JPS6025411B2 - Manufacturing method of hemoglobin solution - Google Patents

Manufacturing method of hemoglobin solution

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JPS6025411B2
JPS6025411B2 JP48110633A JP11063373A JPS6025411B2 JP S6025411 B2 JPS6025411 B2 JP S6025411B2 JP 48110633 A JP48110633 A JP 48110633A JP 11063373 A JP11063373 A JP 11063373A JP S6025411 B2 JPS6025411 B2 JP S6025411B2
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propiolactone
hemoglobin
blood cells
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ボンハ−ド クラウス
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Biotest Serum Institut GmbH
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Publication of JPS6025411B2 publication Critical patent/JPS6025411B2/en
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    • C07K14/805Haemoglobins; Myoglobins
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Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、人間の赤血球の溶血、ストローマ脂費の定量
的分離、カリウム成分の減少、並に溶液の無菌ロ過によ
り、肝炎の危険のない、貯蔵に於て安定であり且つ不溶
である、安定化された2・3ージホスホグリセリン酸塩
の含有量をもつヘモグロビン溶液の製法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention provides hemolysis of human red blood cells, quantitative separation of stromal fat, reduction of potassium content, as well as sterile filtration of the solution, which is stable in storage without the risk of hepatitis. and a method for producing a hemoglobin solution having a content of stabilized 2,3-diphosphoglycerate which is insoluble.

市販されている、いわゆる“血液代替物”は、血液の貯
蔵に関して下記の長所を有する。【1} 使用に際し、
血液型検査を全く必要としなし、。
Commercially available so-called "blood substitutes" have the following advantages with respect to blood storage. [1} When using,
No need for blood type testing at all.

■ 一層長期のが可能である。■ Longer term is possible.

{3’ 肝炎の危険がない。{3' There is no risk of hepatitis.

市販の血液代替物の最大の欠点は、血液の有する多くの
特殊機能、例えば赤血球の酸素運搬作用を代替できない
ことである。
The biggest drawback of commercially available blood substitutes is that they cannot replace many of the special functions of blood, such as the oxygen-carrying action of red blood cells.

特に数年来、臨床以前の試験において、等張な人間のヘ
モグロビン溶液が、血液の代替物として存在している。
ショックが発生する決定的なファクターが酸素供V給の
欠乏にあることは明らかであるから、この様な薬剤は特
にショック療法に対して、追求の価値があるものと思わ
れる。酸素運搬体として炭化フッ素化合物の水性ヱマル
ジョンを特に分離された器官を浸債舎浸用に使用するこ
とが、すでに試みられている。しかしながら、これらの
物質群には無理のない除去方法が全く存在しないので、
体内への静脈注射は今日でもなお克服出来ない障害が存
在する。なぜならこの様な物理的に分解することができ
ない異種物質は必然的に組織中に貯蔵されてしまうから
である。これに対して、遊離のヘモグロビンは正常尿成
分であり、それぞれの場合に応じて一部分が再吸収され
、自然の物質代謝に委ねられる。
Isotonic human hemoglobin solutions have existed as blood substitutes, especially for several years in preclinical trials.
Since it is clear that a critical factor in the occurrence of shock is the lack of oxygen supply, such drugs would be worth pursuing, especially for shock therapy. Attempts have already been made to use aqueous emulsions of fluorocarbon compounds as oxygen carriers, especially for the infusion of separated organs. However, since there is no reasonable method of removing these substances,
Even today, there are still insurmountable obstacles to intravenous injection into the body. This is because such foreign substances that cannot be physically decomposed are inevitably stored in tissues. On the other hand, free hemoglobin is a normal urine component, and depending on each case, a portion is reabsorbed and left to natural metabolism.

