JPH0843397A - Monoclonal antibody combinable with human aldose reductase and its usage - Google Patents

Monoclonal antibody combinable with human aldose reductase and its usage

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JPH0843397A
JPH0843397A JP6182411A JP18241194A JPH0843397A JP H0843397 A JPH0843397 A JP H0843397A JP 6182411 A JP6182411 A JP 6182411A JP 18241194 A JP18241194 A JP 18241194A JP H0843397 A JPH0843397 A JP H0843397A
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Abstract

PURPOSE:To measure conveniently and accurately micro-quantity of human aldose reductase existing in human blood, urine, tissue, etc., and use it in such as clinical examination. CONSTITUTION:Human aldose reductase is measured by using monoclonal antibody combinened with human aldose reductase but not combined with cow, dog guinea pig, rat or rabbit aldose reductase.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、ヒトアルドース還元酵
素に特異的に結合することを特徴とする新規なモノクロ
ーナル抗体および該抗体を使用するヒトアルドース還元
酵素の測定方法に関する。本発明のヒトアルドース還元
酵素に特異的に結合するモノクローナル抗体および該抗
体フラグメントを用いることによって、ヒトアルドース
還元酵素の機能および構造の解析が可能となる。また、
本発明のヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモ
ノクローナル抗体を用いて、組織、血中または尿中のヒ
トアルドース還元酵素含量を測定し、その動向を把握す
ることは、基礎医学、臨床医学の領域において非常に重
要な意義を持つ。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a novel monoclonal antibody characterized by specifically binding to human aldose reductase and a method for measuring human aldose reductase using the antibody. By using the monoclonal antibody and the antibody fragment thereof that specifically bind to human aldose reductase of the present invention, the function and structure of human aldose reductase can be analyzed. Also,
Using a monoclonal antibody that specifically binds to the human aldose reductase of the present invention, the content of human aldose reductase in tissue, blood or urine is measured, and grasping the trend of the aldose reductase is understood in basic medicine and clinical medicine. It has a very important meaning in the field.

【0002】[0002]

【従来の技術】アルドース還元酵素[Alditol :NAD(P)
+1-oxidoreductase 、EC 1.1.1.21 ]はNADPH を補酵素
としてグルコースを糖アルコール(ポリオール)である
ソルビトールに変換する酵素である。ソルビトールはソ
ルビトール脱水素酵素によりフルクトースに変換され、
この経路がグルコース代謝副路であるポリオール代謝経
路を形成している。アルドース還元酵素は、哺乳動物の
多くの組織に存在し、その生理的役割は、古くは精嚢に
おいて精子のエネルギー源としてのフルクトースの産生
に関与していると考えられた。最近では、腎髄質におい
て組織内浸透圧調節に関与するオスモライトとしてのポ
リオール生成に果たす役割が示唆されている。しかしな
がらその役割については依然として不明な点が多い。近
年、糖尿病発症初期の細胞障害にアルドース還元酵素が
関与していると考えられている。すなわち、糖尿病とい
う高血糖状態では、インスリン非依存性のグルコースの
取り込みを行う組織、たとえば、水晶体、網膜、末梢神
経、腎糸球体などでは細胞内のグルコース濃度が上昇
し、この過剰なグルコースは、アルドース還元酵素によ
りソルビトールに変換される。ソルビトールは極性が高
く細胞外に拡散しにくい上、フルクトースへの変換速度
が遅いために、細胞内に蓄積され、その結果、細胞内浸
透圧を上昇させ、水の流入が起こり、細胞の膨化、細胞
膜の変性を引き起こす。このことが糖尿病合併症である
神経症、網膜症、腎症、白内障などの発症要因の一つと
考えられており、現在糖尿病合併症の予防あるいは治療
薬としてアルドース還元酵素阻害剤の開発が盛んに行わ
れている(Gabbay K. H.,Merola L.O. and Field R. A.,
Science,第151 巻, 209-210 頁 (1966年) 、Robison
W. G. Jr., Kador P. F. and Kinoshita J. H., Scienc
e, 第221 巻, 1177-1179 頁(1983年) 、Engerman R.L.
and Kern T.S., Diabetes, 第33巻, 97-100頁 (1984
年) 、Nishimura C., Lou M. F. and Kinoshita J. H.,
J. Neurochem., 第49巻, 290-295 頁(1987 年) 、Kino
shita J. H. and Nishimura C., Diabetes Metab. Re
v., 第4 巻, 323-337 頁(1988 年) 、Kador R. F., Nak
ayama T., Sato S., Smar M. and Miller, D. D., “We
iner H. and Flynn T. G. eds Progressin Clinicala
nd Biological Research Vol. 290, Enzymology and Mo
lecular Biology of Carbonyl Metabolosm 2,”237-250
頁(1989 年) 、Alan R. Liss, Inc., New York )。
2. Description of the Related Art Alditol reductase [Alditol: NAD (P)
+ 1-oxidoreductase, EC 1.1.1.21] is an enzyme that converts glucose into sorbitol, a sugar alcohol (polyol), using NADPH as a coenzyme. Sorbitol is converted to fructose by sorbitol dehydrogenase,
This pathway forms the polyol metabolic pathway, which is the alternative pathway for glucose metabolism. Aldose reductase is present in many tissues of mammals, and its physiological role was considered to be involved in the production of fructose as an energy source of sperm in the seminal vesicles in the old days. Recently, it has been suggested that the role of osmolyte in the formation of osmolytes in the renal medulla is involved in the formation of polyol. However, there are still many unclear points about its role. Recently, it is considered that aldose reductase is involved in cell damage in the early stage of diabetes onset. That is, in the hyperglycemic state of diabetes, intracellular glucose concentration increases in tissues that perform insulin-independent glucose uptake, for example, the lens, retina, peripheral nerve, renal glomerulus, and this excess glucose is It is converted to sorbitol by aldose reductase. Sorbitol has high polarity and is difficult to diffuse to the outside of the cell, and its conversion rate to fructose is slow, so it is accumulated inside the cell, and as a result, intracellular osmotic pressure is increased, water inflow occurs, cell swelling, Causes cell membrane degeneration. It is considered that this is one of the onset factors of diabetic complications such as neurosis, retinopathy, nephropathy, and cataract. Currently, aldose reductase inhibitors are actively developed as a preventive or therapeutic drug for diabetic complications. (Gabbay KH, Merola LO and Field RA,
Science, 151, 209-210 (1966), Robison
WG Jr., Kador PF and Kinoshita JH, Scienc
e, Vol. 221, pp. 1177-1179 (1983), Engerman RL.
and Kern TS, Diabetes, Volume 33, pp. 97-100 (1984
), Nishimura C., Lou MF and Kinoshita JH,
J. Neurochem., 49, 290-295 (1987), Kino.
shita JH and Nishimura C., Diabetes Metab. Re
v., Volume 4, pp. 323-337 (1988), Kador RF, Nak.
ayama T., Sato S., Smar M. and Miller, DD, “We
iner H. and Flynn TG eds Progressin Clinicala
nd Biological Research Vol. 290, Enzymology and Mo
lecular Biology of Carbonyl Metabolosm 2, ”237-250
P. (1989), Alan R. Liss, Inc., New York).

【0003】近年、ヒトの胎盤、網膜および筋肉由来の
アルドース還元酵素の蛋白構造が報告され (Bohren K.
M., Bullock B., Wermuth B. and Gabbay K. H., J. Bi
ol.Chem., 第264 巻, 9547-9551 頁(1989 年) 、Nishi
mura C., Matsuura Y., Kokai Y., Akera T., Carper
D., Morjana N., Lyons C. and Flynn T. G., J. Biol.
Chem., 第265 巻, 9788−9792頁(1990 年) ) 、由来す
る組織が異なってもその一次構造は全く同一であること
が示されている。またヒト由来のアルドース還元酵素
は、ラット、ウシおよびウサギ由来のアルドース還元酵
素とは約80%の相同性を持つことが示されている( Carp
er D. A., Wistow G., Nishimura C., Graham C., Wata
nabe K., Fujii Y., Hayashi H., Hayaishi. O., Exp.
Eye Res.,第49巻, 377-388 頁(1989 年) 、Schade S.
Z., Early S. L., Williams T. R., Kezdy F. J., Hein
rikson R. L., Grimshaw C. E., Doughty C. C., J. Bi
ol. Chem., 第265 巻, 3628- 3635頁(1990 年) 、Garc
ia-Perez A. 、Martin B.,Murphy H. R., Uchida S., M
urer H., Cowley B. D. Jr., Handlar J. S., Burg M.
B., J. Biol. Chem., 第264 巻, 16815-16821 頁(1989
年))。さらに、ヒトアルドース還元酵素の遺伝子工学
的製造法も報告されている(Nishimura C., Yamaoka T.,
Mizutani M., Yamashita K., Akera T., Tanimoto T.,
Biochim. Biophys. Acta 、第1078巻、171 −178 頁(1
991 年) ) 。
Recently, the protein structure of aldose reductase derived from human placenta, retina and muscle has been reported (Bohren K.
M., Bullock B., Wermuth B. and Gabbay KH, J. Bi
ol. Chem., 264, 9547-9551 (1989), Nishi.
mura C., Matsuura Y., Kokai Y., Akera T., Carper
D., Morjana N., Lyons C. and Flynn TG, J. Biol.
Chem., Vol. 265, pp. 9788-9792 (1990)), it has been shown that the primary structures are exactly the same even if the tissues of origin are different. In addition, human aldose reductase has been shown to have about 80% homology with rat, bovine and rabbit aldose reductase (Carp
er DA, Wistow G., Nishimura C., Graham C., Wata
nabe K., Fujii Y., Hayashi H., Hayaishi. O., Exp.
Eye Res., Vol. 49, pp. 377-388 (1989), Schade S.
Z., Early SL, Williams TR, Kezdy FJ, Hein
rikson RL, Grimshaw CE, Doughty CC, J. Bi
ol. Chem., Vol. 265, pp. 3628-3635 (1990), Garc.
ia-Perez A., Martin B., Murphy HR, Uchida S., M
urer H., Cowley BD Jr., Handlar JS, Burg M.
B., J. Biol. Chem., Volume 264, 16815-16821 (1989
Year)). Furthermore, a method for producing human aldose reductase by genetic engineering has been reported (Nishimura C., Yamaoka T.,
Mizutani M., Yamashita K., Akera T., Tanimoto T.,
Biochim. Biophys. Acta, 1078, 171-178 (1
991)).

【0004】ヒトアルドース還元酵素を特異的に認識す
る抗体を開発し、免疫染色法によりヒトアルドース還元
酵素の分布を調べたり、免疫測定法により各組織、血液
または尿などのヒトアルドース還元酵素を測定すること
が出来れば、ポリオール代謝の活性亢進に基づく糖尿病
合併症の発症メカニズムの解明や、糖尿病合併症の治療
薬として使用されているアルドース還元酵素阻害剤の投
与の指標となるなど基礎医学、臨床医学の領域において
非常に重要な意義を持つと考えられる。このようにヒト
アルドース還元酵素に特異的に結合する抗体の開発およ
び検体中のヒトアルドース還元酵素を特異的にかつ簡便
に高感度で測定できる方法の開発が望まれていた。我々
はすでにヒトアルドース還元酵素に結合する抗体および
該抗体を用いたヒトアルドース還元酵素の測定法を開発
した(特開平5-317083)が、この特開平5-317083の発明で
用いられるモノクローナル抗体は、ヒト由来の検体中に
存在するヒトアルドース還元酵素以外の生体物質も認識
している可能性があり、即ちヒトアルドース還元酵素に
対する特異性という点では不充分であった。
An antibody that specifically recognizes human aldose reductase has been developed, and the distribution of human aldose reductase is examined by immunostaining, or human aldose reductase such as each tissue, blood or urine is measured by immunoassay. If possible, elucidate the onset mechanism of diabetic complications based on the increased activity of polyol metabolism and serve as an index for the administration of aldose reductase inhibitors used as therapeutic drugs for diabetic complications. It is considered to have very important significance in the field of medicine. Thus, development of an antibody that specifically binds to human aldose reductase and development of a method capable of specifically and easily measuring human aldose reductase in a sample with high sensitivity have been desired. We have already developed an antibody that binds to human aldose reductase and a method for measuring human aldose reductase using the antibody (JP-A-5-317083), but the monoclonal antibody used in the invention of JP-A-5-317083 is However, it may be possible to recognize biological substances other than human aldose reductase present in human-derived samples, that is, it was insufficient in terms of specificity for human aldose reductase.

【0005】[0005]

【本発明が解決しようとする課題】上記の従来技術の欠
点を解決し、検体中のヒトアルドース還元酵素を特異的
に、且つ簡便に高感度で測定する方法を開発することが
本発明の課題である。
SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to solve the above-mentioned drawbacks of the prior art and develop a method for specifically and easily measuring human aldose reductase in a sample with high sensitivity. Is.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明者らは上記課題を
解決するために鋭意研究を重ねた結果、ヒトのアルドー
ス還元酵素に結合し、ウシ、イヌ、モルモット、ラット
またはウサギのアルドース還元酵素には結合しないこと
を特徴とするモノクローナル抗体を用いた免疫測定法に
より、ヒト由来の検体中のヒトアルドース還元酵素をこ
れまでよりも特異的に、且つ簡便に高感度で測定できる
ことを見出し、本発明に至った。即ち本発明は、ヒトの
アルドース還元酵素に結合し、ウシ、イヌ、モルモッ
ト、ラットまたはウサギのアルドース還元酵素には結合
しないことを特徴とするモノクローナル抗体、該抗体を
産生するハイブリドーマ、および該抗体を少なくとも1
種類使用するヒトアルドース還元酵素の免疫測定法に関
する。
Means for Solving the Problems As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventors have found that they bind to human aldose reductase and can bind to bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase. By an immunoassay using a monoclonal antibody characterized by not binding to, it was found that human aldose reductase in a human-derived sample can be measured more specifically and easily with high sensitivity. Invented. That is, the present invention binds to human aldose reductase and does not bind to bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase, a monoclonal antibody, a hybridoma producing the antibody, and the antibody. At least 1
Kindly, it relates to an immunoassay method for human aldose reductase to be used.

【0007】以下、本発明を詳細に説明する。モノクロ
ーナル抗体は、ケーラーとミルシュタインによる細胞融
合法 (G.Kohler Milstein,Nature(London), 第256 巻,4
95-497頁(1975 年))により作製されたハイブリドーマを
培養して分泌させ、その培養液などから分離する従来行
われている方法により得ることが出来る。すなわち、ヒ
トアルドース還元酵素で哺乳動物を免疫した後、この動
物の抗体産生細胞をミエローマ細胞と融合させハイブリ
ドーマを得る。免疫に使用する動物としては特に制限は
なく、各種の哺乳動物、例えばマウス、ラット、モルモ
ット、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、ネコ、イヌ等を使用する
ことができる。モノクローナル抗体は、上記の免疫動物
のうち、取扱い易さ等の理由により一般にはBalb/cマウ
スが用いられるが、他の系統のマウスを使用することも
できる。その際、免疫に用いる抗原の濃度は、十分な量
の抗原刺激を受けたリンパ球が形成されるよう選ばれる
べきである。例えば1 〜100 μg の抗原を含む生理食塩
水を、完全フロイントアジュバントあるいは不完全フロ
イントアジュバント等の懸濁液とし、動物に腹腔内注射
などによって投与する。あるいは、抗原を直接脾臓内に
注入しても良い。投与は2 〜4 週毎に1 〜数回行い、最
終免疫は通常1 〜100 μg の抗原を含む生理食塩溶液を
静脈注射により投与して行われる。最終免疫の数日後に
細胞融合のため免疫した動物から抗体産生細胞、例えば
リンパ球、好ましくは脾臓細胞を摘出し、ミエローマ細
胞と融合させてハイブリドーマを得る。
Hereinafter, the present invention will be described in detail. Monoclonal antibody is a cell fusion method by Köhler and Milstein (G. Kohler Milstein, Nature (London), Vol. 256, 4
It can be obtained by a conventional method of culturing and secreting a hybridoma prepared by the method described on page 95-497 (1975)) and separating it from the culture solution. That is, after immunizing a mammal with human aldose reductase, antibody-producing cells of this animal are fused with myeloma cells to obtain a hybridoma. The animal used for immunization is not particularly limited, and various mammals such as mouse, rat, guinea pig, rabbit, sheep, goat, cat, dog and the like can be used. Of the above-mentioned immunized animals, Balb / c mice are generally used as the monoclonal antibody for reasons such as ease of handling, but mice of other strains can also be used. At that time, the concentration of the antigen used for immunization should be selected so that a sufficient amount of antigen-stimulated lymphocytes are formed. For example, a physiological saline solution containing 1 to 100 μg of the antigen is made into a suspension of complete Freund's adjuvant or incomplete Freund's adjuvant, and is administered to animals by intraperitoneal injection or the like. Alternatively, the antigen may be directly injected into the spleen. The administration is performed once to several times every 2 to 4 weeks, and the final immunization is usually performed by intravenously administering a physiological saline solution containing 1 to 100 μg of the antigen. A few days after the final immunization, antibody-producing cells such as lymphocytes, preferably spleen cells, are extracted from the immunized animal for cell fusion and fused with myeloma cells to obtain hybridomas.

