JPH066080B2 - 魚介類および食肉類の鮮度測定法およびそのためのキツト - Google Patents
魚介類および食肉類の鮮度測定法およびそのためのキツトInfo
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- JPH066080B2 JPH066080B2 JP23747984A JP23747984A JPH066080B2 JP H066080 B2 JPH066080 B2 JP H066080B2 JP 23747984 A JP23747984 A JP 23747984A JP 23747984 A JP23747984 A JP 23747984A JP H066080 B2 JPH066080 B2 JP H066080B2
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は畜産、水産および食品産業に利用分野をもつも
のであり、又分析機器及び試薬産業に基礎をもつもので
ある。
のであり、又分析機器及び試薬産業に基礎をもつもので
ある。
魚介類や食肉類の鮮度は水産業および食品産業のみなら
ず、肉類の生産、販売、消費等流通における食品衛生上
きわめて重要である。現在よく用いられている鮮度指標
の大部分は魚介や食肉が腐敗しはじめているかどうか、
あるいはどの程度まで腐敗が進行しているかを示すもの
であって、指標としては、全揮発性塩基窒素量(TVB-
N)、トリメチルアミン窒素量(TMA-N)および細菌数など
がある。
ず、肉類の生産、販売、消費等流通における食品衛生上
きわめて重要である。現在よく用いられている鮮度指標
の大部分は魚介や食肉が腐敗しはじめているかどうか、
あるいはどの程度まで腐敗が進行しているかを示すもの
であって、指標としては、全揮発性塩基窒素量(TVB-
N)、トリメチルアミン窒素量(TMA-N)および細菌数など
がある。
しかし、魚介類や食肉類の保存法および加工技術が高度
に進歩し、さらに消費者の選択がいわゆる高級志向に向
けられつつある今日においては、魚介類や食肉類の腐敗
の程度よりは、むしろ“生きの良さ”や“食べ頃”の尺
度が要求されている。
に進歩し、さらに消費者の選択がいわゆる高級志向に向
けられつつある今日においては、魚介類や食肉類の腐敗
の程度よりは、むしろ“生きの良さ”や“食べ頃”の尺
度が要求されている。
従来、魚介類の鮮度測定法に関して斉藤らや、内山らの
報告がある。
報告がある。
〔斉藤ら、日本水産学会誌、24巻、749-750(1959) 内山ら、日本水産学会誌、36巻、177-187(1970) 内山ら、日本水産学会誌、36巻、977-992(1970) 内山ら、特公昭48-30519、
〕 斉藤らの方法は、魚類が魚獲後死に至ると筋肉中に蓄え
られていたエネルギー物質アデノシン３リン酸(ATP)は
魚肉中酵素の触媒作用により、ATP→アデノシン２リン
酸(ADP)→アデニール酸(AMP)→イノシン酸(IMP)→イノ
シン(HxR)→ヒポキサンチン(Hx)に至る分解様式に従っ
て分解することから、出発物質ATPの含量の多いもの程
鮮度が高く、HxRやHxの多いもの程鮮度が低いと判断で
きるとの示唆により、魚肉中のATP関連物質をカラムク
ロマトグラフィーにより各成分を分離し測定するもので
ある。この方法はATP関連物質の分離にカラムクロマト
グラフィーを使用するために、２〜３日の長時間を要
し、操作も煩雑で一般的に用いることは不可能である。
〕 斉藤らの方法は、魚類が魚獲後死に至ると筋肉中に蓄え
られていたエネルギー物質アデノシン３リン酸(ATP)は
魚肉中酵素の触媒作用により、ATP→アデノシン２リン
酸(ADP)→アデニール酸(AMP)→イノシン酸(IMP)→イノ
シン(HxR)→ヒポキサンチン(Hx)に至る分解様式に従っ
て分解することから、出発物質ATPの含量の多いもの程
鮮度が高く、HxRやHxの多いもの程鮮度が低いと判断で
きるとの示唆により、魚肉中のATP関連物質をカラムク
