【発明の詳細な説明】
殺虫作用を示す組成物
本発明は、トランスフルトリン（ｔｒａｎｓｆｌｕｔｈｒｉｎ）単独を基とす
る新規な殺虫活性組成物に関し、この組成物は、飛ぶ昆虫の防除に対して卓越し
た活性を示して良好なノックダウン（ｋｎｏｃｋｄｏｗｎ）作用および卓越した
フラッシング（ｆｌｕｓｈｉｎｇ）効果を有し、かつ活性化合物がミクロカプセ
ル封じされている（ｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌｔａｔｅｄ）形態であることか
ら、はう昆虫およびダニの防除に対して長期の残存作用を示すことを特徴とする
。
閉じ込められた空間に存在する昆虫およびダニを成功裏に防除するには殺虫剤
の組み合わせを用いるのが通常である。通常は、いろいろな種類の殺虫性物質が
互いに組み合わされている(W．Behrenz and K．Naumann，Pflanzenschutznachri
chten Bayer，35，309(1982))。
昆虫防除に対する「フラッシング効果」、即効作用（「ノックダウン効果」）
および長期の作用（「残存作用」）を達成する目的で、今日までは、長期間に渡
って安定な燐酸エステルとカルバメート類とピレトロイド類の混合物が用いられ
ていた（C．Fest，K.-J．Schmidt，The Chemistry of Organophosphorus Pestic
ides，Springer-Verlag，Ber
n Bayer，18，53(1965)，I．Hammann，R．Fuchs，合書 34，123(1981)そしてそ
れらに引用されている文献)。
本発明の目的は、上述した条件を満たす一方で殺虫剤を組み合わせることなく
活性化合物を１つに限定することであった。
本発明では、ここに、活性化合物を１種類のみ含有していて飛ぶ昆虫
の防除に対して卓越した活性を示して良好なノックダウン効果に加えてフラッシ
ング効果を有しかつはう昆虫の防除およびダニの防除に対して残存作用を示すこ
とを特徴とする組成物を記述する。
式
で表されるトランスフルトリンは、エーロゾル、蒸気および煙りとして用いるに
適切な幅広く多様な調合物において、衛生の有害生物、材料に損傷を与える有害
生物および貯蔵品の有害生物の防除で卓越した活性を示す化合物である。これは
、通常の感受性種および耐性種の防除および全てのまたはある発育段階に対して
活性を示し得る。上述した有害生物には下記が含まれる：
等脚目（Isopoda）のもの、例えばオニスカス・アセルス（Oniscus asellus）
、オカダンゴムシ（Armadillidium vulgare）、およびポルセリオ・スカバー（P
orcellio scabar）；
倍脚綱（Diplopoda）のもの、例えばブラニウルス・ブットラタス（Blaniulus g
uttulatus）；
チロポダ目（Chilopoda）のもの、例えばゲオフィルス・カルポファグス（Geoph
ilus carpophagus）およびスカチゲラ（Scutigera spp.）；
シムフイラ目（Symphyla）のもの、例えばスカチゲレラ・イマキュラ
タ（Scutigerella immaculata）；
シミ目（Thysanura）のもの、例えばレプシマ・サッカリナ（Lepisma saccharin
a）；
トビムシ目（Collembola）のもの、例えばオニチウルス・アルマツス（Onychiur
us armatus）；
直し目（Orthoptera）のもの、例えばブラッタ・オリエンタリス（Blatta orien
talis）、ワモン・ゴキブリ（Periplaneta americana）、ロイコファエ・マデラ
エ（Leucophaea maderrae）、チヤバネ・ゴキブリ（Blattella germanica）、ア
チータ・ドメスチクス（Acheta domesticus）、ケラ（Gryllotalpa spp.）、ト
ノサマバッタ（Locusta migratoria migratorioides）、メラノプルス・ジフェ
レンチアリス（Melanoplus differentialis）およびシストセルカ・グレガリア
（Schistocerca gregaria）；
ハサミムシ目（Dermaptere）のもの、例えばホルフィキュラ・アウリクラリア（
Forficula auricularia）；
シロアリ目（Isoptera）のもの、例えばレチキュリテルメス（Reticulitermes s
pp.）；
シラミ目（Anopolura）のもの、例えばヒトジラミ（Pediculus humanus corpori
s）、ケモノジラミ（Haematopinus spp.）およびケモノオホソジラミ（Linognat
hus spp.）；
ハジラミ目（Mallophaga）のもの、例えばケモノハジラミ（Trichodectes spp.
）およびダマリネア（Damalinea spp.）；
アザミウマ目（Thysanoptera）のもの、例えばクリガネアザミウマ（Hercinothr
ips femoralis）およびネギアザミウマ（Thrips tabac
i）；
半し目（Heteroptera）のもの、例えばチャイロカメムシ（Eurygaster spp.）、
ジスデルクス・インテルメジウス（Dysdercus intermedius）、ピエスマ・クワ
ドラタ（Piesma quadrata）、ナンキンムシ（Cimex lectularius）、ロドニウス
・プロリクス（Rhodnius prolixus）およびトリアトマ（Triatoma spp.）；
同し目（Homoptera）のもの、例えばアレウロデス・ブラシカエ（Aleurodes bra
ssicae）、ワタコナジラミ（Bemisia tabaci）、トリアレウロデス・バポラリオ
ルム（Trialeurodes vaporariorum）、ワタアブラムシ（Aphis gossypii）、ダ
イコンアブラムシ（Brevicoryne brassicae）、クリプトミズス・リビス（Crypt
omyzus ribis）、アフィス・ファバエ（Aphis fabae）、ドラリス・ポミ（Doral
is pomi）、リンゴワタムシ（Eriosoma lanigerum）、モモコフキアブラムシ（H
yalopterus arundinis）、フィロキセラ・バスタトリックス（Phylloxera vasta
trix）、ペムフィグス種（Pemphigus spp.）、ムギヒゲナガアブラムシ(Macrosi
phum avenae)、コブアブラムシ(Myzus spp.)、ホップイボアブラムシ（Phorodon
humuli）、ムギクビレアブラムシ(Rhopalosiphum padi)、ヒメヨコバイ（Empoa
sca spp.）、ユースセリス・ビロバッス（Euscelis bilobatus）、ツマグロヨコ
バイ（Nephotettix cincticeps）、ミズキカタカイガラムシ（Lecanium corni）
、オリーブカタカイガラムシ（Saissetia oleae）、ヒメトビウンカ（Laodelpha
x striatellus）、トビイロウンカ（Nilaparvata lugens）、アカマルカイガラ
ムシ（Aonidiella aurantii）、シロマルカイガラムシ（Aspidiotus hederae）
、プシュードコツカス（Pseudo
coccus spp.）およびキジラミ（Psylla spp.）；
鱗し目（Lepidoptera）のもの、例えばワタアカミムシ（Pectinophora gossypie
lla）、ブパルス・ピニアリウス（Bupalus piniarius）、ケイマトビア・ブルマ