【0008】抗原に使用するヒトアルドース還元酵素と
しては、ヒト由来のものであれば特に限定されないが、
入手し易さの点からヒト胎盤由来のものが好ましく、さ
らに純度の高いものが多量に得られる点から、遺伝子工
学的製造法が用いられる。つまり、ヒトアルドース還元
酵素のcDNAが挿入されたバキュロウィルス発現ベクター
を利用してヒトアルドース還元酵素のcDNAをそのゲノム
DNA 中に含有する組換えバキュロウィルスを得、この組
換えウィルスを昆虫 (Spodoptera frugiperda) 細胞に
感染させてヒトアルドース還元酵素を発現させることに
よりヒトアルドース還元酵素を得ることが出来る。ま
た、ヒトアルドース還元酵素のアミノ酸配列を有するペ
プチド等を抗原に使用する場合は、化学合成や遺伝子工
学的手法によっても得られるが、その由来は問わない。
The human aldose reductase used as an antigen is not particularly limited as long as it is of human origin.
From the viewpoint of easy availability, those derived from human placenta are preferable, and from the viewpoint that a large amount of highly pure ones can be obtained, the genetic engineering manufacturing method is used. That is, the cDNA of human aldose reductase was used to clone the cDNA of human aldose reductase using a baculovirus expression vector into which the cDNA of human aldose reductase was inserted.
Human aldose reductase can be obtained by obtaining a recombinant baculovirus contained in DNA, infecting insect (Spodoptera frugiperda) cells with this recombinant virus, and expressing human aldose reductase. When a peptide or the like having the amino acid sequence of human aldose reductase is used as an antigen, it can be obtained by chemical synthesis or genetic engineering techniques, but its origin is not limited.

【0009】細胞融合は、最終免疫3 〜4 日後に無菌的
に取り出した脾臓から調製した脾臓細胞と適当なミエロ
ーマ細胞を融合促進剤の存在下で細胞融合させる。融合
に用いるミエローマ細胞は、哺乳動物からのものでよい
が、一般には、免疫に用いた動物と同じ種の動物に由来
するものが好適であり、例えばマウスではSP-2/0-Ag14
、NS-1-Ag4/1、P3-X63-Ag8-U1 、P3-NS1-1-Ag1、P3-X6
3-Ag8、FO、X-63-Ag8-6.5.3、210.RCY3.Ag1.2.3、S194/
5XXO.BU.1、SKO-007 、GM15006TG-A12 等が使用され、
ラットではY3.Ag1.2.3等が使用される。融合法として
は、センダイウィルスを用いるHVJ法、電気的融合法
あるいは平均分子量が1000〜6000のポリエチレングリコ
ールを用いるPEG法も使用できる。この場合融合時の
脾臓細胞とミエローマ細胞の混合比率は、一般に10:1〜
2:1の範囲が好ましい。
In the cell fusion, 3 to 4 days after the final immunization, spleen cells prepared from spleens aseptically taken out and appropriate myeloma cells are fused in the presence of a fusion promoter. The myeloma cells used for the fusion may be derived from mammals, but in general, those derived from animals of the same species as the animals used for immunization are preferable, for example, SP-2 / 0-Ag14 in mice.
, NS-1-Ag4 / 1, P3-X63-Ag8-U1, P3-NS1-1-Ag1, P3-X6
3-Ag8, FO, X-63-Ag8-6.5.3, 210.RCY3.Ag1.2.3, S194 /
5XXO.BU.1, SKO-007, GM15006TG-A12 etc. are used,
Y3.Ag1.2.3 is used in rats. As the fusion method, the HVJ method using Sendai virus, the electric fusion method, or the PEG method using polyethylene glycol having an average molecular weight of 1000 to 6000 can also be used. In this case, the mixing ratio of spleen cells and myeloma cells at the time of fusion is generally 10: 1 to
A range of 2: 1 is preferred.

【0010】融合した細胞からのハイブリドーマの分離
は、未融合の脾臓細胞、未融合のミエローマ細胞及び融
合した細胞の混合物を未融合のミエローマ細胞が生存で
きない選択培地で、未融合の細胞が死滅するまでの適当
な時間 (約1 週間) 培養することにより行うことが出来
る。HGPRT 欠損骨髄腫細胞を融合親株として用いた場合
には、選択培地は、例えばHAT 培地 (ヒポキサンチン、
アミノプテリン及びチミジンを含む培地) やHA2 (ヒポ
キサンチン、アザセリンを含む培地) 等が使用される。
この選択培地中では、未融合のミエローマ細胞は死滅
し、また未融合の脾臓細胞は、非腫瘍性細胞であるの
で、一定期間後 (約1 週間後) 死滅するので、生育でき
る細胞を選択することによりハイブリドーマを得ること
ができる。目的の抗体を産生するハイブリドーマの検索
及び単一クローン化は、通常の限界希釈法によって行う
ことが出来る。このようにして得られた本発明のモノク
ローナル抗体を産生するハイブリドーマは、生育に適し
た培地中で生育でき、また超低温冷凍庫や液体窒素中な
どで容易に長期に保存が可能である。このようにして得
られたハイブリドーマは、栄養培地中あるいは哺乳動物
の腹腔内で増殖させることにより抗体を産生させること
ができ、産生したモノクローナル抗体は培養上清あるい
はその哺乳動物の腹水または血清から精製することがで
きる。抗体の精製は、通常の蛋白精製に用いられる生化
学的手法、例えば遠心分離、透析、硫酸アンモニウム等
による塩析、DEAEカラム等によるイオン交換クロマトグ
ラフィー、ゲルろ過、アフィニティクロマトグラフィー
などにより行うことができる。
Isolation of hybridomas from the fused cells is accomplished by killing the unfused cells in a selective medium in which the unfused spleen cells, unfused myeloma cells and a mixture of fused cells cannot survive the unfused myeloma cells. It can be performed by culturing for an appropriate time (about 1 week). When HGPRT-deficient myeloma cells are used as the fusion parent strain, the selection medium is, for example, HAT medium (hypoxanthine,
A medium containing aminopterin and thymidine), HA2 (medium containing hypoxanthine and azaserine) and the like are used.
In this selection medium, unfused myeloma cells die, and unfused spleen cells are non-neoplastic cells that die after a period of time (about 1 week), so select viable cells. Thus, a hybridoma can be obtained. Hybridomas that produce the desired antibody can be searched for and cloned by a conventional limiting dilution method. The hybridoma producing the monoclonal antibody of the present invention thus obtained can be grown in a medium suitable for growth and can be easily stored for a long period of time in an ultralow temperature freezer or liquid nitrogen. The hybridoma thus obtained can produce an antibody by growing in a nutrient medium or in the abdominal cavity of a mammal, and the produced monoclonal antibody is purified from the culture supernatant or the ascites or serum of the mammal. can do. The antibody can be purified by a biochemical method used for ordinary protein purification, such as centrifugation, dialysis, salting out with ammonium sulfate, ion exchange chromatography with DEAE column, gel filtration, affinity chromatography, etc. .

【0011】このようにして得られたヒトアルドース還
元酵素に結合するモノクローナル抗体には、免疫に用い
た抗原の異なる部位に結合する数種の抗体が含まれてお
り、ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合し、ウシ、
イヌ、モルモット、ラットまたはウサギのアルドース還
元酵素に結合しない抗体の他、ヒトアルドース還元酵素
ならびにウシ、イヌ、モルモット、ラットまたはウサギ
のアルドース還元酵素のどちらに対しても結合する抗体
が含まれている。また、ヒトアルドース還元酵素の近縁
酵素であり、非常に類似したアミノ酸配列を持つヒトア
ルデヒド還元酵素に結合する抗体も含まれていることが
ある。我々はすでにヒトアルドース還元酵素に結合する
抗体および該抗体を用いたヒトアルドース還元酵素の測
定法を開発したが( 特開平5-317083) 、これらの抗体は
ウシ、イヌ、モルモット、ラットまたはウサギのアルド
ース還元酵素とも結合する抗体である。ヒトアルドース
還元酵素に特異的に結合しウシ、イヌ、モルモット、ラ
ットまたはウサギのアルドース還元酵素に結合しない抗
体を得るのは非常に困難である。我々は本発明のヒトア
ルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロ−ナル抗
体を得るために、ハイブリドーマのスクリーニング方法
として、抗ヒトアルドース還元酵素モノクローナル抗体
産生ハイブリドーマのなかから、ARmAb25 と競合しない
抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングするこ
とによってヒトアルドース還元酵素に特異的に結合する
モノクロ−ナル抗体を産生するハイブリドーマを効率よ
く選択できることを見いだした。ARmAb25 は特開平5-31
7083に記載のヒトアルドース還元酵素に対するモノクロ
−ナル抗体であり、ハイブリドーマ AR25 によって産生
される。このハイブリドーマ AR25 は平成6年7月4日
付でFERM P−14417として工業技術院生物工
学技術研究所 特許微生物寄託センターに寄託してあ
る。
The thus obtained monoclonal antibody that binds to human aldose reductase contains several antibodies that bind to different sites of the antigen used for immunization, and is specific to human aldose reductase. Bovine,
Contains antibodies that do not bind to dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase, as well as antibodies that bind to both human aldose reductase and bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase. . In addition, an antibody that binds to human aldehyde reductase, which is a closely related enzyme of human aldose reductase and has a very similar amino acid sequence, may be included. We have already developed an antibody that binds to human aldose reductase and a method for measuring human aldose reductase using the antibody (Japanese Patent Laid-Open No. 317083/1993) .However, these antibodies are effective for bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit. It is an antibody that also binds to aldose reductase. It is very difficult to obtain an antibody that specifically binds to human aldose reductase and does not bind to bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase. In order to obtain a monoclonal antibody that specifically binds to human aldose reductase of the present invention, as a hybridoma screening method, an antibody that does not compete with ARmAb25 is produced from among anti-human aldose reductase monoclonal antibody-producing hybridomas. It was found that a hybridoma producing a monoclonal antibody that specifically binds to human aldose reductase can be efficiently selected by screening the hybridomas. ARmAb25 is Japanese Patent Laid-Open No. 5-31
The monoclonal antibody against human aldose reductase described in 7083, which is produced by hybridoma AR25. This hybridoma AR25 was deposited on July 4, 1994 as FERM P-14417 at the Patent Microorganism Depositary Center, Institute of Biotechnology, Institute of Industrial Science and Technology.

【0012】本発明のヒトアルドース還元酵素に結合す
るモノクロ−ナル抗体とは、該抗体それ自体とともにヒ
トアルドース還元酵素に結合する該抗体のフラグメント
も含まれる。そのような抗体フラグメントとしては、例
えばF(ab')2 、Fab'、Fab などを挙げることができる。
かかる抗体フラグメントは、例えばF(ab')2 やFab'の場
合には、上述のようにして得られた抗体を公知の方法、
例えば該抗体をペプシンで消化してF(ab')2 フラグメン
トとするか、さらにF(ab')2 フラグメントを還元処理す
ることによってFab'フラグメントとすることにより得ら
れる (石川栄治著、酵素標識法、生物化学実験法27、学
会出版センター、1991など) 。さらに本発明のモノクロ
−ナル抗体は、前記の特性を持つモノクロ−ナル抗体で
あれば、マウス抗体、改変型ヒト抗体、マウス−ヒト・
キメラ抗体なども含まれる。
The monoclonal antibody that binds to human aldose reductase of the present invention includes the antibody itself and a fragment of the antibody that binds to human aldose reductase. Examples of such antibody fragments include F (ab ') 2 , Fab', Fab and the like.
Such an antibody fragment is, for example, in the case of F (ab ′) 2 or Fab ′, the antibody obtained as described above is used in a known method,
For example, it can be obtained by digesting the antibody with pepsin to give an F (ab ') 2 fragment, or by further reducing the F (ab') 2 fragment to give a Fab 'fragment (Eiji Ishikawa, enzyme-labeled. Law, Biochemistry Experimental Method 27, Academic Publishing Center, 1991). Furthermore, the monoclonal antibody of the present invention is a mouse antibody, modified human antibody, mouse-human.
Chimeric antibodies and the like are also included.

【0013】また、本抗体を用いて酵素免疫測定法 (EI
A ) 、蛍光免疫測定法 (FIA ) または放射線免疫測定法
(RIA ) を行うことにより微量のヒトアルドース還元酵
素を特異的に、かつ正確に測定することが可能となっ
た。たとえば、EIA としては、「エンザイムイムノアッ
セイ (生化学実験法11) 」 (第1 版、P.Tijssen 著、石
川栄治監訳、東京化学同人、1989年) 等に記載されてい
るそれ自体公知の方法を用いることができる。ここで
は、サンドイッチ法および競合法のそれぞれに基づくEI
A について簡単に説明するが、RIA およびFIA のそれぞ
れにおいても、EIAと同様な原理によるものである。サ
ンドイッチ法によるEIA では、抗体を担体に固相化 (固
相化一次抗体) し、これに抗原を加え、抗原抗体反応に
より抗原を固相化一次抗体に結合させる。次に酵素を標
識した抗体 (酵素標識二次抗体) を入れ、抗原抗体反応
により、酵素標識二次抗体を上記の固相化一次抗体に結
合している抗原の上に結合させる。その後、抗原に結合
しなかった酵素標識二次抗体を除去し、基質を加えて酵
素反応を行い、既知量の抗原と二次抗体に標識した酵素
活性との関係を示す検量線から、検体中の抗原量を求め
る。なお操作を簡単にするため、固相化一次抗体に抗原
と酵素標識二次抗体とを同時に入れる方法 (一段法サン
ドイッチ法EIA ) も行われる。通常、サンドイッチ法で
は、一次抗体と二次抗体とが互いに認識部位の異なる抗
体を組み合わせて用いられ、本発明のモノクローナル抗
体を一次抗体、二次抗体いずれに用いた場合でも、ヒト
アルドース還元酵素に特異的な測定が可能である。この
場合、もう一方の抗体は、ヒトアルドース還元酵素に結
合する抗体であればポリクローナル抗体であっても、ま
たは認識部位が異なれば如何なる種類のモノクローナル
抗体であっても構わない。
Further, an enzyme immunoassay (EI
A), fluorescence immunoassay (FIA) or radioimmunoassay
By carrying out (RIA), it became possible to specifically and accurately measure a trace amount of human aldose reductase. For example, as the EIA, a method known per se described in "Enzyme Immunoassay (Biochemical Experimental Method 11)" (1st edition, P. Tijssen, translated by Eiji Ishikawa, Tokyo Kagaku Dojin, 1989), etc. Can be used. Here, the EI based on the sandwich method and the competitive method, respectively.
A is briefly explained, but the same principle is applied to RIA and FIA as in EIA. In EIA by the sandwich method, an antibody is immobilized on a carrier (immobilized primary antibody), an antigen is added to this, and the antigen is bound to the immobilized primary antibody by an antigen-antibody reaction. Next, an enzyme-labeled antibody (enzyme-labeled secondary antibody) is added, and the enzyme-labeled secondary antibody is bound to the antigen bound to the above-mentioned immobilized primary antibody by an antigen-antibody reaction. After that, the enzyme-labeled secondary antibody that did not bind to the antigen was removed, an enzyme reaction was performed by adding a substrate, and from the calibration curve showing the relationship between the known amount of the antigen and the enzyme activity labeled to the secondary antibody Determine the amount of antigen. In order to simplify the operation, a method (single-step sandwich method EIA) in which the antigen and the enzyme-labeled secondary antibody are simultaneously added to the immobilized primary antibody is also used. Usually, in the sandwich method, the primary antibody and the secondary antibody are used in combination with antibodies having different recognition sites from each other, and when the monoclonal antibody of the present invention is used as the primary antibody or the secondary antibody, human aldose reductase Specific measurement is possible. In this case, the other antibody may be a polyclonal antibody as long as it binds to human aldose reductase, or may be any type of monoclonal antibody as long as it has different recognition sites.

