JPH0630576B2 - Ban I Method for producing restricted endonuclease - Google Patents
Ban I Method for producing restricted endonucleaseInfo
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- JPH0630576B2 JPH0630576B2 JP62171746A JP17174687A JPH0630576B2 JP H0630576 B2 JPH0630576 B2 JP H0630576B2 JP 62171746 A JP62171746 A JP 62171746A JP 17174687 A JP17174687 A JP 17174687A JP H0630576 B2 JPH0630576 B2 JP H0630576B2
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Description
【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明はBanI制限エンドヌクレアーゼの遺伝子を含
む染色体DNA断片を組み込んでなる新しい組換えプラ
スミドを導入して形質転換した微生物及び該微生物より
BanI制限エンドヌクレアーゼを製造する方法に関す
る。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION (Field of Industrial Use) The present invention is a microorganism transformed by introducing a new recombinant plasmid into which a chromosomal DNA fragment containing a BanI restriction endonuclease gene has been introduced, and BanI restriction from the microorganism. It relates to a method for producing an endonuclease.
(従来の技術) II型制限酵素はデオキシリボ核酸(DNA)鎖中のある
特定の塩基配列を認識し、これを切断する極めて特異性
の高い酵素であり、このすぐれた特異性により遺伝子工
学の分野で幅広く利用されている。(Prior Art) A type II restriction enzyme is an enzyme with a very high specificity that recognizes a specific base sequence in a deoxyribonucleic acid (DNA) chain and cleaves it, and due to its excellent specificity, it is used in the field of genetic engineering. Widely used in.
現在までのところ、細菌等から約100種類のII型制限
酵素が発見され、商品化されている。本発明に記載のB
anIも、このII型制限酵素のひとつであり、DNAの
塩基配列中のGGPyPuCCを意識し、これを切断す
る酵素であり、バチルス アノイリノリテイカス(Baci
llus Aneurinolyticus)IAM1077において生産さ
れることが知られている[Nucleic Acids Research 10,
5747(1982)]。To date, about 100 types of type II restriction enzymes have been discovered from bacteria and commercialized. B according to the invention
anI is also one of the type II restriction enzymes, and is an enzyme that recognizes GGPyPuCC in the nucleotide sequence of DNA and cleaves it.
llus Aneurinolyticus) IAM1077 is known to be produced in [Nucleic Acids Research 10,
5747 (1982)].
II型制限酵素を遺伝子工学の分野で利用するには最低
限、次の4つの条件を満足する必要がある。In order to use the type II restriction enzyme in the field of genetic engineering, at least the following four conditions must be satisfied.
すなわち他の制限酵素を含まない。That is, it does not contain other restriction enzymes.
フォスファターゼを含まない。Does not contain phosphatase.
非特異的DNaseを含まない。Does not contain non-specific DNase.
3′および5′−エキソヌクレアーゼを含まない。Free of 3'and 5'-exonucleases.
であり、そのため市販されている制限酵素は除核酸法、
塩析法、ゲル濾過法、イオン交換クロマトグラフィー
法、アフィニティークロマトグラフィー法等を組み合わ
せることにより高純度に精製されている。本発明者らは
BanIについても他の制限酵素と同様の方法を試みた
が、特にBanIにおいては、バチルス アノイリノリ
テイカス(Bacillus aneurinolyticus)IAM1077
はBanI以外にATCGATを認識し、これを切断す
る制限酵素BanIII及びGPuGCPyCを認識し、
これを切断する制限酵素BanIIをも同時に生産するた
め、これを除くことが非常に困難であった。Therefore, the commercially available restriction enzymes are the nucleic acid removal method,
It is highly purified by a combination of salting out method, gel filtration method, ion exchange chromatography method, affinity chromatography method and the like. The present inventors have tried the same method as other restriction enzymes for BanI, but particularly for BanI, Bacillus aneurinolyticus IAM1077
Recognizes ATCGAT in addition to BanI, recognizes restriction enzymes BanIII and GPuGCPyC, which cut it,
Since the restriction enzyme BanII which cuts this is also produced at the same time, it was very difficult to remove it.
