JPS58210021A - Preparation of cell stimulating substance - Google Patents

Preparation of cell stimulating substance

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JPS58210021A
JPS58210021A JP58089915A JP8991583A JPS58210021A JP S58210021 A JPS58210021 A JP S58210021A JP 58089915 A JP58089915 A JP 58089915A JP 8991583 A JP8991583 A JP 8991583A JP S58210021 A JPS58210021 A JP S58210021A
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ultrafiltration
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
(57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は細胞刺激剤の製造法に関し、更に詳しくは、牛
の血液から細胞呼吸刺激活性物質溶液を得る方法に関す
る。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for producing a cell stimulant, and more particularly to a method for obtaining a solution of a cell respiration stimulating active substance from bovine blood.

牛の血液から細胞呼吸刺激活性物質が得られることは、
西独国特許第1076888号に記載されており、公知
である。ここに記載された方法は、例えば新鮮な牛の血
液を脱繊維素し、得られた溶液を溶血反応にかけ、得ら
れた溶血した溶液から比較的高分子量の成分、例えば特
に蛋白質類、を分離し、透析操作を行ない、その後乾燥
物質重量が30〜60 mLi/ml となるまで穏や
かに濃縮することによって、治療に使用するのに適した
活性剤の溶液を直接得るものである。この方法で必要な
透析は、そこに述へられた目的を達成するため、あらゆ
る既知の、そして通常の透析用材料を用いて行なうこと
ができる。この場合、セロファンチューブの使用が特に
好適であると記載されている。
The fact that cellular respiration-stimulating active substances can be obtained from cow blood is
It is described in West German Patent No. 1076888 and is well known. The method described here involves, for example, defibrinating fresh bovine blood, subjecting the resulting solution to a hemolytic reaction, and separating components of relatively high molecular weight, such as proteins in particular, from the resulting hemolyzed solution. By carrying out a dialysis operation followed by gentle concentration to a dry substance weight of 30-60 mL/ml, a solution of the active agent suitable for therapeutic use is directly obtained. The dialysis required in this method can be carried out using all known and conventional dialysis materials to achieve the objectives stated therein. In this case, the use of cellophane tubes is stated to be particularly suitable.

上記の方法で、所望の治療活性を持った製品が得られる
が、この方法は、必須の透析に比較的時間がかかり、操
作がむつかしいという欠点を有する。また、得られた製
品は、分子量の上限、従つ。
Although the above-described method provides products with the desired therapeutic activity, this method has the disadvantage that the necessary dialysis is relatively time-consuming and difficult to operate. Moreover, the obtained products comply with the upper limit of molecular weight.

て′その組成が変わり易いので、同じ均一な生成物では
ない。さらに、得られた生成物の収量も満足できるもの
ではない。
It is not the same homogeneous product because its composition is variable. Furthermore, the yield of the product obtained is also not satisfactory.

さらに、西独国特許第1076888号の方法では、無
機塩類、特に塩化ナトリウムおよび塩化カリウムの含量
が比較的高い製品が得られる。この様な塩類はそこに記
載された方法では分離除去することかできない。得られ
た活性物質溶液の塩含量が、例えば固形物含量の約25
〜80重量%に達することがあり、相当する注射溶液ま
たは高濃度の局所剤型が数倍も高張になってしまう。高
張であるために、この様な活性物質溶液の筋肉内投与は
痛みが伴なうと共に、細胞に損傷を与え、このことは、
所望の細胞再生効果にとって不利なことである。
Furthermore, the process of DE 1076888 gives products with a relatively high content of inorganic salts, in particular sodium chloride and potassium chloride. Such salts cannot be separated and removed by the method described therein. The salt content of the active substance solution obtained is, for example, approximately 25% of the solids content.
~80% by weight, making corresponding injection solutions or highly concentrated topical formulations several times hypertonic. Due to their hypertonic nature, intramuscular administration of such active substance solutions is painful and cellularly damaging;
This is detrimental to the desired cell regeneration effect.

西独国特許第1076888号の方法で得られる細胞呼
吸刺激剤の、この望ましくない過度の塩含量は、等張の
あるいは極く僅かだけ高張の活性剤溶液を得るために、
種々の方法、例えば透析、限外濾過、イオン交換または
ゲル濾過により、原理的には下げることができるはずで
ある。しかし、これらの方法は全て、全く役立たないか
、役立ったとしても非常に不満足な結果しか得られない
。西独国特許第2512936号によれば、問題の細胞
呼吸刺激活性物質溶液の脱塩または部分的脱塩は、非常
に特殊なゲル濾過法により、即ち、高濃度の塩を含有す
るこの細胞呼吸刺激活性物質溶液を、穴のあいた遠心分
離ドラム上に設置された架橋度の高いゲルからなる濾過
層と、溶液とゲル容量の比か1 : 2.5〜1.4.
5となる様な割合で接触させることにより達成すること
ができるという。この西独国特許には、原理的に、部分
的脱塩が可能であるその他の既知の方法の欠点も詳細に
記載されている。この西独国特許第2512936号に
記載された方法を含む全ての可能な方法は、原則的に非
常に希釈された溶液にして行なわなければならないため
5、分離効率が非常に低く、非常に大型の装置を使用し
なければならないという欠点かある。
This undesirably excessive salt content of the cellular respiration stimulant obtained by the process of DE 1076888 is particularly important in order to obtain an isotonic or only slightly hypertonic active agent solution.
It could in principle be lowered by various methods, such as dialysis, ultrafiltration, ion exchange or gel filtration. However, all these methods are either completely useless or, if they are useful, give very unsatisfactory results. According to DE 2512936, the desalination or partial desalination of the cellular respiration stimulating active substance solutions in question can be carried out by a very special gel filtration method, i.e. this cellular respiration stimulating active substance solution containing a high concentration of salts. The active substance solution is passed through a filtration layer made of a highly crosslinked gel placed on a perforated centrifugal drum at a solution to gel volume ratio of 1:2.5 to 1.4.
It is said that this can be achieved by contacting them at a ratio of 5. This West German patent also details the drawbacks of other known processes, which in principle allow partial desalination. All possible methods, including the method described in this West German patent no. The disadvantage is that it requires the use of equipment.

更に、所望の無機塩類の分離除去と同時に、分離媒体へ
の細胞呼吸刺激活性剤の吸着が起るため、多かれ少なか
れ活性物質が失なわれる。これらの方法を実施する場合
に絶対必要となるゲルおよびイオン交換樹脂の再生のた
め、非常に時間かかかり、また非連続操作だけか可能で
あり、更に、分離条件を絶えず変えなければならない。
Furthermore, simultaneous removal of the desired inorganic salts results in an adsorption of the cellular respiration-stimulating active agent onto the separation medium, so that more or less active substance is lost. The regeneration of the gel and ion exchange resin, which is absolutely necessary when carrying out these methods, is very time consuming and only batchwise operation is possible, and furthermore the separation conditions have to be constantly changed.

西独国特許第1076888号に記載の細胞呼吸刺激活
性物質の調製法は、上記の理由で、種々の欠点を有し、
これらの欠点は、過度の高含量の不都合な無機塩類を分
離するための西独国特許第2512936号に記載され
た操作を施しても解消することかできなかった。
The method for preparing cellular respiration-stimulating active substances described in West German Patent No. 1076888 has various drawbacks for the reasons mentioned above.
These disadvantages could not be overcome even by the procedure described in German Patent No. 2,512,936 for separating the excessively high content of undesirable inorganic salts.