公知のヘモグロビン剤では、今なお肝炎に対する安全性
が問題であるとはみなされていない。しかしながら、臨
床的な使用に対しては、これに対する安全性は当然に重
要な意義を有する。なぜなら献血された血液を出発物質
として使用した場合には、伝染性が除去されないからで
ある。人間の赤血球から、カリウム成分を減少させ、且
つ熔血により解放されるストローマ脂質を除去する処理
により血殺生理学的に適合したヘモグロビン溶液を調整
し得る方法は既に公知である。しかしながら、この公知
のヘモグロビン溶液のテストに於て、今日までその臨床
的使用を妨げている欠点が明らかになった。なぜなら特
に腎臓障害が観察されたからである。他の公知のヘモグ
ロビン溶液は、なるほど腎臓障害は起さないが、しかし
その製造に、なかんずく透析処理が使用されているので
、この処理によって生理学的に重要な酵素親和力に重要
な役割を果しているリン酸ェステル、すなわち2.3−
ジーホスホグリセリン酸塩が定量的に除去されてしまう
。赤血球を含有する出発原料を5乃至15qoの温度範
囲で25分より短い時間3−プロピオラクトンの稀薄溶
液で処理し、その稀薄溶液中に配合された8−プロピオ
ラクトンの使用量は赤血球の沈澱1リットルにつき4乃
至12夕であり、ついで中性の洗篠用溶液を使用するか
、あるいは弱アルカリ性の溶液を使用して過剰の8−ブ
ロピオラクトンおよびその反応生成物を洗い落し、次に
赤血球を蒸留水等の細胞破壊性溶媒中でかくはんするこ
とによって生成した赤血球溶解物を、pH値が5.0乃
至5.5に低下するまで、H+形の腸イオン交換樹脂で
処理し、該樹脂および沈澱したストローマ塊を遠心分離
によって除いた後、所望のヘモグロビン濃度に調整し、
等張性調節用の添加剤並びにpH値およびフェロヘム安
定化用の添加剤を加え、次で無菌ロ遇することを特徴と
する。
The safety of known hemoglobin agents against hepatitis is not considered to be a problem. However, for clinical use, safety is naturally of great importance. This is because contagiousness is not eliminated when donated blood is used as a starting material. Methods are already known in which a blood-killed physiologically compatible hemoglobin solution can be prepared from human red blood cells by treatment that reduces the potassium content and removes the stromal lipids released by hemolysis. However, during testing of this known hemoglobin solution, shortcomings were revealed that have prevented its clinical use to date. In particular, kidney damage was observed. Other known hemoglobin solutions do not cause kidney damage, but their production involves, inter alia, a dialysis process, which removes phosphorus, which plays an important role in physiologically important enzyme affinity. Acid esters, i.e. 2.3-
Diphosphoglycerate is quantitatively removed. The starting material containing red blood cells is treated with a dilute solution of 3-propiolactone at a temperature range of 5 to 15 qo for less than 25 minutes, and the amount of 8-propiolactone incorporated in the dilute solution is the same as that of red blood cells. 4 to 12 days per liter of precipitation, then using a neutral washing solution or using a slightly alkaline solution to wash off the excess 8-bropiolactone and its reaction products, and then A red blood cell lysate produced by stirring red blood cells in a cytolytic solvent such as distilled water is treated with an enteric ion exchange resin in the H+ form until the pH value is reduced to 5.0 to 5.5; After removing the resin and precipitated stromal mass by centrifugation, adjusting the hemoglobin concentration to a desired level,
It is characterized by adding additives for adjusting isotonicity and for pH value and ferroheme stabilization, followed by aseptic handling.

この臨界的な処理段階のコンビネーションによって、そ
の使用量に際して肝炎の危険が取り除かれた製品が得ら
れる。
This combination of critical processing steps results in a product whose usage dose eliminates the risk of hepatitis.

8ープロピオラクトン溶液による処理は好ましくは赤血
球の沈澱1.5そに対して8ープロピオラクトン6乃至
16夕を1.2乃至3.2夕/100の‘の溶液として
使用して行なわれる。
Treatment with an 8-propiolactone solution is preferably carried out using a solution of 6 to 16 times of 8-propiolactone per 1.5 minutes of red blood cell precipitation of 1.2 to 3.2 hours/100'. It will be done.

ついで遠心分離機で4回洗膝することにより、赤血球の
上澄み液中の残留8−ブロピオラクトンを20乃至10
wc%に低下させる。このとき洗総液として好ましくは
食塩または炭酸水素ナトリウムを含有する溶液が使用さ
れる。他の好ましい洗糠液には第三リン酸ナトリウム溶
液および炭酸ナトリウム溶液が含まれる。これらの洗練
液は続いて行なわれる溶血の際に、更に1/50に稀釈
される。この様な濃度において初めて8−プロピオラク
トンはヘモグロビンおよび他の細胞内部の成分と接触す
る。続いて、それは完全に反応することができる。好ま
しい稀釈溶媒として蒸留水が使用される。
The remaining 8-bropiolactone in the red blood cell supernatant was then reduced to 20 to 10% by washing with a centrifuge four times.
wc%. At this time, a solution containing common salt or sodium bicarbonate is preferably used as the washing liquid. Other preferred bran washes include tribasic sodium phosphate solution and sodium carbonate solution. These purified solutions are further diluted to 1/50 during subsequent hemolysis. Only at these concentrations does 8-propiolactone come into contact with hemoglobin and other internal components of the cell. Subsequently, it can be fully reacted. Distilled water is used as the preferred diluting solvent.