(発明の目的) 本発明者らは上記方法の欠点であるBanIII及びBa
nIIを同時に生産するという点を解消し、BanIだけ
を生産する菌株を造成すべく鋭意研究を行なった。その
結果、前記バチルス アノイリノリテイカス(Bacillus
neurinolyticus)IAM1077からBanI制限エ
ンドヌクレアーゼの遺伝子を含む染色体DNA断片を抽
出し、これをベクターに組み込んで組換えプラスミドを
作成し、該プラスミドの導入により形質転換させた微生
物を得ることに成功するとともに、該微生物がBanI
のみを生産するという事実を発見した。本発明はこの新
しい知見に基づいて完成されたものである。OBJECTS OF THE INVENTION The present inventors have found that the drawbacks of the above methods are BanIII and Ba.
The intent of this study was to solve the problem of producing nII at the same time and to create a strain producing only BanI. As a result, the Bacillus anoillinolyticus (Bacillus
neurinolyticus) IAM1077, a chromosomal DNA fragment containing a BanI restriction endonuclease gene is extracted, a recombinant plasmid is prepared by incorporating this into a vector, and a transformed microorganism is successfully obtained by introducing the plasmid, and The microorganism is BanI
Discovered the fact that only produces. The present invention has been completed based on this new finding.
(発明の構成) 即ち、本発明はバチルス アノイリノリテイカス(Baci
llus aneurinolyticus)IAM1077由来のBanI
制限エンドヌクレアーゼ遺伝子を含む、制限酵素、Sa
u3AIにより切断された3.6kbである染色体DN
Aを組み込んだ大腸菌にて複製できる組換えプラスミド
で形質転換されたエシエリヒア(Escherichia)属に属
する微生物及び該形質転換微生物を培養して、培養物か
らBanI制限エンドヌクレアーゼを採取することを特
徴とするBanI制限エンドヌクレアーゼの製造法に係
わる。(Structure of the Invention) That is, the present invention relates to Bacillus anoylinolyticus (Baci
llus aneurinolyticus) BanI derived from IAM1077
Sa, a restriction enzyme containing a restriction endonuclease gene
Chromosome DN 3.6 kb cleaved by u3AI
A microorganism belonging to the genus Escherichia transformed with a recombinant plasmid capable of replicating in Escherichia coli into which A is incorporated, and the transformed microorganism, and BanI restriction endonuclease is collected from the culture. It relates to a method for producing BanI restriction endonuclease.
本発明の上記組換えプラスミドを導入した形質転換株は
BanI制限エンドヌクレアーゼだけを生産するためそ
の精製工程においてBanIII制限エンドヌクレアーゼ
及びBanII制限エンドヌクレアーゼを除去する必要が
なく、大量のBanI制限エンドヌクレアーゼを容易に
製造することが可能となった。Since the transformant into which the above recombinant plasmid of the present invention has been introduced produces only BanI restriction endonuclease, it is not necessary to remove BanIII restriction endonuclease and BanII restriction endonuclease in the purification step, and a large amount of BanI restriction endonuclease can be obtained. It became possible to manufacture easily.
以下本発明につき詳細に説明する。The present invention will be described in detail below.
(a)プラスミド及びその調製 本発明の新規プラスミドは、例えばエシエリヒア(Esch
erichia)属に属する微生物の染色体外遺伝子(プラス
ミド)として知られるコリシンE1因子等の、培養され
た細胞内で増殖しうる形式をとるプラスミドにバチルス
アノイリノリテイカス(Bacillus aneurinolyticus)
IAM1077由来のBanI制限エンドヌクレアーゼ
遺伝子を含む、制限酵素、Sau3AIにより切断され
たDNA断片を組み込んでなるプラスミドであり、前記
ベクターDNAとしては、天然に存在するものを抽出し
たものの他、増殖に必須な部分以外のDNAの部分が一
部欠落しているものでもよく、例えばColE1の系統、p
MB9の系統、pBR322の系統、pSC101の系
統、R6Kの系統、ラムダーファージの系統等が挙げら
れる。(A) Plasmid and its preparation The novel plasmid of the present invention is, for example, Escherichia (Esch.