従って本発明の目的は、既知の操作法の欠点を持たす、
特に、節用にかつ連続的に実施することができる天然の
細胞呼吸刺激活性物質を得る方法であって、一定の上限
分子量および下限分子量を持った製品が得られる様に完
全に調節することのできる、そして、コントロールされ
た部分的脱塩操作によって細胞呼吸刺激活性剤の溶液が
直接得られる様な新規な方法を提供することにある。
It is therefore an object of the present invention to solve the problems of known methods of operation.
In particular, a process for obtaining natural cellular respiration-stimulating active substances which can be carried out economically and continuously and which can be completely adjusted to obtain products with a constant upper and lower molecular weight limit. The object of the present invention is to provide a novel method in which a solution of a cell respiration stimulating active agent can be directly obtained by a controlled partial desalination operation.

牛の血液から細胞刺激活性物質の溶液を得るための本発
明方法は、新鮮な牛の血液から繊維素を除去しく脱繊維
素化)、脱繊維素生血液を溶血させ、この溶血した牛血
液を、約8000ダルトン(Dalcon)以上の分子
量排斥限度を持った限外濾過膜を使った膜限外濾過法に
かけ、分子量約8000ダルトン以下の呼吸刺激活性物
質を含む限外濾過\ 液を集め、この集めた限外濾過液を、分子量約300ダ
ルトンまでの透過性を有する電気透析膜を使った電気透
析法にかけて無機塩類およびその他のイオン性低分子量
物質を細胞呼吸刺激活性物質溶液から部分的に分離する
工程からなっている。
The method of the present invention for obtaining a solution of a cell-stimulating active substance from bovine blood consists of removing cellulose from fresh bovine blood (defibrinization), hemolyzing the defibrinated live blood, and dissolving the hemolysed bovine blood. is subjected to membrane ultrafiltration using an ultrafiltration membrane with a molecular weight exclusion limit of about 8,000 Daltons or more, and the ultrafiltrated liquid containing a respiratory stimulant active substance with a molecular weight of about 8,000 Daltons or less is collected, The collected ultrafiltrate is subjected to electrodialysis using an electrodialysis membrane with a permeability up to about 300 daltons to partially remove inorganic salts and other ionic low molecular weight substances from the cell respiration stimulating active substance solution. It consists of a process of separation.

本発明方法により、西独国特許第1076888号の方
法による場合と基本的に同じ細胞呼吸刺激活性を有する
が、限外濾過および電気透析を併用することによる各種
の有意な改善点を持った治療物質が得られる。限外濾過
により、蛋白質およびその他の高分子量物質が明瞭に分
離された均一な製品が得られ、また同時に、所要時間、
所要空間、および収量の点で経済的にも改善がもたらさ
れる。
By the method of the present invention, therapeutic substances which have basically the same cellular respiration stimulating activity as by the method of West German Patent No. 1076888, but with various significant improvements due to the combined use of ultrafiltration and electrodialysis, can be obtained. is obtained. Ultrafiltration provides a homogeneous product with clear separation of proteins and other high molecular weight substances, while at the same time reducing the time required.
There is also an economical improvement in terms of space requirements and yield.

限外濾過によって得られた溶液をある程度容器を減らし
た後、電気透析にかけるのに使用できるということは、
1つには、比較的高濃度の溶液、例えは固形物含量が1
5〜30重量%である溶液を使用でき、従って、イオン
交換膜で初めの相の後での、実際」一定常的な平衡にお
いて処理することかできるという長所を有する。電流密
度、温度および時間などのパラメータを変えることによ
って、一定の方向に脱塩操作をコントロールし、有機物
質の損失が最少となる様に調節することかできる。
The fact that the solution obtained by ultrafiltration can be used for electrodialysis after reducing the container size to some extent means that
On the one hand, relatively highly concentrated solutions, e.g. solids content of 1
It has the advantage that solutions which are between 5 and 30% by weight can be used and thus can be treated in a virtually constant equilibrium after the initial phase with an ion exchange membrane. By varying parameters such as current density, temperature and time, the desalination operation can be controlled in a certain direction and adjusted to minimize the loss of organic matter.

個々の脱塩の程度は、導電率の連続測定または浸透圧の
連続測定により極めて簡単に知ることかできる。
The individual degree of desalination can be determined very easily by continuous measurement of electrical conductivity or continuous measurement of osmotic pressure.

本発明方法における、既知のまたは本発明の要旨となる
操作は、特に指摘しない限り、次の様にして行なう: 出発物質として用いられる牛の血液を、採血直後に、強
力に攪拌しく所望ならば冷却して)、生成した繊維素(
フィブリン)を濾過して脱繊維素化する。この操作は、
通常屠殺場で直接行なう。
The known or inventive operations in the process of the invention, unless otherwise specified, are carried out as follows: The bovine blood used as starting material is stirred vigorously and, if desired, immediately after collection. cooling), the generated cellulose (
Fibrin) is filtered and defibrinated. This operation
This is usually done directly at the slaughterhouse.

脱繊維素生血液した後、この血液を所望ならば保存剤と
混合した後、直ちに冷凍し、使用するまで冷凍条件下で
貯蔵する。
After defibrinated raw blood, the blood, if desired, is mixed with a preservative and immediately frozen and stored under frozen conditions until use.

細胞呼吸刺激活性物質を遊離させるには、繊維素を除去
した血液、または貯蔵のために冷凍した血液を溶血、即
ち赤血球を崩壊しなければならなし)。この目的のため
、血球の細胞膜をなんらかの方法で破壊する必要かある
To liberate cellular respiration-stimulating active substances, the defibrinated blood or blood frozen for storage must be hemolyzed, ie the red blood cells must be disrupted). For this purpose, it is necessary to destroy the cell membranes of blood cells in some way.

この様な破壊は、化学的にも機械的にも行なうことがで
きる。化学的に溶血させるには、例えは、細胞膜を攻撃
して破壊する酵素または細菌で、脱繊維素血液を処理す
る。機械的溶面は、細胞内の浸透圧を上昇させる物質、
例えば水またはエタノール、ジエチルエーテルあるいは
アセトンの様す有機溶媒を加えることにより達成するこ
とができ、こうすることによって細胞膜が破壊される。
Such destruction can be carried out both chemically and mechanically. To chemically lyse the blood, for example, defibrinated blood is treated with enzymes or bacteria that attack and destroy cell membranes. Mechanical solubility is a substance that increases intracellular osmotic pressure,
This can be achieved, for example, by adding water or an organic solvent such as ethanol, diethyl ether or acetone, thereby disrupting the cell membrane.

あるいはまた、細胞膜に侵入する比較的大きな氷の結晶
が生成し得る様に血液を徐々に冷却するいわゆる[氷溶
血J (ice −hemolysis)によって溶血
させることもできる。溶血後、事実上全ての赤血球が破
壊され、そこに含まれていたものか遊離する。
Alternatively, the blood can be lysed by gradual cooling, so-called ice-hemolysis, so that relatively large ice crystals can form that penetrate the cell membrane. After hemolysis, virtually all the red blood cells are destroyed and their contents are liberated.

溶血反応は、保存剤の存在下でも行なうことができる。The hemolytic reaction can also be carried out in the presence of a preservative.

この様にして得た血液は、本発明方法の第一工程、即ち
約8000ダルトン、好ましくは約5000ダルトン以
上の分子量の排斥制限を持った膜を使っての限外1濾過
操作にかけることかできる。
The blood thus obtained is subjected to the first step of the method of the invention, namely an ultrafiltration operation using a membrane with an exclusion limit of molecular weight of about 8000 Daltons, preferably about 5000 Daltons or more. can.

限外濾過に使用される膜は各種の物質であってよいが、
トリアセチルセルロースまたは親水性ポリオレフィン膜
か好ましい。
Membranes used for ultrafiltration can be of a variety of materials, including:
Triacetylcellulose or hydrophilic polyolefin membranes are preferred.

