JPS61100505A - まつたけ菌糸の成長促進剤 - Google Patents
まつたけ菌糸の成長促進剤Info
- Publication number
- JPS61100505A JPS61100505A JP59220714A JP22071484A JPS61100505A JP S61100505 A JPS61100505 A JP S61100505A JP 59220714 A JP59220714 A JP 59220714A JP 22071484 A JP22071484 A JP 22071484A JP S61100505 A JPS61100505 A JP S61100505A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- sulfonate
- sulfite cellulose
- cellulose liquor
- leaf tree
- lignin
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Mushroom Cultivation (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、まつたけ菌糸の成長促進剤、特に亜硫酸パル
プ廃液より分別したリグニン・糖複合体を中心とする成
分のスルホン酸塩を有効成分とするまつたけ菌糸の成長
促進剤に関するものである。
プ廃液より分別したリグニン・糖複合体を中心とする成
分のスルホン酸塩を有効成分とするまつたけ菌糸の成長
促進剤に関するものである。
まつたけは、分類学上担子菌類に属するカビの一種であ
り、生活に必要な物質を自分で作らず、生きた植物体の
根に寄生して、その栄養物をもらって生活する菌根類で
ある。現在、全国のまつたけ生産量は、年毎に減少して
おり、その要因は多用される農薬、大気汚染による松の
衰弱、気候の変化、山の整備不良、松の老齢化などがあ
げられる。
り、生活に必要な物質を自分で作らず、生きた植物体の
根に寄生して、その栄養物をもらって生活する菌根類で
ある。現在、全国のまつたけ生産量は、年毎に減少して
おり、その要因は多用される農薬、大気汚染による松の
衰弱、気候の変化、山の整備不良、松の老齢化などがあ
げられる。
他方、まつたけ菌糸の生育は非常に遅く、最適条件でも
１ＩＩＲ菌糸が伸びるのに４日間を要する。この菌糸の
輪が“シロ”であり４〜５年かか、・て発達してくると
初めてまつたけが発生する。最近、広島具、石用県など
の林業試験場において若木をノロに隣接して植え、菌糸
を寄生させた後、新しい場所に移植する方法が研究され
ているか、土壌の性質などの違いにより、まつたけの発
生は非常に難しいといわれている。
１ＩＩＲ菌糸が伸びるのに４日間を要する。この菌糸の
輪が“シロ”であり４〜５年かか、・て発達してくると
初めてまつたけが発生する。最近、広島具、石用県など
の林業試験場において若木をノロに隣接して植え、菌糸
を寄生させた後、新しい場所に移植する方法が研究され
ているか、土壌の性質などの違いにより、まつたけの発
生は非常に難しいといわれている。
まつたけの栽培は、如何に菌糸の繁殖を計るかが必要で
あるが、本発明者らは、菌糸培養の基礎的な研究の結果
、亜硫酸パルプ廃液より分離された成る種の成分が、ま
つたけ菌糸の成長促進効果を有することを見出だし、こ
の知見に基づいて本発明を完成するに至った。
あるが、本発明者らは、菌糸培養の基礎的な研究の結果
、亜硫酸パルプ廃液より分離された成る種の成分が、ま
つたけ菌糸の成長促進効果を有することを見出だし、こ
の知見に基づいて本発明を完成するに至った。
本発明者らによって見出だされたまつたけ菌糸の成長促
進剤は、亜硫酸パルプ廃液から分別されたリグニン・糖
複合体を中心とする成分のスルホン酸塩（特にスルホン
酸カルシウム塩）である。
進剤は、亜硫酸パルプ廃液から分別されたリグニン・糖
複合体を中心とする成分のスルホン酸塩（特にスルホン
酸カルシウム塩）である。
亜硫酸パルプ廃液は針葉樹材によるもの、広葉樹材によ
るものなどがあるが、好ましくは針葉樹材によるしので
ある。亜硫酸パルプ廃液を適宜の透析膜（たとえば孔径
１０〜５０人、特に２０〜３０人）を用いて水に対して
透析し、膜透過部を濃縮する。これに適宜の有機溶剤（
たとえばエタノール）を加えて分別沈澱を行う。各沈澱
物について適宜の培地を使用してまつたけ菌糸に対する
成長促進効果を試験しくたとえば炭素源としてグルコー
スを含む合成培地を標準培地として使用し、グルコース
の一部を前記沈澱物で置換して試験培地とし、両者にお
けるまつたけ菌糸の成長状況を対比する。）、効果が認
められる沈澱物の区分を集め、必要に応じこれを更にエ
タノール、石油エーテルなどで洗浄したうえ、乾燥する
。
るものなどがあるが、好ましくは針葉樹材によるしので
ある。亜硫酸パルプ廃液を適宜の透析膜（たとえば孔径
１０〜５０人、特に２０〜３０人）を用いて水に対して
透析し、膜透過部を濃縮する。これに適宜の有機溶剤（
たとえばエタノール）を加えて分別沈澱を行う。各沈澱
物について適宜の培地を使用してまつたけ菌糸に対する
成長促進効果を試験しくたとえば炭素源としてグルコー
スを含む合成培地を標準培地として使用し、グルコース
の一部を前記沈澱物で置換して試験培地とし、両者にお
けるまつたけ菌糸の成長状況を対比する。）、効果が認