Escherichia coli (E. coli) known as an extrachromosomal gene (plasmid) of a microorganism belonging to the genus erichia), and a plasmid having a form capable of proliferating in a cultured cell, Bacillus aneurinolyticus
A plasmid incorporating a DNA fragment cleaved by a restriction enzyme, Sau3AI, containing a BanI restriction endonuclease gene derived from IAM1077. The vector DNA is essential for proliferation in addition to extracted natural DNA. A part of DNA other than the part may be deleted, for example, ColE 1 strain, p
Examples include MB9 strains, pBR322 strains, pSC101 strains, R6K strains, and lambda phage strains.
また前記ベクターDNAに前記染色体DNA断片を組み
込む方法は、既知のいずれの方法も適用しうる。例え
ば、適当な制限酵素(Endonuclease)で処理して染色体
DNAを特定部位で切断し、次いで同様に処理したベク
ターDNAと混合し、リガーゼによって再結合する方法
が用いられる。As a method for incorporating the chromosomal DNA fragment into the vector DNA, any known method can be applied. For example, a method is used in which chromosomal DNA is cleaved at a specific site by treatment with an appropriate restriction enzyme (Endonuclease), then mixed with similarly treated vector DNA, and religated with ligase.
ベクターDNAとして、pBR322プラスミドを用
い、これにバチルス アノイリノリテイカス(Bacillus
aneurinolyticus)IAM1077から調製された染色
体DNA断片を組み込むことにより、新規プラスミドp
BAN11が得られる。pBAN11プラスミドの制限
酵素地図を第1図に示す。第1図において、白枠で表さ
れる部分がBanI制限エンドヌクレアーゼ遺伝子を含
む染色体DNA断片を示す。第1図から明らかなよう
に、このプラスミドはpBR322プラスミドの制限酵
素サイトのBamHIサイトに、バチルス アノイリノ
リテイカス(Bacillus aneurinolyticus)IAM107
7のBanI制限エンドヌクレアーゼ遺伝子を含むDN
A断片が組み込まれた8Kbの塩基対を有する円形分子
である。As the vector DNA, pBR322 plasmid was used, to which Bacillus anoillinolyticus (Bacillus
aneurinolyticus) IAM1077, a new plasmid p
BAN11 is obtained. A restriction map of the pBAN11 plasmid is shown in FIG. In FIG. 1, a white box indicates a chromosomal DNA fragment containing a BanI restriction endonuclease gene. As is clear from FIG. 1, this plasmid was found at the BamHI site of the restriction enzyme site of the pBR322 plasmid, at the Bacillus aneurinolyticus IAM107.
DN containing 7 BanI restriction endonuclease genes
It is a circular molecule having 8 Kb of base pair with integrated A fragment.
(b)微生物の調製 このようにして得られた前記染色体DNA断片とベクタ
ーDNAの結合物を既知の形質転換法、例えばショット
・ガン法(shot gun method)により受容菌の微生物菌
体中に導入すると、所望の遺伝形質とベクターDNAの
形質を併せもつ形質転換株が得られる。(B) Preparation of microorganism The thus obtained chromosomal DNA fragment-vector DNA combination is introduced into a microbial cell of a recipient bacterium by a known transformation method, for example, the shot gun method. Then, a transformant having both the desired genetic trait and the vector DNA trait is obtained.