8000ダルトン以上の分子量の排斥制限を持った、上
記の性質の膜は、分子=2ooooのデキストランを1
00%分離し、分子(810000のデキストランを呼
称85%分離し、分子fit6000のポリエチレング
リコールを呼称50係分離し、分子量342のラクトー
スを呼称1OeI)分離するというその透過性によって
特性づけられる。
A membrane of the above nature with an exclusion limit of molecular weight of 8000 daltons or more can contain 1 molecule of dextran of 2oooo.
It is characterized by its permeability to separate molecules (dextran with a molecular weight of 810,000 with a nominal separation of 85%, polyethylene glycol with a molecular weight of 6,000 with a nominal separation of 50%, and lactose with a molecular weight of 342 with a nominal separation of 1 OeI).

約5000ダルトン以上の分子量の排斥制限を持った膜
は、その透過性に関し、分子tloo00のデキストラ
ンの100%分離、分子it 6000のポリエチレン
グリコールの呼称97%分離、分子量1000のポリエ
チレングリコールの呼称30%分離によって特徴づけら
れる。
A membrane with an exclusion limit of about 5,000 daltons or more has a permeability of 100% separation for dextran of molecule tloo00, 97% separation of polyethylene glycol of molecule it 6000, and 30% separation of polyethylene glycol of molecular weight 1000. Characterized by separation.

脱繊維素および溶血後、上記の性質を有する膜を使用し
て限外濾過して得た溶液は、分子量の上限が約8000
ダルトンまたは約5000ダルトンの完成品である。
After defibrillation and hemolysis, the solution obtained by ultrafiltration using a membrane with the above properties has an upper limit of molecular weight of about 8000.
Dalton or approximately 5000 Dalton finished product.

連続的に多数工程限外濾過を行なうには、第1図に示し
、実施例1に詳述した4つのユニットからなる限外濾過
装置を使用するのか好都合である。
In order to carry out continuous multi-step ultrafiltration, it is convenient to use an ultrafiltration apparatus consisting of four units as shown in FIG. 1 and detailed in Example 1.

この装置は131型と呼ばれる限外濾過モデュールを含
んでおり、これニー”)い、ては1)aterson 
CandyInternational  Ltd  
 Reverse  Osmosisr)ivisio
n、 Whitchurch、 Great Rrit
ainのパンフレットBPL 3/73 2Mに、およ
び西独国特許出願第2065812号に詳細に記載され
ている。
This device contains an ultrafiltration module called Model 131, which is 1) aterson
Candy International Ltd
Reverse Osmosisr)ivisio
n, Whitchurch, Great Writ
ain in the brochure BPL 3/73 2M and in West German Patent Application No. 2065812.

この特別の装置は、約8000ダルトン以上の分子量の
排斥制限を有する膜を使用している。しがしこの装置は
、これとは異なった排斥制限、例えは約5000ダルト
ン以上の分子量の排斥制限を持った膜も、同様に取り付
けることかできる。
This particular device uses a membrane with a molecular weight exclusion limit of about 8000 Daltons or greater. However, the device can be similarly fitted with membranes having different expulsion limits, such as molecular weight expulsion limits of about 5000 Daltons or more.

この限外濾過装置は、例えは8〜10バールの圧力を使
用し、限外濾過しようとする溶液を例えば18〜22℃
に冷却して操作する。この装置には、通常の保存剤、例
えは4−ヒドロキシ安息香酸メチルエステルまたは4−
ヒドロキシ安息香酸プロピルエステルのアルコール溶液
(これらの2種の保存剤の混合物のエタノール溶液が好
ましい)を入れて保存しておいた牛の血液溶液を好適に
入れるこ吉かできる。
This ultrafiltration device uses a pressure of e.g. 8 to 10 bar and filters the solution to be ultrafiltered e.g.
Cool and operate. The device contains conventional preservatives such as 4-hydroxybenzoic acid methyl ester or 4-hydroxybenzoic acid methyl ester.
A bovine blood solution that has been preserved in an alcoholic solution of hydroxybenzoic acid propyl ester (preferably an ethanolic solution of a mixture of these two preservatives) can be added.

連続多数工程(multi −5tep)限外濾過の第
一工程と最終工程の間、濃縮された、そして再び限外瀘
過に付される血液溶液の希釈剤として、排出された限外
濾過液の量か補なわれる様な量の保存剤溶液を添加し、
次の工程で再び限外濾過しようとする血液溶液のレベル
をほぼ一定に保つのが好ましい。この連続多数工程限外
濾過法の最後の工程を除く全ての工程を、限外濾過しよ
うとする血液溶液のレベルをほぼ一定に保って行なうの
か好ましい。最終工程に於いてのみ、最後がら2番目の
工程からの血液溶液を希釈せず、この容量減少■で血液
含有物(load)が全て透析される様にする。
During the first and final steps of multi-5tep ultrafiltration, the drained ultrafiltrate is used as a diluent for the concentrated and re-ultrafiltrated blood solution. Add an amount of preservative solution to compensate for the
Preferably, the level of the blood solution to be ultrafiltered again in the next step is kept approximately constant. Preferably, all steps but the last step of this continuous multi-step ultrafiltration process are carried out while the level of the blood solution to be ultrafiltered is maintained approximately constant. Only in the final step do not dilute the blood solution from the penultimate step, allowing this volume reduction to dialyze all the blood load.

最終的に透析により生じた憂廃血液は捨てる。Finally, waste blood generated from dialysis is discarded.

蛋白質類および比較的高分子量の物質を含まない、限外
濾過によって得られた濾過液を、減圧下、40℃を超え
ない温度での減容情工程に付す。この溶液を、゛例えば
30〜35℃の温度で、減圧下で蒸留することにより、
その容量を、20℃に於ける比重が110〜1.15 
g−/mlの範囲に入る様に減少させる。この濃縮の目
的は、1つには、場合により溶血のために使用した有機
溶媒、または特定の保存剤のために必要であった有機溶
媒をその保存剤と一緒に除去する為であり、第2には、
本発明方法の次の電気透析工程を実施するのに適した乾
燥含量、例えは180〜230’rK//mlの乾燥含
量まで、限外p過溶液を濃縮するためである。
The filtrate obtained by ultrafiltration, which is free of proteins and relatively high molecular weight substances, is subjected to a volume reduction step at a temperature not exceeding 40° C. under reduced pressure. By distilling this solution under reduced pressure at a temperature of, for example, 30 to 35°C,
Its capacity is determined by the specific gravity of 110 to 1.15 at 20°C.
g-/ml. The purpose of this concentration is, in part, to remove the organic solvent used for hemolysis, or which was needed for a particular preservative, together with the preservative; In 2,
This is to concentrate the ultrap-permeate solution to a dry content suitable for carrying out the next electrodialysis step of the process of the invention, for example a dry content of 180-230'rK//ml.

この濃縮によって沈殿した保存剤は瀘過により分離する
のが最もよいが、溶液に残存している可能性のある保存
剤は、溶液のpH値を調節することにより、例えばpl
−(5まで生計の濃塩酸を加えることによって沈殿させ
ることかでき、次いでこれを濾過する。この濃縮に必要
な蒸留は、適当な減圧エバポレーターを使用して行なう
のか好都合である。
Preservatives precipitated by this concentration are best separated by filtration, but any preservatives that may remain in solution can be removed by adjusting the pH value of the solution, e.g.
-(5) can be precipitated by adding concentrated hydrochloric acid, which is then filtered. The distillation necessary for this concentration is conveniently carried out using a suitable vacuum evaporator.