しかしながら生理学的に適当な電解質溶液、例えば食塩
溶液、グルコース溶液あるいは炭酸水素溶液を添加して
も良い。全く意外にも、このようにして行われた処理に
際して、とりわけ2・3−ジーホスホグリセン酸塩の加
水分解を行う酵素系が明らかに阻害されることが発見さ
れた。8−プロピオラクトン処理の段階を除いて、本発
明による処理を行えば得られる製品は本発明の方法によ
る製品と比較して、3ケ月間貯蔵した後約2倍の遊離リ
ン酸塩を含む。
However, it is also possible to add physiologically suitable electrolyte solutions, such as saline solutions, glucose solutions or bicarbonate solutions. Quite surprisingly, it has been found that during the treatment carried out in this way, the enzyme system responsible for the hydrolysis of 2,3-diphosphoglystate is clearly inhibited. Excluding the 8-propiolactone treatment step, the product obtained by the process according to the invention contains about twice as much free phosphate after storage for 3 months compared to the product according to the process according to the invention. .

直接測定によって証明されたように、この発明による8
−プロピオラクトンを用いる処理によって、ヘモグロビ
ン溶液中の2・3一ジーホスホグリセリン酸塩成分はヘ
モグロビン0.8mMolにつき約0.4mMolの値
で3ケ月以上の期間にわたって安定化される。この安定
化なしには、2・3−ジポスホグリセリン酸塩の塩は、
バッチ毎に、0から0.25mMol.の間を変化する
。この発明による洗豚処理に特に適する溶液は3.8%
の炭酸水素ナトリウム溶液または1.6%の塩化ナトリ
ウム溶液である。稀釈に際しては特に赤血球の体積の4
.封苦に稀釈される。特に好ましい陽イオン交f期間脂
は酸性ポリスチロール・スルホネート腸イオン交換樹脂
、ことにDowex 50 WX(商品名DりwChe
mjcal社製)として市販されている樹脂がある。こ
の樹脂は乾燥重量9のこつき4乃至5mvalの交換能
力を有する。その他の適当なイオン交換樹脂としては、
例えばAmberlite IR−120(商品名RO
HM&HAAS社製)、後o−Karb225(商品名
PERMUTIT社製)、LewatitSIO0(商
品名FARBENFABRIKENBAYER社製)等
が市販されている。カリウム成分の減少は、この発明の
方法によれば、まずK十をH+に陽イオン交換し、続い
て蒸留水を添加して遠心分離処理することによって行わ
れる。
8 according to the present invention, as proven by direct measurements.
- By treatment with propiolactone, the 2,31-diphosphoglycerate component in the hemoglobin solution is stabilized at a value of about 0.4 mmol per 0.8 mmol of hemoglobin over a period of more than 3 months. Without this stabilization, the salt of 2,3-diphosphoglycerate would be
per batch, 0 to 0.25mMol. change between. A particularly suitable solution for washing pigs according to the invention is 3.8%
of sodium bicarbonate solution or 1.6% sodium chloride solution. When diluting, especially the volume of red blood cells
.. It is diluted by fugaku. A particularly preferred cation exchange resin is an acidic polystyrene sulfonate ion exchange resin, especially Dowex 50 WX (trade name:
There is a resin commercially available as (manufactured by mjcal). This resin has an exchange capacity of 4 to 5 mval with a dry weight of 9. Other suitable ion exchange resins include:
For example, Amberlite IR-120 (product name RO
HM & HAAS), o-Karb225 (trade name, manufactured by PERMUTIT), Lewatit SIO0 (trade name, manufactured by FARBENFAB RIKEN BAYER), etc. are commercially available. According to the method of the present invention, the potassium component is reduced by first cation-exchanging K+ into H+, followed by adding distilled water and centrifuging.

