JPH0870865A - Tropolone-resistant gene and new microorganism containing the same - Google Patents
Tropolone-resistant gene and new microorganism containing the sameInfo
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- JPH0870865A JPH0870865A JP23446094A JP23446094A JPH0870865A JP H0870865 A JPH0870865 A JP H0870865A JP 23446094 A JP23446094 A JP 23446094A JP 23446094 A JP23446094 A JP 23446094A JP H0870865 A JPH0870865 A JP H0870865A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、イネ苗立枯細菌病菌シ
ュウドモナス・プランタリー(Pseudomonasplantarii
)が産生するトロポロン耐性を示すシュウドモナス・
プランタリー由来の新規な遺伝子PP-151、PP-161、PP-2
1-1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1 並
びにこれらの遺伝子を含む新規な微生物に関する。これ
らの遺伝子によって形質転換されたイネは、シュウドモ
ナス・プランタリーの産生するトロポロンに対する耐性
が付与され、イネ苗立枯細菌病の防除に寄与できること
が期待される。FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to Pseudomonas plantarii.
) -Producing tropolone-resistant Pseudomonas
Plantation-derived novel genes PP-151, PP-161, PP-2
The present invention relates to 1-1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-30-1, and a novel microorganism containing these genes. It is expected that the rice transformed with these genes will be endowed with resistance to tropolone produced by Pseudomonas plantaly and can contribute to the control of bacterial seedling bacterial disease.
【0002】[0002]
【従来の技術】イネ苗立枯細菌病菌は、1982年に千葉県
で発生が確認されて以来、全国各地でイネ育苗時の重要
病害とされている。本病は種子伝染性の細菌病害であ
り、発生生態について不明な点が多く発生予察が困難な
ことや防除薬剤が数少ないことなどから、防除法の確立
が急務とされている。2. Description of the Related Art Rice seedling blight fungus has been regarded as an important disease at rice seedling raising all over the country since its occurrence was confirmed in Chiba Prefecture in 1982. This disease is a seed-borne bacterial disease, and it is urgently necessary to establish a control method because there are many unclear points regarding the ecology of occurrence and it is difficult to predict the occurrence of the disease and there are few control agents.
【0003】イネ苗立枯細菌病のイネ苗に対する病徴発
現にはシュウドモナス・プランタリーが産生するトロポ
ロンが関与しており、トロポロン処理をしたイネ幼苗で
はイネ苗立枯細菌病罹病苗と同様の根の伸張阻害に伴う
地上部の委凋化が認められる。また、シュウドモナス・
プランタリーの非宿主である十字科植物やキク科植物に
トロポロン処理を行うと根の伸張阻害、地上部の委凋化
および黄化が認められることから、トロポロンは宿主非
特異的毒素であると考えられている。さらに、トロポロ
ンは、シュウドモナス・プランタリー以外の細菌や糸状
菌に対して抗菌活性を有することが明らかにされてい
る。[0003] Tropolone produced by Pseudomonas plantaly is involved in the manifestation of disease symptoms of rice seedling bacterial killing on rice seedlings, and the rice seedlings treated with tropolone are similar to the rice seedling bacterial bacterial disease infected seedlings. Commitment of the aboveground part is observed due to inhibition of root elongation. Also, Pseudomonas
Tropolone is a non-host-specific toxin because tropolone treatment of plantless non-host cruciform and asteraceae plants shows root elongation inhibition, aerial part deprivation and yellowing. It is considered. Furthermore, tropolone has been shown to have antibacterial activity against bacteria and filamentous fungi other than Pseudomonas plantaly.
【0004】しかしながら、トロポロンの植物や細菌に
対する作用機構については明らかにされておらず、トロ
ポロン耐性遺伝子について研究された例はない。また、
イネ苗立枯細菌病やトロポロン抵抗性を示すイネの品種
も見いだされていない。However, the mechanism of action of tropolone on plants and bacteria has not been clarified, and there has been no study of tropolone resistance gene. Also,
Neither rice cultivar showing resistance to bacterial seedling blight or tropolone has been found.
【0005】ところで、宿主非特異的毒素抵抗性遺伝子
とそれを利用した耐病性植物の作出については、タバコ
野火病菌シュウドモナス・シリンゲ・タバチ(P.syring
ae pv.tabaci)が産生するタブトキシンの不活性酵素遺
伝子(ttr )のシュウドモナス・シリンゲ・タバチから
の単離とttr で形質転換したタバコ野火病耐性タバコの
例が報告されている(Anzai, H. et al., Mol. Gen. Ge
net. 219, 492 )。By the way, regarding the production of a host non-specific toxin resistance gene and a disease resistant plant using the same, P. syring (P. syring)
The inactive enzyme gene (ttr) of tabtoxin produced by P. ae pv. tabaci) was isolated from Pseudomonas syringae tabachi and an example of tobacco wildfire resistant tobacco transformed with ttr has been reported (Anzai, H. et al., Mol. Gen. Ge
net. 219, 492).
【0006】この報告で示されているように、宿主非特
異的毒素であり他の細菌や糸状菌に対しても抗菌活性を
有する物質に対して、産生菌自身が耐性を示す場合、産
生菌自身はこの物質に対する耐性機構を有しており、そ
の情報は産生菌ゲノムDNAにあると考えられている。[0006] As shown in this report, when the producing bacterium itself is resistant to a substance which is a host non-specific toxin and has antibacterial activity against other bacteria and filamentous fungi, It itself has a resistance mechanism to this substance, and it is thought that the information is in the genomic DNA of the producing bacterium.
【0007】[0007]
【発明が解決しようとする課題】本発明の課題は、トロ
ポロン耐性遺伝子及び該遺伝子を含む微生物を提供する
ことにある。An object of the present invention is to provide a tropolone resistance gene and a microorganism containing the gene.
【0008】[0008]
【課題を解決するための手段】上記課題を解決するため
に、トロポロンを産生するシュウドモナス・プランタリ
ー自身がトロポロンに対して耐性を示す(例えば、シュ
ウドモナス・プランタリーは、 200ppm のトロポロン存
在下であっても生育する。)ことに着眼して研究を進め
た結果、シュウドモナス・プランタリー由来のトロポロ
ン耐性遺伝子PP-151、PP-161、PP-21-1 、PP-21-2 、PP
-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1 を単離することに成功
し、本発明を完成するに至った。[Means for Solving the Problems] In order to solve the above problems, Pseudomonas plantaly which produces tropolone itself is resistant to tropolone (for example, Pseudomonas plantaly is present in the presence of 200 ppm of tropolone. However, as a result of the research, the tropolone resistance genes PP-151, PP-161, PP-21-1, PP-21-2, PP derived from Pseudomonas plantaly were obtained.