【0014】ポリクローナル抗体は通常行われている方
法、例えば「日本生化学会編、新生化学実験講座12、東
京化学同人、1992」記載の方法によって得られる。免疫
動物としては、特に限定されるものではないが、ウマ、
ヤギ、ヒツジ、ウサギ、モルモット、マウス、ニワトリ
などが挙げられる。免疫動物としてウサギを用いる場合
には、抗原を適当な濃度に生理食塩水などで希釈し、完
全フロイントアジュバント、不完全フロイントアジュバ
ントまたは水酸化アルミニウムアジュバントなどの懸濁
液とし、10〜1000μg /回・匹を注射し、さらに2 〜4
週間後に追加免疫注射を1 〜3 回行い、抗血清を得る。
注射は多数箇所の皮下に行うのが好ましい。抗血清から
ポリクローナル抗体の調製は、上記モノクローナル抗体
の精製と同様の方法で行うことができる。
The polyclonal antibody can be obtained by a commonly used method, for example, the method described in "Biochemistry Society of Japan, Shinsei Chemistry Laboratory Course 12, Tokyo Kagaku Dojin, 1992". Immunized animals include, but are not limited to, horses,
Goat, sheep, rabbit, guinea pig, mouse, chicken and the like can be mentioned. When a rabbit is used as an immunized animal, the antigen is diluted to an appropriate concentration with physiological saline or the like to prepare a suspension of complete Freund's adjuvant, incomplete Freund's adjuvant, aluminum hydroxide adjuvant, etc., at 10 to 1000 μg / time. Inject cubs, then 2-4 more
After one week, booster injections are given 1 to 3 times to obtain antiserum.
Injections are preferably given subcutaneously at multiple sites. The polyclonal antibody can be prepared from the antiserum by the same method as in the purification of the above monoclonal antibody.

【0015】競合法によるEIA では、抗原と一定量の抗
体と抗原抗体反応を行わせ、次に抗原とは結合しなかっ
た抗体を固相化抗原と抗原抗体反応を行わせる。固相化
抗原に結合した抗体量を酵素標識抗体により測定する。
あるいは、抗原と予め一定量の酵素を標識した抗体 (以
下標識抗体) とで抗原抗体反応を行わせた後、抗原とは
結合しないで残存した標識抗体と固相化抗原とで抗原抗
体反応を行わせ、その後固相に結合した酵素量を測定す
る。酵素量の測定は、通常の方法により行うことが出来
るが、いずれの場合も既知量の標識抗原を用いて作成し
た検量線から検体中の抗原量を算出することが出来る。
または、一定量の酵素標識抗原と検体との混合液を固相
化抗体と接触させて、抗原抗体反応を行わせ、標識抗原
と非標識抗原とを競合させて抗体と結合させる。その
後、固相化抗体に結合した酵素標識抗原量を、酵素の基
質に加えて測定し、既知量の標識抗原を用いて作成した
検量線から抗原量を算出する。
In EIA by the competitive method, an antigen-antibody reaction is performed with an antigen and a fixed amount of antibody, and then an antibody that has not bound to the antigen is allowed to undergo an antigen-antibody reaction with the immobilized antigen. The amount of antibody bound to the immobilized antigen is measured with an enzyme-labeled antibody.
Alternatively, after performing an antigen-antibody reaction with an antigen and an antibody labeled with a predetermined amount of enzyme (hereinafter, labeled antibody), the labeled antibody remaining without binding to the antigen and the solid-phase antigen are allowed to undergo an antigen-antibody reaction. Then, the amount of enzyme bound to the solid phase is measured. The enzyme amount can be measured by an ordinary method, but in any case, the antigen amount in the sample can be calculated from a calibration curve prepared using a known amount of labeled antigen.
Alternatively, a fixed amount of a mixture of an enzyme-labeled antigen and a sample is brought into contact with the immobilized antibody to cause an antigen-antibody reaction, and the labeled antigen and the unlabeled antigen compete with each other to bind to the antibody. Then, the amount of the enzyme-labeled antigen bound to the immobilized antibody is added to the substrate of the enzyme and measured, and the amount of the antigen is calculated from the calibration curve prepared using a known amount of the labeled antigen.

【0016】サンドイッチ法および競合法のそれぞれに
おいて、抗体をペプシンで消化して得られるF(ab')2
F(ab')2 を還元して得られたFab'、および抗体をパパイ
ンで消化して得られたFab などの抗原に結合する抗体フ
ラグメントを抗体として、また、これらを標識した標識
抗体として使用することが出来る。抗体および抗原のそ
れぞれに標識する酵素としては、パーオキシダーゼ、β
−D −ガラクトシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、
グルコースオキシダーゼなどがあり、「単クローン抗
体」 (岩崎辰夫 他著、講談社 サイエンティフィック
(1984)) 、「酵素標識法 (生物化学実験法 27 ) 」 (第
1 版、石川栄治著、学会出版センター、1991年) などに
記載されている方法で標識することが出来る。一方、固
相としては、シリコン、ナイロン、プラスチック、ガラ
スからなるスティック、ビーズ、マイクロプレートもし
くは試験管などが利用できる。また、本発明におけるヒ
トアルドース還元酵素の抗体は、組織、血液、尿などか
らのヒトアルドース還元酵素の分離精製などにも使用す
ることが出来る。以下、本発明を実施例によってさらに
具体的に説明するが、本発明は、これに限定されるもの
ではない。
In each of the sandwich method and the competition method, F (ab ') 2 , obtained by digesting the antibody with pepsin,
Fab 'obtained by reducing F (ab') 2 and an antibody fragment that binds to an antigen such as Fab obtained by digesting the antibody with papain are used as antibodies, and these are also used as labeled labeled antibodies. You can do it. Enzymes for labeling antibodies and antigens include peroxidase and β
-D-galactosidase, alkaline phosphatase,
There are glucose oxidase, etc., and "monoclonal antibody" (Tatsuo Iwasaki et al., Kodansha Scientific
(1984)), `` Enzyme labeling method (Biochemical Experimental Method 27) '' (No.
1st edition, Eiji Ishikawa, Academic Publishing Center, 1991). On the other hand, as the solid phase, silicon, nylon, plastic, glass sticks, beads, microplates or test tubes can be used. The human aldose reductase antibody of the present invention can also be used for separation and purification of human aldose reductase from tissues, blood, urine and the like. Hereinafter, the present invention will be described more specifically by way of examples, but the present invention is not limited thereto.

【0017】[0017]

【実施例】 実施例1ヒトアルドース還元酵素に結合するポリクローナル抗体
の調製 (1) 免疫に使用される抗原の調製 前記の西村等の方法[Nishimura et al., Biochim. Bio
phys. Acta, 第1078巻, 171 −178 頁(1991 年) ]に従
い、ヒトアルドース還元酵素 (以下、本抗原と記すこと
もある) 15mgを得た。ヒトアルドース還元酵素の蛋白定
量は、ブラッドフォード法によりウシγグロブリンを標
準品として定量した。 (2) ポリクローナル抗体の作成 日本白色ウサギ (雌、2.0Kg ) に500 μg のヒトアルド
ース還元酵素を完全フロイントアジュバントと共に皮下
免疫し、3 週間飼育後、同量のヒトアルドース還元酵素
とFCA を追加免疫した。さらに2 週毎に2 回同様な追加
免疫を行ったのち、最終免疫から10日後に耳動脈より採
血した。血液を数時間室温にて静置後、4 ℃で一晩置
き、5000×g で10分間遠心分離を行い、その上清に終濃
度が0.02%となるようNaN3を添加して、血清標品を得
た。得られた血清標品からプロテインA カラム (Ampure
PA Kit 、Amersham) を用いて免疫グロブリンG(IgG )
分画を精製し、ウサギ抗ヒトアルドース還元酵素ポリク
ローナル抗体( 以下、ポリクローナル抗体と記す) を得
た。
Example 1 Polyclonal antibody that binds to human aldose reductase
(1) Preparation of antigen used for immunization Nishimura et al. [Nishimura et al., Biochim. Bio
Phys. Acta, 1078, 171-178 (1991)], 15 mg of human aldose reductase (hereinafter sometimes referred to as the present antigen) was obtained. The protein quantification of human aldose reductase was carried out by the Bradford method using bovine gamma globulin as a standard. (2) Preparation of polyclonal antibody Japanese white rabbits (female, 2.0 kg) were subcutaneously immunized with 500 μg of human aldose reductase together with complete Freund's adjuvant, and after immunization for 3 weeks, the same amount of human aldose reductase and FCA was boosted. did. The same booster immunization was performed twice every two weeks, and 10 days after the final immunization, blood was collected from the ear artery. After allowing the blood to stand at room temperature for several hours, overnight at 4 ° C, centrifuge at 5000 xg for 10 minutes, add NaN 3 to the supernatant to a final concentration of 0.02%, and add serum I got the goods. Protein A column (Ampure
PA Kit, Amersham) using immunoglobulin G (IgG)
The fraction was purified to obtain a rabbit anti-human aldose reductase polyclonal antibody (hereinafter referred to as a polyclonal antibody).

【0018】(3) ポリクローナル抗体の特異性 ヒト由来のHela細胞株と人の組織の抽出物を対象とし
て、1μg /mlの本抗体を用いてウエスタンブロット法
による解析を行ったところ、ヒトアルドース還元酵素と
同じ分子量の位置に、抗体と反応する蛋白を認めた。さ
らに、アルドース還元酵素の近縁酵素として人組織中に
多量に存在するアルデヒド還元酵素に対する本抗体の交
差反応をウエスタンブロット法にて調べた。それぞれヒ
トアルドース還元酵素0.1 μg 、ヒト腎臓アルデヒド還
元酵素0.1 μg および0.2 μg をSDS ポリアクリルアミ
ド電気泳動を行った後、抗体を用いてウエスタンブロッ
ト法による解析を行ったところ、ヒトアルドース還元酵
素は検出されたが、ヒト腎臓アルデヒド還元酵素は検出
されなかった。
(3) Specificity of Polyclonal Antibody When the human-derived Hela cell line and human tissue extracts were analyzed by Western blotting using 1 μg / ml of this antibody, human aldose reduction was observed. A protein that reacts with the antibody was found at the same molecular weight position as the enzyme. Furthermore, the cross-reactivity of this antibody with aldehyde reductase, which is present in a large amount in human tissues as a related enzyme of aldose reductase, was examined by Western blotting. When human aldose reductase 0.1 μg and human kidney aldehyde reductase 0.1 μg and 0.2 μg were subjected to SDS polyacrylamide gel electrophoresis and analyzed by Western blotting using antibodies, human aldose reductase was detected. However, human kidney aldehyde reductase was not detected.

【0019】実施例2ヒトアルドース還元酵素に結合するモノクロ−ナル抗体
の調製 (1) 免疫に使用される抗原の調製 実施例1の(1) と同様にしてヒトアルドース還元酵素11
mgを得た。 (2) 免疫脾細胞の調製 9 週齢の雄Balb/cマウス の腹腔内にヒトアルドース還元酵
素40μg と完全フロイントアジュバント (Complete Fre
und's adjyuvant ) とのエマルジョンを投与した。さら
に4 週後に、ヒトアルドース還元酵素30μg と不完全フ
ロイントアジュバントとのエマルジョンを腹腔内に追加
投与した。さらに7 日後、ヒトアルドース還元酵素30μ
g を含む生理食塩水溶液を静脈に投与した。最終免疫の
3 日後にマウスを屠殺し、脾臓を摘出し細胞融合に用い
た。 (3) ハイブリドーマの調製 脾臓をピンセットでほぐして得られた細胞を、GIT 培地
(日本製薬製) に懸濁し、これをナイロンメッシュに通
過させ、単細胞浮遊液を得た。この単細胞浮遊液を、0.
83%塩化アンモニウム溶液 (9 容量部) と0.17M トリス
(ヒドロキシメチル) アミノメタン塩酸緩衝液 (pH7.6)
(1 容量部) との混液で4 ℃で1 分間処理し、単細胞浮
遊液中の赤血球を破壊し、遠心分離で取り除いた。10%
ウシ胎仔血清添加GIT 培地 (以下10%FCS-GIT 培地と記
す) で培養した対数増殖のマウスミエローマ細胞SP-2を
GIT 培地で2 回洗浄した。脾細胞とこのマウスミエロー
マ細胞SP-2とを7.5:1 の比率でGIT 培地に懸濁し均一に
した後、遠心分離により細胞を回収し、その細胞を水溶
液中で37℃に加温した。
Example 2 Monoclonal antibody binding to human aldose reductase
(1) Preparation of antigen used for immunization Human aldose reductase 11 was prepared in the same manner as in (1) of Example 1.
to obtain mg. (2) Preparation of immune spleen cells 9-week-old male Balb / c mice were intraperitoneally injected with 40 μg of human aldose reductase and complete Freund's adjuvant (Complete Freund's adjuvant).
und's adjyuvant). After 4 weeks, an emulsion of 30 μg of human aldose reductase and Freund's incomplete adjuvant was additionally administered intraperitoneally. After another 7 days, human aldose reductase 30μ
A physiological saline solution containing g was intravenously administered. Of final immunity
After 3 days, the mice were sacrificed and their spleens were removed and used for cell fusion. (3) Preparation of hybridoma Cells obtained by loosening the spleen with tweezers are used in GIT medium.
(Manufactured by Nippon Pharmaceutical Co., Ltd.) and passed through a nylon mesh to obtain a single cell suspension. Add this single cell suspension to 0.
83% ammonium chloride solution (9 parts by volume) and 0.17M Tris
(Hydroxymethyl) aminomethane hydrochloric acid buffer (pH 7.6)
It was treated with a mixed solution of (1 part by volume) at 4 ° C for 1 minute to destroy the red blood cells in the single cell suspension and removed by centrifugation. Ten%
Logarithmic growth of mouse myeloma cells SP-2 cultured in GIT medium supplemented with fetal bovine serum (hereinafter referred to as 10% FCS-GIT medium)
It was washed twice with GIT medium. The spleen cells and the mouse myeloma cells SP-2 were suspended in GIT medium at a ratio of 7.5: 1 and homogenized, and the cells were recovered by centrifugation, and the cells were heated to 37 ° C in an aqueous solution.