ロマトグラフィーにより各成分を分離し測定するもので
ある。この方法はATP関連物質の分離にカラムクロマト
グラフィーを使用するために、２〜３日の長時間を要
し、操作も煩雑で一般的に用いることは不可能である。
また、内山らの方法は、上記ATP関連物質を測定する際
に、魚肉抽出液の250nmの核酸系成分の吸光度（Ａ）を
測定し、別のフラクションに酵素ヌクレオシドホスホリ
ラーゼ(NP)とキサンチンオキシダーゼ(XO)を作用させる
ことにより、HxRおよびHxを夫々尿酸(UA)に変化させ、
生成したUAの量をUV計を用いて293nmの吸光度から求
め、さらに、こうして得たUAの吸光度に換算係数を乗じ
た値（Ｂ）を求め次式により鮮度を算出する方法であ
る。
に、魚肉抽出液の250nmの核酸系成分の吸光度（Ａ）を
測定し、別のフラクションに酵素ヌクレオシドホスホリ
ラーゼ(NP)とキサンチンオキシダーゼ(XO)を作用させる
ことにより、HxRおよびHxを夫々尿酸(UA)に変化させ、
生成したUAの量をUV計を用いて293nmの吸光度から求
め、さらに、こうして得たUAの吸光度に換算係数を乗じ
た値（Ｂ）を求め次式により鮮度を算出する方法であ
る。
ここでATP分解率（％）は魚介類の鮮度判定恒数Ｋ値で
あり、ＡはATP+ADP+AMP+IMP+HxR+Hxを示しまたＢはHxR+
Hxである。
あり、ＡはATP+ADP+AMP+IMP+HxR+Hxを示しまたＢはHxR+
Hxである。
尚、Ｂを求めるための係数は魚介類によって異り、HxR
蓄積性の魚介類には、0.936,Hx蓄積性のものには、0.81
5を用いるものである。この方法は、ATP関連物質を測定
する際に酵素を用いることによって分析時間の短縮をは
かった点は前述の斉藤らの方法より優れているが、ATP
の分解率を求める際に魚種により計算方法が異なるため
に、計算が煩雑であるばかりでなく、吸光度（Ａ）の中
には、ATP関連物質以外の成分が含まれる可能性もあ
る。また、分光光度計でUV吸収を測定するために、被検
液が少しでも濁っていると大きな誤差を生ずることから
定量精度上大きな問題がある方法であると考えられる。
蓄積性の魚介類には、0.936,Hx蓄積性のものには、0.81
5を用いるものである。この方法は、ATP関連物質を測定
する際に酵素を用いることによって分析時間の短縮をは
かった点は前述の斉藤らの方法より優れているが、ATP
の分解率を求める際に魚種により計算方法が異なるため
に、計算が煩雑であるばかりでなく、吸光度（Ａ）の中
には、ATP関連物質以外の成分が含まれる可能性もあ
る。また、分光光度計でUV吸収を測定するために、被検
液が少しでも濁っていると大きな誤差を生ずることから
定量精度上大きな問題がある方法であると考えられる。
上述したような従来のクロマトグラフィー法や紫外線吸
収測定法の欠点に鑑み、最近次のような方法が開発され
ている。
収測定法の欠点に鑑み、最近次のような方法が開発され
ている。
大橋らは、被検液に酵素NPおよびXOを作用させて生じる
溶存酸素(DO)の減少からHxR+Hxの合計量を求め、さら
に、被検液を酵素アルカリホスファターゼ(AP)で前処理
したサンプルに酵素NPおよびXOを作用させて生じるDOの
減少からATP+ADP+AMP+IMP+AdR（アデノシン）HxR+Hxの
合計量を測定し鮮度指標Ko値を求める方法を報告してい
る。
溶存酸素(DO)の減少からHxR+Hxの合計量を求め、さら
に、被検液を酵素アルカリホスファターゼ(AP)で前処理
したサンプルに酵素NPおよびXOを作用させて生じるDOの
減少からATP+ADP+AMP+IMP+AdR（アデノシン）HxR+Hxの
合計量を測定し鮮度指標Ko値を求める方法を報告してい
る。
〔大橋実、（財）食品産業センター技術研究発表会テキ
スト(1984)大阪〕 Ko値は次式で求められる。
スト(1984)大阪〕 Ko値は次式で求められる。
被検液を酵素APで前処理したサンプルに酵素NPおよびXO
を作用させても本来はIMP+HxR+Hxの合計量しか測定され