められる沈澱物の区分を集め、必要に応じこれを更にエ
タノール、石油エーテルなどで洗浄したうえ、乾燥する
。
このようにして得られたまつたけ菌糸の成長促進剤は、
リグニン・糖複合体を中心とする成分のスルホン酸塩（
特にスルホン酸カルシウム塩）であって、比較的低分子
景区分のものである。その本体は未だ詳らかではないか
、次のような物理化学的性状を有している二本物質は褐
色の粉末であり、水に容易に溶解する。分子量的にはほ
ぼ均一で最乙効果を示すのは２０００前後である。
リグニン・糖複合体を中心とする成分のスルホン酸塩（
特にスルホン酸カルシウム塩）であって、比較的低分子
景区分のものである。その本体は未だ詳らかではないか
、次のような物理化学的性状を有している二本物質は褐
色の粉末であり、水に容易に溶解する。分子量的にはほ
ぼ均一で最乙効果を示すのは２０００前後である。
以下、本発明を実施例によって詳しく説明オろ。
ただし、％とあるのはいずれら重量％である。なお、以
下の実施例で使用しんまつたけの菌株は、近畿大学農学
部食品微生物研究室で広島浄土つｆコけより分離したし
のである。また、亜硫酸パルプ廃液の分画は次のように
行った： 針葉樹材の亜硫酸パルプ廃液製品（山陽国策パルプ株式
会社製、商品名「バニオールＮＪ）を用い、その１０％
水溶液を孔径２４人のゲルセロファン膜を用いて蒸留水
に対して透析し、膜透過部を約１０分の１容量に濃縮し
、５倍量のエタノールを加えて分別沈澱した。沈澱物を
エタノール、石油エーテルで順次洗浄し、乾燥したもの
を以下の実施例で使用した（以下ｒＬＶＤＪと略ず。）
。
下の実施例で使用しんまつたけの菌株は、近畿大学農学
部食品微生物研究室で広島浄土つｆコけより分離したし
のである。また、亜硫酸パルプ廃液の分画は次のように
行った： 針葉樹材の亜硫酸パルプ廃液製品（山陽国策パルプ株式
会社製、商品名「バニオールＮＪ）を用い、その１０％
水溶液を孔径２４人のゲルセロファン膜を用いて蒸留水
に対して透析し、膜透過部を約１０分の１容量に濃縮し
、５倍量のエタノールを加えて分別沈澱した。沈澱物を
エタノール、石油エーテルで順次洗浄し、乾燥したもの
を以下の実施例で使用した（以下ｒＬＶＤＪと略ず。）
。
実施例１
まつたけ菌糸５ｍｍ角を合成培地（Ｉ）（水道水に対し
グルコース２．０％、エビオス０５％添加。
グルコース２．０％、エビオス０５％添加。
ｐＨ５，０）２０Ｒ（ｌニ接種し、２４℃で４５日間液
体静置培養した。上記培地の炭素源であるクルコースの
代わりに、ＬＶＤを０．３，０．５，０．８゜１．０．
１．３，１．５，１．８，２．０％加え、総炭素源量２
％となるようグルコースで調整して培養促進培地を得、
これを使用して前記と同様液体静置培養を行った。培養
後、菌体を水洗、アセトン洗浄した後、真空テンケータ
中で恒量に至らしめ秤量した。菌体重量はすべて１５試
料の平均値として示した。
体静置培養した。上記培地の炭素源であるクルコースの
代わりに、ＬＶＤを０．３，０．５，０．８゜１．０．
１．３，１．５，１．８，２．０％加え、総炭素源量２
％となるようグルコースで調整して培養促進培地を得、
これを使用して前記と同様液体静置培養を行った。培養
後、菌体を水洗、アセトン洗浄した後、真空テンケータ
中で恒量に至らしめ秤量した。菌体重量はすべて１５試
料の平均値として示した。
炭素源としてグルコース２，０％を添加した培地で生育
した菌体型ｆｆ１（２８Ｂ）を１としたとき、グルコー
ス１．２％とＬＶＤｏ、８％を添加した培地で生育した
菌体重量（１３４ｉ９）は４．７９倍であった。
した菌体型ｆｆ１（２８Ｂ）を１としたとき、グルコー
ス１．２％とＬＶＤｏ、８％を添加した培地で生育した
菌体重量（１３４ｉ９）は４．７９倍であった。
実施例２
まつたけ菌糸５ｉｍ角を合成培地（１１）（水道水に対
しグルコース２．０％、エビオス０．５％、 ＫＨｔＰ
Ｏ，、ＭｇＳＯ４・７Ｈ１Ｏ，ＮＨ４Ｈ２ＰＯ，を各々
０．０９％添加、ｐＨ５，０）に接種し、２４°Ｃで４
５日間液体静置培養した。上記培地の炭素源であるグル
コースの代わりにＬＶＤを０．３〜１゜３％加え、総炭
素源量２％となるようグルコースで調整して培養促進培
地を得、これを使用して０１ｆ記と同様液体静置培養を
行った。以後、実施例１と同様に後操作を行い、菌体型
…を測定した。
しグルコース２．０％、エビオス０．５％、 ＫＨｔＰ
Ｏ，、ＭｇＳＯ４・７Ｈ１Ｏ，ＮＨ４Ｈ２ＰＯ，を各々
０．０９％添加、ｐＨ５，０）に接種し、２４°Ｃで４
５日間液体静置培養した。上記培地の炭素源であるグル
コースの代わりにＬＶＤを０．３〜１゜３％加え、総炭
素源量２％となるようグルコースで調整して培養促進培
地を得、これを使用して０１ｆ記と同様液体静置培養を
行った。以後、実施例１と同様に後操作を行い、菌体型
…を測定した。
炭素源としてグルコース２，０％を添加し几培地で生育
した菌体１ｌ（３４ｚ９）を１としｆ二とき、グルコー
ス１２％とＬ Ｖ Ｄ ０ 、８％を添加しｊ二培地で
ノ１イ１した菌体ＩＲｉ＋ｔ（ｌ Ｉ Ｇ的）ｉｌ ｌ
・１１倍−ζあった。
した菌体１ｌ（３４ｚ９）を１としｆ二とき、グルコー
ス１２％とＬ Ｖ Ｄ ０ 、８％を添加しｊ二培地で
ノ１イ１した菌体ＩＲｉ＋ｔ（ｌ Ｉ Ｇ的）ｉｌ ｌ
・１１倍−ζあった。
実施例３−
まつたけ菌糸をポテト培養地（ポテトエタストラクトに
対しグルコース２．０％、エビオス０５％、ＫＨ，ＰＯ
，，Ｍｇ５Ｏ，・７Ｈ２０，ＮＨ，Ｈ。
対しグルコース２．０％、エビオス０５％、ＫＨ，ＰＯ
