JPS59500952A - Stable plurilamellar vesicles - Google Patents

Stable plurilamellar vesicles

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JPS59500952A JP58501679A JP50167983A JPS59500952A JP S59500952 A JPS59500952 A JP S59500952A JP 58501679 A JP58501679 A JP 58501679A JP 50167983 A JP50167983 A JP 50167983A JP S59500952 A JPS59500952 A JP S59500952A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 安定なプルリラメラベシクル類 1、発明の分野 本発明は、リポゾーム類および投与系における担体上してその用途に関するもの である。特に、増大した安定性および高い捕捉効率のごとき特別な利点を与える 特異な性質を有する新規なタイプの脂質ベシクルに関するものである。[Detailed description of the invention] Stable plurilamellar vesicles 1. Field of invention The present invention relates to liposomes and their use on carriers in administration systems. It is. In particular, they offer special advantages such as increased stability and high capture efficiency. This invention relates to a new type of lipid vesicle with unique properties.

ここに記載の組成物および方法はキャリヤー系および目的とする投与系のような 分野に広い範囲で適用性を有している。本発明の実用性は、プルセラ症の治療、 眼疾感染の治療およびリンパ球髄膜炎ウィルス感染の治療の例により示される。The compositions and methods described herein include carrier systems and intended administration systems. It has wide applicability in a wide range of fields. The practicality of the present invention is to treat pulcellosis, Illustrated by the examples of treatment of eye disease infections and treatment of lymphocytic meningitis virus infections.

2、発明の背景 2.1.リポソーム類は、捕捉水相を含有している完全に閉塞された二分子層膜 である。リポソーム類は、ユニラメラベシクル(単層膜の二分子層を有する)ま たはマルチラメラベシクル(水の層により次からそれぞれ分離した同心状膜二分 子層により特徴づ(プられる玉ねぎ状構造)のいかなる相違があってもよい。2. Background of the invention 2.1. Liposomes are completely occluded bilayer membranes containing an entrapped aqueous phase. It is. Liposomes are unilamellar vesicles (having a bilayer of monolayers) or or multilamellar vesicles (bisected concentric membranes, each separated from the next by a layer of water) There may be any differences in the onion-like structure characterized by the child layers.

パンガム(B angham)’らの最初のリポソームの製造は、有機溶媒中に 懸濁させたリン脂質を含み、該リン脂質はついで蒸発により乾燥して反応容器内 に リン脂質のラッタフ積昭59−500952(3) ス状堆積物が残す。ついで、適当量の水性相を加えて混合物を「膨潤」させ、か つマルチラメラベシクル類(nlultifflellar vesicles ) (以下、MLVsという。)よるなる結果物であるリポソーム類を機械的方 法で分散させる。得られる膜状二分子層の講造は、脂質の疎水性(非極性)「テ ール」が二分子層の中心に向って配向するのに対し、親水性(極性)「ヘッド」 は水相に向って配向する。この技術は、パパハジョブーロスおよびミラー(P  apahadjop。The first liposome production by B. Angham et al. containing suspended phospholipids, which are then dried by evaporation into the reaction vessel. Latter area of phospholipids 1985-500952 (3) Leaves a soot-like deposit. An appropriate amount of aqueous phase is then added to "swell" the mixture and multilamellar vesicles ) (hereinafter referred to as MLVs). Disperse by law. The structure of the resulting membranous bilayer is based on the hydrophobic (non-polar) “te” of the lipids. The hydrophilic (polar) “head” is oriented toward the center of the bilayer, whereas the “head” is oriented toward the center of the bilayer. is oriented toward the aqueous phase. This technique is based on Papahajoboulos and Miller (P apahadjop.

ulos and Millar ) (1967、Biochem、 3io pbys。ulos and Millar) (1967, Biochem, 3io pbys.

Acta 、135 : 624−638)により記載されている小さな音波処 理されたユニラメラベシクル類(Small 30nicated unila mellar vesicles) (以下、5UVsという、)の開発用の基 礎を提供している。しかしながら、これらの「古典的なリポソーム類」は、脂質 の1モル当りの捕捉水性空間の低容積および巨大分子を被包する能力が制限され るという欠点が少からずある。 捕捉された空間を増大させる努力は、第1に逆 ミセル類またはリポソーム前駆体を生成すること、すなわち脂質分子の単一層に より囲繞されている水性層を含有するベシクル類が、極性ヘッド基が水性相に向 (ように配向されることを含むものであった。リポソーム前駆体は、有機溶媒の 極性脂質溶液に捕捉されるべき水性溶液を加えかつ音波処理することにより生成 される。ついで、リポソーム前駆体は、過剰の脂質の存在下に蒸発される。脂質 の二分子層により捕捉された水性層よりなる結果物としてのリポソーム類は、水 性相に分散される( M 、 3 cln+eiderに対して1980年9月 23日に発行された米国特許第4,224,179号参照)。Acta, 135: 624-638). Small 30nicated unila The basis for the development of mellar vesicles (hereinafter referred to as 5UVs) provides the foundation. However, these “classical liposomes” are The low volume of trapped aqueous space per mole of molecule and the ability to encapsulate macromolecules are limited. There are quite a few drawbacks. Efforts to increase captured space are primarily due to The production of micelles or liposome precursors, i.e., a single layer of lipid molecules. Vesicles containing a more surrounded aqueous layer have polar head groups directed toward the aqueous phase. The liposome precursor was oriented in an organic solvent. produced by adding the aqueous solution to be captured to a polar lipid solution and sonicating be done. The liposome precursor is then evaporated in the presence of excess lipid. lipid The resulting liposomes consist of an aqueous layer trapped by a bilayer of water. Dispersed in Shuso (September 1980 for M, 3 cln+eider (See U.S. Pat. No. 4,224,179, issued on the 23rd).

補足効率の最大化の他の試みにおいて、パパハジョプーロス<1980年11月 25日発行の米国特許第4,235.871号〉は、オリゴラメラ脂質ベシクル 類(oligolamellar 1ipid vesicles) %進用の 「逆相蒸発法」も逆相蒸発ベシクル類(以下、REVsという。)として知られ ていると記載している。この方法によれば、捕捉されるべき水性物質は、有機溶 媒中の極性脂質の混合物に添710される。ついで、均質な油中水型のエマルジ ョンが生成し、かつ有機溶媒はゲルが生成するまで蒸発される。このゲルは、つ ぎに水性媒体中でゲル状混合物を分散することにより懸濁物に変換される。生成 したREVSは、主としてモノラメラベシクルおよび大きな内部水性空間を有す る少い同心状二分子層のみにより特徴づけられる若干のオリゴラメラベシクルよ りなるものである。REVSのある透過特性、MLVSおよび5uvsの透過特 性と同様であると報告されティる( 3 zoka and P apciha jopoulos 、 1978 、 proc 、 Na口 、ハ、c?d  、 3ci、 (J、 S、 A、 7 5 :4、19 ’I −4198・ )。In another attempt to maximize supplementation efficiency, Papahadjopoulos <November 1980 U.S. Pat. No. 4,235,871, issued on the 25th, describes (oligolamellar 1ipid vesicles) % advancement The "reverse phase evaporation method" is also known as reverse phase evaporation vesicles (hereinafter referred to as REVs). It is stated that According to this method, the aqueous substances to be captured are Added 710 to the mixture of polar lipids in the medium. Then, a homogeneous water-in-oil emulsion A gel is formed and the organic solvent is evaporated until a gel is formed. This gel is The gel-like mixture is then converted into a suspension by dispersing it in an aqueous medium. Generate REVS mainly have monolamellar vesicles and large internal aqueous spaces. Some oligolamellar vesicles are characterized by only a few concentric bilayers. It is something that will become true. Transmission characteristics with REVS, MLVS and 5uvs It is reported that it is similar to the sex (3. zoka and p. apciha). jopoulos, 1978, proc, Naguchi, ha, c? d  , 3ci, (J, S, A, 7 5:4, 19'I-4198・ ).

しかしながら、種々の化合物を捕捉するリポソーム類は、貯蔵が不変的に限られ る間にリポソーム類の安定性がつくられる。安定性におけるこの損失は、リポソ ーム類から捕捉された化合物が周囲の媒体へ漏洩する結果となり、また物質の透 過により周囲の媒体からリポソーム自体へのリポソーム分の汚染をする結果とも なる。結果として、従来のリポソーム類の貯蔵寿命は極めて限られたものである 。安定性を改善する試みは、リポソーム膜内に脂質二分子層の物性に影響を与え る物質(以下、「安定剤」という。)(例えばステロイド基)を含有させること を含んでいた。However, liposomes that entrap various compounds have permanently limited storage. During this period, stability of the liposomes is created. This loss in stability This can result in compounds trapped from the materials leaking into the surrounding media and This may also result in contamination of the liposomes from the surrounding medium to the liposomes themselves. Become. As a result, conventional liposomes have an extremely limited shelf life. . Attempts to improve stability affect the physical properties of the lipid bilayer within the liposome membrane. (hereinafter referred to as "stabilizer") (e.g. steroid group). It contained.

しかしながら、これらの物質の多くは、比較的高価でかつこのようなリポソーム 類の製造はコスl〜的に有効ではなかった。However, many of these materials are relatively expensive and The production of similar products was not cost efficient.

従来のリポソーム類の貯蔵問題の他に、多くの化合物はこれらのベシクル類に含 有させることが不可能であった。In addition to the storage problems of traditional liposomes, many compounds are It was impossible to have it.

M L V Sは、脂質膜の相転移温度以上の条件下でのみ製造され得る。これ は、所望の性質を発揮するが長くかつ高い飽和度の側鎖を有するリン脂質よりな るリポソーム頬内に熱不安定性分子の含有を防止する。MLVS can only be produced under conditions above the phase transition temperature of the lipid membrane. this phospholipids that exhibit the desired properties but have long and highly saturated side chains. This prevents the inclusion of thermolabile molecules within the liposomes.

2.2. リポソーム類の用途 リポソーム類の治療用への適用は、[リポソーム類(Liposomes) :  From Physical 5tructutes T。2.2. Uses of liposomes Therapeutic applications of liposomes include [Liposomes]: From Physical 5 structures T.

Therapeutic Applications 、 Knight 、  ed、 E 1sevier 、 North −Holland Biome dical Press、 1981 Jに記載されている。このような系には 数多くの問題が残っているとはいえ、医療投与系用にこれらの膜ベシクルを使用 する可能性について多くのことが書かれている(例えば、’y’neh −4r h and EIizabeth A、 Cernyに対して1976年11月 23日に発行された米国特許第3,993゜754号およびB arry D  、 S earsに対して発行された米国特許第4,145,410号参照)。Therapeutic Applications, Knight, ed, E 1sevier  North -Holland Biome dical Press, 1981 J. In such a system Although numerous issues remain, the use of these membrane vesicles for medical delivery systems is challenging. Much has been written about the possibility of h and EIizabeth A, against Cerny, November 1976 U.S. Patent No. 3,993゜754 issued on the 23rd and B arry D , U.S. Pat. No. 4,145,410 issued to Sears).

リポソーム医薬投与系においては、薬剤はリポソーム生成中に捕捉され、ついで 、治療されるべき患者に投与される。該薬剤は、水または非極性溶媒に可溶であ る。このような開示の代表例は、パパハジョプーロスおよびスゾカに対して19 80年11月25日に発行された米国特許第4,235..871号およびエム 、シュナイダーに対して1980年9月23日に発行された米国特許第4,22 4,179号である。In liposomal drug delivery systems, the drug is entrapped during liposome formation and then , administered to the patient to be treated. The drug is soluble in water or a non-polar solvent. Ru. Representative examples of such disclosures are 19 v. Papahadjopoulos and Szoka. U.S. Patent No. 4,235, issued November 25, 1980. .. No. 871 and M , U.S. Patent No. 4,22 issued September 23, 1980 to Schneider. No. 4,179.

医薬投与系の若干の望ましい特徴は、医薬の作用を長くする医薬の徐放に伴なわ れる医薬の急速な除去に対する抵抗である。これは、医薬の効果を増大させかつ より少量の投、与での使用を可能にする。生体内(in vivo)でのリポソ ーム剤の使用時に生じる若干の問題は、つぎの点を含んでいる。(1)物質を捕 捉しているリポソームは、該リポソーム類が体液内で生長する際に漏洩する。こ れは、他の理由の他に、血漿高密度リポタンパク質(HDL)によるリポソーム リン脂質の除青またはホスホリパーゼによるリポソーム膜の分解の原因となって いた。生体内でのリポソーム類の分解の結果は、はとんど全てのリポソーム分が 短時間で放出され、このため、徐放性および医薬除去に対す奇抵抗は達成できな い。(2)一方、生体内で極めて安定なリポソーム類を使用するとくすなわち、 リポソーム類が体液内で生成する際に漏洩しないと)、リポソーム分は必要に応 じて放出されない。結果として、これらの安定なリポソーム類は、徐放およびリ ポソーム分放出の能力が必要なとぎに達成されないので、生体内で治療物質の担 体として無効である。しかしながら、細胞内感染を治療する場合、生体液内の安 定性の維持は、リポソームが感染した細胞により内部移行する点までは臨界的で ある。(3)投与系で使用されるリポソーム担体のコストの影響。例えば、リポ ソーム含有の抗リーシュマニア剤を使用するリーシュマニア感染の化学療法の改 良法は、1980年1月29日に発行された米国特許第4,186,183号に おいてステックおよびアルピングにより報告されている。化学療法に使用されて いるリポソーム類は、生体内でリポソーム類の安定性を増大する多数の安定剤が 含有されている。しかしながら、前記のように、これらの安定剤は高価であり、 かつこれらの安定剤を含有するりポソーム類の生産は、コスト低下とならない。Some desirable features of a drug delivery system include sustained release of the drug, which prolongs the action of the drug. resistance to rapid removal of drugs. This increases the effectiveness of medicines and Allows for use in smaller doses. Liposolysis in vivo Some problems that arise when using emollients include the following. (1) Capturing substances Entrapping liposomes leak as the liposomes grow within body fluids. child This is because, among other reasons, plasma high-density lipoprotein (HDL)-induced liposomes Causes removal of phospholipids or degradation of liposome membranes by phospholipases there was. As a result of the degradation of liposomes in vivo, almost all of the liposomes are It is released in a short time and therefore sustained release and resistance to drug removal cannot be achieved. stomach. (2) On the other hand, when using liposomes that are extremely stable in vivo, (If liposomes do not leak when they are produced in body fluids), the liposomes can be used as needed. It is not released until As a result, these stable liposomes are suitable for sustained release and release. Since the ability to release the posomal fraction is not achieved at the required time, it is possible to carry therapeutic substances in vivo. It is invalid as a body. However, when treating intracellular infections, Maintenance of quality is critical up to the point where liposomes are internalized by infected cells. be. (3) The impact of the cost of the liposome carrier used in the administration system. For example, lipo Modification of chemotherapy for Leishmanial infections using somal-containing anti-leishmanial agents The good law is described in U.S. Patent No. 4,186,183, issued January 29, 1980. reported by Steck and Alping. used in chemotherapy Liposomes contain a number of stabilizers that increase the stability of liposomes in vivo. Contains. However, as mentioned above, these stabilizers are expensive; Moreover, the production of liposomes containing these stabilizers does not result in cost reduction.

(4)最後に、医薬投与系における担体としてのリポソーム類の使用で生じる問 題は、治療されるべき病気の治療を助ける効果がないということである。急速排 出に対する抵抗性に対する無効性および徐放性を助けるのに無効である他に、病 気治療に対する無効性に対して数多くの他の説明が可能である。例えば、リポソ ーム類が目的の細胞または食作用細胞(例えば網内皮細胞)に内部移行する場合 、これらはRESよりも含まれる細胞の病気に対して非常に無効な捕捉された医 薬を与えて系内が急速に排出される。食作用後は、リポソーム分は、食作用細胞 のリポソーム内にパックされる。非常にしばしばリポソーム内に含有されている 分解性酵素は捕捉されている化合物を分解するかあるいはその活性点でその化合 物を開裂するかあるいはその構造を変えることにより該化合物と不活性にする。(4) Finally, we would like to address the issues that arise with the use of liposomes as carriers in pharmaceutical delivery systems. The problem is that they are not effective in helping treat the disease that is being treated. rapid evacuation In addition to being ineffective against resistance to release and ineffective in aiding sustained release, Numerous other explanations for the ineffectiveness to Qi treatment are possible. For example, liposo internalize into target cells or phagocytic cells (e.g. reticuloendothelial cells) , these are trapped medicines that are much more ineffective against disease of the cells involved than the RES. The drug is given and the system is rapidly excreted. After phagocytosis, liposomes are transferred to phagocytic cells. packed into liposomes. Very often contained within liposomes Degradative enzymes either degrade the captured compound or release the compound at their active site. make the compound inert by cleaving it or changing its structure.

さらに、リポソーム類は、製造時に活性化合物のベシクルへの低い捕捉効率のた めに有効である投与量が投与できない。Additionally, liposomes are difficult to manufacture due to low entrapment efficiency of active compounds into the vesicles. It is not possible to administer a dose that is effective for the patient.

リポソーム類は、研究者らによりモデル膜系として使用され、かつ捕捉輸送イム ノアッセイにおける「標的細胞」として使用されてきた。しかしながら、このよ うなイムノアッセイに使用する場合、これらのアッセイがあるイムノグロブ′リ ンクラス(例えばI(IMおよびI(IG分子)を含む免疫複合体生成により内 情補体活性化の因子としてリポソーム分の放出を測るので、血清中に培養される 際にリポソーム膜が漏洩しないことが重要である。Liposomes have been used by researchers as a model membrane system and as a transport mechanism for capture and transport. have been used as "target cells" in assays. However, this When used in immunoassays such as internalization by generation of immune complexes containing immunoclasses (e.g. I (IM) and I (IG molecules)). Since the release of liposomes is measured as a factor for complement activation, it is cultured in serum. It is important that the liposome membrane does not leak during this process.

3、発明の開示 本発明は、以後安定なプルリラメラベシクル類(stableplurilam ellar vesicles (S P L Vs ) )と称される新規か つ実質的に改良されたタイプの脂質ベシクル類を提供する。ことにある。マルチ ラメラベシクル類(multilamelfar vesicles (M L  V S ) )とは構造的に異なる他に、5PLVsはまたMLVsとは異な る方法で製造され、MLVsと比較して特異な性質を有し、かつこのようなML Vsと比較して種々の異なる移点を有している。これらの差異の結果として、5 PLVsは従来から使用されてきた通常の脂質ベシクル類により代表される多く の問題を解決するものである。3.Disclosure of the invention The present invention hereinafter relates to stable plurilamellar vesicles (stable plurilamellar vesicles). A new product called ellar vesicles (SPL Vs)) A substantially improved type of lipid vesicles is provided. There is a particular thing. multi lamellar vesicles (M L Besides being structurally different from VS), 5PLVs also differ from MLVs. is produced by a method that has unique properties compared to MLVs, and such ML It has various different transition points compared to Vs. As a result of these differences, 5 PLVs are represented by many conventional lipid vesicles. It solves the problem of

脂質ベシクル類の不均質混合物は、SPL’Vsが合成されるときに生成する。A heterogeneous mixture of lipid vesicles is generated when SPL'Vs are synthesized.

証拠は、該5PLVs中の脂質類が新規なスプラモレキュラール構造に形成され ることを示している。脂質ベシクル類の多くは、非常に多くの二分子層、場合に よっては100程度の多くの層を有している。この高度の層形成は、その説明が 理論的ではあるが、5PLVSにより保有される数多くの驚くべき性質に寄与す ることが可能である。Evidence suggests that the lipids in the 5PLVs are formed into novel supramolecular structures. Which indicates that. Many lipid vesicles have numerous bilayers, sometimes Therefore, it has as many as 100 layers. This high degree of stratification is explained by Although theoretical, it may contribute to a number of surprising properties possessed by 5PLVS. It is possible to

5PLVsの性質は、つぎのちのを含んでいる。(1)他の方法で治療不可能な ある種の病気を治療する能力、〈2)緩衝液中で保存している間の5PLVsの 非常に大きな安定性、(3)苛酷な環境に耐え得る5PLVsの大きな能力、( 4)物質の高い捕捉効果、〈5)長時間にわたる組織および細胞に対する付着力 、〈6)体液内での捕捉物質の徐放能力、(7〉標的細胞の細胞質ゾルを通じて のリポソーム分の投与および決定的な分散性、(8)製造における改良されたコ スト低下、および(9)生体内におけるその生物活性形での化合物の放出。The properties of 5PLVs include the following. (1) Untreatable by other methods 2. The ability of 5PLVs to treat certain diseases while stored in buffer. (3) great ability of 5PLVs to withstand harsh environments; 4) High substance trapping effect, 5) Long-term adhesion to tissues and cells. , (6) ability to sustain the release of entrapped substances within body fluids, (7) through the cytosol of target cells. (8) improved co-operation in manufacturing; (9) release of the compound in its biologically active form in vivo.

S P L V Sの特異、な性質のために、これらは排出に対して抵抗があり かつ徐放性であるので、生体内で投与系のキA・リヤーとして特に有用である。Due to the unique properties of S P L V S, they are resistant to evacuation. Moreover, since it has a sustained release property, it is particularly useful as a drug for administration in vivo.

生体内での生物活性化合物の投与および病気、例えば感染症の治療の方法が記載 されている。Describes methods for administering bioactive compounds in vivo and treating diseases, e.g. infections has been done.

4、図面の簡単な説明 第1図は種々の濃度で処理したMLVsとS P L Vsどの間の膜安定性〈 漏洩%で表わされている)の差異を示すグラフである。4. Brief explanation of the drawing Figure 1 shows the film stability between MLVs and SPL Vs treated at various concentrations. FIG.

第2図は、マウスの眼瞼組織における5PLVsの脂質層および水性相の両者の 保持力および生体内でS P L Vsからのゲンタマイシンの徐放性を示すグ ラフである。Figure 2 shows both the lipid layer and aqueous phase of 5PLVs in mouse eyelid tissue. Groups showing retention and sustained release of gentamicin from SPL Vs in vivo It's rough.

第3図は、M L V Sの電子スピン共鳴吸収スペクトルと比較したS P  L V sの電子スピン共鳴吸収スペクトルを示す図である。Figure 3 shows S P compared with the electron spin resonance absorption spectrum of M L V S. FIG. 3 is a diagram showing an electron spin resonance absorption spectrum of LVs.

第4図は、5PLVSおよびMLVsにおけるドキシルスピンブローブを減少さ せるアスコルビン酸塩の能力の差異を示すグラフである。Figure 4 shows reduced doxil spin probes in 5PLVS and MLVs. 1 is a graph showing differences in the ability of ascorbate to

第5図は、感染したマウスの牌臓から回収され得るプルセラカニス(イヌ流産菌 )に基づくストレプトマイシンを捕捉したS P L Vを使用したマウスにお けるプルセラヵニス感染症の二段階治療の効果を示すグラフである。Figure 5 shows P. pursellacanis ( Canis abortus ) based on streptomycin-captured SPLV in mice. FIG.

第6図は、感染したマウスの器官から回収され得るプルセラ力ニスに基づくスト レプトマイシンを捕捉したSPL■を使用したマウスにおけるプルセラ力ニス感 染症の二段階治療の効果を示すグラフである。Figure 6 shows a strain based on pulsella varnish that can be recovered from the organs of infected mice. Pulsella varnish sensitivity in mice using SPL that captures leptomycin 1 is a graph showing the effect of two-stage treatment for infectious diseases.

第7図は、ストレプトマイシンを捕捉した5PLVを使用したモルモットにおけ るプルセラアボータス(ウシ流産菌)の二段階治療の効果を示すグラフである。Figure 7 shows the results in guinea pigs using 5PLV that captured streptomycin. 2 is a graph showing the effect of two-stage treatment of Pulsella abortus (bovine abortion fungus).

5、発明の詳細な説明 S P L V Sは、前記の他のいかなるリポソームとも異なる生成物を生じ る方法により製造される。5. Detailed description of the invention S P L V S produces a product that is different from any other liposomes mentioned above. Manufactured by a method.

5PLVsは、数個ないし100個以上の脂質二重層を有する脂質ベシクル類で ある。膜二分子層は、両極性脂質の二分子層よりなり、非極性の疎水性炭化水素 「テール」点は二重層の中心に向い、また極性の親水性「ヘッド」点は水性相に 向いている。水性相は二重層で閉塞されており、その一部はベシクルの内腔を形 成し、かつ一部は隣接する層の間に位置する。該脂質二重層は種々のタンパク質 類、糖タンパク質類、糖脂質類、ムコ多糖類およびその他の疎水性および/また は両極性物質とコンプレックスを形成し得る。5PLVs are lipid vesicles with several to 100 or more lipid bilayers. be. The membrane bilayer consists of a bilayer of bipolar lipids and nonpolar hydrophobic hydrocarbons. The "tail" points point toward the center of the bilayer, and the polar, hydrophilic "head" points point toward the aqueous phase. It's suitable. The aqueous phase is occluded by a double layer, part of which forms the lumen of the vesicle. and some are located between adjacent layers. The lipid bilayer contains various proteins. glycoproteins, glycolipids, mucopolysaccharides and other hydrophobic and/or can form complexes with ambipolar substances.