ない。しかし大橋らは、粗AP液を用いることによって、
複合酵素作用によりATP+ADP+AMP+IMP+AdR+HxR+Hxが測定
できると報告している。この方法は前述の粗APについて
の定義が明確でなく、また、被検液の粗APによる前処理
中にどのような反応が起きているか不明である。
を作用させても本来はIMP+HxR+Hxの合計量しか測定され
ない。しかし大橋らは、粗AP液を用いることによって、
複合酵素作用によりATP+ADP+AMP+IMP+AdR+HxR+Hxが測定
できると報告している。この方法は前述の粗APについて
の定義が明確でなく、また、被検液の粗APによる前処理
中にどのような反応が起きているか不明である。
前述したような数多くの問題点を解決するために鋭意研
究を行った結果、本発明を完成するに至った。
究を行った結果、本発明を完成するに至った。
本発明は、魚介類や食肉用動物の死後の筋肉中でのATP
の種々の分解生成物を酵素を用いて、従来法よりさらに
迅速、正確、簡易、明確に測定することによって、魚介
類や食肉類の鮮度の指標を算出する方法に関するもので
ある。
の種々の分解生成物を酵素を用いて、従来法よりさらに
迅速、正確、簡易、明確に測定することによって、魚介
類や食肉類の鮮度の指標を算出する方法に関するもので
ある。
さらに詳細に説明すると、魚介類や食肉類の筋肉抽出液
にNPおよびXOを作用させることによって生じる溶存酵素
の減少量又は過酸化水素の生成量を溶存酵素計または過
酸化水素計で検出し、HxR+Hxの量を求め（ただし食肉用
哺乳動物や鳥類の場合はＸ（キサンチン）も求められ
る）、かつアルカリホスファターゼ(AP)、アデノシンデ
アミナーゼ(AdD)、NPおよびXOを作用させることによっ
て生ずる溶存酸素の減少量又は過酸化水素の生成量を溶
存酸素計または過酸化水素計で検出し、ATP+ADP+AMP+IM
P+AdR+HxR+Hxの量を求め（ただし、食肉用哺乳動物や鳥
類の場合はＸも求められる）ることによって （ただし、0.5Xは食肉用哺乳動物および鳥類の場合を示
す）、により上記鮮度判定恒数Ｋ値を計算することがで
き、魚介類および食肉類の鮮度が測定される。下記式
(2)には魚類、食肉用哺乳動物、鳥類の死後のターンオ
ーバーの経路を示す。
にNPおよびXOを作用させることによって生じる溶存酵素
の減少量又は過酸化水素の生成量を溶存酵素計または過
酸化水素計で検出し、HxR+Hxの量を求め（ただし食肉用
哺乳動物や鳥類の場合はＸ（キサンチン）も求められ
る）、かつアルカリホスファターゼ(AP)、アデノシンデ
アミナーゼ(AdD)、NPおよびXOを作用させることによっ
て生ずる溶存酸素の減少量又は過酸化水素の生成量を溶
存酸素計または過酸化水素計で検出し、ATP+ADP+AMP+IM
P+AdR+HxR+Hxの量を求め（ただし、食肉用哺乳動物や鳥
類の場合はＸも求められる）ることによって （ただし、0.5Xは食肉用哺乳動物および鳥類の場合を示
す）、により上記鮮度判定恒数Ｋ値を計算することがで
き、魚介類および食肉類の鮮度が測定される。下記式
(2)には魚類、食肉用哺乳動物、鳥類の死後のターンオ
ーバーの経路を示す。
魚類の死後の筋肉中のATPは(2)式に示した経路により分
解される。すなわち、ATPはATPアーゼ(ATPase)およびミ
オキーゼ(MK)によりAMPとなり、さらに内存性酵素であ
るAMPデアミナーゼ(AMPD)、IMPアーゼ(IMPase)、NPやヌ
クレオシドヒドラーゼ(NH)によりAMPはIMP→HxR→Hxの
経路を経てHxまで分解される。食肉用哺乳動物の場合は
さらにHx→Ｘ→UA→Ｕ（尿素）即ち尿素まで分解され
る。食肉用鳥類の場合は尿酸(UA)まで分解される。
解される。すなわち、ATPはATPアーゼ(ATPase)およびミ
オキーゼ(MK)によりAMPとなり、さらに内存性酵素であ
るAMPデアミナーゼ(AMPD)、IMPアーゼ(IMPase)、NPやヌ
クレオシドヒドラーゼ(NH)によりAMPはIMP→HxR→Hxの