-21-4, PP-21-5 and PP-30-1 were successfully isolated, and the present invention was completed.
【0009】本発明は、シュウドモナス・プランタリー
由来のトロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.9キ
ロベースであり、図1の制限酵素地図で表現される遺伝
子PP-151を提供する。さらに、本発明は、シュウドモナ
ス・プランタリー由来のトロポロン耐性遺伝子であっ
て、塩基長が 1.2キロベースであり、図2の制限酵素地
図で表現される遺伝子PP-161を提供する。The present invention provides a gene PP-151, which is a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly and has a base length of 1.9 kilobases and represented by the restriction enzyme map of FIG. Furthermore, the present invention provides a gene PP-161 derived from Pseudomonas plantaly, which has a tropolone resistance gene and has a base length of 1.2 kilobases and is represented by the restriction map of FIG.
【0010】さらに、本発明は、シュウドモナス・プラ
ンタリー由来のトロポロン耐性遺伝子であって、塩基長
が 0.1キロベースであり、図3の制限酵素地図で表現さ
れる遺伝子PP-21-1 を提供する。さらに、本発明は、シ
ュウドモナス・プランタリー由来のトロポロン耐性遺伝
子であって、塩基長が 1.3キロベースであり、図4の制
限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-2 を提供する。Furthermore, the present invention provides a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly which has a base length of 0.1 kilobase and is represented by the gene PP-21-1 represented by the restriction map of FIG. . Further, the present invention provides a gene PP-21-2, which is a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, has a base length of 1.3 kilobases and is represented by the restriction map of FIG. 4.
【0011】さらに、本発明は、シュウドモナス・プラ
ンタリー由来のトロポロン耐性遺伝子であって、塩基長
が 0.5キロベースであり、図5の制限酵素地図で表現さ
れる遺伝子PP-21-4 を提供する。さらに、本発明は、シ
ュウドモナス・プランタリー由来のトロポロン耐性遺伝
子であって、塩基長が 0.3キロベースであり、図6の制
限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-5 を提供する。Further, the present invention provides a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.5 kilobase and is expressed by the restriction map of FIG. 5, PP-21-4. . Further, the present invention provides a gene PP-21-5, which is a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, has a base length of 0.3 kilobases and is represented by the restriction map of FIG. 6.
【0012】さらに、本発明は、シュウドモナス・プラ
ンタリー由来のトロポロン耐性遺伝子であって、塩基長
が 0.2キロベースであり、図7の制限酵素地図で表現さ
れる遺伝子PP-30-1 を提供する。Further, the present invention provides a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.2 kilobases and is represented by the restriction enzyme map of FIG. 7, PP-30-1. .
【0013】さらに、本発明は、前記遺伝子PP-151、PP
-161、PP-21-1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 および
PP-30-1 をそれぞれ含む大腸菌を提供する。さらに、本
発明は、シュウドモナス・プランタリー由来のトロポロ
ン耐性遺伝子であって、前記遺伝子PP-151と、前記遺伝
子PP-161とをタンデムに含む新規な大腸菌を提供する。Furthermore, the present invention provides the above-mentioned genes PP-151 and PP.
-161, PP-21-1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and
E. coli containing PP-30-1 is provided. Further, the present invention provides a novel Escherichia coli which is a tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly and which contains the gene PP-151 and the gene PP-161 in tandem.
【0014】以下、本発明を詳細に説明する。遺伝子PP
-151、PP-161、PP-21-1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-
5 およびPP-30-1 は、シュウドモナス・プランタリーの
ゲノムDNAより分離することができる。これらの遺伝
子の分離方法は、以下のとおりである。The present invention will be described in detail below. Gene PP
-151, PP-161, PP-21-1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-
5 and PP-30-1 can be isolated from Pseudomonas plantaly genomic DNA. The method for separating these genes is as follows.
【0015】まず、シュウドモナス・プランタリーから
調製したゲノムDNAを22種類の制限酵素を用いて、そ
れぞれ15分間かけて切断し、22種類の切断断片を得る。
22種類の制限酵素として、Acc I 、Bam HI、Bcl I 、Bl
n I 、Cla I 、Eco RI、HincII 、Hind III、Kpn I 、N
ae I 、Nhe I 、Nru I 、Nsp V 、Pst I 、Sac I 、Sal
I 、Sma I 、Spe I 、Sph I 、Sse 8387I 、Xba I お
よびXho I を使用した。得られた各切断断片を、それぞ
れプラスミドpUC118ベクターにライゲーションし、大腸
菌E.coli DH5- α株を形質転換する。First, the genomic DNA prepared from Pseudomonas plantaly is cleaved with 22 kinds of restriction enzymes for 15 minutes to obtain 22 kinds of cleaved fragments.
22 kinds of restriction enzymes are Acc I, Bam HI, Bcl I, Bl
n I, Cla I, Eco RI, Hinc II, Hind III, Kpn I, N
ae I, Nhe I, Nru I, Nsp V, Pst I, Sac I, Sal
I, Sma I, Spe I, Sph I, Sse 8387I, Xba I and Xho I were used. Each of the obtained cut fragments is ligated to the plasmid pUC118 vector, and E. coli DH5-α strain is transformed.