5PLVsは、っぎのようにして製造される。すなわち、両極性脂質または脂質 の混合物を有機溶媒に混合する。多くの有機溶媒が適当であるが、ジエチルエー テル、フッ素化炭化水素類およびフッ素化炭化水素類とエーテルとの混合物が好 ましい。この溶液に捕捉されるべき活性成分および水性相が添加される。この二 層混合物は、溶媒を蒸発さぜながら該溶媒内の水性物質を乳化することにより5 PLVSに転化ざじる。蒸発は、音波処理中または処理後にいかなる蒸発技術、 例えば混合物に不活性ガス流を通過させることによる蒸発、加熱による蒸発また は真空蒸発により達成される。使用される溶媒の容量は、水性物質が混合物中で 完全に乳化されるに充分な水性容量を越えるべきである。実際には、1容量の水 性相に対して約3容量以上の溶媒が使用される。事実、溶媒の水性相に対する比 率は、1容最の水性相に対して100容量以下またはそれ以上で変えることがで きる。脂質の量は、■マルジョン液滴【水性相ml当り約40mgの脂質)をコ ートするに充分な量を越えるに充分でなければならない。上限は、コスト効果の 実用性のみに限定されるが、S P L Vsは水性相のmg当り15mgの脂 質でつくることができる。5PLVs are manufactured as follows. i.e. bipolar lipids or lipids into an organic solvent. Many organic solvents are suitable, but diethyl ether ethers, fluorinated hydrocarbons and mixtures of fluorinated hydrocarbons and ethers are preferred. Delicious. The active ingredient to be entrapped and the aqueous phase are added to this solution. This two The layer mixture is prepared by emulsifying the aqueous material in the solvent while evaporating the solvent. Conversion to PLVS continues. Evaporation is any evaporation technique during or after sonication, For example, evaporation by passing a stream of inert gas through the mixture, evaporation by heating or is achieved by vacuum evaporation. The volume of solvent used is such that the aqueous substance is in the mixture There should be enough aqueous volume to completely emulsify. Actually, 1 volume of water About 3 or more volumes of solvent are used for the liquid phase. In fact, the ratio of solvent to aqueous phase The ratio can vary up to 100 volumes or more to 1 volume of the most aqueous phase. Wear. The amount of lipid is as follows: ■Mulsion droplet [approximately 40 mg of lipid per ml of aqueous phase] The amount must be sufficient to exceed the amount sufficient to The upper limit is the cost-effective Although limited to practicality only, SPL Vs contains 15 mg fat per mg of aqueous phase. It can be made with quality.

この方法は、従来のリポソーム類と異なり巨大分子構造を右Jる脂質ベシクル類 を生成する。本発明によれば、全方法は、使用される脂質の相転移温度に関係な く4〜60°Cの温度範囲で行なわれる。この後者の利点は、所望の性質を有す る熱不安定性生成物、例えば変性タンパク質がジステアロイルホスファチジルコ リンのようなリン脂質からつくられる5PLVSと結合されるが、その相転移温 度以上の温度でのみ従来のリポソーム類に生成するという点にあん。該ノーイム は、含4’4されるべぎ使用される水溶性物質の20%以」−かつ含有されるべ き使用された脂質可溶性物質の40%以上を通常与える。This method uses lipid vesicles that have a macromolecular structure, unlike conventional liposomes. generate. According to the invention, the whole method is independent of the phase transition temperature of the lipids used. It is carried out at a temperature range of 4 to 60°C. This latter advantage has the desired properties thermolabile products, such as denatured proteins that are distearoylphosphatidyl It is combined with 5PLVS made from phospholipids such as phosphorus, but its phase transition temperature The problem with conventional liposomes is that they only form at temperatures above 30°F. The no im shall contain 4'4 or more than 20% of the water-soluble substances used - and shall contain usually provides more than 40% of the lipid soluble material used.

大抵の両極性脂質は、5PLVSの構成成分である。好適な親水性基としては、 ホスファト基、カルボキシル基。Most ambipolar lipids are constituents of 5PLVS. Suitable hydrophilic groups include: Phosphato group, carboxyl group.

スルファト基およびアミノ基があるが、これらに限定されるものではない。好適 な疎水基としては、飽和および不飽和炭化水素基および少なくとも1個の芳香族 基および/または脂環族基で置換された炭化水素基であるが、これらに限定され るものではない。好ましい両極性化合物はリン脂質および化学構造がこれに近い ものである。これらの例としてはレシチン、ホスファチジルエタノールアミン、 リソレシチン、リソファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ボス ファチルイノシトール、スフィンゴミエリン、カルシオリビン、ホスファチジン 酸およびセレブロシド類があるが、これらに限定されるものではない。5PLV sの製造に特に有用な安定な脂質の例は、天然レシチン類(例えば、卵レシチン または大豆レシチン)および飽和合成レシチン類〈例えば、シミリストイルホス ファチジルコリンまたはジパルミトイルホスファチジルコリンまたはジステアロ イルホスファチジルコリン)のような合成レシチン類および不飽和合成レシチン 類(例えば、ジオロイルホスファチジルコリンまたはシリノロイルホスファデジ ルコリン)である。このS P L V sの二重層は、コレステロール、コレ スタノール、コレスタノール、コレスタン等のようなステロイド化合物を含み1 qる。酸・准親水性基(ホスファト基、スルファト基等)を有する化合物を使用 する場合、得られるS P L Vsはアニオン性になり、またアミノ基のよう な塩基性基を有する化合物を使用する場合にはカチオン性リポソーム類が得られ 、またポリエチレンキシ基またはグリコール基を有する化合物を使用する場合に は天然のリポソーム類が得られる。5PLVsのサイズは大幅に変わる。その範 囲は約500〜10,000nm(10ミクロン)であるが、通常は約1,00 0〜4.OQQnmである。Examples include, but are not limited to, sulfato groups and amino groups. suitable Hydrophobic groups include saturated and unsaturated hydrocarbon groups and at least one aromatic group. hydrocarbon groups substituted with groups and/or alicyclic groups, but are not limited to these. It's not something you can do. Preferred ambipolar compounds are phospholipids and similar chemical structures. It is something. Examples of these are lecithin, phosphatidylethanolamine, Lysolecithin, Lysophatidylethanolamine, Phosphatidylserine, Bosu Fathylinositol, sphingomyelin, calciolibin, phosphatidine These include, but are not limited to, acids and cerebrosides. 5PLV Examples of stable lipids that are particularly useful in the production of s are natural lecithins (e.g. egg lecithin or soybean lecithin) and saturated synthetic lecithins (e.g., cimilistyl phosphatide) Fatidylcholine or dipalmitoylphosphatidylcholine or distearo Synthetic lecithins such as ylphosphatidylcholine and unsaturated synthetic lecithins (e.g. dioloyl phosphatidylcholine or silinoyl phosphatidylcholine) Lucolin). This double layer of SPLVs contains cholesterol and cholesterol. Contains steroidal compounds like stanols, cholestanol, cholestane etc.1 qru. Uses compounds with acid/semi-hydrophilic groups (phosphato group, sulfato group, etc.) In this case, the resulting S P Vs becomes anionic and has an amino group-like structure. When using compounds with basic groups, cationic liposomes can be obtained. , and when using compounds with polyethyleneoxy groups or glycol groups. natural liposomes can be obtained. The size of the 5 PLVs varies significantly. The range The radius is approximately 500 to 10,000 nm (10 microns), but is typically approximately 1,000 nm. 0-4. OQQnm.

実質的には、いかなる生物活性化合物も5PliVs内に捕捉することができる (捕捉は、水性画分内または膜二重層内の捕捉として定義される)。こ・のよう な化合物としては、核酸類、ポリヌクレオチド類、抗菌性化合物類、抗ウイルス 性化合物類、抗真菌性化合物類、駆虫性化合物類、抗腫瘍性化合物、タンパク質 類、トキシン類、酵素類、ホリン類、免疫モジュレータ−類、色素、放射性標識 、放射線不透過化合物、蛍光化合物、多糖類、細胞受容体結合分子類、抗炎症剤 、抗緑内障剤、散瞳性化合物、局部麻酔薬等があるが、これらに限定されるもの ではない。Virtually any bioactive compound can be captured within 5PliVs (Entrapment is defined as entrapment within the aqueous fraction or within the membrane bilayer). like this Examples of compounds include nucleic acids, polynucleotides, antibacterial compounds, and antiviral compounds. antifungal compounds, anthelmintic compounds, antitumor compounds, proteins toxins, enzymes, holins, immune modulators, dyes, radioactive labels , radiopaque compounds, fluorescent compounds, polysaccharides, cell receptor binding molecules, anti-inflammatory agents , anti-glaucoma agents, mydriatic compounds, local anesthetics, etc., but are not limited to these. isn't it.

以下は、・5PLVsの合成に使用される割合の例である。The following are examples of the proportions used in the synthesis of 5 PLVs.

すなわち、5PLVSは5μ9のBl−IT (ブチル化ヒドロキシトルエン) を含有する5mlのジエチルエーテルに50ミクロモルのリン脂質を添加し、つ いで、含有されるべき活性物質を含有する0、3m lの水性相を添加すること により生成する。捕捉されるべき物質を含む結果物として溶液および捕捉脂質は 混合物に不活性ガスを流通させながら音波処理され、これにより大部分の溶媒が 除去される。That is, 5PLVS is 5 μ9 Bl-IT (butylated hydroxytoluene) Add 50 micromoles of phospholipid to 5 ml of diethyl ether containing Then add 0.3 ml of the aqueous phase containing the active substance to be contained. Generated by The resultant solution containing the substance to be captured and the capture lipid are The mixture is sonicated while passing an inert gas, which removes most of the solvent. removed.

この具体例は、部分的にはB l−I Tのベシクル類への内蔵のために特に安 定な5PLVsを生成する。This embodiment is particularly safe, in part due to the incorporation of Bl-IT into vesicles. Generate 5 fixed PLVs.

音波処理しかつクロロホルムとエーテルとの混合物中で添加された水性相ととも にコレステロールおよびホスファチジルコリンの溶液を蒸発することによるリポ ソーム内蔵抗体の製造方法を記載するが水性相に対する脂質の相対割合は規定し ていないレンダ(lenk)らの1983 Eur。with the aqueous phase sonicated and added in a mixture of chloroform and ether. lipolysis by evaporating a solution of cholesterol and phosphatidylcholine into A method for producing somosomal antibodies is described, but the relative proportions of lipid to aqueous phase are not specified. Lenk et al.'s 1983 Eur.

J 、 B iochem、 121 : 475−482を参照のこと。See J, Biochem, 121: 475-482.

5.2. 5PLVSの特徴 5PLVsは、単一または数個のラメラを有するりボソーム類(例えば5UVs およびREVS)とは、明らかにその性質が区別される。冷凍破壊電子顕微鏡は 、5PLV剤が実質的に5UVsおよびREVsを含まず、すなわちベシクル類 の20%未満でユニラメラであることを示している。しかしながら、これらはそ の物性の多くが異なるとはいえ、電子顕微鏡的技術によってはMLV、sと区別 できない。かくして、つぎの詳細な比較が5PLVSをMLVSから区別する焦 点となる。5.2. Features of 5PLVS 5PLVs have single or several lamellae, such as bosomes (e.g. 5UVs and REVS) are clearly distinguished in their properties. cryo-destruction electron microscope , the 5PLV agent is substantially free of 5UVs and REVs, i.e. vesicles. It is shown that less than 20% of the cells are unilamellar. However, these Although many of the physical properties of Can not. Thus, the following detailed comparison focuses on differentiating 5PLVS from MLVS. It becomes a point.

5.2.1、 貯蔵中の5PLVsの安定性脂質ベシクルの安定性は、長時間に わたって外部環境がらその吸臓された空間をキレート化するベシクルの能力に期 する。有用な脂質ベシクルには、貯蔵および取扱い中に安定であることが好まし い。しかしながら、ある利用には使用時にベシクルがその内容物を徐々に漏洩す ることが望ましい。他の利用にはベシクルが作用の所望点に達するまで投与後に 完全に残る。5PLVSはこれらの望ましい特徴を示すのに対してMLVsは示 さない。5.2.1. Stability of 5PLVs during storage The stability of lipid vesicles varies over long periods of time. The ability of vesicles to chelate their engulfed space from the external environment is important. do. Useful lipid vesicles should preferably be stable during storage and handling. stomach. However, some applications require that the vesicles gradually leak their contents during use. It is desirable that Other uses include post-administration until the vesicles reach the desired point of action. remain completely. 5PLVS exhibit these desirable characteristics, whereas MLVs do not. I don't.

ベシクルに漏洩を生じさせる原因は二つある。一つは、脂質の自動酸化であり、 これにより炭化水素鎖は二重層を不安定にする過酸化物を生成する。この酸化は ベシクル剤にブチル化ヒドロキシトルエン(BHT)のような抗酸化剤を添加す ることにより急激に低下されることができる。There are two reasons why vesicles leak. One is lipid autoxidation, This causes the hydrocarbon chains to generate peroxides that destabilize the bilayer. This oxidation Adding antioxidants such as butylated hydroxytoluene (BHT) to vesicles It can be reduced rapidly by

ベシクル類はまた、外部環境の薬剤は、脂質が完全に残るが膜が細孔を形成する ような脂質の二重層構造を分裂さぜるので一漏洩する。Vesicles also have membranes that form pores, while the lipids remain intact. It disrupts the bilayer structure of lipids, resulting in leakage.

脂質ベシクル剤は製造当初は白色である。自動酸化により該薬剤は着色(茶色) する。同一脂質および水性成分を使用して製造した5PLVsに対するMLVS の比較は、MLVsが1〜2週間で着色するのに対して5PLVsは少なくとも 2個月間は白色のままである。これはMLVSにおける脂質の分解を示すが5P LVsの脂質の分解は示さない脂質成分の薄層クロマトグラフィによって支持さ れている。これらのベシクル類がBHTやその他の成分の添加により製造される 場合、MLVsは1個月以内に僅かな着色を示すが、5PLVsは白色のままで ありかつ少なくとも6個月以上安定である。Lipid vesicle agents are white in color when first manufactured. The drug becomes colored (brown) due to autoxidation. do. MLVS for 5 PLVs made using the same lipid and aqueous components The comparison shows that MLVs become colored in 1 to 2 weeks, whereas 5PLVs become colored in at least 1 to 2 weeks. It remains white for two months. This indicates lipid degradation in MLVS, but 5P Degradation of lipids in LVs is not supported by thin layer chromatography of lipid components. It is. These vesicles are produced by adding BHT and other components. In this case, MLVs show slight coloration within 1 month, but 5PLVs remain white. Yes, and stable for at least 6 months.

等張性の食塩水を含有する緩衝液中に中性のpHで入れた場合、抗生物質を含有 する5PLVsは、第1表に示すように4個月以上も安定である。これらのデー タは、5PLVs内に最初から内蔵された抗生物質のいずれも実験期間中に漏洩 しなかったことを示している。Contains antibiotics when placed at neutral pH in a buffer containing isotonic saline The 5 PLVs are stable for more than 4 months as shown in Table 1. these days None of the antibiotics originally built into the 5PLVs leaked during the experiment. It shows that it did not.

他の証拠は、5PLVβが6個月以上にわたってカルシウムイオンはど小さい分 子から内蔵された薬剤とキレート化し得ることを示している。アルセンアゾ■( arsenazoll[>は、極めて少量の二価カチオンの存在で赤から青に変 る色素である。5PLVSにこの色素を内蔵させかつ塩化カルシウムを貯蔵する 緩衝液に添加することにより色の変化を見ることによりベシクル類の安定性を測 ることができる。Other evidence is that over 6 months, 5PLVβ has a very small amount of calcium ions. This shows that it can chelate with internalized drugs from offspring. Arsenazo■( arsenazoll [> changes from red to blue in the presence of extremely small amounts of divalent cations. It is a pigment that 5PLVS contains this dye and stores calcium chloride. The stability of vesicles can be measured by observing the color change when added to a buffer solution. can be done.

色は、色素が漏洩またはイオンの侵入のいずれも示すことなく少なくとも6.5 個月間その最初の色から検出できないほど差貢しがなかった。The color should be at least 6.5 without showing either dye leakage or ion intrusion. There was no detectable contribution from its initial color.

第 1 表 最初の捕捉率 b 捕捉医薬の生物 捕 捉 薬 剤 (%) 上澄みへの漏洩 学的利用能(%)ストレプトマイシ ン 34.1 0 ’Y7硫酸塩 スペクチノマイシン 37.2 0 84クロラムフエニコール 35.2 0  89オキシテトラ 18.8 0 91 サイクリン エリスロマイシン 0.4 0 97 スルフアメラジン 6.3 0 93 a 5PLVsは127μMの卵ホスフ1チジルコリジン(EPC)および25 μMの医薬を使用して製造した。Table 1 Initial capture rate b Captured drug organism Capture agent (%) Leakage to supernatant Scientific availability (%) Streptomyces 34.1 0’Y7 sulfate Spectinomycin 37.2 0 84 Chloramphenicol 35.2 0 89 oxytetra 18.8 0 91 cycline Erythromycin 0.4 0 97 Sulfamelazine 6.3 0 93 a 5PLVs contain 127 μM egg phosph 1 tidylcollidine (EPC) and 25 manufactured using μM of the drug.

4°Cで4.5個月間保存した終期に5PLVsは遠心力により貯蔵緩衝液から 分離された。5PLVS分の希釈物および上澄液は、標準希釈率の抗生物質と比 較して生物学的活性を検定するために細菌叢に適用した。After storage for 4.5 months at 4°C, the terminal 5PLVs were removed from the storage buffer by centrifugal force. Separated. Dilutions and supernatants for 5 PLVS were compared to standard dilutions of antibiotics. was applied to the bacterial flora to assay the biological activity.

り Oは検出し得るレベル以下を示す。O indicates below the detectable level.

7 これらの実験は、5PLVsが貯蔵および取扱いの問題に関して充分安定である ことを示すものである。このような長さにわたって安定なMLVsをつくること は可能であるとはいえ、DSPCのような合成脂質からつくる必要があり、必然 的に高価となる。7 These experiments demonstrate that 5PLVs are sufficiently stable with respect to storage and handling issues. This shows that. Creating stable MLVs over such lengths Although it is possible, it must be made from synthetic lipids such as DSPC, and it is inevitable that It becomes expensive.

5.2.2. 他の環境での5PLVSの安定性膜摂動剤を含有する媒体中に脂 質ベシクル類を入れることは、異なる分子構成を探査する方法である。該膜の構 成の仕方により、異なるベシクル類がこのような薬剤に対して異なって応答する 。5.2.2. Stability of 5PLVS in other environments Including different vesicles is a way to explore different molecular compositions. The structure of the membrane Depending on how they are constructed, different vesicles respond differently to these drugs. .

以下の実験において、閉塞した水性分画内で放射性トレーサ分子(3Hイヌリン )を含むベシクル類が調製される。In the following experiments, a radioactive tracer molecule (3H inulin) was present in the occluded aqueous fraction. ) are prepared.

イヌリンおよび多糖類が水性相へ分配し、放射線標識されたときに脂質ベシクル 類の水性分をトレースするのに使用される。所定の薬剤に適当な間隔で曝らした のち、該ベシクル類を遠心力により媒体から分離し、該ベシクル類から媒体へ逃 散した放射線の相当量が測定される。これらの結果は、第2表に報告されており 、数値はベシクル類中に最初に内蔵されていた量に対する周囲媒体中の放射性物 質の割合を意味する漏洩パーセントで現わされる。Lipid vesicles form when inulin and polysaccharides partition into the aqueous phase and are radiolabeled. used to trace the aqueous content of exposed to a prescribed drug at appropriate intervals Afterwards, the vesicles are separated from the medium by centrifugal force, and the vesicles are released into the medium. The equivalent amount of radiation dispersed is measured. These results are reported in Table 2. , the numerical value is the amount of radioactive material in the surrounding medium relative to the amount initially incorporated in the vesicles. It is expressed as a leakage percentage, which means the quality ratio.

5PLVSは、塩酸中ではMLVsよりも安定である。5PLVS is more stable than MLVs in hydrochloric acid.

第2表は、卵レシチンからつくった場合に、MLVsおよび5PLVsの両者が 0.125Nの塩酸に1時間曝されたときの不安定化度を示す。しかしながら、 5PILVsはMLVsよりも酸に対して著しく感じ難いことは特筆すべきであ る。多分、この異なる応答はその環境で脂質が相互作用する場合の固有の差異を 反映するものである。Table 2 shows that both MLVs and 5PLVs when made from egg lecithin. The degree of destabilization is shown when exposed to 0.125N hydrochloric acid for 1 hour. however, It is noteworthy that 5PILVs are significantly less sensitive to acids than MLVs. Ru. Perhaps this different response reflects inherent differences in how lipids interact in their environments. It is a reflection.

塩 酸 90.5 55.2 尿 素 21.7 44.8 グアニジン 0.5M 5.7 7.4 1.0M 8.3 10.1 酢酸アンモニウム 015M 、27,0 67.0 1.0M 25.9 54.7−63.1血 清 76.2 57.8 a)培養時間はH(l中での培養時間を1時間とした以外は2〜4時間である。Salt Acid 90.5 55.2 Urine 21.7 44.8 Guanidine 0.5M 5.7 7.4 1.0M 8.3 10.1 ammonium acetate 015M, 27,0 67.0 1.0M 25.9 54.7-63.1 Serum 76.2 57.8 a) The culture time was 2 to 4 hours except that the culture time in H(l) was 1 hour.

5PLVSは、尿素に曝らした場合MLVsとは異なって応答する(第1図およ び第2表)。尿素はカ第1ヘローブ効果(chaotropic effect ) (水の構造を分裂させる)および強い双極子モーメントの雨音を有する分子 である。SP l−V Sは、同一1lii1度で塩化ナトリウムのような浸透 剤対するよりも尿素に対する方がはるかに敏感であることが観察されたく第1図 )。MLVsは塩化ナリトゥム中でよりも尿素中での方がはるかに漏洩しない。5PLVS respond differently than MLVs when exposed to urea (Fig. 1 and and Table 2). Urea has a chaotropic effect. ) (splits the water structure) and molecules with strong dipole moment rain sounds It is. SP l-V S is osmotic like sodium chloride at the same 1lii 1 degree. Figure 1. ). MLVs leak much less in urea than in naritum chloride.

この異なる挙動に対する説明は理論的であるとはいえ、尿素と分子が近似してい るグアニジンが5PLVsを脱井安定にするので、この応答は双極子効果よりも カオトロープ性に基づくものであると思われる(第2表)。グアニジンも強いカ オトロープ性であるとはいえ、強い双極子モーメントを有していない。Although the explanation for this different behavior is theoretical, the molecule is similar to urea. This response is more likely to be due to a dipole effect than to a dipole effect, as the guanidine makes the 5PLVs stable. This seems to be based on chaotropy (Table 2). Guanidine is also a strong force. Although it is otropic, it does not have a strong dipole moment.

5PLVsはまた、酢酸アンモニウムに対しても敏感であるのに対し、MLVs は敏感ではない(第2表)。しかしながら、アンモニウムイオン(塩化アンモニ ウム中の)または酢酸塩〈酢酸ナトリウム中の)いずれも特に5PLVsを脱安 定にする効果はない。したがって、該イオン自体ではなく、誘引漏洩の要因とな る酢酸アンモニウムの極性であることが判る。5PLVs are also sensitive to ammonium acetate, whereas MLVs is not sensitive (Table 2). However, ammonium ion (ammonium chloride) (in sodium acetate) or acetate (in sodium acetate) are both particularly effective at deassembling 5PLVs. It has no effect on setting the value. Therefore, it is not the ions themselves that are the cause of induced leakage. It can be seen that this is the polarity of ammonium acetate.

最初、血清または血液のような体液中で培養した場合にMLVsよりも5PLV sがはるかに安定であるので、このような結果は驚くべきことである。しかしな がら、このような結果に対する理論的説明が提案されたくもちろん、他の説明も 可能である)。5PLVsの安定性が、膜脂質の極性基が配向した水分子の雲ま たは水和シェルにより水和されるようにその膜二重層の特異な構造に基づくもの である場合、には、このような水和シェルを分裂しあるいはこれと両立しないい かなる薬剤も、構造的な膜状態に変化するのを促進し、このため漏洩する。Initially, 5PLVs compared to MLVs when cultured in body fluids such as serum or blood. Such a result is surprising since s is much more stable. However However, we would like to propose a theoretical explanation for these results, and of course there are other explanations as well. possible). The stability of 5PLVs is due to the cloud of water molecules oriented by the polar groups of membrane lipids. or based on the unique structure of its membrane bilayer so that it is hydrated by a hydration shell. If this is the case, then there are Any drug will promote a change to the structural membrane state and thus leak.