【0020】この細胞に、予め37℃に加温した平均分子
量1,500 の50%ポリエチレングリコール溶液 (ベーリン
ガー・マンハイム製) 2.0ml を1 分間かけて徐々に加
え、さらに1 分間細胞融合反応を行った。この混合液
に、GIT 培地10mLを4 分間かけて滴下して細胞融合反応
を停止させ、これを遠心分離して細胞を得た。ハイブリ
ドーマ増殖因子を含むハイブリドーマ作製用添加試薬
「ブライクローン」( 大日本製薬株式会社製) を5 %含
むGIT 培地 (以下 5%HCF-GIT 培地と記す) を用いこの
細胞を5 ×106 細胞/mlの濃度になるように懸濁し、次
いで96穴マイクロウェルプレート (コーニング社製) の
各ウェルに、この懸濁液を100 μl ずつ分注した。この
プレートを 5.5%炭酸ガス含有雰囲気中で37℃で1 日培
養した後、4 ×10-7M アミノプテリン、1.6 ×10-5M チ
ミジンおよび1 ×10-4M ヒポキサンチンを含有する 5%
HCF-GIT 培地 (以下 HAT-5%HCF-GIT 培地と記す) 100
μl を各ウェルに添加した。1 日後、各ウェルから半量
の培地を吸引除去し、次いで HAT-5%HCF-GIT 培地を10
0 μl 添加した。その後、2 日または3 日毎に半量の培
地を新たな培地と交換し、培養を続けた。細胞融合10日
後にハイブリドーマの増殖が認められた。
2.0 ml of a 50% polyethylene glycol solution having an average molecular weight of 1,500 (manufactured by Boehringer Mannheim) preheated to 37 ° C. was gradually added to the cells over 1 minute, and a cell fusion reaction was further performed for 1 minute. 10 mL of GIT medium was added dropwise to this mixed solution over 4 minutes to stop the cell fusion reaction, and this was centrifuged to obtain cells. 5 × 10 6 cells / cell were prepared using GIT medium (hereinafter referred to as 5% HCF-GIT medium) containing 5% of an additive reagent “Blyclone” (manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) for producing a hybridoma containing a hybridoma growth factor. The suspension was suspended at a concentration of ml, and 100 μl of this suspension was dispensed into each well of a 96-well microwell plate (manufactured by Corning). After incubating this plate for 1 day at 37 ℃ in an atmosphere containing 5.5% carbon dioxide, 5% containing 4 × 10 -7 M aminopterin, 1.6 × 10 -5 M thymidine and 1 × 10 -4 M hypoxanthine.
HCF-GIT medium (hereinafter referred to as HAT-5% HCF-GIT medium) 100
μl was added to each well. After one day, aspirate half of the medium from each well and then add 10% HAT-5% HCF-GIT medium.
0 μl was added. After that, half of the medium was replaced with fresh medium every 2 or 3 days, and the culture was continued. 10 days after cell fusion, proliferation of hybridoma was observed.

【0021】(4) ヒトアルドース還元酵素に結合するモ
ノクロ−ナル抗体産生ハイブリドーマの選別 ハイブリドーマ培養上清中のヒトアルドース還元酵素に
結合する抗体のスクリーニングは、ヒトアルドース還元
酵素を固定したマイクロプレートを用いてEIAにより行
った。ヒトアルドース還元酵素の固定は96穴イムノマイ
クロプレート (ヌンク社製) の各ウェルに0.5 μg/mlと
なるよう0.15M NaCl含有0.01M リン酸緩衝液(pH7.4 )
(以下PBS と記す) に溶解したヒトアルドース還元酵素
溶液100 μl を添加し、室温で2 時間吸着させた。この
プレートをPBS で5 回洗浄後、各ウェルに0.2 %ウシ血
清アルブミンおよび0.05%Tween20 を含むPBS 溶液 (以
下BSA −Tween 20-PBSと記す) を加え、蛋白の非特異的
吸着が起こらないように各ウェルを完全にブロックし
た。
(4) Selection of monoclonal antibody-producing hybridoma that binds to human aldose reductase Screening for antibodies that bind to human aldose reductase in the hybridoma culture supernatant uses a microplate on which human aldose reductase is immobilized. By EIA. Immobilization of human aldose reductase was carried out in a 96-well immunomicroplate (Nunc) at a concentration of 0.5 μg / ml in each well with 0.15 M NaCl in 0.01 M phosphate buffer (pH 7.4).
100 μl of human aldose reductase solution dissolved in (hereinafter referred to as PBS) was added and allowed to adsorb at room temperature for 2 hours. After washing this plate 5 times with PBS, add PBS solution containing 0.2% bovine serum albumin and 0.05% Tween 20 (hereinafter referred to as BSA-Tween 20-PBS) to each well to prevent nonspecific adsorption of proteins. Each well was completely blocked.

【0022】各ウェルに、前記(3) のようにして得られ
たハイブリドーマ培養上清のPBS による希釈液100 μl
を添加し、室温で1 時間反応させ、ウェルに固定化した
酵素にモノクローナル抗体を結合させた。酵素に結合し
たモノクローナル抗体の検出は、ベクタスティンABC キ
ット (ベクターラボラトリーズ社製) を用いた。すなわ
ち、プレートを0.05%Tween20 含有PBS(以下 Tween20-P
BSと記す) で5 回洗浄後、ビオチン化ヤギ抗マウスイム
ノグロブリン抗血清のBSA-Tween20-PBS 溶液を100 μl
添加して、1 時間反応させ、次いでTween 20-PBSで洗浄
後、100 μl のアビジン化パーオキシダーゼのBSA-Twee
n20-PBS 溶液を添加し、20分間反応させた。このプレー
トをTween20-PBS で5 回洗浄後、各ウェルに0.03%過酸
化水素と1mg/mlのオルトフェニレンジアミン二塩酸塩を
含む100mM クエン酸緩衝液(pH 5.0)との等量混合液を10
0 μl 加え、室温で10分間インキュベートした。その
後、各ウェルに2N硫酸を100 μl 加えて反応を停止さ
せ、イムノリーダーNJ-2000 (インターメッド社製) を
用いて、反応生成液の490nm の吸光度を測定した。融合
細胞を入れた合計384 ウェルのうち、156 ウェルにハイ
ブリドーマの増殖が認められ、このうちヒトアルドース
還元酵素に結合する抗体産生陽性ウェルは43個であっ
た。
In each well, 100 μl of a diluted solution of the hybridoma culture supernatant obtained as described in (3) above in PBS.
Was added and reacted at room temperature for 1 hour to bind the monoclonal antibody to the enzyme immobilized in the well. For detection of the monoclonal antibody bound to the enzyme, Vectastin ABC kit (manufactured by Vector Laboratories) was used. In other words, the plate was replaced with PBS containing 0.05% Tween20
5 times), and 100 μl of biotinylated goat anti-mouse immunoglobulin antiserum in BSA-Tween20-PBS solution.
Add, allow to react for 1 hour, then wash with Tween 20-PBS, then add 100 μl of avidin-peroxidase BSA-Twee
The n20-PBS solution was added and reacted for 20 minutes. After washing the plate 5 times with Tween 20-PBS, each well was treated with an equal mixture of 0.03% hydrogen peroxide and 1 mg / ml orthophenylenediamine dihydrochloride in 100 mM citrate buffer (pH 5.0).
0 μl was added and incubated at room temperature for 10 minutes. Then, 100 μl of 2N sulfuric acid was added to each well to stop the reaction, and the absorbance at 490 nm of the reaction product solution was measured using ImmunoReader NJ-2000 (manufactured by Intermed). Of 384 wells in total containing the fused cells, 156 wells showed proliferation of hybridomas, and 43 wells of antibody production that bind to human aldose reductase were positive.

【0023】(5)ARmAb25と競合しないモノクロ−ナル抗
体産生ハイブリドーマのスクリーニング ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロ−
ナル抗体を産生するハイブリドーマを効率よくスクリー
ニングする方法として、ARmAb25 と競合しないモノクロ
−ナル抗体を産生するハイブリドーマをヒトアルドース
還元酵素を固定したマイクロプレートを用いたEIAによ
り選択した。合計43種のヒトアルドース還元酵素に結
合する抗体活性を持つハイブリドーマの培養液を、HAT-
5%HCF-GIT 培地を入れた24穴平底マイクロプレート
(コーニング社製) に移した。増殖してきたハイブリド
ーマの一部を、GIT培地を入れた24穴平底マイクロプレ
ートに移し、3 日後に培養上清を採取した。ヒトアルド
ース還元酵素のマイクロプレートへの固定は実施例2
(4)に従い、各ウェルに0.1 μg/mlとなるように溶解し
たヒトアルドース還元酵素溶液を添加し吸着させた。各
ウェルをBSA −Tween 20-PBSでブロックしたのち、得ら
れたハイブリドーマ培養上清のBSA −Tween 20-PBS溶液
による段階希釈液100 μl を添加し、4 ℃で1 晩反応さ
せ、ウェルに固定化したヒトアルドース還元酵素にモノ
クロ−ナル抗体を結合させた。プレートを300 μl のTw
een 20-PBSで5 回洗浄し、各ウェルに、ARmAb25のHRP
標識Fab' (特開平5-317083記載) のBSA-Tween 20-PBS溶
液 (20ng/ml)を100 μl 加え、1時間反応させた。この
プレートを300 μl のTween 20-PBSで5 回洗浄した後、
100μl のオルトフェニレンジアミン含有基質 (1.0 mg/
ml オルトフェニレンジアミン、0.015%過酸化水素) を
加え室温で20分間反応させた。このウェルに4N硫酸を10
0 μl 加えて反応を停止させ、イムノリーダー NJ-2000
を用いて、反応生成液の 490nmの吸光度を測定した。43
個の抗体産生陽性ウェルのうちARmAb25と競合しなかっ
たもの、およびわずかに競合したもの合計17個の抗体産
生陽性ウェルについてハイブリドーマのクローニングを
行った。
(5) Screening of monoclonal antibody-producing hybridomas that do not compete with ARmAb25 Monochrome that specifically binds to human aldose reductase
As a method for efficiently screening a hybridoma producing a null antibody, a hybridoma producing a monoclonal antibody that does not compete with ARmAb25 was selected by EIA using a microplate on which human aldose reductase was immobilized. A total of 43 types of human aldose reductase binding antibody hybridoma cultures were incubated with HAT-
24-well flat bottom microplate containing 5% HCF-GIT medium
(Made by Corning). A part of the grown hybridoma was transferred to a 24-well flat-bottom microplate containing GIT medium, and the culture supernatant was collected 3 days later. The immobilization of human aldose reductase on the microplate was performed in Example 2.
According to (4), a human aldose reductase solution dissolved in each well at a concentration of 0.1 μg / ml was added and adsorbed. After blocking each well with BSA-Tween 20-PBS, add 100 μl of serially diluted BSA-Tween 20-PBS solution to the resulting hybridoma culture supernatant, react at 4 ° C overnight, and fix to the wells. A monoclonal antibody was bound to the humanized aldose reductase. Plate 300 μl Tw
Wash 5 times with een 20-PBS and add HRP of ARMAb25 to each well.
100 μl of a labeled Fab '(described in JP-A-5-317083) in BSA-Tween 20-PBS solution (20 ng / ml) was added and reacted for 1 hour. After washing the plate 5 times with 300 μl Tween 20-PBS,
100 μl of substrate containing ortho-phenylenediamine (1.0 mg /
ml orthophenylenediamine, 0.015% hydrogen peroxide) was added and reacted at room temperature for 20 minutes. Add 10% 4N sulfuric acid to this well.
The reaction was stopped by adding 0 μl and the immunoleader NJ-2000
Was used to measure the absorbance of the reaction product solution at 490 nm. 43
Hybridomas were cloned in a total of 17 antibody-producing positive wells that did not compete with ARmAb25 and those that did compete slightly.

【0024】(6) ヒトアルドース還元酵素に結合するモ
ノクロ−ナル抗体産生ハイブリドーマのクローニング ヒトアルドース還元酵素に結合する抗体活性を持つ合計
17種のハイブリドーマの培養液を、HAT-5%HCF-GIT
培地を入れた24穴平底マイクロプレート (コーニング社
製) に移した。増殖してきたハイブリドーマを、HAT-5
%HCF-GIT 培地を入れた96穴マイクロプレートを用いて
限界希釈法によりクローニングした。クローニング操作
を2 回行い、合計13個のクローンを得た。 (7) ヒトアルドース還元酵素に結合するモノクロ−ナル
抗体の精製 10日前に各々0.5ml のプリスタン (2,6,10,14-テトラメ
チルペンタデカン) を腹腔内に投与されたBalb/cマウス
の腹腔内に前記(6) で得られたヒトアルドース還元酵素
に結合するモノクロ−ナル抗体産生ハイブリドーマ細胞
2〜5 ×106 個を移植した。約1 週間後、マウスの腹腔
より腹水を採取し、その腹水からモノクロ−ナル抗体を
25〜50%飽和硫酸アンモニウム溶液により塩析した粗抗
体を得た。この粗抗体を少量のPBS に溶解し、アフィゲ
ルプロテイン A -MAPSキット (バイオラッド社製) を用
いて分離し、さらに、抗体溶液を PBSに透析した後、4
℃で保存した。腹水1ml あたり1.5 〜10mgの精製抗体を
得た。
(6) Cloning of Monoclonal Antibody-Producing Hybridomas that Bind Human Aldose Reductase A culture solution of a total of 17 hybridomas having antibody activity that binds human aldose reductase was added to HAT-5% HCF-GIT.
The medium was transferred to a 24-well flat bottom microplate (made by Corning) containing the medium. Hybridomas that have grown are HAT-5
Cloning was performed by the limiting dilution method using a 96-well microplate containing% HCF-GIT medium. The cloning operation was performed twice to obtain a total of 13 clones. (7) Purification of monoclonal antibody binding to human aldose reductase Balb / c mice were intraperitoneally administered with 0.5 ml of pristane (2,6,10,14-tetramethylpentadecane) 0.5 ml each 10 days before. Monoclonal antibody-producing hybridoma cells that bind to the human aldose reductase obtained in (6) above
2-5 × 10 6 were transplanted. Approximately 1 week later, ascites was collected from the abdominal cavity of the mouse, and monoclonal antibody was collected from the ascites.
A crude antibody salted out with a 25 to 50% saturated ammonium sulfate solution was obtained. This crude antibody was dissolved in a small amount of PBS, separated using the Affigel Protein A -MAPS kit (Bio-Rad), and the antibody solution was dialyzed against PBS.
Stored at ° C. 1.5 to 10 mg of purified antibody was obtained per 1 ml of ascites.

【0025】実施例3ヒトアルドース還元酵素に結合するモノクロ−ナル抗体
の特性 (1) モノクロ−ナル抗体の免疫グロブリンサブクラスの
同定 精製した抗体の免疫グロブリンのサブクラスをマウスモ
ノクロ−ナル抗体アイソタイピングキット (アマシャム
社製) を用いて同定した。結果を表1に示す。
Example 3 Monoclonal antibody binding to human aldose reductase
Characteristics (1) Monochrome - mice immunoglobulin subclasses of antibodies were identified purified immunoglobulin subclass of the monoclonal antibody monochrome - were identified using monoclonal antibody isotyping kit (Amersham). The results are shown in Table 1.

【0026】[0026]

【表1】 表1 ─────────────────────────── モノクロ−ナル抗体 免疫グロブリンサブクラス ─────────────────────────── ARmAb43 IgG1 ARmAb47 IgG1 ARmAb49 IgG1 ARmAb50 IgG1 ARmAb51 IgG1 ARmAb52 IgG1 ARmAb53 IgG1 ARmAb54 IgG1 ARmAb55 IgG1 ARmAb56 IgG1 ARmAb57 IgG1 ARmAb58 IgG1 ARmAb60 IgG1 ─────────────────────────── 全てのモノクロ−ナル抗体はIgG1であった。[Table 1] Table 1 ─────────────────────────── Monoclonal antibody Immunoglobulin subclass ─────────── ───────────────── ARmAb43 IgG 1 ARmAb47 IgG 1 ARmAb49 IgG 1 ARmAb50 IgG 1 ARmAb51 IgG 1 ARmAb52 IgG 1 ARmAb53 IgG 1 ARmAb54 IgG 1 ARmAb55 IgG 1 ARmAb56 IgG 1 ARmAb57 IgG 1 ARmAb58 IgG 1 ARmAb60 IgG 1 ─────────────────────────── all monochrome - monoclonal antibody was IgG 1.

