JPH06189739A - メチシリン耐性黄色ブドウ球菌検査用のスタンプ用培地及びメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検査方法 - Google Patents
メチシリン耐性黄色ブドウ球菌検査用のスタンプ用培地及びメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検査方法Info
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- JPH06189739A JPH06189739A JP12274392A JP12274392A JPH06189739A JP H06189739 A JPH06189739 A JP H06189739A JP 12274392 A JP12274392 A JP 12274392A JP 12274392 A JP12274392 A JP 12274392A JP H06189739 A JPH06189739 A JP H06189739A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（以下、ＭＲ
ＳＡという。）を、たとえば２４時間の短時間で確実に
検査することができるＭＲＳＡ用のスタンプ培地を提供
すること。 【構成】 シャーレの本体に寒天培地が満たされ、該本
体に蓋体が取外し可能に被せられて、かつ前記培地及び
蓋体で被った内部が滅菌状態にされ、被検査部位にスタ
ンプ採菌するためのスタンプ培地である。前記寒天培地
が、メチシリン、及び消毒剤の中和剤を含むベアドパー
カー培地よりなることを特徴とする。
ＳＡという。）を、たとえば２４時間の短時間で確実に
検査することができるＭＲＳＡ用のスタンプ培地を提供
すること。 【構成】 シャーレの本体に寒天培地が満たされ、該本
体に蓋体が取外し可能に被せられて、かつ前記培地及び
蓋体で被った内部が滅菌状態にされ、被検査部位にスタ
ンプ採菌するためのスタンプ培地である。前記寒天培地
が、メチシリン、及び消毒剤の中和剤を含むベアドパー
カー培地よりなることを特徴とする。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】この発明はメチシリン（ＤＭＰＰ
Ｃ）に対して耐性を有するメチシリン耐性黄色ブドウ球
菌（methicillin resistant Staphylococcus aureus 、
以下ＭＲＳＡと略記する。）検査用のスタンプ用培地，
及びＭＲＳＡの検査方法に関するものである。
Ｃ）に対して耐性を有するメチシリン耐性黄色ブドウ球
菌（methicillin resistant Staphylococcus aureus 、
以下ＭＲＳＡと略記する。）検査用のスタンプ用培地，
及びＭＲＳＡの検査方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】ＭＲＳＡは、病院内感染の起因菌として
注目されて以来、近年、各病院に固有の菌株が定着して
おり、いまだ根絶されるに及んでいない。ＭＲＳＡは主
に接触伝播し、患者から患者および医療従事者への直接
的伝播、および医療機器、器材などを介しての間接的伝
播により周囲の医療従事者、患者に蔓延する。従ってＭ
ＲＳＡの汚染の恐れがある場合や、消毒効果の確認のた
めに、ＭＲＳＡの検出検査が必要となる。そして、ＭＲ
ＳＡの従来の検査は、ハートインヒュージョン寒天培地
あるいは卵黄加マンニット食塩寒天培地にて行なわれて
いる。
注目されて以来、近年、各病院に固有の菌株が定着して
おり、いまだ根絶されるに及んでいない。ＭＲＳＡは主
に接触伝播し、患者から患者および医療従事者への直接
的伝播、および医療機器、器材などを介しての間接的伝
播により周囲の医療従事者、患者に蔓延する。従ってＭ
ＲＳＡの汚染の恐れがある場合や、消毒効果の確認のた
めに、ＭＲＳＡの検出検査が必要となる。そして、ＭＲ
ＳＡの従来の検査は、ハートインヒュージョン寒天培地