，，Ｍｇ５Ｏ，・７Ｈ２０，ＮＨ，Ｈ。
ｐｏ、を各々０．０９％添加、ｐＨ５，０）に接種し、
２４℃で４５日間液体静置培養した。上記培地の炭素源
であるグルコースの代わりに、Ｌ Ｖ Ｄを０３〜１．
３％加え、総炭素源量２％となるようクルコースで調整
して培養促進培地を得、これを使用して前記と同様液体
静置培養を行った。以後、実施例１と同様に後操作を行
い、菌体重量を測定した。
２４℃で４５日間液体静置培養した。上記培地の炭素源
であるグルコースの代わりに、Ｌ Ｖ Ｄを０３〜１．
３％加え、総炭素源量２％となるようクルコースで調整
して培養促進培地を得、これを使用して前記と同様液体
静置培養を行った。以後、実施例１と同様に後操作を行
い、菌体重量を測定した。
炭素源としてグルコース２０％を添加しノこ培地で生育
した菌体重量（４７１１１９）を１としたとき、グルコ
ース１．５％とＬＶＤｏ、５％を添加した培地で生育し
た菌体重量（２０６１１ｇ）は４３８倍であった。
した菌体重量（４７１１１９）を１としたとき、グルコ
ース１．５％とＬＶＤｏ、５％を添加した培地で生育し
た菌体重量（２０６１１ｇ）は４３８倍であった。
Claims (1)
- （１）亜硫酸パルプ廃液より分別したリグニン・糖複合
体を中心とする成分のスルホン酸塩を有効成分とするま
つたけ菌糸の成長促進剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59220714A JPS61100505A (ja) | 1984-10-20 | 1984-10-20 | まつたけ菌糸の成長促進剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59220714A JPS61100505A (ja) | 1984-10-20 | 1984-10-20 | まつたけ菌糸の成長促進剤 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61100505A true JPS61100505A (ja) | 1986-05-19 |
| JPS6261564B2 JPS6261564B2 (ja) | 1987-12-22 |
Family
ID=16755355
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59220714A Granted JPS61100505A (ja) | 1984-10-20 | 1984-10-20 | まつたけ菌糸の成長促進剤 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61100505A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109197381A (zh) * | 2018-11-29 | 2019-01-15 | 四川菌绿生态农业科技有限公司 | 一种固体菌种液化种植海鲜菇的方法 |
| WO2024019053A1 (ja) * | 2022-07-20 | 2024-01-25 | 日本製紙株式会社 | 植物生長促進剤 |
| JP2024013302A (ja) * | 2022-07-20 | 2024-02-01 | 日本製紙株式会社 | 植物生長促進剤 |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US11134679B2 (en) * | 2016-04-11 | 2021-10-05 | Kao Corporation | Method for growing plant |
| BR112018068071B1 (pt) | 2016-04-11 | 2023-04-11 | Kao Corporation | Método para melhorar a qualidade do solo, agente de melhoria da qualidade do solo, e composição de agente de melhoria da qualidade do solo |
-
1984
- 1984-10-20 JP JP59220714A patent/JPS61100505A/ja active Granted
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109197381A (zh) * | 2018-11-29 | 2019-01-15 | 四川菌绿生态农业科技有限公司 | 一种固体菌种液化种植海鲜菇的方法 |
| WO2024019053A1 (ja) * | 2022-07-20 | 2024-01-25 | 日本製紙株式会社 | 植物生長促進剤 |
| JP2024013302A (ja) * | 2022-07-20 | 2024-02-01 | 日本製紙株式会社 | 植物生長促進剤 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6261564B2 (ja) | 1987-12-22 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PARKE et al. | The role of ectomycorrhizas in drought tolerance of Douglas‐fir seedlings | |