経路を経てHxまで分解される。食肉用哺乳動物の場合は
さらにHx→Ｘ→UA→Ｕ（尿素）即ち尿素まで分解され
る。食肉用鳥類の場合は尿酸(UA)まで分解される。
また一方、イカ・タコ類やカイ類などの軟体動物の死後
の筋肉中のATPは(3)式に示した経路により分解される。
ATPは内在性酵素であるATPase，MK，AMPアーゼ(AMPas
e)、AdDおよびNHによりATP→ADP→AMP→AdR→HxR→Hxを
経て分解される。
の筋肉中のATPは(3)式に示した経路により分解される。
ATPは内在性酵素であるATPase，MK，AMPアーゼ(AMPas
e)、AdDおよびNHによりATP→ADP→AMP→AdR→HxR→Hxを
経て分解される。
魚類や食肉類の鮮度はATPの分解の進行が少い程、すな
わちATP+ADP+AMP+IMP+AdRの含量が高い程鮮度が高いと
いえる。また、HxR+Hx+（Ｘ）含量が高い程鮮度は低
い。
わちATP+ADP+AMP+IMP+AdRの含量が高い程鮮度が高いと
いえる。また、HxR+Hx+（Ｘ）含量が高い程鮮度は低
い。
本発明は上記のATP分解物を酵素を使用して溶存酸素の
減少量もしくは過酸化水素の生成量を溶存酸素計または
過酸化水素計で測定するものである。式(4)に本発明の
測定系を示した。本発明で使用する酵素はAP，AdD，NP
およびXOの４種類である。
減少量もしくは過酸化水素の生成量を溶存酸素計または
過酸化水素計で測定するものである。式(4)に本発明の
測定系を示した。本発明で使用する酵素はAP，AdD，NP
およびXOの４種類である。
(1)式の分子部分のHxR，Hx（およびＸ）の測定には酵素
NPおよびXOが使用され、また、(1)式の分母部分のATP，
ADP，AMP，IMP，AdR，HxR，Hx（およびＸ）の測定には
酵素AP，AdD，NPおよびXOが使用される。上記いずれのA
TP関連物質も(4)式で示されるように、溶存酵素の減少
量または過酸化水素の生成量を溶存酵素計または過酸化
水素計で測定することができる。
NPおよびXOが使用され、また、(1)式の分母部分のATP，
ADP，AMP，IMP，AdR，HxR，Hx（およびＸ）の測定には
酵素AP，AdD，NPおよびXOが使用される。上記いずれのA
TP関連物質も(4)式で示されるように、溶存酵素の減少
量または過酸化水素の生成量を溶存酵素計または過酸化
水素計で測定することができる。
本発明で用いられる溶存酵素計もしくは過酸化水素計は
通常の電気化学的センサーであり、溶存酸素の減少量は
ポーラログラフ式酸素センナーあるいはガルバニ電池式
酸素センサー等で、または、過酸化水素の生成量はポー
ラログラフ式過酸化水素センサー等公知のものが用いら
れる。
通常の電気化学的センサーであり、溶存酸素の減少量は
ポーラログラフ式酸素センナーあるいはガルバニ電池式
酸素センサー等で、または、過酸化水素の生成量はポー
ラログラフ式過酸化水素センサー等公知のものが用いら
れる。
本発明でいう被検液とは、魚介肉や食肉の抽出液であっ
て過塩素酸やトリクロル酢酸等の除蛋白剤によって処理
されたものだけではなく、例えば熱水抽出液や圧さく計
でもよい。
て過塩素酸やトリクロル酢酸等の除蛋白剤によって処理
されたものだけではなく、例えば熱水抽出液や圧さく計
でもよい。
使用する酵素NPは各種動物組織、赤血球、酵母やその他
の微生物等から得られているが、いずれれの給源のNPも
使用できる。XOは牛乳や哺乳動物の肝由来の酵素が使用
出来る。APは各種動物組織や大腸菌由来の酵素が使用さ
れる。AdDは各種動物組織や細菌由来の酵素があるがい
ずれの給源の酵素も使用できる。
の微生物等から得られているが、いずれれの給源のNPも
使用できる。XOは牛乳や哺乳動物の肝由来の酵素が使用
出来る。APは各種動物組織や大腸菌由来の酵素が使用さ
れる。AdDは各種動物組織や細菌由来の酵素があるがい
ずれの給源の酵素も使用できる。
NP，XOおよびAdDはほぼ中性域で作用するので、通常リ
ン酸塩例えば0.1Mリン酸塩の緩衝液（37℃でpHは約7.