【0027】(2) ヒトアルドース還元酵素およびヒトア
ルデヒド還元酵素との反応性 ヒトアルドース還元酵素に結合するモノクローナル抗体
とヒトアルドース還元酵素およびヒトアルデヒド還元酵
素との反応性は、ヒトアルドース還元酵素またはヒトア
ルデヒド還元酵素を固定したマイクロプレートを用いて
EIA により調べた。ヒトアルドース還元酵素あるいはヒ
トアルデヒド還元酵素のマイクロプレートへの固定は、
実施例1の(4) と同様な方法により行い、これにBSA-Tw
een20-PBS に溶解したモノクロ−ナル抗体 (0.1 μg/ml
〜 100μg/ml) を100 μl 添加し、室温で1 時間インキ
ュベートした。ヒトアルドース還元酵素あるいはヒトア
ルデヒド還元酵素を固定したマイクロプレートに結合し
た抗体の検出は、ベクタスティンABC キットを用いる実
施例2の(4) と同様な方法で行った。ヒトアルドース還
元酵素を固定したマイクロプレートに 0.1μg/mlのモノ
クロ−ナル抗体を添加した結果ならびにヒトアルデヒド
還元酵素を固定したマイクロプレートに100μg/mlのモ
ノクロ−ナル抗体を添加した結果を表2に示す。
(2) Reactivity with Human Aldose Reductase and Human Aldehyde Reductase The reactivity between the monoclonal antibody that binds to human aldose reductase and human aldose reductase and human aldehyde reductase is as follows. Using a microplate fixed with aldehyde reductase
Checked by EIA. To immobilize human aldose reductase or human aldehyde reductase on a microplate,
The same procedure as in (4) of Example 1 was performed, and BSA-Tw was added to this.
Monoclonal antibody (0.1 μg / ml) in een20-PBS
(~ 100 μg / ml) was added, and the mixture was incubated at room temperature for 1 hour. The detection of the antibody bound to the microplate on which human aldose reductase or human aldehyde reductase was immobilized was carried out by the same method as (4) of Example 2 using Vectastin ABC kit. Table 2 shows the results of adding 0.1 μg / ml of the monoclonal antibody to the microplate on which human aldose reductase was immobilized, and the results of adding 100 μg / ml of the monoclonal antibody to the microplate on which human aldehyde reductase was immobilized. Show.

【0028】[0028]

【表2】 表2 ─────────────────────────────────── 490nmの吸光度 モノクロ−ナル抗体───────────────────────── アルドース還元酵素 アルデヒド還元酵素 (AR) (ALR) ─────────────────────────────────── ARmAb43 0.84 0.25 ARmAb47 2.48 0.00 ARmAb49 1.98 0.00 ARmAb52 2.26 0.14 ARmAb55 1.47 0.00 ARmAb56 2.08 0.00 ──────────────────────────────────── ARmAb47 、ARmAb49 、ARmAb55 およびARmAb56 はヒトア
ルドース還元酵素に結合し、ヒトアルデヒド還元酵素に
は結合しない抗体であった。一方、ARmAb43 、ARmAb52
はわずかながらヒトアルデヒド還元酵素に結合する抗体
であった。
[Table 2] Table 2 ─────────────────────────────────── 490nm Absorbance Monoclonal antibody ── ─────────────────────── Aldose reductase Aldehyde reductase (AR) (ALR) ─────────────── ──────────────────── ARmAb43 0.84 0.25 ARmAb47 2.48 0.00 ARmAb49 1.98 0.00 ARmAb52 2.26 0.14 ARmAb55 1 .47 0.00 ARmAb56 2.08 0.00 ──────────────────────────────────── ARMAb47, ARmAb49, ARmAb55 and ARmAb56 are antibodies that bind human aldose reductase but not human aldehyde reductase. Was Tsu. On the other hand, ARMAb43, ARMAb52
Was a small amount of an antibody that binds to human aldehyde reductase.

【0029】(3) モノクロ−ナル抗体のヒトアルドース
還元酵素に対する結合部位の異同 抗体のヒトアルドース還元酵素に対する結合部位の異同
を決定するため、特開平5-317083記載の各種マウス抗ヒ
トアルドース還元酵素モノクローナル抗体(ARmAb2 、7
、19、21、35および36) を西洋ワサビパーオキシダー
ゼ (以下HRP と記す) で標識し、この標識抗体とARmAb4
3 、47、49、52、55、56の各非標識抗体との競合反応を
行わせ、阻害の有無からそれぞれの抗体のヒトアルドー
ス還元酵素への結合部位の異同を調べた。抗体へのHRP
の標識は、過ヨウ素酸酸化法 (酵素免疫測定法 第3
版、石川栄治他著、医学書院、1987年) に基づき行った
ものを使用した。イムノマイクロプレートの各ウェル
に、ヒトアルドース還元酵素のPBS 溶液 (0.2 μg/ml)
を100 μl 添加し、室温で2 時間吸着させた。このプレ
ートをPBS で3 回洗浄後、各ウェルにBSA-PBS を加え、
ウェルへの蛋白の非特異的吸着が起こらぬようウェルを
完全にブロックした。各ウェルへ、HRP 標識抗体を100
μl と0.2 %BSA を含むTween20-PBS (BSA-Tween20-PBS
と記す) で段階希釈した非標識抗体 (0 〜1mg/ml) を10
0 μl 同時に加え、室温で1 時間抗原抗体反応を行った
後、このプレートをTween 20-PBSで4 回洗浄した。各ウ
ェルへ100 μl のオルトフェニレンジアミン含有基質
(過酸化水素とオルトフェニレンジアミン二塩酸塩と
を、それぞれの濃度が0.015 %および1mg/mLとなるよう
に100mM クエン酸緩衝液(pH5.0 )に溶解した液、以下同
様)を添加し、室温で30分間反応を行わせ、2N硫酸100
μl を添加して反応を停止させた。反応液の490nm の吸
光度を、イムノリーダーNJ-2000 で測定した。結果を表
3に示す。
(3) Differentiation of binding site for human aldose reductase of monoclonal antibody In order to determine the difference of binding site of antibody for human aldose reductase, various mouse anti-human aldose reductases described in JP-A-5-317083 Monoclonal antibody (ARmAb 2, 7
, 19, 21, 35 and 36) were labeled with horseradish peroxidase (hereinafter referred to as HRP), and the labeled antibody and ARMAb4
3, 47, 49, 52, 55, 56 were allowed to undergo a competitive reaction with each unlabeled antibody, and the presence or absence of inhibition was examined to determine the difference in binding site of each antibody to human aldose reductase. HRP to antibody
Is labeled with the periodate oxidation method (enzyme immunoassay method 3
Edition, Eiji Ishikawa et al., Ikusho Shoin, 1987). Human aldose reductase in PBS (0.2 μg / ml) was added to each well of the immunomicroplate.
100 μl of was added and allowed to adsorb at room temperature for 2 hours. After washing the plate 3 times with PBS, add BSA-PBS to each well and
The wells were completely blocked to prevent non-specific protein adsorption to the wells. Add 100 HRP-labeled antibody to each well.
Tween20-PBS containing μl and 0.2% BSA (BSA-Tween20-PBS
The unlabeled antibody (0-1 mg / ml) serially diluted with
After 0 μl was added at the same time and an antigen-antibody reaction was performed at room temperature for 1 hour, the plate was washed 4 times with Tween 20-PBS. Add 100 μl of ortho-phenylenediamine-containing substrate (hydrogen peroxide and ortho-phenylenediamine dihydrochloride) to each well in 100 mM citrate buffer (pH 5.0) so that the respective concentrations are 0.015% and 1 mg / mL. (Dissolved liquid, the same below) is added and allowed to react for 30 minutes at room temperature.
The reaction was stopped by the addition of μl. The absorbance at 490 nm of the reaction solution was measured with ImmunoReader NJ-2000. The results are shown in Table 3.

【0030】[0030]

【表3】 ARmAb55 は他のどの標識抗体とも競合せず、他の5 種類
のモノクロ−ナル抗体はARmAb7、19、21、35とは競合し
ARmAb2、36とは競合しなかった。以上の結果より、ARmA
b43 、ARmAb47 、ARmAb49 、ARmAb52 およびARmAb56 は
それぞれARmAb7、19、21、35のアルドース還元酵素に対
する結合部位と同じ部位または非常に近接した部位に結
合する抗体であり、一方ARmAb55 はARmAb2、7 、19、2
1、35、36とは異なる部位に結合するモノクローナル抗
体であった。
[Table 3] ARmAb55 does not compete with any other labeled antibody, and the other five monoclonal antibodies do not compete with ARmAb7, 19, 21, 35.
It did not compete with ARmAb2, 36. From the above results, ARMA
b43, ARMAb47, ARmAb49, ARmAb52 and ARmAb56 are antibodies that bind to the same or very close sites to the binding sites for ARmAb7, 19, 21, 35 as aldose reductase, respectively, while ARmAb55 is ARmAb2, 7, 19, 2
It was a monoclonal antibody that binds to a site different from 1, 35 and 36.

【0031】(4) 各種動物アルドース還元酵素との反応
性 (各種動物水晶体ホモジネートの調製)本発明で得られた
モノクローナル抗体のヒト以外の動物のアルドース還元
酵素に対する反応性を検討するために、各種動物水晶体
よりアルドース還元酵素を含むホモジネートを調製し
た。ウシ、イヌ、モルモット、ラット、ウサギの眼球よ
り水晶体を摘出した。これらをそれぞれ3 〜5 容量の0.
01M リン酸緩衝液(pH 7.0)に浸し、4 ℃でホモジネート
し、15,000×g 、30分遠心した。 (アルドース還元酵素の精製)上記ホモジネートを10mMリ
ン酸緩衝液(pH 7.0)で希釈した後、Matrix gel orange
A アフィニティーカラムにかけ、0.6M NaClを含む上記
緩衝液にて溶出画分を得た。AR活性画分を限外濾過
(セントリカットU−10、クラボウ社)にて濃縮し
た。得られた試料について活性測定、ウエスタンブロッ
ティングを行った。 (アルドース還元酵素活性測定)アルドース還元酵素の活
性測定は、(Nishimura C., Yamaoka T., Mizutani M.,
Yamashita K., Akera T., Tanimoto T., Biochim. Biop
hys. Acta 、第1078巻、171-178 頁(1991 年))に準じて
行った。すなわち、0.1Mリン酸緩衝液(pH 6.2)、150 μ
M NADPH 、10mM DL-キシロースと試料を含む1 mlの反応
液を、NADPH を添加した時点から波長320nm での吸光度
の減少を3 分間測定し、アルドース還元酵素により酸化
されたNADPH 量を求めた。吸光度の測定は、日立Spectr
ophotometer U-2000を用い、25℃で行った。ブランクと
して、試料を添加しない際の非特異的な吸光度の減少を
測定し以下の式1から試料中のアルドース還元酵素の活
性を測定した。
(4) Reactivity with various animal aldose reductases (preparation of various animal lens homogenates) In order to examine the reactivity of the monoclonal antibody obtained in the present invention with aldose reductases of animals other than humans, A homogenate containing aldose reductase was prepared from an animal lens. The lens was extracted from the eyeballs of cattle, dogs, guinea pigs, rats, and rabbits. Each of these has 3-5 volumes of 0.
It was immersed in 01M phosphate buffer (pH 7.0), homogenized at 4 ° C., and centrifuged at 15,000 × g for 30 minutes. (Purification of aldose reductase) After diluting the homogenate with 10 mM phosphate buffer (pH 7.0), Matrix gel orange
An A affinity column was applied and an elution fraction was obtained with the above buffer containing 0.6 M NaCl. The AR active fraction was concentrated by ultrafiltration (Centricut U-10, Kurabo Industries). The obtained sample was subjected to activity measurement and Western blotting. (Measurement of aldose reductase activity) The activity of aldose reductase is measured by (Nishimura C., Yamaoka T., Mizutani M.,
Yamashita K., Akera T., Tanimoto T., Biochim. Biop
hys. Acta, 1078, 171-178 (1991)). That is, 0.1 M phosphate buffer (pH 6.2), 150 μ
A 1 ml reaction solution containing M NADPH, 10 mM DL-xylose and a sample was measured for a decrease in absorbance at a wavelength of 320 nm for 3 minutes from the time when NADPH was added, and the amount of NADPH oxidized by aldose reductase was determined. The absorbance is measured by Hitachi Spectr
It was carried out at 25 ° C. using an ophotometer U-2000. As a blank, the nonspecific decrease in absorbance when no sample was added was measured, and the activity of aldose reductase in the sample was measured from the following formula 1.

【0032】[0032]

【式1】酵素活性(unit/mL)=(△A Tset/min−△A B
lank/min)×1.0/ε/試料液量( μl) △A Tset/min :試料添加時の1 分間あたりの吸光度の
減少 △A Blank/min:ブランクの1 分間あたりの吸光度の減
少 ε:NADPH の340nm におけるマイクロモル吸光係数( ε
=6.22μmol -1×cm-1) このようにして前記調製した各種動物水晶体ホモジネー
ト、および精製アルドース還元酵素中のアルドース還元
酵素活性を測定した結果、いずれのホモジネート、精製
物もアルドース還元酵素活性を有していた。 (ウエスタンブロッティング)上記精製アルドース還元酵
素を対象として、10μg /mlの本発明モノクローナル抗
体を用いてウエスタンブロット法による解析を行った。
その結果を表4に示した。
[Formula 1] Enzyme activity (unit / mL) = (△ AT set / min- △ AB
lank / min) × 1.0 / ε / sample solution volume (μl) △ A Tset / min: Decrease in absorbance per minute when adding sample △ A Blank / min: Decrease in absorbance per minute in blank ε: NADPH Micromolar extinction coefficient (ε
= 6.22 μmol -1 × cm -1 ) As a result of measuring the aldose reductase activity in the various animal lens homogenates thus prepared and the purified aldose reductase, any homogenate or purified product showed aldose reductase activity. Had. (Western blotting) The purified aldose reductase was subjected to Western blotting analysis using 10 μg / ml of the monoclonal antibody of the present invention.
The results are shown in Table 4.

【0033】[0033]

【表4】 +:ウエスタンブロッティングでそれぞれのアルドース還元酵素と同じ位 置に反応物を認めたもの −:ウエスタンブロッティングでそれぞれのアルドース還元酵素と同じ位 置に反応物を認めなかったもの ARmAb55 はヒト以外の他のどのアルドース還元酵素とも
結合せず、ヒトのアルドース還元酵素特異的なモノクロ
ーナル抗体であった。ARmAb43 、ARmAb47 、ARmAb49 、
ARmAb52 およびARmAb56 はそれぞれ他の動物のアルドー
ス還元酵素とも結合するモノクローナル抗体であった。
ARmAb55 はハイブリドーマ AR55 によって産生される。
このハイブリドーマ AR55 は平成6年7月4日付でFE
RM P−14418として工業技術院生物工学技術研
究所 特許微生物寄託センターに寄託してある。また、
いずれのホモジネートを試料として同様にウエスタンブ
ロッティングを行った場合でもアルドース還元酵素と同
じ位置以外に抗体との反応物は認められなかった。
[Table 4] +: Western blotting reaction product was observed at the same position as each aldose reductase −: Western blotting reaction product was not found at the same position as each aldose reductase ARmAb55 was not human It was a human aldose reductase-specific monoclonal antibody that did not bind to any aldose reductase. ARmAb43, ARmAb47, ARmAb49,
ARmAb52 and ARmAb56 were monoclonal antibodies that also bind to aldose reductase from other animals.
ARmAb55 is produced by the hybridoma AR55.
This hybridoma AR55 is FE on July 4, 1994.
It has been deposited as RM P-14418 at the Patent Microorganism Depositary Center, Institute of Biotechnology, Institute of Industrial Technology. Also,
When any of the homogenates was used as a sample and similarly subjected to Western blotting, no reaction product with the antibody was observed except at the same position as the aldose reductase.