あるいは卵黄加マンニット食塩寒天培地にて行なわれて
いる。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、前記し
たハートインヒュージョン寒天培地および卵黄加マンニ
ット食塩寒天培地を用いるＭＲＳＡの検査方法は、メチ
シリン耐性表皮ブドウ球菌（methicillin resistant St
aphylococcus epidermidis、以下、ＭＲＳＥと略記す
る）などの他菌も同時に検出するので、菌の分離及び同
定に２週間以上の多くの時間と労力を要し、コストもか
かる問題があった。
たハートインヒュージョン寒天培地および卵黄加マンニ
ット食塩寒天培地を用いるＭＲＳＡの検査方法は、メチ
シリン耐性表皮ブドウ球菌（methicillin resistant St
aphylococcus epidermidis、以下、ＭＲＳＥと略記す
る）などの他菌も同時に検出するので、菌の分離及び同
定に２週間以上の多くの時間と労力を要し、コストもか
かる問題があった。
【０００４】そこで、本発明の第１の課題は、前記した
従来の問題点を解消しようとしたものであって、ＭＲＳ
Ａを、たとえば２４時間の、短時間でかつ低コストで確
実に検査することができるＭＲＳＡ用のスタンプ用培地
を提供することにある。
従来の問題点を解消しようとしたものであって、ＭＲＳ
Ａを、たとえば２４時間の、短時間でかつ低コストで確
実に検査することができるＭＲＳＡ用のスタンプ用培地
を提供することにある。
【０００５】また、本発明の第２の課題は、ＭＲＳＡの
汚染場所、あるいは汚染された可能性のある場所などに
おいて、簡単にサンプリングできて短時間で検査するこ
とができるＭＲＳＡの検査方法を提供することにある。
汚染場所、あるいは汚染された可能性のある場所などに
おいて、簡単にサンプリングできて短時間で検査するこ
とができるＭＲＳＡの検査方法を提供することにある。
【０００６】
【課題を解決するための手段】前記した第１の課題を達
成するために請求項１記載の発明は、シャーレの本体に
寒天培地が満たされ、該本体に蓋体が取外し可能に被せ
られて、かつ前記培地及び蓋体で被った内部が滅菌状態
にされ、被検査部位にスタンプ採菌するためのスタンプ
用培地であって、前記寒天培地が、メチシリン、及び消
毒剤の中和剤を含むベアドパーカー培地（メチシリン及
び中和剤を含むベアドパーカー培地を以下、ＭＴＢ培地
と略記する。）よりなることを特徴とする。
成するために請求項１記載の発明は、シャーレの本体に
寒天培地が満たされ、該本体に蓋体が取外し可能に被せ
られて、かつ前記培地及び蓋体で被った内部が滅菌状態
にされ、被検査部位にスタンプ採菌するためのスタンプ
用培地であって、前記寒天培地が、メチシリン、及び消
毒剤の中和剤を含むベアドパーカー培地（メチシリン及
び中和剤を含むベアドパーカー培地を以下、ＭＴＢ培地
と略記する。）よりなることを特徴とする。
【０００７】そして、前記した第２の課題を達成するた
めの請求項２記載の発明は、シャーレの本体の寒天培地
を被検査部位にスタンプして採菌した後、蓋体を被せ、
所定温度でかつ所定時間保持して前記寒天培地に形成さ
れるコロニーを判定する菌の検査方法において、請求項
１記載のスタンプ用培地を用いることを特徴とする。
めの請求項２記載の発明は、シャーレの本体の寒天培地
を被検査部位にスタンプして採菌した後、蓋体を被せ、
所定温度でかつ所定時間保持して前記寒天培地に形成さ
れるコロニーを判定する菌の検査方法において、請求項
１記載のスタンプ用培地を用いることを特徴とする。
【０００８】
【作用】請求項１の発明において、ＭＴＢ培地は黄色ブ
ドウ球菌の生育に対して特異性を有する。培地中のメチ
シリンはメチシリンに耐性のない菌株を生育させない。
培地中の中和剤は、スタンプ採菌（以下、スタンピング
ともいう。）の際に採取される消毒剤の影響をなくす作
用をする。
ドウ球菌の生育に対して特異性を有する。培地中のメチ
シリンはメチシリンに耐性のない菌株を生育させない。
