JPH10323182A - ホスホリパーゼａ１活性を有する細菌の培養液、ドコサヘキサエン酸高含有リン脂質の調製法及び２−アシルリゾリン脂質の製造法 - Google Patents

ホスホリパーゼａ１活性を有する細菌の培養液、ドコサヘキサエン酸高含有リン脂質の調製法及び２−アシルリゾリン脂質の製造法

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JPH10323182A
JPH10323182A JP10021962A JP2196298A JPH10323182A JP H10323182 A JPH10323182 A JP H10323182A JP 10021962 A JP10021962 A JP 10021962A JP 2196298 A JP2196298 A JP 2196298A JP H10323182 A JPH10323182 A JP H10323182A
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bacterium
dha
phospholipid
phospholipase
docosahexaenoic acid
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JP10021962A
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English (en)
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Kazuyoshi Yazawa
一良 矢澤
Kazuo Watabe
和郎 渡部
Masazumi Kamata
正純 鎌田
Hiroshi Muramatsu
宏 村松
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sagami Chemical Research Institute
Fuji Yakuhin Co Ltd
Original Assignee
Sagami Chemical Research Institute
Fuji Yakuhin Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】 【課題】 ホスホリパーゼＡ1の新たな供給源を提供す
ると共に、ＤＨＡ高含有リン脂質及びリゾリン脂質をよ
り効率良く大量に調製しうる方法を提供する。 【解決手段】 ホスホリパーゼＡ1活性を有する、ドコ
サヘキサエン酸産生細菌の培養液、この培養液を用いて
ドコサヘキサエン酸含有リン脂質を加水分解することか
らなる、ドコサヘキサエン酸高含有リン脂質の調製法、
およびその培養液を用いてリン脂質を加水分解すること
からなる、２−アシルリゾリン脂質の製造法。 【効果】 リン脂質の改質、脂質生化学研究などに有用
なホスホリパーゼＡ1活性を有する培養液を提供し、こ
れによりリパーゼよりも効率良くＤＨＡ高含有リン脂質
が調製できると共に、２−アシルリゾリン脂質を効率良
く製造することができる。又、ＤＨＡ合成遺伝子を組み
込んだ他の生物に利用することによってＤＨＡ含有脂質
の生産を高めることが期待できる。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明はホスホリパーゼＡ1
活性を有するドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ）産生細菌の
培養液、この培養液を用いるＤＨＡ高含有リン脂質の調
製法及び２−アシルリゾリン脂質の製造法に関する。
【０００２】
【従来の技術】ＤＨＡは、n-3系列の高度不飽和脂肪酸
としてn-6系列のエイコサノイドの生成を競合的に抑制
するほか、同じn-3系列の高度不飽和脂肪酸であるエイ
コサペンタエン酸（以下ＥＰＡ）やα-リノレン酸には
ない記憶学習能向上作用、抗アレルギー作用、抗腫瘍作
用等を有することが知られている。ＤＨＡは魚油からト
