JPH06186229A - Residual agricultural chemical analysis method - Google Patents

Residual agricultural chemical analysis method

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JPH06186229A
JPH06186229A JP20652693A JP20652693A JPH06186229A JP H06186229 A JPH06186229 A JP H06186229A JP 20652693 A JP20652693 A JP 20652693A JP 20652693 A JP20652693 A JP 20652693A JP H06186229 A JPH06186229 A JP H06186229A
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washing
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秀郎 大川
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Mitsubishi Kagaku Iatron Inc
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Mitsubishi Kagaku Iatron Inc
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Abstract

PURPOSE:To simply and rapidly measure the amount of residual asichrolfen(AF) in a natural environment sample by connecting a labeled enzyme to the connection carrier of a first antibody for reacting with a second antibody and adding a buffer liquid and measuring absorbance. CONSTITUTION:A liquid solution containing a specific amount of anti AF mammal antibody (first antibody) is allowed to react with the sample liquid solution containing AF and then a non-reaction first antibody included in a reaction liquid is connected to a carrier which is coated with a connected body of the serum albumin of the same type of mammal as the mammal producing the first antibody and AF. A labeled enzyme is connected to the carrier after washing and an antibody (second antibody) for the first antibody derived from the mammal which is different from that producing the first antibody is allowed to react with the carrier after washing. After washing the carrier, a buffer liquid containing a color developing reagent which develops color by the enzyme reaction with the substrate of the labeled enzyme is added and reacted for measuring absorbance. The AF concentration in a sample is calculated from the measurement value.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、ジフェニルエーテル系
除草剤である5ー{2ークロロー4ー(トリフルオロメ
チル)フェノキシ}ー2ーニトロ安息香酸[ 一般名; ア
シフロルフェン(Acifluorfen) 以下、AFと記す。] の自
然環境サンプル中での残留量の測定方法に関する。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a diphenyl ether herbicide 5- {2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy} -2-nitrobenzoic acid [generic name: Acifluorfen] Write down. ] For measuring the residual amount in natural environment samples of

【0002】[0002]

【従来の技術】自然環境中の残留農薬および、最近、特
に増加してきた輸入食品へのポストハーベスト農薬の問
題に、大きな社会的な関心が寄せられている。自然環境
や輸入食品に関する安全性確保のためには、これらに含
有される残留農薬の量を正確、かつ、迅速に測定するこ
とが必要である。農薬の残留分析法は、従来、農薬が登
録される時点において作物ごとに定められており、主
に、試料から農薬を抽出、精製の後、抽出物中の含有量
をガスクロマトグラフィーや高速液体クロマトグラフィ
ーなどを用いて測定していた。これらの方法は、その感
度、精度ともに充分な方法であるが、しかし、試料の調
製に相当の手間と時間を必要とすること並びに測定装置
や設備等に高額の費用を要するといった欠点があった。
輸入食品等の残留農薬の分析は、その分析件数が多大、
かつ、鮮度を保持する必要があるため、簡便性や迅速性
が重要である。また、高価な測定装置がなくても容易に
分析できることが要求される。そのため、従来の分析方
法に比し、より簡便で迅速な残留農薬の分析方法の開発
が望まれている。
2. Description of the Related Art Pesticide residues in the natural environment, and the problem of postharvest pesticides in imported foods, which has recently been increasing in recent years, has attracted great public interest. In order to ensure the safety of the natural environment and imported foods, it is necessary to accurately and quickly measure the amount of pesticide residues contained in them. Traditionally, pesticide residue analysis methods have been established for each crop at the time the pesticide is registered, and mainly after extracting and purifying the pesticide, the content in the extract is determined by gas chromatography or high-performance liquid chromatography. It was measured using chromatography and the like. These methods are sufficient in both sensitivity and accuracy, but they have the drawback of requiring considerable labor and time for sample preparation and of requiring high cost for measuring devices and equipment. .
Analysis of pesticide residues in imported foods, etc.
Moreover, since it is necessary to maintain freshness, simplicity and speed are important. Further, it is required that the analysis can be easily performed without an expensive measuring device. Therefore, it is desired to develop a simpler and faster method for analyzing residual pesticides as compared with the conventional analysis methods.

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】従来、ジフェニルエー
テル系除草剤であるAFの分析には、主にカルボン酸をメ
チル化した後、ガスクロマトグラフィーを用いて測定す
る方法が採用されていたが、その分析には相当の手間と
時間を必要としていた。このため、AFの抗体を用いて免
疫学的検出方法によるAFの簡便、迅速な分析方法を確立
することが望まれていた。
Conventionally, in the analysis of AF, which is a diphenyl ether type herbicide, a method in which a carboxylic acid is mainly methylated and then measurement is carried out using gas chromatography has been adopted. The analysis required considerable effort and time. Therefore, it has been desired to establish a simple and rapid analysis method for AF by an immunological detection method using an AF antibody.

【0004】[0004]