このとき100泌あたり約6.3夕のヘモグロビンが存
在するように行うのが有利である。安定なpH値は該処
理の終りにおいて好ましくは7.4である。好ましい等
張性調整剤の1つはグルコースであり、また酢酸ナトリ
ウムや炭酸水素ナトリウムを適している。しかしながら
、その他の公知の等張性調整剤、例えば塩化ナトリウム
、マンニット、ソルビット、或いはこれらの任意の組合
せや、生理学上許容できる量の塩化カー」ウム、塩化マ
グネシウム、乳酸ナトリウム等との併用等もすべて同様
にこの目的に適している。この発明に従って、調整され
たヘモグロビン溶液の凍結および部分的な再融解によっ
てヘモグロビンが濃縮された製品をつくることができ、
これは濃縮処理を繰り返すことにより、ヘモグロビン濃
度1.5%、すなわち血液中のヘモグロビン濃度と同じ
濃度にすることができる。
It is advantageous to carry out this in such a way that approximately 6.3 hours of hemoglobin are present per 100 secretions. The stable pH value is preferably 7.4 at the end of the treatment. One preferred tonicity adjusting agent is glucose, with sodium acetate and sodium bicarbonate also being suitable. However, in combination with other known isotonicity adjusting agents such as sodium chloride, mannitol, sorbitol, or any combination thereof, physiologically acceptable amounts of calcium chloride, magnesium chloride, sodium lactate, etc. are all equally suitable for this purpose. In accordance with this invention, a hemoglobin-enriched product can be created by freezing and partially rethawing a prepared hemoglobin solution;
By repeating the concentration process, it is possible to achieve a hemoglobin concentration of 1.5%, that is, the same concentration as the hemoglobin concentration in blood.

このような溶液の相対粘度は通常の血数範囲においても
370で約1.8である。無菌のフラスコおよび血液移
送器具を使用することにより閉鎖系中に強化された作用
物質を含有する変種が得られる。等張’性の最終調整は
得られた超濃縮物がそれによって高張にならぬように、
好ましくは濃縮を行った後に行われる。下記の実施例に
より、この発明の方法を説明する。
The relative viscosity of such a solution is approximately 1.8 at 370 even in the normal blood count range. The use of sterile flasks and blood transfer equipment provides a variant containing the enhanced active substance in a closed system. The final adjustment of isotonicity is carried out so that the obtained superconcentrate does not thereby become hypertonic.
This is preferably carried out after concentration. The following examples illustrate the method of this invention.

下記の実施例で得られた生成物は既にマウス、ねずみ、
うさぎ、犬、ブタおよび人間についてテストされ、良好
な調和性ならびに搬送効果を有することが確認されてい
る。実施例 16人の血液供給者から各500泌の血液
を集め、その赤血球の沈澱を血液から分離し、1つにま
とめ1.6%の塩化ナトリウム溶液2そで稀釈し、新し
く蒸留したP−プロピオラクトン6夕を1000で加え
、15分間10乃至120で鍵拝した。
The products obtained in the following examples have already been tested in mice, rats,
It has been tested on rabbits, dogs, pigs and humans and has been found to have good compatibility and transport effectiveness. EXAMPLE 500 volumes of blood from each of 16 blood donors were collected, the red blood cell precipitate was separated from the blood, combined and diluted with two volumes of 1.6% sodium chloride solution, freshly distilled P- Propiolactone was added for 6 days at 1000 ml and heated at 10-120 ml for 15 minutes.

これを2企分間、冷却遠心分離し上澄み液を吸引して除
き、赤血球の沈澱を4回順次に、その度ごとに1.6%
の塩化ナトリウム溶液を約1.1〆ずつ使用して遠心分
離機上で洗縦し、続いて無菌の脱ィオンした蒸留水5.
2そ中に加えた。5分間燈拝した後、高純度(PA一品
質)の陽イオン交換樹脂Dowex50を日十形で50
0の乙添加し、1規定の水酸化ナトリウム溶液をストロ
ーマ脂質が明白に沈澱するまで加えて、pH値を5.0
とした。
This was subjected to refrigerated centrifugation for 2 minutes, the supernatant was removed by suction, and the red blood cells were precipitated 4 times, each time at a concentration of 1.6%.
Wash on a centrifuge using approximately 1.1 parts of sodium chloride solution, followed by 5 parts of sterile deionized distilled water.
2 added to it. After lighting for 5 minutes, add 50 liters of high purity (PA quality) cation exchange resin Dowex 50.
0 was added and 1N sodium hydroxide solution was added until the stromal lipids precipitated clearly, and the pH value was adjusted to 5.0.
And so.