尿素における5PLVsの脱洪各安定化の理論的説明が正しいのとは関係なく、 MLVSと5PLVsの橘造との間の特徴的な差異を前記結果は示すものである 。この差異は、応用上極めて有用な目的に役立つ。下記のとおり、5PLVsは 、眼に適用された場合、徐々に漏洩性となる。Regardless of the correctness of the theoretical explanation for the stabilization of 5PLVs in urea, The above results show the characteristic difference between Tachibana-zukuri of MLVS and 5PLVs. . This difference serves a very useful purpose in applications. As shown below, 5PLVs are , becomes gradually leaky when applied to the eye.

多分、この望ましい徐放性は、涙液に曝されたとき5PLVSの同様な脱安電化 によるものである。Presumably, this desirable sustained release property is due to similar de-electrification of 5PLVS when exposed to tear fluid. This is due to

血清内では5PLVSはMLVsよりも安定である。脂質ベシクル類の数多くの 応用には、プルセラ症治療用のような腹腔内的にこれらを投与することが含まれ ている。効果的にするには、ベシクル類はその所定の標識に達するに充分な時間 生存しなりればならない。卵レシチンからつくられた5PLVsおよびMLVs の両者は、活性補体を含有するウシの胎児の血清に曝らされた〈第2表〉。37 °Cで48時間曝らさしたのち、S P L VsはMIVsよりもはるかに安 定であった。5PLVS is more stable than MLVs in serum. A large number of lipid vesicles Applications include administering these intraperitoneally, such as for the treatment of pulcellosis. ing. To be effective, vesicles must have sufficient time to reach their predetermined mark. I have to survive. 5PLVs and MLVs made from egg lecithin Both were exposed to fetal bovine serum containing active complement (Table 2). 37 After 48 hours of exposure at °C, SPL Vs was much cheaper than MIVs. It was fixed.

5.2.3. 生体内に投与された5PLVsの特徴5PLVSは、生体内での 投与系用のキャリヤーとして5PLVSを特に好適にする数多くの特性を示す。5.2.3. Characteristics of 5PLVs administered in vivo 5PLVS exhibits a number of properties that make it particularly suitable as a carrier for administration systems.

(△)SPLVsは、排出に対する抵抗がある。5PLVSが生物に投与される 場合、脂質成分および捕捉活性成分は組織内にかつ投与される細胞により保持さ れる。(Δ) SPLVs are resistant to evacuation. 5PLVS is administered to the organism If the lipid component and the scavenged active component are retained within the tissues and by the cells to which they are administered, It will be done.

(B)SPLVsは徐放性を与えるよう輻設計できる。5PLVsの安定性は、 S P l−V Sが貯蔵中に極めて安定であり、かつ体液の存在下では安定で あるが、生体内に投与されたときには活性成分のゆるヤがな漏洩が活性成分の徐 放性を与える。(B) SPLVs can be engineered to provide sustained release. The stability of 5PLVs is S P l-V S is extremely stable during storage and is not stable in the presence of body fluids. However, when administered in vivo, gradual leakage of the active ingredient may result in gradual release of the active ingredient. Gives release.

(C)投与されたときの高度の捕捉性および安定性のために、活性成分の有効な 投与量が放出される。(C) effective retention of the active ingredient due to its high degree of entrapment and stability when administered; The dose is released.

(D)SPLVSの製造は、ベシクル類の安定性が二重層に高価な安定剤を含有 させることなく行なわれるので、安価である。(D) In the production of SPLVS, the stability of vesicles is affected by the presence of expensive stabilizers in the bilayer. It is inexpensive because it can be done without causing any damage.

つぎの実験は、供試動物の眼に投与したときの5PLVSのこれらの性質のい( っがを示している。これらの実験において使用されるS P L VSは、脂質 二重層および活性成分が期間中眼組織中にこれらの成分をトレースするためにそ れぞれ放射線で指標された以外が前記のとおりであった。The next experiment was to investigate these properties of 5PLVS when administered to the eyes of test animals. It shows. SPL VS used in these experiments is lipid The bilayer and active ingredients are used to trace these ingredients into the ocular tissue during the period. The results were as described above except that each was indicated by radiation.

5PLVsは、1100rnのホスファチジルコリン〈EPC)および100m qのゲンタマイシン硫酸塩を用いて製造された。脂質成分は痕跡量の1Jf、− ホスファチジルエタノールアミン〈メr−PE)を二重層に結合することにより 放射線で指標され、水性層中の活性成分はメI−ゲンタマイシン硫酸塩(I−G S)の添加により放射線指標づけされた。この5PLVsは、未結合または未内 蔵物質を効果的に除去するために緩衝液で繰返し洗浄した。5PLVs contain 1100rn of phosphatidylcholine (EPC) and 100m Produced using gentamicin sulfate of q. The lipid component is a trace amount of 1 Jf, - By bonding phosphatidylethanolamine (mer-PE) to the bilayer The active ingredient in the aqueous layer is methyl-gentamicin sulfate (I-G Radiological indexing was achieved by the addition of S). These 5 PLVs are unbound or unbound. It was washed repeatedly with buffer solution to effectively remove stored substances.

5PLVs剤の一部分は、水性相から有機相を除去するために除去されかつ抽出 された。各相の放射性は、5PLVsに結合された(脂質相中のcpm (カウ ント7分):水rr 性相中のcpm )である l−PE:メl−G5の最初の比率を決定するため に測定された。A portion of the 5PLVs agent is removed and extracted to remove the organic phase from the aqueous phase. It was done. The radioactivity of each phase was bound to 5 PLVs (cpm (cpm) in the lipid phase). 7 minutes): water rr To determine the initial ratio of l-PE:mel-G5, which is cpm during sexual phase. was measured.

抽出はつきのようになされた。0.8m lの0.4MのNaC1(水性)、1 mlのクロロホルムおよび2mlのメタノールは混合されて脂質相を形成された 。ついで4μmの放射線標識付けされた5PLVSが添加されて混合された。こ の5PLVS分は有機相および水性相に溶解しているので、最初は濁っていた混 合物が透明になった。これらの相は1mlの0.4MのNac!(水性)おJ: ヒ1m1のクロロホルムを添加しかつ混合し、ついで2.800xgで5分間遠 心分離することにより分離した。各相の一部分(1ml)を除去し、放射性を( Cpm )で測定した(l肖−PE:1−GSの最初の比率は1.55:1であ った)。The extraction was done as usual. 0.8ml 0.4M NaCl (aqueous), 1 ml chloroform and 2 ml methanol were mixed to form the lipid phase . 4 μm of radiolabeled 5PLVS was then added and mixed. child Since the 5 PLVS of 5PLVS is dissolved in the organic and aqueous phases, the initially cloudy The compound became transparent. These phases were mixed with 1 ml of 0.4 M Nac! (Aqueous) OJ: Add 1 ml of chloroform and mix, then centrifuge at 2.800xg for 5 minutes. It was isolated by heart separation. A portion (1 ml) of each phase was removed and radioactive ( The initial ratio of (1-PE:1-GS) measured at Cpm was 1.55:1. ).

15匹の雌の成スイスウェーブスターマウスを、これらがその眼をめぐうのを防 止するために)麻酔をして監禁した。懸濁液中の放射線標識された5PLVSの 同量の部分(2μm)を冬眠に局部的に使用した。ついで、三つの動物群をつぎ の点、すなpち1,2,3.18および24時間でそれぞれ犠牲にした。9匹の 雌スイスウェブスターマウス(対照)を、放射線標識されたゲンタマイシン硫酸 塩の水溶液の同量の部分(2μm)を−各uRに局部的に使用した以外は同様に 処理した。Fifteen adult female Swiss Wavestar mice were protected from eye contact. In order to stop him, he was anesthetized and confined. Radiolabeled 5PLVS in suspension Equal volume sections (2 μm) were used locally for hibernation. Next, we added the three animal groups. The animals were sacrificed at 1, 2, 3, 18 and 24 hours, respectively. 9 animals Female Swiss Webster mice (control) were treated with radiolabeled gentamicin sulfate. Similarly, except that an equal portion (2 μm) of an aqueous solution of salt was used locally on each uR. Processed.

犠牲直後に、該動物の眼瞼を除去し、刻み、かつ脂質成分から水性相を分離する ために〈前記方法を用いて)抽出した。該相の放射性は測定され、同様に放射性 カウントの総量が回収された。脂質相で測定された放射線は、眼組織による5P LVsの保有量の表示であり、水性相で測定された放射線は、眼組織によるS  P L Vsの保有量の表示であり、水性相で測定された放射線は、眼組織中の ゲンタマイシンの保有量の標示である。第2図は、眼に対して使用されたcpm の最初の数値のパーセントとしC表現した)眼瞼組織中の各成分の保有量を示す グラフである。Immediately after sacrifice, the animal's eyelids are removed, minced, and the aqueous phase is separated from the lipid components. (using the method described above). The radioactivity of the phase is measured and is also radioactive. The total amount of counts was collected. The radiation measured in the lipid phase is 5P due to ocular tissue. It is an indication of the amount of LVs retained, and the radiation measured in the aqueous phase is due to the S It is an indication of the amount of P L Vs retained, and the radiation measured in the aqueous phase is This is an indication of the amount of gentamicin held. Figure 2 shows the cpm used for the eye. (expressed as a percentage of the first value of C) indicates the amount of each component in the eyelid tissue. It is a graph.

第2図は、24時間にわたる眼瞼組織中の5PLVS脂質成分の保有量および( 期間中に眼瞼組織中に保有されるゲンタマイシンのパーセントとして表わされる )24時間にわたる5PLVsからのゲンタマイシンの徐放性を明確に示してい る。第2図はまた、未含有ゲンタマイシン(局部的に投与された水性ゲンタマイ シン)が眼瞼組織から急速に消失することを示している。例えば、溶液中のゲン タマイシン(対照)は、4時間以内に眼瞼組織から消失した(眼瞼組織中に5% 未満のゲンタマイシンが残存)。他方、50%を越えるゲンタマイシンを内蔵し た5PLVsは、この4時間に眼瞼組織により保有されており、事実24FR間 後には25%を越えるゲンタマイシンを内蔵した5PLVSが眼瞼組織中に保有 されていた。これは、約85%のゲンタマイシンを内蔵した5PLVsが24時 間にわたって放出され、95%の未内蔵のゲンタマイシン硫酸塩が消失した。Figure 2 shows the amount of 5PLVS lipid components retained in the eyelid tissue over 24 hours and ( Expressed as the percentage of gentamicin retained in the eyelid tissue during the period ) clearly demonstrate sustained release of gentamicin from 5PLVs over 24 hours. Ru. Figure 2 also shows uncontained gentamicin (topically administered aqueous gentamicin). The results show that the spores (Syn) rapidly disappear from the eyelid tissue. For example, a gene in solution Tamycin (control) disappeared from the eyelid tissue within 4 hours (5% less than gentamicin remaining). On the other hand, it contains more than 50% gentamicin. 5 PLVs are retained by the eyelid tissue during the last 4 hours, and in fact between 24 FR Later, 5PLVS containing more than 25% gentamicin was retained in the eyelid tissue. It had been. This means that 5PLVs containing about 85% of gentamicin 95% of the unincorporated gentamicin sulfate disappeared.

第3表は、各点で眼瞼組織中に保有されている5PLVS脂質相と水性相の比率 を比較するものである。この比率の増大は、5PLVsのからのゲンタマイシン の放出を示すものである。Table 3 shows the ratio of 5PLVS lipid phase and aqueous phase retained in the eyelid tissue at each point. This is a comparison. The increase in this ratio was due to gentamicin from 5 PLVs. This shows the release of

眼瞼組織により保有されているゲンタマイシン硫酸塩を内蔵しているSP、LV Sの生物学的活性も評価された。ゲンタマイシン硫酸塩は、ゲンタマイシン硫酸 塩を内蔵する5PLVsが眼に使用されてから3時間後に調製された眼瞼抽出物 の水性相からの一部分を除去するこにより眼瞼組織から回収された。この水性相 互は連続的に希釈され、2μmの部分を寒天層上の黄色ブドウ球菌叢上に置き、 24時間培養したのち抑制域を測定した。ゲンタマイシン硫酸塩内蔵5PLVと で処理された動物の眼瞼組織抽出物から回収されたゲンタマイシン硫酸塩は、完 全にその生物学的活性を保有していた。SP, LV containing gentamicin sulfate retained by eyelid tissue The biological activity of S was also evaluated. Gentamicin Sulfate is Gentamicin Sulfate Eyelid extract prepared 3 hours after 5PLVs containing salts were applied to the eye was recovered from the eyelid tissue by removing a portion from the aqueous phase. This aqueous phase The mixture was serially diluted and a 2 μm portion was placed on top of the Staphylococcus aureus flora on the agar layer. After culturing for 24 hours, the inhibition zone was measured. Gentamicin sulfate built-in 5PLV and Gentamicin sulfate recovered from eyelid tissue extracts of animals treated with It retained all its biological activity.

角’N3−1− マウスの眼に局部的に使用した後のゲンタマイシン内蔵の5PLVSの徐放性 眼瞼に保有されている 眼瞼から回収された 5PLVS SPLVS成分 脂質:水相の比率 0 ’too% 1.55 1br 100% 2.1 3hr 100% 2.82 18hr 94% 6,89 24hr 85.1% 7,17 5.2.4. 電子スピン共鳴 5PLVSとMLVSとは電子顕微鏡では同一に表われるとはいえ、ESR(電 子スピン共鳴)スペクトルは、そのスプラモレキュール構造上の差異を明らかに する。5PLVsは、その増大する分子オーダー、増大する分子挙動およびアル コルビン酸塩への大きな浸透性による消去から明らかなように、その分子構造の 点でMLVsとは区別できる。分子構造上のこれらの差異は、その異なる生物学 的活性に寄与している。Corner 'N3-1- Sustained release of 5PLVS loaded with gentamicin after topical application to mouse eyes. held in the eyelids 5PLVS recovered from eyelids SPLVS component lipid: water phase ratio 0’too% 1.55 1br 100% 2.1 3hr 100% 2.82 18hr 94% 6,89 24hr 85.1% 7,17 5.2.4. Electron spin resonance 5Although PLVS and MLVS appear identically under an electron microscope, ESR (Electronic Electron Microscope) spin-resonance) spectra reveal differences in their spramolecular structure do. 5PLVs are characterized by their increasing molecular order, increasing molecular behavior and of its molecular structure, as evidenced by its large permeability to corbate. It can be distinguished from MLVs in this respect. These differences in molecular structure are due to their different biology. It contributes to physical activity.

電子スピン共鳴スペクトル法において、5−ドキシルステアレート(5DS)の ようなスピンプローブは、脂質二重層中に配合される。ドキシル基の不対電子は 、試料が磁場に挿入されたときにマイクロ波エネルギーを吸収する。In electron spin resonance spectroscopy, 5-doxyl stearate (5DS) Such spin probes are incorporated into lipid bilayers. The unpaired electron of doxyl group is , the sample absorbs microwave energy when inserted into a magnetic field.

吸収のスペクトルは、三つの実験パラメータS、オーダーパラメータAO,超微 細カップリング定数および回転相関時間Tauの決定をさせる。代表的な読みは 第3図に示され、ここにAは5PLVSの信号、BはMLVsの信号であり、両 者は5−ドキシルステアレートで標識付けされる。スペクトルは、室温で行なわ れ、スキャン域は100ガウスであった。2T+および2T11の両者に依存す るオーダーパラメータは、プローブの完全に均一な配向の場合からのESR信号 の誤りを測定する。均一に配向した試料S−1゜O○には、ラントム試料はS− 0である。2T+および2T t+ hs rら計算され得る超微細カップリン グ定数AOは局部的極性を表わずものと考慮され、かつ膜内のスピンプローブの 位置を表わす。回転相関時間(wo、 ho、 h −1に従属する)は、その 前の空間配向がめざす「忘れ<forget) Jに対して分子に要求される時 間として考えられる。スピンプローブとして5−DSを有フル8 P L Vs  トM L Vs トの差異の代表的なESR決定は、第4図に表示されている 。The absorption spectrum is determined by three experimental parameters: S, order parameter AO, and ultrafine The fine coupling constant and rotational correlation time Tau are determined. A typical reading is 3, where A is the signal of 5PLVS, B is the signal of MLVs, and both are labeled with 5-doxyl stearate. Spectra performed at room temperature The scanning range was 100 Gauss. Depends on both 2T+ and 2T11 The order parameter is the ESR signal from the case of completely uniform orientation of the probe. measure the error of The uniformly oriented sample S-1°O○ is different from the rantom sample S-1°O○. It is 0. Hyperfine coupling that can be calculated from 2T+ and 2Tt+hsr The constant AO of the spin probe in the film is considered to be independent of local polarity. Represents location. The rotational correlation time (depending on wo, ho, h −1) is When the previous spatial orientation is required for the molecule to "forget" J It can be considered as an interval. Full 8 PL Vs with 5-DS as spin probe A typical ESR determination of the difference between .

両者の場合、スピンプローブが二重層における同−深さから報告されるとはいえ 、5PLVsはMLVSよりも極めて大きな分子オーダーおよび分子挙動を有し ている。Although in both cases the spin probes are reported from the same depth in the bilayer, , 5PLVs have much larger molecular order and molecular behavior than MLVS. ing.

5PLVSとMLVsの差異の他の説明は、ドキシルスピンプローブを減少させ るアスコルビン酸塩の能力にある。Another explanation for the difference between 5PLVS and MLVs is that the doxil spin probe is reduced This is due to the ability of ascorbate to

アスコルビン酸塩が恐らく磁場でマイクロ波エネルギーを吸収しないヒドロキシ ルアミン類へキトキシル部分を還元することはしばしばしられている。水溶液中 では、還元はESR信号の随伴損失を伴なって急速に起こる。スピンプローブが 脂質二重層のような保護環境にある場合には、親水性アルコルビン酸塩によりさ らに徐々に減少するかあるいは全く還元されない。したがって、ニトロキサイド 還元の速度は、アスコルビン酸塩の脂質二重層への浸透の速度研究に使用され得 る。第3図は、アスコルビン酸塩溶液中に懸濁している5PLVSおよびM L  V S残留スピンパーセント対時間の関係を示す。90分でアスコルビン酸塩 はMLVs中に入れられたプローブの25%を減少させるが、5PLVs中では 入れられたプローブの60%を減少させる。5PLVsは、MLVSの場合より 劇的に大きなアスコルビン酸塩の浸透を可能にする。Ascorbate is probably a hydroxyl that does not absorb microwave energy in a magnetic field. It is often known to reduce chitoxyl moieties to amines. in aqueous solution In this case, reduction occurs rapidly with concomitant loss of ESR signal. spin probe When in a protective environment such as a lipid bilayer, hydrophilic ascorbates can It gradually decreases or is not reduced at all. Therefore, nitroxide The rate of reduction can be used to study the rate of ascorbate penetration into the lipid bilayer. Ru. Figure 3 shows 5PLVS and M L suspended in ascorbate solution. The relationship between V S residual spin percentage and time is shown. Ascorbate in 90 minutes reduces 25% of probes placed in MLVs, but in 5PLVs Reduces 60% of probes inserted. 5PLVs is more than MLVS Allows dramatically greater ascorbate penetration.

S P I V S 2,65xiO’ S ec O,61414,9M L  V s 3,65x10’ S ec O,56514,95,2,5,5P LVsによる活性物質の捕捉従来のMLVsに対する5PIVSの利点を示ず他 の基本的例として、5PLVsは使用する活性物質を大きなバ−センテージで捕 捉し、これにより該物質を保持する(第5表参照)。S P I V S 2,65xiO’S ec O,61414,9M L Vs 3,65x10' S ec O, 56514, 95, 2, 5, 5P Trapping of active substances by LVs shows no advantage of 5PIVS over conventional MLVs. As a basic example, 5PLVs capture a large percentage of the active substances used. and thereby retain the substance (see Table 5).

5.2.6’、5PLVsと細胞との相互反応5PLVsのさらに他の利点は、 5PLVSがベシクルの内側に内蔵された物質の比較的大きな部分が食作用ベシ クル類に対して限られているよりも細胞の細胞質全体に分散しているような細胞 と相互反応すφことである。5PLVsが細胞と混合する場合には、三者は連合 する。連合によりS P L VsはMLVsとは異なり、試験管内で細胞と相 互反応するので、全ての細胞が5PLVsに最初から補足されていた少なくとも 若干(4)を含む。この物質は各細胞に分布されるようであるが、食作用ベシク ルのみに限定されるものではない。これは、5PLVs剤の水性相内のフェリテ ィン(ferritin)を配合することにより示すことができる。カルチャー 内の細胞との連合後、超微細構造分析は、細胞質ゾル全体にフェリティンが分布 しかつ細胞内膜により境界されるものではないことを示している。この現象はM LVsととも起こすこともできるが、多量の物質は5PLVsにより転移される 。5.2.6', Interaction of 5PLVs with cells Still other advantages of 5PLVs are: 5PLVS indicates that a relatively large part of the substance contained inside the vesicle is a phagocytic vesicle. Cells that are more dispersed throughout the cytoplasm of the cell than are confined to cruciforms It is to interact with φ. When 5PLVs mix with cells, the three are associated do. Due to association, SPL Vs, unlike MLVs, do not interact with cells in vitro. Since all cells are initially supplemented with 5PLVs, at least Contains some (4). This substance appears to be distributed in each cell, but it is It is not limited to only files. This is due to the ferrite in the aqueous phase of the 5PLVs agent. This can be achieved by incorporating ferritin. culture Ultrastructural analysis shows that ferritin is distributed throughout the cytosol after association with cells within the Moreover, it shows that it is not bounded by the intracellular membrane. This phenomenon is M Although it can also occur with LVs, a large amount of material is transferred by 5PLVs. .

週K 5 R驚− MLVsと5PLVS 、!:(7)比較捕捉された有効な物質(%) 内蔵物 M L Vs S P L Vsイヌリン水性空間形成剤 2−6%  20−30%牛血清アルブミン 15% 20−50%ストレプトマイシン 1 2−15% 20−40%ポリビニルピロリドン (水性空間) 5% 23−35% 5.2.7. 5PLVS(7)浮遊密度さらに、5PLVsはMLVsよりも 低い浮遊密度を有している。これは、フィコル勾配内でバンディングにより測定 される(第6表参照)。Week K 5 R surprise- MLVs and 5PLVS,! :(7) Comparative captured effective substances (%) Built-in contents M L Vs S P L Vs Inulin aqueous space forming agent 2-6% 20-30% bovine serum albumin 15% 20-50% streptomycin 1 2-15% 20-40% polyvinylpyrrolidone (Aqueous space) 5% 23-35% 5.2.7. 5PLVS (7) Buoyant density Furthermore, 5PLVS is more than MLVs. It has a low buoyant density. This is measured by banding within the Ficoll gradient (See Table 6).

5.2.8. 5PLVsの容積 さらに、1.000〜100.OOOxg+7)遠心力でペレット中に集めた場 合、5PLVsはMLVsよりも実質的に大きなペレットが同一リン脂質濃度を 与える。16,0ooxaの遠心力では、5PLVsはMLVsより約1/3大 きいペレットを形成する。5.2.8. Volume of 5 PLVs Furthermore, 1.000 to 100. OOOxg+7) Fields collected into pellets by centrifugal force In this case, 5PLVs have substantially larger pellets than MLVs with the same phospholipid concentration. give. At a centrifugal force of 16,0 ooxa, 5PLVs are about 1/3 larger than MLVs. Forms a fine pellet.

5.2.9. 5PLVs c7)浸透特性リン脂質二重層は水透過性であるの で、高張性環境内に入れられたMLVsは浸透力により水を締め出す。5PLV SはMLVSよりも収縮する。さらに、内部塩8度よりも20倍高い緩衝液中で 16時間収縮させたのち、5PLVsはMLVSと同一の最終容積には収縮しな かった(SPLVsの沈澱はMLVsのペレットよりも1/3大きく残った)。5.2.9. 5PLVs c7) Osmotic characteristics Phospholipid bilayers are water permeable. Thus, MLVs placed in a hypertonic environment lock out water due to osmotic forces. 5PLV S contracts more than MLVS. Additionally, in a buffer that is 20 times higher than the internal salt of 8 degrees. After 16 hours of deflation, the 5PLVs did not contract to the same final volume as the MLVS. (the pellet of SPLVs remained ⅓ larger than the pellet of MLVs).

B+F、ペレットサイズの差異が水性内蔵容積の違いによるものでないことを示 している。B+F, indicating that the difference in pellet size is not due to a difference in aqueous internal volume. are doing.

5.3. 3PLVs の用途 5PLVSは、つぎのようなファクターが重要である系において特に有用である 。すなわち、貯蔵中および体液との接触時の安定性、比較的高い内蔵性、コスト 低下、およびその生物学的に活性な形での捕捉化合物の放出。5.3. Applications of 3PLVs 5PLVS is particularly useful in systems where the following factors are important: . namely, stability during storage and in contact with body fluids, relatively high viscosity, and cost. reduction, and release of the scavenged compound in its biologically active form.