【0034】実施例4ヒトアルドース還元酵素に結合するポリクローナル抗体
およびヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノ
クローナル抗体を用いたヒトアルドース還元酵素の測定
(ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体を用い
るサンドイッチ法に基づくEIA) 実施例3の(4) の結果より、ARmAb55 を一次抗体または
二次抗体として用いることにより、ヒトアルドース還元
酵素を特異的に測定することが可能である。 (HRP標識Fab'の調製)ARmAb55 を2mg/ml含むPBS 溶液10m
lに1Mクエン酸緩衝液(pH3.2 )を添加して、pH4.0 に調
整した。これに、250 μg のブタ胃粘膜ペプシン (シグ
マ社製) を添加し、37℃で12時間インキュベートして抗
体を消化させた。これに3Mトリス塩酸緩衝液 (pH8.6)を
加えてpH7.0 とし、2ml に濃縮した後、この濃縮液を0.
1Mリン酸緩衝液 (pH6.0)で平衡化したスーパーローズ12
HR16/50 カラム (ファルマシア社製) に通し、F(ab')2
画分を得た。回収されたF(ab')2 の量は5.2mg であっ
た。F(ab')2 画分を2mL に濃縮して、これに 2- メルカ
プトエチルアミンおよびEDTAをそれぞれ10mMおよび0.5m
M となるように添加し、37℃で90分間インキュベートし
てF(ab')2 を還元した。これを5mM EDTAを含有する0.1M
リン酸緩衝液 (pH 6.0) で平衡化したスーパーローズ12
HR 16/50カラムに通して、Fab'画分を得たところ、4.5m
g のFab'が回収された。
Example 4 Polyclonal antibody binding to human aldose reductase
And mono that specifically bind to human aldose reductase
Measurement of human aldose reductase using clonal antibody
(Using polyclonal and monoclonal antibodies
( EIA based on the sandwich method ) From the result of (3 ) in Example 3, it is possible to specifically measure human aldose reductase by using ARMAb55 as the primary antibody or the secondary antibody. (Preparation of HRP labeled Fab ') 10m PBS solution containing 2mg / ml of ARMAb55
1 M citrate buffer (pH 3.2) was added to 1 to adjust the pH to 4.0. To this, 250 µg of porcine gastric mucosal pepsin (manufactured by Sigma) was added and incubated at 37 ° C for 12 hours to digest the antibody. 3M Tris-HCl buffer (pH 8.6) was added to adjust the pH to 7.0, and after concentrating to 2 ml, the concentrate was adjusted to 0.
Superrose 12 equilibrated with 1M phosphate buffer (pH 6.0)
Pass it through an HR16 / 50 column (Pharmacia) to obtain F (ab ') 2
Fractions were obtained. The amount of F (ab ') 2 recovered was 5.2 mg. The F (ab ') 2 fraction was concentrated to 2 mL, to which 2-mercaptoethylamine and EDTA were added at 10 mM and 0.5 mM, respectively.
F (ab ′) 2 was reduced by adding M so that it would be M and incubating at 37 ° C. for 90 minutes. Add this to 0.1M containing 5mM EDTA
Superrose 12 equilibrated with phosphate buffer (pH 6.0)
The Fab 'fraction was obtained by passing it through an HR 16/50 column.
Fab 'of g was recovered.

【0035】HRP へのマレイミド基の導入は、10mgのHR
P を0.1Mリン酸緩衝液 (pH7.0 ) に溶解した後、これに
10mgの N-(ε- マレイミドカプロイルオキシ)-スクシン
イミド(ジーベンケミカル社製)を1ml のN,N-ジメチル
ホルムアミドに溶解した溶液150 μL を添加して、30℃
で60分間反応させることにより行った。この反応液を0.
1Mリン酸緩衝液 (pH 6.0) で平衡化したPD10カラム (フ
ァルマシア社製) に通して、マレイミド基を導入したHR
P 画分を得た。前記によって調製された濃度1.5mg/mlの
Fab'溶液3ml に、濃度が3.6mg/mlのマレイミド基を導入
したHRP を1.2ml 加えて、30℃で60分間反応させた。こ
の反応液を1.5 mlに濃縮し、この濃縮液を0.1Mリン酸緩
衝液 (pH6.5 ) で平衡化したスーパーローズ12HR 16/50
カラムに通して、10mlのHRP 標識Fab'画分を得た。なお
調製されたHRP 標識Fab'においてHRP とFab'との結合モ
ル比はほぼ1:1であった。
Introduction of the maleimide group into the HRP was carried out with 10 mg HR
After dissolving P in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0),
Add 150 μL of a solution of 10 mg of N- (ε-maleimidocaproyloxy) -succinimide (manufactured by Siben Chemical Co.) in 1 ml of N, N-dimethylformamide at 30 ° C.
It was carried out by reacting for 60 minutes. Add this reaction mixture to 0.
HR with maleimide group introduced was passed through a PD10 column (Pharmacia) equilibrated with 1M phosphate buffer (pH 6.0).
P fraction was obtained. A concentration of 1.5 mg / ml prepared by the above
1.2 ml of maleimide group-introduced HRP having a concentration of 3.6 mg / ml was added to 3 ml of Fab 'solution and reacted at 30 ° C. for 60 minutes. This reaction solution was concentrated to 1.5 ml, and this concentrate was equilibrated with 0.1 M phosphate buffer (pH 6.5) Super Rose 12HR 16/50
After passing through the column, 10 ml of HRP-labeled Fab 'fraction was obtained. In the prepared HRP-labeled Fab ', the binding molar ratio between HRP and Fab' was about 1: 1.

【0036】(a) 二段法サンドイッチEIA (以下ポリ−
モノ二段法と記す) 96穴のイムノマイクロプレート (ヌンク社製) の各ウェ
ルに50mM炭酸水素ナトリウム緩衝液 (pH 9.6) で希釈し
た5 μg/mlのポリクローナル抗体を150 μl 添加し25℃
で一晩静置し、抗体を固相化した。次に、プレートを30
0 μl のTween20-PBSで5 回洗浄後、BSA-Tween20-PBS
を各ウェルに300 μL ずつ添加し、室温で1 時間ブロッ
キングした。次にウェルにBSA-Tween20-PBS で希釈した
ヒトアルドース還元酵素を100 μl 加え室温で90分間反
応させた後、このプレートを300μl のTween20-PBS で5
回洗浄した。次に、各ウェルに、上記の ARmAb55のHRP
標識Fab'のBSA-Tween20-PBS 溶液 (150ng/ml) を100 μ
l 加え、30分間反応させた。このプレートを300 μl の
Tween 20-PBSで5 回洗浄した後、100μl のオルトフェ
ニレンジアミン含有基質 (0.5mg/ml オルトフェニレン
ジアミン、0.0075%過酸化水素) を加え室温で30分間反
応させた。このウェルに2N硫酸を100 μl加えて反応を
停止させ、イムノリーダー NJ-2000を用いて、反応生成
液の 490nmの吸光度を測定した。結果を表5に示す。
(A) Two-stage sandwich EIA (hereinafter poly-
Mono-two-step method) Add 150 μl of 5 μg / ml polyclonal antibody diluted with 50 mM sodium bicarbonate buffer (pH 9.6) to each well of a 96-well immunomicroplate (Nunc) at 25 ° C.
The antibody was solid-phased by allowing it to stand overnight at. Then plate 30
After washing 5 times with 0 μl Tween20-PBS, BSA-Tween20-PBS
Was added to each well in an amount of 300 μL and blocked at room temperature for 1 hour. Next, add 100 μl of human aldose reductase diluted with BSA-Tween20-PBS to the wells and incubate at room temperature for 90 minutes, then plate this plate with 300 μl of Tween20-PBS.
Washed twice. Next, add HRP of ARmAb55 above to each well.
100 μl of labeled Fab 'in BSA-Tween20-PBS solution (150 ng / ml)
l, and reacted for 30 minutes. Add 300 μl of this plate
After washing 5 times with Tween 20-PBS, 100 μl of a substrate containing ortho-phenylenediamine (0.5 mg / ml ortho-phenylenediamine, 0.0075% hydrogen peroxide) was added and reacted at room temperature for 30 minutes. The reaction was stopped by adding 100 μl of 2N sulfuric acid to this well, and the absorbance at 490 nm of the reaction product solution was measured using ImmunoReader NJ-2000. The results are shown in Table 5.

【0037】[0037]

【表5】 ヒトアルドース還元酵素濃度と吸光度は直線性を示し
た。 (b) 一段法サンドイッチEIA (以下ポリ−モノ一段法と
記す) ポリクローナル抗体を50mM炭酸緩衝液 (pH9.5)で5 μg/
mlに調製し、これをイムノマイクロプレートの各ウェル
に150 μl ずつ添加し、室温で一晩かけて吸着させた
後、このイムノマイクロプレートをPBS で5 回洗浄し、
各ウェルにBSA-PBS を満たして室温で、1 時間ブロッキ
ングし抗体固定プレートを作成した。前記のようにして
調製されたARmAb55のHRP 標識Fab'を150ng/mlになるよ
うにBSA-Tween20-PBS で希釈し、これを各ウェルに50μ
l 添加し、さらに各ウェルにBSA-Tween20-PBS で段階希
釈したヒトアルドース還元酵素溶液を50μl 添加して、
室温で90分間反応させ、次いでTween20-PBS で5 回洗浄
した。各ウェルに100 μl オルトフェニレンジアミン含
有基質 (0.5 mg/ml オルトフェニレンジアミン、0.0075
%過酸化水素) を加え、室温で反応を30分間行った後、
このプレートに2N硫酸を100 μl 加え反応を停止させ、
イムノリーダーNJ-2000 を用いて、反応生成液の490nm
の吸光度を測定した。ヒトアルドース還元酵素濃度と49
0nm の吸光度の関係を表6に示す。
[Table 5] The human aldose reductase concentration and absorbance showed linearity. (b) One-step method sandwich EIA (hereinafter referred to as poly-mono one-step method) Polyclonal antibody was added at 5 µg / in 50 mM carbonate buffer (pH 9.5).
After adding 150 μl to each well of the immunomicroplate and adsorbing it overnight at room temperature, wash the immunomicroplate 5 times with PBS.
Each well was filled with BSA-PBS and blocked at room temperature for 1 hour to prepare an antibody-immobilized plate. The HRP-labeled Fab 'of ARmAb55 prepared as described above was diluted with BSA-Tween20-PBS to 150 ng / ml, and 50 μl was added to each well.
l, and 50 μl of human aldose reductase solution serially diluted with BSA-Tween20-PBS to each well,
The mixture was reacted at room temperature for 90 minutes, and then washed 5 times with Tween20-PBS. 100 μl orthophenylenediamine-containing substrate (0.5 mg / ml orthophenylenediamine, 0.0075
% Hydrogen peroxide) and allow the reaction to proceed for 30 minutes at room temperature, then
Add 100 μl of 2N sulfuric acid to the plate to stop the reaction,
490 nm of the reaction product solution using the ImmunoReader NJ-2000
The absorbance of was measured. Human aldose reductase concentration and 49
Table 6 shows the relationship of the absorbance at 0 nm.

【0038】[0038]

【表6】 ヒトアルドース還元酵素濃度と吸光度は直線性を示し
た。
[Table 6] The human aldose reductase concentration and absorbance showed linearity.

【0039】実施例5ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロ−
ナル抗体を用いたヒトアルドース還元酵素の測定 (サン
ドイッチ法に基づくEIA ) 実施例3の(4) の結果よりARmAb55 を一次抗体 (固相へ
結合する抗体) あるいは二次抗体 (酵素標識抗体) に用
いることによってヒトアルドース還元酵素を特異的に測
定することが可能であるが、モノクロ−ナル抗体を一次
抗体と二次抗体両方に用いる場合は同じ抗体同士、また
は抗原への結合部位が類似している抗体同士の組み合わ
せでは実質的に測定不能である。実施例3の(3) の抗体
の競合阻害実験の結果より、ARmAb55 と組み合わせ可能
なモノクロ−ナル抗体が判定できる。ここでは、ARmAb5
5 とARmAb25 を使用した例を示す。 (a) 二段法サンドイッチEIA (以下モノ−モノ二段法と
記す) ARmAb55 をPBS で5 μg/mlに調製し、イムノマイクロプ
レートの各ウェルに150 μl ずつ添加して、室温で一晩
吸着させた後、PBS で5 回洗浄し、このウェルを非特異
的吸着が起こらないように、BSA-PBS で室温で1 時間ブ
ロッキングした。次にこのウェルにBSA-Tween 20-PBSで
希釈したヒトアルドース還元酵素100 μl を加え、室温
で90分間反応させ、このプレートをTween 20-PBSで5 回
洗浄した。この後、各ウェルに、実施例4と同様にして
HRP を標識したARmAb25 をBSA-Tween 20-PBSで150 ng/m
l になるように希釈し、これを各ウェルに100 μl 加え
室温で30分間反応させ、次いで BSA-Tween 20-PBS で5
回洗浄した。これに100 μl のオルトフェニレンジアミ
ン含有基質 ( 0.5 mg/mlオルトフェニレンジアミン、0.
0075%過酸化水素) を加え室温で30分間反応させた。こ
のウェルに 2N 硫酸を100 μl 加えて反応を停止させ、
イムノリーダー NJ-2000を用いて、反応生成液の490nm
の吸光度を測定した。結果を表7に示す。
Example 5 Monochrome binding specifically to human aldose reductase
Of human aldose reductase using a null antibody
EIA based on Deutsch method) Based on the result of (4) in Example 3, human aldose reductase was specifically measured by using ARMAb55 as a primary antibody (an antibody that binds to a solid phase) or a secondary antibody (an enzyme-labeled antibody). However, when a monoclonal antibody is used as both the primary antibody and the secondary antibody, it cannot be substantially measured with the same antibody or a combination of antibodies having similar antigen binding sites. is there. From the results of the antibody competitive inhibition experiment of (3) in Example 3, a monoclonal antibody that can be combined with ARMAb55 can be determined. Here, ARMAb5
An example using 5 and ARMAb25 is shown. (a) Two-step sandwich EIA (hereinafter referred to as mono-mono two-step method) Prepare ARmAb55 at 5 μg / ml with PBS, add 150 μl to each well of the immunomicroplate, and adsorb overnight at room temperature. After that, the wells were washed 5 times with PBS, and the wells were blocked with BSA-PBS at room temperature for 1 hour so that non-specific adsorption did not occur. Next, 100 μl of human aldose reductase diluted with BSA-Tween 20-PBS was added to this well, reacted at room temperature for 90 minutes, and this plate was washed 5 times with Tween 20-PBS. Then, in each well, in the same manner as in Example 4,
HRP-labeled ARMAb25 with BSA-Tween 20-PBS at 150 ng / m
Dilute to 100 μl, add 100 μl to each well and incubate for 30 minutes at room temperature. Then, add 5 μl of BSA-Tween 20-PBS.
Washed twice. To this, 100 μl of substrate containing ortho-phenylenediamine (0.5 mg / ml ortho-phenylenediamine, 0.
(0075% hydrogen peroxide) was added and reacted at room temperature for 30 minutes. Stop the reaction by adding 100 μl of 2N sulfuric acid to this well,
490 nm of reaction product solution using ImmunoReader NJ-2000
The absorbance of was measured. The results are shown in Table 7.