その後pH5.5で不活性化し、1ぴ分後に20000
で遠心分離した。約1その沈澱物(ストローマおよびイ
オン交換樹脂)からデカンテーションにより、6乃至7
%のヘモグロビン溶液を約5そ分取した。グルコ−ス4
0夕を添加した後、水酸化ナトリウム溶液を用いてpH
値を7.4に調整し、該溶液をさらに前記の方法で遠心
分離し、セルロースーアスベスストフィルター(Bad
KreuznachのSeitz−Werke製のEK
SI)を使用して鰹菌ロ過した。下記タイプのフィルタ
ーを使用しても良好な結果を得ることができる:St.
GallenのFiltrox−Werke製のFil
trox−Stemーフィルター、Firma Pal
l製のFilterKerzenの“U1tipore
”型−この両者はセルロースアスベスト簿層フィルター
またはセルロース−アセテート薄層フィルターである。
これらは夫々、GSUP型フィルター(商品名MLLL
mORE社製、登録商標名Millipore)及びS
ar■ri雌型SMII07 フィルター(商品名 S
ARTORIUS−WERKE社製)として販売されて
いる。この実施例で調整された製品の酸素結合曲線は1
0q○で2ケ月間貯蔵した後において、pH7.4で1
9びorr.のP5の直を示した。
After that, it is inactivated at pH 5.5, and after 1 minute, it becomes 20,000 ml.
centrifuged. Approximately 6 to 7
Approximately 5% hemoglobin solution was collected. glucose 4
After adding 0.0 ml, adjust the pH using sodium hydroxide solution.
The value was adjusted to 7.4 and the solution was further centrifuged as described above and filtered through a cellulose-asbestos filter (Bad
EK manufactured by Seitz-Werke in Kreuznach
Bonito mold was filtered using SI). Good results can also be obtained using filters of the following types: St.
Fil from Gallen's Filtrox-Werke
trox-Stem filter, Firma Pal
FilterKerzen's "U1tipore"
Type - Both are cellulose asbestos thin layer filters or cellulose-acetate thin layer filters.
These are respectively GSUP type filters (product name MLLL
Manufactured by mORE, registered trademark Millipore) and S
ar■ri female type SMII07 filter (product name S
ARTORIUS-WERKE). The oxygen binding curve of the product prepared in this example is 1
After storage for 2 months at 0q○, 1 at pH 7.4.
9bi orr. showed the correctness of P5.

赤血球内のpH値7.2に換算すれば、上誌の製品のヘ
モグロビンのP50値は2餌on.に相当する。新鮮な
赤血球のP5q直‘ま2汀orr.である。この酸素分
圧は該ヘモグロビン製品が、その最大酸素結合能力の5
0%まで飽和されている値であ。実施例 2 2その赤血球懸濁液中に8−プロピオラクトン16夕を
添加した点だけを除いて、実施例1と同様の操作を行っ
た。
If converted to the pH value in red blood cells of 7.2, the hemoglobin P50 value of the above product is 2-feed on. corresponds to Fresh red blood cell P5q direct'ma2orr. It is. This oxygen partial pressure is such that the hemoglobin product is 50% of its maximum oxygen binding capacity.
The value is saturated to 0%. Example 2 The same procedure as in Example 1 was carried out, except that 8-propiolactone was added to the red blood cell suspension.

遠心分離および上澄み液の吸引ロ過後、赤血球の沈澱を
下記の溶液をそれぞれ約1.1そずつ使用して洗淡した
:‘1’1夕当り斑夕の炭酸水素ナトリウムを含有する
溶液、‘2}‘1ーと同機に1〆当り斑夕の炭酸水素ナ
トリウムを含有する溶液と、{3}と同様に1そ当り1
6夕のNaCIを含有する溶液とを1:1の割合で混合
した溶液、{4}1夕当り16夕のNaCIを含有する
溶液。次いで実施例1と同様にストローマを分離する操
作までを行った。雛菌ロ過の前に1規定のNaOHを使
用して、もう一度pH値を7.0に調整し、1夕につき
33夕のグルコースを添加し、次いで1夕につき25夕
の炭酸水素ナトリウムを添加し、1規定のNaOH溶液
を使用して最終pH値を7.4に調整した。実施例 3
実施例1あるいは2と同様にして、ストローマの分離ま
での操作を行った。
After centrifugation and suction filtration of the supernatant, the red blood cell precipitate was washed using approximately 1.1 volumes of each of the following solutions: '1' solution containing sodium bicarbonate at 1/2 m/day; 2} '1- and a solution containing sodium bicarbonate per 1 〆 and 1 per 1 as in {3}
A solution containing 6 hours of NaCI in a 1:1 ratio, {4} a solution containing 16 hours of NaCI per night. Next, the same procedure as in Example 1 was performed up to the step of separating the stroma. Before brood filtration, the pH value was adjusted once again to 7.0 using 1N NaOH and 33 g of glucose per night was added, followed by the addition of 25 g of sodium bicarbonate per night. The final pH value was then adjusted to 7.4 using 1N NaOH solution. Example 3
The procedure up to the separation of the stroma was carried out in the same manner as in Example 1 or 2.