培地中の中和剤は、スタンプ採菌（以下、スタンピング
ともいう。）の際に採取される消毒剤の影響をなくす作
用をする。
【０００９】請求項２の発明は、請求項１のスタンプ用
培地を用いることより、該スタンプ用培地の作用（請求
項１の上記作用）を有効に利用してＭＲＳＡをスタンピ
ング法により検査可能とする。
培地を用いることより、該スタンプ用培地の作用（請求
項１の上記作用）を有効に利用してＭＲＳＡをスタンピ
ング法により検査可能とする。
【００１０】
【実施例】まず、本発明を得るための第１の試験例を、
図４〜図６を参照して説明する。図４（Ａ）は既知ＭＲ
ＳＡの臨床分離株，及び病院内環境に現れ易い、コアグ
ラーゼ陰性ブドウ球菌（coagulase negative staphyloc
occi）、コリネバクテリウム、ミクロコッカスなどと、
滅菌蒸留水にてマクファーランド（ＭｃＦａｒｌａｎ
ｄ）１．０の懸濁液を調製し、その１ｍｌを、滅菌済の
直径９ｃｍの被検査シャーレ１１，１２に各塗沫後乾燥
したものである。図４において１１Ａ，１２Ａは各塗沫
面を示す。そして、ＭＴＢ培地３（後述する実施例にお
けるＭＴＢ培地３の調製の記載部分参照。）よりなるス
タンプ用培地１，及び消毒剤の中和剤を加えたハートイ
ンヒュージョン培地１３（以下、ＴＨＩ培地と略記す
る、表１の配合成分参照。）よりなるスタンプ用培地１
４を各々用意する。
図４〜図６を参照して説明する。図４（Ａ）は既知ＭＲ
ＳＡの臨床分離株，及び病院内環境に現れ易い、コアグ
ラーゼ陰性ブドウ球菌（coagulase negative staphyloc
occi）、コリネバクテリウム、ミクロコッカスなどと、
滅菌蒸留水にてマクファーランド（ＭｃＦａｒｌａｎ
ｄ）１．０の懸濁液を調製し、その１ｍｌを、滅菌済の
直径９ｃｍの被検査シャーレ１１，１２に各塗沫後乾燥
したものである。図４において１１Ａ，１２Ａは各塗沫
面を示す。そして、ＭＴＢ培地３（後述する実施例にお
けるＭＴＢ培地３の調製の記載部分参照。）よりなるス
タンプ用培地１，及び消毒剤の中和剤を加えたハートイ
ンヒュージョン培地１３（以下、ＴＨＩ培地と略記す
る、表１の配合成分参照。）よりなるスタンプ用培地１
４を各々用意する。
【００１１】 ＭＴＢ培地３よりなるスタンプ用培地１の培地面は図５
（Ａ）に示すように、被検査シャーレ１１の塗沫面１１
Ａにスタンピングした後、直ちに蓋体を被せ、ＴＨＩ培
地１３よりなるスタンプ用培地１４の培地面は図５
（Ｂ）に示すように、被検査シャーレ１２の塗沫面１２
Ａにスタンピングした後、蓋体を被せ、サンプリングを
終えた。
（Ａ）に示すように、被検査シャーレ１１の塗沫面１１
Ａにスタンピングした後、直ちに蓋体を被せ、ＴＨＩ培
地１３よりなるスタンプ用培地１４の培地面は図５
（Ｂ）に示すように、被検査シャーレ１２の塗沫面１２
Ａにスタンピングした後、蓋体を被せ、サンプリングを
終えた。
【００１２】サンプリング後の両スタンプ用培地１，１
４は３７℃の保温器中にて培養し経時的に生育コロニー
を観察した。スタンプ用培地１は培養後１８時間からコ
ロニーが認められ、２４時間では図６（Ａ）に示すよう
に中心部が黒紫色で、辺緑が白色の光沢のある、ごま様
の隆起した直径１．０〜１．５ｍｍの正円形のコロニー
７を形成した。別試験の同定の結果、このコロニー７は
ＭＲＳＡと判明した。図６（Ｂ）に示すように、スタン
プ用培地１４は何種ものコロニー１５，１６，１７が形
成された。したがって、ＭＴＢ培地３のスタンプ用培地
１によればＭＲＳＡを特異的に生育させ得ることが認め
られる。
４は３７℃の保温器中にて培養し経時的に生育コロニー
を観察した。スタンプ用培地１は培養後１８時間からコ
ロニーが認められ、２４時間では図６（Ａ）に示すよう
に中心部が黒紫色で、辺緑が白色の光沢のある、ごま様
の隆起した直径１．０〜１．５ｍｍの正円形のコロニー
７を形成した。別試験の同定の結果、このコロニー７は
ＭＲＳＡと判明した。図６（Ｂ）に示すように、スタン
プ用培地１４は何種ものコロニー１５，１６，１７が形