6）の存在下で使用される。一方APはアルカリ域で作用
するので、通常、アルカリグリシン例えば0.1Mグリジン
−NaOH（37℃でpHは約10.5）の存在下で使用される。ま
たAPとAdD混合酵素剤の場合はAPの至適条件下で使用さ
れる。
ン酸塩例えば0.1Mリン酸塩の緩衝液（37℃でpHは約7.
6）の存在下で使用される。一方APはアルカリ域で作用
するので、通常、アルカリグリシン例えば0.1Mグリジン
−NaOH（37℃でpHは約10.5）の存在下で使用される。ま
たAPとAdD混合酵素剤の場合はAPの至適条件下で使用さ
れる。
本発明方法を実施するのに次のようなキットが携帯する
のに便利である。
のに便利である。
XOおよびNPの酵素剤（両者は単独もしくは混合した状
態） APおよびAdD酵素剤（両者は単独もしくは混合した状
態） XO，NPおよびAdD用のリン酸塩緩衝液 APまたは／およびAdD用アルカリグリシン緩衝液 アジ化ナトリウム(NaN3) の組合せよりなるキットを用いるのが望ましい。アジ化
ナトリウムは酵素剤や検体中にH2O2を分解するカタラー
ゼが存在するときは、測定に誤差が生ずるので、カタラ
ーゼの作用を阻止するためであり、反応過程に添加して
もよいし、またXO，NP，AdDの酵素剤やリン酸塩緩衝液
の中に予め加えておいてもよい。第１図はAdR標準液を
用いて得た溶存酸素(DO)の減少とAdRの濃度の関係を表
わす検量線を参考までに示したもので、本方法が定量的
であることを証明している。
態） APおよびAdD酵素剤（両者は単独もしくは混合した状
態） XO，NPおよびAdD用のリン酸塩緩衝液 APまたは／およびAdD用アルカリグリシン緩衝液 アジ化ナトリウム(NaN3) の組合せよりなるキットを用いるのが望ましい。アジ化
ナトリウムは酵素剤や検体中にH2O2を分解するカタラー
ゼが存在するときは、測定に誤差が生ずるので、カタラ
ーゼの作用を阻止するためであり、反応過程に添加して
もよいし、またXO，NP，AdDの酵素剤やリン酸塩緩衝液
の中に予め加えておいてもよい。第１図はAdR標準液を
用いて得た溶存酸素(DO)の減少とAdRの濃度の関係を表
わす検量線を参考までに示したもので、本方法が定量的
であることを証明している。
本発明に用いる装置としては溶存酸素計もしくは過酸化
水素計を設けた反応槽、検出信号の増幅および記録機構
を備えたものが選ばれ、特に電算機を連結したものが好
ましい。
水素計を設けた反応槽、検出信号の増幅および記録機構
を備えたものが選ばれ、特に電算機を連結したものが好
ましい。
本発明の方法またはキットを使用することにより魚肉、
軟体動物肉や食肉中でのATPの内在性酵素による分解経
路をもとに、魚介類や食肉類の鮮度の目安となるＡＴＰ
