JPS5945358B2 - Novel plasmid with neomycin and kanamycin resistance - Google Patents

Novel plasmid with neomycin and kanamycin resistance

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JPS5945358B2
JPS5945358B2 JP57157368A JP15736882A JPS5945358B2 JP S5945358 B2 JPS5945358 B2 JP S5945358B2 JP 57157368 A JP57157368 A JP 57157368A JP 15736882 A JP15736882 A JP 15736882A JP S5945358 B2 JPS5945358 B2 JP S5945358B2
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neomycin
plasmid
bacillus
strain
kanamycin
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貴行 星野
登 冨塚
隆幸 池田
裕之 成島
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • C12N15/75Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora for Bacillus

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Description

【発明の詳細な説明】 本発明は好熱菌を宿主とする組換えDNA実験のベクタ
ーとして有用な新規なプラスミドに関するものであり、
より詳しくはネオマイシン、カナマイシン耐性の遺伝子
を内部に備え、その分子量が約3.0メガダルトンであ
り、図に示される制限酵素開裂地図により特徴づけられ
る新規なプラスミドに関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a novel plasmid useful as a vector for recombinant DNA experiments using thermophilic bacteria as a host.
More specifically, the present invention relates to a novel plasmid that contains neomycin and kanamycin resistance genes, has a molecular weight of approximately 3.0 megadaltons, and is characterized by the restriction enzyme cleavage map shown in the figure.

従来、組換えDNA実験は主として大腸菌を宿主とする
系で広く研究がおこなわれインシュリン、インターフェ
ロン、ヒト成長ホルモン等が大腸菌で量産されるなど大
きな成果を挙げている。
Conventionally, recombinant DNA experiments have been widely conducted mainly in systems using E. coli as a host, and great results have been achieved, such as the mass production of insulin, interferon, human growth hormone, etc. using E. coli.

大腸菌の宿主−ベクター系はほぼ完成されており、また
大腸菌以外にも酵母、枯草菌などで宿主−ベクター系が
開発され応用への道が検討されつつある。
The host-vector system for Escherichia coli has almost been completed, and host-vector systems have been developed for yeast, Bacillus subtilis, etc. in addition to Escherichia coli, and avenues for application are being considered.

しかし、上記の菌はいずれも生育温度が30℃〜37℃
の中温菌である点に問題がある。
However, all of the above bacteria have a growth temperature of 30°C to 37°C.
The problem is that it is a mesophilic bacterium.

一方、好熱性細菌は、生育上限温度が55℃〜75℃に
ある中等度好熱菌と、生育上i>1温度が75℃以上で
ある高度好熱菌とに大別されるが、いずれについても、
その有する酵素、生体成分が耐熱性、耐溶媒性に優れて
いる事が知られており、とりわけ好熱菌由来の耐熱性酵
素及び耐熱性生体機能のバイオリアクター等の工業プロ
セスへの応用という点から注目を集めている。
On the other hand, thermophilic bacteria are broadly divided into moderate thermophiles, whose upper limit temperature for growth is between 55°C and 75°C, and highly thermophilic bacteria, whose growth temperature i>1 is 75°C or higher. Regarding,
It is known that the enzymes and biological components that it contains are excellent in heat resistance and solvent resistance, especially in terms of the application of thermostable enzymes derived from thermophilic bacteria and thermostable biological functions to industrial processes such as bioreactors. It is attracting attention from

従って、好熱性細菌の育種が重要と考えられるが、その
為の一つの、しかも有力な手段と考えられる好熱性細菌
の宿主−ベクター系の開発研究については、ベクターの
有力候補と考えられるプラスミドの検索を含めても以下
の報告しか知られていない。
Therefore, the breeding of thermophilic bacteria is considered to be important, and research on the development of host-vector systems for thermophilic bacteria, which is considered to be one of the most effective means for this purpose, is necessary. Even after searching, only the following reports are known.

