manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.), coagulated and then centrifuged to obtain serum. 200 μl of the obtained serum was sampled in a sample bottle, and the injector 20
Set to. Next, the measurement was performed under the same measurement conditions as when the standard sample was measured. The injection volume of the serum sample was 10 μl. The results are shown in FIG. Comparative Example 1 The serum used in Example 1 and deionized water were mixed at a volume ratio of 1: 1 and 1 ml of a mixed sample was subjected to an ultrafiltration membrane (Millipore, Molcut II, LGC molecular weight cutoff 1). 10,000). 1 to get 0.5 ml of filtrate
It took 7 minutes. Next, using this filtrate as a sample, the injection amount was set to 20 μl, and the measurement was performed in the same manner as in Example 1.
Results are shown in FIG.

【0030】実施例1および比較例1では、実質的に
は、同じ量の血清を注入したことになるが、図4および
図5の結果の比較から明らかなように、亜硝酸イオンお
よび硝酸イオンの2つピークがいずれにおいても同じよ
うに分離されていることが分かる。従って、実施例1に
よれば、予め別工程により除タンパク処理を行わずと
も、血清試料中の硝酸イオンおよび亜硝酸イオンを正確
に測定し得ることが分かる。
In Example 1 and Comparative Example 1, substantially the same amount of serum was injected, but as is clear from the comparison of the results in FIGS. 4 and 5, nitrite ion and nitrate ion It can be seen that the two peaks of 1 are separated in the same manner. Therefore, it can be seen from Example 1 that nitrate ion and nitrite ion in a serum sample can be accurately measured without performing deproteinization treatment in a separate step in advance.

【0031】[0031]

【発明の効果】以上のように、本発明の無機陰イオン分
析方法および装置によれば、ヒドロキシアパタイトが充
填されたタンパク質保持カラムにおいてタンパク質が除
去されるため、生体試料を予め別途の工程で除タンパク
処理を行う必要がない。すなわち、除タンパク処理の自
動化を図ることができる。
As described above, according to the inorganic anion analysis method and apparatus of the present invention, hydroxyapatite is filled.
Since the protein is removed in the packed protein retention column, it is not necessary to perform deproteinization treatment on the biological sample in advance in a separate step. That is, the deproteinization process can be automated.

【0032】よって、従来の限外濾過法による除タンパ
ク処理を用いた方法に比べて、極めて短時間でタンパク
質を除去することができ、ひいては分析方法全体に要す
る時間を大幅に短縮することができる。また、本発明の
分析装置では、陰イオン保持カラムの接続状態を、流路
切換手段で切り換えることにより、陰イオン保持カラム
における無機陰イオンの検出と並行してタンパク質保持
カラムの再生を行うことができるため、連続測定の際の
測定時間を大幅に短縮することができると共に、分析方
法の自動化も容易となる。
Therefore, the protein can be removed in an extremely short time as compared with the conventional method using the deproteinization treatment by the ultrafiltration method, and the time required for the whole analysis method can be greatly shortened. . Further, in the analyzer of the present invention, by switching the connection state of the anion holding column by the flow path switching means, it is possible to regenerate the protein holding column in parallel with the detection of inorganic anions in the anion holding column. As a result, the measurement time during continuous measurement can be significantly shortened and the analysis method can be easily automated.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】本発明の無機陰イオン分析方法および装置の概
略を説明するための概略構成図である。
FIG. 1 is a schematic configuration diagram for explaining an outline of an inorganic anion analysis method and apparatus of the present invention.

【図2】実施例の無機陰イオンの分析装置の構成図であ
る。
FIG. 2 is a configuration diagram of an inorganic anion analyzer of an example.

【図3】標準試料のクロマトグラムを示す図である。FIG. 3 is a diagram showing a chromatogram of a standard sample.

【図4】実施例1で亜硝酸イオンおよび硝酸イオンを分
析した場合のクロマトグラムを示す図である。
FIG. 4 is a diagram showing a chromatogram when nitrite ion and nitrate ion are analyzed in Example 1.

【図5】比較例1において亜硝酸イオンおよび硝酸イオ
ンを分析した場合のクロマトグラムを示す図である。
5 is a diagram showing a chromatogram when nitrite ion and nitrate ion are analyzed in Comparative Example 1. FIG.

【符号の説明】 1 … 第1移動相送液手段 2 … 流路切換手段 3 … 陰イオン分析カラム 4 … 検出手段 5 … 第2移動相送液手段 6 … 試料注入手段 7 … タンパク質保持カラム 8 … 陰イオン保持カラム A … 第1流路 B … 第2流路[Explanation of Codes] 1 ... First mobile phase liquid sending means 2 ... Flow path switching means 3 ... Anion analysis column 4 ... Detection means 5 ... Second mobile phase liquid sending means 6 ... Sample injection means 7 ... Protein holding column 8 ... Anion retention column A ... 1st flow path B ... 2nd flow path

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 液体クロマトグラフィーによって、生体
試料中の無機陰イオンを分析する方法であって、 除タンパク用移動相により試料中の無機陰イオンを保持
させることなく試料中のタンパク質成分をヒドロキシア
パタイトが充填されたタンパク質保持カラムに保持さ
せ、試料中の無機陰イオンをタンパク質保持カラムより
も下流に配置された陰イオン保持カラムに保持させる工
程と、 分析用移動相により、陰イオン保持カラムから無機陰イ
オンを脱着させて陰イオン分析カラムに導き、該陰イオ
ン分析カラムで無機陰イオンを分離する工程とを備える
ことを特徴とする無機陰イオンの分析方法。
1. A method for analyzing inorganic anions in a biological sample by liquid chromatography, which comprises removing a protein component in a sample from a hydroxy component without retaining the inorganic anions in the sample by a deproteinizing mobile phase.
It is retained on a protein retention column packed with Patite , and the inorganic anion in the sample is retained on an anion retention column located downstream of the protein retention column. And a step of desorbing the inorganic anions, introducing the inorganic anions to an anion analysis column, and separating the inorganic anions by the anion analysis column.
【請求項2】 第1移動相送液手段、流路切換手段、陰
イオン分析カラムおよび検出手段がこの順序で直列に接
続された第1流路と、 第2移動相送液手段、試料注入手段およびヒドロキシア
パタイトが充填されたタンパク質保持カラムが直列に接
続されており、該タンパク質保持カラムの下流端が前記
流路切換手段に接続された第2流路と、 前記流路切換手段に入口側および出口側が接続された陰
イオン保持カラムとを備え、 前記流路切換手段が、前記陰イオン保持カラムを第2流
路の下流端に接続した状態と、前記陰イオン保持カラム
を第1流路に接続した状態とを切り換え得るように構成
されていることを特徴とする無機陰イオン分析装置。
2. A first flow path in which a first mobile phase liquid sending means, a flow path switching means, an anion analysis column and a detection means are connected in series in this order, a second mobile phase liquid sending means, and sample injection. Means and hydroxya
A protein holding column filled with pattetes is connected in series, and a downstream end of the protein holding column is connected to the flow passage switching means, and a flow passage switching means has an inlet side and an outlet side. A connected anion retention column, wherein the flow path switching means connects the anion retention column to the downstream end of the second flow path, and connects the anion retention column to the first flow path. An inorganic anion analyzer characterized by being configured to switch between states.
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