フィコル中 1%以上の層 1%以上の層Q 7m 1で 1.071 1.0 274さらに、生体内の投与形体に応じて5PLVsは急速排出に抵抗を有しく 例えば徐放性が重要な場合)あるいはRESの細胞に対して与えることができる 。1% or more layer in Ficoll 1% or more layer Q 7m 1 1.071 1.0 274 Furthermore, depending on the in vivo dosage form, 5PLVs may be resistant to rapid elimination. (e.g. when sustained release is important) or to RES cells. .

結果として、本発明のS P L Vsは、広い範囲の系に使・用できる。これ らは治療の医療効果を高めるため、感染症与を高めうため、試験管内または正体 内の細胞に遺伝子情報を導入するため、ワクチン類の製造のため、遺伝子交換の デオキシリボ核酸セグメントを細胞内に導入するため、または捕捉された「リポ ータ」分子の放出する臨床試験用診断剤として使用することができる。この5P LVsはまた、化粧料、殺菌剤、植物成長剤を徐放させる化合物等を内蔵させる のに使用できる。As a result, the SPL Vs of the present invention can be used in a wide range of systems. this In order to increase the medical effectiveness of treatment and to increase the risk of infection, In order to introduce genetic information into cells within the body, we conduct gene exchange for the production of vaccines. for introducing deoxyribonucleic acid segments into cells or It can be used as a diagnostic agent for clinical trials by releasing data molecules. This 5P LVs also incorporate compounds that provide sustained release of cosmetics, fungicides, plant growth agents, etc. Can be used for.

5PLVsの用途に関して述べたが、該方法は5PLVSまたはその他のリポソ ームまたは5PLVSのそれと同様な官能性を有する脂質ベシクルの使用をも可 能にする。Although described with respect to the use of 5PLVs, the method is applicable to 5PLVS or other liposols. It is also possible to use lipid vesicles with functionality similar to that of 5PLVS or 5PLVS. make it possible.

5.3.1. 生物学的活性化合物の投与試験管内での細胞(例えば動物細胞、 植物細胞、原生動物類等)に対する化合物の投与は、カルチャー内の細胞に該化 合物を含有する5PLVsの添加を通常必要とする。5.3.1. Administration of biologically active compounds to cells in vitro (e.g. animal cells, Administration of compounds to plant cells, protozoa, etc.) is effective when administering compounds to cells in culture. The addition of 5PLVs containing compounds is usually required.

しかしながら、5PLVSはまた動物(ヒトを含む)、植物および原生動物類の 生成内に対して該化合物を投与するため使用できる。投与目的に応じて、該5P LVSは、数多くのルートにより投与できる。すなわち、ヒトおよび動物におい てはこれは注射(例えば静脈内、腹腔内、筋肉内。However, 5PLVS is also used in animals (including humans), plants and protozoa. It can be used to administer the compound within production. Depending on the purpose of administration, the 5P LVS can be administered by a number of routes. i.e. human and animal odor This may be by injection (e.g. intravenously, intraperitoneally, intramuscularly).

皮下、耳介内、乳房内、尿道内等)、局部的使用〈例えば、苦痛部位)、および 上皮または粘膜(例えば服上皮1ロ粘膜、直腸または膣粘膜、気道膜、鼻咽頭粘 膜、腸粘膜等)で使用できるが、これに限定されるものではなく、また植物およ び原生動物類においては、これは生物に直接、生物の棲息環境に分散して、周囲 の水または環境に添加する等して行なうこともできるが、これらに限定されるも のではない。subcutaneous, intraauricular, intramammary, intraurethral, etc.), local use (e.g., pain areas), and Epithelium or mucous membranes (e.g., clothing epithelium, mucous membranes, rectal or vaginal mucous membranes, airway membranes, nasopharyngeal mucous membranes) membranes, intestinal mucosa, etc.), but is not limited to this, and can also be used in plants and In protozoa, it is distributed directly to the organism, into its habitat, and in its surroundings. It can also be done by adding it to water or the environment, but it is not limited to these. It's not.

使用のモードはまた、該化合物が投与される生物の部位または細胞を決定する。The mode of use also determines the site or cells of the organism to which the compound is administered.

例えば、感染の特定個所に対する投与は局部的使用(感染が外的である場合)、 により容易になされる。循環系(したがって、網内細胞)への投与は、静脈内、 腹腔内、筋肉内または皮下注射により極めて容易に行なうことができる。For example, administration to a specific site of infection can be done locally (if the infection is external); This is easily done. Administration to the circulatory system (and therefore to the reticulum cells) can be administered intravenously, It can be very easily administered by intraperitoneal, intramuscular or subcutaneous injection.

5PLVsは該化合物の徐放を可能にするので、生物に対して毒性がなければ、 投与量は該生物に対して1回またはそれ以上の投与で使用できる。5PLVs allow for sustained release of the compound, so if it is not toxic to organisms, The dosage can be used in one or more administrations to the organism.

この項は5PLVsが使用できる総体的な記載を行なうものであるが、本発明の 範囲を限定するものではない。Although this section provides a comprehensive description of how 5 PLVs can be used, It does not limit the scope.

5.3.2. 病気の治療 ヒト、動物および植物において生じる数多くの病理学的状態は、適当な化合物を 5PLVsに内蔵させることにより有効に治療できる。これらの病理学的状態と しては感染症(細胞内または細胞外)、嚢、腫瘍および腫瘍細胞、アレルギー等 があるが、これらに限られるものではない。5.3.2. Treatment of diseases Numerous pathological conditions occurring in humans, animals and plants can be solved with the appropriate compounds. It can be effectively treated by incorporating it into 5PLVs. These pathological conditions and Examples include infections (intracellular or extracellular), cysts, tumors and tumor cells, allergies, etc. However, it is not limited to these.

このような病気の治療に5PLVSを使用するには種々の方法が可能である。生 体内に投与された場合にマクロファージによりS P L VSが内部移行する 事実を特徴とする特に有用ないくつかの計画の概略を示す。There are various ways in which 5PLVS can be used to treat such diseases. Living SPL VS is internalized by macrophages when administered into the body We outline some particularly useful plans featuring facts.

一つの計画では、5PLVsは細胞内感染の部位に治療薬剤を投与するために使 用される。ある病気は、網内系。In one plan, 5PLVs could be used to deliver therapeutic agents to the site of intracellular infection. used. One disease is reticuloendothelial.

例えばプルセラ症の細胞の感染を含んでいる。これらの細胞内感染症は、数多く の理由から治療が困難である。(1)感染微生物が網内系の細胞内に存在するの で、治療上充分な′m度で細胞膜を通過できない治療薬剤を循環から止め、この ため治療に対して高い抵抗がある。(2)治療薬剤の毒性レベル投与はこのよう な感染症を防ぐのにしばしば必要である。(3)治療は、治療後に残留するいか なる感染も宿主生物を再感染するかあるいは他の宿主に伝染できるので完全に有 効でなければならない。Examples include infection of pulcellosis cells. These intracellular infections are numerous. It is difficult to treat for several reasons. (1) Infectious microorganisms exist within the cells of the reticuloendothelial system. Therapeutic drugs that cannot pass through the cell membrane at therapeutically sufficient degrees are stopped from circulation, and this Therefore, there is a high resistance to treatment. (2) The toxic level of therapeutic drug administration is as follows. often necessary to prevent serious infections. (3) Does the treatment leave any residue after treatment? Infections that occur in the first place are completely infectious because they can reinfect the host organism or transmit it to other hosts. must be effective.

本発明の一つのモードによれば、適当な生物学的活性化合物を含有する5PLV Sは、(好ましくは腹腔内または静脈内で)宿主生物または可能性のある宿主生 物に投与される。(例えば獣群において、 未感染動物が感染動物と同様に治療 できる。)食作用細胞はSP’LVsを内部移行するので、微生物感染に対して 生物学的に活性な物質を内蔵させた5PLVの投与は、感染部位へ該生物学的活 性化合物の直接到達をめざず。かくして、本発明方法は、種々の微生物、バクテ リア、寄生虫、開門、ミコプラズマ類、ウィルス類等により生じる感染症を除く ために使用され、これらの微生物としてはブラセラs、pp 、ミコバクテリウ ムspp 、サルモネラSt)+1 、リステリア5t)I) 、フランチセラ spp、ヒストプラズマspp 、コリネバクリテリウムspp 、コクシジオ デスSppおよびリンパ性脈絡髄膜炎菌があるが、これらに限定されるものでは ない。According to one mode of the invention, 5PLV containing a suitable biologically active compound S is administered (preferably intraperitoneally or intravenously) to a host organism or potential host organism. administered to things. (For example, in a herd, uninfected animals should be treated in the same way as infected animals.) can. ) Phagocytic cells internalize SP'LVs, making them effective against microbial infection. Administration of 5PLV, which contains biologically active substances, allows the biological activity to be delivered to the site of infection. Aiming to directly reach sexual compounds. Thus, the method of the present invention can be applied to various microorganisms, bacterium, Excludes infectious diseases caused by bacteria, parasites, mycobacteria, mycoplasma, viruses, etc. These microorganisms include Brasella s, pp, Mycobacterium spp. Mus spp, Salmonella St)+1, Listeria 5t) I), Franticella spp, Histoplasma spp, Corynebacterium spp, Coccidio des Spp and lymphocytic choriomeningitidis, but are not limited to these. do not have.

選定される治療剤は、感染症を生じる微生物による。例えば、バクテリア感染症 は、抗生物質の内蔵により除去できる。該抗生物質は、5PLVSの水性液体内 に含有されかつ/またはベシクル二重層内に挿入される。適当な抗生物質として は、ペニシリン、アンピシリン、ヘタシリン。The therapeutic agent selected depends on the microorganism causing the infection. For example, bacterial infections can be removed by incorporating antibiotics. The antibiotic is present in the aqueous liquid of 5PLVS. and/or inserted within the vesicle bilayer. as a suitable antibiotic are penicillin, ampicillin, and hetacillin.

カルベンシリン、テトラサイクリン、テトラサイクリン塩酸塩、オキシテトラサ イクリン塩酸塩、クロルテトラサイクリン塩酸塩、7−クロロ−6−シメチルテ トラサイクリン、ドキシサイクリン−水塩、メタサイクリン塩酸塩、モノサイタ リン塩酸塩、ロリテトラリ”イクリン、ジヒドロストレプトマイシン、ストレプ トマイシン、ゲンタマイシン。Carbencillin, Tetracycline, Tetracycline Hydrochloride, Oxytetrasa Iclin hydrochloride, chlortetracycline hydrochloride, 7-chloro-6-dimethyltetra tracycline, doxycycline hydrate, methacycline hydrochloride, monocycline Phosphorus hydrochloride, lolitetrali'icrin, dihydrostreptomycin, strep tomycin, gentamicin.

カナマイシン、ネオマイシン、エリス[1マイシン、カルdζマイシン、オーレ オマイシン、ドローレオマイシン、月文IJミキシンBコリスチン、セファロチ ンナトリウム、セファロリジン、セファログリシンニ水塩およびセファレキシン −水塩がある。Kanamycin, neomycin, eris[1mycin, caldζmycin, ole Omycin, doloreomycin, Tsukibun IJ mixin B colistin, cephalothin cephalolidine, cephaloglycin dihydrate, and cephalexin - There is water salt.

我々は、プルセラ症治療におけるこのような処置の効果を示す(以下の実施例参 照)。本発明方法により作用の効果および期間は増大覆る。この系は、MLVs に捕捉された抗生物質のような公知の処置に応答しな(1感染症の>F3療に有 効である。いかなる少量の残留する感染症も広力くり、かつ感染サイクルは再び 開始するので、成功するような>fi療法は期待できなかった。我々は、リンパ 性脈絡髄炎ウィルス感染症における成功例を示す。We demonstrate the effectiveness of such treatment in treating pulcellosis (see example below). (see). The method of the invention increases the effectiveness and duration of action. This system is based on MLVs not responding to known treatments such as antibiotics (>F3 therapy for 1 infection) It is effective. Any small amount of residual infection will be widespread and the infection cycle will begin again. Therefore, no successful >fi therapy could be expected. we are lymph A successful case of choriomyelitis virus infection is shown.

もちろん、本発明は細胞内感染症の治療のみに限定されるものではない。この5 PLVsは、細胞内であれ細胞外であれ、種々の感染部をめざしている。例えG f1本発明の他の実施態様において、系統的な細胞外感染の部位に番よ活性薬剤 をもたらすためにマクロファージが使用される。この計画によれば、5PLVs は生体内で5PLVSを好ましくは腹腔内または静脈内)投与することにより未 感染マクロファージ類に治療物質を投与するために5PLVsLま使用される。Of course, the present invention is not limited to the treatment of intracellular infections. This 5 PLVs target various sites of infection, whether intracellular or extracellular. Example G f1 In another embodiment of the invention, the active agent is directed to the site of systematic extracellular infection. Macrophages are used to bring about According to this plan, 5PLVs can be administered in vivo by administering 5PLVS (preferably intraperitoneally or intravenously). 5PLVsL are used to administer therapeutic substances to infected macrophages.

このマクロファージは、5PLVSと連合し、ついで治療物質で1負荷」される 。一般に、このマクロファージは該物質を3〜5日間保持する。「負荷された」 マクロファージがいったん感染部位に到達すると、病原体はマクロファージによ り内部移行する。この結果、病原体(まマクロファージ内に含有されている治療 物質と接触し、破壊される。本発明のこの実施態様は、ヒI〜および家畜の黄色 ブドウ球菌炎の治療に有用である。This macrophage associates with 5PLVS and is then loaded with therapeutic substances. . Generally, the macrophages retain the material for 3-5 days. "Loaded" Once the macrophages reach the site of infection, the pathogen is absorbed by the macrophages. internalized. As a result, pathogens (or therapeutic agents contained within macrophages) It comes into contact with matter and is destroyed. This embodiment of the invention is applicable to Useful in the treatment of staphylococcal inflammation.

感染または会合の部位が外部または動きやす(、X場合に(よ、医療薬剤を捕捉 した5PLVsは局部的に使用できる。特に有用な応用は、眼痛の治療を含むも のである。眼痛の場合、1種またはそれ以上の適当な活性成分を含有する5PL Vsが痛みのある眼に局部的に施される。数多くの微生物が動物およびヒトの眼 感染症を引き起す。このような微生物としては、つぎのちのがあるが、これに限 定されるものではない。モラクセラspp 、クロストジウムspp 、コリネ バクテリウムspp 、ジブロコツカスspp 、エラボバクテリウムspp  、ヘモフィリスspp 、クレブシェラspp 、レストスビラspp 、ミコ バクテリウムspp 、ナイスセリアspp 。If the site of infection or association is external or mobile (, The 5 PLVs can be used locally. Particularly useful applications include the treatment of eye pain. It is. For eye pain, 5PL containing one or more suitable active ingredients Vs is applied locally to the painful eye. Numerous microorganisms are present in the eyes of animals and humans. cause infection. These microorganisms have the following lives, but are not limited to these: It is not determined. Moraxella spp, Clostidium spp, Coryne Bacterium spp, Dibrococcus spp, Erabobacterium spp , Haemophilis spp, Klebsiella spp, Restosvira spp, Miko Bacterium spp, Niceceria spp.

プロピオニバクテリウムspp 、プロテウスspp 、シュードモナスspp  、セスチア5lit) 、■スケリキアspp 、スタフアロカッカスspp  、ストレプトコッカスspp 、およびミコプラズマSppおよびリケツィア Sppを含むバクテリア様微生物。これらの感染使用は、治療後に残留する感染 症が涙分泌により再感染するので、従来法によって除去することは困難である。Propionibacterium spp, Proteus spp, Pseudomonas spp , Cestia 5 lit), ■Schelicia spp, Staphylocaccus spp , Streptococcus spp, and Mycoplasma Spp and Rickettsia Bacteria-like microorganisms including Spp. These infections are used to treat residual infections after treatment. It is difficult to remove by conventional methods because the disease is reinfected through lachrymal secretion.

我々は、モラクセラボビスによって生じた服感染症の治癒における5PLVSの 使用を示す。(下記実施例参照) SPLVsは排出に対する抵抗であり、それらの中味の持続された放徐の有能で あるゆえ、5PLVsはまた活性処理物質との延長された接触より要望されるい くつかの問題の処理にも有用である。例えば、緑内障は辺縁的視野の進行的消失 を引きおこす眼内圧の段階的上昇により特徴ずけられる病気で、失調すると中心 部視野の消失および最終的な盲目となる。緑内障の処置に用いられる薬剤は原則 的に点眼として使用される。しかしながら時には、眼窩からの薬剤の迅速な除去 による15分毎の投薬滴下が処置に必要となる。緑内障のような問題が本発明で 処理されるとすると、ピロカルピンフロロピリル ルコリン、アセタゾールアミド,エトゾールアミド、ジクロロフエナミド,カル バコール、臭化デメカリウム,シイツブOビルホスフォフルオリデート、沃化エ コチオプレー 、ト,フィソスチグミンまたはネオスチグミンなどのような治療 物質が、病気におかされた眼に与えられるSPLVS中に内蔵されることが可能 である。We demonstrated the effectiveness of 5PLVS in curing clothing infections caused by Moraxella bovis. Indicates use. (See examples below) SPLVs are resistant to excretion and capable of sustained release of their contents. Therefore, 5PLVs may also require extended contact with active treatment substances. It is also useful in dealing with some problems. For example, glaucoma is a progressive loss of peripheral vision. It is a disease characterized by a gradual rise in intraocular pressure that causes Loss of visual field and eventual blindness. In principle, drugs used to treat glaucoma It is commonly used as eye drops. However, sometimes rapid removal of the drug from the orbit Treatment requires instillation of medication every 15 minutes. Problems like glaucoma can be solved with this invention. If treated, pilocarpine fluoropyril lucorrin, acetazolamide, etozolamide, dichlorophenamide, cal Bacol, Demecarium Bromide, Ovir Phosphofluoridate, Iodide Treatments such as cothiopret, physostigmine, or neostigmine Substances can be incorporated into SPLVS given to diseased eyes It is.

SPLVs中に内蔵され得、そして局所的に用いられる他の作因はこれに限定さ れるわけでないが、瞳孔拡大作因(エピネフリン、フェニルエピネフリン、ヒド ロキシアンフェタミン、シクロベントレート、トロピックアミド、エンカトロピ ン等)、局所麻酔,抗ウイルス性作因(イドクスウリジン,アデニンアラビノシ ド等)、抗真菌性作因(アンフォテラシンB,ナタマイシン,ピマリシン、フル シトシン、ナイスクチン,チメローサル,サルファメラジン,チオベンリ゛ゾー ル、1〜ルナフテート,グリシオフルピン等)、駆虫性作因くスルフォンアミド 、ピリメタミン。Other agents that can be incorporated into SPLVs and used locally include but are not limited to: Although it does not necessarily cause pupil dilation (epinephrine, phenylepinephrine, Roxiamphetamine, cyclobentrate, tropicamide, encatropi local anesthesia, antiviral agents (idoxuridine, adenine arabinosin), local anesthesia, antifungal agents (amphoteracin B, natamycin, pimaricin, flu Cytosine, nyscutin, thimerosal, sulfamerazine, thiobenlysole 1-lunaftate, glycioflupine, etc.), sulfonamides with anthelmintic properties , pyrimethamine.

タリンダマイシン等)および抗炎症性作因(ACTHのようなコルチコステロイ ド、ハイドロコーチシン、プレドニゾン、メトリシン、ベータメタシン、デキサ メサゾン、フルオロメタロン、トリアンシナロン等)が含まれる。talindamycin) and anti-inflammatory agents (corticosteroids such as ACTH) de, hydrocortiscin, prednisone, metricin, betamethacin, dexa (Methazone, fluorometalone, triancinalone, etc.)

以下の実施例は例証のために与えられるが、本発明の視点をここに限定するもの ではない。The following examples are given for illustrative purposes, but are not intended to limit the scope of the invention. isn't it.

6、 実施例 SPLVsのaM 第5.1節の説明したように、s p l− v sの調製の基本的な方法は脂 質あるいは脂質の混合物を有機溶媒中へ溶解すること、水性相と被包される物質 を加えることおよび該混合物を音波処理することを包含するが、有機溶媒は音波 処理の間またはその後に任意の蒸発法によって除去される。6. Example aM of SPLVs As explained in Section 5.1, the basic method for preparing spl-vs is dissolving a substance or a mixture of lipids in an organic solvent, the substance being encapsulated with an aqueous phase and sonicating the mixture, wherein the organic solvent is It is removed by any evaporation method during or after processing.

本発明のすべての実施例に用いられるSPI Vsは次の分節に述べられるよう にして調製される。(しかしながら、SPLVSを生産する任意の方法が使用可 能である。〉6、1. 抗生物質を含むSPLVs ioomqレシチンの5mlジエチルエーテル溶液が調製された。該混合物は丸 底フラスコ中に入れられた。次に5mMヘツプス(HEPES)(4− [2− ヒドロキシエチルコピペラジノ2−■タン スルホン110.0725M Na  Cl 10.0725M KCl中に硫酸ストレプトマイシン100mgをp H7.4で含む溶液(0.3ml)が、脂質のジエチルエーテル溶液を含むガラ ス容器へ滴状滴下される。該混合物は10536タイプのパスソニケーター(ラ ボラトリ−サブライズ カンパニー、インコーポレーーrツド[ l− abo ratory S uppl ies C o 、 。The SPI Vs used in all embodiments of the invention is as described in the next section. It is prepared as follows. (However, any method of producing SPLVS can be used.) It is Noh. 〉6,1. SPLVs containing antibiotics A 5 ml diethyl ether solution of ioomq lecithin was prepared. The mixture is round placed in a bottom flask. Next, 5mM HEPES (4-[2- Hydroxyethylcopiperazino 2-■ Tan Sulfone 110.0725M Na Cl 100mg of streptomycin sulfate in 10.0725M KCl The solution (0.3 ml) contained in H7.4 is a glass containing a diethyl ether solution of lipids. drips into the gas container. The mixture is passed through a 10536 type path sonicator Boratory Subrise Company, Incorporated [l-abo ratory S uppl ies C o , .

Inc.]製)中に数分間入れられ、(周波数80kHz:出力80ワツト)で 、同時に窒素のゆるやかな蒸気を通すことにより粘着性のペース1−に乾燥させ る。Inc. ]) for several minutes, and at (frequency 80 kHz: output 80 watts) , simultaneously dried to a sticky paste 1- by passing a gentle vapor of nitrogen through it. Ru.

粘着性のペーストの残っているところへ、5mMヘツブスの10m1が加えられ た。ストレプトマイシンを含む生成SPLVの調製は、緩衝溶液中に懸濁され、 渦動混合器で数分間攪拌され、12000XOで10分間,20℃で遠心分離す ることにより被包されなかったストレプトマイシンを解放させる。生成ケークは 5mMヘツブスの0.5m1に懸濁されていた。To what remained of the sticky paste, 10ml of 5mM Hetubes was added. Ta. A preparation of generated SPLV containing streptomycin is suspended in a buffer solution, Mixed in a vortex mixer for several minutes and centrifuged in 12000XO for 10 minutes at 20°C. This allows unencapsulated streptomycin to be released. The resulting cake is It was suspended in 0.5ml of 5mM Hetubus.

上記の手順は、ストレプトマイシンを、ジヒドロストレプトマイシン、硫酸ゲン タマイシン、アンピシリン、塩酸テトラシリンおよびカナマイシンのいずれか一 つで取り代えられたこと以外同様に行なわれた。The above procedure uses streptomycin, dihydrostreptomycin, sulfate Tamycin, ampicillin, tetracillin hydrochloride, and kanamycin It was done in the same way except that it was replaced by .

6、2. 他の膜成分を含有するSPLVS第6.1節で述べられた手法が次の 任意の1つが卵レシチンと共に加えられる以外同様に行なわれた。(1 ) 8  :2(レシチン;ジセチルホスフエート)のモル比を与えるホスファチジン酸 ,(2>8:2(レシチン;ステアリルアミン)のモル比を与えるステアリンア ミン、 、7 : 2 : 1(レシチン:コレステロール;ステアリルアミン )のモル比を与えるコロステロールとステアリルアミン、(3)7:2:1〈レ シチン:ホスファチジン酸:コレステロール)のモル比を与えるホスファチジン 酸とコレステロロール。6, 2. The method described in Section 6.1 of SPLVS containing other membrane components is The same was done except that any one was added along with egg lecithin. (1) 8 :phosphatidic acid giving a molar ratio of 2 (lecithin; dicetyl phosphate) , (2>8:2 (lecithin; stearylamine)). Min, 7: 2: 1 (lecithin: cholesterol; stearylamine ) collosterol and stearylamine giving a molar ratio of (3) 7:2:1 Phosphatidine giving the molar ratio of cycine:phosphatidic acid:cholesterol) acid and cholesterol.