受容菌としては、前記のエシエリヒア・コリHB10
1、同C600、同DP、supF、同x1776、同
LE392等の通常この種の技術分野で用いられる微生
物が有利に用いられる。その典型的な例としてエシエリ
ヒア・コリHB101株が挙げられる[モレキュラー・
クローニング・エイ・ラボラトリー・マニュアル、(Mo
lecular Cloning Laboratory Manual P.504(1982)参
照;遺伝形質F−、hsd s20(r8,M8)rec A13、ara-14、pro
A2、lacY1、gal K2、rps L20(Sm′)、xy1-5、mtl-1、sup E44
λ−)]。As the recipient bacterium, the above-mentioned Escherichia coli HB10
Microorganisms commonly used in this type of technical field, such as 1, C600, DP, supF, x1776, LE392, etc. are advantageously used. A typical example thereof is the Escherichia coli HB101 strain [Molecular
Cloning A Laboratory Manual, (Mo
See lecular Cloning Laboratory Manual P.504 (1982); Genetic trait F − , hsd s20 (r 8 , M 8 ) rec A13, ara-14, pro.
A2, lacY1, gal K2, rps L20 (Sm '), xy1-5, mtl-1, sup E44
λ − )].
このエシエリヒア・コリHB101株に、前記プラスミ
ドpBAN11を導入して形質転換法により得られる微
生物は、新規微生物であり、エシエリヒア・コリHB1
01(pBAN11)[Echerichia coli HB101
(pBAN11)]と呼称され、昭和62年6月18日
付にて工業技術院微生物工業技術研究所へ寄託され、そ
の寄託番号は、微工研寄第9424号(FERM P−
9424)である。このようにして得られたエシエリヒ
ア・コリHB101(pBNA11)の菌学的性質を、
DNA受容菌であるエシエリヒア・コリHB101株の
性質と比較すると、前者がBanI制限エンドヌクレア
ーゼの生産及びアンピシリン耐性を有するのに対し、後
者がこれらの特性を有しない点以外は全く同一である。The microorganism obtained by the transformation method by introducing the above-mentioned plasmid pBAN11 into this Escherichia coli HB101 strain is a novel microorganism, and Escherichia coli HB1.
01 (pBAN11) [Echerichia coli HB101
(PBAN11)] and deposited on June 18, 1987, at the Institute for Microbial Technology, Institute of Industrial Science, the deposit number is Micromachine Lab. No. 9424 (FERM P-
9424). The mycological properties of Escherichia coli HB101 (pBNA11) thus obtained were
Comparing with the properties of the Escherichia coli HB101 strain, which is a DNA recipient, the former is completely the same except that the former has BanI restriction endonuclease production and ampicillin resistance, whereas the latter does not have these characteristics.
(c)制限エンドヌクレアーゼの生産 工程(b)で得られた形質転換株を培養するには、特定
の遺伝情報によって生成される物質の生産に適した培地
であって且つ宿主微生物の生育に適した培地を用い得る
が、本発明方法では、通常、エシエリヒア・コリの生育
培地として用いられるLB培地(トリプトン、酵母エキ
ス、食塩)、BPB培地(Difco;ボリペプトン、酵母
エキス、リン酸カリウム)、栄養・寒天培地(Difco000
1)、トリプトン・食塩培地等を基本培地として調製し
たものを用いればよい。(C) Production of restriction endonuclease In order to culture the transformant obtained in step (b), it is a medium suitable for the production of substances produced by specific genetic information and suitable for the growth of host microorganisms. In the method of the present invention, an LB medium (trypton, yeast extract, salt), a BPB medium (Difco; bolipeptone, yeast extract, potassium phosphate), a nutrient, which is usually used as a growth medium for Escherichia coli, can be used.・ Agar medium (Difco000
1), tryptone / saline medium, etc. prepared as a basic medium may be used.
その他、必要に応じて炭素源、窒素源の他にアミノ酸、
ビタミン等の栄養素を添加してもよい。In addition to the carbon and nitrogen sources, amino acids,
Nutrients such as vitamins may be added.