リグリセリドとして大量に単離されるため、健康食品と
しての市場が確立されている。しかし、生体内における
ＤＨＡの存在形態はリン脂質であること、ＤＨＡを経口
投与した場合、リン脂質型の方がトリグリセリド型より
も高い生理活性を有することなどがわかっている。現在
のＤＨＡ高含有リン脂質は、海産魚介類のリン脂質から
の抽出、ＤＨＡ産生細菌による発酵生産、卵黄レシチン
などのドコサヘキサエン酸含有リン脂質のリパーゼによ
る濃縮等により調製されている。しかしながらこれらの
従来技術には、１）魚介類からの抽出は夾雑物が多く大
量に得るには困難を伴う、２）細菌による発酵生産はコ
ストが高くなる、３）リパーゼによる濃縮においては、
基質となる卵黄レシチンを卵黄脂質から精製し、リン脂
質の約２倍量存在するトリグリセリドを除去する必要が
あるなどの欠点があった。
【０００３】リゾリン脂質は通常のリン脂質より高い界
面活性を有し、食品への利用に際して極めて効果的な脂
質形態であることが知られている。リゾリン脂質は食品
の乳化安定性、食感、弾力性をリン脂質以上に改善でき
るとともに他の乳化剤の使用量を節約することができ
る。また、食品用途の他に化粧品用乳化剤としても利用
価値がある。リゾリン脂質の調製方法としてホスホリパ
ーゼＡ2による方法が知られている。現在、工業的に利
用できるホスホリパーゼＡ2は豚膵臓を起源とする酵素
だけであり、１−アシルリゾリン脂質によるエマルジョ
ンに比べて、２−アシルリゾリン脂質によるエマルジョ
ンは油層分離率が著しく低い点（第３５回油化学討論
会、講演番号Ｐ１０）で問題がある。一方、ホスホリパ
ーゼＡ1によるリゾリン脂質の工業的生産は行われてい
ない。
【０００４】ホスホリパーゼはトリグリセリドを加水分
解しないので、基質中にトリグリセリドが存在していて
も、ジグリセリドやモノグリセリドが生成せず、リン脂
質の加水分解生成物であるリゾリン脂質の精製を阻害し
ない。一般にＤＨＡはリン脂質のsn-2位に結合している
ので、これを濃縮するにはホスホリパーゼＡ1活性が必
要である。これまでに知られているホスホリパーゼＡ1
は細胞膜中に存在し、大量生産は容易ではない。最近ア
スペルギルス属の糸状菌からホスホリパーゼＡ 1 の調製
法が開発されたが（特開平7-222592）、培養に長時間を
要し菌体を含む培地からの酵素の抽出操作は煩雑であ
る。
【０００５】ホスホリパーゼＡ1は動物の膵臓や肝臓、
微生物に存在し、ホスホリパーゼＡ2と共にリン脂質の
代謝回転に寄与している。また、リン脂質の脂肪酸分子
内分布の解析や脂質生化学研究において有用な酵素であ
るが、現在のところ精製品も含めて市販品はない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、リン
脂質の改質、脂質生化学研究などに有用なホスホリパー
ゼＡ1の新たな供給源を提供すると共に、ＤＨＡ高含有
リン脂質及びリゾリン脂質をより効率良く大量に調製し
うる方法を提供することにある。
【０００７】
【課題を解決するための手段】本発明者等は上述の課題
を解決するために鋭意研究した結果、ＤＨＡを産生する
細菌の培養液中にホスホリパーゼＡ1活性を検出した。
また、卵黄リン脂質及びイカの皮から抽出したリン脂質
を基質とした場合、このホスホリパーゼＡ1活性によっ
て生成したリゾリン脂質中にＤＨＡが濃縮されているこ
と、及び大豆リン脂質を基質とした場合、生成したリゾ
リン脂質の構成脂肪酸がホスホリパーゼＡ2の加水分解
により生成した脂肪酸と一致することを見いだし、本発
明を完成させるに至った。
【０００８】すなわち本発明は、ホスホリパーゼＡ1活
性を有する、ドコサヘキサエン酸産生細菌の培養液、及
びその培養液を用いてドコサヘキサエン酸含有リン脂質
を加水分解することからなる、ドコサヘキサエン酸高含
有リン脂質の調製法及び、その培養液を用いてリン脂質
を加水分解することからなる２−アシルリゾリン脂質の
製造法を提供する。
【発明の実施の形態】
【０００９】本発明において、培養液とは、ＤＨＡ産生
細菌を培養して得られる培養産物をすべて包含するもの