タ（Cheimatobia brumata）、リソコレチス・ブランカルデラ（Lithocolletis b
lancardella）、ヒポノミュウタ・パデラ(Hyponomeuta padella)、コナガ（Plut
ella maculipennis）、ウメケムシ（Malacosoma neustria）、クワノキンムケシ
（Euproctis chrysorrhoea）、マイマイガ（Lymantria spp.）、ブッカラトリッ
クス・スルベリエラ（Bucculatrix thurberiella）、ミカンハモグリガ（Phyllo
cnistis citrella）、ヤガ（Agrotis spp.）、ユークソア（Euxoa spp.）、フェ
ルチア（Feltia spp.）、エアリアス・インスラナ（Earias insulana）、ヘリオ
チス（Heliothis spp.）、スポドプテラ・エキシグア（Spodoptera exigua）、
ヨトウムシ（Mamestra brassicae）、パノリス・フラメア（Panolis flammea）
、スポドプテラ・リツラ（Spodoptera litura）、シロナヨトウ（Spodoptera sp
p.）、トリコプルシア・ニ（Trichoplusia ni）、カルポカプサ・ポモネラ（Car
pocapsa pomonella、アオムシ（Pieris spp.）、ニカメイチュウ（Chilo spp.）
、アワノメイガ（Pyrausta nubilalis）、スジコナマダラメイガ（Ephestia kue
hniella）、ハチミツガ（Galleria mellonella）、テイネオラ・ビセリエラ（Ti
neola bisselliella）、テイネア・ペリオネラ（Tinea pellionella）、ホフマ
ノフィラ・プシュードスプレテラ（Hofmannophila pseudospretella）、カコエ
シア・ポダナ（Cacoecia podana）、カプア・レチクラナ（Capua reticulana）
、クリストネウラ・フミフェラナ（Choristoneura fumiferan
a）、クリシア・アンビグエラ(Clysia ambiguella)、チャハマキ（Homona magna
nima）およびトルトリクス・ビリダナ（Tortrix viridana）；
しょうし目（Coleoptera）のもの、例えばアノビウム・プンクタツム（Anobium
punctatum）、コナナガシンクイムシ（Rhizopertha dominica）、ブルチジウス
・オブテクツス（Bruchidius obtectus）、インゲンマメゾウムシ（Acanthoscel
ides obtectus）、ヒロトルペス・バジュルス（Hylotrupes bajulus）、アゲラ
スチカ・アルニ(Agelastica alni)、レプチノタルサ・デセムリネアタ（Leptino
tarsa decemlineata）、フェドン・コクレアリアエ（Phaedon cochleariae）、
ジアブロチカ（Diabrotica spp.）、プシリオデス・クリソセファラ（Psylliode
s chrysocephala）、ニジュウヤホシテントウ（Epilachna varivestis）、アト
マリア（Atomaria spp.）、ノコギリヒラタムシ(Oryzaephilus surinamensis)、
ハナゾウムヒシ(Anthonomus spp.)、コクゾウムシ（Sitophilus spp.）、オチオ
リンクス・スルカッス（Otiorrhychus sulcatus）、バショウゾウムシ（Cosmopo
lites sordidus）、シュートリンクス・アシミリス(Ceuthorrhynchus assimilli
s)、ヒペラ・ポスチカ（Hypera postica）、カツオブシムシ（Dermestes spp.）
、トロゴデルマ（Trogoderma spp.）、アントレヌス（Anthrenus spp.）、アタ
ゲヌス（Attagenus spp.）、ヒラタキクイムシ（Lyctus spp.）、メリゲテス・
アエネウス（Meligethes aeneus）、ヒョウホンムシ（Ptinus spp.）、ニプツス
・ホロレウカス（Niptus hololeucus）、セマルヒョウホンムシ（Gibbium psyll
oides）、コクヌストモドキ（Tribolium spp.）、チャイロコメノゴミムシダマ
シ（Tene
brio molitor）、コメツキムシ（Agriotes spp.）、コノデルス（Conoderus spp
.）、メロロンサ・メロロンサ（Melolontha melolontha）、アムフィマロン・ソ
ルスチチアリス（Amphimallon solstitialis）およびコステリトラ・ゼアランジ
カ（Costelytra zealandica）；
膜し目（Hymenoptera）のもの、例えばマツハバチ（Diprion spp.）、ホプロカ
ムパ（Hoplocampa spp.）、ラシウス（Lasius spp.）、イエヒメアリ（Monomori
um pharaonis）およびスズメバチ（Vespa spp.）；
双し目（Diptera）のもの、例えばヤブカ（Aedes spp.）、ハマダラカ（Anophel
es spp.）、イエカ（Culex spp.）、キイロショウジョウバエ（Drosophila mela
nogaster）、イエバエ（Musca spp.）、ヒメイエバエ（Fannia spp.）、クロバ
エ・エリスロセファラ（Calliphora erythrocephala）、キンバエ（Lucilia spp
.）、オビキンバエ（Chrysomyia spp.）、クテレブラ（Cuterebra spp.）、ウマ
バエ(Gastrophilus spp.)、ヒッポボスカ（Hyppobosca spp.）、サシバエ（Stom
oxys spp.）、ヒツジバエ（Oestrus spp.）、ウシバエ（Hypoderma spp.）、ア
ブ（Tabanus spp.）、タニア（Tannia spp.）、ケバエ（Bibio hortulanus）、
オスシネラ・フリト（Oscinella frit）、クロキンバエ（Phorbia spp.）、アカ
ザモグリハナバエ（Pegomyia hyoscyami）、セラチチス・キャピタータ（Cerati
tis capitata）、ミバエオレアエ（Dacus oleae）およびガガンボ・パルドーサ
（Tipula paludosa）；
ノミ目（Siphonaptera）のもの、例えばケオプスネズミノミ（Xenopsylla cheop
is）、クテノセファリデス・フェリス（Ctenocephalides felis）およびナガノ
ミ（Ceratophyllus spp.）；
クモ形綱(Arachnida)のもの、例えばスコルピオ・マウルス(Scorpio maurus)お
よびラトロデクタス・マクタンス(Latrodectus mactans)；
ダニ目（Acarina）のもの、例えばアシブトコナダニ（Acarus siro）、ヒメダニ
（Argas spp.）、カズキダニ（Ornithodoros spp.）、ワクモ(Dermanyssus gall
inae)、エリフィエス・リビス（Eriophyes ribis）、ミカンサビダニ（Phylloco
ptruta oleivora）、オウシマダニ（Boophilus spp.）、コイタマダニ（Rhipice
phalus spp.）、アンブリオマ（Amblyomma spp.）、イボマダニ（Hyalomma spp.