【0040】[0040]

【表7】 ヒトアルドース還元酵素濃度と吸光度は直線性を示し
た。 (b) 一段法サンドイッチEIA (以下モノ−モノ一段法と
記す) ARmAb55 を50mM炭酸緩衝液 (pH9.5 ) で5 μg/mlに調製
し、これをイムノマイクロプレートの各ウェルに250 μ
l ずつ添加し、室温で一晩吸着させた後、このイムノマ
イクロプレートをPBS で5 回洗浄し、各ウェルにBSA-PB
S を満たして室温で、1 時間ブロッキングし抗体固定プ
レートを作成した。前記のようにして調製されたARmAb2
5の HRP標識Fab'を150ng/mlになるようにBSA-Tween20-P
BS で希釈しこれを各ウェルに100 μl 添加し、さらに
各ウェルにBSA-Tween20-PBS 段階希釈したヒトアルドー
ス還元酵素溶液を100 μl 添加して、室温で90 分間放
置し、次いでTween20-PBSで5 回洗浄した。各ウェルに2
00 μl オルトフェニレンジアミン含有基質 (0.5 mg/ml
オルトフェニレンジアミン、0.0075%過酸化水素) を
加え、室温で反応を30分間行った後、このプレートに4N
硫酸を100 μl 加え反応を停止させ、イムノリーダー
NJ-2000 を用いて、反応生成液の490nm の吸光度を測定
した。ヒトアルドース還元酵素濃度と490nm の吸光度の
関係を表8に示す。
[Table 7] The human aldose reductase concentration and absorbance showed linearity. (b) One-step sandwich EIA (hereinafter referred to as mono-mono one-step method) ARmAb55 was prepared to 50 μg / ml with 50 mM carbonate buffer (pH 9.5) and 250 μg was added to each well of the immunomicroplate.
After adding l of each and adsorbing overnight at room temperature, wash this immunomicroplate 5 times with PBS, and add BSA-PB to each well.
The plate was filled with S and blocked at room temperature for 1 hour to prepare an antibody-immobilized plate. ARMAb2 prepared as described above
5 HRP-labeled Fab 'at 150 ng / ml in BSA-Tween20-P
Dilute with BS and add 100 μl to each well.Add 100 μl of human aldose reductase solution diluted with BSA-Tween20-PBS to each well and leave it at room temperature for 90 minutes, then with Tween20-PBS. Washed 5 times. 2 in each well
00 μl Ortho-phenylenediamine-containing substrate (0.5 mg / ml
Ortho-phenylenediamine, 0.0075% hydrogen peroxide) was added and the reaction was carried out at room temperature for 30 minutes.
Add 100 μl of sulfuric acid to stop the reaction, and
The absorbance of the reaction product solution at 490 nm was measured using NJ-2000. Table 8 shows the relationship between the concentration of human aldose reductase and the absorbance at 490 nm.

【0041】[0041]

【表8】 ヒトアルドース還元酵素濃度と吸光度は直線性を示し
た。 実施例6ヒトアルドース還元酵素に結合するモノクローナル抗体
およびポリクローナル抗体を用いたヒトアルドース還元
酵素の測定 (モノクローナル抗体およびポリクローナル
抗体を用いるサンドイッチ法に基づくEIA) (HRP 標識Fab'の調製)ウサギ抗ヒトアルドース還元酵素
ポリクローナル抗体を2mg/ml含む酢酸ナトリウム緩衝液
(pH4.5)10ml に、250 μg のブタ胃粘膜ペプシン (シグ
マ社製) を添加し、37℃で20時間インキュベートして抗
体を消化させた。これに3Mトリス塩酸緩衝液 (pH8.6)を
加えてpH7.0 とし、2mL に濃縮した後、この濃縮液を0.
1Mリン酸緩衝液 (pH7.0)で平衡化したスーパーローズ12
HR16/50 カラム( ファルマシア社製) に通し、F(ab')2
画分を得た。回収されたF(ab')2 の量は 8.2mg であっ
た。F(ab')2 画分を2ml に濃縮して、これに2 −メルカ
プトエチルアミンおよびEDTAをそれぞれ10mMおよび0.1m
M となるように添加し、37℃で90分間インキュベートし
てF(ab')2 を還元した。これを5mM EDTAを含有する0.1M
リン酸緩衝液 (pH6.0) で平衡化したスーパーローズ12H
R 16/50カラムに通して、Fab'画分を得たところ、6.5mg
のFab'が回収された。HRP へのマレイミド基の導入
は、10mgのHRP を0.1Mリン酸緩衝液 (pH7.0 ) に溶解し
た後、これに10mgの N-(ε- マレイミドカプロイルオキ
シ)-スクシンイミド(ジーベンケミカル社製)を1ml の
N,N -ジメチルホルムアミドに溶解した溶液150 μl を
添加して、30℃で60分間反応させることにより行った。
この反応生成液を0.1Mリン酸緩衝液 (pH 6.0) で平衡化
してPD10カラム (ファルマシア社製) に通して、マレイ
ミド基を導入したHRP 画分を得た。前記によって調製さ
れた濃度2.0mg/mlのFab'溶液3.2ml に、濃度が4.0mg/ml
のマレイミド基を導入したHRP を1.3ml 加えて、30℃で
60分間反応させた。この反応生成液を1.5 mlに濃縮し、
この濃縮液を0.1Mリン酸緩衝液 (pH6.5 )で平衡化した
スーパーローズ12HR 16/50カラムに通して、10mlのHRP
標識Fab'画分を得た。なお調製されたHRP 標識Fab'にお
いてHRP とFab'との結合モル比はほぼ1:1であった。 (a) 二段法サンドイッチEIA (以下モノ−ポリ二段法と
記す) 96穴のイムノマイクロプレート (ヌンク社製) の各ウェ
ルに50mM 炭酸水素ナトリウム緩衝液 (pH 9.6) で希釈
した5 μg/mlのARmAb55 を150 μl 入れ25℃で一晩静置
し、抗体を固相化した。次に、プレートを300 μl のTw
een 20-PBSで5回洗浄後、BSA-Tween 20-PBSを各ウェル
に300 μl ずつ添加し、室温で1 時間ブロッキングし
た。次にウェルにBSA-Tween 20-PBSで希釈したヒトアル
ドース還元酵素を100 μl 加え室温で90分間反応させた
後、このプレートを300 μl のTween 20-PBSで5 回洗浄
した。次に、各ウェルに、上記のウサギ抗ヒトアルドー
ス還元酵素ポリクローナル抗体のHRP 標識Fab'のBSA-Tw
een 20-PBS溶液 (150ng/ml)を100 μl 加え、30分間反
応させた。このプレートを300 μl のTween 20-PBSで5
回洗浄した後、100 μl のオルトフェニレンジアミン含
有基質 (0.5 mg/ml オルトフェニレンジアミン、0.0075
%過酸化水素) を加え室温で30分間反応させた。このウ
ェルに2N硫酸を100 μl 加えて反応を停止させ、イムノ
リーダー NJ-2000を用いて、反応生成液の 490nmの吸光
度を測定した。結果を表9に示す。
[Table 8] The human aldose reductase concentration and absorbance showed linearity. Example 6 Monoclonal antibody that binds to human aldose reductase
And aldose reduction using polyclonal antibody
Enzyme measurement (monoclonal antibody and polyclonal
EIA based on sandwich method using antibody) (Preparation of HRP-labeled Fab ') Rabbit anti-human aldose reductase polyclonal antibody sodium acetate buffer containing 2 mg / ml
250 μg of porcine gastric mucosal pepsin (manufactured by Sigma) was added to 10 ml of (pH 4.5), and the antibody was digested by incubating at 37 ° C. for 20 hours. 3M Tris-HCl buffer (pH 8.6) was added to adjust the pH to 7.0, and after concentrating to 2 mL, this concentrated solution was adjusted to 0.
Superrose 12 equilibrated with 1M phosphate buffer (pH 7.0)
Pass through an HR16 / 50 column (Pharmacia) to remove F (ab ') 2
Fractions were obtained. The amount of F (ab ') 2 recovered was 8.2 mg. The F (ab ') 2 fraction was concentrated to 2 ml and added with 2-mercaptoethylamine and EDTA at 10 mM and 0.1 mM, respectively.
F (ab ′) 2 was reduced by adding M so that it would be M and incubating at 37 ° C. for 90 minutes. Add this to 0.1M containing 5mM EDTA
Superrose 12H equilibrated with phosphate buffer (pH 6.0)
Fab 'fraction was obtained by passing through R 16/50 column, 6.5 mg
Fab 'was recovered. To introduce a maleimide group into HRP, 10 mg of HRP was dissolved in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0), and then 10 mg of N- (ε-maleimidocaproyloxy) -succinimide (manufactured by Siben Chemical Co. ) 1 ml
It was carried out by adding 150 μl of a solution dissolved in N, N-dimethylformamide and reacting at 30 ° C. for 60 minutes.
This reaction product solution was equilibrated with 0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) and passed through a PD10 column (Pharmacia) to obtain a maleimide group-introduced HRP fraction. The concentration of 4.0 mg / ml was added to 3.2 ml of the Fab 'solution of 2.0 mg / ml prepared above.
Add 1.3 ml of HRP containing maleimide group of
The reaction was performed for 60 minutes. The reaction product was concentrated to 1.5 ml,
Pass this concentrate through a Superrose 12HR 16/50 column equilibrated with 0.1M phosphate buffer (pH 6.5) to obtain 10 ml of HRP.
A labeled Fab 'fraction was obtained. In the prepared HRP-labeled Fab ', the binding molar ratio between HRP and Fab' was about 1: 1. (a) Two-step method sandwich EIA (hereinafter referred to as mono-poly two-step method) 5 μg / diluted with 50 mM sodium hydrogen carbonate buffer (pH 9.6) into each well of a 96-well immunomicroplate (Nunc) 150 μl of ml of ARMAb55 was added and left at 25 ° C. overnight to immobilize the antibody. Then plate the plate with 300 μl Tw
After washing 5 times with een 20-PBS, 300 μl of BSA-Tween 20-PBS was added to each well and blocking was performed at room temperature for 1 hour. Next, 100 μl of human aldose reductase diluted with BSA-Tween 20-PBS was added to the wells, reacted for 90 minutes at room temperature, and then this plate was washed 5 times with 300 μl of Tween 20-PBS. Then, in each well, BSA-Tw of HRP-labeled Fab 'of the rabbit anti-human aldose reductase polyclonal antibody described above was added.
100 μl of een 20-PBS solution (150 ng / ml) was added and reacted for 30 minutes. Plate the plate with 300 μl Tween 20-PBS.
After washing twice, 100 μl of substrate containing ortho-phenylenediamine (0.5 mg / ml ortho-phenylenediamine, 0.0075
% Hydrogen peroxide) was added and reacted at room temperature for 30 minutes. The reaction was stopped by adding 100 μl of 2N sulfuric acid to this well, and the absorbance at 490 nm of the reaction product solution was measured using ImmunoReader NJ-2000. The results are shown in Table 9.

【0042】[0042]

【表9】 ヒトアルドース還元酵素濃度と吸光度は直線性を示し
た。 (b) 一段法サンドイッチEIA (以下モノ−ポリ一段法と
記す) ARmAb55 を50mM炭酸緩衝液 (pH9.5 ) で5 μg/mlに調製
し、これをイムノマイクロプレートの各ウェルに150 μ
l ずつ添加し、室温で一晩かけて吸着させた後、このイ
ムノマイクロプレートをPBS で5 回洗浄し、各ウェルに
BSA-PBS を満たして室温で、1 時間ブロッキングし抗体
固定プレートを作成した。前記のようにして調製された
ウサギ抗ヒトアルドース還元酵素ポリクローナル抗体の
HRP 標識Fab'を150ng/mlになるようにBSA-Tween20-PBS
で希釈し、これを各ウェルに50μl 添加し、さらに各ウ
ェルにBSA-Tween20-PBS で段階希釈したヒトアルドース
還元酵素溶液を50μl 添加して、室温で90分間放置し、
次いでTween20-PBS で5 回洗浄した。各ウェルに100 μ
l オルトフェニレンジアミン含有基質 (0.5 mg/mlオル
トフェニレンジアミン、0.0075%過酸化水素) を加え、
室温で反応を30分間行った後、このプレートに2N硫酸を
100 μl 加え反応を停止させ、イムノリーダーNJ-2000
を用いて、反応生成液の490nm の吸光度を測定した。ヒ
トアルドース還元酵素濃度と490nm の吸光度の関係を表
10に示す。
[Table 9] The human aldose reductase concentration and absorbance showed linearity. (b) One-step sandwich EIA (hereinafter referred to as mono-poly one-step method) ARmAb55 was prepared at 5 μg / ml with 50 mM carbonate buffer (pH 9.5), and 150 μm was added to each well of the immunomicroplate.
After adding l of each and adsorbing overnight at room temperature, wash this immunomicroplate 5 times with PBS and add to each well.
The plate was filled with BSA-PBS and blocked at room temperature for 1 hour to prepare an antibody-immobilized plate. Rabbit anti-human aldose reductase polyclonal antibody prepared as described above
HRP-labeled Fab 'at 150ng / ml in BSA-Tween20-PBS
50 μl of this solution was added to each well, and 50 μl of human aldose reductase solution serially diluted with BSA-Tween20-PBS was added to each well and left at room temperature for 90 minutes.
Then, the plate was washed 5 times with Tween20-PBS. 100 μ in each well
l Add orthophenylenediamine-containing substrate (0.5 mg / ml orthophenylenediamine, 0.0075% hydrogen peroxide),
After performing the reaction for 30 minutes at room temperature, add 2N sulfuric acid to the plate.
Add 100 μl to stop the reaction and immunoreader NJ-2000
Was used to measure the absorbance of the reaction product solution at 490 nm. Table 10 shows the relationship between the concentration of human aldose reductase and the absorbance at 490 nm.

【0043】[0043]

【表10】 ヒトアルドース還元酵素濃度と吸光度は直線性を示し
た。 実施例7ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロー
ナル抗体を用いたヒト赤血球中アルドース還元酵素の測
健康な23-58 才の男子5 名、女子5 名の静脈よりヘパリ
ン採血した全血0.5 〜1.0 mlに等量のACD 液 (acid-cit
rate-dextrose solution;23mMクエン酸、44.9mMクエン
酸ナトリウム、81.7mMデキストロース) を加え、4 ℃で
保存したものを検体として用いた。それぞれの検体に、
10mlの氷冷PBS を加え混和後、1,500 ×g で4 ℃、10分
間遠心して上清を除き、さらに10mlの氷冷PBS を加え同
じ条件で遠心分離する操作を2 回繰り返した後、沈澱物
(赤血球) に 20mM リン酸緩衝液(pH7.0 ) を全血と同
じ容量になるまで加え -80℃で凍結保存した。次に凍結
赤血球サンプルを融解し、ドライアイスアセトンで再凍
結させる操作を2 回行い、赤血球を完全に溶解させた。
その後遠心分離を行い溶血液を得たのち、実施例5(a)
及び(b) の酵素免疫測定法により溶血中に含まれるアル
ドース還元酵素量を測定した。各溶血液は BSA-Tween20
-PBSで200 倍希釈して測定した。溶血液中に含まれるヘ
モグロビン量は、ラウリル硫酸ナトリウム法 (ヘモグロ
ビン−テストワコーII) により測定した。その結果を表
11に示す。
[Table 10] The human aldose reductase concentration and absorbance showed linearity. Example 7 Monochrome that specifically binds to human aldose reductase
Of aldose reductase in human erythrocytes using null antibody
Male five constant healthy 23-58 year old, whole blood 0.5 to 1.0 ml in an equal volume of ACD solution heparinized blood from the vein of women five (acid-cit
rate-dextrose solution; 23 mM citric acid, 44.9 mM sodium citrate, 81.7 mM dextrose) was added, and the mixture was stored at 4 ° C and used as a sample. For each sample,
Add 10 ml of ice-cold PBS, mix, centrifuge at 1,500 xg for 10 minutes at 4 ° C to remove the supernatant, then add 10 ml of ice-cold PBS and repeat centrifugation under the same conditions twice.
20 mM phosphate buffer (pH 7.0) was added to (red blood cells) until the volume was the same as that of whole blood, and the mixture was frozen and stored at -80 ° C. Next, the frozen red blood cell sample was thawed and re-frozen with dry ice acetone was performed twice to completely lyse the red blood cells.
After that, centrifugation is carried out to obtain hemolyzed blood, and then, Example 5 (a)
The amount of aldose reductase contained in hemolysis was measured by the enzyme immunoassay method of (b). Each hemolysate is BSA-Tween20
-Measured by 200-fold dilution with PBS. The amount of hemoglobin contained in the hemolyzed blood was measured by the sodium lauryl sulfate method (hemoglobin-Test Wako II). The results are shown in Table 11.