| Christensen et al. | Reduction of bacterial growth by a vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus in the rhizosphere of cucumber (Cucumis sativus L.) | |
| Fini et al. | Effect of controlled inoculation with specific mycorrhizal fungi from the urban environment on growth and physiology of containerized shade tree species growing under different water regimes | |
| Valentine et al. | Drought responses of arbuscular mycorrhizal grapevines | |
| Brun et al. | Structure and function of the ectomycorrhizal association between Paxillus involutus (Batsch) Fr. and Betula pendula Roth. I. Dynamics of mycorrhiza formation | |
| CN106416744B (zh) | 一种天麻共生蜜环菌菌种及其制备方法 | |
| Hepden | Studies in vesicular-arbuscular endophytes: II. Endophytes in the pteridophyta, with special reference to leptosporangiate ferns | |
| Tommerup | Persistence of infectivity by germinated spores of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi in soil | |
| Dixon et al. | Water relations and gas exchange of mycorrhizal Leucaena leucocephala seedlings | |
| Gessner et al. | The fungal microcosm of the internodes of Spartina alterniflora | |
| Ohta et al. | Fruit-body production of an ectomycorrhizal fungus in genus Boletus in pure culture | |
| CN111527989B (zh) | 一种粗毛纤孔菌的培养基、人工栽培方法及应用 | |
| JPS61100505A (ja) | まつたけ菌糸の成長促進剤 | |
| Jongbloed et al. | Effects of ammonium and pH on growth of some ectomycorrhizal fungi in vitro | |
| Deacon | Behaviour of Cercosporella herpotrichoides and Ophiobolus graminis on buried wheat plant tissues | |
| CN113736671B (zh) | 一种促进油茶钾素吸收的内生真菌am8.2 | |
| Vaario et al. | Variation among matsutake ectomycorrhizae in four clones of Pinus sylvestris | |
| Güler et al. | Cultural Characteristics of Morchella esculentaMycelium on Some Nutrients | |
| CN101993827B (zh) | 一株促进桉树光合作用的功能内生真菌及其应用 | |
| WO1984004653A1 (en) | Method of culture of va mycorrhizal fungi | |
| NL2028186B1 (en) | Culture medium for synthesizing ectomycorrhiza | |
| CN113293006B (zh) | 一种具有扩蓄增容功能的成型材料及其制备方法和应用 | |
| Liu et al. | Amino acids in watermelon root exudates and their effect on growth of Fusarium oxysporum f. sp. nevium | |
| Behera et al. | Factor affecting growth of Phoma cajani causing stem canker in pigeonpea | |
| Sharma | Succession of fungi on decaying Setaria glauca Beauv. A qualitative analysis of the mycoflora |