【課題を解決するための手段】このため、本発明者は、
自然環境サンプル中でのAFの残留量の測定方法について
誠意検討した結果、哺乳動物の血清アルブミンとAFの結
合体に対して哺乳動物を免疫した後、該哺乳動物から血
液を採取して、該血液を分離・精製することにより得ら
れるAFを認識する抗体を第一抗体とし、標識酵素を結合
し、かつ第一抗体を産生する哺乳動物と異なる種の哺乳
動物に由来する第一抗体に対する抗体を第二抗体として
用いた間接競合阻害法(ELISA法) によって、自然環境サ
ンプル中でのAFの残留量を簡便、迅速かつ、正確に分析
できることを見い出し、本発明を完成した。即ち、本発
明は5ー{2ークロロー4ー(トリフルオロメチル)フ
ェノキシ}ー2ーニトロ安息香酸を免疫学的検出方法で
ある間接競合阻害法(ELISA 法)で測定する方法であっ
て、(1) 所定量の抗AF哺乳動物抗体( 以下、第一抗体と
記す。) を含有する溶液とAFを含有するサンプル溶液を
反応し、(2) 該反応液に含まれる未反応の第一抗体を、
第一抗体を産生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清
アルブミンとAF の結合体で表面をコートした担体に結
合させ、(3) 該担体を洗浄した後、(4) 標識酵素を結合
し、かつ、第一抗体を産生する哺乳動物と異なる種の哺
乳動物に由来する第一抗体に対する抗体(第二抗体)を
該担体に反応させ、(5) 該担体を洗浄した後、(6) 該標
識酵素の基質との酵素反応によって発色する発色試薬を
含有する緩衝液を添加し、反応させた後に吸光度を測定
し、(7) その測定値からサンプル中のAF濃度を算出する
ことを特徴とする自然環境サンプル中でのAFの残留量の
測定方法( 以下、本発明測定方法と記す。) および該測
定方法に使用するための試験キットであって、(1)5−
{2-クロロ-4-(トリフルオロメチル) フェノキシ}−2
−ニトロ安息香酸( 以下、AFと記す。) に対する哺乳動
物抗体を産生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清ア
ルブミンとAFの結合体で表面をコートした担体( 固体支
持剤) 、(2) 抗AF哺乳動物抗体( 第一抗体) を含有する
試薬、(3) 標識酵素を結合し、かつ、第一抗体を産する
哺乳動物と異なる種の哺乳動物に由来する第一抗体に対
する( 第二抗体)を含有する試薬を含有することを特徴
とするAFの免疫学的検出・分析用組成物を提供するもの
である。
Therefore, the present inventor has
As a result of sincere examination of the method for measuring the residual amount of AF in a natural environment sample, after immunizing a mammal against a conjugate of mammalian serum albumin and AF, blood was collected from the mammal, An antibody that recognizes AF obtained by separating and purifying blood is used as a first antibody, binds a labeling enzyme, and is an antibody against a first antibody derived from a mammal of a species different from the mammal producing the first antibody. The inventors have found that the residual amount of AF in a natural environment sample can be easily, rapidly and accurately analyzed by an indirect competitive inhibition method (ELISA method) in which is used as a second antibody, and completed the present invention. That is, the present invention provides a method for measuring 5- {2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy} -2-nitrobenzoic acid by an indirect competitive inhibition method (ELISA method) which is an immunological detection method. ) A solution containing a predetermined amount of anti-AF mammalian antibody (hereinafter referred to as the first antibody) is reacted with a sample solution containing AF, and (2) unreacted first antibody contained in the reaction solution is reacted. ,
The antibody is bound to a carrier whose surface is coated with a conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody, (3) after washing the carrier, and (4) binding with a labeling enzyme. And, the antibody against the first antibody derived from a mammal of a species different from the mammal producing the first antibody (second antibody) is reacted with the carrier, (5) after washing the carrier, (6) A buffer solution containing a coloring reagent that develops a color by an enzymatic reaction with the substrate of the labeling enzyme is added, and after the reaction, the absorbance is measured, and (7) the AF concentration in the sample is calculated from the measured value. A method for measuring the amount of residual AF in a natural environment sample (hereinafter, referred to as the measurement method of the present invention) and a test kit for use in the measurement method, comprising:
{2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy} -2
-A carrier (solid support) whose surface is coated with a conjugate of AF and a serum albumin of a mammal of the same species as a mammal that produces a mammalian antibody against nitrobenzoic acid (hereinafter referred to as AF), (2) A reagent containing an anti-AF mammalian antibody (first antibody), (3) a first antibody that binds a labeling enzyme and is derived from a mammal of a species different from the mammal producing the first antibody (second The present invention provides a composition for immunological detection / analysis of AF, which comprises a reagent containing an antibody).

【0005】本発明で使用される第一抗体は、例えば、
ウシ血清アルブミン(BSA: 分子量66200)、ヒト血清アル
ブミン(HSA: 分子量58000)、ウサギ血清アルブミン( RS
A:分子量68000)、ヤギ血清アルブミン(GSA: 分子量6800
0)等の哺乳動物の血清アルブミンをAFに化学結合させた
結合体を免疫原として用い、例えば、J.ASSOC.OFF.ANA
L.CHEM., 70(6)1025-1027(1987)等に記載されるW.H.New
some 等の通常の免疫感作の方法に従って、ウサギ、ラ
ット、イヌ等の哺乳動物を免疫した後、該哺乳動物から
血液を採取して、該血液を、例えば、遠心分離、硫酸ア
ンモニウムまたはポリエチレングリコールを用いること
による沈澱、ゲルろ過クロマトグラフィー、イオン交換
クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィ
ー等のクロマトグラフィー等の通常の方法によって分離
・精製することによって製造することができる。第一抗
体製造に使用する免疫原は、例えば、B.F.Erlangerらに
よる酸無水物法(J.Biol.Chem.Vol.234, 1090-1094 (195
9)) 等の通常の方法によって哺乳動物の血清アルブミン
をAFに化学結合させることにより調製することができ
る。また、上記の免疫感作した哺乳動物から免疫適格B
細胞が単離され、該免疫適格B細胞が連続的に細胞分裂
し得る腫瘍細胞と融合され、生成する融合物が単離さ
れ、そして選択の後、所望の抗体を産生するハイブリド
ーマ細胞がクローン化され、そしてモノクローナル抗体
を製造するために該ハイブリドーマ細胞が試験管内また
は生体内で培養されることにより、高度の特異性および
親和性を有する抗体も製造することができる。
The first antibody used in the present invention is, for example,
Bovine serum albumin (BSA: molecular weight 66200), human serum albumin (HSA: molecular weight 58000), rabbit serum albumin (RS
A: molecular weight 68000), goat serum albumin (GSA: molecular weight 6800)
(0) such as mammalian serum albumin chemically bound to AF is used as an immunogen, for example, J.ASSOC.OFF.ANA.
WH New described in L.CHEM., 70 (6) 1025-1027 (1987), etc.
After immunizing a mammal such as rabbit, rat, dog, etc. according to a usual immunization method such as some, blood is collected from the mammal, and the blood is collected, for example, by centrifugation, ammonium sulfate or polyethylene glycol. It can be produced by separating and purifying by a conventional method such as precipitation by use, gel filtration chromatography, ion exchange chromatography, affinity chromatography and the like. The immunogen used for the production of the first antibody is, for example, the acid anhydride method (J. Biol. Chem. Vol. 234, 1090-1094 (195
It can be prepared by chemically binding mammalian serum albumin to AF by a conventional method such as 9)). In addition, immunocompetent B from the above immunized mammal
The cells are isolated, the immunocompetent B cells are fused with tumor cells capable of serial cell division, the resulting fusion is isolated, and after selection, the hybridoma cells producing the desired antibody are cloned. Antibodies with high specificity and affinity can also be produced by culturing the hybridoma cells in vitro or in vivo to produce monoclonal antibodies.