その後に下記の操作により、血液に相当するヘモグロビ
ンの濃度を15夕/100の上に濃縮した:ヘモグロビ
ン溶液を50物上ずつ、固定された1000の上のフラ
スコ中で凍結させ、次いで無菌の血液取り出し装置を有
する止め栓の穿孔を通じて、滞留する白色の氷柱から濃
赤色の融解物を継続的に取り出すことができるように頂
部に据えられたフラスコ中で室温において融解する。こ
の操作の反復により150夕/そのヘモグロビンを含有
する溶液が得られた。次いで、この溶液を実施例1に従
って処理することにより、浸薄可能な製品が得られた。
本発明の実施の態様は次の通りである。
The concentration of hemoglobin corresponding to blood was then concentrated to 15/100 by the following procedure: the hemoglobin solution was frozen in 50/100 increments in fixed 1000/100 increments, and then the sterile blood It is melted at room temperature in a flask mounted on top so that the dark red melt can be continuously removed from the retained white icicles through the perforation of the stopper with a removal device. By repeating this operation, a solution containing 150 hemoglobin was obtained. This solution was then processed according to Example 1 to obtain a diluted product.
The embodiments of the present invention are as follows.

‘1’ 赤血球の沈澱物1.5のこ対し、6乃至16夕
のBープロピオラクトンを1.2乃至3.2多/100
机【の溶液として使用することを特徴とする特許請求の
範囲第1項記載の製法。
'1' B-propiolactone from 6 to 16 days per 1.5 parts of red blood cell sediment 1.2 to 3.2 times per 100
2. The method according to claim 1, wherein the method is used as a solution.

‘21 8−プロピオラクトンでの処理を10乃至1ぞ
○で行うことを特徴とする特許請求の範囲第1項または
実施の態様‘1’に記載の製法。
'21 The manufacturing method according to Claim 1 or Embodiment '1', characterized in that the treatment with 8-propiolactone is carried out at 10 to 1 o.

(3} 過剰の8−プロピオラクトンを分離するために
洗族を4回行うことを特徴とする特許請求の範囲第1項
並びに実施の態様‘1}乃至■のいづれかに記載の製法
(3) The production method according to any one of Claim 1 and Embodiments '1' to '2', characterized in that washing is carried out four times to separate excess 8-propiolactone.

■ 8ープロピオオラクトンによる処理の後の洗糠に炭
酸水素ナトリウム溶液および/または塩化ナトリウム溶
液特に3.8%の炭酸水素ナトリウム溶液および/また
は1.6%の塩化ナトリウム溶液を使用することを特徴
とする特許請求の範囲第1項並びに実施の態様1}乃至
{3}のいづれかに記載の製法。
■ Use of sodium bicarbonate solution and/or sodium chloride solution, in particular 3.8% sodium bicarbonate solution and/or 1.6% sodium chloride solution, for washing the rice bran after treatment with 8-propioolactone. The manufacturing method according to claim 1 and any one of embodiments 1 to {3}.

■ 陽イオン交換樹脂として、H+形のポリスチロール
ースルホネート樹脂を使用することを特徴とする特許請
求の範囲第1項並びに実施の態様の{1}乃至‘4}の
いづれかに記載の製法。
(2) The manufacturing method according to claim 1 and any one of {1} to '4} of the embodiments, characterized in that an H+ type polystyrene sulfonate resin is used as the cation exchange resin.