成された。したがって、ＭＴＢ培地３のスタンプ用培地
１によればＭＲＳＡを特異的に生育させ得ることが認め
られる。
【００１３】次に、本発明の第２の試験例を、図７〜図
９を参照して説明する。ＭＴＢ培地３はメチシリン耐性
培地であるが、その後の試験において、コアグラーゼ陰
性ブドウ球菌に属するＭＲＳＥに対しては、耐性が弱く
て若干コロニーを形成することが認められたので、この
試験ではＭＲＳＡとＭＲＳＥのコロニー形状の判別性を
調べた。図７（Ａ）は既知ＭＲＳＡの臨床分離株と滅菌
蒸留水にてマクファーランド１．０の懸濁液を調製し、
その１ｍｌを、滅菌済の直径９ｃｍの被検査シャーレ２
１に塗沫後乾燥したものである。図７（Ｂ）はＭＲＳＥ
と滅菌蒸留水にてマクファーランド１．０の懸濁液を調
製し、その１ｍｌを、滅菌済の直径９ｃｍの被検査シャ
ーレ２２に塗沫後乾燥したものである。なお、図７にお
いて２１Ａ，２２Ａは各塗沫面を示す。そしてＭＴＢ培
地３よりなる各スタンプ用培地１Ａ，１Ｂを用意し、一
方のスタンプ用培地１Ａの培地面は図８（Ａ）に示すよ
うに、被検査シャーレ２１の塗沫面２１Ａにスタンピン
グした後、直ちに蓋体を閉じ、他方のスタンプ用培地１
Ｂの培地面は図８（Ｂ）に示すように、被検査シャーレ
２２の塗沫面２２Ａにスタンピングした後、蓋体を閉じ
てサンプリングを終えた。
９を参照して説明する。ＭＴＢ培地３はメチシリン耐性
培地であるが、その後の試験において、コアグラーゼ陰
性ブドウ球菌に属するＭＲＳＥに対しては、耐性が弱く
て若干コロニーを形成することが認められたので、この
試験ではＭＲＳＡとＭＲＳＥのコロニー形状の判別性を
調べた。図７（Ａ）は既知ＭＲＳＡの臨床分離株と滅菌
蒸留水にてマクファーランド１．０の懸濁液を調製し、
その１ｍｌを、滅菌済の直径９ｃｍの被検査シャーレ２
１に塗沫後乾燥したものである。図７（Ｂ）はＭＲＳＥ
と滅菌蒸留水にてマクファーランド１．０の懸濁液を調
製し、その１ｍｌを、滅菌済の直径９ｃｍの被検査シャ
ーレ２２に塗沫後乾燥したものである。なお、図７にお
いて２１Ａ，２２Ａは各塗沫面を示す。そしてＭＴＢ培
地３よりなる各スタンプ用培地１Ａ，１Ｂを用意し、一
方のスタンプ用培地１Ａの培地面は図８（Ａ）に示すよ
うに、被検査シャーレ２１の塗沫面２１Ａにスタンピン
グした後、直ちに蓋体を閉じ、他方のスタンプ用培地１
Ｂの培地面は図８（Ｂ）に示すように、被検査シャーレ
２２の塗沫面２２Ａにスタンピングした後、蓋体を閉じ
てサンプリングを終えた。
【００１４】サンプリング後の両スタンプ用培地１Ａ，
１Ｂは３７℃の保温器中にて培養し経時的に生育コロニ
ーを観察した。スタンプ用培地１Ａは培養後１８時間か
らコロニー２５が認められ、２４時間で中心部が黒紫色
で、辺緑が白色の光沢のある、ごま様の隆起した直径
１．０〜１．５ｍｍの正円形コロニーを形成し、その周
辺を０．５〜１．０ｍｍの透明帯がとり囲んでいた。ス
タンプ用培地１Ｂはコロニーの発育が遅く、培養後、１
８〜２０時間ではコロニーを認めず、２４〜２８時間で
ＭＲＳＡより小さく淡い黒色のコロニー２６の形成を示
した。このコロニー２６はＭＲＳＡと異なり、周囲の透
明帯は認めなかった。ＭＲＳＡとＭＲＳＥは、コロニー
の外観の明瞭な相違により、容易に識別することができ
た。したがって、ＭＴＢ培地３よりなるスタンプ用培地
１Ａ，１ＢによればＭＲＳＡとＭＲＳＥは容易に区別可
能なことが認められた。
１Ｂは３７℃の保温器中にて培養し経時的に生育コロニ
ーを観察した。スタンプ用培地１Ａは培養後１８時間か
らコロニー２５が認められ、２４時間で中心部が黒紫色
で、辺緑が白色の光沢のある、ごま様の隆起した直径
１．０〜１．５ｍｍの正円形コロニーを形成し、その周
辺を０．５〜１．０ｍｍの透明帯がとり囲んでいた。ス
タンプ用培地１Ｂはコロニーの発育が遅く、培養後、１
８〜２０時間ではコロニーを認めず、２４〜２８時間で
ＭＲＳＡより小さく淡い黒色のコロニー２６の形成を示
した。このコロニー２６はＭＲＳＡと異なり、周囲の透