【0016】形質転換後、それぞれアンピシリン存在下
で培養し、アンピシリン耐性コロニーを得る。次に得ら
れた各アンピシリン耐性コロニーを、それぞれトロポロ
ン 100ppm 存在下で培養し、トロポロン耐性コロニーを
得る。尚、形質転換されていない大腸菌E.coli DH5-α
株は、50ppm のトロポロン存在下であっても生育は認め
られない。得られた各トロポロン耐性コロニーを、さら
に、それぞれトロポロン 150ppm 存在下で培養した。こ
のようにして、安定して生育が認められるトロポロン耐
性のクローン151 、161 、21-1、21-2、21-4、21-5およ
び30-1を単離することができた。尚、トロポロン耐性ク
ローン151 と161 はシュウドモナス・プランタリーのゲ
ノムDNAをSal I で切断した場合、21-1、21-2、21-4
および21-5はPst I で切断した場合、30-1はNhe I で切
断した場合に得られた切断断片をライゲーションしたプ
ラスミドpUC118ベクターにより形質転換された大腸菌か
ら得られたクローンである。After the transformation, each is cultured in the presence of ampicillin to obtain ampicillin-resistant colonies. Next, each of the obtained ampicillin-resistant colonies is cultured in the presence of 100 ppm of tropolone to obtain tropolone-resistant colonies. In addition, untransformed E. coli DH5-α
The strain does not grow even in the presence of 50 ppm tropolone. Each tropolone-resistant colony obtained was further cultured in the presence of tropolone at 150 ppm. In this way, tropolone-resistant clones 151, 161, 21-1, 21-2, 21-4, 21-5 and 30-1 which were stably grown could be isolated. In addition, tropolone-resistant clones 151 and 161 were 21-1, 21-2, 21-4 when the Pseudomonas plantaly genomic DNA was cleaved with Sal I.
And 21-5 are clones obtained from E. coli transformed with the plasmid pUC118 vector ligated with the cut fragment obtained when cut with Pst I, and 30-1 when cut with Nhe I.
【0017】単離したトロポロン耐性クローン151 、16
1 、21-1、21-2、21-4、21-5および30-1を、それぞれLB
培地で一晩増殖させ、アルカリ-SDS法によりプラスミド
DNAを調製する。次いで、クローン151 および161 か
ら得られたプラスミドDNAはSal I で、クローン21-
1、21-2、21-4および21-5から得られたプラスミドDN
AはPst I で、クローン30-1から得られたプラスミドD
NAはEco RIおよびSalI で切断し、それぞれDNA断
片をアガロース電気泳動(アガロース 1.5 %) により分
離した。その電気泳動パターンを図8に示す。Isolated tropolone resistant clones 151, 16
1, 21, 21-1, 21-2, 21-4, 21-5 and 30-1 are respectively LB
Propagate overnight in the medium and prepare the plasmid DNA by the alkali-SDS method. The plasmid DNA obtained from clones 151 and 161 was then Sal I, clone 21-
Plasmid DN obtained from 1, 21-2, 21-4 and 21-5
A is Pst I and is a plasmid D obtained from clone 30-1.
NA was cleaved with Eco RI and Sal I, and each DNA fragment was separated by agarose gel electrophoresis (agarose 1.5%). The electrophoresis pattern is shown in FIG.
【0018】トロポロン耐性クローン151 、161 、21-
1、21-2、21-4、21-5および30-1から得られた上記の各
DNA断片を、それぞれ、PP-151、PP-161、PP-21-1 、
PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1 と命名し
た。また、各DNA断片の塩基長は、PP-151が 1.9キロ
ベース、PP-161が 1.2キロベース、PP-21-1 が 0.1キロ
ベース、PP-21-2 が 1.3キロベース、PP-21-4 が 0.5キ
ロベース、PP-21-5 が 0.3キロベースおよびPP-30-1 が
0.2キロベースであった。さらに、PP-151、PP-161、PP
-21-1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1
の制限酵素地図は、それぞれ、図1〜7に示すとおりで
ある。Tropolone resistant clones 151, 161, 21-
The above-mentioned DNA fragments obtained from 1, 21-2, 21-4, 21-5 and 30-1 were respectively converted into PP-151, PP-161, PP-21-1,
They were named PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-30-1. The base length of each DNA fragment is 1.9 kilobases for PP-151, 1.2 kilobases for PP-161, 0.1 kilobase for PP-21-1, 1.3 kilobase for PP-21-2, PP-21- 4 for 0.5 kg base, PP-21-5 for 0.3 kg base and PP-30-1 for
It was 0.2 kilobase. Furthermore, PP-151, PP-161, PP
-21-1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-30-1
The restriction enzyme maps of are shown in FIGS. 1 to 7, respectively.
【0019】上記により得られた遺伝子PP-151、PP-16
1、PP-21-1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-
30-1 の大腸菌への導入は、例えば、以下のようにして
行うことができる。The genes PP-151 and PP-16 obtained as described above
1, PP-21-1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-
Introduction of 30-1 into E. coli can be performed, for example, as follows.
【0020】ライゲーションキット( 宝酒造製) を用い
て、アルカリフォスファターゼ処理したプラスミドpUC1
18ベクターと、上記の遺伝子をライゲーションした後、
大腸菌DH5-α株コンピテントセルと混合し、氷上に2分
間静置後、SOC 培地( トリプトン1g、イースト抽出物
0.25g、NaCl 29mg 、KCl 10mg、およびグルコース 180
mgを蒸留水に懸濁して49.5mlの懸濁液を調製した後1M
MgSO4 / 1M MgCl2 溶液を0.5ml 添加したもの)400μl
を加え、37℃で1時間振とう培養する。培養液をアンピ
シリン50ppm を含むLM寒天培地( NaCl 88mg 、イースト
抽出物0.75g、トリプトン 1.5gおよび寒天2.25gを蒸
留水に溶解して 150mlの水溶液を調製してオートクレー
ブ後、50〜60℃に冷却し、1M MgSO4 を 1.5ml添加した
もの) で37℃で24時間培養し、各遺伝子を含むプラスミ
ドで形質転換された大腸菌を得ることができる。A plasmid pUC1 treated with alkaline phosphatase using a ligation kit (Takara Shuzo)
After ligating the 18 vector and the above gene,
After mixing with Escherichia coli DH5-α strain competent cells and standing on ice for 2 minutes, SOC medium (tryptone 1 g, yeast extract
0.25g, NaCl 29mg, KCl 10mg, and glucose 180
After suspending mg in distilled water to prepare a suspension of 49.5 ml, 1M
MgSO 4 / 1M MgCl 2 solution 0.5ml added) 400μl
And shake culture at 37 ° C for 1 hour. LM agar medium containing 50 ppm ampicillin (NaCl 88 mg, yeast extract 0.75 g, tryptone 1.5 g and agar 2.25 g was dissolved in distilled water to prepare a 150 ml aqueous solution, which was autoclaved and cooled to 50-60 ° C. Then, the cells are cultured in 1 M MgSO 4 (1.5 ml added) at 37 ° C. for 24 hours to obtain Escherichia coli transformed with the plasmid containing each gene.