6、3. ピロカルビンを含有するSPLVs第6.1節の手順が、抗生物質ス トレプトマイシンをピロカルビンに代える以外同様に行なわれた。6, 3. The procedure in Section 6.1 for SPLVs containing pilocarbins A similar procedure was performed except that treptomycin was replaced with pilocarbin.

6、4. BHTを用いるおよびこれを用いないで調製されたSPLVs 蒸留されていないエーテルは、貯蔵の目的のために抗酸T)を含む。第6.1節 の手順が、S P L V調製中にBHTを結合させるように溶媒として蒸留さ れていないエーテルを用いて同様に行なわれた。6, 4. SPLVs prepared with and without BHT The undistilled ether contains anti-acid T) for storage purposes. Section 6.1 The procedure is distilled as a solvent to bind BHT during SPLV preparation. The same procedure was carried out using uncontained ether.

5PLVsをBHTに結合させないで調製するように、第6.1節の手順が、溶 媒として蒸留されたエーテルを用いて同様に行なわれた。The procedure in Section 6.1 can be used to prepare 5PLVs without binding to BHT. A similar procedure was carried out using distilled ether as the medium.

7、 実施例 ガラス容器中の5PLVの仲介した放出数の実施例において、培 養器中においてマイクロファージへの抗生物質の5PLVの仲介した放出が示さ れた。7. Example: In an example of the number of 5PLV-mediated releases in a glass container, the culture 5PLV-mediated release of antibiotics to microphages in culture vessels was demonstrated. It was.

腹膜のマイクロファージがC5ヮBLK成体の雄のマウスから腹膜洗浄によって 得られ、10%熱不活性化された胎児の子牛の血清を含む最小必須培地(M、E 、M)p H7゜2中に懸濁される。細胞は1X106個/mlの濃度で96− ウェル(96−well)組織培養器中に懸濁される。粘着性の腹膜のマイクロ ファージを含む培養器に、1X106CFtJ (集落形成単位)7m1の濃度 でイヌ流産筒(3,canis )が加えられた。12時間後に、腹膜のマイク ロファージに吸入されなかったバクテリアはIvl、E、Ivlでの洗浄の繰り 返したにより除去された。腹膜のマイクロファージの培養器の洗浄後、これらは 1つのグループ当り12個の複製培養を含む5つのグループに別けられた。グル ープ1は照査標準を示し、何ら処理も加えられていない。グループ2は水性Ii i!を酸ストレプトマイシンを1 m ill /mlの濃度で受ける。グルー プ3は緩衝液に入れられた5PLVsを受ける。グループ4は水性硫酸ストレプ トマイシン(1111g/m1)と前もって作られた緩衝液に入れられた5PL Vsを受ける。グループ5は硫酸ストレプトマイシン(1m(1/m1)を含む 5PLVsを受ける。24時間後に、上澄みは洗浄をくり返すことにより除去さ れ、腹膜のマイクロファージは凍結と解凍をくり返することにより粉砕される。Peritoneal microphages were isolated from C5ヮBLK adult male mice by peritoneal lavage. Minimum essential medium (M, E) containing 10% heat-inactivated fetal calf serum was obtained. , M) suspended in pH7°2. Cells were 96- Suspended in a 96-well tissue culture vessel. sticky peritoneal micro Add a concentration of 7ml of 1X106CFtJ (colony forming unit) to the culture vessel containing the phages. Canine abortifacients (3, canis) were added. After 12 hours, peritoneal microphone Bacteria not inhaled by the lophages are washed repeatedly with Ivl, E, and Ivl. Removed due to return. After washing the peritoneal microphage incubator, these Divided into 5 groups with 12 replicate cultures per group. Guru Group 1 represents the control standard and has not been subjected to any processing. Group 2 is aqueous Ii i! and acid streptomycin at a concentration of 1 ml/ml. glue P3 receives 5 PLVs placed in buffer. Group 4 is aqueous sulfate strep 5PL in pre-made buffer with tomycin (1111 g/ml) Receive Vs. Group 5 contains streptomycin sulfate (1 m (1/ml) Receive 5 PLVs. After 24 hours, the supernatant was removed by repeated washing. The microphages in the peritoneum are crushed by repeated freezing and thawing.

粉砕されたマイクロファージの一連の希釈物は、プルセラの寒天培地上に置かれ 、4日後に、与えられるイヌ流産筒は希釈方法の限定により決定される。第7表 に示される結果は5PLVに内蔵のストレプトマイシンは試験管中における殺菌 および細胞内イヌ流産菌感染の除去に総合的な影響をもつことを示す。A series of dilutions of the crushed microphages were placed on Purcella agar. , after 4 days, the dog abort tubes given are determined by the limitations of the dilution method. Table 7 The results shown in 5PLV's built-in streptomycin are effective against sterilization in test tubes. and have a comprehensive impact on the elimination of intracellular P. abortus infection.

実験がウシ流産菌(B、 abortus )で、白子モルモットの雌の成体か ら腹膜洗浄によって腹膜のマイクロファージを得る以外は上述と同様に行なわれ た。結果は、また第7表に示される。The experiment was conducted on bovine abortus bacteria (B, abortus), and was performed on an adult female albino guinea pig. The procedure was the same as described above, except that peritoneal microphages were obtained by peritoneal lavage. Ta. The results are also shown in Table 7.

(以下余白) 第 7 表 感染マイクロファージのストレプトマイシン含有5PLVSでの処理後の細胞内 の 照査標準 2.6± 1.13x103 3.1±0.81x104懸濁液に入 れられた 5PLVs 2.82±0.10x103 2.9±0.17x10’1遊離ス トレプト マイシン 3.11±0,40x103 3.3±0,25x104ストレプト マイシン と懸濁液に入れられた 5PLVS 2,76±0,20x103 2.8± 0.42x104SPL Vs内蔵の ストレプトマイシン 00 a あらかじめ感染されたマウス(Cs;7Blk)腹膜マイクロファージの等 数から分離されたイヌ流産筒の集落形成単位(CFU)(12個の複製の平均± 標準偏差) b あらかじめ感染されたモルモット腹膜マイクロファージの等数から分離され たウシ流産菌の集落形成単位(CFU)(12個の複製の平均上標準偏差2 Cストレプトマイシン1mg/mlの濃度8、 実施例 細胞内感染の処置 次の実施例は5PLVSが細胞内感染の処理方法を表わすものである。本データ は、(1)病気の処理におけるSP L V Sに被包された抗生物質の使用の 影響力および(2)SPLV調製品の多量の投薬により得られるより大きな能力 を表わす。調書中に用いられたMLVSの5PLVSとの賦形剤としての比較が 述べられる。(Margin below) Table 7 Intracellular view of infected microphages after treatment with streptomycin-containing 5PLVS of Reference standard 2.6± 1.13x103 3.1±0.81x104 in suspension was lost 5PLVs 2.82±0.10x103 2.9±0.17x10’1 free space Trept Mycin 3.11±0,40x103 3.3±0,25x104 Strept Mycin and placed in suspension. 5PLVS 2,76±0,20x103 2.8±0.42x104SPL Built-in Vs Streptomycin 00 a Pre-infected mouse (Cs; 7Blk) peritoneal microphages, etc. Colony forming units (CFU) of canine abortifacients isolated from numbers (mean of 12 replicates ± standard deviation) b Isolated from equal numbers of pre-infected guinea pig peritoneal microphages Colony-forming units (CFU) of B. abortus (2 standard deviations above the mean of 12 replicates) C streptomycin 1 mg/ml concentration 8, Example treatment of intracellular infection The following example demonstrates how 5PLVS treats intracellular infections. This data (1) The use of SP LV S encapsulated antibiotics in the treatment of diseases. influence and (2) greater potency obtained with higher dosages of SPLV preparations. represents. Comparison of MLVS and 5PLVS used in the documentation as an excipient It can be stated.

プルセラ症は世界的な経済的9国家的健康問題である。Pulcellosis is a global economic and national health problem.

プルセラ病はプルセラSppによってひきおこされる。これは、人間を含む咄乳 種、家畜および種々の野生動物に発病する。6つのプルセラSppが動物でプル セラ病をひきおこし、これらは、ウシ流産筒、イヌ流産菌、マルタ熱菌(B。Pulcella disease is caused by Pulcella Spp. This includes breast milk, including humans. It affects species, domestic animals, and a variety of wild animals. 6 Pulsella Spp pulled in animals These causes Bacillus abortifolia, Bacillus abortifolia, Bacillus malta fever (B.

melitensis) 、プルセラ・ネオトメ(B 、 neotomae)  、プルセラ・オビス(B 、 ovis) 、ブタ流産筒(B、5uis)で ある。家畜と野生動物のいずれもプルセラ病を他の動物や人間に広げる保有体ど して取扱う。melitensis), Pulsella neotomae (B, neotomae) , Pulsella ovis (B, ovis), Pig Abortion Tube (B, 5uis) be. Both domestic and wild animals are carriers that can spread pulcellosis to other animals and humans. shall be handled as such.

該感染生体が網内皮糸の細胞中に存在し、抗生物質の殺菌性作用に対し高い抵抗 力をもつため、このような感染は抗生物質によって解消することができない。必 要とされる抗生物質の量と処置の長さは、動物に対し有毒であるか動物細胞中に 受け入れられない高い濃度の抗生物質であるかのいずれかである。この病気の処 置のさらに困難なことは、いくらか残っている感染は容易に広がり、循環を再度 くり返し始めるため、処置は完全な効果でなければならないことである。こよう な病気の経済的影響は自然流産による各年に失なわれる何百万ドルもの価値の牛 によって示されている。このような感染の突発に対処する唯一可能な方法は、隔 離とその時点での感染動物の畜殺である。The infected organisms are present in the cells of the reticuloendothelial threads and are highly resistant to the bactericidal action of antibiotics. Because of their vigor, these infections cannot be cleared by antibiotics. Must The amount of antibiotic required and the length of treatment may be toxic to the animal or present in the animal's cells. Either there are unacceptably high concentrations of antibiotics; Where does this disease occur? To make matters even more difficult, any remaining infection can easily spread and reinitiate circulation. The treatment must be completely effective in order to begin repeating. Let's go The economic impact of this disease is that millions of dollars worth of cattle are lost each year due to spontaneous abortions. is shown by. The only possible way to deal with such outbreaks is to isolate At that point, infected animals are slaughtered.

抗生物質を5PLVS中に結合することを次に感染動物の腹腔内に摂取すること により動物に被包性活性物質を投薬することによりこの実施例は構成される。Conjugating the antibiotic into 5PLVS is then ingested intraperitoneally into the infected animal. This embodiment consists of dosing an encapsulated active agent to an animal.

8.1. 5PLVに内蔵された抗生物質を用いるイヌ流産菌感染の単一処置の 効果 80匹の雄のスイスマウスの成体は腹膜腔内に(1,P、)イヌ流産菌△TCC 23365(1X 107CFU)で感染され、各々10匹のマウスをもつ8つ のグループに分けた。イヌ流産菌接種後7日目に、各グループは次の処置を受け た。グループ1は照査標準を示し、何の処置も受けなかっg0グループ2は緩衝 液に入れられた5PLVs (0゜21111 1、P、)を受けた。グループ 3は水性硫酸ストレプトマイシン(0,2m l r、P、の全投薬量中の1m  (1/K(+体重)を受けた。グループ4は0.2ml [。8.1. Single treatment of canine abortus infection using antibiotics contained in 5PLV effect Eighty adult male Swiss mice were infected with (1,P,) Canis abortus ΔTCC in the peritoneal cavity. 8 with 10 mice each infected with 23365 (1X 107 CFU) divided into groups. Seven days after inoculation with Canine Abortus, each group received the following treatments: Ta. Group 1 represented the control standard, no treatment received g0 Group 2 received the buffer It received 5 PLVs (0°21111 1, P,) placed in the liquid. group 3 is 1 m of the total dosage of aqueous streptomycin sulfate (0.2 ml r, P) (Received 1/K (+ body weight). Group 4 received 0.2 ml [.

P、の全投薬量中に水性硫酸ストレプトマイシン(5m9/に9体重)、を受け た。グループ5は0.2ml 1.P。received aqueous streptomycin sulfate (5 m9/9 body weight) during the total dosage of P. Ta. Group 5: 0.2ml 1. P.

の全投薬量中に水性硫酸ストレプトマイシン(10mg/K(]体重)を受けた 。グループ6は0.2ml 1.P。received aqueous streptomycin sulfate (10 mg/K (] body weight) during the total dosage of . Group 6 is 0.2ml 1. P.

の全投薬量中の硫酸ストレプトマイシン(1n+ a /K(1体重)を含む5 PLVSを受けた。グループ7は0.2m11、P、の全投薬量中の硫酸ストレ プトマイシン(5ma /KG体重)を含む5PLVsを受けた。グループ8は 0.2ml 1.P、の全投薬量中の硫酸ストレプトマイシン<10mo/K( +体重)を含むS P l−V sを受けた。5 containing streptomycin sulfate (1n+a/K (1 body weight)) in the total dosage of I took the PLVS. Group 7 had sulfuric acid stress in a total dosage of 0.2 m11, P. Received 5 PLVs containing ptomycin (5 ma/KG body weight). Group 8 is 0.2ml 1. Streptomycin sulfate <10 mo/K ( + body weight).

イヌ流産菌接種後14日目に、すべての動物が犠牲とされ牌臓が無菌処理的に除 去された。牌臓は均質化されプルセラ寒天培地で連続的希釈され、処置後に牌臓 に生き残っている数を決定する。4日の潜伏期間後の結果を第8表に示す。Fourteen days after inoculation with Canine Abortus, all animals were sacrificed and the spleens were aseptically removed. was removed. The spleen was homogenized and serially diluted on Pulsella agar, and the spleen was removed after treatment. Determine how many survive. The results after an incubation period of 4 days are shown in Table 8.

(以下余白) 第8表 遊離あるいは5PLVに内蔵された ストレプトマイシンの種々の濃度での 牌臓1個あたりのイヌ流産菌の集落形成単位5緩衝液に入れられた 非処理 5PLVs 照査標準 3.’46x10±2,7x10 4.1x106±0.66xlO ストレブ1へ マイシン濃度 遊離ストレプト 5PLVに内蔵された( W(1/ kil1 体重) マイシン ストレプトマイシン11.5±0,45 xlo 6 1. 01±0.25X10352.12± 1.71x1051,52±0.131 xlO4109,66±3.68x104 1,32± 1.00x104a  総員Q、2mlの腹膜腔内注入(殺菌塩水〉l) 生残するイヌ流産菌は牌[1 m1個あたりのCFU分離の数として決定され、1つの実験当りの10匹の平均 上標準偏差として表わされる。(三重の実験) 8.2. イヌ流産菌感染の5PLVに内蔵された抗生物質を用いての多重処理 の効果 80匹のスイスマウスの雄の成体はイヌ流産菌ATCC23365(IX107  CFU、1.P、)で感染され、各々10匹のマウスをもつ8つのグループに 分けた。イヌ流産菌の接種後7日および10日に、各グループは次の処置を受り た。グループ1は照査@準を示し、何の処理もされない。グループ2は緩衝液に 入れられた5PLVs (0゜2ml、1.P、)を受けた。グループ3は0. 2m、11、P、の全投薬量中水性硫酸ストレプトマイシン(1m(1/kg体 重)を受けた。グループ4はo、2+z r、P。(Margin below) Table 8 Free or built into 5PLV Streptomycin at various concentrations 5 colony-forming units of Canis abortus per spleen were added to the buffer solution. Untreated 5 PLVs Verification standard 3. '46x10±2,7x10 4.1x106±0.66xlO Go to Streb 1 Mycin concentration Free strep 5 Built-in PLV (W(1/kil1 Body weight) Mycin Streptomycin 11.5±0.45 xlo 6 1. 01±0.25X10352.12± 1.71x1051,52±0.131 xlO4109, 66±3.68x104 1,32± 1.00x104a Member Q, intraperitoneal injection of 2 ml (sterile saline), the surviving canine abortus bacteria are on the tiles [1 Determined as the number of CFU separations per m, averaged over 10 animals per experiment. It is expressed as the upper standard deviation. (Mie experiment) 8.2. Multiple treatment using antibiotics built into 5PLV for canine abortus infection effect of Eighty adult male Swiss mice were infected with Canis abortus ATCC 23365 (IX107). CFU, 1. P,) into eight groups of 10 mice each. divided. On days 7 and 10 after inoculation with Canis abortus, each group received the following treatments: Ta. Group 1 indicates verification @ standard and no processing is done. Group 2 is in buffer 5 PLVs (0°2ml, 1.P,) were received. Group 3 is 0. Aqueous streptomycin sulfate (1 m (1/kg body weight) in total dosage of 2 m, 11, P, (heavy) received. Group 4 is o, 2+z r, P.

の全投薬量中に水性硫酸ストレプトマイシン(5mg/k(1体重)を受けた。received aqueous streptomycin sulfate (5 mg/k (1 body weight)) during the total dosage.

グループ5は0.2m(] 1.P、の全投薬量中に水性硫酸ストレプトマイシ ン(10mo/kg体重)を受けた。グループ6は0.2m(] 1.P、の全 投薬量中の硫酸ストレプトマイシン(1m9/kg体重)を含む5LPVSを受 けた。グループ7は0.2ml 1.P。Group 5 contained aqueous sulfate streptomycin in the total dosage of 0.2m(]1.P. (10 mo/kg body weight). Group 6 is 0.2m (] 1.P, all Received 5LPVS containing streptomycin sulfate (1 m9/kg body weight) in dosage. I got it. Group 7 is 0.2ml 1. P.

全投薬量中の硫酸ストレプトマイシン(5mg/k(]体重)を含む5LPVs を受けた。グループ8は0.2m1l。5 LPVs containing streptomycin sulfate (5 mg/k (] body weight) in total dosage received. Group 8 is 0.2ml.

P、全投薬量中の硫酸ストレプトマイシン(10mg/k(1体重)を含む5P LVSを受けた。イヌ流産菌の接種後14日目に、すべての動物が犠牲とされ、 牌臓が無菌処理的に除去された。牌臓は均質化されプルセラ寒天培地上で連続的 に希釈され、処理後の牌臓中に生残しているイヌ流産菌の数が決定された。4日 の潜伏期間後の結果を第5図に示す。P, 5P containing streptomycin sulfate (10 mg/k (1 body weight) in total dosage) I took LVS. Fourteen days after inoculation with Canis abortus, all animals were sacrificed. The spleen was removed aseptically. The spleens were homogenized and serially plated on Pulsella agar. The number of canine abortus bacteria remaining in the spleen after treatment was determined. 4 days The results after the incubation period are shown in Figure 5.

第5図に表わされるように生体中のイヌ流産菌感染における種々の二段階処置摂 生は、接種後7日および100日目水性ストレプトマイシンを受けているグルー プは、牌臓中において生残するイヌ流産菌はほとんど還元されないで観察された 。接種後7日および100日目1Qm(1/k(1体重投薬された5PLVに内 蔵されたストレプトマイシンを受【プているグループのみが、接種された動物の 牌臓からすべての生存できるバクテリアの削除がなされた。As shown in Figure 5, various two-stage treatment regimens for canine abortus infection in vivo. Groups receiving aqueous streptomycin 7 and 100 days after inoculation It was observed that the canine abortus bacteria that survived in the spleen was hardly reduced. . 7 and 100 days after vaccination 1Qm (1/k) Only the group receiving stored streptomycin The spleen was cleared of all viable bacteria.

上述の実験の伯に、5PLVに内蔵されたストレプトマイシンで三爪処理された 後のイヌ流産菌感染マウスからの種々の細胞は次のように試料とされた。In the experiment described above, 5PLV was treated with streptomycin for three times. Various cells from mice subsequently infected with Canis abortus were sampled as follows.

30匹のスイスマウスの雄の成体はイヌ流産菌△TC023365(1x 10 7 CFU、1.P、)で接種された。Thirty adult male Swiss mice were infected with Canis abortus △TC023365 (1 x 10 7 CFU, 1. P,) was inoculated.

接種後7日目に動物は、各々10匹のマウスを持つ3つのグループに分けられた 。グループ1は照査標準を示し、何の処置も受けなかった。グループ2は、水性 硫酸ストレプトマイシン(10mQ/kg体重)を各々の0.2m1I。Seven days after inoculation, animals were divided into three groups with 10 mice each. . Group 1 represented the control standard and received no treatment. Group 2 is water-based 0.2 ml of each streptomycin sulfate (10 mQ/kg body weight).

P、投薬中に(接種後7日および100日目)受けた。グループ3は各々の0. 2m l T、P、の投薬中の硫酸ストレプトマイシン(10mq/k(1体重 )を含んで(する5PLVsを(接種後7日および100日目)受けた。イヌ流 産菌接種後14日〜70日に、すべての動物は犠牲とされ、イヌ流産菌に感染し た心臓、肺、牌臓、肝臓、腎臓、皐丸を分離するためにプルセラ寒天培地で連続 的に希釈した。P, received during medication (7 and 100 days post-inoculation). Group 3 each has 0. Streptomycin sulfate (10 mq/k (1 body weight) during administration of 2 ml T, P, ) containing 5 PLVs (at 7 and 100 days post-inoculation). Between 14 and 70 days after inoculation with the canine abortus, all animals were sacrificed and infected with the canine abortus. Serially on Pulsera agar to separate the heart, lungs, spleens, liver, kidneys, and gonorrhea. diluted.

4日の潜伏期間の後の臓器1個あたり生残するイヌ流産菌の結果を第6図に示す 。Figure 6 shows the results of canine abortus bacteria remaining per organ after a 4-day incubation period. .

第6図において表わされるようにストレプトマイシンで三爪の処置摂生後のイヌ の流産菌感染マウス中の種々の組織の試料摘出結果は、5PLVに内蔵されたス トレプトマイシンで処理された動物においては、イヌ流産菌接種後14日〜75 日に試料摘出されたすべての組織が生存できるイヌ流産菌体の全くない状態であ ったことを示している。Dog after treatment of three claws with streptomycin as depicted in Figure 6 The results of extracting samples of various tissues from mice infected with Abortus bacterium were obtained using the built-in 5PLV. In animals treated with treptomycin, 14 to 75 days after inoculation with M. canis All tissues sampled on the day were completely free of viable canine abortus bacteria. It shows that

処置をされなかった動物あるいは5PLVに内蔵されたストレプトマイシンを受 けるものとig度および投薬計画を全く同一に水性ストレプトマイシンで処置さ 、れた動物においては、生存できるイヌ流産菌体はイヌ流産菌接種後14〜75 日に試料摘出されたすべての組織中において分離できた。Animals that were not treated or received streptomycin contained in the 5PLV. treated with aqueous streptomycin at exactly the same grade and dosing regimen as those treated with In the animals that were exposed to the virus, the number of viable canine abortus bacteria was 14 to 75 after inoculation with canine abortus bacteria. It could be isolated in all tissues sampled on the same day.

8.3. 5PLVsと比較のためのMl−VSを用イタ処置の効果 15匹のスイスマウスの雄の成体がイヌ流産菌ATCC23365(1x 10 7 CFU、1.P、)で接種された。8.3. Effect of ita treatment using 5PLVs and Ml-VS for comparison Fifteen adult male Swiss mice were infected with Canis abortus ATCC 23365 (1 x 10 7 CFU, 1. P,) was inoculated.

接種後7日目に動物は各々5匹のマウスをもつ3つのグループにわけられた。グ ループ1は照査標準を示し、何らの処理も受けなかった。グループ2は硫酸スト レプトマイシン(10n+a/kg体重、r、p、>を含むMLVSを(接種後 7日および100日目)受けた。MLVsは100m(]卵ホスファチジルコリ ンくEPC)と硫酸ストレプトマイシン< 1 oom (+ /ml)を含む 殺菌ヘツブスの2m+を使い一般的な方法で調製された。脂質と硫酸ストレプト マイシンの比は2m+の最終生成MLV懸濁液中で100maEPcに対し28 m9ストレプトマイシンであった。グループ3は、100n+ (l EPCを 100m0硫酸ストレプトマイシンを含むヘツブスの3mlととも用いる変更を 行って第6.1節で述べた如く調製された硫酸ストレプトマイシン(10mo/ k(1体重、1.P、)を含むS P L、 V sを(接種後7日および10 日後に)受ける。5PIVs中の脂質と硫酸ストレプトマイシンとの比は、2m lの最終生成5PLVsl濁液中で100m(IEPcに対し28+ng硫酸ス トレプトマイシンであった。イヌ流産菌接種後14日目に、すべての動物は犠乳 とされ、膵臓が無菌処置的に除去され、同一化され、そしてプルセラ寒天培地上 でイヌ硫酸菌を分離するために連続的に希釈された。4日の潜伏期間の後の臓器 1個当りの生残しているイヌ流産菌の結果は第9表に表わされる。Seven days after inoculation, animals were divided into three groups of 5 mice each. Group Loop 1 represented the control standard and received no treatment. Group 2 is sulfuric acid MLVS containing leptomycin (10n+a/kg body weight, r, p, > on days 7 and 100). MLVs is 100 m (] egg phosphatidylcoli Contains EPC) and streptomycin sulfate <1 oom (+/ml) It was prepared in a conventional manner using sterile Hetubus 2m+. Lipids and sulfate strepto The ratio of mycin was 28 to 100 maEPc in the final product MLV suspension of 2m+. It was m9 streptomycin. Group 3 has 100n+(l EPC) Modification used with 3 ml of Hetubes containing 100 mO streptomycin sulfate streptomycin sulfate (10 mo/ml) prepared as described in Section 6.1. SP L, Vs containing k (1 body weight, 1.P,) (7 days and 10 days after inoculation) (days later). The ratio of lipids to streptomycin sulfate in 5PIVs was 2 m 100 m (28+ ng sulfuric acid solution for IEPc) in a final product of 5 PLVsl suspension. It was treptomycin. On the 14th day after inoculation with Canine Abortus, all animals received sacrificial milk. The pancreas was aseptically removed, identified, and plated on Pulsella agar. was serially diluted to isolate Sulfuric acid bacteria. Organs after 4 days incubation period The results for the number of viable canine abortus bacteria per individual are shown in Table 9.