明帯は認めなかった。ＭＲＳＡとＭＲＳＥは、コロニー
の外観の明瞭な相違により、容易に識別することができ
た。したがって、ＭＴＢ培地３よりなるスタンプ用培地
１Ａ，１ＢによればＭＲＳＡとＭＲＳＥは容易に区別可
能なことが認められた。
【００１５】次に、本発明の実施例を、図１〜図３を参
照して説明する。まず、本例で用いるスタンプ用培地１
を多数枚用意する。各スタンプ用培地１は被検査部位６
にスタンピングするためのものであり、シャーレ本体
（単に本体ともいう。）２に寒天培地であるＭＴＢ培地
３が満たされ、該本体２に蓋体４が取外し可能に被せら
れ、かつ前記ＭＴＢ培地３及び蓋体４で被った内部５が
滅菌状態にされている。本例のスタンプ用培地１は図２
に示すように、角形基板２Ａに凹部口径面積１０ｃｍ2
の円形凹部２Ｂが突出形成された本体２と、本体２の円
形凹部２Ｂの外周に取外し可能に嵌着する蓋体４とより
なり、本体２及び蓋体４はポリプロピレン等の透明プラ
スチックにて形成されている。
照して説明する。まず、本例で用いるスタンプ用培地１
を多数枚用意する。各スタンプ用培地１は被検査部位６
にスタンピングするためのものであり、シャーレ本体
（単に本体ともいう。）２に寒天培地であるＭＴＢ培地
３が満たされ、該本体２に蓋体４が取外し可能に被せら
れ、かつ前記ＭＴＢ培地３及び蓋体４で被った内部５が
滅菌状態にされている。本例のスタンプ用培地１は図２
に示すように、角形基板２Ａに凹部口径面積１０ｃｍ2
の円形凹部２Ｂが突出形成された本体２と、本体２の円
形凹部２Ｂの外周に取外し可能に嵌着する蓋体４とより
なり、本体２及び蓋体４はポリプロピレン等の透明プラ
スチックにて形成されている。
【００１６】ＭＴＢ培地３は次の要領にて調製したもの
である。表２に示す配合の培地原料と精製水１０００ｍ
ｌを混合し加熱溶解して、１２１℃，１５分間滅菌し、
これを５０℃に保った後、精製水１ｍｌ中にメチシリン
１０ｍｇ含有するメチシリン溶液を培地液１ｍｌ当りメ
チシリンが１２．５μｇの割合となるように添加し、か
つ表３に示す配合の中和剤溶液（ｐＨ７．４）を培地
（液）１リットル当り２．５ｍｌの割合でまた、３．５
％亜テルル酸カリウム溶液を、１リットル当り３ｍｌの
割合で無菌的（メンブランフィルタの濾過滅菌）に加え
て作られる（培地ｐＨは６．９）。
である。表２に示す配合の培地原料と精製水１０００ｍ
ｌを混合し加熱溶解して、１２１℃，１５分間滅菌し、
これを５０℃に保った後、精製水１ｍｌ中にメチシリン
１０ｍｇ含有するメチシリン溶液を培地液１ｍｌ当りメ
チシリンが１２．５μｇの割合となるように添加し、か
つ表３に示す配合の中和剤溶液（ｐＨ７．４）を培地
（液）１リットル当り２．５ｍｌの割合でまた、３．５
％亜テルル酸カリウム溶液を、１リットル当り３ｍｌの
割合で無菌的（メンブランフィルタの濾過滅菌）に加え
て作られる（培地ｐＨは６．９）。
【００１７】
【００１８】
【００１９】調製した滅菌状態のＭＴＢ培地は、予じめ
滅菌状態のシャーレ本体２の円形凹部２Ｂに無菌室にて
分注し、培地表面積１０ｃｍ2 の寒天培地とされ、蓋体
４が被われてＭＴＢ培地３よりなるスタンプ用培地１と
される。
滅菌状態のシャーレ本体２の円形凹部２Ｂに無菌室にて
分注し、培地表面積１０ｃｍ2 の寒天培地とされ、蓋体
４が被われてＭＴＢ培地３よりなるスタンプ用培地１と
される。
【００２０】しかして、ＭＴＢ培地３よりなるスタンプ
用培地１により手術室環境の、床、入口ドア取手、手術
台上面の各被検査部位６よりサンプリングした。すなわ
ち、図１に示すように、蓋体４を外したスタンプ用培地
１の培地面を被検査部位６にスタンピングし、図２に示
すように、蓋体４を閉じた。サンプリングした各スタン
プ用培地１は３７℃の保温器に培養した。
用培地１により手術室環境の、床、入口ドア取手、手術
台上面の各被検査部位６よりサンプリングした。すなわ
ち、図１に示すように、蓋体４を外したスタンプ用培地
１の培地面を被検査部位６にスタンピングし、図２に示
すように、蓋体４を閉じた。サンプリングした各スタン