(1)高度好熱菌よりの染色体外DNAの分離ヒシヌマ
、F、、タナカ、T、アンド サカグチ、K。
(1) Isolation of extrachromosomal DNA from highly thermophilic bacteria Hishinuma, F., Tanaka, T., and Sakaguchi, K.

J 、 Gen、Microb、、104. 193−
199(1978)(2)薬剤耐性の好熱性バチルス属
細菌よりの4種類のプラスミドの分離とその性質の部分
解析ピングハム1.A、H,A、、ブルドン、C,J−
アンド アトキン゛ノン、T。
J. Gen. Microb, 104. 193-
199 (1978) (2) Isolation of four types of plasmids from drug-resistant thermophilic Bacillus bacteria and partial analysis of their properties Pingham 1. A, H, A, Bourdon, C, J-
and Atkinnon, T.

J 、 Gen 、Mjcrob−、114,401−
408(1979)(3) バチルス・ステアロサー
モフィルスのプラスミドPAB124の解析及び欠失誘
導体の創製ピングハム、A、Hl、、ブルドン、C,J
J, Gen, Mjcrob-, 114,401-
408 (1979) (3) Analysis of plasmid PAB124 of Bacillus stearothermophilus and creation of deletion derivatives Pingham, A. Hl., Bourdon, C. J.
.

アンド アトキンソン、T。and Atkinson, T.

J、Gen 、Microb、 、 119.109−
115(1980)(4)好熱性バチルス属細菌よりの
薬剤耐性プラスミドの分離と解析、及び部分欠失プラス
ミドの創製 イマナカ、T、、フジイ0M、アンド アイμ、S。
J, Gen, Microb, , 119.109-
115 (1980) (4) Isolation and analysis of drug-resistant plasmids from thermophilic Bacillus bacteria and creation of partially deleted plasmids Imanaka, T., Fujii 0M, and I μ, S.

J、Bact、 、 146(3)、1091−109
7(1981)(5)サーマス・サーモフィルスから単
離されたプラスミド(PTT 1 )の物理的性状 エベルハード、M、D、、バスクエズ、C0゜バレンズ
エラ、P、、ビキュナ、R,アンドユデレビツク、A。
J, Bact, 146(3), 1091-109.
7 (1981) (5) Physical properties of a plasmid (PTT 1 ) isolated from Thermus thermophilus Eberhard, M.D., Vasquez, C. Valenzuela, P., Vicuna, R., Andyudelevik. ,A.

Plasmjd、6.1−6(1981)(6)プラス
ミドDNAによるバチルス・ステアロサーモフィルスの
形質転換及びバチルス・ステアロサーモフィルス、バチ
ルス・ズグチルス間共用ベクターの性質 イマナカ、T、、フジイ2M、、アラモリ。
Plasmjd, 6.1-6 (1981) (6) Transformation of Bacillus stearothermophilus with plasmid DNA and properties of shared vectors between Bacillus stearothermophilus and Bacillus zugutilus Imanaka, T., Fujii 2M, . Aramori.

■、アンド アイμ、S。■, and i μ, S.

J 、Bac t 、 、 149(3) 、 824
−830 (1982)そこで、本発明者らは、その宿
主が好熱性の微生物であって、その内部にネオマイシン
、カナマイシン耐性の遺伝子を備えた微生物を自然界よ
り検索した結果、バチルス属に属する一菌株から新規な
プラスミドを得ることに成功した。
J.Bact., 149(3), 824
-830 (1982) Therefore, the present inventors searched the natural world for microorganisms whose hosts are thermophilic microorganisms and which have genes for neomycin and kanamycin resistance, and as a result, found a strain belonging to the genus Bacillus. We succeeded in obtaining a new plasmid from.

このプラスミドは前記の制限酵素開裂地図に示され、分
子量は小さく、また種々の制限酵素による特異的な切断
点を有し、ネオマイシン、カナマイシンに対する耐性遺
伝子をプラスミドDNA上に有している。
This plasmid is shown in the above-mentioned restriction enzyme cleavage map, has a small molecular weight, has specific cleavage points by various restriction enzymes, and has a resistance gene for neomycin and kanamycin on the plasmid DNA.