）、マダニ(Ixodes spp.)、キュウセンヒゼンダニ（Psoroptes spp.）、ショク
ヒヒゼンダニ(Chorioptes spp.)、ヒゼンダニ（Sarcoptes spp.）、ホコリダニ
（Tarsonemus spp.）、クローバハダニ（Bryobia praetiosa）、ミカンリンゴハ
ダニ（Panonychus spp.）およびナミハダニ（Tetranychus spp.）。
本発明に従う組成物を、好適には、飛ぶ昆虫、例えば小虫、蝿、蛾などばかり
でなく、また隠れてはう害虫、例えばゴキブリまたは蚤など（それらの全ての発
育段階）の防除で用いる。それらはそれらが隠れていた場所から追い出され（フ
ラッシング効果）、その結果として、それらは、新しく被覆した活性化合物の被
膜に接触して、死滅する。ゴキブリまたは蚤に直接噴霧すると、それらは直ぐに
ひっくり返り（ノックダウン）、回復不能になる（死亡）。トランスフルトリン
を非常に幅広い範囲の調合物、例えばスプレー缶、オイルスプレー、水を基とす
るポンプスプレーなど、またはＵＬＶ、熱霧および冷霧などで用いることにより
、そのような効果を達成することができる。他の適切な調合物は、例えばエマル
ジョン濃縮物（ＥＣ）、水を基とするエマルジョン濃縮物
（ＥＷ）または湿潤性粉末（ＷＰ）などである。
トランスフルトリンは、上述した効果に加えてまたそれが有する物理的および
生物学的特性から、はう昆虫、好適にはゴキブリまたは蚤を防除する目的で作用
期間が短い調合物として使用可能である。作用期間が短いは、使用量に応じて作
用期間が数日（＜１週間）であることを意味するとして理解されるべきである。
このような調合物をまた残存活性も示す化合物として用いることができれば、上
記調合物は全ての虫齢および成長したゴキブリおよび蚤の防除に対して活性を示
す。
トランスフルトリンを、例えばポリ尿素などのカプセルにミクロカプセル封じ
すると、この活性化合物自身が示す作用は短期間であるにも拘らず、そのミクロ
カプセルのコントロールシステム（ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｙｓｔｅｍ）で活性化合
物の徐放（ｃｏｎｔｒｏｌ ｒｅｌｅａｓｅ）を達成することができる。このよ
うなシステムを用いると、活性期間が短い化合物を活性期間が長い調合物にする
ことができる。
ミクロカプセル封じされていない量（ｎｏｎ−ｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌｔ
ａｔｅ ａｍｏｕｎｔ）をＥＣ、ＥＷまたは未希釈液（ＡＬ）として調合するこ
とができる。
例えば、トランスフルトリンを遊離形態（例えばＥＷとして）とミクロカプセ
ル封じされたＣＳ形態（ＣＳ＝ミクロカプセル）で調合することで、水を基とし
ていて活性化合物を１種類のみ含有しておりそして飛ぶ昆虫の防除に対して卓越
した活性を示して良好なノックダウン効果および良好なフラッシング効果を有し
かつはう昆虫の防除に対して高い残存作用を示すエーロゾルを調合することがで
きる。
カプセル封じされているＣＳ活性化合物量と遊離ＥＷ量の間の比率は
意図した目的に応じて多様であり得る。一般的には、１００部（ＣＳ）：０．１
部（ＥＷ）から０．１部（ＣＳ）：１００部（ＥＷ）のＣＳ：ＥＷ比を用いる。
好適には、１０部（ＣＳ）：０．１部（ＥＷ）から０．１部（ＣＳ）：１０部（
ＥＷ）の比率を用いる。特に１部（ＣＳ）：１０部（ＥＷ）から１０部（ＣＳ）
：１部（ＥＷ）の比率が好適である。
市販調合物から調製する使用形態の活性化合物含有量は幅広い範囲内で多様で
あり得る。使用形態の活性化合物濃度は、活性化合物が０．００００００１から
９５重量％、好適には０．０００１から１重量％の範囲であってもよい。トランスフルトリンミクロカプセル
トランスフルトリンミクロカプセルを境界層重合方法で調製する。このミクロ
カプセルの壁を例えばポリ尿素材料などで構成させる。このカプセルの壁を、ポ
リイソシアネートと多官能アミンから、水相と有機相の間の境界層の所で形成さ
せる。上記ポリイソシアネートは芳香族または脂肪族であってもよい。これは少
なくとも二官能であるべきであるが、イソシアネート基をより多い数で含んでい
てもよい。ミクロカプセル封じ用ポリイソシアネート類の例は、トルエンジイソ
シアネート、ジフェニルメタンジイソシアネート、フェニレンジイソシアネート
、ヘキサメチレンジイソシアネートおよび１，６−ヘキサンジイソシアネートで
ある。また、多官能アミン類も少なくとも二官能であるべきであり、例えばエチ
レンジアミン、ヘキサメチレンジアミン、フェニレンジアミン、ジエチレントリ
アミンおよびテトラエチレンペンタミンなどであるべきである。有機相をトラン
スフルトリン溶液とポリイソシアネートで構成させる。水相を水と保護コロイド
、例えばＰＶＡ（ポリビニルアルコー
ル）、ＰＶＰ（ポリビニルピロリドン）などで構成させる。上記水相と有機相か
ら水中油（Ｏ／Ｗ）エマルジョンを生じさせる（上記保護コロイドが乳化過程中
にポリイソシアネートと水が反応するのを防止する）。その後、上記多官能アミ
ンを加えてポリイソシアネートと一緒に適宜高温で重合させることでポリ尿素の
ミクロカプセルを形成させる。トランスフルトリンミクロカプセル水懸濁液が得
られる。しかしながら、トランスフルトリンのミクロカプセル封じでは原則とし
てまた他のポリマー類も使用可能である。
カプセル壁の材料、ミクロカプセルの大きさおよびポリ尿素壁の厚み、従って
トランスフルトリンがミクロカプセルから放出される度合は、所望に応じて、調
合パラメーターを用いて調整可能である。
トランスフルトリンが１０％のミクロカプセル懸濁液１ｋｇの配合例
ＰＶＡ（水中１％） ５３０ｇ
トランスフルトリン １００ｇ
Ｓｏｌｖｅｓｓｏ ２００（商標） ２８５ｇ
ジフェニルメタンジイソシアネート １５ｇ
ジエチレントリアミン（水中１０％） ４５ｇ
Kelzan S（商標）(2％)＋ベンジルヘミフォル
マール(hemiformal)(4％)(水中) ２５ｇ
１０００ｇ
トランスフルトリンをＳｏｌｖｅｓｓｏ ２００（商標）に溶解させた後、こ
の溶液をジフェニルメタンジイソシアネートと混合する。それによって有機相を
生じさせる。この有機相とＰＶＡ溶液から２５℃の温度でＯ／Ｗエマルジョンを
生じさせる［例えばＪａｎｋ ＆ Ｋｕｎｋ
ｅｌ、ＩＫＡ−Ｌａｂｏｒｔｅｃｈｎｉｋ（Ｓｔａｕｆｅｎ）製のＵｌｔｒａ
Ｔｕｒｒａｘ Ｔ５０（商標）を用いてこれを行う］。このエマルジョンに入っ
ている液滴のサイズ（これはミクロカプセルのサイズに相当する）は、乳化の速
度および時間で調整可能であり、例えば乳化を７０００ｒｐｍで２分間実施する
。
次に、撹拌しながらジエチレントリアミン溶液を加える。この混合物をゆっく
りと（１−２時間かけて）６０℃に加熱する。撹拌しながら６０℃を約５時間保
持する。この時点で、ジフェニルメタンジイソシアネートとジエチレントリアミ
ンの重合が完了してポリ尿素のミクロカプセルが生じる。
撹拌しながらＫｅｌｚａｎ Ｓ（商標）水ゲルをベンジルヘミフォルマールと
一緒に加える［Ｋｅｌｚａｎ Ｓ（商標）はいわゆるキサンタンゴムである多糖
類で、これはＫｅｌｃｏ製のポリマー状増粘剤であり、そしてベンジルヘミフォ
ルマール、即ちホルムアルデヒドを放出する物質は、バイエル社（Ｂａｙｅｒ
ＡＧ）製の防腐剤である］。
このバッチを室温に冷却した後、この実験を終了して、トランスフルトリンミ
クロカプセル懸濁液を袋詰めすることができる。
しかしながら、また、トランスフルトリンのミクロカプセル封じで他のポリマ
ー類を用いることも全く可能である。
例えば多官能アミンの代わりに相当する多官能アルコール類を上述した多官能
イソシアネートと反応させると、代わりにポリウレタン構造を有するミクロカプ
セルが得られる。
例えば多官能イソシアネートの代わりに相当する多官能酸クロライドを上述し
た多官能アミン類と反応させると、代わりにポリアミド構造を
有するミクロカプセルが得られる。ゴキブリにフラッシング効果を与えるスプレー缶の試験
この試験を寸法が４０ｃｍｘ６０ｃｍｘ６ｃｍのポリマー製皿［タイプ２３の
シードボックス（ｓｅｅｄｂｏｘｅｓ）、Ｗ．ｕ．Ｈ．Ｆｅｒｎｈｏｌｚ Ｇｍ
ｂＨ ＆ Ｃｏ．ＫＧ（Ｍｅｉｎｅｒｚｈａｇｅｎ）］を用いて実施した。その
底を覆う目的で、「ｔｅｓａ」（商標）テープ４１０４の代わりに濾紙を用いて