プ用培地１は３７℃の保温器に培養した。
【００２１】２４時間の培養ではいずれのスタンプ用培
地１もコロニーの形成を認めなかった。２８〜３６時間
後、被検査部位６が手術台上面のものにおいては図３
（Ａ）に示すスタンプ用培地１のように直径１．６ｍｍ
のコロニー７と直径０．５ｍｍのコロニー８を認め、他
の被検査部位６では図３（Ｂ）に示すスタンプ用培地１
のように、コロニー形成は認めなかった。前記スタンプ
用培地１の各コロニー７，８は観察したところ形状及び
色調などより大径の５コのコロニー７はＭＲＳＡであ
り、小径の３コのコロニー８はＭＲＳＥと認められた。
（なお、同定によりコロニー７はＭＲＳＡと判明し、コ
ロニー８はＭＲＳＥであることが判明した。）
地１もコロニーの形成を認めなかった。２８〜３６時間
後、被検査部位６が手術台上面のものにおいては図３
（Ａ）に示すスタンプ用培地１のように直径１．６ｍｍ
のコロニー７と直径０．５ｍｍのコロニー８を認め、他
の被検査部位６では図３（Ｂ）に示すスタンプ用培地１
のように、コロニー形成は認めなかった。前記スタンプ
用培地１の各コロニー７，８は観察したところ形状及び
色調などより大径の５コのコロニー７はＭＲＳＡであ
り、小径の３コのコロニー８はＭＲＳＥと認められた。
（なお、同定によりコロニー７はＭＲＳＡと判明し、コ
ロニー８はＭＲＳＥであることが判明した。）
【００２２】
【発明の効果】請求項１のスタンプ用培地は、ＭＴＢ培
地を用いているので、ＭＲＳＡを消毒剤の影響を受ける
ことなく、特異的に生育させることができる。そして、
請求項１のスタンプ用培地によれば、他菌株を生育させ
ることなく、ＭＲＳＡを成育させ得るので、従来のハー
トインヒュージョン寒天培地あるいは卵黄化マンニット
食塩寒天培地の場合のようにＭＲＳＡと同時に生育した
他菌株を分離し同定する時間と手間を要せず、コスト低
減できて都合がよい。また、請求項２のＭＲＳＡの検査
方法は、請求項１記載のスタンプ用培地を用いることよ
り、たとえば３６±１℃，２４時間培養の短時間にてＭ
ＲＳＡが判定可能であり、ＭＲＳＡの検査を極く簡単に
行なうことができて便利である。そして、請求項２はス
タンピング方法であるので従来と同様に実施し易い。
地を用いているので、ＭＲＳＡを消毒剤の影響を受ける
ことなく、特異的に生育させることができる。そして、
請求項１のスタンプ用培地によれば、他菌株を生育させ
ることなく、ＭＲＳＡを成育させ得るので、従来のハー
トインヒュージョン寒天培地あるいは卵黄化マンニット
食塩寒天培地の場合のようにＭＲＳＡと同時に生育した
他菌株を分離し同定する時間と手間を要せず、コスト低
減できて都合がよい。また、請求項２のＭＲＳＡの検査
方法は、請求項１記載のスタンプ用培地を用いることよ
り、たとえば３６±１℃，２４時間培養の短時間にてＭ
ＲＳＡが判定可能であり、ＭＲＳＡの検査を極く簡単に
行なうことができて便利である。そして、請求項２はス
タンピング方法であるので従来と同様に実施し易い。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明実施例のスタンプ用培地によるスタンピ
ング工程図。
ング工程図。
【図２】本実施例で用いるスタンプ用培地構造説明図。
【図３】（Ａ）図及び（Ｂ）図は本実施例における培養
後各スタンプ用培地の正面図。
後各スタンプ用培地の正面図。
【図４】（Ａ）図及び（Ｂ）図は第１の試験例に係わ
り、ＭＲＳＡ及び他菌を塗沫乾燥した被検査シャーレの
正面図。
り、ＭＲＳＡ及び他菌を塗沫乾燥した被検査シャーレの
正面図。
【図５】（Ａ）図はＭＴＢ培地よりなるスタンプ用培地
のスタンピング工程図で、（Ｂ）図はＴＨＩ培地よりな
るスタンプ用培地のスタンピング工程図。
のスタンピング工程図で、（Ｂ）図はＴＨＩ培地よりな
るスタンプ用培地のスタンピング工程図。
【図６】（Ａ）図はＭＴＢ培地よりなるスタンプ用培地
のコロニーを示す図であり、（Ｂ）図はＴＨＩ培地より
なるスタンプ用培地のコロニーを示す図。
のコロニーを示す図であり、（Ｂ）図はＴＨＩ培地より