であり、菌体を含んでいても、含んでいなくてもよい。
本発明に係わるＤＨＡ産生細菌としてはシーワネラ属、
シュードアルテロモナス属、及びビブリオ属などに属す
るものを挙げることができ、例えばシーワネラ・ベンチ
カ類縁のSCRC-21406（FERM P-15693）、シュードアルテ
ロモナス属のSCRC-21416（FERM P-15935）、ビブリオ・
マリナス（ATCC15381）などが含まれるが、ＤＨＡを産
生する細菌であれば属、種によらず含まれる。本発明の
培養液は、これらの菌株を、例えば常法に従ってペプト
ンと酵母エキスを含む培地で培養した後、慣用の方法で
単離、精製することにより得られる。本発明の調製法及
び製造法においては、遠心によって菌体を除去した培地
（培養上清）を用いることが好ましい。基質としては大
豆、菜種などの植物、イクラ、イカ、卵黄などの陸産及
び海産動物、バクテリア、酵母などの微生物由来の天然
に存在するリン脂質、及び化学的、酵素的に調製された
リン脂質など、sn-1位エステル結合を有するリン脂質で
あれば用いることができる。ドコサヘキサエン酸高含有
リン脂質の調製にあたっては、これらのリン脂質のう
ち、とくにドコサヘキサエン酸含有率の多いもの、例え
ば、イクラ、イカ、卵黄、バクテリアなどに由来するも
のが好ましい。
【００１０】
【実施例】以下、参考例と実施例により本発明を詳細に
説明する。ただし、本発明はこれらに限定されるもので
はない。
【００１１】実施例１ ＤＨＡ産生細菌SCRC-21406（FERM P-15693）をP5培地
（ペプトン 5.0%、酵母エキス 0.5%、人工海水 50%）に
植菌して8℃で約48時間振盪培養した。遠心で菌体を除
去して培養上清を得た。基質として1-パルミトイル-2-
オレオイルホスファチジルコリン（16:0/ 18:1(n-9)-P
C）、又は1-オレオイル-2-パルミトイルホスファチジル
コリン（18:1(n-9)/ 16:0-PC） 5mg、培養上清 0.2mlに
蒸留水を加え、全量を 1mlにした。30℃で5時間撹拌し
た後、フォルチ法で脂質を抽出した後、シリカゲルTLC
でリゾホスファチジルコリン（LPC）を分画した。塩酸
メタノール法でLPCの構成脂肪酸を塩酸メタノール法で
メチルエステルとして得た後、ガスクロマトグラフィで
定量分析した。原料とLPCの脂肪酸組成を表１に示す。
両基質ともLPCにはsn-1位とsn-2位の脂肪酸が検出され
たが、sn-2位の脂肪酸が多く残っており、sn-1位のアシ
ル基が選択的に加水分解された。即ち、酵素溶液として
用いた培養上清中には、主要な加水分解活性としてホス
ホリパーゼＡ1活性が存在することが確認された。
【００１２】
【表１】 表１ ＤＨＡ産生細菌SCRC-21406の培養上清を用いたホスファチジル コリンの加水分解反応で生成したLPCの脂肪酸組成（ｍｏｌ％） ─────────────────────────────── 16:0/18:1(n-9)-PC 18:1(n-9)/16:0-PC 16:0 18:1(n-9) 16:0 18:1(n-9) (mol％) (mol％) (mol％) (mol％) ─────────────────────────────── 原料 48.3 51.7 48.1 51.9 LPC 17.4 82.6 92.9 7.1 ───────────────────────────────
【００１３】参考例１ シーワネラ・ベンチカに類縁のＤＨＡ産生細菌SCRC-214
06（FERM P-15693）をK28培地（ペプトン 0.5%、酵母エ
キス 0.1%、人工海水 50%）に植菌して8℃で約48時間振
盪培養した。遠心で菌体を除去して培養上清を得た。基
質としてのオリーブ油 1ml或いはトリグリセリド／ジグ
リセリド（2:1, mol/mol）混合物 1mlに培養上清 3mlを
加え、30℃で24時間撹拌した。反応溶液をシリカゲルTL
Cに展開した結果、遊離酸の生成は検出されず、加水分
解は確認されなかった。従って、この培養上清はリパー
ゼ活性を有しないことが判明した。