第 9 表 2回の処理の後の生体内のイヌ流産閑の殺菌にお【プる硫酸ストレプトマイシン を牌臓1個当りのイヌ流産菌 照査標準 2.7± 1,0XIO4 M1−Vso 1,8±0.4X104SPLVsc O a 1Qmg/kg体重の腹膜腔内注入が3目間隔で保たれた。照査標準は何の 処置もされなかった。Table 9 Streptomycin sulfate for sterilization of in-vivo dog abortion after two treatments The amount of canine abortus bacteria per spleen Verification standard 2.7± 1,0XIO4 M1-Vso 1,8±0.4X104SPLVsc O a. Intraperitoneal injection of 1 Qmg/kg body weight was maintained at 3 eye intervals. What is the verification standard? No treatment was given.

b 生残するイヌ流産菌は牌臓1個あたりのCFU分離の数として決定され、1 グループ当りの5匹の平均上標準偏差として表わされる。(実験動物1匹当り二 重の決定) C卵ホスファチジルコリンと硫酸ストレプトマイシンの比は100.n+g脂質 に対し28mg硫酸ストレプトマイシンである。b Surviving canine abortus bacteria was determined as the number of CFU isolates per spleen, 1 Expressed as standard deviation above the mean of 5 animals per group. (2 per experimental animal weight determination) The ratio of C egg phosphatidylcholine to streptomycin sulfate is 100. n+g lipid 28 mg streptomycin sulfate.

8.1 感染処置における5PLVに内蔵された種々の抗生物質の効果 50匹のスイスマウスの雄の成体はイヌの流産菌ATCC23365(IX 1 07CFU、[、p、)で接種された。接種後7日目に、実験動物は各々5匹の マウスをもつ10個のグループに分けられた。グループ1は照査標準を表わ゛し 、何の処置も受けなかった。グループ2は緩衝液に入れられた5PLVs (0 ,2m l 、1.P、)を接種後7日および10日目に受けた。グループ3, 4.5および6は、ジヒドロストレプトマイシン、ゼンタマイシン、カナマイシ ンあるいはストレプトマイシンの10m(1/kg体重、iP、の水性注入(0 ,2ml [、p、)を接種後7日および10日目に受(プた。(注:これらの 抗生物質はそれぞれ試験管中でイヌ流産菌を殺菌することが示されている。)グ ループ7.8.9および10はジヒドロストレプトマイシン、センタマイシン、 カナマイシンあるいはストレプトマイシンの1On+o/kg体重を含む5PL Vsを接種後7日および10日目に受ける。イヌ流産菌接種後14日目に、すべ ての動物は犠牲とされ、膵臓が無菌処理的に除去され、均質化され、そしてプル セラ寒天培地上でイヌ流産菌を分離するために連続的に希釈された。4日の潜伏 期間の後の臓器1個当りの生残しているイヌ流産菌の結果は第10表に表わされ る。8.1 Effect of various antibiotics contained in 5PLV in infection treatment Fifty adult male Swiss mice were infected with canine abortus ATCC 23365 (IX1). inoculated with 07 CFU, [,p,). Seven days after inoculation, experimental animals each received five The mice were divided into 10 groups. Group 1 represents the reference standard , received no treatment. Group 2 contained 5 PLVs (0 , 2ml, 1. P,) were received 7 and 10 days after inoculation. Group 3, 4.5 and 6 are dihydrostreptomycin, zentamycin, kanamycin or streptomycin (1/kg body weight, iP) in an aqueous injection (0 , 2 ml [, p,) were received on the 7th and 10th day after inoculation. (Note: These Each antibiotic has been shown to kill the canine abortus bacteria in vitro. )G Loops 7.8.9 and 10 contain dihydrostreptomycin, centamycin, 5PL containing 1On+o/kg body weight of kanamycin or streptomycin Vs on days 7 and 10 after inoculation. On the 14th day after inoculation with canine abortifacients, all All animals were sacrificed and the pancreas was aseptically removed, homogenized, and pulled. It was serially diluted to isolate B. abortus on Sera agar. 4 days incubation The results of viable canine abortus bacteria per organ after the period are shown in Table 10. Ru.

第10表に示されるイヌ流産菌マウスにおける種々の抗生物質の試験の結果は、 試験管中(すなわち、懸濁溶媒中)でイヌ流産菌殺菌の効果がある抗生物質は、 これらが5PLVsに被包された場合において生体中でイヌ流産菌殺菌における 効果のみを示す。他の水性抗生物質または緩衝液に入れられた5PLVsを受け るあるいはなにも処置を受(プなかった動物は、感染牌臓組織に残存するイヌ硫 酸菌の削除は起こらなかった。The results of tests of various antibiotics on mice with canine abortus are shown in Table 10. Antibiotics that are effective in killing P. abortus in a test tube (i.e., in a suspension medium) are When these are encapsulated in 5PLVs, they are effective in killing the canine abortus bacteria in vivo. Shows only the effect. Receive other aqueous antibiotics or 5PLVs in buffer Animals that have not been treated or have received no treatment should be treated with residual canine sulfur in infected spleen tissue. No deletion of acid bacteria occurred.

(以下余白) 第 10 表 2回の処理の後の生体内でのイヌ流産菌の牌臓1個あたりのイヌ流産菌集落形成 単位5PLVに被包された 水性溶液 抗生物質 未処理 3.93± 1.51x106 4.66±0.87x106抗生物質 0 ジヒドロスト レプトマイシン1.13±0.30×1050ゼンタマイシン7.06±2.5 3X1050カナマイシン 2.72±0,91x1050ストレブ+ マイシン 1.01±0.17xlO50810m(1/に!11体重の腹膜腔 内注入が3目間隔で保たれた。照査標準は何の処置もされなかった。(Margin below) Table 10 Formation of a colony of Canine abortus bacteria per spleen in vivo after two treatments Encapsulated in unit 5 PLV Aqueous solution antibiotic Untreated 3.93±1.51x106 4.66±0.87x106 Antibiotics 0 Dihydrost Leptomycin 1.13±0.30×1050 Zentamycin 7.06±2.5 3X1050 Kanamycin 2.72±0.91x1050 Streb+ Mycin 1.01±0.17xlO50810m (in 1/! 11 body weight peritoneal cavity Internal injections were kept at 3 eye intervals. The reference standard was not treated in any way.

b 生体1個当りに生残するイヌ流産菌は牌臓1個あたりのCFU分離の数とし て決定され、1グループ当りの5匹の平均上標準偏差として表わされる。b The canine abortus bacteria that survive per living organism is the number of CFU isolated per spleen. and is expressed as the standard deviation above the mean of 5 animals per group.

(実験動物1匹当り二重の決定) C懸濁溶媒中の・イヌ流産菌の殺菌における抗生物質の効果 8.5. イヌ流産菌に感染した犬の処置雌ビーグルの成人は、イヌ流産菌AT CC23365(1x107 CFU)で口腔内および膣腔的接種された。(Double determination per experimental animal) Effect of antibiotics on killing B. canis in suspension medium 8.5. Treatment of dogs infected with Canine Abortion Bacteria Adult female beagles are infected with Canine Abortion Bacterium AT. CC23365 (1x107 CFU) was inoculated intrabuccally and vaginally.

接種後7日目に、犬は3つのグループに別けられた。グループ1は、照査標準を 示し、何の処置も受けなかった。グループ2は、10mg/kg体重くそれぞれ の投与ハ5.0m、l 1.P、であった。)の水性硫酸ストレプトマイシンを (接種後7日および10日目)に受(プた。グループ3は、10+z/ko体重 くそれぞれの投与は3.Oml、I。Seven days after vaccination, the dogs were divided into three groups. Group 1 uses the reference standard and received no treatment. Group 2 received 10 mg/kg body weight, respectively. Administration: 5.0 m, 1. It was P. ) aqueous streptomycin sulfate Group 3 received 10+z/ko body weight (7 and 10 days after vaccination). Each administration is 3. Oml, I.

P、であった。)の硫酸ストレプトマイシンを含む5PLVsを(接種後7日お よび10日目)に受けた。犬の膜洗浄とヘパリン化した血液試料が研究の前、間 および終了時に通常の間隔で集められた。イヌ流産菌を分離するためにこれらは プルセラ寒天培地上で溶媒された。結果は第11表に示す。血清試料はイヌ流産 菌に対する血清抗体の決定のための研究の前、間および終了時に集められた。こ れらの結果も第11表に示す。イヌ流産菌の接種後21日目に、すべての実験動 物は犠牲にされた。以下の組織が無菌処置的に除去され、均質化され、そしてイ ヌ流産菌を分離するためにプルセラ寒天培地上へ連続的に希釈された。ヘパリン 化した血、l!滲出液、肺、牌臓、滑膜液、子宮、卵巣。It was P. ) containing streptomycin sulfate (7 days after inoculation). and on the 10th day). Canine membrane wash and heparinized blood samples were collected before and during the study. and collected at regular intervals at termination. These are used to isolate canine abortus bacteria. solvated on Purcella agar medium. The results are shown in Table 11. Serum sample was from a canine abortion. were collected before, during and at the end of the study for determination of serum antibodies against the fungus. child The results are also shown in Table 11. On the 21st day after inoculation with Canine Abortus, all experimental Things were sacrificed. The following tissues were aseptically removed, homogenized, and Serial dilutions were made onto Purcella agar to isolate B. abortus. heparin Turned blood, l! Exudate, lungs, spleen, synovial fluid, uterus, ovaries.

膝窩すンパ節、唾液線、扁桃、@隔リンパ節、腸間膜リンパ節、骨髄、浅頚リン パ節および補助リンパ節。4日の潜伏期間の後の組織1つ当りに残存するイヌ流 産菌の結果は第12表に示される。Popliteal lymph nodes, salivary glands, tonsils, septal lymph nodes, mesenteric lymph nodes, bone marrow, superficial cervical lymph nodes lymph nodes and accessory lymph nodes. Dog flow remaining per tissue after 4 day incubation period The results of bacterial production are shown in Table 12.

(y又王余白) 浄書(内容に変更なし) 第 12 表 2回の抗生物質摂生処理がなされた イヌ流産菌感染大における組織試料 ストレプトマイシンストレプト 11窒綿棒 Q 十十 肺 O+ + 牌臓 Q + + 滑腹膜 N、D、 + + 子宮 Q 十十 卵巣 Q + + 膝窩 リンパ節 N、D、 + 十 唾液線 OOO 扁桃 Q + + 縦隔リンパ節 Q N、D、 + 腸間膜 :リンパ節 N、 D、O0 第 12 表(続 き) ストレプトマイシンストレプト 組 織 を含む5PLVs マイシン 照査標準骨髄 0 + + a 感染後7日および10日目に処置した実験動物b 剖検時に取られた試料は プルセラ寒天培地上で希釈された。+は1 CFUに等しいかあるいはこれより も大きい場合、0は集落のない場合を示す。(ymatao margin) Engraving (no changes to the content) Table 12 Antibiotic treatment was performed twice. Tissue samples from canine abortifacient infection streptomycin strepto 11 Nitrogen cotton swab Q 10 Lung O+ + Zou Q + + Synovial peritoneum N, D, + + Uterus Q Juju Ovary Q + + popliteal fossa Lymph nodes N, D, + 10 Salivary line OOO Tonsil Q + + Mediastinal lymph nodes Q N, D, + mesentery :Lymph nodes N, D, O0 Table 12 (continued) streptomycin strepto 5 PLVs including tissue Mycin reference standard bone marrow 0 + + a. Experimental animals treated on the 7th and 10th day after infection b. Samples taken at necropsy Diluted on Purcella agar. + is equal to or less than 1 CFU If the number is also large, 0 indicates there is no village.

C硫酸ストレプトマイシンを1On+o/に9偉績、■。C streptomycin sulfate 1On+o/9 times, ■.

P、で含むS、PLVS d 10m(]/kg体重、1.P、のM酸ストレプトマイシン e 照査標準は何の処置も受けていない。P, includes S, PLVS d 10m(]/kg body weight, 1.P, M acid streptomycin e. The reference standard has not undergone any treatment.

培養の結果と二段階の抗生物質投薬の前1間および後のイヌ流産菌感染大の血清 学試験の結果が第11表に示される。全部の実験動物は、負の血清価により測ら れたものゆえ、イヌ流産菌にさらす以前は血清学的に負であり、面培養面および 膣綿棒搾取の培養地から培養負である。すべての実験動物は、処理前の7日およ び10日1に血および膣の培養地の両方で培養正であると報告された。水性スト レプトマイシンで処置された犬あるいは何の処置も受けなかった犬は、21日口 の試験終了前の処理後の期間中、血および膣の培養地で培養正をとどめた。スト レプトマイシンを含むリポゾームを受(プたグループ3は最初の処理がなされた 1日後に培養正となり、処置後の期間を通して負をとどめた。何の処置もうけな かったまたは水性ストレプトマイシンを受けた犬は、感染後の21日口のでにイ ヌ流産菌抗原に対して探知できる血清価に発展するが、抗生物質を含む5PLV sで接種後7日および10日1に処置されたものは、イヌ流産菌抗原に対して何 ら探知できる血清価へ発展がなかった。Culture results and serum from canine abortus infection before and after two-step antibiotic treatment The results of the academic examination are shown in Table 11. All experimental animals were tested by negative serum titers. Therefore, the serology was negative prior to exposure to the canine abortus bacterium, and the surface culture surface and Cultures from vaginal swab exploitation cultures are negative. All experimental animals were tested for 7 days and Both blood and vaginal cultures were reported to be culture positive on day 1 and 10. aqueous strike Dogs treated with leptomycin or those that received no treatment had a 21-day oral Blood and vaginal cultures were maintained during the post-treatment period prior to the end of the study. strike Group 3 received liposomes containing leptomycin (the first treatment was Cultures became positive after 1 day and remained negative throughout the post-treatment period. What kind of treatment will I get? Dogs that received aqueous streptomycin or aqueous streptomycin should not have oral infections 21 days after infection. 5PLV, which contains antibiotics, develops to a serum titer that can be detected against bacterial antigens. 7 and 10 days after inoculation with S. There was no development of detectable serum titers.

第12表に示される二段階の抗生物質投薬処理がなされた感染犬からのイヌ流産 菌の分離よりの結果は、犬において、ストレプトマイシンを含む5PLVsの処 理だけがすべての臓器の試料からすべての組織におけるいかなる生存できるイヌ 流産菌をも削除する効果をもたらすということを示している。Canine abortions from infected dogs treated with two-stage antibiotic treatment as shown in Table 12 Results from bacterial isolation indicate that treatment of 5PLVs containing streptomycin in dogs Only all organ samples and all tissues of any viable dog can be analyzed. It has been shown that it is also effective in eliminating miscarriage bacteria.

8.6. モルモッi〜中のウシ流産菌の処置15匹のモルモットの雌の成体は 、ウシ流産菌ATCC23451(lx 107 CFU、E、P、)で接種さ れた。8.6. Treatment of bovine abortion bacteria in guinea pigs 15 adult female guinea pigs , inoculated with Bovine Abortus ATCC23451 (lx 107 CFU, E, P,). It was.

接種後7日日に、実験動物は各々5匹をもつ3つのグループに分けられた。グル ープ1は照査標準を示し、何の処置も受けなかった。グループ2は、1.P、注 入(0,2m1)に10m(]/に9体重で水性硫酸ストレプトマイシンを、ウ シ流産菌接種後7日および10日1に受けた。グループ3は、1.P、注入(0 ,2m l )に10mo/ko体重の水性硫酸ストレプトマイシンを含むS  P L V sをウシ流産菌接種後7日および10日1に受けた。ウシ流産菌接 種後14日日にすべての実験動物が犠牲にされ、牌臓が除去され、無菌処置的に 均一化され、ウシ流産菌を分離するためにプルセラ寒天培地上へ連続的に希釈さ れる。4日の潜伏期間の後の牌臓1個あたりの生残しているウシ流産菌の結果は 第7図に示される。ストレプトマイシンを含む5PLVsだけがモルモットの牌 臓中に属しているウシ流−産菌を削除する効果があった。水性ストレプトマイシ ンを受けたあるいは何の処理も受けていない実験動物においては、生存できるウ シ流産菌バクテリアが識別された。Seven days after inoculation, the experimental animals were divided into three groups of 5 animals each. Guru Group 1 represented the control standard and received no treatment. Group 2 is 1. P, note Aqueous streptomycin sulfate was added to the water (0.2 ml) at 9 body weight in 10 m (]/ The mice received the test on the 7th day and 10th day after the inoculation with the Abortus bacterium. Group 3 is 1. P, injection (0 , 2 ml) containing 10 mo/ko body weight of aqueous streptomycin sulfate. PLVs were received 7 days and 10 days after inoculation with Bovine Abortus. Bovine abortion inoculation On day 14 post-inoculation, all experimental animals were sacrificed, the spleen removed and aseptically removed. Homogenized and serially diluted onto Purcella agar to isolate B. abortus It will be done. The results of the viable bovine abortus bacteria per spleen after the 4-day incubation period are It is shown in FIG. Only 5PLVs containing streptomycin are guinea pig tiles. It was effective in eliminating bovine febrile bacteria present in the viscera. aqueous streptomycin In laboratory animals that have received treatment or have not received any treatment, viable The Abortus bacterium was identified.

8.7. ウシ中のウシ流産菌の処置 9頭の重度感染の動物が本実験に利用された。乳および膣綿棒搾取からのウシ流 産菌細菌分離はストレプトマイシンを含む5PLVsでの処理のあと負となり6 週間負にとどめた。これらの実験動物に感染が再発した場合、細菌分離は、処置 以前に正である乳房の象限にのみ見られた。8.7. Treatment of bovine abortion bacteria in cows Nine heavily infected animals were used in this experiment. Bovine flow from breast and vaginal swab exploitation Bacterial isolation became negative after treatment with 5PLVs containing streptomycin6. It remained negative for the week. If infection recurs in these experimental animals, bacterial isolation It was seen only in the breast quadrant that was previously positive.

9頭の交差交配(ヘレンフォード種−ジャージ一種−プランカス[3rangu s] )の、22齢の妊娠していないウシ流産菌培養正しいと確認された雌牛が 用いられた。研究開始の少なくとも4力月前に、該動物は、中間懐胎の前にウシ 流産菌種族2308のIX 107 CFUで結膜において実験的に試みられ、 これにより流産および/または、乳あるいは子宮分泌物および/または胎児組織 のウシ流産菌培養正となる。牛は個々の隔離牛舎で養なわれ、3つのグループに 分けられた。3目間隔で行なわれる2回の投薬摂取からなる処置は以下の通りで ある。(1)3頭の牛は生理食塩水を腹腔内的に注入される。(2)3頭の牛は 、水性抗生物質(10nz/kg体重スト・レプトマイシン〉とあらかじめ作ら れた緩衝液に入れられたS P L V sを腹腔内的に注入される。(3)3 頭の牛は5PLVSに内蔵されたストレプトマイシン(10mg/kg体重)腹 腔内的に注入される。注入1回当りの総量は1頭当り100m1であった。9 cross-breeders (Helenford breed - Jersey breed - Plancus [3rangu s]), a 22-year-old non-pregnant cow whose abortive bacteria culture was confirmed to be correct. used. At least 4 months before the start of the study, the animals were Experimentally tested in the conjunctiva with IX 107 CFU of Abortus bacterium species 2308, This can lead to miscarriage and/or milk or uterine secretions and/or fetal tissue. The culture of bovine abortion bacteria was positive. Cows are kept in individual isolated barns and divided into three groups. Divided. A procedure consisting of two drug intakes given three doses apart is as follows: be. (1) Three cows are injected intraperitoneally with saline. (2) The three cows are , pre-made with an aqueous antibiotic (10 nz/kg body weight St. Leptomycin). SPLVs in buffered solution is injected intraperitoneally. (3)3 The head of the cow was treated with streptomycin (10 mg/kg body weight) in 5PLVS. Injected intraluminally. The total volume per injection was 100 ml per animal.

最初の2力月の開孔分泌物および子宮分泌物の複製細菌培養地は週1回の供与分 泌を行なわされた。次に、すべての牛はペンタビシバ1−−ルナトリウムの過投 薬で薬殺され、次の臓器が細菌培養地から複製に集められる。(1)リンパ節; 左および右耳下リンパ節、左および右咽頭上リンパ節、左および右耳下リンパ節 、左および右耳下腺リンパ節。Replicating bacterial cultures of the first two months' open secretions and uterine secretions are given once a week. He was forced to secrete his secretions. Next, all cows were overdosed with pentabicibar sodium. They are killed with drugs and the next organs are harvested for reproduction from bacterial cultures. (1) Lymph nodes; Left and right parotid lymph nodes, left and right suprapharyngeal lymph nodes, left and right parotid lymph nodes , left and right parotid lymph nodes.

左および右肩甲骨前リンパ節、左および右大腿前リンパ節。Left and right prescapular lymph nodes, left and right prefemoral lymph nodes.

左および右耳下リンパ節、左および右耳下リンパ節、左および右腸骨すンパ説、 左および右乳房すンパ説、左および右の腎臓、気管支、縦隔膜、腸間膜および肝 のリンパ節。Left and right infratid lymph nodes, left and right infratid lymph nodes, left and right iliac lymph nodes, Left and right breast tissue, left and right kidney, bronchi, mediastinum, mesentery and liver lymph nodes.

(2)腺:4つのすべての乳房の乳腺、左および右副腎。(2) Glands: mammary glands of all four breasts, left and right adrenal glands.

胸腺(存在すれば)。(3)臓器および他の組織;牌臓。Thymus (if present). (3) Organs and other tissues; spleen.

肝臓、左および右の子宮の角状部、(子宮)頚、膣、腎臓。Liver, left and right uterine horns, (uterine) cervix, vagina, kidneys.

扁桃。Tonsils.

剖検の後、すべての組織は凍結され、輸送時は一70℃で取扱われる。組織は、 軽量の前に凍結され、アルコール炎にあてられ、無菌処置的に形整される。重量 が記録される(0.2ないし1.0グラム)とたたちに組織は無菌食塩水1ml 中で均質化され、最初のホモジネート懸濁液の110−1に無菌食塩水で連続的 に希釈される。一連の懸濁液からの各々の希釈液のアリコツト(20μm〉がプ ルセラ寒天培地上にのせられ37°Cで培養された。各々の組織に関し、複製の 決定が行なわれた。After necropsy, all tissues are frozen and handled at -70°C during transport. The organization is It is frozen before lightweighting, exposed to alcohol, and shaped aseptically. weight As soon as a The initial homogenate suspension was homogenized in 110-1 of the sterile saline solution. diluted to An aliquot (20 μm) of each dilution from a series of suspensions was The cells were placed on Lucella agar medium and cultured at 37°C. For each organization, The decision was made.

細菌成長に関し、プレートは毎日読み取られ記録された。Plates were read and recorded daily for bacterial growth.

3日以前にすべての出現集落は分離され、排泄されそして同一性決定のためダラ ム染色された。培養中の5.6および7日日に形態、成長度、およびウシ流産菌 でのダラム染色特性の存在で集落が数えられ、CFU/(I組織が決定された。Before 3 days, all emergent colonies were separated, excreted and polluted for identity determination. Mu-stained. Morphology, growth rate, and B. abortus on days 5.6 and 7 during culture Colonies were counted and CFU/(I tissue determined) by the presence of Durham staining characteristics at .

典型的集落はウシ流産菌の細菌確認のため再度なされた。Typical colonies were reconfirmed for bacterial confirmation of Bovine Abortus.

細菌学的分離はすべての組織になされ、組織のダラム当りのバクテリアの数が計 算された。4匹の実験動物〈1匹の偽薬(ρIacebo )照査標準と3匹の S P L Vsに内蔵されたストレプトマイシンで処置された動物〉から得ら れた結果が第13表に示される。Bacteriological isolation was performed on all tissues and the number of bacteria per duram of tissue was counted. calculated. Four experimental animals (one placebo (ρIacebo) control standard and three Obtained from animals treated with streptomycin contained in SPL Vs The results are shown in Table 13.