分解物はすべて被測定物となり、しかもＨｘＲ＋Ｈｘ
（＋０．５Ｘ）だけを他のＡＴＰ分解物から別に簡単に
測定することができるから、魚肉類、軟体動物肉類およ
び食肉類いずれの肉類であっても、同一方法で測定で
き、しかも、測定結果からＦ値を算出することによって
容易に鮮度指標を求めることができる。
軟体動物肉や食肉中でのATPの内在性酵素による分解経
路をもとに、魚介類や食肉類の鮮度の目安となるＡＴＰ
分解物はすべて被測定物となり、しかもＨｘＲ＋Ｈｘ
（＋０．５Ｘ）だけを他のＡＴＰ分解物から別に簡単に
測定することができるから、魚肉類、軟体動物肉類およ
び食肉類いずれの肉類であっても、同一方法で測定で
き、しかも、測定結果からＦ値を算出することによって
容易に鮮度指標を求めることができる。
実施例 スーパーから購入した、いわし、いか、鶏肉および牛肉
についてATP分解物の定量を行い鮮度判定恒数Ｋ値を求
めた。
についてATP分解物の定量を行い鮮度判定恒数Ｋ値を求
めた。
いわしの背肉、いかの身、鶏のもも肉および牛ロース
肉、それぞれ2.5ｇ秤量し、それぞれに0.1Ｍリン酸緩衝
液(pH7.5)５ml加え、100℃で５分間加熱した。加熱後冷
却、瀘過して得た肉抽出液（サンプル）について下記に
示す方法で分析した。
肉、それぞれ2.5ｇ秤量し、それぞれに0.1Ｍリン酸緩衝
液(pH7.5)５ml加え、100℃で５分間加熱した。加熱後冷
却、瀘過して得た肉抽出液（サンプル）について下記に
示す方法で分析した。
レコーダー付酸素計の反応槽へ0.1Ｍリン酸緩衝液2.0ml
(pH7.6)とサンプル50μ入れそこへ酵素キサンチンオ
キシダーゼ（活性濃度１u/ml）20μおよびヌクレオシ
ドホスホリラーゼ（活性濃度50u/ml）10μ注入してサ
ンプル中のHxR+Hx(+0.5X)を37℃における溶存酸素の減
少量（Ｉ）から測定する。そこへさらに、あらかじめ0.
1Ｍグリシン−苛性ソーダ緩衝液(pH10.5) 0.1ml，サン
プル0.1mlおよびアルカリホスファターゼ（活性濃度150
u/ml）20μの混合液37℃で５分間保温したサンプルか
ら50μ取り出し反応槽に追加し、同時にアデノシンデ
アミナーゼ（活性濃度100u/ml）10μ入れ、ATP+ADP+A
MP+IMP+AdR+HxR+Hx(+0.5X)を37℃における溶存酸素の減
少(II)から測定する。
(pH7.6)とサンプル50μ入れそこへ酵素キサンチンオ
キシダーゼ（活性濃度１u/ml）20μおよびヌクレオシ
ドホスホリラーゼ（活性濃度50u/ml）10μ注入してサ
ンプル中のHxR+Hx(+0.5X)を37℃における溶存酸素の減
少量（Ｉ）から測定する。そこへさらに、あらかじめ0.