なるスタンプ用培地のコロニーを示す図。
【図７】（Ａ）図及び（Ｂ）図は第２の試験例に係わ
り、（Ａ）図はＭＲＳＡを塗沫乾燥した被検査シャーレ
の正面図、（Ｂ）図はＭＲＳＥを塗沫乾燥した被検査シ
ャーレの正面図。
り、（Ａ）図はＭＲＳＡを塗沫乾燥した被検査シャーレ
の正面図、（Ｂ）図はＭＲＳＥを塗沫乾燥した被検査シ
ャーレの正面図。
【図８】（Ａ）図はＭＴＢ培地のスタンプ用培地により
ＭＲＳＡをスタンピングする工程図、（Ｂ）図はＭＴＢ
培地のスタンプ用培地によりＭＲＳＥをスタンピングす
る工程図。
ＭＲＳＡをスタンピングする工程図、（Ｂ）図はＭＴＢ
培地のスタンプ用培地によりＭＲＳＥをスタンピングす
る工程図。
【図９】（Ａ）図はＭＴＢ培地のスタンプ用培地におけ
るＭＲＳＡコロニーを示す図、（Ｂ）図はＭＴＢ培地の
スタンプ用培地におけるＭＲＳＥコロニーを示す図。
るＭＲＳＡコロニーを示す図、（Ｂ）図はＭＴＢ培地の
スタンプ用培地におけるＭＲＳＥコロニーを示す図。
１ スタンプ用培地 ２ シャーレ本体 ３ ＭＴＢ培地 ４ 蓋体 ６ 被検査部位 ７ コロニー
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:445）
Claims (2)
- 【請求項１】 シャーレの本体に寒天培地が満たされ、
該本体に蓋体が取外し可能に被せられて、かつ前記培地
及び蓋体で被った内部が滅菌状態にされ、被検査部位に
スタンプ採菌するためのスタンプ用培地であって、 前記寒天培地が、メチシリン、及び消毒剤の中和剤を含
むベアドパーカー培地よりなることを特徴としたメチシ
リン耐性黄色ブドウ球菌検査用のスタンプ用培地。 - 【請求項２】 シャーレの本体の寒天培地を被検査部位
にスタンプして採菌した後、蓋体を被せ、所定温度でか
つ所定時間保持して前記寒天培地に形成されるコロニー
を判定する菌の検査方法において、請求項１記載のスタ
ンプ用培地を用いることを特徴としたメチシリン耐性黄
色ブドウ球菌の検査方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12274392A JPH06189739A (ja) | 1992-04-15 | 1992-04-15 | メチシリン耐性黄色ブドウ球菌検査用のスタンプ用培地及びメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検査方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12274392A JPH06189739A (ja) | 1992-04-15 | 1992-04-15 | メチシリン耐性黄色ブドウ球菌検査用のスタンプ用培地及びメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検査方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06189739A true JPH06189739A (ja) | 1994-07-12 |
Family
ID=14843504
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP12274392A Pending JPH06189739A (ja) | 1992-04-15 | 1992-04-15 | メチシリン耐性黄色ブドウ球菌検査用のスタンプ用培地及びメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検査方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06189739A (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2002010440A1 (fr) * | 2000-08-01 | 2002-02-07 | Pola Chemical Industries Inc. | Methode d'evaluation d'un agent antifongique |