上の濃縮で得た濃縮液を、本発明の第2の工程、即ち、
そこに含有されている無機塩類を部分的に分離除去し、
250〜550ミリオスモル(mo S mo 1)の
浸透圧、40〜75 mS/c+nの導電率または20
℃に於ける比重が1.05〜1.08!i’/mlであ
る等張ないしやや高張の溶液を得るための、分子量約3
00クルトン、好ましくは分子量約400ダルトンまで
の膜透過率を持った、カチオン−およびアニオン交換膜
を交互に配置したセルスタッり(cell 5tack
)を用いた電気透析工程にかける。
The concentrate obtained in the above concentration is subjected to the second step of the present invention, that is,
The inorganic salts contained therein are partially separated and removed,
Osmotic pressure of 250-550 milliosmoles (mo S mo 1), conductivity of 40-75 mS/c+n or 20
Specific gravity at ℃ is 1.05-1.08! molecular weight of about 3 to obtain an isotonic to slightly hypertonic solution of i'/ml.
Cell stacks consisting of alternating cation- and anion-exchange membranes with membrane permeability up to 0.00 Daltons, preferably a molecular weight of about 400 Daltons.
) to an electrodialysis process.

この目的に使用される膜は、約300までの分子量また
は、好ましくは約400までの分子量を持った無機イオ
ンまたは有機イオンは透過するが、オリゴペプチドおよ
び比較的大きい分子は透過しないことで特徴つけられる
Membranes used for this purpose are characterized by the permeability of inorganic or organic ions with a molecular weight of up to about 300, or preferably up to about 400, but not of oligopeptides and relatively large molecules. It will be done.

この様な膜を使用すると、活性物質に対して、約300
ダルトン、または好ましくは約400ダルトンの分子量
透過性についての下限が与えられる。
Using such a membrane, the active substance has a
A lower limit for molecular weight permeability of Daltons, or preferably about 400 Daltons, is given.

電気透析は、本発明のこの工程を、例えは、5〜70m
A/−遊離膜(free membrane)断面、好
ましくは20〜50mkl−遊離膜断面の電流密度、膜
ペア (membrane Pa1r)当たり0.2〜
2V。
Electrodialysis can perform this step of the invention, for example, from 5 to 70 m
A/-free membrane cross section, preferably 20 to 50 mkl-current density of free membrane cross section, 0.2 to 0.2 per membrane pair (membrane Pa1r)
2V.

好ましくは膜ペア当たり0.5〜IVの直流電圧、およ
び5〜30℃の温度範囲で行なうといった様に、相当す
る水性濃縮液から無機塩類を分離する際の通常の条件下
で行なうことができる。
It can be carried out under conditions customary for the separation of inorganic salts from corresponding aqueous concentrates, such as preferably at a DC voltage of 0.5 to IV per membrane pair and a temperature range of 5 to 30°C. .

上記の電気透析工程は、特定の所望の透過性を持った、
カチオン−およびアニオン−交換膜を交互に配置したセ
ルスタックの通常の電気透析装置を用いて行なうことが
できる。例えば第2図に記載の、後に詳述する電気透析
装置が用いられる。
The electrodialysis process described above has a specific desired permeability.
This can be carried out using a conventional electrodialysis apparatus of cell stacks with alternating cation- and anion-exchange membranes. For example, an electrodialysis device shown in FIG. 2 and described in detail later is used.

これは、Be r gho f GmbH1T↓i3b
ingen、西独国のBEL2型と呼ばれる装置である
。この装置の膜は、分子量約400ダルトンまでの膜透
過性を有する。この電気透析装置の1ルスタツクについ
ては、西独国特許出願公告第2946284号に詳細に
記載されている。
This is Ber gho f GmbH1T↓i3b
ingen, a West German device called the BEL2 type. The membrane of this device has a membrane permeability up to a molecular weight of about 400 Daltons. A single stack of this electrodialysis device is described in detail in German Patent Application No. 2946284.

本発明方法によって得られる細胞呼吸刺激活性物質を含
む水溶液は、所望の投与型態に応じて、直接治療に用い
ることもでき、また所望により、パイロジエンを含まな
い水で更に希釈してもよく、あるいはまた、要すれは更
に濃縮してもよい、従って、対応する医薬製剤は、例え
ば溶液、エーロゾル、ペースト、クリームまたはゲルな
どとすることかできる。この細胞呼吸刺激活性は、既述
した様に、西独間特許第1076888号により得られ
る物質と本質的に同じである。従って、この様な医薬製
剤は、特に、治療過程の促進およびコントロールに使用
される。この目的に使用される活性物質の投与量は、投
与方法および処置しようとする状態の性質およびその程
度によって変わる。
Depending on the desired mode of administration, the aqueous solutions containing cellular respiration-stimulating active substances obtained by the method of the invention can also be used directly for treatment and, if desired, can be further diluted with pyrodiene-free water. Alternatively, it may be further concentrated if necessary, so that the corresponding pharmaceutical formulations can be, for example, solutions, aerosols, pastes, creams or gels. This cell respiration stimulating activity is essentially the same as that of the substance obtained in West German Patent No. 1076888, as already mentioned. Such pharmaceutical preparations are therefore used in particular for promoting and controlling the therapeutic process. The dosage of active substance used for this purpose will vary depending on the method of administration and the nature and severity of the condition to be treated.

本発明方法によって得られる細胞呼吸刺激活性物質で冶
療される傷害は、例えば火傷、潰瘍、壊痘などである。
Injuries which can be treated with the cellular respiration stimulating active substances obtained by the method of the invention are, for example, burns, ulcers, ganglia and the like.

この目的の為、活性物質は静脈、腹腔内、筋肉内投与す
ることかでき、また開放側の場合は、局所投与してもよ
い。ヒトにおける潰瘍の治療などにおいて注射で冶療す
る場合、1日当たり200〜soomyの活性物質を静
脈内または動脈内投与し、その後フォローアツプ治療と
して、1日当たり活性物質80〜200 ”I!? を
静脈内または筋肉内投与する。
For this purpose, the active substance can be administered intravenously, intraperitoneally, intramuscularly or, in the case of an open side, locally. In the case of injection therapy, such as in the treatment of ulcers in humans, 200 to 200 mm of the active substance per day is administered intravenously or intraarterially, and then as a follow-up treatment, 80 to 200 ``I!?'' of the active substance per day is administered intravenously. Administer intravenously or intramuscularly.

この活性物質のこの用途およびその他の用途にツイテハ
、ソ)Ii ’:3 バー −4i、ぐG、 l5ir
sfelden、 スイス国のパンフレット’ 5ol
coseryl  reaktiviertden  
gesLorten  Energiestoffwe
chsel  derZelle@(発行番号: 5s
−cr−r/d−6,sl)を参照することかできる。
This and other uses of this active substance include:
sfelden, Swiss National Brochure' 5ol
coseryl reaktiviertden
gesLorten Energies toffwe
chsel der Zelle @ (Publication number: 5s
-cr-r/d-6, sl).

本発明方法を首尾よ〈実施するために重要な事は、牛の
血液抽出物の生物活性が、特に限外濾過、更に特に電気
透析において影響をうけないということである。その方
法を実施する際に、もとの生物活性が完全に保持されな
けれはならない。本発明方法によれば、少なくとも、西
独間特許第1076888号によって得られる製品の生
物活性に相当する血液抽出物〔エキス)またはそれ以上
のものが得られるはすである。
It is important for the successful implementation of the method of the invention that the biological activity of the bovine blood extract is unaffected, especially during ultrafiltration, and more especially during electrodialysis. When carrying out the method, the original biological activity must be fully preserved. According to the method of the invention, a blood extract is obtained which corresponds at least to the biological activity of the product obtained according to West German Patent No. 1,076,888 or even more.