【0006】本発明の測定方法で使用する担体( 固体担
体) としては、間接競合阻害法(ELISA法) において通常
用いられる担体を使用することができ、たとえば、ミク
ロタイタープレートまたは試験管のプラスチック表面、
ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ガラ
スまたはプラスチック等からなるビーズ表面、濾紙、デ
キストラン、セルロースもしくはニトロセルロースまた
はその他の類似の材料の細片の表面等をあげることがで
きる。上記の担体は、非常に広範囲のデザインを有し、
そして使用に際して意図された特定の目的に応じて非常
に異なる形状を有することができる。例えば、皿、球、
プレート、小型ロッド、セル、小型ボトル、小型チュー
ブ、ファイバー、ネット等をあげることができる。具体
的な例としては、透明プラスチック材料、例えばポリ塩
化ビニルまたはポリスチレンからなるミクロタイタープ
レート、ポリスチレンおよびポリスチレンラテックスか
らなる小球、チューブまたはロッド等が使用可能であ
る。特にポリスチレンの96穴ミクロタイタープレートを
使用することが都合がよい。本発明測定方法において、
第一抗体を産生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清
アルブミンとAFの結合体の担体へのコーティングに用い
るコーテイング緩衝溶液を、たとえば、あらかじめグル
タルアルデヒドまたは臭化シアン等を用いる通常の方法
によって活性化された担体に添加した後、インキューベ
ートすることによって第一抗体を産生する哺乳動物と同
一種の哺乳動物の血清アルブミンとAFの結合体で担体の
表面をコートする。ここで使用するコーテイング緩衝溶
液としては、例えば、NaCl 100mMを含有する10mMのリン
酸緩衝液(pH 7.5)等を使用することが好都合であるが、
これのみに限定されるものではない。また、哺乳動物の
血清アルブミンとAFの結合体は、前記の第一抗体製造に
使用される免疫原の調製方法の場合と同様にして製造す
ることができる。
As the carrier (solid carrier) used in the measuring method of the present invention, a carrier usually used in an indirect competitive inhibition method (ELISA method) can be used. For example, a plastic surface of a microtiter plate or a test tube can be used. ,
The surface of beads such as polystyrene, polypropylene, polyvinyl chloride, glass or plastic, the surface of filter paper, dextran, cellulose or nitrocellulose, or the surface of strips of other similar materials can be mentioned. The above carriers have a very wide range of designs,
It can have very different shapes, depending on the particular purpose intended for use. For example, a plate, a ball,
Examples include plates, small rods, cells, small bottles, small tubes, fibers and nets. As a specific example, a transparent plastic material such as a microtiter plate made of polyvinyl chloride or polystyrene, a small ball made of polystyrene and polystyrene latex, a tube or a rod can be used. In particular, it is convenient to use a 96-well microtiter plate of polystyrene. In the measuring method of the present invention,
A coating buffer solution used for coating the carrier of the conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody, for example, by a conventional method using glutaraldehyde or cyanogen bromide in advance. After being added to the activated carrier, the surface of the carrier is coated with a conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody by incubating. As the coating buffer solution used here, for example, it is convenient to use a 10 mM phosphate buffer solution (pH 7.5) containing 100 mM of NaCl,
It is not limited only to this. A conjugate of mammalian serum albumin and AF can be produced in the same manner as in the method for preparing the immunogen used for producing the first antibody described above.