(以下、本プラスミドをIPTHNIJと略称する。(Hereinafter, this plasmid will be abbreviated as IPTHNIJ.

)なお、図に示されている制限酵素の略称は次のとおり
である。
) The abbreviations of the restriction enzymes shown in the figure are as follows.

(υ AccIはアシネトバクタ−・カルコアセティカ
ス由来の酵素 (2) Bglmはバチルス・グロビギー由来の酵素
(3) EcoRIはエシェリヒア・コリ由来の酵素
(4) HhaIはハエモフイルス・ハエモリディカ
ス由来の酵素 (5) Hpallはハエモフイルス パラインフル
エンザエ由来の酵素 (6) PstIはプロビデンシア・ストアルテイイ
由来の酵素 (7) TaqIはサーマス・アクアティカス由来の
酵素を示す。
(υ AccI is an enzyme derived from Acinetobacter calcoaceticus (2) Bglm is an enzyme derived from Bacillus globigii (3) EcoRI is an enzyme derived from Escherichia coli (4) HhaI is an enzyme derived from Haemophilus haemoridicus (5) Hpall is an enzyme derived from Haemophilus parainfluenzae (6), PstI is an enzyme derived from Providencia stoarteii (7), and TaqI is an enzyme derived from Thermus aquaticus.

以下、ネオマイシン、カナマイシン耐性を有する既知の
好熱菌由来のプラスミドとの相違点を表に示す。
Differences from known thermophile-derived plasmids having resistance to neomycin and kanamycin are shown in the table below.

表から明らかなようIこ、PTHNlは既知のプラスミ
ドに較べ、分子量、制限酵素による切断パターンが明ら
かに異なっており、新規なプラスミドであることが認め
られる。
As is clear from the table, PTHNl is clearly different from known plasmids in molecular weight and restriction enzyme cleavage pattern, and is recognized as a novel plasmid.

プラスミドDNAがベクターたり得る為には、そのプラ
スミドが宿主内での自律的増殖能、及び選択マーカー(
そのプラスミドが宿主内に存在していることを示すマー
カー)を有していることが必須であるが、PTHNlは
好熱菌及び枯草菌での自律的増殖能及びネオマイシン、
カナマイシン耐性という極めて選択に有利なマーカーを
有している。
In order for plasmid DNA to be used as a vector, the plasmid must have the ability to autonomously reproduce within the host and a selection marker (
It is essential that the plasmid has a marker indicating that it is present in the host, but PTHNl has the ability to autonomously grow in thermophilic bacteria and Bacillus subtilis, and neomycin,
It has kanamycin resistance, a marker that is extremely advantageous for selection.

更にPTHNlは図からも明らかなように、Accl、
Bglll 、EcoRI 、 HhaI 、 Ps
tIなどの制限酵素による開裂部位を特定のしかも限ら
れた位置に有している。
Furthermore, as is clear from the figure, PTHNl is Accl,
Bgll, EcoRI, HhaI, Ps
It has a cleavage site by a restriction enzyme such as tI at a specific and limited position.

このことはPTHNIをベクターとして利用する際に、
挿入すべき異種遺伝子の導入部位を有意に保持できると
いう点で有利である。
This means that when using PTHNI as a vector,
This is advantageous in that the introduction site for the heterologous gene to be inserted can be significantly retained.

また、PTHNlは枯草菌でも好熱菌でもベクターとし
て利用できる点で有利である。
Furthermore, PTHNl is advantageous in that it can be used as a vector for both Bacillus subtilis and thermophilic bacteria.

従って、PTHNIをベクターとして用いることにより
異種遺伝子を同時に枯草菌と好熱菌にクローン化するこ
とも可能である。
Therefore, by using PTHNI as a vector, it is also possible to simultaneously clone a heterologous gene into Bacillus subtilis and a thermophilic bacterium.