【００１４】実施例２ シーワネラ・ベンチカに類縁のＤＨＡ産生細菌SCRC-214
06（FERM P-15693）を実施例１と同様に培養して培養上
清を得た。卵黄リン脂質 25mg、培養上清 1mlに蒸留水
を加え、全量を 5mlにした。反応及び反応溶液からの脂
質抽出は実施例１と同様に行った。脂質はシリカゲルTL
Cに展開し、残存した基質（ＰＣ＝ホスファチジルコリ
ン、ＰＥ＝ホスファチジルエタノールアミン）、加水分
解で生成したリゾリン脂質（ＬＰＣ＝リゾホスファチジ
ルコリン、ＬＰＥ＝リゾホスファチジルエタノールアミ
ン）及び遊離酸（ＦＡ）に分画した。各々の構成脂肪酸
組成分析は実施例１と同様に行った。リン脂質の加水分
解率は 23.8%、リン脂質組成と各々のＤＨＡ含量を表２
に示す。
【００１５】参考例２ 大腸菌JM109株をLB培地（バクトペプトン 1.0%、酵母エ
キス 0.5%、NaCl 1.0%）に植菌して37℃で約20時間振盪
培養した。培養液の菌体密度は610nmの吸光度（以下OD6
10）で4.50であった。遠心で菌体を除去して培養上清を
得た。実施例２と同じ卵黄リン脂質 25mg、培養上清 1m
lに蒸留水を加え、全量を 5mlにした。反応及び脂質脂
肪酸分析は実施例２と同様に行った。その結果、加水分
解率は 検出限界以下であった。反応後のリン脂質組成
と各々のＤＨＡ含量は表２にまとめた。
【００１６】参考例３ シーワネラ・ピュトリファシエンスに類縁のＥＰＡ産生
細菌SCRC-2738をK28培に植菌して14℃で約20時間振盪培
養した。遠心で菌体を除去して培養上清を得た。実施例
２と同じ卵黄リン脂質 25mg、培養上清 1mlに蒸留水を
加え、全量を 5mlにした。反応及び脂質脂肪酸分析は実
施例２と同様に行った。リン脂質の加水分解率は 検出
限界以下であった。反応後のリン脂質組成と各々のＤＨ
Ａ含量を表２にまとめた。このようにＤＨＡ産生菌培養
上清のホスホリパーゼＡ1活性によってリゾリン脂質に
ＤＨＡが濃縮された。大腸菌やＥＰＡ産生細菌にはこの
ような活性は検出されなかった。
【００１７】
【表２】 表２ ＤＨＡ産生細菌SCRC-21416、大腸菌JM109及びＥＰＡ産生細菌SCRC-2738の 培養上清を用いた卵黄リン脂質の加水分解反応生成物の脂質組成（ｍｏｌ％）と ＤＨＡ含有量（ｍｏｌ％） ─────────────────────────────────── 原料 実施例２ 参考例２ 参考例３ 脂質 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) ─────────────────────────────────── PC 80.8 17.1 49.6 16.1 71.2 20.7 79.4 16.7 PE 13.3 38.5 10.5 42.5 19.8 32.6 11.2 24.5 LPC 3.5 10.0 20.9 41.1 5.4 7.0 6.5 9.1 LPE 2.4 14.0 13.1 41.1 3.7 5.8 2.9 19.9 ─────────────────────────────────── PL* 98.1 19.6 74.4 23.9 98.8 22.5 98.8 17.4 FA 1.9 17.4 25.7 6.4 1.2 18.2 1.2 18.6 ───────────────────────────────────* PLは総リン脂質でPC、PE、LPC、LPEの合計
【００１８】実施例３ 実施例１のＤＨＡ産生細菌SCRC-21406（FERM P-1569
3）、シュードアルテロモナスに属するＤＨＡ産生細菌S
CRC-21416（FERM P-15935）、ビブリオ・マリナス（ATC
C15381）をK28培地に植菌して8℃で約43時間振盪培養し
た。遠心で菌体を除去して培養上清を得た。実施例２と
同じ卵黄リン脂質 25mg、培養上清 1mlに蒸留水を加
え、全量を 5mlにした。反応及び脂質脂肪酸分析は実施
例２と同様に行った。リン脂質の加水分解率はSCRC-214
06, SCRC-21416, ビブリオ・マリナスが各々26.6, 14.