【0007】上記のコーテイングの条件について、第一
抗体を産生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清アル
ブミンとAFの結合体の担体へのコーテイングに用いるコ
ーテイング緩衝液の濃度は、約1 μg/ml以上であること
が望ましい。該濃度を約100μg/mlまで上昇しても最終
的な結果は変わらず、これは約1 μg/mlで抗原の担体へ
の吸着が平衡化することを示している。使用する量とし
ては、96穴マイクロプレートを使用する場合には、例え
ば約0.1ml/well程度を好ましくあげることができる。上
記のインキューベートの条件について、例えば、約4 ℃
で約6 時間ないし約24時間、望ましくは、一晩インキュ
ーベートすることをあげることができる。第一抗体を産
生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清アルブミンと
AFの結合体の担体へのコーティング後、第一抗体の非特
異的結合を防止するために、第一抗体を産生する哺乳動
物と同一種の哺乳動物の血清アルブミン以外の蛋白で、
第一抗体を産生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清
アルブミンが吸着してない部分をブロックすることが望
ましい。この目的には、例えば、約3%のスキムミルク溶
液と担体を約20°C 前後で約2 時間程度インキューベー
トする方法等が簡便なものとしてあげられる。このよう
にして得られた担体は、洗浄緩衝液( たとえば、NaCl
0.8%(W/V)、KCl 0.02%(W/V) およびTween 20、0.2%(V/
V) を含む10mMのリン酸緩衝液(pH7.2) が好ましい。)
で洗浄した後に使用する。
Regarding the above-mentioned coating conditions, the concentration of the coating buffer used for coating the carrier of the conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody is about 1 μg / It is preferable that the amount is at least ml. Increasing the concentration to about 100 μg / ml did not change the final result, indicating that about 1 μg / ml equilibrates the adsorption of the antigen to the carrier. When using a 96-well microplate, the amount used is preferably about 0.1 ml / well. For the above incubation conditions, for example, about 4 ℃
Incubating for about 6 hours to about 24 hours, and preferably overnight. Serum albumin of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody
After coating the carrier of the conjugate of AF, in order to prevent non-specific binding of the first antibody, with a protein other than serum albumin of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody,
It is desirable to block a portion of the mammal of the same species as the mammal that produces the first antibody, to which serum albumin is not adsorbed. For this purpose, a simple method is, for example, a method of incubating a skim milk solution of about 3% and a carrier at about 20 ° C for about 2 hours. The carrier thus obtained may be washed buffer (e.g. NaCl
0.8% (W / V), KCl 0.02% (W / V) and Tween 20, 0.2% (V / V
V) -containing 10 mM phosphate buffer (pH 7.2) is preferred. )
Use after washing with.

【0008】本発明測定方法では、水田水、水道水など
の自然環境中の水系類をサンプルとする場合には、サン
プル中のAF濃度が約100 〜約10,000ng/ml の範囲で測定
することができる。従って、サンプル中のAF濃度が上記
より高濃度である場合には、サンプルを適宜希釈した後
に使用する。また低濃度である場合には、サンプルを適
宜濃縮した後に使用する。食品、穀物、植物や土壌など
の自然環境中の非水系類をサンプルとする場合には、メ
タノール等の溶媒でサンプルからAFを抽出した後、該メ
タノール抽出液をたとえば前記の洗浄緩衝液等の緩衝液
等で希釈した後に使用する。このようにして調製したAF
を含有するサンプル溶液と過剰量の第一抗体を含有する
緩衝溶液を混合し、たとえば約20℃前後で一晩インキ
ューベートすることによって反応させる。この際、第一
抗体は、約3,000 〜約5,000 倍に希釈してサンプル中の
AFと反応させることが望ましく、特に約5,000 倍程度の
希釈をより望ましくあげることができる。すなわち、約
2,500 倍程度に希釈した第一抗体を同容量のAFを含有す
るサンプル溶液と混合し、約20°C で一晩反応させるこ
とが望ましい。希釈液としては、たとえば、前記の洗浄
緩衝液と同じ組成のものを用いることができる。なお、
必要に応じて、第一抗体が過剰に希釈された場合の安定
化のために保護タンパクとして3%のスキムミルク等を加
えることが望ましい。
According to the measuring method of the present invention, when a water system in a natural environment such as paddy water or tap water is used as a sample, the AF concentration in the sample should be measured in the range of about 100 to about 10,000 ng / ml. You can Therefore, when the AF concentration in the sample is higher than the above concentration, the sample is appropriately diluted before use. When the concentration is low, the sample is appropriately concentrated before use. When using non-aqueous compounds in the natural environment such as foods, grains, plants and soil as a sample, AF is extracted from the sample with a solvent such as methanol, and then the methanol extract is used, such as the above-mentioned washing buffer. Use after diluting with buffer etc. AF prepared in this way
And a buffer solution containing an excess amount of the first antibody are mixed and allowed to react by incubating overnight at about 20 ° C., for example. At this time, dilute the primary antibody about 3,000 to about 5,000 times in the sample.
It is desirable to react with AF, and a dilution of about 5,000 times can be more desirable. Ie about
It is desirable to mix the 2,500-fold diluted primary antibody with a sample solution containing the same volume of AF and allow to react overnight at about 20 ° C. As the diluent, for example, one having the same composition as the above-mentioned washing buffer can be used. In addition,
If necessary, it is desirable to add 3% skim milk or the like as a protective protein for stabilization when the primary antibody is excessively diluted.

【0009】上記のように調製したサンプルと第一抗体
の反応液に含まれる未反応の第一抗体を、第一抗体を産
生する哺乳動物と同一種の哺乳動物の血清アルブミンと
AFの結合体で表面をコートした担体に結合させる反応を
行う。この反応条件について、サンプルと第一抗体の反
応液を担体に添加し、たとえば約20°C で、約1 時間程
度反応させることを望ましくあげることができる。反応
後、前記の洗浄緩衝液で担体を洗浄した後、標識酵素を
結合し、かつ第一抗体を産生する哺乳動物と異なる種の
哺乳動物に由来する第一抗体に対する抗体(第二抗体)
との反応に供する。
The unreacted first antibody contained in the reaction solution of the sample prepared as described above and the first antibody is treated with serum albumin of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody.
A reaction of binding to a carrier whose surface is coated with a conjugate of AF is performed. Regarding this reaction condition, it is desirable to add a reaction solution of the sample and the first antibody to a carrier and react at about 20 ° C. for about 1 hour. After the reaction, after washing the carrier with the above-mentioned washing buffer, an antibody against the first antibody derived from a mammal of a species different from the mammal that binds the labeling enzyme and produces the first antibody (second antibody)
Subject to reaction with.