また、枯草菌とPTHNlの分離源である好熱菌、バチ
ルス・ステアロサーモフィルスとは同じバチルス属に属
するという共通点を有するためその近縁性から既に枯草
菌で発現している異種遺伝子は、好熱菌でも発現される
可能性が高いものと考えられる。
In addition, since Bacillus stearothermophilus, a thermophilic bacterium from which Bacillus subtilis was isolated, has a common feature that they belong to the same genus Bacillus, due to their close kinship, the heterologous genes already expressed in Bacillus subtilis are , it is thought that there is a high possibility that it is also expressed in thermophilic bacteria.

そこで、既に枯草菌にクローン化されている遺伝子を、
本プラスミドを用いて好熱菌に移入する事によって、も
しその遺伝子産物が55℃付近での耐熱性を有するなら
ば、発酵工業における冷却コストの節減が、好熱菌によ
る発酵生産によって達成される事となる。
Therefore, the genes that had already been cloned into Bacillus subtilis were
By using this plasmid to transfer into thermophilic bacteria, if the gene product has heat resistance around 55°C, reduction of cooling costs in the fermentation industry can be achieved by fermentative production by thermophilic bacteria. It happens.

また、耐熱性、耐溶媒性等の性質に優れた好熱菌の酵素
の遺伝子を、本プラスミドをベクターとして好熱菌宿主
にクローン化し、その量産を図る事によって、バイオリ
アクター等への応用が可能であり、工業プロセスへの応
用が期待される。
In addition, by cloning the enzyme gene of thermophilic bacteria, which has excellent properties such as heat resistance and solvent resistance, into a thermophilic bacterial host using this plasmid as a vector and mass producing it, it will be possible to apply it to bioreactors, etc. This is possible and is expected to be applied to industrial processes.

PTHNlの入手は、本発明者らが土壌中から新たに分
離した中等度好熱菌、バチルス・ステアロサーモフィル
ス1株をTYS培地tこより対数増殖後期迄増殖させて
得た菌体を、リゾチーム、SDS処理によって溶菌させ
る事によって達せられる。
PTHNl was obtained by growing one strain of Bacillus stearothermophilus, a moderately thermophilic bacterium newly isolated by the present inventors from soil, in TYS medium until late logarithmic growth. , achieved by lysing the bacteria by SDS treatment.

マタ、バチルス・ステアロサーモ’フイ/L’スNI株
は好気性の有胞子桿菌、ダラム染色陽性であり、生育至
適温度が約55℃で37℃では生育しない菌株であるが
PTHNI及びテトラサイクリン耐性を有するプラスミ
ドPTHT15を保有する点では従来に認められない新
規な微生物である。
Bacillus stearothermo'hui/L's NI strain is an aerobic sporobacillus, positive for Durham staining, and has an optimal growth temperature of approximately 55°C and does not grow at 37°C, but is resistant to PTHNI and tetracycline. It is a novel microorganism that has not been previously recognized in that it possesses the plasmid PTHT15.

本菌株は当初ネオマイシン耐性株として土壌中より分離
されたがネオマイシンに対して耐性を示したのみならず
カナマイシン、アンピシリン、テトラサイクリン(こ対
しても耐性を示し、エリスロマイシン、クロラムフェニ
コール、ストレプトマイシンには感受性であった。
This strain was initially isolated from soil as a neomycin-resistant strain, but it was resistant not only to neomycin, but also to kanamycin, ampicillin, and tetracycline, and to erythromycin, chloramphenicol, and streptomycin. It was sensitivity.

なお、本菌株は微工研菌寄第6660号として寄託され
ている。
In addition, this strain has been deposited as Microtechnical Research Institute No. 6660.

以下、実施例1こより本発明をより具体的に詳述する。The present invention will be described in more detail below from Example 1.