(以T−息臼) 第13表 ウシ流産菌感染のウシの組織試料 からの培養地の結果 5PLVに内蔵された 左副腎 o oo。(T-breath mortar) Table 13 Tissue samples from cows infected with Bovine Abortus Culture results from Built into 5PLV Left adrenal gland o oo.

右1) + + OO十 右環椎リンパ節 十+ + 0 十 右 n OOO十 右腋窩リンパ節 +++ Q −1−Q左 tt ++OOO 気管支リンパ節 o oo。Right 1) + + OO1 Right atlantal lymph node 10 + + 0 10 Right n OOO ten Right axillary lymph node +++ Q -1-Q left tt ++OOO Bronchial lymph nodes o oo.

〈子宮)頚 o oo。(Uterus) Neck ooo.

扁桃リンパ節 ++++ OOO 左子宮角状部 o o’ o + 6 〃 0 0 0 0 右賜内骨リンパ節 ++ 000 左 n ++++ O+ 0 腎臓 o o’o。Tonsil lymph node +++++ OOO Left uterine horn o o’ o + 6〃〃 0 0 0 Right intracervical bone lymph node ++ 000 Left n +++++ O+ 0 Kidney o o’o.

肝臓 o o−o。Liver o o-o.

肺 o oo。Lungs ooo.

左前乳腺 0 +−jQ 左後n Q Q O+ 右前n 十+ OOO 右後n + + OOO 右下顎リンパ節 +++000 左下顎リンパ節 十++ Q ’OO 縦隔膜リンパ節 ++o−1−0 腸間脱リンパ節 +++ Q Q Q 左耳下線リンパ節 +++ 000 右 Il 十++ o o 。Left anterior mammary gland 0 +-jQ Left rear n Q Q O+ Front right n 10 + OOO Right rear n + + OOO Right mandibular lymph node +++000 Left mandibular lymph node 10++ Q’OO Mediastinal lymph node ++o-1-0 Intestinal delymph node +++ Q Q Q Left subauricular lymph node +++ 000 Right Il 10++ o o o.

左膝窩リンパ節 + 000 右 // + OOO 左大腿前リンパ節 + 000 右 II Oo o 。Left popliteal lymph node +000 Right // + OOO Left anterior thigh lymph node +000 Right II Oo o.

第 13 表(続き) SPLVに内蔵された 左肩甲骨前リンパ節 0 0. 0 +右 u +++ + OOO 腎臓リンパ節 o oo。Table 13 (continued) Built into SPLV Left prescapular lymph node 0 0. 0 + right u +++ + OOO Kidney lymph nodes o oo.

牌臓 十十+OOO 左乳房リンパ節 十+→−+OO 右 Il OOOO 左咽頭上リンパ節 十 OOO 右 !j OOOO 胸腺 o oo。Juju + OOO Left breast lymph node 10+→-+OO Right Il OOOO Left suprapharyngeal lymph node 10 OOOO right ! j OOOO Thymus ooo.

膣 +++ OOO O:組織の0.3〜iqmの培養地では識別細菌なし十:200集落/9m(組 織)より少ない。Vagina +++ OOO O: No identified bacteria in tissue culture medium of 0.3 to iqm 10: 200 colonies/9 m (group) woven) less.

++:300集落/qm (組織)より多い。++: More than 300 villages/qm (organization).

++++ 1000集落/rim (組織)より多い。+++++ More than 1000 villages/rim (organization).

++++: 10000集落/glIl〈組織)より多い。+++++: More than 10,000 villages/glIl (organization).

9、 実施例 眼病の処置 細菌および類似の感染は、他の多くの眼病と同様に世界コな経済的1国家的問題 で、もし何ら処置されないか処置ズ可能であると失明や敗血症による死の危険性 を生じる。9. Example Treatment of eye diseases Bacterial and similar infections, like many other eye diseases, are a global economic and national problem. If no treatment is given or treatment is possible, there is a risk of blindness and death from sepsis. occurs.

動物や人間の眼の細菌感染は、クロストリジウムspp 、コリネバクテリウム spp 、レプトスピラspp 、モラクセラspp、ミ]バクテリウムspp  、ネイセリア5t)l) 、プロピオニバクテリウムspp 、プロテウス5 t)l) 、プはイドモナスspp 。Bacterial infections of the eyes of animals and humans are caused by Clostridium spp, Corynebacterium spp, Leptospira spp, Moraxella spp, My] Bacterium spp , Neisseria 5t)l), Propionibacterium spp, Proteus 5 t)l), pu is Idomonas spp.

セラチアspp 、イー・コリ(E、 Co11 ) 5lip 、 、スタフ イロカツカスspp 、を含む(これに限定されるわけではない。)バクテリア およびミコプ、ラズマspp 、およびリケツィアspρを含むバクテリア様微 生物により引き起こされることが報告されている。動物と人間の両方とも感染性 細菌を互いに広げる能力のある保有体として取扱われる。この5ような細菌感染 は、いくらか感染された人間において20分毎というひんばん処置、あるいは組 織において受(プいれらないほど抗生物質の高濃度という結果になる冗長な厄介 な処置計画なしでは抗生物質によって処置できない。現存の処置方法は多くの理 由から困難である。眼病の表面組織における感染性微生物は、ある場合に抗生物 質の細菌殺菌作用に高い抵抗力を持ち、抗生物質の局所的投薬はまちまちの接触 時間を生じる眼窩からの該薬剤の急速な除去という結果となる。一般的にいって 、眼感染の処置は、少しでも感染が残っていると、涙液分泌を通して寸ぐに再感 染し循環をもう一度くり返すことになるため、完全な効果でなければならない。Serratia spp, E. coli (E, Co11) 5lip, Stuff Bacteria including, but not limited to, Irocatchus spp. and bacterial-like microorganisms including Mykop, Plasma spp, and Rickettsia spρ. It has been reported that it is caused by living organisms. Both animals and humans are infectious Treated as a reservoir capable of spreading bacteria to each other. These 5 types of bacterial infections may be treated on a daily basis, every 20 minutes, or in combination in some infected humans. A redundant complication that results in unnecessarily high concentrations of antibiotics in textiles. It cannot be treated with antibiotics without a detailed treatment plan. Existing treatment methods are This is difficult for a number of reasons. Infectious microorganisms in the surface tissues of eye diseases can be treated with antibiotics in some cases. Highly resistant to the bactericidal action of high quality bacteria, topical antibiotics are highly resistant to uneven contact. This results in rapid removal of the drug from the orbit over time. Generally speaking The treatment for eye infections is that if there is even a small amount of infection left, it will be immediately re-sensed through lachrymal secretion. It must be completely effective, as it will cause the dyeing process to repeat once again.

さらに多くの場合において、感染を取り除くのに必要な′a度は視力の減退をひ きおこし、ある場合には全盲をひきおこす。家畜におけるこのような病気の経済 的影響は、このような伝染性の病気に対処する唯一可能な方法が持続的な療法と 隔離であるゆえ各年に失なわれる何面゛万ドルもの金額により示されている。Furthermore, in many cases, the degree of acuity needed to clear the infection may lead to loss of vision. In some cases, it can cause complete blindness. Economics of such diseases in livestock The impact is that the only possible way to deal with such a contagious disease is through continuous therapy. This is illustrated by the millions of dollars lost each year due to segregation.

以下実験は、目のモラクセラボビス(M、 1)ovis )感染に対するグリ セリン中に遊離した抗生物質を用いた処置の効果を5PLVS中に内蔵された抗 生物質を比較して評価するものである。The following experiments will be carried out to investigate the effects of infection of the eye with Moraxella bovis (M. 1) ovis. The effect of treatment with antibiotics released in serine was compared with the antimicrobials built into 5PLVS. It is a comparative evaluation of biological substances.

モラクセボビスは牛に伝染性の角結膜炎(ピンクアイ)を引き起こすものである 。この状態は、眼瞼痙撃、流涙。Moraxebovis causes contagious keratoconjunctivitis (pink eye) in cattle. . This condition causes blepharospasm and lacrimation.

結膜炎および隔膜の混濁と潰瘍のまちまちの度合によって特徴ずけられる。館の 成牛は若干の食欲減退と乳生産の減退を伴なう微熱を発するかもしれない。いく らかの抗生物質がモラクセラボビスに対して効果はあるが、これらは局所的付着 あるいは粘膜上注射によって早期にそしてひんばんに繰り返して投薬されなけれ ばならない。ここに述べられた実施例によると、治療物質の作用の効果と持続圧 が延長される。このような感染が抗生物質を用いての単なる普通の処置には応答 しないゆえに、本体系がたったー、二三爪投薬で効果的であることは驚くべきこ とである。一般的な処置は、もし感染が数多くの処置の繰り返しによって完全に 根絶さないと、目に際感染し感染サイクル再度くり返す若干の残留感染をしばし ば残す。It is characterized by variable degrees of conjunctivitis and septal opacification and ulceration. of the mansion Adult cows may develop a low-grade fever with some loss of appetite and reduced milk production. go Although some antibiotics are effective against Moraxella bovis, these or should be given early and frequently by repeated mucosal injections. Must be. According to the examples described here, the effect and duration of the action of therapeutic substances will be extended. Such infections do not respond to just routine treatment with antibiotics. Therefore, it is surprising that the main system is effective with just a few doses. That is. A common treatment is that if the infection becomes completely severe after many repeated treatments. If not eradicated, there will often be some residual infection that infects the eye and repeats the infection cycle again. Leave it alone.

9.1. マウスにおける伝染性向結膜炎の処置C57ブラツクマウス(160 匹)が8つのグループにわけられた、各々のグループの半分が両眼を紫外線照射 にさらされた(角膜障害を起こす目的ため)。次にすべての実験動物が1眼当り 1x106細菌個数の濃度で右眼に点滴されるモラクセラモビスを接種された。9.1. Treatment of infectious proconjunctivitis in mice C57 black mice (160 ) were divided into eight groups, half of each group had both eyes exposed to UV light. (for the purpose of causing corneal damage). Next, all experimental animals The patient was inoculated with Moraxelamobis instilled into the right eye at a concentration of 1 x 106 bacteria.

接種後24時間目にすべての実験動物は角膜の混濁の度合で点数づけされた。8 つのグループは両眼に次のような局所性付着により処置される。グループ1およ び2は5PLVに内蔵されたストレプトマイシン(30m (] /1111) の10μmを受けた。Twenty-four hours after inoculation, all experimental animals were scored for the degree of corneal opacity. 8 One group is treated with topical application to both eyes as follows: Group 1 and and 2 are streptomycin (30m (] /1111) built into 5PLV. 10 μm was received.

グループ3および4はストレプトマイシン(30m9/m1)の10μmを受け た。グループ5および6は水性ストレプトマイシン(100m l /n1l) に懸濁された緩衝液入れられたSPI Vsの10μmを受けた。グループ7お よび8は無菌食塩水の10μmを受けた。(注:未感染の左目は5PLVsが目 に刺激的かどうかみるために同じ局所的溶液により処理された。刺激性は見られ なかった。)毎日−回、隔膜障害の進行あるいは後退に関し記録され、処置後3 、および7日目に右目は綿棒でぬぐわれ、典型的実験動物においてモラクセラボ ビスの分離が行なわれた。モラクセラモビス集落は集落形態学およびモラグラボ ビス線毛に対する螢光抗原への反応性により決定された。第14表に示される結 果は、5PLVに内蔵されたストレプトマイシンのみが感染の除去に効果的であ ることを表わしている。Groups 3 and 4 received 10 μm of streptomycin (30 m9/ml). Ta. Groups 5 and 6 are aqueous streptomycin (100ml/n1l) received 10 μm of SPI Vs in buffer suspended in water. Group 7 and 8 received 10 μm of sterile saline. (Note: The uninfected left eye has 5 PLVs. were treated with the same topical solution to see if it was irritating. No irritation observed There wasn't. ) The progression or regression of diaphragm damage is recorded once daily and 3 times after treatment. , and on day 7, the right eye was swabbed and the Moraxera laboratory The screws were separated. Moraxelamobis settlements are village morphology and moragra labs. It was determined by the reactivity of bis fimbriae to fluorescent antigens. The results shown in Table 14 The result is that only the streptomycin contained in 5PLV is effective in eliminating infection. It represents that.

(以下余白) 浄書(内容(こ変更なし) 浄シ(内容に夏更なし) 弓 Ω Φ 9.2. 5PLVに内蔵された抗生物質を用いてのウサギの粘膜の処置 モラクセラボビスATCC株10900は無菌食塩水(0,085% Naci )中で1X107細胞数/−IrLlの濃度に希釈される。細菌懸濁液のアリコ ツト(0,1ml>が10匹の雌のウサギの成体の目に局所的に接種された。(Margin below) Engraving (contents (no changes)) Clean (no summer content) Bow ΩΦ 9.2. Treatment of rabbit mucosa using antibiotics built into 5PLV Moraxella bovis ATCC strain 10900 was mixed with sterile saline (0,085% Naci ) to a concentration of 1×10 7 cells/−IrLl. Alico of bacterial suspension (0.1 ml) was inoculated topically into the eyes of 10 adult female rabbits.

培養地に関する試料が結膜を綿棒でぬぐうことにより毎日取られ、血液寒天平板 上に置かれた。接種後3日目に、ウサギは3つのグループに分けられ、2匹の実 験動物(照査標準)は何の処置も受けず、4匹の実験動物は無菌食塩水中のスト レプトマイシン(10m(]/kg体重の濃度)を受けおよび4匹の実験動物は 無菌食塩水溶液中で5PLVに内蔵されたストレプトマイシン(101+1!+ ストレプトマイシン/kil1体重の濃度)を受【プた。すべての溶液は局所的 に両眼に投薬された。24時間後に、すべてのウサギの結膜を綿棒でぬぐうこと が再び始められ、7日間毎日続(プられた。モラクセラボビスの血液寒天平板上 での分離の結果は第15表に示される。Culture samples were taken daily by swabbing the conjunctiva and plated on blood agar. placed on top. On the third day after inoculation, the rabbits were divided into three groups and two The test animals (control standard) received no treatment, and four test animals received stock treatment in sterile saline. Four experimental animals received leptomycin (concentration of 10 m(]/kg body weight) and Streptomycin (101+1!+) incorporated into 5PLV in sterile saline solution Streptomycin/concentration of 1 kg body weight) was administered. All solutions are topical The drug was administered to both eyes. After 24 hours, swab the conjunctiva of all rabbits. was started again and continued daily for 7 days. The results of the separation are shown in Table 15.

浄書(内容に変更なし) ii店(内′t、(こ変更な1−) の り0フ0 9.3. 皮下感染による角結膜炎の処置モラクセラ小ビスATCC株1090 0は無菌食塩中にlX107細胞個/蛮lに希釈された。細菌懸濁液のアリコツ ト(0,1i1)が、第9.2節で述べてようにしてずでに感染されたウサギの 成体の眼に接種され、そしてSP L V sで処理されなかった。9匹すべて のウサギの右眼は、皮下的の結膜組織中にモラクセラボビスの0.1nlで接種 され、すべてのウサギの左眼は局所的にモラクセラボビスの0.1nlで接種さ れた。培養菌はすべてのウサギの両方の眼の結膜から毎日取られ、モラクセラボ ビスの分離のため血液寒天培地上におかれた。感染後3日目に。Engraving (no changes to the content) ii store (inside't, (this change is 1-) Nori 0 fu 0 9.3. Treatment of keratoconjunctivitis caused by subcutaneous infection Moraxella smallis ATCC strain 1090 0 was diluted in sterile saline to 1×10 7 cells/bar. Aliquot of bacterial suspension (0,1i1) in rabbits that were previously infected as described in Section 9.2. were inoculated into adult eyes and were not treated with SPLVs. all 9 animals The right eye of a rabbit was inoculated subcutaneously into the conjunctival tissue with 0.1 nl of Moraxella Bovis. The left eye of all rabbits was topically inoculated with 0.1 nl of Moraxella bovis. It was. Bacterial cultures were taken daily from the conjunctiva of both eyes of all rabbits and were placed on blood agar for separation of bis. On the third day after infection.

ウサギは3つのグループに分けられ、2匹の実験動物は何の処置も受けず、3匹 の実験動物は標準オフサルミングリセリン懸濁液中のストレプトマイシン(10 mfl/kg体重のストレプトマイシンの濃度)を受け、4匹の実験動物は5P LVに内蔵されたストレプトマイシンの食塩水懸濁液〈体重1kq当りストシブ 1〜マイシン10nz)を受けた。The rabbits were divided into three groups, two of which received no treatment, and three of which received no treatment. Experimental animals were treated with streptomycin (10 mfl/kg body weight of streptomycin), and four experimental animals received 5P Streptomycin saline suspension contained in the LV 1 to mycin 10nz).

懸濁液あるいは溶液は局所的に両方の眼に局所的に投薬(0,1mff1)され た。24時間後およびその後5日後ごとに、結膜を綿棒でぬぐうことが、すべて のウサギについておこなわれた。血液寒天培養地上でのモラクセラボビスの分離 の血管を第16表に示す。実験の終了時にすべての実験動物において解剖が行な われ、すべての動物から粘膜が除去された。これらは、血管新生に関し記録され 、そして細かに切刻まれ、均質化されそしてモラクレラボビスの分離のために血 液寒天平板上に置かれた。結果は第17表に示す。The suspension or solution is administered topically to both eyes (0,1mff1). Ta. Swabbing the conjunctiva after 24 hours and every 5 days thereafter is all that is needed. was conducted on rabbits. Isolation of Moraxella bovis on blood agar culture ground Table 16 shows the blood vessels of Dissections were performed on all experimental animals at the end of the experiment. The mucosa was removed from all animals. These have been recorded regarding angiogenesis. , and chopped into small pieces, homogenized and blood for the separation of moracle bovis Liquid agar was placed on a plate. The results are shown in Table 17.

(以下余白) 第16表 結膜@織中へのモラクセラボビスの接種およびオノサルミングリセリン溶液中の ストレプトマイシンまたは食塩水中の 5PLV被包されたス[へレプトマイシンでの照査標準 1 ++ +++ 5PI−V++さhたe 1 + + OO(−)ストレプトマイシン 2 +  4− 〇 〇 〇a i8養菌は37℃で、2411狂、11?の血液寒天平 板上のモラクセラボビス集落の存在で記録された。プラス(→−)は1分離物あ たりモラクセラボビスが1CFU、J:り多いか等しいことを示し、Oは態別で きる集落のないことを示す。(Margin below) Table 16 Inoculation of Moraxella bovis into the conjunctiva and inoculation of onosalmine in glycerin solution. in streptomycin or saline 5PLV-encapsulated S [Check standard with hereptomycin 1 ++ +++ 5PI-V++ Sahtae 1 + + OO(-) Streptomycin 2 + 4- 〇〇〇〇a i8 culture is at 37℃, 2411 crazy, 11? blood agar The presence of the Moraxela Bovis settlement on the board was recorded. Plus (→-) is one isolate Or Moraxela Bovis is 1 CFU, J: indicates more than or equal to, O is the category. This shows that there are no viable villages.

b 全実験動物は、両眼にモラクセラボビス1X106CFUで局所的に接種さ れるが右眼においてはモラクセラポビス1×106CFUは結Il!5絹織中に 注入され、左眼においてはモラクセラボビス1x106CFUは局所的に付着さ れた。b All experimental animals were locally inoculated with Moraxella Bovis 1X 106 CFU in both eyes. However, in the right eye, 1 x 106 CFU of moraxelapovis was observed. 5 During silk weaving In the left eye, Moraxela Bovis 1x106 CFU was locally deposited. It was.

プi〜マイシン(10mQ/kg体重)で局所的に処理された。Topically treated with pumicin (10 mQ/kg body weight).

e 実験動物は両眼に無菌食塩水溶液中の5PLV被包されたストレプトマイシ ン(10mg/kc+体重)で局所的に処理されt二。e Experimental animals received 5PLV-encapsulated streptomyces in sterile saline solution in both eyes. (10 mg/kc + body weight) was treated topically with t2.

第17表 結膜組織中へのモラクセ゛う・1スヒスの接種およびオフサルミングリセリン溶 液中のストレプトマイシンまたは照査標準 A+2+ a 使用符号の説明は第12表に同じであり接種後5日めに行なわれた。Table 17 Inoculation of molaxone 1 s His into conjunctival tissue and ophthalmic glycerol dissolution Streptomycin in liquid or reference standard A+2+ a. The explanation of the codes used is the same as in Table 12, and it was carried out on the 5th day after inoculation.

b 血管新生は次の」:うに得点つりされた。O−標準血管、1−少しの血管が 限定的に膨張し微細な血管で侵入されたもの、2・・個々の血管が容易に大別で きない赤い充血のもの、3−血管漏洩と粘膜中への血液滲出で濃赤色の充血のも の。b. Angiogenesis is the next step.'': The score for the sea urchin was lowered. O - standard blood vessel, 1 - few blood vessels Those that expand in a limited manner and are invaded by minute blood vessels, 2. Individual blood vessels are easily classified 3- Dark red hyperemia due to blood vessel leakage and blood seepage into the mucous membranes. of.

9.4. 眼感染の処置における5PLVSの効果のりボゾーム調製物と比較し ての評価 モラクセラボビス(ATCCTl2O300)は無菌食塩水中でlX107細胞 数/7rL久のm度に希釈された。細菌%濁液のアリコツ1〜(0,1mff1 )は、ウサギの成体の両眼の結膜組織の皮下的に接種された。ずべてのウサギの 両眼の結膜から綿棒でぬくうことが毎日行なわれ、モラクセラポビスの分離のた め血液寒天平板上に置かれた。接種後4日目に、ウリーギは6つのグループに分 けられ、2匹の実験動物は何の処置し受けず(照査標準)、3匹の実験動物は1 :100に希釈されると○、 [) 、480 (480mmT17)光学@度 )で0.928である5PLV被包されたストレプトマイシンの懸濁液(体重1 ko当リストレプトマイシン10tz)を受り、3匹の実験動物は1:100に 希釈されるとo、D、’480で0.499Tある5PLV被包サレタストレブ 1〜マイシンの懸濁液(体重1 ka当りストレプトマイシン10mg>を受け 、3匹の実験動物は1:100に希釈されると○、D、480で0.242であ る5PLV被包されたストシブ1〜マイシンの懸濁液(体重1kg当りストレプ トマイシン10mQ)を受け、3匹の実験動物は1:100に希釈されると0. D、480で0.199であるSP L V被包されたストレプトマイシンの懸 濁液〈体重1にg当りストレア1〜マイシン10mg)を受け、そして2匹の実 験動物ば1:100希釈でQ、[)、480が0.940であるストレプトマイ シン含有マルチラメラベシクル類(MLVs )の懸濁液(体重11(g当りス トレプトマイシン10+2)を受けた。MLVsは、ファウンテイン(F ou tain)らのCurr、Micro、6:373(1981)の手順により、 1iilI酸ストレプトマイシンを乾燥脂質薄膜に加えて渦動運動させ、そして 2時間膨張させることにより作られ、内蔵されなかったストレプトマイシンは遠 心分離を繰り返して除去した。9.4. Efficacy of 5PLVS in the treatment of ocular infections compared to bosomal preparations evaluation of Moraxella bovis (ATCCTl2O300) was prepared from lX107 cells in sterile saline. It was diluted to a degree of 1/7rL. Bacterial % suspension aliquot 1~(0,1mff1 ) was inoculated subcutaneously in the conjunctival tissue of both eyes of an adult rabbit. all the rabbits Swabbing of the conjunctiva of both eyes is done daily to isolate moraxelapovis. were placed on a blood agar plate. On the fourth day after inoculation, the Urigi were divided into six groups. Two experimental animals received no treatment (control standard), and three experimental animals received no treatment. : When diluted to 100, ○, [), 480 (480mmT17) optical @ degree ) of 5 PLV-encapsulated streptomycin with a weight of 0.928 (body weight 1 Three experimental animals received 1:10 oz of streptomycin at 1:100 p.m. 5PLV encapsulated Saleta Streb with 0.499T at o, D, '480 when diluted 1 to receive a suspension of mycin (streptomycin 10 mg/ka body weight) , three experimental animals were diluted 1:100, ○, D, 0.242 at 480. Suspension of Strep-1 to Mycin encapsulated in 5PLV (strep/kg body weight) tomycin (10 mQ) and three experimental animals received 0.0 mQ when diluted 1:100. D, the suspension of SP LV encapsulated streptomycin which is 0.199 at 480 1 to 10 mg of mycin per gram of body weight) and two fruit For test animals, streptomycin with Q, [), 480 of 0.940 at 1:100 dilution Suspension of syn-containing multilamellar vesicles (MLVs) (body weight 11 (grams per gram) received treptomycin 10+2). MLVs are fountain (Fou) tain) et al., Curr, Micro, 6:373 (1981), Streptomycin 1III acid was added to the dry lipid film in a vortex motion, and Streptomycin, which was made by incubation for 2 hours and was not incorporated, was The heart was removed by repeated heart isolation.