【0010】本発明測定方法において使用する第二抗体
としては、たとえばペルオキシダーゼ、アルカリホスフ
ァターゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、グルコースオキ
シダーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、ア
セチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレートデヒ
ドロゲナーゼ、グルコース−6−ホスフェートデヒドロ
ゲナーゼ等の酵素を結合した第一抗体に対する抗体をあ
げることができる。具体的な例としては、第一抗体とし
てウサギ抗血清を使用する場合、第二抗体としては、ペ
ルオキシダーゼを結合した抗ウサギ免疫グロブリン(I
gG)ヤギ免疫グロブリン(IgG)を好ましくあげる
ことができる。なお、該ウサギIgGヤギIgGは市販
されており、容易に入手可能である。ペルオキシダーゼ
で標識される場合には、基質として過酸化水素、発色試
薬としてジアミノベンジジンまたはO−フェニレンジア
ミンと組み合わさって褐色または黄色を生じる。後者を
使用した場合には、発色最適時間が約10分程度であり、
最終吸光度が約1.3 〜約1.4 を示す。なお、測定には4
90nmおよび655nmの吸光度が適する。グルコー
スオキシダーゼで標識される場合には、基質として、た
とえば2,2'−アシド−ジ−(3−エチルベンゾチアゾ
リン−6−スルホン酸(ABTS)等を用いる。なお、
測定には405nmおよび655nmの吸光度が適す
る。第一抗体が結合した担体に約1,000 〜約2,000 倍,
好ましくは約1,000 倍程度に希釈した第二抗体を反応さ
せた後、該担体を洗浄し、ついで第二抗体に結合した標
識酵素と基質との酵素反応によって発色する発色試薬を
含有する緩衝液を添加し、反応させた後に吸光度をマル
チスキャニングスペクトロフォトメーター等の装置を用
いて測定する。
The second antibody used in the assay method of the present invention includes, for example, peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-galactosidase, glucose oxidase, glucoamylase, carbonic anhydrase, acetylcholinesterase, lysozyme, malate dehydrogenase, glucose-6-. An antibody to the first antibody bound with an enzyme such as phosphate dehydrogenase can be mentioned. As a specific example, when a rabbit antiserum is used as the first antibody, the second antibody is an anti-rabbit immunoglobulin (I) conjugated with peroxidase.
Preferred is gG) goat immunoglobulin (IgG). The rabbit IgG and goat IgG are commercially available and can be easily obtained. When labeled with peroxidase, it combines with hydrogen peroxide as a substrate and diaminobenzidine or O-phenylenediamine as a coloring reagent to give a brown or yellow color. When using the latter, the optimal color development time is about 10 minutes,
The final absorbance is about 1.3 to about 1.4. In addition, 4 for measurement
Absorbances at 90 nm and 655 nm are suitable. In the case of labeling with glucose oxidase, for example, 2,2′-acid-di- (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) or the like is used as a substrate.
The absorbance at 405 nm and 655 nm is suitable for the measurement. About 1,000 to about 2,000 times the carrier bound to the primary antibody,
After reacting the second antibody, which is preferably diluted about 1,000 times, the carrier is washed, and then a buffer solution containing a coloring reagent that develops color by the enzymatic reaction of the labeled enzyme bound to the second antibody and the substrate is added. After addition and reaction, the absorbance is measured using a device such as a multi-scanning spectrophotometer.

【0011】また本発明は、試薬として抗AF哺乳動物抗
体を含有し、そしてAF簡便でかつ迅速に処理できる精度
の高い検出・分析のために野外条件下での使用に適して
いる、使用のために調製されている試験キットの形態に
されたAFの免疫学的検出・分析のための手段を包含す
る。上記の試験キットは、たとえば次の構成成分を含有
し得る: (1) AFに対する哺乳動物抗体を産生する哺乳動物と同一
種の哺乳動物の血清アルブミンとAFの結合体で表面をコ
ートした担体( 固体支持材) 、 (2) 抗AF哺乳動物抗体( 第一抗体) を含有する試薬、 (3) 標識酵素を結合し、かつ、第一抗体を産する哺乳動
物と異なる種の哺乳動物に由来する第一抗体に対する(
第二抗体)を含有する試薬、 (4) AF の標準化溶液 (5) 緩衝液 (6) 非特異的吸着および凝集体の形成を防止するポリペ
プチド、界面活性剤等の添加剤、および (7) ピペット、反応容器、計算曲線等。
The present invention also comprises an anti-AF mammalian antibody as a reagent, and is suitable for use under field conditions for detection and analysis of AF that is convenient and can be processed rapidly and with high accuracy. It comprises means for immunological detection and analysis of AF in the form of a test kit that has been prepared. The above-mentioned test kit may contain the following components, for example: (1) A carrier whose surface is coated with a conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as a mammal producing a mammalian antibody against AF ( Solid support), (2) reagent containing anti-AF mammalian antibody (first antibody), (3) derived from a mammal of a species different from the mammal producing the first antibody, which binds the labeling enzyme Against the first antibody
(4) AF standardized solution (5) Buffer solution (6) Polypeptides that prevent non-specific adsorption and aggregate formation, additives such as surfactants, and (7) ) Pipettes, reaction vessels, calculation curves, etc.

【0012】[0012]