本発明方法に従って実施される限外濾過工程において起
り得る生物活性の損失の危険は、少ないと考えられる:
何故なら、この工程では、蛋白質類および比較的高分子
量の物質だけが分離され、相当する実験によって測定さ
れる生物活性の大部分は、本発明方法によって回収可能
な細胞呼吸刺激活性物質の比較的低分子量範囲にあるか
らである。限外濾過は、西独間特許第1076888号
の方法に従って実施される単純な透析の場合以上に、血
液抽出物に影響を与えないということも考えられる。従
って本発明の限外濾過による、生物活性に及ぼすかも知
れない影響についての比較試験は必要ではない。
The risk of possible loss of biological activity in the ultrafiltration step carried out according to the method of the invention is considered to be low:
This is because, in this step, only proteins and substances of relatively high molecular weight are separated, and most of the biological activity measured by corresponding experiments is due to the relatively small amount of cellular respiration-stimulating active substances that can be recovered by the method of the present invention. This is because it is in a low molecular weight range. It is also conceivable that ultrafiltration does not affect the blood extract any more than does simple dialysis carried out according to the method of DE 1076888. Comparative tests of the possible effects on biological activity of the ultrafiltration of the present invention are therefore not necessary.

同様に、限外濾過に続く溶液の濃縮も、この血液抽出物
の生物活性に何らの影響も与えない条件下で行なわれる
。従って、この工程についても比較試験は必要でない。
Similarly, the concentration of the solution following ultrafiltration is also carried out under conditions that do not have any effect on the biological activity of this blood extract. Therefore, no comparative tests are necessary for this step either.

一方、活性物質濃縮物に含まれている無機塩類の電忽透
析による分離は、血液抽出物の生物活性に悪影響を与え
る可能性がある。ここでは比較的多量の塩類を分離しな
くてはならず、また、分離すべき塩類の分子量は、本発
明方法によって得られる細胞呼吸刺激活性物質の分子量
の下限に比較的近い。従って、電気透析によって得られ
た活性物質溶液の生物活性が、出発物質である濃縮物と
比較して、影響を受けたかどうかを適当な方法で調べる
必要がある。また、電気透析によって、出発物質である
濃縮物と比較して、物理的諸性状がどの様に影響を受け
るか、そして無機塩類以外のどの様な重要な物質が除去
されるかも、調べなければならないのは当然である。
On the other hand, separation of inorganic salts contained in active substance concentrates by electrodialysis may have a negative effect on the biological activity of blood extracts. A relatively large amount of salts has to be separated here, and the molecular weight of the salts to be separated is relatively close to the lower limit of the molecular weight of the cellular respiration-stimulating active substance obtained by the method of the invention. It is therefore necessary to investigate in a suitable manner whether the biological activity of the active substance solution obtained by electrodialysis is affected compared to the starting material concentrate. It is also necessary to investigate how the physical properties are affected by electrodialysis compared to the starting material concentrate, and what important substances other than inorganic salts are removed. Of course it doesn't.

個々の生物活性レベル比較試験は、以下の3っの方法に
より行なわれる: a)炭酸塩引きぬき(carbonate withd
rawal)による損傷後の繊維芽細胞に対する成長刺
激活性の試験(繊維芽細胞活性を与える)、 b)ワールブルグによる02代謝増強活性の試験(ワー
ルブルグ活性を与える)、およびC)標準化された、ラ
ットにおける背の火傷における傷治癒促進活性の試験(
生理食塩水と対比した時の傷の冶鍮時間を与える)。
Individual bioactivity level comparison tests are carried out in three ways: a) carbonate with
b) testing of 02 metabolism enhancing activity by Warburg (giving Warburg activity); and C) standardized, Test for wound healing promotion activity in back burns (
(gives the healing time of the wound when contrasted with saline).

最初の2つのインビトロ試験は、全ての試験条件下で完
全な生物活性が保持されていること、および細胞に損傷
を与える塩類かもはや存在しないので、むしろ部分的に
改善されていることを示した。傷の治癒試験は、本発明
方法により得られた部分的脱塩血液抽出物は耐容性が良
好であるという期待通りの結果を示した。
The first two in vitro tests showed that full biological activity was retained under all test conditions and that it was rather partially improved since cell-damaging salts were no longer present. . Wound healing tests showed the expected results that the partially desalinated blood extract obtained by the method of the invention was well tolerated.

これらの全ての比較において、非脱塩出発濃縮物および
部分的に脱塩した抽出物の活性は、勿論標準化した条件
■で、即ち、同じ乾燥含量ではないが、同じ有機活性物
質含量の溶液を使用して行なう。このため、比較しよう
とする溶液は常に、一定の総窒素含量、例えば注射溶液
1ml当たり窒素含i 1 m9となる様に希釈する。
In all these comparisons, the activities of the non-desalted starting concentrate and the partially desalted extract are of course under standardized conditions, i.e. solutions of the same organic active substance content, but not the same dry content. Do it using For this reason, the solutions to be compared are always diluted to a constant total nitrogen content, for example i 1 m9 nitrogen per ml of injection solution.

この総窒素含量は、個々の溶液中の有機物質の含有量を
表わしていると考えられる。勿論、治療目的に使用され
る溶液についても正確に同様にして試験し、この場合、
含有量は更にワールブルグ試験および繊維芽細胞試験に
よっても調べる。
This total nitrogen content is believed to represent the content of organic substances in each solution. Of course, solutions used for therapeutic purposes can also be tested in exactly the same way;
The content is also determined by the Warburg test and the fibroblast test.

乾燥重量、導電性、浸透圧および灰分常置の変化を比較
試験によって調べる。出発物質濃縮物と、低分子量物質
、即ち主としてアニオン類およびその他の低分子量物質
を分離除去して得られたものとの違い(変化)は、パラ
メーターおよび特徴的な物質についての化学分析を比較
することにより調べる。
Changes in dry weight, conductivity, osmotic pressure and ash content are investigated by comparative tests. Differences (changes) between the starting material concentrate and that obtained by separating and removing low molecular weight substances, i.e. mainly anions and other low molecular weight substances, are compared by chemical analysis for parameters and characteristic substances. Find out by

2種の出発濃縮物および本発明方法で得られた8種の部
分的脱塩抽出物について行なった比較実験の結果を、実
施例の表1に示す。この表から、無機塩類のほかに、低
級カルボニック・アシッドおよびアミノ酸か除去されて
おり、しかし、生物活性は完全に保持されていることが
わかる。
The results of comparative experiments carried out on two starting concentrates and eight partially desalted extracts obtained by the process of the invention are shown in Table 1 of the Examples. From this table, it can be seen that in addition to inorganic salts, lower carbonic acids and amino acids have been removed, but the biological activity is completely retained.

本発明方法に従って行なった電気透析は、血液抽出物の
組成に、その有機成分に関して、有意な変化を与えない
、あるいは与えたとしても極く僅かであるということを
示す為に、高圧液体クロマトグラフィーを行なった。得
られた出発濃縮物と部分的脱塩抽出物のクロマトグラム
は、常に同じであった。
In order to show that electrodialysis carried out according to the method of the invention does not significantly change, or only slightly, the composition of the blood extract with respect to its organic components, high-pressure liquid chromatography I did this. The chromatograms of the starting concentrate and partially desalted extract obtained were always the same.

以下に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明する。The present invention will be explained in more detail with reference to Examples below.

実施例 限外濾過 前記したタイプの限外濾過装置(PatersonCa
ndy International Ltd、(7)
B 1 )を使用する。この4工程限外濾過装置および
その機能は第1図から理解することかできる。
Example Ultrafiltration Ultrafiltration apparatus of the type described above (Paterson Ca
ndy International Ltd, (7)
B1) is used. This four-stage ultrafiltration device and its function can be understood from FIG.