実施例 1 菌株のスクリーニング 茨城県筑波郡谷田部町の土壌サンプル約11をTYS培
地(ディフコ・トリプトン2%、ディフコ・イースト・
エキストラクト1%、NaC11%)100#!に加え
55℃で約8時間振盪培養後、ネオマイシン(20μ?
/ml)を含むTYS寒天平板上で生育したコロニーの
一つからバチルス・ステアロサーモフィルスN1株(微
工研菌寄第6660号)が得られた。
Example 1 Screening of bacterial strains Approximately 11 soil samples from Yatabe Town, Tsukuba District, Ibaraki Prefecture were grown in TYS medium (Difco Tryptone 2%, Difco Yeast
Extract 1%, NaC 11%) 100#! After shaking culture at 55°C for about 8 hours, neomycin (20μ?
Bacillus stearothermophilus strain N1 (Feikoken Bacterial Serial No. 6660) was obtained from one of the colonies grown on a TYS agar plate containing 100% Bacillus stearothermophilus.

実施例 2 プラスミドPTHN1のバチルス・ステアロサーモフィ
ルスN1株からの分離 バチルス・ステアロサーモフィルスN1株(微工研菌寄
第6660号)の生物学的に純粋な培養基から1007
21のネオマイシン20μf?/mlをきむTYS培地
(デイフコーバンド・トリプトン2チ、ディフコ・イー
スト・エキストラクト1%、N a C,11% )に
接種し55℃で16〜18時間振盪培養する。
Example 2 Isolation of plasmid PTHN1 from Bacillus stearothermophilus strain N1.
21 neomycin 20μf? /ml was inoculated into TYS medium (2 ml of Difco band tryptone, 1% Difco yeast extract, 11% NaC) and cultured with shaking at 55°C for 16 to 18 hours.

この培養液を1tのテトラサイクリン20μ′?/71
11を含有するTYS培地に接種し、55℃で5時間培
養する。
Add 1 t of this culture solution to 20μ' of tetracycline. /71
11 and cultured at 55° C. for 5 hours.

菌体を遠心によって集め、TBS(20mMTrjs−
HCl、5mMEDTA。
The bacterial cells were collected by centrifugation and added to TBS (20mM Trjs-
HCl, 5mM EDTA.

100mMNacl PH7,5)で洗浄後菌体湿重
量41当り、10772#(7)25%シヨ糖含有TE
Sに懸濁する。
After washing with 100mM NaCl PH7.5), per 41 bacterial cell wet weight, 10772# (7) 25% sucrose-containing TE
Suspend in S.

リゾチーム(10μグ/me)を2ml、0.025M
−BDTA(PH8,0)4mlを加え、0℃で10分
間静置、続いて37℃に10分間保温する。
2 ml of lysozyme (10 μg/me), 0.025 M
-Add 4 ml of BDTA (PH8,0), leave at 0°C for 10 minutes, and then incubate at 37°C for 10 minutes.

この細胞混合液に2mlの10%SD815mlの5M
−NaC1を加え4℃に15〜18時間静置する。
Add 2 ml of 10% SD to this cell mixture, 815 ml of 5M
-Add NaCl and leave at 4°C for 15-18 hours.

これを2800Orpm、1時間の超遠心によって遠心
し、上清を得る。
This is centrifuged by ultracentrifugation at 2800 rpm for 1 hour to obtain a supernatant.

この上清にポリエチレングリコール6000を10係(
w/v)加え、2〜3時間時間区静置2200 rpm
、2分の遠心で沈澱を得る。
To this supernatant, add 10 parts of polyethylene glycol 6000 (
w/v) and left at 2200 rpm for 2 to 3 hours.
, obtain a precipitate by centrifugation for 2 minutes.

この沈澱を151111のTBSに溶解し、C3Ct及
びエチジウムブロマイドを加えて密度を1.61〜1.
62に調整する。
This precipitate was dissolved in 151111 TBS, and C3Ct and ethidium bromide were added to adjust the density to 1.61-1.
Adjust to 62.