【0021】また、遺伝子PP-151およびPP-161をタンデ
ムに含むプラスミドpUC118ベクターにより大腸菌DH5-α
株を形質転換したところ、トロポロン 200ppm 存在下で
生育が認められるクローン151-161 とクローン161-151
が得られた。これにより、これらのクローンはクローン
151 やクローン161 よりもトロポロン耐性が増強されて
いることがわかる。尚、遺伝子PP-151およびPP-161をタ
ンデムに含むプラスミドの大腸菌への導入方法は、上記
で例示した遺伝子PP-151等の単独の遺伝子を大腸菌に導
入する方法と同様の方法で行うことができる。Further, the plasmid pUC118 vector containing the genes PP-151 and PP-161 in tandem was used to transform Escherichia coli DH5-α.
When the strain was transformed, growth was observed in the presence of 200 ppm of tropolone, clone 151-161 and clone 161-151.
was gotten. This makes these clones clones
It can be seen that tropolone resistance is enhanced as compared with 151 and clone 161. The method for introducing the plasmid containing the genes PP-151 and PP-161 in tandem into Escherichia coli can be performed by the same method as the method for introducing a single gene such as the gene PP-151 described above into E. coli. it can.
【0022】[0022]
【実施例】以下に実施例をあげて更に具体的に本発明を
説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定され
るものではない。The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to these examples.
【0023】(実施例1) (1) シュウドモナス・プランタリーのゲノムDNAの調
製 シュウドモナス・プランタリー301723株(農林水産省生
物資源研究所保有菌株)をLB寒天培地で30℃で2日間培
養して集菌した。次に、得られた菌株をTES (100mM Na
CL と1mM EDTA を含む10mMトリス緩衝液、pH 7.4)に
懸濁した後、12,000rpm で2分間遠心分離した。得られ
た沈殿画分を再度TES に懸濁して12,000rpm で遠心分離
した。得られた沈殿画分をTES 500 μl に懸濁し、10%
SDS 90μl を加えた。これを、10分間Slow Rocking Sha
ker を用いて最低速で振とう(以後、振とうや懸濁等に
はすべて東京硝子器械株式会社製のSlow Rocking Shake
rを用いた)した後、60μl 3M酢酸ナトリウムおよび
450μl イソプロパノールを加え十分に振とうした。振
とう後、10,000rpm で10分間遠心分離を行い、上清を捨
てて残った沈殿物を2〜3分間減圧下にて乾燥した後、
500μlTE (1mM EDTA を含む10mMトリス緩衝液、pH8.
0 )を加えて懸濁した。さらに10%SDS 60μl および20
mg/mL プロテネースK 12.5 μl を加え、沈殿が完全に
溶解するまで、60℃でゆっくり振とうした。なお、12時
間ごとに20mg/mL プロテネースK 12.5 μl を加えた。
沈殿が完全に溶解した後、フェノール抽出2回、フェノ
ール/クロロホルム抽出1回、クロロホルム抽出1回を
行った後、エタノール沈殿を行った。得られたエタノー
ル液を10,000rpm で15分間遠心分離し、得られた沈殿画
分を再度80%エタノールでリンスした後、10,000rpm で
15分間遠心分離を行った。得られた沈殿画分を、減圧下
で乾燥後、 RNase 500μl に溶解し、37℃で2時間反応
させた。反応終了後、フェノール抽出2回、フェノール
/クロロホルム抽出1回、クロロホルム抽出1回を行っ
た後、エタノール沈殿を行った。このようにして、シュ
ウドモナス・プランタリーのゲノムDNAを得た。(Example 1) (1) Preparation of genomic DNA of Pseudomonas plantaly Pseudomonas plantaley 301723 strain (a strain owned by the Institute for Biological Resources, Ministry of Agriculture, Forestry and Fisheries) was cultured in LB agar medium at 30 ° C for 2 days. I collected the bacteria. Next, the obtained strain was treated with TES (100 mM Na
The cells were suspended in 10 mM Tris buffer (pH 7.4) containing CL and 1 mM EDTA, and then centrifuged at 12,000 rpm for 2 minutes. The obtained precipitate fraction was suspended in TES again and centrifuged at 12,000 rpm. Suspend the obtained precipitate fraction in 500 μl of TES, and
90 μl of SDS was added. Do this for 10 minutes with Slow Rocking Sha
Shake at the lowest speed using a ker (hereinafter, for shaking and suspension, Slow Rocking Shake manufactured by Tokyo Glass Instrument Co., Ltd.
(using r) and 60 μl 3M sodium acetate and
450 μl of isopropanol was added and shaken well. After shaking, centrifuge at 10,000 rpm for 10 minutes, discard the supernatant and dry the remaining precipitate under reduced pressure for 2-3 minutes.
500 μl TE (10 mM Tris buffer containing 1 mM EDTA, pH 8.
0) was added and suspended. Further 10% SDS 60 μl and 20
12.5 μl of mg / mL proteinase K was added, and the mixture was shaken slowly at 60 ° C. until the precipitate was completely dissolved. 20 mg / mL proteinase K (12.5 μl) was added every 12 hours.
After the precipitate was completely dissolved, phenol extraction was performed twice, phenol / chloroform extraction was performed once, and chloroform extraction was performed once, followed by ethanol precipitation. The obtained ethanol solution was centrifuged at 10,000 rpm for 15 minutes, the obtained precipitation fraction was rinsed again with 80% ethanol, and then at 10,000 rpm.
Centrifugation was performed for 15 minutes. The obtained precipitate fraction was dried under reduced pressure, dissolved in 500 μl of RNase, and reacted at 37 ° C. for 2 hours. After completion of the reaction, phenol extraction was performed twice, phenol / chloroform extraction was performed once, and chloroform extraction was performed once, followed by ethanol precipitation. In this way, genomic DNA of Pseudomonas plantaly was obtained.