培養方法は、pH、温度、酸素供給量等の条件として通常
のエシエリヒア属の微生物の生育に適した条件を採り得
るが、前記微生物を培地に接種した後、前記微生物が生
育してその菌体量が最大に達したとき、即ち対数増殖後
期まで生育させるのが好ましい。培養温度は、通常30
〜37℃、pH条件は、pH5〜8の範囲、特に中性付近が
適当である。The culture method, pH, temperature, it is possible to adopt conditions suitable for the growth of microorganisms of the genus Escherichia genus as conditions such as oxygen supply, after inoculating the microorganism into a medium, the microorganism grows and It is preferable to grow when the amount reaches the maximum, that is, until late logarithmic growth. The culture temperature is usually 30
It is suitable that the pH condition is ˜37 ° C. and the pH range is 5˜8, especially around neutral.
得られた菌体を集菌後、遠心分離、超音波破砕工程等に
より抽出し、次いで除核酸法、塩析法、ゲル濾過法、イ
オン交換クロマトグラフィー法、アフィニティクロマト
グラフィー法等を組み合わせることによりBanI制限
エンドヌクレアーゼを得ることができる。After collecting the obtained bacterial cells, centrifugation, extraction by ultrasonication, etc., and then combining nucleic acid removal method, salting out method, gel filtration method, ion exchange chromatography method, affinity chromatography method, etc. BanI restriction endonuclease can be obtained.
(発明の効果) 本発明のプラスミド及びこれを導入した形質転換株はB
anI制限エンドヌクレアーゼだけを生産するため、そ
の精製工程においてBanIII制限エンドヌクレアーゼ
及びBanII制限エンドヌクレアーゼを除去する必要が
なく、これにより大量のBanII制限エンドヌクレアー
ゼを容易に製造することが可能となった。(Effect of the Invention) The plasmid of the present invention and the transformant into which it is introduced are B
Since only the anI restriction endonuclease is produced, it is not necessary to remove the BanIII restriction endonuclease and the BanII restriction endonuclease in the purification step, which makes it possible to easily produce a large amount of BanII restriction endonuclease.
(実施例) 以下本発明を実施例により、更に詳細に説明するが、本
発明は何らこれらに限定されるものではない。(Examples) Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but the present invention is not limited thereto.
実施例1. (1)BanI制限エンドヌクレアーゼの遺伝子をもつ染
色体DNAの調製 バチルス アノイリノリテイカス(Bacillus aneurinol
yticus)IAM1077をL−broth培地[純粋1あ
たりトリプトン(Difco)10g、酵母エキス5g、N
aCl10gをpH7.0に調製したもの]50mに接
種し、30℃で振盪培養を行なった。14時間後に菌体
を集めた。次に集めた菌体を10mg/mのリゾチー
ム[太陽化学(株)製]、20%ショ糖、1mM ED
TAを含む50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.6)20
mに懸濁し、37℃で10分間静置した。次に1%ラ
ウロイルサルコシン酸を含む0.1MEDTA溶液(pH
9.6)44m及び5.44mg/mのプロナーゼ
溶液2.0mを加え、50℃で30分間静置した。次
に塩化セシウム66g、10mg/mのエチジウムブ
ロマイド溶液3.3mを加え、混合した後に38,0
00rpm、40時間の遠心分離を行なった。DNA層
を注射器で抜きとり、n−ブタノール抽出によってエチ
ジウムブロマイドを除去し、1mM EDTAを含む1
0mMトリス塩酸緩衝液(pH8.0)に透析することに
より約500μgの染色体DNAを取得した。Example 1. (1) Preparation of chromosomal DNA containing BanI restriction endonuclease gene Bacillus aneurinol
yticus) IAM1077 in L-broth medium [10 g of tryptone (Difco) per 1 pure, yeast extract 5 g, N
10 g of aCl adjusted to pH 7.0] was inoculated into 50 m, and shake culture was carried out at 30 ° C. After 14 hours, the bacterial cells were collected. Next, the collected bacterial cells were 10 mg / m of lysozyme [manufactured by Taiyo Kagaku Co., Ltd.], 20% sucrose, 1 mM ED.