【実施例】以下に実施例によって本発明を更に詳細に説
明するが、本発明は実施例のみに限定されるものではな
く、本発明の技術分野における通常の変更をすることが
できる。 実施例1 (哺乳動物の血清アルブミンとAFの結合体の
調製) 25mgのAFを2ml の無水ジオキサンに溶解し、0.05mlのN-
メチルモルホリンを加えて10°C で20分間攪拌した。更
に、0.02mlのイソブチルクロロカーバメイトを少しずつ
添加し、15分間攪拌した。一方、80mgのウシ血清アルブ
ミン(BSA) を4.3ml の蒸留水に溶解して、1NのNaOH溶液
でpH9.5 に調整した後、10°C で2.6mlのジオキサンを
少しずつ滴下した。次いで、1NのNaOH溶液でpH9 に保ち
ながら、先に調製したAF溶液を少しずつ加え、4 °C で
4 時間攪拌して反応させた。その後、SephadexG-25を用
いたゲル濾過による精製を行った。得られたタンパク質
画分を蒸留水で24時間透析した後、凍結乾燥してウシ血
清アルブミンとAFの結合体を得た。
The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to the examples, and ordinary modifications can be made in the technical field of the present invention. Example 1 (Preparation of a conjugate of mammalian serum albumin and AF) 25 mg of AF was dissolved in 2 ml of anhydrous dioxane, and 0.05 ml of N-
Methylmorpholine was added, and the mixture was stirred at 10 ° C for 20 minutes. Further, 0.02 ml of isobutyl chlorocarbamate was added little by little, and the mixture was stirred for 15 minutes. On the other hand, 80 mg of bovine serum albumin (BSA) was dissolved in 4.3 ml of distilled water, adjusted to pH 9.5 with a 1N NaOH solution, and 2.6 ml of dioxane was gradually added dropwise at 10 ° C. Then, while maintaining pH 9 with 1N NaOH solution, add the AF solution prepared above little by little and at 4 ° C.
The reaction was stirred for 4 hours. Then, purification by gel filtration using Sephadex G-25 was performed. The obtained protein fraction was dialyzed against distilled water for 24 hours and then freeze-dried to obtain a bovine serum albumin-AF conjugate.

【0013】実施例2 (抗AF哺乳動物抗体の調製) 実施例1により得られた結合体を200 μg/mlの濃度にな
るように生理的リン酸緩衝液に溶解した。この水溶液と
フロイント完全アジュバンド(DIFCO LABORATORIES社
製)各々0.5ml ずつ加え、よく混合した。得られた混合
物1mlを日本白色種ウサギ(雄、4週令、約0.6kg )に
筋肉注射した。その後、2 、4 、6 週間後に各々、実施
例1により得られた結合体の濃度を100 μg/mlになるよ
うに調製した生理的リン酸緩衝液を初回と同様に追加投
与を行った。最後の投与後に免疫感作した供試ウサギか
ら全採血し、得られた血液を遠心分離(1000xg,15min,4
℃)して上清を回収した。得られた上清を33%飽和硫
安で塩析し、遠心分離(1000xg,15min,4℃)した後、沈
澱を少量の生理的リン酸緩衝液に溶解した。これを生理
的リン酸緩衝液を用いて4℃で一晩透析することにより
第一抗体を得た。
Example 2 (Preparation of anti-AF mammalian antibody) The conjugate obtained in Example 1 was dissolved in physiological phosphate buffer to a concentration of 200 μg / ml. 0.5 ml of each of this aqueous solution and Freund's complete adjuvant (manufactured by DIFCO LABORATORIES) was added and mixed well. 1 ml of the obtained mixture was intramuscularly injected into a Japanese white rabbit (male, 4 weeks old, about 0.6 kg). Then, after 2, 4, and 6 weeks, a physiological phosphate buffer solution prepared so that the concentration of the conjugate obtained in Example 1 was 100 μg / ml was additionally administered as in the first administration. Whole blood was collected from the test rabbits immunized after the last administration, and the obtained blood was centrifuged (1000xg, 15 min, 4 min.
℃) and collected the supernatant. The obtained supernatant was salted out with 33% saturated ammonium sulfate, centrifuged (1000 xg, 15 min, 4 ° C), and the precipitate was dissolved in a small amount of physiological phosphate buffer. This was dialyzed against a physiological phosphate buffer solution at 4 ° C. overnight to obtain a first antibody.

【0014】実施例3 (第一抗体を産生する哺乳動物
と同一種の哺乳動物の血清アルブミンとAFの結合体によ
る抗体表面のコーティング) 実施例1に準じて得られたウサギ血清アルブミンとAFの
結合体を1μg/mlの濃度で含有するコーティング緩衝液
(NaCl 100mMを含有する10mMのリン酸緩衝液(pH 7.5))
をポリスチレンの96穴ミクロタイタープレートに、0.1m
l/wellの割合で添加し、約4 ℃で一晩インキューベート
した。その後、3%のスキムミルク溶液を300μlずつ
添加し、20℃で約2 時間インキューベート後、該ミク
ロタイタープレートを洗浄緩衝液( NaCl 0.8%(W/V)、KC
l 0.02%(W/V) およびTween 200.2%(V/V) を含有する1
0mMのリン酸緩衝液(pH7.2) ) を用いて3 回洗浄し
た。
Example 3 (Coating of Antibody Surface with a Conjugate of Serum Albumin and AF of a Mammal of the Same Type as the Primary Antibody-Producing Mammal) Rabbit serum albumin and AF obtained according to Example 1 Coating buffer containing the conjugate at a concentration of 1 μg / ml (10 mM phosphate buffer (pH 7.5) containing 100 mM NaCl)
To a polystyrene 96-well microtiter plate,
It was added at a ratio of 1 / well and incubated overnight at about 4 ° C. Then, add 300 μl of 3% skim milk solution, incubate at 20 ° C. for about 2 hours, and wash the microtiter plate with washing buffer (NaCl 0.8% (W / V), KC).
l Contains 0.02% (W / V) and Tween 200.2% (V / V) 1
The plate was washed 3 times with 0 mM phosphate buffer (pH 7.2).