【0024】(2) トロポロン耐性大腸菌クローンの獲得 得られたゲノムDNAを22種類の制限酵素を用いて、そ
れぞれ15分間かけて切断し、22種類の切断断片を得た。
22種類の制限酵素として、Acc I 、Bam HI、Bcl I 、Bl
n I 、Cla I 、Eco RI、Hinc II 、Hind III、Kpn I 、
Nae I 、Nhe I、Nru I 、Nsp V 、Pst I 、Sac I 、Sal
I 、Sma I 、Spe I 、Sph I 、Sse 8387I 、Xba I お
よびXho I を使用した。得られた各切断断片を、それぞ
れプラスミドpUC118ベクター(宝酒造社製)にライゲー
ションした。なお、Acc I 、BamHI、Eco RI、Hinc II
、Hind III、Kpn I 、Pst I 、Sac I 、Sal I 、Sma I
、SphI、Sse 8387I およびXba I 切断断片のライゲー
ションは、同一の制限酵素でプラスミドpCU118ベクター
を切断した後に行った。また、Bcl I 、Bln I 、ClaI
、Nae I 、Nhe I 、Nru I 、Nsp V 、Spe I およびXho
I 切断断片のライゲーションは、それぞれ、Bam HI、X
ba I 、Acc I 、Sma I 、Xba I 、Hinc II 、Acc I 、X
ba I およびSal I でプラスミドpCU118ベクターを切断
した後に行った。このようにして得られたプラスミド
で、大腸菌Escherichia coli DH5- α株を形質転換し
た。形質転換後、それぞれアンピシリン50ppm 存在下で
培養し、アンピシリン耐性コロニーを得る。次に得られ
た各アンピシリン耐性コロニーを、それぞれトロポロン
100ppm 存在下で培養しトロポロン耐性コロニーを得
る。さらに、得られたトロポロン耐性コロニーを、再度
トロポロン150ppm 存在下で培養してトロポロン耐性ク
ローンを得た。(2) Acquisition of tropolone-resistant Escherichia coli clone The obtained genomic DNA was digested with 22 kinds of restriction enzymes for 15 minutes to obtain 22 kinds of digested fragments.
22 kinds of restriction enzymes are Acc I, Bam HI, Bcl I, Bl
n I, Cla I, Eco RI, Hinc II, Hind III, Kpn I,
Nae I, Nhe I, Nru I, Nsp V, Pst I, Sac I, Sal
I, Sma I, Spe I, Sph I, Sse 8387I, Xba I and Xho I were used. Each of the obtained cut fragments was ligated to the plasmid pUC118 vector (Takara Shuzo). In addition, Acc I, BamHI, Eco RI, Hinc II
, Hind III, Kpn I, Pst I, Sac I, Sal I, Sma I
Ligation of the SphI, Sse8387I and XbaI digested fragments was performed after digesting the plasmid pCU118 vector with the same restriction enzymes. Also, Bcl I, Bln I, ClaI
, Nae I, Nhe I, Nru I, Nsp V, Spe I and Xho
The ligations of the I-cleavage fragments were Bam HI and X, respectively.
ba I, Acc I, Sma I, Xba I, Hinc II, Acc I, X
It was performed after cutting the plasmid pCU118 vector with baI and SalI. Escherichia coli Escherichia coli DH5-α strain was transformed with the thus obtained plasmid. After transformation, each is cultured in the presence of 50 ppm ampicillin to obtain ampicillin-resistant colonies. Next, each ampicillin-resistant colony obtained was treated with tropolone.
Cultivate in the presence of 100 ppm to obtain tropolone-resistant colonies. Furthermore, the obtained tropolone-resistant colonies were cultured again in the presence of 150 ppm of tropolone to obtain tropolone-resistant clones.
【0025】このようにして、安定して生育が認められ
るトロポロン耐性クローン151 、161 、21-1、21-2、21
-4、21-5および30-1を単離することができた。尚、トロ
ポロン耐性コロニー151 と161 はシュウドモナス・プラ
ンタリーのゲノムDNAをSal I で切断した場合、21-
1、21-2、21-4および21-5はPst I で切断した場合、30-
1はNhe I で切断した場合に得られた切断断片をライゲ
ーションしたプラスミドpU118 ベクターにより形質転換
された大腸菌から得られたクローンである。In this way, tropolone-resistant clones 151, 161, 21-1, 21-2, 21 which are stably grown are obtained.
-4, 21-5 and 30-1 could be isolated. The tropolone-resistant colonies 151 and 161 were 21- when the Pseudomonas plantaly genomic DNA was cleaved with Sal I.
1, 21-2, 21-4 and 21-5 are 30- when cut with Pst I
1 is a clone obtained from Escherichia coli transformed with the plasmid pU118 vector, which was ligated with the cut fragment obtained by cutting with Nhe I.
【0026】(3) トロポロン耐性遺伝子クローニング 上記の単離したトロポロン耐性クローン151 、161 、21
-1、21-2、21-4、21-5および30-1から、それぞれ、下記
に示す方法によりプラスミドDNAを調製する。次い
で、コロニー151 および161 から得られたプラスミドD
NAはSal I で、コロニー21-1、21-2、21-4および21-5
から得られたプラスミドDNAはPst I で、コロニー30
-1はから得られたプラスミドDNAはEco RIおよびSal
I で切断し、それぞれDNA断片をアガロース電気泳動
( アガロース1.5 % )により分離した。(3) Cloning of tropolone resistant gene Closing of tropolone resistant clones 151, 161, 21 isolated above
Plasmid DNAs are prepared from -1, 21-2, 21-4, 21-5 and 30-1 by the method described below. Then plasmid D obtained from colonies 151 and 161
NA is Sal I and colonies 21-1, 21-2, 21-4 and 21-5
The plasmid DNA obtained from was Pst I and colony 30
-1 is the plasmid DNA obtained from Eco RI and Sal
Cut with I and agarose gel electrophoresis of each DNA fragment
(Agarose 1.5%).