【0044】[0044]

【表11】 赤血球中のヒトアルドース還元酵素は二段法および一段
法いずれの方法でも測定が可能であった。
[Table 11] Human aldose reductase in erythrocytes could be measured by both the two-step method and the one-step method.

【0045】実施例8ヒトアルドース還元酵素に結合するポリクローナル抗体
あるいはヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモ
ノクローナル抗体を用いたヒト血液中アルドース還元酵
素の測定 健康な25-45 才の男子5 名、女子5 名の静脈よりヘパリ
ン採血した全血0.5 〜1.0ml を-80 ℃で凍結保存した。
次に、凍結サンプルを溶解し、再凍結させる操作を2 回
行い、血液中の赤血球を完全に溶解させた後、遠心分離
を行い溶血液を得た。実施例5(b) (モノ−モノ一段
法)及びポリクローナル抗体とARmAb25を用いた酵素免
疫測定法( 特開平5-317083記載 )(ポリ−モノ二段法)
により溶血液中に含まれるアルドース還元酵素量を測定
した。各溶血液はBSA-Tween20-PBSで 200倍希釈して測
定した。溶血液中に含まれるヘモグロビン量は、ラウリ
ル硫酸ナトリウム法 (ヘモグロビン−テストワコーII)
により測定した。その結果を表12に示す
Example 8 Polyclonal antibody binding to human aldose reductase
Alternatively, a model that specifically binds to human aldose reductase
Aldose reduction fermentation in human blood using a noclonal antibody
Measurement of elemental 0.5 to 1.0 ml of whole blood collected from veins of 5 healthy 25-45-year-old males and 5 females were cryopreserved at -80 ° C.
Next, the operation of thawing the frozen sample and refreezing was performed twice, and the red blood cells in the blood were completely lysed, followed by centrifugation to obtain hemolyzed blood. Example 5 (b) (mono-mono one-step method) and enzyme immunoassay using polyclonal antibody and ARMAb25 (described in JP-A-5-317083) (poly-mono two-step method)
The amount of aldose reductase contained in the hemolyzed blood was measured by. Each hemolysate was diluted 200 times with BSA-Tween20-PBS and measured. The amount of hemoglobin contained in hemolyzed blood was determined by the sodium lauryl sulfate method (hemoglobin-Test Wako II).
Was measured by The results are shown in Table 12.

【0046】[0046]

【表12】 ポリ−モノ:ポリ−モノ二段法(ARmAb25) モノ−モノ:モノ−モノ一段法(ARmAb55、ARmAb25) 全血中のヒトアルドース還元酵素量はポリ−モノ法およ
びモノ−モノ法いずれの方法でも測定が可能であった
が、本願発明のモノクローナル抗体 ARmAb55を用いない
ポリ−モノ法による測定法の値に比べ、 ARmAb55を用い
ないモノ−モノ法による測定法の値の方が小さい。この
ことは、本願発明のモノクローナル抗体 ARmAb55を用い
る測定法の方がヒトアルドース還元酵素に対する特異性
が高いことを示唆している。
[Table 12] Poly-mono: Poly-mono two-step method (ARmAb25) Mono-mono: mono-mono one-step method (ARmAb55, ARmAb25) The amount of human aldose reductase in whole blood can be determined by either the poly-mono method or the mono-mono method. Although the measurement was possible, the value of the mono-mono method without ARmAb55 was smaller than that of the poly-mono method without the monoclonal antibody ARmAb55 of the present invention. This suggests that the assay method using the monoclonal antibody ARmAb55 of the present invention has higher specificity for human aldose reductase.

【0047】実施例9ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロ−
ナル抗体(モノ−モノ一段法)および従来のヒトアルド
ース還元酵素に結合する抗体を用いた各種動物水晶体ア
ルドース還元酵素の測定 実施例3(4) で得られた各種動物精製アルドース還元酵
素及び実施例1(1) で得られた精製ヒトアルドース還元
酵素を試料として、実施例5(b) のモノ−モノ一段法、
実施例6(b) のモノ−ポリ一段法およびモノクローナル
抗体ARmAb49とモノクローナル抗体ARmAb56 を用いた酵
素免疫測定法(49-56 法)により各試料中に含まれるア
ルドース還元酵素量を測定した。ARmAb49 とARmAb56 を
用いた酵素免疫測定法は以下のようにして行った。ARmA
b49 を50mM炭酸緩衝液 (pH9.5 )で5 μg/mlに調製し、
これをイムノマイクロ プレートの各ウェルに250 μl
ずつ添加し、室温で一晩吸着させた後、このイムノマイ
クロプレートをPBS で5 回洗浄し、各ウェルにBSA-PBS
を満たして室温で、1 時間ブロッキングし抗体固定プレ
ートを作成した。実施例4と同様にして調製されたARmA
b56 の HRP標識Fab'を150ng/mlになるようにBSA-Tween2
0-PBS で希釈しこれを各ウェルに100 μl 添加し、さら
に各ウェルにBSA-Tween20-PBS で希釈した各種動物精製
アルドース還元酵素溶液を100 μl 添加して、室温で90
分間放置し、次いでTween20-PBS で5回洗浄した。各ウ
ェルに200 μl オルトフェニレンジアミン含有基質 (0.
5 mg/ml オルトフェニレンジアミン、0.0075%過酸化水
素) を加え、室温で反応を30分間行った後、このプレー
トに4N硫酸を100 μl 加え反応を停止させ、イムノリー
ダーNJ-2000 を用いて、反応生成液の490nm の吸光度を
測定した。各試料は、BSA-Tween 20-PBSで20倍希釈して
測定した。その結果を表13に示す。
Example 9 Monochrome binding specifically to human aldose reductase
Null antibody (mono-mono one-step method) and conventional human aldo
Various animal lenses using antibodies that bind to glucose reductase
Measurement of Ludose Reductase Using various animal purified aldose reductases obtained in Example 3 (4) and the purified human aldose reductase obtained in Example 1 (1) as samples, the mono-of Example 5 (b) was used. Mono one-step method,
The amount of aldose reductase contained in each sample was measured by the mono-poly one-step method of Example 6 (b) and the enzyme immunoassay (49-56 method) using the monoclonal antibody ARmAb49 and the monoclonal antibody ARmAb56. The enzyme immunoassay using ARmAb49 and ARmAb56 was performed as follows. ARmA
b49 was adjusted to 5 μg / ml with 50 mM carbonate buffer (pH 9.5),
Add 250 μl to each well of the immunomicroplate.
Each time, the cells were adsorbed overnight at room temperature, and this immunomicroplate was washed 5 times with PBS, and BSA-PBS was added to each well.
The plate was filled with and blocked at room temperature for 1 hour to prepare an antibody-immobilized plate. ARMA prepared as in Example 4
HRP-labeled Fab 'of b56 was adjusted to 150 ng / ml with BSA-Tween2
Dilute with 0-PBS, add 100 μl to each well, and add 100 μl of each animal purified aldose reductase solution diluted with BSA-Tween20-PBS to each well.
It was left for a minute and then washed 5 times with Tween 20-PBS. 200 μl orthophenylenediamine-containing substrate (0.
(5 mg / ml orthophenylenediamine, 0.0075% hydrogen peroxide) was added and the reaction was carried out at room temperature for 30 minutes, then 100 μl of 4N sulfuric acid was added to the plate to stop the reaction, and Immunoreader NJ-2000 was used. The absorbance of the reaction product solution at 490 nm was measured. Each sample was measured by 20-fold dilution with BSA-Tween 20-PBS. The results are shown in Table 13.

【0048】[0048]

【表13】 表13 ──────────────────────────────────── 動物種 490nmの吸光度 ──────────────────────────────────── モノ−モノ法 モノ−ポリ 49−56法 ──────────────────────────────────── ヒト 1.056 1.254 0.903 ウシ 0.011 0.005 0.827 イヌ 0.002 0.003 0.374 モルモット 0.003 0.001 0.168 ──────────────────────────────────── モノ−モノ法:モノ−モノ一段法(ARmAb55, ARmAb25) モノ−ポリ法:モノ−ポリ一段法(ARmAb55) 49-56法:モノ−モノ一段法(ARmAb49, ARmAb56) ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロ−
ナル抗体ARmAb55を用いたモノ−モノ法、モノ−ポリ法
では、各種アルドース還元酵素を試料とした場合ヒトア
ルドース還元酵素以外の試料では490nm での発色が認め
られず、これらはヒトアルドース還元酵素に特異的な酵
素免疫測定法であった。
[Table 13] Table 13 ──────────────────────────────────── Animal species Absorbance at 490 nm ─── ───────────────────────────────── Mono-mono method Mono-poly 49-56 method ─────── ────────────────────────────── Human 1.056 1.254 0.903 Bovine 0.011 0.005 0.827 Dog 0.002 0.003 0.374 guinea pig 0.003 0.001 0.168 ─────────────────────────────── ────── Mono-mono method: Mono-mono one-step method (ARmAb55, ARmAb25) Mono-poly method: Mono-poly one-step method (ARmAb55) 49-56 method: Mono-mono one-step method (ARmAb49, ARmAb56) Human Specific to aldose reductase Black-and-white to bind to -
In the mono-mono method and the mono-poly method using the null antibody ARmAb55, when various aldose reductases were used as samples, no color was observed at 490 nm in samples other than human aldose reductase. It was a specific enzyme immunoassay.

【0049】実施例10ヒトアルドース還元酵素に特異的に結合するモノクロ−
ナル抗体を用いたヒトアルドース還元酵素の測定 (競合
法に基づくEIA ) 96穴イムノマイクロプレート(ヌンク社製)の各ウェル
に0.5 μg/mlとなるようPBS に溶解したヒトアルドース
還元酵素溶液200 μl を添加し、室温で2 時間吸着させ
た。このプレートを0.05% Tween20を含むPBS で5 回洗
浄後、各ウェルにBSA-Tween20-PBS を加え、蛋白の非特
異的吸着が起こらないように各ウェルを完全にブロック
した。一方、試験管に被検体としてBSA-Tween20-PBS で
段階希釈したヒトアルドース還元酵素溶液とBSA-Tween2
0-PBS で50ng/ml に希釈したARmAb55 とをそれぞれ 150
μl 添加し、室温で1 時間反応させた。この反応液200
μl を上記のヒトアルドース還元酵素を固定したプレー
トの各ウェルに添加し、室温で1 時間反応させた。酵素
に結合したモノクローナル抗体の検出は、ベクタステイ
ンABC キット(ベクターラボラトリーズ社製)を用い
た。すなわち、プレートを0.05% Tween20含有PBS (以
下 Tween20-PBSと記す)で5回洗浄後、ビオチン化ヤギ
抗マウスイムノグロブリン抗血清のBSA-Tween20-PBS 溶
液を100 μl 添加して、1 時間反応させ、次いでTween2
0-PBS で5 回洗浄後、100 μl のアビジン化パーオキシ
ダーゼのBSA-Tween20-PBS 溶液を添加し、20分間反応さ
せた。このプレートをTween20-PBS で5回洗浄後、各ウ
ェルに0.03%過酸化水素と 1mg/ml のオルトフェニレン
ジアミン二塩酸塩を含む100mM クエン酸緩衝液(pH 5.0)
との等量混合液を100 μl 加え、室温で10分間インキュ
ベートした。その後、各ウェルに2N硫酸を100 μl 加え
て反応を停止させ、イムノリーダーNJ-2000(インターメ
ッド社製) を用いて、反応生成液の490nm の吸光度を測
定した。結果を表14に示した。
Example 10 Monochrome binding specifically to human aldose reductase
Human aldose reductase assay using a null antibody (EIA based on competitive method) 200 μl of human aldose reductase solution dissolved in PBS at 0.5 μg / ml in each well of 96-well immunomicroplate (Nunc) Was added and allowed to adsorb at room temperature for 2 hours. This plate was washed 5 times with PBS containing 0.05% Tween20, and then BSA-Tween20-PBS was added to each well to completely block each well so that non-specific adsorption of proteins did not occur. On the other hand, human aldose reductase solution serially diluted with BSA-Tween20-PBS and BSA-Tween2 as test samples
ARMAb55 diluted to 50 ng / ml with 0-PBS and 150 mM each.
μl was added, and the mixture was reacted at room temperature for 1 hour. This reaction liquid 200
μl was added to each well of the plate on which the above-mentioned human aldose reductase was immobilized, and the mixture was reacted at room temperature for 1 hour. A vector stain ABC kit (manufactured by Vector Laboratories) was used to detect the monoclonal antibody bound to the enzyme. That is, the plate was washed 5 times with PBS containing 0.05% Tween20 (hereinafter referred to as Tween20-PBS), and 100 μl of a biotinylated goat anti-mouse immunoglobulin antiserum BSA-Tween20-PBS solution was added and reacted for 1 hour. , Then Tween2
After washing 5 times with 0-PBS, 100 µl of a solution of avidinylated peroxidase in BSA-Tween20-PBS was added and reacted for 20 minutes. After washing the plate 5 times with Tween20-PBS, 100 mM citrate buffer (pH 5.0) containing 0.03% hydrogen peroxide and 1 mg / ml orthophenylenediamine dihydrochloride in each well.
100 μl of an equal volume mixture of and was added and incubated at room temperature for 10 minutes. Then, 100 μl of 2N sulfuric acid was added to each well to stop the reaction, and the absorbance at 490 nm of the reaction product solution was measured using an immunoleader NJ-2000 (manufactured by Intermed). The results are shown in Table 14.

【0050】[0050]

【表14】 表14に示したとおり、アルドース還元酵素濃度に依存
した検量線を得た。
[Table 14] As shown in Table 14, a calibration curve depending on the aldose reductase concentration was obtained.

【0051】[0051]

【発明の効果】本発明により、ヒトアルドース還元酵素
に特異的に結合するモノクロ−ナル抗体を使用して、ヒ
トの血液、尿あるいは組織中の微量のアルドース還元酵
素を簡便に、しかも特異的に測定することが可能となっ
た。
INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, by using a monoclonal antibody that specifically binds to human aldose reductase, a trace amount of aldose reductase in human blood, urine or tissue can be simply and specifically expressed. It became possible to measure.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12P 21/08 9358−4B G01N 33/53 N // C12N 15/00 (C12P 21/08 C12R 1:91) (72)発明者 浦上 貞治 東京都千代田区丸の内二丁目5番2号 三 菱瓦斯化学株式会社本社内─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Office reference number FI technical display location C12P 21/08 9358-4B G01N 33/53 N // C12N 15/00 (C12P 21/08 C12R 1 : 91) (72) Inventor Sadaharu Urakami 2-5-2 Marunouchi, Chiyoda-ku, Tokyo Sanryo Gas Chemical Co., Ltd.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 ヒトのアルドース還元酵素に結合し、ウ
シ、イヌ、モルモット、ラットまたはウサギのアルドー
ス還元酵素には結合しないことを特徴とするモノクロー
ナル抗体。
1. A monoclonal antibody which binds to human aldose reductase and does not bind to bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase.
【請求項2】 ヒトのアルドース還元酵素に結合し、ウ
シ、イヌ、モルモット、ラットまたはウサギのアルドー
ス還元酵素には結合しないモノクローナル抗体を産生す
るハイブリドーマ。
2. A hybridoma producing a monoclonal antibody which binds to human aldose reductase but does not bind to bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase.
【請求項3】 ヒトのアルドース還元酵素に結合し、ウ
シ、イヌ、モルモット、ラットまたはウサギのアルドー
ス還元酵素には結合しないモノクローナル抗体を少なく
とも1種類使用するヒトアルドース還元酵素の免疫測定
法。
3. An immunoassay for human aldose reductase using at least one monoclonal antibody which binds to human aldose reductase but does not bind to bovine, dog, guinea pig, rat or rabbit aldose reductase.
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