、それを保持した。側壁をタルカムで処理することにより、ゴキブリが逃げない
ようにした。上記皿の中央部に隠れる場所を配置し、重量測定用ボトルを飲料用
入れ物として逆さに置いて、それを水で満たし、そして１／３に分けた最外部に
ラスクを食糧として配置した。
上記隠れる場所の底およびカバーを、白色ＤＤ−Ｌａｃｋポリウレタン被膜で
覆ったアルミニウムで構成させる一方、横方向のウエブ（ｗｅｂ）およびスライ
ド（ｓｌｉｄｅ）をテフロンで構成させる。この構造物を皿小ねじとウイングナ
ットで保持するが、隠れる場所の所望の深さは上記スライドで調整可能である。
この隠れる場所のデザインおよび寸法を図１に見ることができる。上記スライド
と横方向ウエブを変えることで上記隠れる場所の高さを変えることができる。
各容器に特定種および段階または性のゴキブリを１０匹入れて２４時間後に実
験を開始する。一般に、この時間が経過した後、全ての動物が上記隠れる場所の
中に入り込んだ。この後者をフュームカップボード（ｆｕｍｅ ｃｕｐｂｏａｒ
ｄ）に移し、そして寸法が６５ｃｍｘ４６．５ｃｍｘ３０ｃｍのポリマー製容器
内に位置させた２個のガラス製シリンダー（高さが全体で３６ｃｍで、直径が１
２ｃｍ）の上に置いた。ス
プレー缶の内容物２ｇを上記隠れる場所の開口部に向かって距離が３０ｃｍで高
さが３６ｃｍの所から噴霧した。
この噴霧処理が終了した後、上記隠れる場所を、タルカムで処理したガラス環
（高さが５ｃｍで直径が１０ｃｍ）の上に位置させたポリマー製皿に移した。追
い出された（ｆｌｕｓｈｅｄ−ｏｕｔ）ゴキブリの数を、処理後５分間までは１
分間隔で数え、３０分までは５分間隔で数え、そして６０分後および２４時間後
に数えた。６０分後、直径が９．５ｃｍの濾紙盤を折り畳んだ物を、ゴキブリが
追い出されて出て来ないようにするための防護物として、上記シードボックスの
中に入れた。各試験に、活性化合物を用いない対照処理を１回分含めた。
追い出されたゴキブリが上記隠れる場所に戻ったとしても、一般的には、各場
合とも上記隠れる場所から直ぐに落下した。この実験が終了した後、上記隠れる
場所を取り出し、アセトンで濯ぎ、食器洗い機に入れて９５℃で洗浄した後、乾
燥用オーブンに入れて１５０℃で乾燥させた。
はう昆虫に直接噴霧した後の効果に関するスプレー缶試験
この試験をフュームキャビネット（ｈｕｍｅ ｃａｂｉｎｅｔ）内で実施した
が、ここでは、エキゾースター（ｅｘｈａｕｓｔｅｒ）をそれがスプレージェッ
トを妨害しない様式で調節すべきである。各場合とも、内径が７０ｍｍで高さが
１０ｍｍでメッシュサイズが１．５ｍｍのワイヤーメッシュボックス（ｗｉｒｅ
ｍｅｓｈ ｂｏｘ）の中にゴキブリを１匹入れる。この調製した試験容器をス
プレー装置に入れて４５°の角度で固定する。上記メッシュ容器の後部および下
部の領域を吸収性濾紙で覆い、これを各試験後に取り替える。
上記スプレー装置の上にスプレー缶を、スプレージェットがワイヤーメッシュ
に対して直角になりそしてワイヤーメッシュの中央部から試験エーロゾルのスプ
レーヘッドノズルまでの測定距離が６０ｃｍになるように置く。最初に、各試験
缶が缶の内容物を２．４−２．８ｇ供給するに要するスプレー時間を測定する。
この缶の重量を各試験前と後に測定することで、使用量を正確に測定する。動物
に対するＫＤ効果（ＫＤ＝ノックダウン）を正確に測定することができるように
、スプレーノズルと同時にストップクロック（ｓｔｏｐ Ｃｌｏｃｋ）を作動さ
せる。噴霧後直ちに、動物を奇麗な容器に移し、スワブ（ｓｗａｂ）を供給し、
そして特定時間後にノックダウン時間と死亡率（％）を評価する。
はう昆虫に対してスプレー缶が示す残存作用を試験する試験方法 基質の噴霧処理
この処理をフュームキャビネット内で実施したが、ここでは、エキゾースト（
ｅｘｈａｕｓｔ）をそれが缶から出るスプレージェットを妨害しない様式で調節
できるようにする。上記キャビネットの底および壁を６５ｃｍの高さになるまで
濾紙で覆った。
最も重要な材料、特に艶ありタイルおよび艶なしタイル、ＰＶＣスラブ、塗装
合板などを処理することができる。この処理した基質（サイズが１５ｘ１５ｃｍ
＝２２５ｃｍ2）を支持環（外径が１０ｃｍ）の上に配置し、それを支持体に高
さが５ｃｍの所に固定して、５５°の角度が生じるような様式で、支持ロッドに
向けて傾ける。全てのスプレー缶は組成および技術的装置がいろいろで噴霧挙動
（圧力、スプレーコーン、液滴サイズ）が多様であり得ることから、影響を与え
るべき距離および
噴霧速度を見付け出す目的で、実際の支持体を処理するに先立って各スプレー缶
に関して厚紙支持体（１５ｘ１５ｃｍ）を用いた実験を実施する必要がある。
スプレー缶およびスプレー缶の圧力に応じて、スプレーの距離を２５−４０ｃ
ｍにした時、支持体の均一な噴霧が所望の使用量で達成される。上記缶を手で半
円形の線に沿って導くのが好都合であることを確認した。スプレージェットを支
持体上に左上から開始して右中央部を通って左下部に導く（図２参照）。
上記支持体の縁の外側に噴霧された量、即ち噴霧損失量は、厚紙の周囲部分を
用いた詳細な実験で測定して、約１０％であった。
スプレー缶の重量測定を各スプレー操作の前後に行うことで、缶内容物の使用
量を測定した。
缶の内容物を５０ｇ／ｍ2の量で塗布するには、缶の内容物を２２５ｃｍ2当た
り１．２４ｇ塗布する必要がある。この量には既に測定した１０％の噴霧損失量
が含まれる。
上記支持体が１．２０から１．３０ｇの許容範囲内の量の缶内容物で処理され
なかった場合にはそれを廃棄する必要がある。特に支持体が吸収性を示さないで
スプレー缶で極度に湿る場合には、噴霧後直ちに上記支持体を傾けた位置から平
らな位置に移すことで噴霧被膜が流れないようにする。この噴霧塗膜が乾燥した
後、その支持体を試験チャンバに移す。試験動物および手順
各場合とも、その処理した支持体にゴキブリを５匹群がらせて、それをタルカ
ムで処理したガラス環（直径が９．５ｃｍで高さが５．５ｃｍ）
噴霧速度を見付け出す目的で、実際の支持体を処理するに先立って各スプレー
缶に関して厚紙支持体（１５ｘ１５ｃｍ）を用いた実験を実施する必要がある。
スプレー缶およびスプレー缶の圧力に応じて、スプレーの距離を２５−４０ｃ
ｍにした時、支持体の均一な噴霧が所望の使用量で達成される。上記缶を手で半
円形の線に沿って導くのが好都合であることを確認した。スプレージェットを支
持体上に左上から開始して右中央部を通って左下部に導く（図２参照）。
上記支持体の縁の外側に噴霧された量、即ち噴霧損失量は、厚紙の周囲部分を
用いた詳細な実験で測定して、約１０％であった。
スプレー缶の重量測定を各スプレー操作の前後に行うことで、缶内容物の使用
量を測定した。
缶の内容物を５０ｇ／ｍ2の量で塗布するには、缶の内容物を２２５ｃｍ2当た
り１．２４ｇ塗布する必要がある。この量には既に測定した１０％の噴霧損失量
が含まれる。
上記支持体が１．２０から１．３０ｇの許容範囲内の量の缶内容物で処理され
なかった場合にはそれを廃棄する必要がある。特に支持体が吸収性を示さないで
スプレー缶で極度に湿る場合には、噴霧後直ちに上記支持体を傾けた位置から平
らな位置に移すことで噴霧被膜が流れないようにする。この噴霧塗膜が乾燥した
後、その支持体を試験チャンバに移す。試験動物および手順
各場合とも、その処理した支持体にゴキブリを５匹群がらせて、それをタルカ
ムで処理したガラス環（直径が９．５ｃｍで高さが５．５ｃｍ）
に入れて保持する。評価
各場合とも、その処理した支持体に試験動物を処理後１日目に群がらせた後、
２日目から４日に及んで毎日群がらせる。この試験を１００％ノックダウンまた
は死亡率に関して１５分後、３０分後、６０分後、２時間後、３時間後および４
時間後に評価する。
エーロゾル作用に関するスプレー缶の試験
この試験を、内壁と天井がステンレス鋼で出来ていて各場合とも窓が部屋に５
個付いている大きさが２０ｍ3（ｌ＝２．８４ｍ、ｗ＝２．３３ｍ、ｈ＝３．０
３ｍ）の部屋の中で実施した（ＤＩＮ ４５７１）。その床に艶なしタイルを敷
き詰める。この試験室内に、その天井から、
高さが１．８０ｍで個々の壁から０．４５ｍの距離の所にワイヤーケージ（ｌ＝
８．５ｃｍ、直径＝８．０ｃｍ、メッシュサイズ＝１．０ｍｍ）を３個吊し、そ
の中に各場合とも試験動物を２０匹入れる。
この部屋の中に、その外側から、ドアとは反対側で高さが１．９０ｍの所に位