{6} グルコース、酢酸ナトリウムまたは炭酸水素ナ
トリウムを使用して等張性を調整することを特徴とする
特許請求の範囲第1項並びに実施の態様{1}乃至{5
}のいづれかに記載の製法。{7ー 最終製品のpH値
を水酸化ナトリウム溶液を用いて調整することを特徴と
する特許請求の範囲第1項並びに実施の態様‘1}乃至
{6}のいづれかに記載の製法。(81セルロースーア
スベストフイルタ一またはセルロースアセテート製の薄
層を用いて祭菌ロ過することを特徴とする特許請求の範
囲第1項並びに実施の態様‘1}乃至【7}のいづれか
に記載の製法。
{6} Claim 1 and embodiments {1} to {5) characterized in that isotonicity is adjusted using glucose, sodium acetate or sodium hydrogen carbonate.
} The manufacturing method described in any of the above. {7- The manufacturing method according to any one of Claim 1 and Embodiments '1} to {6}, characterized in that the pH value of the final product is adjusted using a sodium hydroxide solution. (According to any one of Claim 1 and Embodiments 1 to 7, wherein the bacteria are filtered using an 81 cellulose-asbestos filter or a thin layer made of cellulose acetate.) Manufacturing method.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 赤血球を含有する出発原料を5乃至15℃の温度範
囲で25分より短い時間β−プロピオラクトンの稀薄溶
液で処理し、その稀薄溶液中に配合されたβ−プロピオ
ラクトンの使用量は赤血球の沈澱1リツトルにつき4乃
至12gであり、ついで中性の洗滌用溶液を使用するか
、あるいは弱アルカリ性の溶液を使用して過剰のβ−プ
ロピオラクトンおよびその反応生成物を洗い落し、次に
赤血球を蒸留水等の細胞破壊性溶液中でかくはんするこ
とによつて生成した赤血球溶解物を、pH値が5.0乃
至5.5に低下するまで、H^+形の陽イオン交換樹脂
で処理し、該樹脂および沈澱したストローマ塊を遠心分
離によつて除いた後、所望のヘモグロビン濃度に調整し
、等張性調節用の添加剤並びにpH値およびフエロヘム
安定化用の添加剤を加え、次で無菌ロ過することを特徴
とするヘモグロビン溶液の製法。 2 赤血球を含有する出発原料を5乃至15℃の温度範
囲で25分より短い時間β−プロピオラクトンの稀薄溶
液で処理し、その稀薄溶液中に配合されたβ−プロオラ
クトンの使用量は赤血球の沈澱1リツトルにつき4乃至
12gであり、ついで中性の洗滌用溶液を使用するか、
あるいは弱アルカリ性の溶液を使用して過剰のβ−プロ
ピオラクトンおよびその反応生成物を洗い落し、次に赤
血球を蒸留水等の細胞破壊性溶媒中でかくはんすること
によつて生成した赤血球溶解物を、pH値が5.0乃至
5.5に低下するまで、H^+形の腸イオン光換樹脂で
処理し、該樹脂および沈澱したストローマ塊を遠心分離
によつて除いた後、かくして得られた溶液を、棒状に凍
結し、次いで垂直の姿勢で融解し、該氷塊から流れ落ち
るヘモグロビンに富む融解物を分離し、必要な場合には
この操作を繰り返し、その後これに等張性調節用の添加
剤並びにpH値およびフエロヘム安定化用の添加剤を加
え、次で無菌ロ過することを特徴とするヘモグロビン溶
液の製法。
[Claims] 1. A starting material containing red blood cells is treated with a dilute solution of β-propiolactone at a temperature range of 5 to 15°C for a period of less than 25 minutes, and the β-propiolactone formulated in the dilute solution is The amount of piolactone used is 4 to 12 g per liter of red blood cell sediment, and then a neutral washing solution or a slightly alkaline solution is used to remove excess β-propiolactone and its reaction product. The red blood cell lysate, produced by washing off and then stirring the red blood cells in a cytolytic solution such as distilled water, is incubated with H^+ until the pH value drops to 5.0-5.5. After treatment with a cation-exchange resin of the form and removal of the resin and precipitated stromal mass by centrifugation, the desired hemoglobin concentration is adjusted and additives for isotonicity adjustment and pH value and ferroheme stabilization are added. A method for producing a hemoglobin solution, which is characterized by adding additives and then sterile filtration. 2. The starting material containing red blood cells is treated with a dilute solution of β-propiolactone at a temperature range of 5 to 15°C for a period of less than 25 minutes, and the amount of β-propiolactone used in the dilute solution is determined to be the same as that of red blood cells. 4 to 12 g per liter of sediment and then using a neutral washing solution, or