懸濁液は、両眼に局所的に投薬された。24時間後、すべてのウサギの結膜をぬ ぐうことが9日間毎日行なわれ、血液寒天培地上に置かれた。血液寒天平板上で のモラクセラホヒスの分離の結果は第18表に示される。すべての動物で解剖が 行なわれた。これらは涙分泌に関し記録され、そして結膜がすべての動物から無 菌処理的に除去された。The suspension was administered topically to both eyes. After 24 hours, remove the conjunctiva from all rabbits. Testing was performed daily for 9 days and plated on blood agar. on blood agar plates The results of the separation of Moraxelahohis are shown in Table 18. Dissection in all animals It was done. These were recorded for lachrymal secretion and the conjunctiva was isolated from all animals. Removed by bacterial treatment.

これらは血管新生に関し記録され、そして細かに切刻まれ、均質化され、モラク セラボビスの分離のために血液寒天平板上に置かれた。結果は第19表に示され る。These were scored for angiogenesis and then minced, homogenized, and Therabovis was placed on a blood agar plate for isolation. The results are shown in Table 19. Ru.

浄書(内容(こ変更なし) 第19表 レプ1へマイシンあるいは5PLV被包されたストレプトMLV被包された 1  + 1+ 1+ストレプトマイシン 2 0 1−1− 03PLV被包され た 1000 ストレブ1〜マイシン 2 .0 1+0〈未希釈) 3 0 00 SPLV被包された 1 + 2−1− 2+ストレプトマイシン 2 0 0 0 (1:2希釈) 3 0 1+0 3PLV被包された 1 0 00 ストレプトマイシン 2 0 1十〇 <1:4−#!釈) 3 + 1+ 08PLV被包された 1 + 1+ 1 +ストレブ1へマイシン 2 0 1+ 0〈1:6希釈> 3 +1+O a 符号説明は第14表に同じであり、接種後14日日目行なわれた。Engraving (contents (no changes)) Table 19 Lep1hemycin or 5PLV encapsulated streptoMLV encapsulated 1 + 1 + 1 + Streptomycin 2 0 1-1- 03 PLV encapsulated 1000 Streb 1 to Mycin 2. 0 1 + 0 (undiluted) 3 0 00 SPLV encapsulated 1 + 2-1- 2 + streptomycin 2 0 0 0 (1:2 dilution) 3 0 1+0 3PLV encapsulated 1000 Streptomycin 20 100 <1:4-#! Interpretation) 3 + 1 + 08PLV encapsulated 1 + 1 + 1 + Streb 1 Hemycin 2 0 1 + 0 <1:6 dilution > 3 + 1 + O a. The code description is the same as in Table 14, and the test was carried out on the 14th day after inoculation.

b 血管新生は次のように1a点づ(プされた。〇−標準面管、1−少しの血管 が膨張し微細な血管で浸入されたもの、2−個々の血管が容易に識別できない赤 い充血のもの、3−血管漏洩と結膜中への血液流出で濃赤色の充血のもの。b. Vascularization was plotted as follows: 1a - standard surface tube, 1 - some blood vessels swollen and infiltrated by minute blood vessels, 2- red color in which individual blood vessels cannot be easily identified. 3- Deep red hyperemia due to blood vessel leakage and blood outflow into the conjunctiva.

C分泌は次のように得点づ(〕された。〇−分泌なし、1−眼瞼と眼瞼隣接の毛 が濡れる程度の分泌、2−眼瞼と目に隣接の毛およびその範囲が濡れる程度の分 泌。C secretion was scored as follows: 〇-no secretion, 1-eyelid and adjacent eyelid hair. 2 - Enough secretion to wet the eyelids and the hair adjacent to the eyes and their area. Secretion.

10、実施例:ウィルス感染の処置 アレナウィルス族の1種であるリンパ球脈絡髄膜炎ウィルス(LCMV)は人間 に病気を起させるものとして知られ、L CM V感染は、このウィルスでの脳 内的に接種されたマウスにおいては致命的である。このマウスの死亡原因はウィ ルス感染細胞に対して反応する免疫細胞によるものである。該ウィルスは、増殖 している細胞中ひ殺せないので、マウス中で使用される治療剤は、免疫細胞が活 性化しないようにウィルスの増殖を抑止し、および/または免疫細胞の活性化を 抑止しなければならない。10. Example: Treatment of viral infection Lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV), a member of the arenavirus family, is a human virus. LCMV infection is known to cause illness in the brain. It is lethal in mice inoculated internally. The cause of death of this mouse is This is due to immune cells reacting against virus-infected cells. The virus proliferates Therapeutic agents used in mice are unable to kill immune cells, so the therapeutic agents used in mice are suppress the proliferation of the virus so that it does not become sexually active, and/or activate the immune cells. must be suppressed.

以下の実施例は5PLV被包された抗ウィルス化合物の投薬によるウィルス感染 処置め効果を表わすものである。The following examples demonstrate how to treat viral infections by administering 5PLV-encapsulated antiviral compounds. This represents the effect of the treatment.

10.1 マウスの致命的リンパ球脈絡髄膜炎ウィルス感染の処置 2齢のスイスマウスは、10Mウィルスの致死量、ツーすわちマウス1匹当り0 .05mff接種物中の100プラーク形成中位(PFU)を脳内的に接種され た。マウスは各々7匹を持つ4つのグループに分けられ、接種後2日、3日およ び4日日に0.17/Ll/薬量/マウスの以下の腹腔内注入により処置を受け た。(1)rSPLV−Rグループ」は3m9リババリン(R1bavarin ) / vL(lを含む卵ホスフ1チジルコリン5PLVsT−処置された。5 PLVSは脂質100++z+と10CHI1g/nu薬剤の0.3*1をPB S (燐酸緩衝食塩水)緩衝液中で用いて調製され、薬剤の内蔵は10%であっ た。<2)rR〜グループ」はPBS中のりババリン3mg/vt#の溶液で処 理された。10.1 Treatment of lethal lymphocytic choriomeningitis virus infection in mice Two-year-old Swiss mice received a lethal dose of 10M virus, two or zero per mouse. .. Inoculated intracerebrally with 100 plaque-forming units (PFU) in a 05mff inoculum. Ta. Mice were divided into 4 groups of 7 mice each, 2 days, 3 days and 3 days after inoculation. and on day 4 by intraperitoneal injection of 0.17/Ll/dose/mouse as follows: Ta. (1) "rSPLV-R group" is 3m9ribavarin (R1bavarin) ) / vL (l containing egg phosph 1 tidylcholine 5 PLVsT-treated.5 PLVS PB 0.3*1 of lipid 100++z+ and 10CHI1g/nu drug Prepared in S (phosphate buffered saline) buffer and contains 10% of the drug. Ta. <2) rR~ group” was treated with a solution of Norivabalin 3 mg/vt# in PBS. was managed.

(3)rsPLV−グループ」は緩衝液に入れられた5PLVsで処理された。(3) rsPLV-group' was treated with 5 PLVs in buffer.

(ずなわち、5PIVsはリババリンを用いない以外は上記と同様にして作られ た。)(4)[照査標準−グループ」はPBSで処理された。接種後5白目に各 々のグループから2匹のマウスが犠牲とされ、これらの牌臓が均質化された。( 1グループ当りの2個の牌臓は緩1!ie、の容積当り1/20重量でPBS中 で均質化される。)プラーグ形成用(IN(PFU)/mλがそれぞれの懸濁液 に関し決められた。各々のグループに残っている5匹のマウスは致死率に関して 2日毎に30日間観察された。(In other words, 5PIVs were made in the same manner as above, except without using Ribabalin. Ta. ) (4) [Reference Standard-Group] was treated with PBS. Each in the 5th white of the eye after inoculation. Two mice from each group were sacrificed and their spleens were homogenized. ( 2 tiles per group is 1 loose! ie, in PBS at 1/20 weight per volume of homogenized by ) For plaque formation (IN(PFU)/mλ is the respective suspension It was decided regarding. The remaining five mice in each group were Observations were made every 2 days for 30 days.

結果は第20表に表される。The results are presented in Table 20.

第20表は感染動物からの致死率の減少およびビールス再性能の減少を明らかに 示している。本発明者らは、これらの結果が5PLVsより解放されたリバハリ ンの抗ウィルス活性によるものかどうか、あるいは5PLVsからのりババリン の解放を受ける間のマウス宿主の免疫転調によるものかはまだ決定しなかった。Table 20 reveals reduced mortality from infected animals and reduced viral reactivation. It shows. The present inventors believe that these results indicate that the liver damage released from 5PLVs Whether this is due to the antiviral activity of the 5PLVs or the release of babarin from the 5PLVs. It has not yet been determined whether this is due to immune modulation in the murine host during the release of .

第 20 表 牌臓から回復したウィルス 照査標準 515 7.0 クループ 515 6.9 R−グループ 515 5.2 a 第2月齢マウスはそれぞれ致死量、すなわら0.05m1接種物中ノl−C Mウィルス1ooPFUを腹腔内的に接種された。Table 20 Virus recovered from spleen Verification standard 515 7.0 Croup 515 6.9 R-Group 515 5.2 a 2 month old mice each received a lethal dose, i.e. no l-C in 0.05 ml inoculum. They were inoculated intraperitoneally with 10 PFU of M virus.

b 致死率は死亡数/グループ中の総数で表わされる。b. Mortality rate is expressed as number of deaths/total number in group.

C感染後58目にそれぞれのクループから2匹のマウスが犠牲とされ、これらの 牌臓が1 man臓/2O−IrLl、ホモシネ−1への1mで均質化された。Two mice from each croup were sacrificed at day 58 post-infection with C. The spleens were homogenized in 1 mO/2O-IrLl, 1 m to homosyne-1.

浄づy(内容り一変更なし) 。。1 011 第2・図 第5厘 MG7KG 第6図 A:丈す巧、 B:ズトレフ・FマイシンC: E;PLV(スFし)・Lマヅ ンシJめ覇す第7図 手続ネ市正書(方式ン 昭和59年3月15日 特許庁長官 若 杉 和 夫 殿 1、事件の表示 PCT/1Js83100419 2、弁明の名称 安定なプルリラメラベシクル類 3、補正をする者 事件どの関係 特許出願人 住 所 アメリカ合衆国 ニューシャーシー州 08540プリンス(ヘン プ リンストシフ4レスタルセンターワン リサーチ ウェイ(番地なし〉 名 称 ザ リポソーム カンパニー、インコーホレーテッド代表者 モツク  ケニス アイ 4、代理人 住所〒102 東京都千代田区二番町11番地9ダイアパレス二番町5、補正命令の日イ」 昭和59年2月9日 (発送日:昭和59年2月14日〉6、補正の対象 (1)特許法第184条の5第1項の規定による書面の[特許出願人の代表者、 1および[発明者の住所Jの欄(2)委任状、法人国籍証明書およびその訳文( 3)図面の翻訳文 (4)明1fIII書の翻訳文 7、補正の内容 (1〉別紙添付の訂正された特許法第184条の5第1項の規定による書面のと おり。Purification (no change in content) . . 1 011 2nd figure 5th rin MG7KG Figure 6 A: Jousu Takumi, B: Ztref・Fmycin C: E; PLV (SuFshi)・Lmazzu Figure 7 Procedural City Official Book (Method) March 15, 1982 Mr. Kazuo Wakasugi, Commissioner of the Patent Office 1.Display of the incident PCT/1Js83100419 2. Name of defense Stable plurilamellar vesicles 3. Person who makes corrections Case related to patent applicant Address: New Chassis, United States 08540 Prince (Hemp) Linst Schiff 4 Restal Center One Research Way (No address) Name: The Liposome Company, Inc. Representative: Motsuku Kenneth Ai 4. Agent Address〒102 Dia Palace Niban-cho 5, 11-9 Niban-cho, Chiyoda-ku, Tokyo, on the day of the correction order.'' February 9, 1980 (Shipping date: February 14, 1980) 6, subject to amendment (1) A document pursuant to Article 184-5, Paragraph 1 of the Patent Law [Representative of the patent applicant, 1 and [Column (2) of inventor's address J] Power of attorney, corporate citizenship certificate and its translation ( 3) Translation of the drawing (4) Translation of Mei 1f III book 7. Contents of correction (1> The revised document pursuant to the provisions of Article 184-5, Paragraph 1 of the Patent Act attached to the attached sheet) Ori.

(2)別紙添付委任状、法人国籍証明書およびその訳文のとおり。(2) As shown in the attached power of attorney, corporate citizenship certificate and its translation.

〈3〉図面の翻訳文の浄書(内容に変更なし)のとおり。<3> As shown in the engraving of the translation of the drawing (no changes to the content).

(4)明細書の翻訳文の第58頁第11表、第72頁第14表、第74頁第15 表および第81頁第18表をそれぞれ別紙のとおり補正する。(4) Translation of the specification, page 58, table 11, page 72, table 14, page 74, table 15 The table and Table 18 on page 81 will be amended as shown in the attached sheets.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1. 安定なプルリラメラベシクル類。 2、MLVs 、5UVsおよびREVsを実質的に含まない安定なプルリラメ ラベシクル類。 3、 低い浮遊密度およびMLVsより約3分の1大きい容積を有し、同一成分 からつくられる請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 4、 緩衝液中に保存している間に自動酸化に対してより安定で、同一成分から つくられる請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラヘシクル類。 5、 同一成分からつくられたMtVs 、5UVsおよびREVsよりも体液 内でより安定である請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 6、 尿素に曝されたときに捕捉されている化合物を放出するものである特許請 求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラヘシクル類。 7、 生体内に投与されたときにいかなる捕捉されている化合物をも徐々に放出 する請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 8、 カルチャー内の細胞に投与したときにベシクル類の内容物が細胞の細胞内 ゾ御に分配されてなる請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類 。 9、 生体内の細胞に投与されたときに、ベシクル類の脂れてなる請求の範囲第 1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 10、ベシクル類の主要な脂質成分がホスファチジルコリンである請求の範囲第 1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 11、抗酸化剤がベシクル類の成分である請求の範囲第1項に記載の安定なプル リラメラベシクル類。 12、抗酸化剤がブチル化ヒドロキシトルエンである請求の範囲第1項に記載の 安定なプルリラメラベシクル類。 13、タンパク質がベシクル内に捕捉してなる請求の範囲第1項に記載の安定な プルリラメラベシクル類。 14、抗菌性化合物、抗真菌性化合物、駆虫性化合物および抗ウイルス性化合物 よりなる群から選ばれた化合物がベシクル内に捕捉されてなる請求の範囲第1項 に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 15、抗腫瘍性化合物、トキシン、細胞受容体結合分子および免疫グロブリンよ りなる群から選ばれた化合物がベシクル内に捕捉されてなる請求の範囲第1項に 記載の安定なプルリラメラベシクル類。 16、抗炎潤性化合物、抗緑内障性化合物、瞳孔拡張化合物および局部麻酔剤、 よりなる群から選ばれた化合物がベシクル内に捕捉されてなる請求の範囲第1項 に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 17、酵素、ホルモン、神軽伝達物質、免疫変換剤、ヌクレオチドおよび環状ア ゾン・シンモノホスフェートよりなる群から選ばれた化合物がベシクル内に捕捉 されてなる請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシクル類。 18、色素、螢光化合物、放射性化合物および放射線不透過化合物よりなる群か ら選ばれた化合物がベシクル内に捕捉されてなる請求の範囲第1項に記載の安定 なプルリラメラベシクル類。 19、 (a)有機溶媒中の少なくとも1種の両極性脂質の分散体を生成し、 (b)該分散体を充分な量の水性相と混合して水性相が完全に乳化している二相 混合物を形成し、かつ(C)該水性相を乳化しかつ該二相系混合物の有機溶媒を 蒸発することを特徴とするMLVs、5UVsおよびREVsを実質的に含マな い安定なプルリラメラベシクル類の製造方法ヶ 20、溶媒の容量と水性相の容量との比が約3:1〜約100:1である請求の 範囲第1項に記載の方法。 21、該方法が行なわれる温度が約4〜60℃である請求の範囲第19項に記載 の方法。 22、該方法が行なわれる温度が少なくとも1種の該脂質の相転移温度より低い ものである請求の範囲第19項に記載の方法。 23、溶媒がフルオロカーボンまたはジエチルエーテルまたはその混合物である 請求の範囲第19項に記載の方法。 24、溶媒が抗酸化剤を含有してなる請求の範囲第23項に記載の方法。 25、該抗酸化剤がブチル化ヒドロキシトルエンである請求の範囲第24項の方 法。 26、乳化は蒸発の前に行なわれるものである請求の範囲第19項に記載の方法 。 27、乳化は蒸発と同時に行なわれるものである請求の範囲第19項に記載の方 法。 28、ベシクル内に捕捉されるべき物質が水性相とともに添加されるものである 請求の範囲第19項に記載の方法。 29、少なくとも20%の該化合物がベシクル内に捕捉されてなる請求の範囲第 28項に記載の方法。 30、該物質がタンパク質である請求の範囲第28項に記載の方法。 31、前記化合物を含有する請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシ クル類を生物に投与することを特徴とする生体内細胞に化合物を投与する方法。 32、安定なプルリラメラベシクル類が局部的、腹腔内、静脈内、筋肉内、皮下 または耳内に投与されてなる請求の範囲第31項に記載の方法。 33、感染症の治療に有効な化合物を含有する請求の範囲1項に記載の安定なプ ルリラメラベシクル類を投与することを特徴とする動物または植物の感染症の治 療方法。 34、感染症が細胞内である請求の範囲第33項に記載の方法。 35、感染症が寄生虫によってひき起されるものである請求の範囲第34項に記 載の方法。 36、感染症がプルセラsppによってひき起、されるものである請求の範囲第 35項に記載方法。 37、投与が腹腔内である請求の範囲第36項に記載の方法。 38、感染症が細胞外である請求の範囲第33項に記載の方法。 39、感染症がバクテリアによってひき起されるものである請求の範囲第38項 に記載の方法。 40、感染症が黄色ブドウ球菌にによってひき起されるものである請求の範囲第 39項に記載の方法。 41、投与が腹腔内である請求の範囲第40項に記載の方法。 42、感染症が眼感染症である請求の範囲第33項に記載の方法。 43、感染症がモラクセラSppによってひき起されるものである請求の範囲第 42項に記載の方法。 44、感染症が局部的である請求の範囲第43項に記載の方法。 45、感染症がウィルスによりひき起されるものである請求の範囲第33項に記 載の方法。 46、@染症がリンパ性脈絡髄炎ウィルスによってひき起されるものである請求 の範囲第45項に記載の方法。 47、投与が腹腔内である請求の範囲第46項に記載の方法。 48、前記化合物を含有する請求の範囲第1項に記載の安定なプルリラメラベシ クル類を投与することを特徴とする痛みを治療するに有効な化合物の必要な徐放 を動物または植物における痛みの治療方法。 49、痛みが眼病である請求の範囲第48項に記載の方法。 50、痛みが緑内障である請求の範囲第49項に記載の方法。 51、投与が局部的である請求の範囲第50項に記載の方法。1. Stable plurilamellar vesicles. 2. Stable pluri-lame substantially free of MLVs, 5UVs and REVs Labesicles. 3. Has a lower buoyant density and a volume approximately one-third larger than MLVs, and has the same composition Stable plurilamellar vesicles according to claim 1 made from. 4. More stable against auto-oxidation while stored in buffer and from the same ingredients Stable plurilamellar hesicles according to claim 1, which are produced. 5.MtVs, 5UVs and REVs made from the same ingredients 2. The stable plurilamellar vesicles of claim 1, which are more stable within. 6. Patent claims that release trapped compounds when exposed to urea Stable plurilamellar hesicles according to item 1. 7. Gradual release of any trapped compounds when administered in vivo Stable plurilamellar vesicles according to claim 1. 8. When administered to cells in culture, the contents of vesicles are Stable plurilamellar vesicles according to claim 1, which are divided into two groups. . 9.Claim No. 1 that vesicles become oily when administered to cells in a living body. Stable plurilamellar vesicles according to item 1. 10. Claim No. 1, wherein the main lipid component of the vesicles is phosphatidylcholine. Stable plurilamellar vesicles according to item 1. 11. The stable pull according to claim 1, wherein the antioxidant is a component of vesicles. Lilamellar vesicles. 12. The antioxidant according to claim 1, wherein the antioxidant is butylated hydroxytoluene. Stable plurilamellar vesicles. 13. The stable protein according to claim 1, wherein the protein is trapped in a vesicle. Plurilamellar vesicles. 14. Antibacterial, antifungal, anthelmintic and antiviral compounds Claim 1, wherein a compound selected from the group consisting of: is trapped in a vesicle. Stable plurilamellar vesicles described in . 15. Anti-tumor compounds, toxins, cell receptor binding molecules and immunoglobulins. Claim 1, wherein a compound selected from the group consisting of: Stable plurilamellar vesicles described. 16. anti-inflammatory compounds, anti-glaucoma compounds, pupil dilating compounds and local anesthetics; Claim 1, wherein a compound selected from the group consisting of: is trapped in a vesicle. Stable plurilamellar vesicles described in . 17. Enzymes, hormones, neurotransmitters, immune converters, nucleotides and cyclic amino acids Compounds selected from the group consisting of zon and cin monophosphates are trapped within the vesicles. Stable plurilamellar vesicles according to claim 1, comprising: 18. The group consisting of dyes, fluorescent compounds, radioactive compounds and radiopaque compounds The stable compound according to claim 1, wherein a compound selected from the above is trapped in a vesicle. plurilamellar vesicles. 19. (a) producing a dispersion of at least one ambipolar lipid in an organic solvent; (b) the dispersion is mixed with a sufficient amount of an aqueous phase to completely emulsify the aqueous phase; forming a mixture; and (C) emulsifying the aqueous phase and dissolving the organic solvent of the two-phase mixture. substantially free of MLVs, 5UVs and REVs characterized by evaporation; Method for producing stable plurilamellar vesicles 20, wherein the ratio of the volume of the solvent to the volume of the aqueous phase is from about 3:1 to about 100:1. The method described in Scope No. 1. 21. According to claim 19, the temperature at which the method is carried out is about 4-60°C. the method of. 22. The temperature at which the method is carried out is below the phase transition temperature of the at least one lipid. 20. The method of claim 19. 23. The solvent is fluorocarbon or diethyl ether or a mixture thereof A method according to claim 19. 24. The method according to claim 23, wherein the solvent contains an antioxidant. 25. The person according to claim 24, wherein the antioxidant is butylated hydroxytoluene. Law. 26. The method according to claim 19, wherein the emulsification is carried out before evaporation. . 27. The method according to claim 19, wherein emulsification is carried out simultaneously with evaporation. Law. 28. The substance to be trapped within the vesicles is added together with the aqueous phase. A method according to claim 19. 29. Claim No. 2, wherein at least 20% of the compound is entrapped within vesicles. The method described in Section 28. 30. The method according to claim 28, wherein the substance is a protein. 31. The stable plurilamellar vesicle according to claim 1 containing the above compound. A method for administering a compound to cells in a living body, the method comprising administering a compound to an organism. 32. Stable plurilamellar vesicles can be administered locally, intraperitoneally, intravenously, intramuscularly, subcutaneously. The method according to claim 31, wherein the method is administered intraaurally. 33. The stable protein according to claim 1 containing a compound effective for treating infectious diseases. Treatment of infectious diseases in animals or plants, characterized by administering Lulilamella vesicles Treatment method. 34. The method according to claim 33, wherein the infection is intracellular. 35. Claim 34, wherein the infectious disease is caused by a parasite. How to put it on. 36. Claim No. 3 in which the infectious disease is caused and caused by Pulsella spp. Method described in Section 35. 37. The method of claim 36, wherein the administration is intraperitoneal. 38. The method according to claim 33, wherein the infection is extracellular. 39. Claim 38, wherein the infectious disease is caused by bacteria. The method described in. 40. Claim No. 4 in which the infectious disease is caused by Staphylococcus aureus The method described in paragraph 39. 41. The method of claim 40, wherein the administration is intraperitoneal. 42. The method of claim 33, wherein the infection is an eye infection. 43. Claim No. 4 in which the infectious disease is caused by Moraxella Spp. The method according to paragraph 42. 44. The method of claim 43, wherein the infection is localized. 45. According to claim 33, the infectious disease is caused by a virus. How to put it on. 46. Claim that @ infection is caused by lymphocytic choriomyelitis virus The method according to item 45. 47. The method of claim 46, wherein the administration is intraperitoneal. 48. The stable plurilamellar vesicle according to claim 1 containing said compound. Necessary sustained release of a compound effective in treating pain characterized by administering quince A method of treating pain in animals or plants. 49. The method according to claim 48, wherein the pain is an eye disease. 50. The method according to claim 49, wherein the pain is glaucoma. 51. The method of claim 50, wherein the administration is local.
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