置する開口部（直径＝１３ｃｍ）に通して、スプレー缶の内容物を所望量（使用
量）でコンピューター制御噴霧し、そしてその量をファン（商標「Ｐｒｏｇｒｅ
ｓｓ」、タイプ９５８ ５７９０−０４ Ｗ１１）（これを１分間作動させる）
で上記部屋の中に均一に分布させる。ガラス窓を通して評価を行う。
動物の５０％および９５％がひっくり返るまでの時間（ＫＴ５０およびＫＴ９
５；ＫＴ＝ノックダウン時間）を測定する。試験動物を部屋の中に６０分間入れ
たままにする。次に、ひっくり返った動物のパーセント（ＫＤ）を測定する。全
ての動物をケージから取り出して、殺虫剤が入っていない奇麗なプラスチック製
ビーカーに移す。そのビーカーに、１０％濃度の糖溶液を染み込ませておいたセ
ルロース製スワブを入れて穴開き蓋で密封する。試験動物を殺虫剤を含まない雰
囲気の中に２４時間保持した後に死亡率の測定を行う。
試験種、スプレー缶に入れた活性化合物の組成、および生物学的結果に加えて
、試験の回数、使用量（ｇ／２０ｍ3）および噴霧時間（秒）、周囲温度および
周囲相対湿度を下記の表に見ることができる。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Insecticidal composition
The present invention is based on transfluthrin alone.
New insecticidal active compositions, which are excellent for controlling flying insects
Good knockdown and excellent activity
It has a flushing effect and the active compound is a microcapsule.
Is the form encapsulated (microencapsulated)
Have a long-lasting effect on the control of cystic insects and mites
.
Pesticides for successful control of insects and mites in confined spaces
It is usual to use a combination of Usually, various types of pesticides
Are combined with each other (W. Behrenz and K. Naumann, Pflanzenschutznachri
chten Bayer, 35, 309 (1982)).
"Flushing effect" for insect control, immediate effect ("knock down effect")
And to achieve a long-lasting effect ("residual effect")
A stable mixture of phosphates, carbamates and pyrethroids is used.
(C. Fest, K.-J. Schmidt, The Chemistry of Organophosphorus Pestic
ides, Springer-Verlag, Ber
n Bayer, 18, 53 (1965); Hammann, R .; Fuchs, Signatures 34, 123 (1981) and
References cited in them).
It is an object of the present invention to satisfy the above-mentioned conditions without combining insecticides.
The active compound was limited to one.
In the present invention, a flying insect containing only one type of active compound
It has excellent activity against pest control and has good knockdown effect and flash
Have a residual effect on insect control and mite control.
And a composition characterized by:
formula
Transfluthrin is used as an aerosol, vapor and smoke
Hygiene pests, hazardous materials that damage materials in a wide variety of suitable formulations
It is a compound that has outstanding activity in controlling pests in organisms and stored goods. this is
For control of normal susceptible and resistant species and for all or some stages of development
May show activity. The pests mentioned include:
Of the Isopoda, for example Oniscus asellus
, Omadan Beetle (Armadillidium vulgare), and Porcelio Scuba (P
orcellio scabar);
Diplopoda, for example, Blaniulus g
uttulatus);
From the order of the Chilopoda, for example, Geophilus Carpofagus
ilus carpophagus) and Skatigera (Scutigera spp.);
Of the order Symphyla, for example Scachigerella imacula
Ta (Scutigerella immaculata);
From the order of the Thysanura, for example, Lepisma saccharin
a);
From the order of the Collembola, for example, Onychiur
us armatus);
Orthoptera, such as Blatta orien
talis), Periplaneta cockroach (Periplaneta americana), Leucophae Madera
D (Leucophaea maderrae), cockroach cockroach (Blattella germanica),
Cheetah domesticus (Acheta domesticus), Kera (Gryllotalpa spp.),
Nosama grasshopper (Locusta migratoria migratorioides), Melanoplus giffe
Lentialice (Melanoplus differentialis) and Sistoselka Gregaria
(Schistocerca gregaria);
From the order of the Dermaptere, for example, Holficula auriclaria (
Forficula auricularia);
From the termite (Isoptera), for example, Reticulitermes s
pp.);
From the louse (Anopolura), for example, Pediculus humanus corpori
s), furry lice (Haematopinus spp.) and furry lice (Linognat)
hus spp.);
From the order of the Mallophaga, e.g., Trichodectes spp.