50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.6) containing TA 20
m and suspended at 37 ° C. for 10 minutes. Next, 0.1 M EDTA solution containing 1% lauroyl sarcosinic acid (pH
9.6) 44 m and 2.04 m of a 5.44 mg / m pronase solution were added, and the mixture was allowed to stand at 50 ° C for 30 minutes. Next, 66 g of cesium chloride and 3.3 m of an ethidium bromide solution of 10 mg / m were added, and after mixing, 38.0
Centrifugation was performed at 00 rpm for 40 hours. The DNA layer was extracted with a syringe, ethidium bromide was removed by n-butanol extraction, and 1 mM EDTA was added.
About 500 μg of chromosomal DNA was obtained by dialysis against 0 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0).
(2)染色体DNA断片のベクターへの挿入 (1)で得られた染色体DNA3μgについて0.02ユ
ニットのSau3AI制限エンドヌクレアーゼを加え、
37℃、1時間の反応を行なうことにより、これを部分
分解した。次にベクタープラスミドpBR322[東洋
紡績(株)製]1μgについて4ユニットのBamHI
制限エンドヌクレアーゼを加え、37℃、1時間の反応
を行なうことによりこれを完全分解し、更に1ユニット
のアルカリフォファターゼを加え、37℃、1時間の反
応を行なうことにより、5′末端のリン酸を除去した。
以上の方法により得られた3μgの染色体DNA断片と
1μgのpBR322のDNA断片を混合し、更に1m
M ATP及び5mMジチオスレイトールの存在下に5
ユニットのT4ファージ由来のDNAリカーゼを用いて
15℃、16時間の連結反応を行なうことにより染色体
DNAを組み込んだプラスミドDNAを取得した。(2) Insertion of chromosomal DNA fragment into vector Add 0.02 units of Sau3AI restriction endonuclease to 3 μg of chromosomal DNA obtained in (1),
This was partially decomposed by carrying out a reaction at 37 ° C. for 1 hour. Next, 4 units of BamHI for 1 μg of the vector plasmid pBR322 [manufactured by Toyobo Co., Ltd.]
This is completely decomposed by adding a restriction endonuclease and performing a reaction at 37 ° C. for 1 hour, and further adding 1 unit of alkaline phosphatase and performing a reaction at 37 ° C. for 1 hour, whereby the 5'terminal phosphorus is The acid was removed.
3 μg of the chromosomal DNA fragment obtained by the above method and 1 μg of the pBR322 DNA fragment were mixed, and further mixed for 1 m.
5 in the presence of MATP and 5 mM dithiothreitol
A plasmid DNA incorporating chromosomal DNA was obtained by carrying out a ligation reaction at 15 ° C. for 16 hours using a DNA ligase derived from a unit of T 4 phage.
(3)BanI制限エンドヌクレアーゼ遺伝子を含む組み
換えプラスミドによる形質転換 エシエリヒア・コリK−12株とエシエリヒア・コリB
株のハイブリッド株であるエシエリヒア・コリHB10
1株をLB培地[純水1あたりトリプトン(Difco)
10g、酵母エキス5g、NaCl10gをpH7.0に
調製したもの]10mに接種し、37℃で振盪培養を
行ない、対数増殖期まで生育させた後に集菌した。これ
を氷冷下、最終濃度で0.03M CaCl2の溶液に
懸濁させてコンピテントな細胞とした。この細胞懸濁液
に(2)で得たプラスミドDNAの溶解液を加えて、氷冷
下で60分反応させ、42℃、1〜2分間ヒートショッ
クを与えて、前記プラスミドDNAを細胞内に取り込ま
せた。次いでこの細胞懸濁液を別途前記LB培地に接種
し、37℃、3〜5時間振盪培養して形質転換反応を行
なった後、アンピリシン耐性を有し、且つBanI制限
エンドヌクレアーゼを生産する株を分離し、エシエリヒ
ア・コリHB101(pBAN11)(微工研菌寄第9
424号)を得た。(3) Transformation with recombinant plasmid containing BanI restriction endonuclease gene Escherichia coli K-12 strain and Escherichia coli B
Hybrid strain of Escherichia coli HB10
1 strain in LB medium [tryptone per 1 pure water (Difco)
10 g, yeast extract 5 g, and NaCl 10 g adjusted to pH 7.0] were inoculated into 10 m, cultured at 37 ° C. with shaking, grown to a logarithmic growth phase, and then collected. This was suspended in a solution of 0.03M CaCl 2 at a final concentration under ice cooling to obtain competent cells. The lysis solution of the plasmid DNA obtained in (2) was added to this cell suspension, and the mixture was reacted for 60 minutes under ice-cooling and heat shocked at 42 ° C for 1 to 2 minutes to bring the plasmid DNA into the cells. I took it in. Then, this cell suspension was separately inoculated into the LB medium, shake-cultured at 37 ° C. for 3 to 5 hours to perform a transformation reaction, and then a strain having ampicillin resistance and producing a BanI restriction endonuclease was obtained. Isolate and isolate Escherichia coli HB101 (pBAN11)
No. 424) was obtained.