【0027】プラスミドDNAの調製法 上記のトロポロン耐性クローンを、50ppm アンピシリン
を含むLB培地( NaCl10g、イースト抽出物 5g、トリ
プトン 10 gおよび蒸留水1L からなるもの)内で37℃
で一晩振とう培養した。得られた培養液を8,000rpmで10
分間遠心分離し、得られた沈殿をリゾチーム緩衝液(50m
M シュークロースと10mM EDTA を含む50mMトリス緩衝
液、pH 8.0) 3.2mlに懸濁した後、さらに20 mg/mlリゾ
チーム800μl を添加して懸濁した。得られた懸濁液を
室温で5分間静置した後、 SDS−アルカリ液(1M NaO
H 、1%SDS )8mlを加えて懸濁し、氷上に10分間静置
した。次いで、3M CH3 C00H6mlを加えて懸濁した
後、氷上に10分間静置し、続いて8,000rpmで15分間遠心
分離した。得られた上清についてフェノール/クロロホ
ルム抽出を行った後、 0.6倍容量のイソプロパノールを
添加して室温で15分間静置し、8,000rpmで15分間遠心分
離し、得られた沈殿を80%エタノールでリンスした後、
再度8,000rpmで10分間遠心分離し、得られた沈殿を減圧
乾燥した。乾燥した沈殿を 1.6ml TE(1mM EDTA を含む
10mMトリス緩衝液、pH 8.0) に溶解後、 CsCl 1.74gを
添加して溶解し、さらに、10 mg/ml EtBr を120 μl 加
えて穏やかに懸濁した。得られた懸濁液を遠心チューブ
に移し、超高速遠心器を用いて120,000rpmで 180分間遠
心分離し、さらに80,000rpm で60分間遠心分離した。プ
ラスミドDNA画分のバンドをツベルクリン用シリンジ
を用いて抽出後、TE飽和イソプロパノールで5回洗浄
し、4倍容量のTEを加えて希釈する。希釈液の1/10量の
CH3 C00Na と2.5 倍量のエタノールを加えて−80℃で20
分間放置する。15,000rpm で15分間遠心分離し、得られ
た沈殿を80 %エタノールでリンス後、15,000rpmで10分
間遠心分離し、プラスミドDNAの沈殿を得る。 Method for preparing plasmid DNA The above-mentioned tropolone-resistant clone was treated at 37 ° C. in an LB medium containing 50 ppm ampicillin (consisting of 10 g of NaCl, 5 g of yeast extract, 10 g of tryptone and 1 L of distilled water).
The cells were shaken and cultured overnight. The resulting culture solution was centrifuged at 8,000 rpm for 10
Centrifuge for minutes, and precipitate the resulting precipitate with lysozyme buffer (50 m
After suspending in 3.2 ml of 50 mM Tris buffer, pH 8.0) containing M sucrose and 10 mM EDTA, 800 μl of 20 mg / ml lysozyme was added and suspended. The resulting suspension was allowed to stand at room temperature for 5 minutes, then SDS-alkaline solution (1M NaO
8 ml of H2, 1% SDS) was added and suspended, and the mixture was allowed to stand on ice for 10 minutes. Subsequently, 6 ml of 3M CH 3 C00H was added and suspended, and the mixture was allowed to stand on ice for 10 minutes and subsequently centrifuged at 8,000 rpm for 15 minutes. Phenol / chloroform extraction was performed on the obtained supernatant, 0.6 volume of isopropanol was added, the mixture was allowed to stand at room temperature for 15 minutes, centrifuged at 8,000 rpm for 15 minutes, and the obtained precipitate was extracted with 80% ethanol. After rinsing
It was again centrifuged at 8,000 rpm for 10 minutes, and the obtained precipitate was dried under reduced pressure. 1.6 ml TE (containing 1 mM EDTA) of the dried precipitate
After dissolving in 10 mM Tris buffer (pH 8.0), 1.74 g of CsCl was added and dissolved, and further 120 mg of 10 mg / ml EtBr was added and gently suspended. The obtained suspension was transferred to a centrifuge tube, centrifuged at 120,000 rpm for 180 minutes using an ultra-high speed centrifuge, and further centrifuged at 80,000 rpm for 60 minutes. The band of the plasmid DNA fraction is extracted with a tuberculin syringe, washed five times with TE-saturated isopropanol, and diluted with 4 volumes of TE. 1/10 the volume of diluent
Add CH 3 C00Na and 2.5 volumes of ethanol and add 20 at -80 ℃.
Leave for a minute. After centrifugation at 15,000 rpm for 15 minutes, the obtained precipitate is rinsed with 80% ethanol and then centrifuged at 15,000 rpm for 10 minutes to obtain a plasmid DNA precipitate.
【0028】このようにして、本発明の遺伝子PP-151、
PP-161、PP-21-1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およ
びPP-30-1 が得られた。また、各DNA断片の塩基長
は、PP-151が 1.9キロベース、PP-161が 1.2キロベー
ス、PP-21-1 が 0.1キロベース、PP-21-2 が 1.3キロベ
ース、PP-21-4 が 0.5キロベース、PP-21-5 が 0.3キロ
ベースおよびPP-30-1 が 0.2キロベースであった。Thus, the gene PP-151 of the present invention,
PP-161, PP-21-1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-30-1 were obtained. The base length of each DNA fragment is 1.9 kilobases for PP-151, 1.2 kilobases for PP-161, 0.1 kilobase for PP-21-1, 1.3 kilobase for PP-21-2, PP-21- 4 was 0.5 kg base, PP-21-5 was 0.3 kg base and PP-30-1 was 0.2 kg base.
【0029】(4) 制限酵素地図の作製 さらに、PP-151、PP-161、PP-21-1 、PP-21-2 、PP-21-
4 、PP-21-5 およびPP-30-1 の制限酵素地図は、それぞ
れ、図1〜7に示すとおりであった。(4) Construction of restriction enzyme map Furthermore, PP-151, PP-161, PP-21-1, PP-21-2, PP-21-
The restriction enzyme maps of 4, PP-21-5 and PP-30-1 are shown in FIGS. 1 to 7, respectively.