全4工程装置の各工程(工程1から4)には、1.7M
の濾過表面を持った2個の限外濾過チューブモジュール
(U工〜U4)が備えである。その膜は既述した透過特
性、即ち約8000ダルトン以上の分子量透過限度を持
ったアセチルセルロースからなっている。圧伝達ポンプ
P1〜P4は、10/<−ルの圧力で約1oOo  /
/hのキャパシティーを持ったロータリーピストンポン
プである。供給ポンプP5〜P7および排出ポンプP8
〜P1oは、2〜201/hの範囲で自由に調節できる
適量(dosage)ポンプである。4つのタンクT0
〜T4は全て、各々約300ノ含有する。添加された溶
液は、冷却水により冷却したクーラーに工〜に4て18
℃の温度に保持される。PIは全て圧表示手段、Flは
全て流速表示手段を表わしている。その他の略号は以下
の意義を有する: 】3−脱繊維表化および溶面した血液溶液KL−保存剤
溶液 UF−限外濾過液 Al3−崎発面液 装置の運転開始に当たり、タンクT、 (工程1)、T
 (工程2)およびT3(工程3)のそれぞれに、4−
ヒドロキシ安息香酸メチルエステル゛と4−ヒドロキシ
安息香酸プロピルエステルの9 : I C重量/重量
)混合物の2%(重量/容量)アルコール溶液を、保存
剤として、15容量%含有している脱繊維素化し、溶血
した牛の血液Bを250ノつつ供給する。次いで圧伝達
ポンプP□〜P3を作動させると限外濾過液UFが流出
しはじめ、これと同じ割合でタンクT工〜T3の内容物
が減少していく。タンクTl〜T3の含量が約150ノ
になったら、直ちに供給ポンプP5〜P7および排出ポ
ンプP8〜P1oを作動させる。既述した101/h、
保存剤含有脱繊維素および溶血牛血液をポンプP5て供
給する。同時に、4−ヒドロキシ安息香酸メチルエステ
ルと4−ヒドロキシ安息香酸プロピルエステルの9=1
(重量/重量)混合物の1%(重量/容量)アルコール
溶液15容量%と水85容量%の101/hの保存剤溶
液KI−を、供給ポンプP6およびPIにより、タンク
T2およびT3のそれぞれに供給する。これにより限外
j濾過された充填物(I oad )を希釈する。排出
ポンプP8〜P1oを調節してタンクT1〜T3のレベ
ルが150ノで一定に保たれる様にする。
Each step (steps 1 to 4) of the total 4-step equipment requires 1.7M
Two ultrafiltration tube modules (U-U4) with filtration surfaces are provided. The membrane is comprised of acetylcellulose having the permeability properties previously described, ie, a molecular weight permeation limit of about 8000 Daltons or more. The pressure transmission pumps P1 to P4 have a pressure of about 1oOo /
It is a rotary piston pump with a capacity of /h. Supply pumps P5-P7 and discharge pump P8
~P1o is a dosage pump that can be freely adjusted in the range of 2 to 201/h. 4 tanks T0
~T4 all contain approximately 300 min each. The added solution was placed in a cooler cooled by cooling water for 4 to 18 hours.
The temperature is maintained at ℃. All PIs represent pressure display means, and all Fl represent flow rate display means. Other abbreviations have the following meanings: ] 3 - Defibrillated and dissolved blood solution KL - Preservative solution UF - Ultrafiltrate Al Step 1), T
(Step 2) and T3 (Step 3), 4-
Defibrillation containing 15% by volume of a 2% (weight/volume) alcohol solution of a 9:IC weight/weight) mixture of hydroxybenzoic acid methyl ester and 4-hydroxybenzoic acid propyl ester as a preservative. 250 doses of hemolyzed bovine blood B were supplied. Next, when the pressure transmission pumps P□ to P3 are activated, the ultrafiltrate UF begins to flow out, and the contents of the tanks T to T3 decrease at the same rate. As soon as the content of the tanks Tl-T3 reaches approximately 150 nos, feed pumps P5-P7 and discharge pumps P8-P1o are activated. 101/h already mentioned,
Defibrinated and hemolysed bovine blood containing preservative is supplied by pump P5. At the same time, 9=1 of 4-hydroxybenzoic acid methyl ester and 4-hydroxybenzoic acid propyl ester
(w/w) 1% (wt/vol) of the mixture 101/h of preservative solution KI- of 15 vol.% alcohol solution and 85 vol. % water is added to tanks T2 and T3, respectively, by feed pumps P6 and PI. supply This dilutes the ultrafiltered packing (I oad ). Adjust the discharge pumps P8-P1o so that the level in the tanks T1-T3 remains constant at 150 rpm.

それにより、タンクT2およびT3の各々に、個々の限
外濾過チューブモジュールU2およびU3から流出する
限外濾過液UFの量が補われ、一定レベルの血液充填物
が保持される様に、希釈剤K Lを供給する。タンクT
工も血液充填物を同じレベルに保つ。タンクT4だけは
、限外濾過チューブモジュールU4から流出する限外濾
過液の量たけ、この連続多数工程限外濾過法を実施する
間に、血液充填物のレベルが下がる。というのは、ここ
では血液充填物のレベルを先の工程と同じレベルに保つ
ために希釈剤を添加しないからである。
Thereby, each of the tanks T2 and T3 is supplemented with the amount of ultrafiltrate UF flowing out from the individual ultrafiltration tube modules U2 and U3, and a diluent is added so that a constant level of blood filling is maintained. Supply KL. Tank T
The technique also keeps the blood filling at the same level. Only in tank T4 is the blood fill level reduced during the performance of this continuous multi-step ultrafiltration process by the amount of ultrafiltrate exiting ultrafiltration tube module U4. This is because no diluent is added here to keep the blood fill level at the same level as in the previous step.

工程3からタンクT4(工程4)に約120ノの溶液が
供給されたら、直ちに圧伝達ポンプP4のスイッチを入
れる。このタンクT4 の流水路から排出された廃血液
は捨てる。
Immediately after approximately 120 tons of solution is supplied from step 3 to tank T4 (step 4), pressure transmission pump P4 is switched on. The waste blood discharged from the flow channel of this tank T4 is discarded.

約36時間後に4つの工程は全て平衡になる。All four steps reach equilibrium after about 36 hours.

限外濾過チューブモジュールU1〜U4から流出する限
外濾過液UFが本操作の代表的なものであり、これを集
めて次の濃縮工程で使用する。限外濾過液LJ l”の
流出量は工程1では約4.7ノ/b、工程2では約11
ノ/h、工程3では約10.4ノ/h。
The ultrafiltrate UF flowing out from the ultrafiltration tube modules U1 to U4 is typical of this operation, and is collected and used in the next concentration step. The flow rate of the ultrafiltrate LJ l" is approximately 4.7 n/b in step 1 and approximately 11 n/b in step 2.
/h, and in step 3, about 10.4 /h.

工程4では約18ノ/hである。従って移送された限外
濾過液の量は排出ポンプP8では5.3 1/h、排出
ポンプP9では4.3  ノ/h、排出ポンプP1oで
は3.9ノ/hであり、一方、タンクT4(工程4)か
らの廃血液ABの流出は2.IJ2/hである。
In step 4, it is about 18 rpm. Therefore, the amount of ultrafiltrate transferred is 5.3 l/h in the discharge pump P8, 4.3 n/h in the discharge pump P9, and 3.9 n/h in the discharge pump P1o, while the amount in the tank T4 is The outflow of waste blood AB from (step 4) is 2. It is IJ2/h.