9, 16.4 %、リン脂質組成と各々のＤＨＡ含量を表３に
示す。属の異なるＤＨＡ産生細菌の培養上清を用いて
も、ＤＨＡがリゾリン脂質中に濃縮された。
【００１９】
【表３】 表３ ＤＨＡ産生細菌SCRC-21406、SCRC-21416、ビブリオ・マリナスの培養上清 を用いた卵黄リン脂質の加水分解反応生成物の脂質組成（ｍｏｌ％）とＤＨＡ含 有量（ｍｏｌ％） ─────────────────────────────────── 原料 SCRC-21406 SCRC-21416 ヒ゛フ゛リオ・マリナス 脂質 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) ─────────────────────────────────── PC 82.8 12.1 55.2 11.8 64.9 10.3 57.8 12.7 PE 13.0 33.3 10.0 30.3 11.1 32.4 9.8 35.7 LPC 1.2 7.2 25.8 20.5 18.0 24.4 25.1 24.0 LPE 3.0 13.2 9.0 26.0 6.0 30.5 7.3 29.6 ─────────────────────────────────── PL* 97.1 14.8 70.5 16.2 82.2 15.2 80.7 17.8 FA 2.9 18.6 29.5 3.4 17.8 4.8 19.3 3.4 ───────────────────────────────────* PLは総リン脂質でPC、PE、LPC、LPEの合計
【００２０】実施例４ 実施例１のＤＨＡ産生細菌SCRC-21406（FERM P-1569
3）、シュードアルテロモナスに属するＤＨＡ産生細菌S
CRC-21416（FERM P-15935）、ビブリオ・マリナス（ATC
C15381）をK28培地に植菌して8℃で約39時間振盪培養し
た。遠心で菌体を除去して培養上清を得た。イカの皮か
ら抽出したホスファチジルコリン 10mg、培養上清 0.4m
lに蒸留水を加え、全量を 2mlにした。反応及び脂質脂
肪酸分析は実施例２と同様に行った。リン脂質の加水分
解率はSCRC-21406, SCRC-21416, ビブリオ・マリナスが
各々12.4, 14.2, 17.1 %、リン脂質組成と各々のＤＨＡ
含量を表４に示す。イカの皮から抽出したホスファチジ
ルコリンから、ＤＨＡ産生菌の培養上清を用いてＤＨＡ
含量を高めたリゾリン脂質を調製できた。
【００２１】
【表４】 表４ ＤＨＡ産生細菌SCRC-21406、SCRC-21416、ビブリオ・マリナスの培養上清 を用いたイカリン脂質の加水分解反応生成物の脂質組成（ｍｏｌ％）とＤＨＡ含 有量（ｍｏｌ％）） ─────────────────────────────────── 原料 SCRC-21406 SCRC-21416 ヒ゛フ゛リオ・マリナス 脂質 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ 組成 ＤＨＡ (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) (mol%)(mol%) ─────────────────────────────────── PC 100.0 43.2 70.8 45.8 73.5 48.1 71.7 47.1 LPC 0.0 0.0 29.2 73.1 26.5 74.2 28.3 73.1 ─────────────────────────────────── PL* 100.0 43.2 80.5 50.5 79.1 52.1 78.1 52.1 FA 0.0 0.0 19.5 7.3 20.9 6.7 21.9 5.9 ───────────────────────────────────* PLは総リン脂質でPC、LPCの合計
【００２２】実施例５ シュードアルテロモナスに属するＤＨＡ産生細菌SCRC-2
1416（FERM P-15935）、をP5培地に植菌して8℃で約40