Alternatively, a red blood cell lysate produced by washing off excess β-propiolactone and its reaction products using a slightly alkaline solution and then stirring the red blood cells in a cell-destroying solvent such as distilled water. was treated with enteric ion photoconversion resin in the H^+ form until the pH value decreased to 5.0-5.5, and after removing the resin and precipitated stromal mass by centrifugation, the thus obtained The resulting solution is frozen in the form of a rod, then thawed in a vertical position, separating the hemoglobin-rich melt that flows from the ice block, repeating this operation if necessary, and then adding to it an isotonic adjustment solution. A process for producing a hemoglobin solution, characterized in that additives and additives for pH value and ferroheme stabilization are added, followed by sterile filtration.
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Families Citing this family (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4001200A (en) * 1975-02-27 1977-01-04 Alza Corporation Novel polymerized, cross-linked, stromal-free hemoglobin
US3991181A (en) * 1975-06-18 1976-11-09 Warner-Lambert Company Injectable stroma free hemoglobin solution and its method of manufacture
GB1578776A (en) * 1976-06-10 1980-11-12 Univ Illinois Hemoglobin liposome and method of making the same
US4401652A (en) * 1980-12-31 1983-08-30 Allied Corporation Process for the preparation of stroma-free hemoglobin solutions
DE3130770C2 (en) * 1981-08-04 1986-06-19 Biotest-Serum-Institut Gmbh, 6000 Frankfurt Process for obtaining hepatitis-safe, sterile, pyrogen-free and stroma-free hemoglobin solutions
DE3225408A1 (en) * 1982-07-07 1984-01-12 Biotest-Serum-Institut Gmbh, 6000 Frankfurt AQUEOUS SOLUTION FOR SUSPENDING AND STORING CELLS, ESPECIALLY ERYTHROCYTES
DE3587351T3 (en) * 1984-03-23 1998-04-16 Baxter Int HEMOGLOBIN WITH REDUCED VIRUS RISK AND THEIR PRODUCTION.
US5281579A (en) * 1984-03-23 1994-01-25 Baxter International Inc. Purified virus-free hemoglobin solutions and method for making same
DE3412144A1 (en) * 1984-03-31 1985-10-10 Biotest Pharma GmbH, 6000 Frankfurt METHOD FOR PRODUCING HIGHLY CLEANED, ELECTRICITY-FREE, HEPATITIC-SAFE HUMAN AND ANIMAL HEMOGLOBIN SOLUTIONS
US4908350A (en) * 1985-10-31 1990-03-13 The Regents Of The University Of California Hyperosmotic/hyperoncotic solutions for resuscitation of hypodynamic shock
US5753616A (en) * 1986-11-10 1998-05-19 Biopure Corporation Method for producing a stable polymerized hemoglobin blood-substitute
US5955581A (en) * 1986-11-10 1999-09-21 Biopure Corporation Method for producing a stable polymerized hemoglobin blood-substitute
US4927806A (en) * 1987-04-23 1990-05-22 The Regents Of The University Of California Saturated salt/concentrated dextran formulation to treat hemorrhage
US5439882A (en) * 1989-12-29 1995-08-08 Texas Tech University Health Sciences Center Blood substitute
SE9301188D0 (en) * 1993-04-08 1993-04-08 Gramineer Ab NEW PROCESS
US5895810A (en) * 1995-03-23 1999-04-20 Biopure Corporation Stable polymerized hemoglobin and use thereof
US5691453A (en) * 1995-06-07 1997-11-25 Biopure Corporation Separation of polymerized hemoglobin from unpolymerized hemoglobin on hydroxyapatite using HPLC
US5741894A (en) * 1995-09-22 1998-04-21 Baxter International, Inc. Preparation of pharmaceutical grade hemoglobins by heat treatment in partially oxygenated form
US6518010B2 (en) * 2001-02-28 2003-02-11 Biopure Corporation Use of defibrinated blood for manufacture of a hemoglobin-based oxygen carrier
US7001715B2 (en) * 2002-02-28 2006-02-21 Biopure Corporation Purification of red blood cells by separation and diafiltration

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2527210A (en) * 1944-01-25 1950-10-24 John O Bower Hemoglobin solution and method
US3634290A (en) * 1969-08-06 1972-01-11 Tipton L Golias Method of preparing hemolysates for hemoglobin and other types of electrophoresis using chelating agents

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