濃縮 上記の4段階限外濾過によって得られる限外濾過液UF
を、30ミリバールの減圧下、35℃の温度で蒸留する
ことにより、20℃に於ける比重が1.130 m’i
/mlとなるまで濃縮し、これにより、保存剤液に含ま
れているアルコールを除去する。
Concentration Ultrafiltrate UF obtained by the above four-stage ultrafiltration
was distilled at a temperature of 35°C under a reduced pressure of 30 mbar to give a specific gravity of 1.130 m'i at 20°C.
/ml, thereby removing the alcohol contained in the preservative solution.

この濃縮によって保存剤の大部分は沈殿するのでこれを
沢去する。得られたP液を、pHか5になるまで濃塩酸
少量つって処理すると残存している保存剤が沈殿するの
で、これを再び1戸去する。
This concentration precipitates most of the preservative, which is then washed away. When the obtained P solution is treated with a small amount of concentrated hydrochloric acid until the pH reaches 5, the remaining preservative will precipitate, and this will be removed again.

上記の限外濾過および濃縮によって得た物質を集め、本
発明方法の次の工程である電気透析の出発物質(イσ7
33.10と名つける)として使用する。
The material obtained by the above ultrafiltration and concentration is collected and used as starting material (i.sigma.7) for the next step of the method of the present invention, electrodialysis.
33.10).

限外許過及び濃縮のくり返し 異なった起源の牛の血液を使用し、上記の2つの工程を
くり返して別の出発濃縮物C!350.03と命名)を
得、次の工程の電気透析にかける。
Repeat ultrafiltration and concentration Using bovine blood of different origin, the above two steps are repeated to produce another starting concentrate C! 350.03) and subjected to the next step of electrodialysis.

電気透析 上で得た出発濃縮物意733.10および!350.0
3を、前者は2つの部分に、後者は6つの部分に分け、
それぞれを別々に第2図に示す電気透析装置にかける。
The starting concentration obtained on electrodialysis means 733.10 and! 350.0
3, the former into two parts and the latter into six parts,
Each is separately applied to the electrodialysis apparatus shown in FIG.

この様にして、出発濃縮物!733.IOを使って電気
透析液AI 2およびA13を、出発濃縮物、1350
.03を使って電気透析液層14、A15、パ16、五
17、A18およびA19を得る。
In this way, starting concentrate! 733. Electrodialysates AI 2 and A13 using IO starting concentrate, 1350
.. 03 to obtain electrodialysate layers 14, A15, 16, 17, A18 and A19.

既述したタイプの電気透析装置(Berghof Gm
1tIからのBF、L2)を使用する。この装置および
その機能を第2図に模式的に示した。
Electrodialysis equipment of the type already described (Berghof Gm
BF from 1tI, L2) is used. This device and its functions are schematically shown in FIG.

この装置の中央部分はセルスタックであり、これは7対
からなっており、各々アニオン交換膜aおよびカチオン
交換膜K(タイプCMVおよびAMV)からなり、両側
に最後の膜として、もう1つの膜Kがある(ただし、図
には簡略化の為、3対のイオン交換膜しか描かれていな
い)。使用されている膜は、分子口約400までの透過
性を持っている。このセルスタックには以下の3つの液
体回路が接続している: 脱塩しようとする溶液はタンクT工から、ポンプP0お
よび冷却器に□を経由して循環する。これは文献と同様
、タイルニ−ト(diluate)Dと呼はれる。
The central part of the device is the cell stack, which consists of seven pairs, each consisting of an anion exchange membrane a and a cation exchange membrane K (types CMV and AMV), with one membrane on each side as the last membrane. K (however, only three pairs of ion exchange membranes are shown in the diagram for simplicity). The membrane used has a permeability of up to about 400 molecules. The following three liquid circuits are connected to this cell stack: The solution to be desalinated is circulated from tank T to pump P0 and cooler via □. This is called dilute D, as in the literature.

塩類を取り込み、その濃度を増す水溶液はタンクT2か
らポンプP2および冷却器に2を経由して循環する。こ
の溶液は濃縮液にと呼はれる。
The aqueous solution that picks up the salts and increases their concentration is circulated from tank T2 via pump P2 and cooler. This solution is called a concentrate.

2%(重量/容量)硫酸すl−IJウム水溶液はタンク
T3からポンプP3を経由して循環し、この液は電極洗
浄溶液EI−と呼ぶ。
A 2% (weight/volume) sodium sulfate aqueous solution is circulated from tank T3 via pump P3 and is referred to as electrode cleaning solution EI-.

摩擦によって発生した熱は冷却器に1およびに2によっ
て除去され、かくして溶液は25℃に保たれる。
The heat generated by friction is removed by coolers 1 and 2, thus keeping the solution at 25°C.

導電性測定セルL Fはタイルエート回路の、冷却器に
□ の後に配置されている。濃縮された下降限外濾過液
UKの流量は、2点間調整器kによって調節される。
The conductivity measuring cell LF is placed in the tileate circuit after the cooler. The flow rate of the concentrated descending ultrafiltrate UK is regulated by a two-point regulator k.

濃厚になった下降塩溶液KAの一部は、濃縮側で連続的
に運び去られ、その分たけポンプP5により蒸留水Wが
補充される。更に、セルスタック内では希釈側から濃縮
側に水の移動が起る。
A part of the concentrated descending salt solution KA is continuously carried away on the concentration side, and the pump P5 replenishes that amount with distilled water W. Furthermore, water moves from the dilution side to the concentration side within the cell stack.

タイルニー)Dの一部は、導電性測定セルで導電性を測
定された後、連続的に引き抜かれ、滅菌フィルターSF
を通った後、完成品PRとしてタンクT4に入り、そこ
で相当する医薬製剤に加工されるまで0℃で貯蔵される
After having its conductivity measured in a conductivity measuring cell, a part of the tile knee) D is continuously pulled out and passed through a sterile filter SF.
After passing through, it enters tank T4 as finished product PR, where it is stored at 0° C. until it is processed into the corresponding pharmaceutical formulation.

電気透析装置の運転を開始するに当たり、21含量タン
クに前記した方法で得た濃縮限外濾過液UK1,27を
入れる。同じサイズのタンクT2に蒸留水1ノを入れ、
1ノのタンクT3に2%N 404溶液750rnlを
入れる。セル束および全回路を満たして空気を除去した
後、それぞれ約90 、z/hを輸送するポンプP0〜
P3を作動させる。直流を2個の電極板(+および−)
に通す。この場合、遊離膜断面に約20mA/−の電流
が流れる様に電圧を選択する。従って、遊離膜断面が3
7−のセルスタックに、総計約75mAの電流が流れる
。開始電圧約16Vは、7対膜からなるセルスタツ考!
常値約5.5■に、1時間以内に下げる様に調節する。
To start the operation of the electrodialysis apparatus, the concentrated ultrafiltrate UK1,27 obtained in the above-described manner is charged into a 21-capacity tank. Pour 1 liter of distilled water into tank T2 of the same size,
Add 750 rnl of 2% N 404 solution to tank T3. After filling the cell bundle and the entire circuit and removing the air, the pump P0 ~ transports approximately 90 z/h, respectively.
Activate P3. Direct current is connected to two electrode plates (+ and -)
Pass it through. In this case, the voltage is selected so that a current of about 20 mA/- flows through the cross section of the free membrane. Therefore, the free membrane cross section is 3
A total current of approximately 75 mA flows through the cell stack No. 7-. The starting voltage of about 16V is based on a cell structure consisting of 7 pairs of membranes!
Adjust to lower the normal value to about 5.5■ within 1 hour.