時間振盪培養した。遠心で菌体を 除去して培養上清を
得た。大豆から抽出したホスファチジルコリン 10mg、
ジエチルエーテル1mLに培養上清 0.4mlを加え、30分間
撹拌した。脂質脂肪酸分析は実施例２と同様に行った。
リン脂質の加水分解率は33.0%、加水分解反応生成物の
脂肪酸組成を表５にまとめた。
【００２３】参考例４ 実施例５の生成物であるリゾリン脂質が２−アシルリゾ
リン脂質であることを確認するために、以下の実験を行
った。大豆から抽出したホスファチジルコリン 5mg、ジ
エチルエーテル 1mL、ホウ酸緩衝液（pH7.1） 0.2mlに
豚膵臓起源ホスホリパーゼＡ2を加え、37℃で1時間撹拌
した。生成したリゾリン脂質の脂肪酸分析は実施例２と
同様に行った。なお、リン脂質の加水分解率は12.9%で
あり、結果を表５に示した。
【００２４】
【表５】 表５ ＤＨＡ産生細菌SCRC-21416の培養上清及びホスホリパーゼＡ2を 用いた大豆リン脂質の加水分解反応生成物の脂肪酸組成（ｍｏｌ％） ──────────────────────────────── 脂肪酸 原料 SCRC-21416* ホスホリハ゜ーセ゛A2 * PC LPC FA LPC ──────────────────────────────── C16:0 11.9 1.1 11.7 11.8 C18:0 3.3 0.3 3.4 5.0 C18:1(n-9) 5.5 3.3 2.1 2.3 C18:1(n-7) 1.4 0.0 1.2 1.1 C18:2(n-6) 70.2 41.0 28.5 26.9 C18:3(n-3) 7.7 4.3 3.1 2.9 ────────────────────────────────* LPCとFAは、各々の合計が50%になるように計算した。
【００２５】このように、大豆から抽出したホスファチ
ジルコリンから、ＤＨＡ産生菌の培養上清を用いて得た
遊離脂肪酸の組成と、豚膵臓起源ホスホリパーゼＡ2か
ら得たリゾリン脂質の脂肪酸組成がよく一致した。すな
わち、ＤＨＡ産生菌の培養上清を用いることにより、選
択的に２−アシルリゾリン脂質を製造することができ
た。
【００２６】
【発明の効果】リン脂質の改質、脂質生化学研究などに
有用なホスホリパーゼＡ1活性を有する培養液を提供す
る。リパーゼよりも効率良くＤＨＡ高含有リン脂質が調
製できると共に、２−アシルリゾリン脂質を効率良く製
造することができる。又、ＤＨＡ合成遺伝子を組み込ん
だ他の生物に利用することによってＤＨＡ含有脂質の生
産を高めることが期待できる。
─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成１０年３月１２日
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０００９
【補正方法】変更
【補正内容】
【０００９】本発明において、培養液とは、ＤＨＡ産生
細菌を培養して得られる培養産物をすべて包含するもの
であり、菌体を含んでいても、含んでいなくてもよい。
本発明に係わるＤＨＡ産生細菌としてはシーワネラ属、
シュードアルテロモナス属、及びビブリオ属などに属す
るものを挙げることができ、例えばシーワネラ・ベンチ
カ類縁のＳＣＲＣ−２１４０６（ＦＥＲＭ Ｐ−１５６
９３）、シュードアルテロモナス属のＳＣＲＣ−２１４
１６（ＦＥＲＭ Ｐ−１５９３５）、ビブリオ・マリナ
ス（ＡＴＣＣ１５３８１）などが含まれる。ＳＣＲＣ−
２１４０６は、通商産業省 工業技術院生命工学工業技
術研究所 特許微生物寄託センターにＦＥＲＭ Ｐ−１
５６９３として寄託され、平成９年６月１３日付で同生
命工学工業技術研究所 特許微生物寄託センターにおい
てＦＥＲＭ ＢＰ−５９７９としてブタペスト条約に基
く国際寄託に移管された。ＳＣＲＣ−２１４１６は、通
商産業省 工業技術院生命工学工業技術研究所 特許微
生物寄託センターにＦＥＲＭ Ｐ−１５９３５として寄
託され、平成９年６月１３日付で同生命工学工業技術研