(4)エシエリヒア・コリHB101(pBAN11)に
よるBanI制限エンドヌクレアーゼの生産 (3)で得られた形質転換株エシエリヒア・コリHB10
1(pBAN11)(微工研菌寄第9424号)を前記
LB培地500mを含む2容のフラスコで37℃、
16時間振盪培養を行なった。これを遠心分離して集
菌、洗浄後10mM MgCl2,7mM 2−メルカ
プトエタノールを含んだ20mMのトリス塩酸緩衝液
(pH7.5)25mに懸濁し、0℃で10分間の超音
波破砕を行なった。更に12,000rpmで10分間
の遠心分離により酵素抽出液を得た。次にこの酵素抽出
液に硫安粉末を氷冷下添加溶解し、30〜80%飽和画
分を(飽和度はOsborne法で表示)を遠心分離により回
収した。この回収沈殿物を2mMメルカプトエタノー
ル、5%グリセロールを含んだ10mMリン酸緩衝液
(pH7.5)2mに溶解し、更に透析チューブに入れ
て、100倍量の同緩衝液に対して1夜透析した。続い
て同緩衝液にて平衡化したホスホセルロース(ワットマ
ン社製)のカラム(容量20m)に吸着させた。5倍
量の同緩衝液で洗浄後0〜1.0MKClグラジエント
溶出を行なった。BanI制限エンドヌクレアーゼはK
Cl濃度0.5M付近で溶出された。溶出した酵素液を
透析チューブに入れ、2mMメルカプトエタノール、5
0%グリセロールを含んだリン酸緩衝液に透析すること
により0.2mの酵素液が得られた。得られた酵素液
の酵素活性を測定したところ10,000ユニットであ
った。(4) Production of BanI restriction endonuclease by Escherichia coli HB101 (pBAN11) (3) Transformant Escherichia coli HB10
1 (pBAN11) (Microtechnology Research Institute No. 9424) at 37 ° C. in a 2 volume flask containing 500 m of the LB medium,
Shaking culture was performed for 16 hours. After centrifuging, the cells were collected, washed and suspended in 25m of 20mM Tris-HCl buffer (pH 7.5) containing 10mM MgCl 2 , 7mM 2-mercaptoethanol, and ultrasonically disrupted at 0 ° C for 10 minutes. It was Further, the enzyme extract was obtained by centrifugation at 12,000 rpm for 10 minutes. Next, ammonium sulfate powder was added to and dissolved in this enzyme extract under ice-cooling, and a 30-80% saturated fraction (the degree of saturation is indicated by the Osborne method) was collected by centrifugation. The recovered precipitate was dissolved in 2m of 10mM phosphate buffer (pH 7.5) containing 2mM mercaptoethanol and 5% glycerol, put into a dialysis tube, and dialyzed against 100 times volume of the same buffer overnight. did. Then, it was adsorbed on a column (capacity 20 m) of phosphocellulose (manufactured by Whatman) equilibrated with the same buffer solution. After washing with 5 volumes of the same buffer, 0-1.0 MKCl gradient elution was performed. BanI restriction endonuclease is K
It was eluted at a Cl concentration of around 0.5M. The eluted enzyme solution was put into a dialysis tube, and 2 mM mercaptoethanol, 5
A 0.2 m enzyme solution was obtained by dialysis against a phosphate buffer containing 0% glycerol. When the enzyme activity of the obtained enzyme solution was measured, it was 10,000 units.