1Ｍグリシン−苛性ソーダ緩衝液(pH10.5) 0.1ml，サン
プル0.1mlおよびアルカリホスファターゼ（活性濃度150
u/ml）20μの混合液37℃で５分間保温したサンプルか
ら50μ取り出し反応槽に追加し、同時にアデノシンデ
アミナーゼ（活性濃度100u/ml）10μ入れ、ATP+ADP+A
MP+IMP+AdR+HxR+Hx(+0.5X)を37℃における溶存酸素の減
少(II)から測定する。
レコーダー上で得られた減少量（Ｉ）と(II)よりつぎの
式によりＫ値を算出した。
式によりＫ値を算出した。
その結果いわし、イカ、鶏肉、牛肉の鮮度判定恒数Ｋ値
はそれぞれ10.9％，79.2％，85.3％，94.3％であった。
はそれぞれ10.9％，79.2％，85.3％，94.3％であった。
簡易クロマトグラフィ法の結果と比較しほぼ同等の数値
を得た。
を得た。
本発明は従来のカラムクロマトグラフィ法や紫外線吸収
測定法によらずに、最近開発された溶存酸素測定法に基
づきながら、魚介類のみならず、食肉類にまで適用でき
る鮮度測定法を考案したものであり、小型な装置と試薬
と酵素のキットを用いて迅速簡便な鮮度分析が可能であ
い、流通過程での測定も容易である。したがって、水産
業および食品産業たとえば魚介類や食肉類の生産、販売
あるいは消費等流通における食品衛生上きわめて意義が
ある。
測定法によらずに、最近開発された溶存酸素測定法に基
づきながら、魚介類のみならず、食肉類にまで適用でき
る鮮度測定法を考案したものであり、小型な装置と試薬
と酵素のキットを用いて迅速簡便な鮮度分析が可能であ
い、流通過程での測定も容易である。したがって、水産
業および食品産業たとえば魚介類や食肉類の生産、販売
あるいは消費等流通における食品衛生上きわめて意義が
ある。
第１図はAdRの検量線である。
Claims (2)
- 【請求項１】被検液にヌクレオシドホスホリラーゼ(NP)
およびキサンチンオキシダーゼ(XO)を作用させることに
よって生ずる溶存酸素の減少量又は過酸化水素の生成量
を溶存酸素計又は過酸化水素計により測定することによ
りイノシン(HxR)およびヒポキサンチン(Hx)を求め、
（ただし食肉用哺乳動物および鳥類の場合はキサンチン
(X)も求められる）、一方アルカリホスファターゼ(A
P)、アデノシンデアミナーゼ(AdD)、NPおよびXOを作用
させることによって生ずる溶存酸素の減少量又は過酸化
水素の生成量を溶存酸素計又は過酸化水素計により測定
することによりアデノシン３リン酸(ATP)、アデノシン
２リン酸(ADP)、アデニール酸(AMP)、イノシン酸(IM
P)、アデノシン(AdR)、HxRおよびHxを求める（ただし食
肉用哺乳動物および鳥類の場合はキサンチン(X)も求め
られる）ことによって、 （ただしカッコ内の0.5Ｘは食肉用哺乳動物および鳥類
の場合を示す） を計算することを特徴とする魚介類および食肉類の鮮度
を測定する方法。 - 【請求項２】キサンチンオキシダーゼ(XO)およびヌクレ
オシドホスホリラーゼ(NP)酵素剤（両者は単独もしくは
混合した状態でもよい）、 アデノシンデアミナーゼ(AdD)およびアルカリホスファ
ターゼ(AP)酵素剤（両者は単独もしくは混合した状態で
もよい）、 リン酸塩緩衝液、 アルカリグリシン緩衝液、 アジ化ナトリウム（XO，NP，AdDの各酵素剤、もしくはX
OとNPの混合酵素剤又はリン酸塩緩衝液に予め加えても
よい）、の組合せよりなる 魚介類および食肉類の鮮度を測定するためのキット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23747984A JPH066080B2 (ja) | 1984-11-13 | 1984-11-13 | 魚介類および食肉類の鮮度測定法およびそのためのキツト |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23747984A JPH066080B2 (ja) | 1984-11-13 | 1984-11-13 | 魚介類および食肉類の鮮度測定法およびそのためのキツト |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61115499A JPS61115499A (ja) | 1986-06-03 |
| JPH066080B2 true JPH066080B2 (ja) | 1994-01-26 |
Family
ID=17015934
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP23747984A Expired - Lifetime JPH066080B2 (ja) | 1984-11-13 | 1984-11-13 | 魚介類および食肉類の鮮度測定法およびそのためのキツト |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH066080B2 (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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-
1984
- 1984-11-13 JP JP23747984A patent/JPH066080B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS61115499A (ja) | 1986-06-03 |
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