究所 特許微生物寄託センターにおいてＦＥＲＭ ＢＰ
−５９８０としてブタペスト条約に基く国際寄託に移管
された。ＤＨＡを産生する細菌であれば属、種によらず
含まれる。本発明の培養液は、これらの菌株を、例えば
常法に従ってペプトンと酵母エキスを含む培地で培養し
た後、慣用の方法で単離、精製することにより得られ
る。本発明の調製法及び製造法においては、遠心によっ
て菌体を除去した培地（培養上清）を用いることが好ま
しい。基質としては大豆、菜種などの植物、イクラ、イ
カ、卵黄などの陸産及び海産動物、バクテリア、酵母な
どの微生物由来の天然に存在するリン脂質、及び化学
的、酵素的に調製されたリン脂質など、ｓｎ−１位エス
テル結合を有するリン脂質であれば用いることができ
る。ドコサヘキサエン酸高含有リン脂質の調製にあたっ
ては、これらのリン脂質のうち、とくにドコサヘキサエ
ン酸含有率の多いもの、例えば、イクラ、イカ、卵黄、
バクテリアなどに由来するものが好ましい。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 ＦＩ (Ｃ１２Ｎ 1/20 Ｃ１２Ｒ 1:63） (Ｃ１２Ｐ 9/00 Ｃ１２Ｒ 1:01） (Ｃ１２Ｐ 9/00 Ｃ１２Ｒ 1:63） (Ｃ１２Ｐ 7/64 Ｃ１２Ｒ 1:01） (Ｃ１２Ｐ 7/64 Ｃ１２Ｒ 1:63）

Claims (4)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 ホスホリパーゼＡ1活性を有する、ドコ
    サヘキサエン酸産生細菌の培養液。
  2. 【請求項２】 細菌がシーワネラ属、シュードアルテロ
    モナス属、ビブリオ属に属するものである、請求項１に
    記載のドコサヘキサエン酸産生細菌の培養液。
  3. 【請求項３】請求項１に記載の培養液を用いてドコサヘ
    キサエン酸含有リン脂質を加水分解することからなる、
    ドコサヘキサエン酸高含有リン脂質の調製法。
  4. 【請求項４】請求項１に記載の培養液を用いてリン脂質
    を加水分解することからなる、２−アシルリゾリン脂質
    の製造法。
JP10021962A 1997-03-27 1998-02-03 ホスホリパーゼａ１活性を有する細菌の培養液、ドコサヘキサエン酸高含有リン脂質の調製法及び２−アシルリゾリン脂質の製造法 Pending JPH10323182A (ja)

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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999058643A1 (fr) * 1998-05-14 1999-11-18 Sagami Chemical Research Center Micro-organisme produisant de l'acide docosahexanoique et une phospholipase a1, milieu de culture liquide de ce micro-organisme, procede de preparation d'un phospholipide, et procede de production de 2-acyllysophospholipide
WO2007097160A1 (ja) 2006-02-27 2007-08-30 Tokyo University Of Marine Science And Technology 新規微生物、脂質改質剤、２－アシルリゾリン脂質の製造方法、ジアシルグリセロールの製造方法、セラミドの製造方法及び油脂の脱ガム法
CN102266356A (zh) * 2011-07-21 2011-12-07 青岛科技大学 一种利用假交替单胞菌制备鳗弧菌杀菌剂的方法

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