この試料を3800Orpmで30〜40時間、平衝密
度勾配遠心する。
This sample is subjected to density gradient centrifugation at 3800 rpm for 30-40 hours.

生じたプラスミドDNAのバンドを集め、イソアミルア
ルコールでエチジウムブロマイドを除去した後、TEN
(20mMTris −HCL、1mMEDTA、20
mMNaC!、)に透析する事によってプラスミドDN
A溶液が得られる。
The resulting plasmid DNA bands were collected, ethidium bromide was removed with isoamyl alcohol, and then TEN
(20mM Tris-HCL, 1mM EDTA, 20mM Tris-HCL, 1mM EDTA,
mMNaC! ) by dialysis against plasmid DNA.
Solution A is obtained.

このプラスミドDNA溶液はPTHNIとPTHT15
の混合物であるがこの溶液を0.7%の低融点アガロー
ス(BRI社製)による電気泳動に供し、生ずる2つの
バンドのうちPTHNlに相当する部分を切り出し、ゲ
ルから溶出する事によって純粋なPTHNlが得られる
This plasmid DNA solution contains PTHNI and PTHT15.
This solution is subjected to electrophoresis using 0.7% low-melting-point agarose (manufactured by BRI), and the portion corresponding to PTHNl is cut out from the two bands generated and eluted from the gel to obtain pure PTHNl. is obtained.

低融点アガロースゲルからのDN4の回収は以下の手順
によった。
DN4 was recovered from the low melting point agarose gel according to the following procedure.

切り出したゲルスライスを65℃に保温して融解、これ
に2倍量の0.5m MEDT Aを含む50 mMT
p i s HC7緩衝液(PH8,0)を加え、
37℃に移し保温する。
The cut out gel slices were kept warm at 65°C to thaw, and then added with 50 mMT containing twice the amount of 0.5 m MEDT A.
Add p i s HC7 buffer (PH8,0),
Transfer to 37℃ and keep warm.

これに等量の0.1 MT r i s −HCIH衝
液(PH80)で飽和させたフェノールを加え混合、遠
心(3000〜5000rpm、5分)後、上層の水層
を分取する。
Phenol saturated with an equal amount of 0.1 M Tris-HCIH solution (PH80) is added to this, mixed, and after centrifugation (3000 to 5000 rpm, 5 minutes), the upper aqueous layer is separated.

フェノール抽出をもう一度行いエーテルによってフェノ
ールを水層より除去した後、3M酢酢酸アンユニラム溶
液1/10容加え、3容のエタノールによりエタノール
沈澱を行う。
After performing phenol extraction once more and removing phenol from the aqueous layer with ether, 1/10 volume of 3M acetic acid amuniram solution is added, and ethanol precipitation is performed with 3 volumes of ethanol.

得られた沈澱をTENに溶解してプラスミド溶液とした
The obtained precipitate was dissolved in TEN to prepare a plasmid solution.

PTHNIの特性決定の手順 PTHNlの分子量は、その超らせん構造(super
cciled 5tructure )のDNA及び制
限酵素によって切断された断片のアガロースゲル電気泳
動より得られた。
Procedure for characterizing PTHNI The molecular weight of PTHNI is determined by its superhelical structure.
cciled 5structure) and a fragment cut with a restriction enzyme by agarose gel electrophoresis.

この際の分子量マーカーはPBR322DNA(2,6
7md)、Co1EI鳳(4,2md)AびラムダDN
AのHi n d N分解断片(14,6、5,84、
4,05、2,67、1,04。
The molecular weight marker at this time was PBR322DNA (2,6
7md), Co1EI Otori (4, 2md) A and Lambda DN
Hin d N degradation fragments of A (14, 6, 5, 84,
4,05, 2,67, 1,04.