) And Damalinea (Damalinea spp.);
From the order of the Thrips (Thysanoptera), such as the thrips Thrips (Hercinothr)
ips femoralis) and thrips thrips (Thrips tabac)
i);
Heteroptera, for example, Eurygaster spp.,
Dysdercus intermedius, Piesma Kwa
Dorata (Piesma quadrata), Bedbug (Cimex lectularius), Rodnius
-Prolix (Rhodnius prolixus) and Triatoma (Triatoma spp.);
Homoptera, for example, Aleurodes brassicae
ssicae), Whiteflies (Bemisia tabaci), Trialeurodes Vaporario
Rum (Trialeurodes vaporariorum), cotton aphid (Aphis gossypii),
Icon aphids (Brevicoryne brassicae), Cryptomics livis (Crypt
omyzus ribis), Aphis fabae, Doralis pomi (Doral)
is pomi), apple beetle (Eriosoma lanigerum), peach aphid (H
yalopterus arundinis, Phyloxera bastatrix (Phylloxera vasta)
trix), Pemphigus spp., Macrosidium aphid (Macrosi
phum avenae), Aphid aphid (Myzus spp.), Hop Ward aphid (Phorodon
humuli), wheat leaf bug (Rhopalosiphum padi), and leafhopper (Empoa)
sca spp.), Euscelis bilobatus,
Bi (Nephotettix cincticeps), Dogwood scale insect (Lecanium corni)
, Olive annulus (Saissetia oleae), Brown planthopper (Laodelpha)
x striatellus), brown planthopper (Nilaparvata lugens), red marl
Bugs (Aonidiella aurantii), White scale insects (Aspidiotus hederae)
Pseudo
coccus spp.) and lice (Psylla spp.);
Lepidoptera, for example, Pectinophora gossypie
lla), Bupalus piniarius, Kaymatvian bloomers
(Cheimatobia brumata) and Lithocolletis b.
lancardella), Hyponomeuta padella, Konaga (Plut)
ella maculipennis), Pterodes (Malacosoma neustria), Kwanokushimushi
(Euproctis chrysorrhoea), Gypsy moth (Lymantria spp.), Bukkaratri
Bucculatrix thurberiella, Citrus scuttlefish (Phyllo)
cnistis citrella), Nori (Agrotis spp.), Euxoa (Euxoa spp.), Fe
Lucia (Feltia spp.), Aerias insulana, Helio
Chis (Heliothis spp.), Spodoptera exigua,
Armyworm (Mamestra brassicae), Panolis flammea
, Spodoptera litura, Spodoptera sp.
p.), Trichoplusia ni, Carpocapsa pomonera (Car
pocapsa pomonella, green caterpillar (Pieris spp.), Nikamechu (Chilo spp.)
, Pleausta nubilalis, Ephestia kue
hniella), honey moth (Galleria mellonella), Teneoula biseriella (Ti
neola bisselliella), Tinea pellionella, Hofuma
Hofmannophila pseudospretella, Kakoe
Cacoecia podana, Capua reticulana
, Christoura Humiferana (Choristoneura fumiferan)
a), Clysia ambiguella, Chahamaki (Homona magna)
nima) and Tortrix viridana;
From the Coleoptera, for example, Anobium punctatum
punctatum), Rhinoceros beetle (Rhizopertha dominica), Brutigius
・ Bruchidius obtectus, bean weevil (Acanthoscel)
ides obtectus), Hylotrupes bajulus, Agela
Agelastica alni, Leptinotarsa desemlineata (Leptino
tarsa decemlineata), Phedon cochleariae,
Diabrotica spp., Psylliode chrysosepha
s chrysocephala), Newt's beetle (Epilachna varivestis), Ato
Maria (Atomaria spp.), Sawtooth beetle (Oryzaephilus surinamensis),
Hana weevil (Anthonomus spp.), Weevil (Sitophilus spp.), Otio
Lynx sulcus (Otiorrhychus sulcatus), weevil (Cosmopo)
lites sordidus), Chute Lynx assimillis (Ceuthorrhynchus assimilli)
s), Hypera postica, Dermestes spp.
, Trogoderma spp., Anthrenus (Anthrenus spp.), Ata
Genus (Attagenus spp.), Flycatcher beetle (Lyctus spp.), Merigetes
Aeneus (Meligethes aeneus), Leopard beetle (Ptinus spp.), Niptus
・ Hololeucus (Niptus hololeucus), Gibium psyll
oides), Tribolium spp.
Shi (Tene
brio molitor, click beetle (Agriotes spp.), conoderus (Conoderus spp)
.), Melorontha melolontha, Amphimalon so
Rusticianis (Amphimallon solstitialis) and costeritra zealanj
Mosquitoes (Costelytra zealandica);
Hymenoptera, such as pine wasp (Diprion spp.), Hoploca
Mupa (Hoplocampa spp.), Lasius (Lasius spp.), And Himeari (Monomori)
um pharaonis) and wasps (Vespa spp.);
Diptera, for example, Aedes spp., Anophel
es spp.), Culex spp., Drosophila mela
nogaster), Musca domestica (Musca spp.), Musca domestica (Fannia spp.), Clover
Calliphora erythrocephala, Flies and Lucilia spp
.), Obikin fly (Chrysomyia spp.), Cuterebra spp., Horse
Fly (Gastrophilus spp.), Hippobosca (Hyppobosca spp.), Fly (Stom
oxys spp.), sheep flies (Oestrus spp.), bullflies (Hypoderma spp.),
Tabanus (Tabanus spp.), Tania (Tannia spp.), Fly (Bibio hortulanus),
Oscinella frit, black flies (Phorbia spp.), Red
Zamogli flies (Pegomyia hyoscyami), Serachitis capitata (Cerati
tis capitata), fruit fly oleae (Dacus oleae) and gagbo pardosa
(Tipula paludosa);
Fleas (Siphonaptera), for example, Xenopsylla cheop
is), Ctenocephalides felis and Nagano
Mi (Ceratophyllus spp.);
Arachnida, such as Scorpio maurus
And Latrodectus mactans;
Of the order Acarina, for example, Acarus siro, Acarina
(Argas spp.), Kazuki mites (Ornithodoros spp.), Mites (Dermanyssus gall)
inae), Eriophyes ribis, Phylloco
ptruta oleivora), ox tick (Boophilus spp.), carp tick (Rhipice)
phalus spp.), Amblyomma (Amblyomma spp.), Ibama tick (Hyalomma spp.)
), Tick (Ixodes spp.), Narcissus (Psoroptes spp.), Shoku
Red-eared mite (Chorioptes spp.), Red-handed mite (Sarcoptes spp.), Dust mite
(Tarsonemus spp.), Clover spider mite (Bryobia praetiosa), Citrus apple
Mites (Panonychus spp.) And spider mites (Tetranychus spp.).
The composition according to the invention is preferably applied to flying insects, such as insects, fly, moth and the like.
But also covert pests, such as cockroaches or fleas (all their
It is used for controlling the growth stage. They are ousted from where they were hiding (F
Lashing effect), so that they are exposed to the newly coated active compound.
Dies on contact with membrane. When sprayed directly on cockroaches or fleas, they immediately
Turn over (knock down) and become irrecoverable (dead). Transfluthrin
A very wide range of formulations, such as spray cans, oil sprays, water based
Pump spraying, or by using ULV, hot fog and cold fog
, Such an effect can be achieved. Other suitable formulations are e.g.