【0030】(5) トロポロン耐性遺伝子の大腸菌への導
入 上記で得られた遺伝子PP-151、PP-161、PP-21-1 、PP-2
1-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1 を、それぞ
れ、以下のようにして大腸菌に導入した。ライゲーショ
ンキット( 宝酒造製) を用いて、アルカリフォスファタ
ーゼ処理したプラスミドpUC118ベクターと、上記の遺伝
子をライゲーションした後、大腸菌DH5-α株コンピテン
トセルと混合し、氷上に2分間静置後、SOC 培地( トリ
プトン1g、イースト抽出物0.25g、NaCl 29mg 、KCl
10mg、およびグルコース 180mgを蒸留水に懸濁して49.5
mlの懸濁液を調製した後1M MgSO4 / 1M MgCl2 溶液を
0.5ml 添加したもの)400μl を加え、37℃で1時間振と
う培養する。培養液をアンピシリン50ppm を含むLM寒天
培地( NaCl 88mg 、イースト抽出物0.75g、トリプトン
1.5gおよび寒天2.25gを蒸留水に溶解して 150mlの水
溶液を調製してオートクレーブ後、50〜60℃に冷却し、
1M MgSO4 を 1.5ml添加したもの) で37℃、24時間培養
し、各遺伝子を含むプラスミドで形質転換された大腸菌
を得ることができる。遺伝子PP-151、PP-161、PP-21-1
、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1 を導
入した大腸菌は、表1に示す表示で工業技術院生命工学
工業技術研究所に寄託した。それぞれの受託番号は表1
に示すとおりである。(5) Introduction of tropolone resistance gene into Escherichia coli Genes PP-151, PP-161, PP-21-1, PP-2 obtained above
1-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-30-1 were introduced into E. coli respectively as follows. Using the ligation kit (Takara Shuzo), the plasmid pUC118 vector treated with alkaline phosphatase and the above gene were ligated, mixed with Escherichia coli DH5-α strain competent cells, and allowed to stand on ice for 2 minutes, then SOC medium ( Tryptone 1g, yeast extract 0.25g, NaCl 29mg, KCl
Suspend 10 mg and 180 mg glucose in distilled water for 49.5
After preparing 1 ml suspension, add 1M MgSO 4 / 1M MgCl 2 solution.
Add 0.5 μl) (400 μl) and incubate at 37 ° C for 1 hour with shaking. LM agar medium containing 50 ppm ampicillin (NaCl 88 mg, yeast extract 0.75 g, tryptone)
Dissolve 1.5 g and agar 2.25 g in distilled water to prepare 150 ml aqueous solution, autoclave and cool to 50-60 ° C.
Escherichia coli transformed with the plasmid containing each gene can be obtained by culturing at 37 ° C. for 24 hours in 1 M MgSO 4 (1.5 ml). Gene PP-151, PP-161, PP-21-1
Escherichia coli into which PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5 and PP-30-1 had been introduced was deposited at the Institute of Biotechnology, Institute of Biotechnology, as indicated in Table 1. Table 1 shows each consignment number
As shown in.
【0031】[0031]
【表1】 [Table 1]
【0032】(実施例2)実施例1で得られたクローン
151 から調製したプラスミドDNAをHind IIIで切断後
アルカリフォスファターゼ処理することにより得られた
プラスミドに、実施例1で得られたクローン161 から調
製したプラスミドDNAをSma I で切断後Hind IIIリン
カーを連結したPP-161を導入し、E.coli DH5- α株を形
質転換したところ、トロポロン 150ppm 存在下において
クローン151 や161 よりも速やかにコロニーが形成さ
れ、トロポロン 200ppm 存在下においても生育が認めら
れるクローン151-161 を得た。Example 2 The clone obtained in Example 1
The plasmid DNA prepared from 151 was digested with Hind III and treated with alkaline phosphatase, and the plasmid DNA prepared from clone 161 obtained in Example 1 was digested with Sma I and ligated with a Hind III linker. When PP-161 was introduced and the E. coli DH5-α strain was transformed, colonies formed faster than clones 151 and 161 in the presence of tropolone at 150 ppm, and growth was observed in the presence of tropolone at 200 ppm. I got -161.
【0033】また、実施例1で得られたクローン161 か
ら調製したプラスミドDNAをHindIIIで切断後アルカ
リフォスファターゼ処理することにより得られたプラス
ミドに、実施例1で得られたクローン151 から調製した
プラスミドDNAをSma I で切断後Hind IIIリンカーを
連結したPP-151を導入し、E.coli DH5- α株を形質転換
したところ、同様の結果を示すクローン161-151 が得ら
れた。すなわち、PP-151とPP-161をタンデムに連結する
ことによって、トロポロン耐性が増強されることが示さ
れた。The plasmid DNA prepared from the clone 151 obtained in Example 1 was digested with HindIII and treated with alkaline phosphatase to obtain the plasmid DNA prepared from the clone 151 obtained in Example 1. Was digested with Sma I and PP-151 ligated with a Hind III linker was introduced to transform E. coli DH5-α strain. As a result, clone 161-151 showing similar results was obtained. That is, it was shown that tropolone resistance was enhanced by ligating PP-151 and PP-161 in tandem.
【0034】[0034]
【発明の効果】本発明の遺伝子はトロポロン耐性を示
し、本発明の遺伝子によって形質転換されたイネは、シ
ュウドモナス・プランタリーが産出するトロポロン耐性
が付与される。従って、本発明の遺伝子は、イネ苗立枯
細菌病の防除に寄与できることが期待される。INDUSTRIAL APPLICABILITY The gene of the present invention exhibits tropolone resistance, and the rice transformed with the gene of the present invention is endowed with the tropolone resistance produced by Pseudomonas plantaly. Therefore, it is expected that the gene of the present invention can contribute to the control of rice seedling bacterial wilt disease.
【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]
【図1】本発明の遺伝子PP-151の制限酵素地図を示す。FIG. 1 shows a restriction map of gene PP-151 of the present invention.
【図2】本発明の遺伝子PP-161の制限酵素地図を示す。FIG. 2 shows a restriction map of gene PP-161 of the present invention.
【図3】本発明の遺伝子PP-21-1 の制限酵素地図を示
す。FIG. 3 shows a restriction map of the gene PP-21-1 of the present invention.
【図4】本発明の遺伝子PP-21-2 の制限酵素地図を示
す。FIG. 4 shows a restriction map of the gene PP-21-2 of the present invention.
【図5】本発明の遺伝子PP-21-4 の制限酵素地図を示
す。FIG. 5 shows a restriction map of the gene PP-21-4 of the present invention.
【図6】本発明の遺伝子PP-21-5 の制限酵素地図を示
す。FIG. 6 shows a restriction map of the gene PP-21-5 of the present invention.
【図7】本発明の遺伝子PP-30-1 の制限酵素地図を示
す。FIG. 7 shows a restriction map of the gene PP-30-1 of the present invention.