1.21 、0.34md)、ラムダDNA(7)Ec
oRI分解断片(13,7、4,74、3,73、3,
48,3,02゜2.13md)を用いた。
1.21, 0.34md), Lambda DNA (7) Ec
oRI degradation fragment (13,7,4,74,3,73,3,
48,3,02°2.13md) was used.

制限酵素による切断は、プラスミドDNA溶液からエタ
ノール沈澱によってDNAを沈澱させ、適当な緩衝液に
溶解して行なった。
Cleavage with restriction enzymes was carried out by precipitating DNA from a plasmid DNA solution by ethanol precipitation and dissolving it in an appropriate buffer.

制限酵素は全酒造よりの市販品を用いた。アガロースゲ
ル電気泳動はシークム社のアガロースを0.5 %又は
0.7%の濃度で用い、水平ゲル電気泳動槽によってゲ
ル長さ1傭当り1.5vの定電圧で15〜17時間行な
った。
A commercially available restriction enzyme from Zenshuzo was used. Agarose gel electrophoresis was carried out using Secum's agarose at a concentration of 0.5% or 0.7% in a horizontal gel electrophoresis chamber at a constant voltage of 1.5 V per 1 hour of gel length for 15 to 17 hours.

PTHNIが、そのDNA上にネオマイシン、カナマイ
シン耐性遺伝子を有している事は、枯草菌バチルス・ズ
ブチルスRM125株プロトプラストへの形質転換実験
によって確かめられた。
It was confirmed by a transformation experiment into Bacillus subtilis RM125 strain protoplasts that PTHNI has neomycin and kanamycin resistance genes on its DNA.

バチルス・ズブチルスRM125株のプロトプラストの
調諷形質転換、プロトプラストの再生の手順はChan
g&Cohenの方法(Mo1ec 、Gen。
The procedures for the synthetic transformation of protoplasts of Bacillus subtilis strain RM125 and the regeneration of protoplasts are as follows:
G &Cohen's method (Molec, Gen.

Genet、、168,111−115(1979)に
よって行なった。
Genet, 168, 111-115 (1979).

この方法の概略はRM125株の対数増殖菌体を等供液
中でリゾチーム処理によってプロトプラスト化し、この
プロトプラスト懸濁液にプラスミドDNA溶液を加え、
ポリエチレングリコール6000 FCよってDNAの
プロトプラスト内への取込みを促した後、再生培地でプ
ロトプラストから栄養細胞への再生を図るというもので
ある。
The outline of this method is to convert logarithmically grown bacterial cells of the RM125 strain into protoplasts by treating with lysozyme in a given solution, add a plasmid DNA solution to this protoplast suspension, and
After promoting the uptake of DNA into protoplasts using polyethylene glycol 6000 FC, the protoplasts are regenerated into vegetative cells using a regeneration medium.

PTHNIDNA約1μグを用いて、RM125株のプ
ロトプラスト懸濁液0.5mg(2x ]、 Osプロ
トプラスト/7721)に対して形質転換を行ない、再
生培地上でネオマイシン、カナマイシン耐性株の出現を
検討したところ、この際のプロトプラストの再生率10
%(2X108/772β)に対してIX 103/m
eの頻度でネオマイシン、カナマイシン耐性株が生じた
Approximately 1 μg of PTHNI DNA was used to transform 0.5 mg of protoplast suspension of RM125 strain (2x), Os protoplast/7721), and the appearance of neomycin- and kanamycin-resistant strains was examined on regeneration medium. , the regeneration rate of protoplasts at this time is 10
IX 103/m for % (2X108/772β)
Neomycin- and kanamycin-resistant strains occurred at a frequency of e.

一方、プラスミドDNA溶液を加えなかった系(コント
ロール)ではネオマイシン、カナマイシン耐性株は2×
10&個以上のプロトプラストを徹いても生じてほこな
かった。
On the other hand, in the system to which no plasmid DNA solution was added (control), neomycin- and kanamycin-resistant strains were treated with 2×
Even after 10+ protoplasts were produced, no protoplasts were produced.