【0015】実施例4 (間接競合阻害法(ELISA 法)
のよるAFの測定:その1) 実施例2によって得られた抗AFウサギ抗体を、洗浄緩衝
液( NaCl 0.8%(W/V)、KCl 0.02%(W/V) およびTween 20
0.2%(V/V) を含有する10mMのリン酸緩衝液(pH7.
2) ) に3%の濃度でスキムミルクを添加された緩衝液を
用いて2,500 倍に希釈し、上記の洗浄緩衝液で希釈した
同容量のサンプル溶液と混合し、約20°Cで一晩反応さ
せた。得られた反応液0.1ml/wellを実施例3で得られ
た、ウサギ血清アルブミンとAFの結合体によってコーテ
ィングされた担体に添加し、20℃で1時間反応させた
後、該担体(未反応の第一抗体を結合した)を、上記の
洗浄緩衝液を用いて3 回洗浄した。標識酵素としてペル
オキシダーゼを結合した抗ウサギIgG ヤギIgG 画分( 和
光純薬工業社製) を上記の緩衝液で1,000 倍に希釈した
溶液を、0.1ml/wellの割合で担体に添加し、20℃で約3
時間インキューベートした後、該担体(第2抗体を反応
させた)を上記の洗浄緩衝液を用いて3 回洗浄した。o-
フェニレンジアミン発色溶液( o- フェニレンジアミン
ー 0.2%(W/V) 100mM, リン酸・クエン酸緩衝液(pH5) 10
0mM, 過酸化水素0.003%(V/V) ) を0.2ml/wellの割合で
洗浄後の担体に添加し、20℃で10分間インキューベート
した後、さらに4N H2SO4, 0.05ml/wellの割合で加え反
応を止めた。その後、490nm および655nm での吸光度を
測定した。上記のようにして自然環境サンプル中のAF濃
度を測定した結果、水田水、水道水及び洗浄緩衝液のAF
溶液を使用した各々の測定結果はほぼ一致し、水田水や
水道水に含まれる物質はAF濃度の測定に対して影響を与
えないことが判明し、さらにサンプル中のAFは約100 ng
/ml 〜約10,000ng/ml の濃度範囲において正確にサンプ
ル中でのAF の残留量を測定できることが明らかになっ
た。
Example 4 (Indirect competitive inhibition method (ELISA method)
Measurement of AF according to No. 1) The anti-AF rabbit antibody obtained in Example 2 was treated with a washing buffer (NaCl 0.8% (W / V), KCl 0.02% (W / V) and Tween 20).
10 mM phosphate buffer containing 0.2% (V / V) (pH 7.
2) Dilute 2,500 times with the buffer containing skim milk at 3% concentration in (), mix with the same volume of sample solution diluted with the above washing buffer, and react overnight at about 20 ° C. Let 0.1 ml / well of the obtained reaction solution was added to the carrier coated with the conjugate of rabbit serum albumin and AF obtained in Example 3 and reacted at 20 ° C. for 1 hour. Was bound 3 times with the above washing buffer. A solution of peroxidase-conjugated anti-rabbit IgG goat IgG fraction (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) diluted 1,000 times with the above buffer was added to the carrier at a rate of 0.1 ml / well, and the temperature was 20 ° C About 3
After incubation for a period of time, the carrier (reacted with the second antibody) was washed 3 times with the above washing buffer. o-
Phenylenediamine coloring solution (o-phenylenediamine 0.2% (W / V) 100 mM, phosphate / citrate buffer (pH 5) 10
0 mM, hydrogen peroxide 0.003% (V / V)) was added to the carrier after washing at a rate of 0.2 ml / well, incubated at 20 ° C. for 10 minutes, and then 4 NH 2 SO 4, 0.05 ml / The reaction was stopped at a well ratio. Then, the absorbance at 490 nm and 655 nm was measured. As a result of measuring the AF concentration in the natural environment sample as described above, AF of paddy water, tap water and washing buffer
The results of each measurement using the solution were in good agreement, and it was found that the substances contained in the paddy water and tap water had no effect on the measurement of AF concentration, and the AF in the sample was about 100 ng.
It was revealed that the residual amount of AF in the sample can be accurately measured in the concentration range of / ml to about 10,000 ng / ml.