この様にして得られた酵素液は他の制限エンドヌクレア
ーゼ、フォスファターゼ、非特異的DNaseなどを含ん
でおらず、遺伝子工学の分野で利用することが可能であ
った。なおBanI制限エンドヌクレアーゼの活性の測
定は、1μgのλ−DNAを20mMトリス塩酸緩衝
液、10mM絵塩化マグネシウム溶液、50mM硫酸ア
ンモニウム、7mM2−メルカプトエタノールからなる
反応液45μに溶解し、その混合液に5μの酵素液
を加えて、37℃で1時間の反応を行なった後、アガロ
ース電気泳動を行なうことにより測定する。酵素活性に
おける1単位は37℃、pH7.5において1時間に1μ
gのγ−DNAを完全に分解する酵素活性をいう。The enzyme solution thus obtained did not contain any other restriction endonuclease, phosphatase, non-specific DNase, etc., and could be used in the field of genetic engineering. The activity of BanI restriction endonuclease was measured by dissolving 1 μg of λ-DNA in 45 μl of a reaction solution consisting of 20 mM Tris-hydrochloric acid buffer solution, 10 mM magnesium chloride solution, 50 mM ammonium sulfate, and 7 mM 2-mercaptoethanol. The enzyme solution is added, the mixture is reacted at 37 ° C. for 1 hour, and then agarose gel electrophoresis is performed to measure. One unit in enzyme activity is 1μ per hour at 37 ° C and pH 7.5.
It refers to the enzymatic activity that completely decomposes gamma-DNA.
第1図は本願発明のpBAN11のプラスミドの制限酵
素地図を示す。FIG. 1 shows a restriction enzyme map of the plasmid of pBAN11 of the present invention.
Claims (1)
us aneurinolyticus)IAM 1077由来のBanI
制限エンドヌクレアーゼ遺伝子を含む、制限酵素、Sa
u3AIにより切断された3.6kbである染色体DN
A断片を組み込んだ、大腸菌にて複製できる組換えプラ
スミドで形質転換されたエシェリヒア(Escherichia)
属に属する微生物を培養し、該培養物からBanI制限
エンドヌクレアーゼを採取することを特徴とするBan
I制限エンドヌクレアーゼの製造法。1. Bacillus anoylinolyticus
usAneurinolyticus) BanI from IAM 1077
Sa, a restriction enzyme containing a restriction endonuclease gene
Chromosome DN 3.6 kb cleaved by u3AI
Escherichia transformed with a recombinant plasmid incorporating A fragment and capable of replicating in E. coli
Ban which is characterized by culturing a microorganism belonging to the genus and collecting BanI restriction endonuclease from the culture.
Method for producing I restriction endonuclease.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62171746A JPH0630576B2 (en) | 1987-07-09 | 1987-07-09 | Ban I Method for producing restricted endonuclease |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP62171746A JPH0630576B2 (en) | 1987-07-09 | 1987-07-09 | Ban I Method for producing restricted endonuclease |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6416585A JPS6416585A (en) | 1989-01-20 |
JPH0630576B2 true JPH0630576B2 (en) | 1994-04-27 |
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Family Applications (1)
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JP62171746A Expired - Fee Related JPH0630576B2 (en) | 1987-07-09 | 1987-07-09 | Ban I Method for producing restricted endonuclease |
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-
1987
- 1987-07-09 JP JP62171746A patent/JPH0630576B2/en not_active Expired - Fee Related
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Publication number | Publication date |
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JPS6416585A (en) | 1989-01-20 |
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