John concentrate (EC), water-based emulsion concentrate
(EW) or wettable powder (WP).
Transfluthrin, in addition to the effects described above, also has the physical and
Acts to control cystic insects, preferably cockroaches or fleas, due to their biological properties
It can be used as a short-term formulation. Shorter duration of action depends on
It should be understood that the service period is several days (<1 week).
If such formulations can also be used as compounds that also show residual activity,
The formulation is active against all ages and grown cockroaches and fleas.
You.
Microencapsulation of transfluthrin in capsules such as polyurea
Then, despite the short-term effects of the active compound itself, its micro
Activated by capsule control system
Control release of the object can be achieved. This
A short active compound into a longer active formulation
be able to.
Non-microencapsulated amount (non-microencapsul
ate mount) as EC, EW or undiluted solution (AL)
Can be.
For example, transfluthrin is converted to free form (eg, as EW) and microcapsule.
By mixing in a sealed CS form (CS = microcapsule), water-based
And contains only one active compound and is excellent for controlling flying insects
Good activity with good knockdown effect and good flushing effect
It is possible to formulate aerosols that have a high residual effect on the control of skipjack insects.
Wear.
The ratio between the amount of encapsulated CS active compound and the amount of free EW is
It can vary depending on the intended purpose. Generally, 100 parts (CS): 0.1
A CS: EW ratio of 0.1 part (CS) to 100 parts (EW) from parts (EW) is used.
Preferably, 10 parts (CS): 0.1 part (EW) to 0.1 part (CS): 10 parts (
EW). Especially 1 copy (CS): 10 copies (EW) to 10 copies (CS)
A ratio of 1: 1 (EW) is preferred.
The active compound content of the use forms prepared from commercial preparations can vary within wide limits.
possible. The active compound concentration of the use form is from 0.0000001
It may range from 95% by weight, preferably from 0.0001 to 1% by weight.Transfluthrin microcapsules
Transfluthrin microcapsules are prepared by the boundary layer polymerization method. This micro
The capsule wall is made of, for example, a polyurea material. Hold the capsule wall
Formed at the boundary layer between the aqueous and organic phases from lysocyanates and polyfunctional amines
Let The polyisocyanate may be aromatic or aliphatic. This is small
Should be at least bifunctional but contain a higher number of isocyanate groups
You may. Examples of polyisocyanates for microencapsulation include toluene
Cyanate, diphenylmethane diisocyanate, phenylene diisocyanate
, Hexamethylene diisocyanate and 1,6-hexane diisocyanate
is there. Polyfunctional amines should also be at least bifunctional, for example,
Diamine, hexamethylenediamine, phenylenediamine, diethylenetriamine
Should be amines and tetraethylenepentamine. Organic phase
It consists of a sfluthrin solution and a polyisocyanate. Water phase with water and protective colloid
For example, PVA (polyvinyl alcohol)
), PVP (polyvinylpyrrolidone) or the like. The above aqueous and organic phases
To form an oil-in-water (O / W) emulsion.
To prevent the polyisocyanate from reacting with water). Then, the multifunctional
Of polyurea by adding a polymer and polymerizing at appropriate high temperature with polyisocyanate.
Form microcapsules. Transfluthrin microcapsule aqueous suspension is obtained
Can be However, in principle, transfluthrin microencapsulation
Other polymers can also be used.
The material of the capsule wall, the size of the microcapsules and the thickness of the polyurea wall, thus
The extent to which transfluthrin is released from the microcapsules can be adjusted as desired.
It can be adjusted using the combination parameters.
Formulation example of 1kg of microcapsule suspension with 10% transfluthrin
530 g of PVA (1% in water)
Transfluthrin 100g
Solvesso 200 ™ 285 g
15 g of diphenylmethane diisocyanate
45 g of diethylenetriamine (10% in water)
Kelzan S ™ (2%) + benzyl hemiphor
Mari (hemiformal) (4%) (in water)25g
1000g
After dissolving transfluthrin in Solvesso 200 ™,
Is mixed with diphenylmethane diisocyanate. Thereby the organic phase
Cause. An O / W emulsion is formed from this organic phase and the PVA solution at a temperature of 25 ° C.
[E.g., Jank & Kunk
el, Ultra from IKA-Labortechnik (Staufen)
This is done using a Turrax T50 ™). In this emulsion
The size of the droplet (which corresponds to the size of the microcapsule) depends on the speed of emulsification.
Adjustable in degree and time, for example, emulsification is performed at 7000 rpm for 2 minutes
.
Next, the diethylenetriamine solution is added with stirring. This mixture slowly
Heat to 60 ° C (over 1-2 hours). Hold at 60 ° C for about 5 hours while stirring
Carry. At this point, diphenylmethane diisocyanate and diethylene triamine
Upon completion of the polymerization of polyurea, microcapsules of polyurea are formed.
While stirring, Kelzan S ™ water gel is mixed with benzyl hemiformal.
[Kelzan S ™ is a polysaccharide that is a so-called xanthan gum
, A polymeric thickener from Kelco, and benzyl hemif
Lumar, a substance that releases formaldehyde, is available from Bayer.
AG).]
After the batch has cooled to room temperature, the experiment is terminated and transflutrin mimic
The black capsule suspension can be bagged.
However, transfluthrin microencapsulation may also result in other polymers.
It is entirely possible to use a variety of types.
For example, instead of the polyfunctional amine, the corresponding polyfunctional alcohol is replaced with the polyfunctional alcohol described above.
When reacted with isocyanate, instead of microcaps having a polyurethane structure
A cell is obtained.
For example, instead of the polyfunctional isocyanate, the corresponding polyfunctional acid chloride is described above.
Reaction with polyfunctional amines
Is obtained.Test of spray cans that give a flushing effect to cockroaches
This test was performed on a polymer dish with dimensions of 40 cm x 60 cm x 6 cm [type 23
Seedboxes, W.S. u. H. Fernholz Gm
bH & Co. KG (Meinerzhagen)]. That
Use filter paper instead of “tesa” ™ tape 4104 to cover the bottom
And kept it. By treating the side wall with talcum, cockroaches do not escape
I did it. Place a hidden place in the center of the dish and place a weighing bottle for drinking
Put it upside down as a container, fill it with water, and divide it into 1/3 outermost
Rusks were placed as food.
The bottom and cover of the above hidden place are covered with white DD-Lack polyurethane coating.
A horizontal web and a slide
The slide is made of Teflon. This structure is used for flathead screws and wing
But the desired depth of the hiding place is adjustable with the slide.
The design and dimensions of this hidden location can be seen in FIG. Slide above
By changing the horizontal web, the height of the hidden place can be changed.
After 24 hours, put 10 cockroaches of a specific species and stage or sex in each container.
Start the experiment. In general, after this time, all animals will be
I got inside. This latter is called a fume cupboard.
d) and transfer to a polymer container measuring 65 cm x 46.5 cm x 30 cm
Two glass cylinders (with a total height of 36 cm and a diameter of 1)
2 cm). S
A distance of 30 cm and a height of 2 g of the contents of the play can toward the opening of the hidden place
Was sprayed from a place of 36 cm.
After this spraying process is completed, the above hidden place is replaced with a glass ring treated with talcum.
(5 cm in height and 10 cm in diameter). Additional
The number of flushed-out cockroaches was increased to 1 for up to 5 minutes after treatment.