【図8】本発明の遺伝子であるPP-151、PP-161、PP-21-
1 、PP-21-2 、PP-21-4 、PP-21-5 およびPP-30-1 をア
ガロース電気泳動(アガロール 1.5%)により分離した
結果を示す電気泳動写真である。FIG. 8: PP-151, PP-161, PP-21- which are genes of the present invention
1 is an electrophoretic photograph showing the result of separating 1, PP-21-2, PP-21-4, PP-21-5, and PP-30-1 by agarose electrophoresis (1.5% agarol).
A:遺伝子PP-151を含んでいる。 B:遺伝子PP-161を含んでいる。 C:遺伝子PP-21-1 を含んでいる。 D:遺伝子PP-21-2 を含んでいる。 E:遺伝子PP-21-4 を含んでいる。 F:遺伝子PP-21-5 を含んでいる。 G:遺伝子PP-30-1 を含んでいる。 M:λ/Hind III 118:プラスミド pUC118 ベクター/Sal I A: It contains the gene PP-151. B: Contains the gene PP-161. C: contains the gene PP-21-1. D: It contains the gene PP-21-2. E: It contains the gene PP-21-4. F: Contains the gene PP-21-5. G: Contains the gene PP-30-1. M: λ / Hind III 118: plasmid pUC118 vector / Sal I
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 //(C12N 15/09 C12R 1:38) (C12N 1/21 C12R 1:19) C12R 1:38) (72)発明者 斉藤 光 岩手県花巻市西大通1丁目32−14 パーク ハイツはこざきI−106 (72)発明者 奥村 亜子 岩手県北上市村崎野15−11 サンコーポ沼 田B−106号─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification number Office reference number FI technical display location // (C12N 15/09 C12R 1:38) (C12N 1/21 C12R 1:19) C12R 1: 38) (72) Inventor Mitsuru Saito 1-32-14, Nishi-Odori, Hanamaki, Iwate Prefecture Park Heights Hakozaki I-106 (72) Inventor, Ako Okumura 15-11 Murasakino, Kitakami City, Iwate Sankopo Numata B-106
Claims (15)
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.9キロベース
であり、図1の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-15
1。1. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.9 kilobases and is represented by the restriction map of FIG. 1, PP-15.
1.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.9キロベース
であり、図1の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-151
を含む新規な大腸菌。2. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.9 kilobases and is represented by the restriction enzyme map of FIG. 1, PP-151.
A novel E. coli containing.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.2キロベース
であり、図2の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-16
1。3. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.2 kilobases and is represented by the restriction enzyme map of FIG. 2 PP-16.
1.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.2キロベース
であり、図2の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-161
を含む新規な大腸菌。4. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.2 kilobases and is expressed by the restriction map of FIG.
A novel E. coli containing.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.1キロベース
であり、図3の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-
1 。5. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.1 kilobase and is expressed by the restriction map of FIG.
1.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.1キロベース
であり、図3の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-
1 を含む新規な大腸菌。6. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.1 kilobase and is expressed by the restriction map of FIG.
A novel E. coli containing 1.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.3キロベース
であり、図4の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-
2 。7. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.3 kilobases and is expressed by the restriction map of FIG.
2.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.3キロベース
であり、図4の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-
2 を含む新規な大腸菌。8. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.3 kilobases and is expressed by the restriction map of FIG.
A novel E. coli containing 2.
ロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.5キロベース
であり、図5の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-21-
4 。9. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.5 kilobase and is expressed by the restriction map of FIG.
Four .
トロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.5キロベー
スであり、図5の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-2
1-4 を含む新規な大腸菌。10. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.5 kilobase and is represented by the restriction enzyme map of FIG. 5, PP-2.
Novel E. coli containing 1-4.
トロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.3キロベー
スであり、図6の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-2
1-5 。11. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.3 kilobase and is expressed by the restriction enzyme map of FIG. 6, PP-2.
1-5.
トロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.3キロベー
スであり、図6の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-2
1-5 を含む新規な大腸菌。12. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.3 kilobases and is represented by the restriction enzyme map of FIG. 6 PP-2.
A new E. coli containing 1-5.
トロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.2キロベー
スであり、図7の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-3
0-1 。13. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.2 kilobases and is expressed by the restriction enzyme map of FIG. 7, PP-3.
0-1.
トロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 0.2キロベー
スであり、図7の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-3
0-1 を含む新規な大腸菌。14. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 0.2 kilobase and is expressed by the restriction enzyme map of FIG. 7, PP-3.
New E. coli containing 0-1.
トロポロン耐性遺伝子であって、塩基長が 1.9キロベー
スであり、図1の制限酵素地図で表現される遺伝子PP-1
51と、塩基長が 1.2キロベースであり、図2の制限酵素
地図で表現される遺伝子PP-161とをタンデムに含む新規
な大腸菌。15. A tropolone resistance gene derived from Pseudomonas plantaly, which has a base length of 1.9 kilobases and is represented by the restriction enzyme map of FIG. 1, PP-1.
A novel E. coli containing 51 and the base length of 1.2 kilobases in tandem with the gene PP-161 expressed in the restriction map of FIG.
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23446094A JPH0870865A (en) | 1994-09-05 | 1994-09-05 | Tropolone-resistant gene and new microorganism containing the same |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23446094A JPH0870865A (en) | 1994-09-05 | 1994-09-05 | Tropolone-resistant gene and new microorganism containing the same |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0870865A true JPH0870865A (en) | 1996-03-19 |
Family
ID=16971355
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP23446094A Pending JPH0870865A (en) | 1994-09-05 | 1994-09-05 | Tropolone-resistant gene and new microorganism containing the same |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0870865A (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1018545A1 (en) * | 1997-09-26 | 2000-07-12 | Kureha Chemical Industry Co., Ltd. | Microbial agricultural chemical |
-
1994
- 1994-09-05 JP JP23446094A patent/JPH0870865A/en active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1018545A1 (en) * | 1997-09-26 | 2000-07-12 | Kureha Chemical Industry Co., Ltd. | Microbial agricultural chemical |
EP1018545A4 (en) * | 1997-09-26 | 2000-11-15 | Kureha Chemical Ind Co Ltd | Microbial agricultural chemical |
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