ここで得られたRM125株のネオマイシン、カナマイ
シン耐性株よりプラスミドDNAを、バチルス・ステア
ロサーモフィルスN1株よりのプラスミドDNAの抽出
の際と同様(リゾチーム処理の温度及び時間が37℃3
0分間である点が異なる。
Plasmid DNA was extracted from the neomycin- and kanamycin-resistant RM125 strain obtained here, using the same method as in the extraction of plasmid DNA from Bacillus stearothermophilus N1 strain (the temperature and time of lysozyme treatment were 37°C and 30°C).
The difference is that it is 0 minutes.

)の方法で抽出し検討したところ、PTHNlと同一分
子量で、制限酵素による切断パターンも全く同一なプラ
スミドDNAが回収された。
), plasmid DNA was recovered that had the same molecular weight as PTHNl and had exactly the same restriction enzyme cleavage pattern.

この事実は、PTHNIがネオマイシン、カナマイシン
耐性遺伝子を有しており、このプラスミドがRM125
株に入った事によってRM125株がネオマイシン、カ
ナマイシン耐性の形質を示すに到った事を証明するもの
である。
This fact indicates that PTHNI has neomycin and kanamycin resistance genes, and this plasmid
This proves that the RM125 strain has become resistant to neomycin and kanamycin.

同時に、PTHNlが、好熱菌及び枯草菌で、自律的増
殖能及び形質の発現が可能なプラスミドである事、つま
り本プラスミドが両菌株でベクターとして利用し得る事
実を明らかにするものである。
At the same time, this study reveals that PTHNl is a plasmid capable of autonomous growth and expression of traits in thermophilic bacteria and Bacillus subtilis, that is, the fact that this plasmid can be used as a vector in both strains.

ネオマイシン、カナマイシン耐性を有する好熱菌のプラ
スミドとしては前記の表に示したとおりであるが、PT
HNlと他のものでは前述のように明らかに異なってお
り、PTHNlは従来認められない新規なプラスミドで
ある。
Plasmids for thermophilic bacteria resistant to neomycin and kanamycin are shown in the table above, but PT
As mentioned above, HNl and other plasmids are clearly different, and PTHNl is a novel plasmid that has not been previously recognized.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

図面はPTHNlの制限酵素開裂地図を示し、図中のA
cclはアシネトバクタ−・カルコアセティカス由来の
酵素、Bglffはバチルス・グロビギー由来の酵素、
EcoRIはエシェリヒア・コリ由来の酵素、HhaI
はハエモフイルス・ハエモリティカス由来の酵素、Hp
aIはハエモフイルス バラインフルエンザエ由卒の酵
素、PstIはプロビデンシア・ストアルテイイ由来の
酵素、Taq■はサーマス・アクアティカス由来の酵素
をそれぞれ示している。
The figure shows the restriction enzyme cleavage map of PTHNl, and A in the figure shows the restriction enzyme cleavage map of PTHNl.
ccl is an enzyme derived from Acinetobacter calcoaceticus, Bglff is an enzyme derived from Bacillus globigii,
EcoRI is an enzyme derived from Escherichia coli, HhaI
is an enzyme derived from Haemophilus haemolyticus, Hp
aI represents an enzyme derived from Haemophilus rosea influenzae, PstI represents an enzyme derived from Providencia stoarteii, and Taq■ represents an enzyme derived from Thermus aquaticus.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 ネオマイシン、カナマイシン耐性の遺伝子を内部に
保有し、その分子量が約3.0メガダルトンであり、図
に示される制限酵素地図で特徴づけられるネオマイシン
、カナマイシン耐性を備えた新規なプラスミド。
1. A novel plasmid with neomycin and kanamycin resistance, which internally carries neomycin and kanamycin resistance genes, has a molecular weight of approximately 3.0 megadaltons, and is characterized by the restriction enzyme map shown in the figure.
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