Count at minute intervals, count at 5 minute intervals up to 30 minutes, and after 60 minutes and 24 hours
Counted. After 60 minutes, cockroaches turn the 9.5cm diameter filter paper
As a guard against being kicked out and out,
I put it inside. Each test included one control treatment without the active compound.
Even if an expelled cockroach returns to its hiding place, generally
In both cases, they immediately fell from the above hidden places. After this experiment is over, hide above
Take out the place, rinse with acetone, put in a dishwasher, wash at 95 ° C, and dry
It was dried at 150 ° C. in a drying oven.
Spray can test for effect after spraying directly on insects
The test was performed in a fume cabinet
But here, the exhauster (exhauser)
Should be adjusted in a manner that does not interfere with the In each case, the inner diameter is 70mm and the height is
Wire mesh box (wire) of 10 mm and mesh size of 1.5 mm
One cockroach is placed in a mesh box. Put the prepared test container into
Place in the play equipment and fix at a 45 ° angle. Rear and bottom of the above mesh container
The area of the part is covered with absorbent filter paper, which is replaced after each test.
Spray cans on the above spray equipment, spray jet wire mesh
At right angles to the center of the wire mesh.
Place so that the measurement distance to the ray head nozzle is 60 cm. First, each test
The spray time required for the can to supply 2.4-2.8 g of the contents of the can is measured.
By measuring the weight of this can before and after each test, the amount used can be accurately measured. animal
To accurately measure the KD effect (KD = knockdown)
The stop clock is activated simultaneously with the spray nozzle.
Let Immediately after spraying, transfer the animals to a clean container and supply a swab,
After a specific time, the knockdown time and mortality (%) are evaluated.
Test method for testing residual action of spray cans on insects Substrate spraying
This process was performed in the fume cabinet, but here, the exhaust (
exhaust) in a manner that does not interfere with the spray jets leaving the can
It can be so. Until the bottom and wall of the above cabinet is 65cm high
Covered with filter paper.
The most important materials, especially glossy and matte tiles, PVC slabs, paint
Plywood can be processed. This treated substrate (15 x 15 cm in size)
= 225cmTwo) Is placed on a support ring (outer diameter: 10 cm), and
Is fixed at 5 cm and the support rod is fixed in such a manner that an angle of 55 ° occurs.
Tilt toward. All spray cans vary in composition and technical equipment and spray behavior
(Pressure, spray cone, droplet size)
Distance to do and
Prior to processing the actual substrate, each spray can is used to find the spray speed.
An experiment with a cardboard support (15 × 15 cm) needs to be performed for.
Spray distance 25-40c depending on spray can and spray can pressure
When m is reached, a uniform spraying of the support is achieved at the desired dosage. Half the cans by hand
It has proven convenient to guide along a circular line. Support spray jet
Starting from the upper left on the holding body, it is guided to the lower left through the right central part (see FIG. 2).
The amount sprayed outside the edge of the support, i.e., the amount of spray loss, depends on the peripheral portion of the cardboard.
It was about 10% as determined by the detailed experiment used.
By measuring the weight of the spray can before and after each spray operation, the contents of the can can be used.
The amount was measured.
50g / m of can contentsTwoTo apply in an amount of 225 cm of can contentsTwoHit
1.24 g must be applied. This amount includes the previously measured 10% spray loss
Is included.
The support is treated with an acceptable amount of can contents from 1.20 to 1.30 g.
If not, it must be discarded. Especially if the support does not show absorption
If the spray can becomes extremely wet, immediately flatten the support from the tilted position immediately after spraying.
Move to a different location to keep the spray coating from flowing. This spray coating dried
Thereafter, the support is transferred to a test chamber.Test animals and procedures
In each case, a group of five cockroaches was placed on the treated support and
Glass ring (9.5cm in diameter and 5.5cm in height)
Prior to processing the actual substrate, each spray is sprayed to find the spray speed.
Experiments with cardboard supports (15 x 15 cm) need to be performed on the cans.
Spray distance 25-40c depending on spray can and spray can pressure
When m is reached, a uniform spraying of the support is achieved at the desired dosage. Half the cans by hand
It has proven convenient to guide along a circular line. Support spray jet
Starting from the upper left on the holding body, it is guided to the lower left through the right central part (see FIG. 2).
The amount sprayed outside the edge of the support, i.e., the amount of spray loss, depends on the peripheral portion of the cardboard.
It was about 10% as determined by the detailed experiment used.
By measuring the weight of the spray can before and after each spray operation, the contents of the can can be used.
The amount was measured.
50g / m of can contentsTwoTo apply in an amount of 225 cm of can contentsTwoHit
1.24 g must be applied. This amount includes the previously measured 10% spray loss
Is included.
The support is treated with an acceptable amount of can contents from 1.20 to 1.30 g.
If not, it must be discarded. Especially if the support does not show absorption
If the spray can becomes extremely wet, immediately flatten the support from the tilted position immediately after spraying.
Move to a different location to keep the spray coating from flowing. This spray coating dried
Thereafter, the support is transferred to a test chamber.Test animals and procedures
In each case, a group of five cockroaches was placed on the treated support and
Glass ring (9.5cm in diameter and 5.5cm in height)
And hold it.Evaluation
In each case, after the test animals were allowed to flock on the treated support on day 1 after treatment,
Swarm every day from day 2 to day 4. 100% knockdown of this test
Are 15 minutes, 30 minutes, 60 minutes, 2 hours, 3 hours and 4
Evaluate after hours.
Testing spray cans for aerosol action.
The test was performed with the interior walls and ceiling made of stainless steel and in each case a window in the room.
The size attached is 20mThree(L = 2.84m, w = 2.33m, h = 3.0
3m) in a room (DIN 4571). Placing a matt tile on the floor
Tighten. In this test room, from the ceiling,
At a height of 1.80 m and a distance of 0.45 m from the individual wall, a wire cage (l =
8.5cm, diameter = 8.0cm, mesh size = 1.0mm)
In each case 20 test animals.
Inside this room, from the outside, at a height of 1.90m opposite the door
Through the opening (diameter = 13 cm) to place the contents of the spray can in the desired amount (use
Amount) and spray the amount with a fan (trademark "Progre").
ss ", type 958 5790-04 W11) (activate this for 1 minute)
To distribute evenly in the room. Evaluation is performed through a glass window.
Time to turn over 50% and 95% of the animals (KT50 and KT9
5; KT = knockdown time). Put the test animal in the room for 60 minutes
Leave. Next, the percentage (KD) of the animals turned over is determined. all
Remove all animals from their cages and use a clean plastic
Transfer to beaker. The beaker was impregnated with a 10% strength sugar solution.
Put in a roulose swab and seal with a perforated lid. Test animals should be kept in a pesticide-free atmosphere.
The mortality is measured after 24 hours in the atmosphere.
In addition to the test species, the composition of the active compound in the spray can, and the biological results
, Number of tests, amount of use (g / 20mThree) And spray time (sec), ambient temperature and
The ambient relative humidity can be seen in the table below.
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，
ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ
Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ
，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，
ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，
ＣＡ，ＣＮ，ＣＺ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，Ｍ
Ｘ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＫ，ＴＲ，ＵＡ
，ＵＳ
(72)発明者 レーア，ラインホルト
ドイツ連邦共和国デー−51469ベルギツシ
ユグラートバツハ・シユタイネンカンプ７────────────────────────────────────────────────── ───
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(72) Inventor Leer, Reinhold
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Jugrad Batuha Shuitainen Kamp 7