| JP2012024032A (ja) * | 2010-07-26 | 2012-02-09 | Nikken Seibutsu Igaku Kenkyusho:Kk | 環境微生物検査用具 |
| JP2012217440A (ja) * | 2011-04-14 | 2012-11-12 | Nissui Pharm Co Ltd | 袋状微生物検出用容器 |
| JP2014132899A (ja) * | 2014-01-21 | 2014-07-24 | Cellseed Inc | 培養細胞移動治具及びその利用方法 |
| JP2015514424A (ja) * | 2012-04-16 | 2015-05-21 | ラピッド マイクロ バイオシステムズ インコーポレイテッド | 細胞培養デバイス |
| US10801004B2 (en) | 2011-11-07 | 2020-10-13 | Rapid Micro Biosystems, Inc. | Cassette for sterility testing |
-
1992
- 1992-04-15 JP JP12274392A patent/JPH06189739A/ja active Pending
Cited By (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2002010440A1 (fr) * | 2000-08-01 | 2002-02-07 | Pola Chemical Industries Inc. | Methode d'evaluation d'un agent antifongique |
| US6929927B2 (en) | 2000-08-01 | 2005-08-16 | Pola Chemical Industries Inc. | Method of evaluating antifungal agent |
| JP2012024032A (ja) * | 2010-07-26 | 2012-02-09 | Nikken Seibutsu Igaku Kenkyusho:Kk | 環境微生物検査用具 |
| JP2012217440A (ja) * | 2011-04-14 | 2012-11-12 | Nissui Pharm Co Ltd | 袋状微生物検出用容器 |
| US10801004B2 (en) | 2011-11-07 | 2020-10-13 | Rapid Micro Biosystems, Inc. | Cassette for sterility testing |
| US11788046B2 (en) | 2011-11-07 | 2023-10-17 | Rapid Micro Biosystems, Inc. | Cassette for sterility testing |
| JP2015514424A (ja) * | 2012-04-16 | 2015-05-21 | ラピッド マイクロ バイオシステムズ インコーポレイテッド | 細胞培養デバイス |
| US10407707B2 (en) | 2012-04-16 | 2019-09-10 | Rapid Micro Biosystems, Inc. | Cell culturing device |
| US11643677B2 (en) | 2012-04-16 | 2023-05-09 | Rapid Micro Biosystems, Inc. | Cell culturing device |
| JP2014132899A (ja) * | 2014-01-21 | 2014-07-24 | Cellseed Inc | 培養細胞移動治具及びその利用方法 |
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