導電率は、10時間後に45〜50 m S /cmに
下がった。濃縮限外濾過液UKの供給量を、タイルエー
トの導電率が、平均約100 、l / hで、45〜
50m5/cmとなる様に調整器にで、供給ポンプP4
を通じて調節する。
The conductivity dropped to 45-50 mS/cm after 10 hours. The feed rate of the concentrated ultrafiltrate UK is adjusted so that the conductivity of the tileate is on average about 100, l/h, 45~
Adjust the feed pump P4 to the regulator so that it is 50m5/cm.
Adjust through.

供給ポンプP5を200 ml/11 にセットし、タ
ンクT2からの塩濃縮液KAの排出を約220 ml/
”にセットする。
Feed pump P5 is set at 200 ml/11 and the discharge of salt concentrate KA from tank T2 is approximately 220 ml/11.
”.

2種の出発濃縮物IG、733.10および五350.
03を使って数回くり返した上記の透析の結果、および
各種電気透析装置12、灘13、意141.[16、)
A17、K、 l 8およびy(G、 19の組成を表
1に示す。
Two starting concentrates IG, 733.10 and 5350.
The results of the above dialysis repeated several times using 03, and various electrodialyzers 12, 13, 141. [16,)
The compositions of A17, K, l8 and y(G, 19) are shown in Table 1.

表1にはまた、採用した温度、電流密度および直流電圧
の条件、出発濃縮物および回収した電気透析液の分析デ
ータ、並びに生物学的比活性の比較データを挙げた。
Table 1 also lists the temperature, current density and DC voltage conditions employed, analytical data of the starting concentrate and recovered electrodialysate, and comparative data of biological specific activity.

上記の電気透析によって得られた濃縮タイルエートを滅
菌水で、例えば5倍に、希釈してlから250〜550
ミリオスモルの範囲の浸透圧を持った等張〜やや高張の
活性物質溶液を調製するのが好都合である。
The concentrated tile ate obtained by the above electrodialysis is diluted with sterile water, for example, 5 times, and the
It is convenient to prepare isotonic to slightly hypertonic active substance solutions with an osmotic pressure in the milliosmolar range.

試験の結果、本発明方法により、既知の方法で得られる
、相当する活性物質溶液と少なくとも同じの、あるいは
部分的により良好な生物活性を持った細胞呼吸刺激活性
物質溶液か、牛のrrn液から特にスマートなそして経
済的な方法で得ることかできることかわかった。
Tests have shown that the method according to the invention produces solutions of cellular respiration-stimulating active substances which have at least the same or partly better biological activity than the corresponding active substance solutions obtained by known methods, or from bovine rrn fluid. Especially found out what you can get in a smart and economical way.

傘1.0以上の値は有効:定量的な低濃厚化は不可能 *傘滅菌水で5倍に希釈した限外濾過液に基づくデータ 孝傘申滅菌水で5倍に希釈した電気透析液に基づくデー
A value of 1.0 or higher is valid: Quantitative low concentration is impossible data based on

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図は限外濾過工程の模式図、$2図は電気透析工程
の模式図である。U□〜U4・・限外濾過装置、K・・
・カチオン交換膜、a・・・アニオン交換膜。
Figure 1 is a schematic diagram of the ultrafiltration process, and Figure 2 is a schematic diagram of the electrodialysis process. U□~U4・・Ultrafiltration device, K・・
-Cation exchange membrane, a... anion exchange membrane.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1、採血直後の牛の血液を激しく攪拌し、生成した繊維
素を濾過して脱繊維素化し、得られた溶液を溶血し、溶
血した溶液に含まれている約8000ダルトン以上の分
子量を持った物質および蛋白質を膜分離法によって分離
し、蛋白質および高分子量物質を除いたこの溶液を減圧
下40℃を超えない温度で、20℃に於ける密度が1.
lO〜1.159/mt:となるまで濃縮し、得られた
濃縮液から無機塩類を部分的に分離し、得られた濃縮液
を所望により最終的に希釈して250〜550ミリオス
モルの浸透圧を持った等張〜僅かに高張の溶液を得るこ
とからなる約300〜8000ダルトンの範囲の分子路
を持った細胞呼吸刺激活性物質の調製法であって、該膜
分離法を、約8000ダルトン以上の分子量排斥制限を
持った膜を使用した連続多数工程限外濾過法で行ない、
該無機塩類の部分的分離を、分子量約300ダルトンま
での膜透過性を有するカチオンおよびアニオン交換膜を
交互に配置したセルスタックを用いた電気透析で行なう
ことを特徴とする方法。 2、限外濾過において約5000ダルトン以」二の分子
量排斥制限を持った膜を使用し、電気透析において分子
量約400ダルトンまでの透過性を持った膜を使用して
約400〜5000ダルトンの範囲の分子量を持った細
胞呼吸刺激活性物質を調製する第1項に記載の方法。 3.5〜70mA/−遊離膜断面、好ましくは20〜5
01nA /crrl遊離膜断面の電流密度、膜当たり
0.2〜2■、好ましくは0.5〜1■の直流電圧、お
よび0〜30℃の温度範囲で電気透析を行なう第1項ま
たは第2項に記載の方法。 4、連続多数工程限外濾過の第一工程と最終工程の間の
各工程に於いて、個々の限外濾過モジュールから流出し
た限外濾過液の量が補われる量の希釈剤を添加し、次工
程で再ひ限外濾過される血液溶液をほぼ一定のレベルに
保持する第1項〜第3項のいづれかに記載の方法。 5.連続多数工程限外濾過の最終工程を除く全工程に於
いて、限外濾過しようとする血液溶液をほぼ一定のレベ
ルに保持する第1項〜第4項のいづれかに記載の方法。
[Scope of Claims] 1. Bovine blood immediately after blood collection is vigorously stirred, the generated cellulose is filtered and defibrillated, the resulting solution is hemolyzed, and about 8,000 ml of blood is contained in the hemolyzed solution. Substances and proteins having a molecular weight of more than Dalton are separated by membrane separation method, and this solution from which proteins and high molecular weight substances have been removed is heated under reduced pressure at a temperature not exceeding 40°C until the density at 20°C is 1.
The inorganic salts are partially separated from the resulting concentrate, and the resulting concentrate is finally diluted as desired to give an osmotic pressure of 250 to 550 milliosmol. A method for the preparation of cellular respiration-stimulating active substances with a molecular path in the range of about 300 to 8000 Daltons, comprising obtaining an isotonic to slightly hypertonic solution with a molecular weight of about 8000 Daltons. It is carried out using a continuous multi-step ultrafiltration method using a membrane with the above molecular weight exclusion limit,
A method characterized in that the partial separation of the inorganic salts is carried out by electrodialysis using a cell stack having alternating cation and anion exchange membranes having membrane permeability up to a molecular weight of about 300 daltons. 2. In ultrafiltration, use a membrane with a molecular weight exclusion limit of about 5,000 Daltons or more, and in electrodialysis, use a membrane with permeability up to about 400 Daltons, in the range of about 400 to 5,000 Daltons. 2. The method according to item 1 for preparing a cell respiration stimulating active substance having a molecular weight of . 3.5-70mA/-free membrane cross section, preferably 20-5
01 nA/crrl current density across the free membrane cross section, a DC voltage of 0.2 to 2 cm per membrane, preferably 0.5 to 1 cm, and a temperature range of 0 to 30 °C. The method described in section. 4. In each step between the first step and the final step of continuous multi-step ultrafiltration, adding a diluent in an amount to compensate for the amount of ultrafiltrate flowing out from each ultrafiltration module, 4. The method according to any one of items 1 to 3, wherein the blood solution to be re-ultrafiltered in the next step is maintained at a substantially constant level. 5. 5. The method according to any one of items 1 to 4, wherein the blood solution to be ultrafiltered is maintained at a substantially constant level in all steps except the final step of continuous multi-step ultrafiltration.
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