【0016】実施例5 (間接競合阻害法(ELISA 法)
のよるAFの測定:その2) 実施例2によって得られた抗AFウサギ抗体を、洗浄緩衝
液( NaCl 0.8%(W/V)、KCl 0.02%(W/V) およびTween 20
0.2%(V/V) を含有する10mMのリン酸緩衝液(pH7.
2) ) に6%の濃度でスキムミルクを添加された緩衝液を
用いて2,500 倍に希釈し、上記の洗浄緩衝液で希釈した
同容量のサンプル溶液と混合し、約20°Cで一晩反応さ
せた。得られた反応液0.1ml/wellを実施例3で得られ
た、ウサギ血清アルブミンとAFの結合体によってコーテ
ィングされた担体に添加し、20℃で1時間反応させた
後、該担体(未反応の第一抗体を結合した)を、上記の
洗浄緩衝液を用いて3 回洗浄した。標識酵素としてビオ
チンを結合した抗ウサギIgG ロバIgG 画分を上記の緩衝
液で2,000 倍に希釈した溶液を、0.1ml/wellの割合で担
体に添加し、20℃で約1時間インキューベートした後、
該担体(第2抗体を反応させた)を上記の洗浄緩衝液を
用いて3 回洗浄した。アビジン結合アルカリフォスファ
ターゼを1000倍に希釈した溶液を0.1ml/wellの割合で添
加し、1時間インキュベートした後、該担体を上記の緩
衝液を用いて3回洗浄した。アルカリフォスファターゼ
発色試薬(0.5M MgCl2 、0.1% p- ニトロフェノールリ
ン酸2ナトリウムを含有する1Mジエタノールアミン−
塩酸緩衝液(pH9.8 ))を0.2ml/wellの割合で洗浄後の
担体に添加し、25°C で30分間インキューベートした
後、1N NaOH を0.05ml/well の割合で加え反応を止め
た。その後、415nm および630nm での吸光度を測定し
た。上記のようにして自然環境サンプル中のAF濃度を測
定した結果、水田水、水道水及び洗浄緩衝液のAF溶液を
使用した各々の測定結果はほぼ一致し、水田水や水道水
に含まれる物質はAF濃度の測定に対して影響を与えない
ことが判明し、さらにサンプル中のAFは約100 ng/ml 〜
約10,000ng/ml の濃度範囲において正確にサンプル中で
のAF の残留量を測定できることが明らかになった。
Example 5 (Indirect competitive inhibition method (ELISA method)
Measurement of AF using No. 2) The anti-AF rabbit antibody obtained in Example 2 was treated with a washing buffer (NaCl 0.8% (W / V), KCl 0.02% (W / V) and Tween 20).
10 mM phosphate buffer containing 0.2% (V / V) (pH 7.
2) Dilute 2,500 times with the buffer containing skim milk at a concentration of 6% in (), mix with the same volume of sample solution diluted with the above washing buffer, and react overnight at about 20 ° C. Let 0.1 ml / well of the obtained reaction solution was added to the carrier coated with the conjugate of rabbit serum albumin and AF obtained in Example 3 and reacted at 20 ° C. for 1 hour. Was bound 3 times with the above washing buffer. A solution prepared by diluting the anti-rabbit IgG donkey IgG fraction bound with biotin as a labeling enzyme to 2,000 times with the above buffer was added to the carrier at a rate of 0.1 ml / well, and incubated at 20 ° C for about 1 hour. rear,
The carrier (reacted with the second antibody) was washed 3 times with the above washing buffer. A solution prepared by diluting avidin-conjugated alkaline phosphatase 1000 times was added at a rate of 0.1 ml / well, incubated for 1 hour, and then the carrier was washed 3 times with the above buffer solution. Alkaline phosphatase coloring reagent (1M diethanolamine containing 0.5M MgCl 2 , 0.1% disodium nitrophenol phosphate-
Add hydrochloric acid buffer solution (pH 9.8)) to the carrier after washing at a rate of 0.2 ml / well, incubate at 25 ° C for 30 minutes, and add 1N NaOH at a rate of 0.05 ml / well to react. stopped. Then, the absorbance at 415 nm and 630 nm was measured. As a result of measuring the AF concentration in the natural environment sample as described above, each measurement result using AF solution of paddy water, tap water and washing buffer is almost the same, and the substances contained in paddy water and tap water Has no effect on the measurement of AF concentration, and the AF in the sample is about 100 ng / ml ~
It was revealed that the residual amount of AF in the sample can be accurately measured in the concentration range of about 10,000 ng / ml.

【0017】[0017]

【発明の効果】本発明を利用することにより、簡便でか
つ迅速に処理できる精度の高い自然環境サンプル中での
アシフロルフェン( ジフェニルエーテル系除草剤) の残
留量の測定が可能となった。特に水田水、水道水、食
品、穀物、植物や土壌などの自然環境サンプル中のアシ
フロルフェンの残留量の測定においては、一度に多大な
測定件数を処理可能とした。
EFFECTS OF THE INVENTION By using the present invention, it becomes possible to measure the residual amount of aciflorfen (diphenyl ether herbicide) in a natural environment sample that can be simply and rapidly processed with high accuracy. Especially, when measuring the residual amount of aciflorfen in natural environment samples such as paddy water, tap water, food, grains, plants and soil, a large number of measurements can be processed at one time.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】5ー{2ークロロー4ー(トリフルオロメ
チル)フェノキシ}ー2ーニトロ安息香酸( 以下、AFと
記す。) を免疫学的検出方法である間接競合阻害法(EL
ISA法)で測定する方法であって、(1) 所定量の抗AF哺
乳動物抗体( 以下、第一抗体と記す。) を含有する溶液
とAFを含有するサンプル溶液を反応し、(2) 該反応液に
含まれる未反応の第一抗体を、第一抗体を産生する哺乳
動物と同一種の哺乳動物の血清アルブミンとAF の結合
体で表面をコートした担体に結合させ、(3) 該担体を洗
浄した後、(4) 標識酵素を結合し、かつ、第一抗体を産
生する哺乳動物と異なる種の哺乳動物に由来する第一抗
体に対する抗体(第二抗体)を該担体に反応させ、(5)
該担体を洗浄した後、(6) 該標識酵素の基質との酵素反
応によって発色する発色試薬を含有する緩衝液を添加
し、反応させた後に吸光度を測定し、(7) その測定値か
らサンプル中のAF濃度を算出することを特徴とする自然
環境サンプル中でのAFの残留量の測定方法。
1. An indirect competitive inhibition method (EL) which is an immunological detection method for 5- {2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy} -2-nitrobenzoic acid (hereinafter referred to as AF).
ISA method) (1) reacting a solution containing a predetermined amount of anti-AF mammalian antibody (hereinafter referred to as the first antibody) with a sample solution containing AF, (2) The unreacted first antibody contained in the reaction solution is bound to a carrier whose surface is coated with a conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as the mammal producing the first antibody, (3) After washing the carrier, (4) reacting the carrier with an antibody (second antibody) that binds the labeling enzyme and is derived from a mammal of a species different from the mammal producing the first antibody ,(Five)
After washing the carrier, (6) a buffer solution containing a coloring reagent that develops color by an enzymatic reaction with the substrate of the labeling enzyme is added, and after reacting, the absorbance is measured, and (7) a sample is obtained from the measured value. A method for measuring the amount of residual AF in a natural environment sample, which comprises calculating the AF concentration in the sample.
【請求項2】5ー{2ークロロー4ー(トリフルオロメ
チル)フェノキシ}ー2ーニトロ安息香酸( 以下、AFと
記す。) を免疫学的検出方法である間接競合阻害法(EL
ISA法)で測定する方法であって、(1) 所定量の抗AFウ
サギ抗体を含有する溶液とAFを100ng/ml〜10000ng/mlの
範囲で含有するサンプル溶液を反応し、(2) 該反応液に
含まれる未反応の抗AFウサギ抗体を、ウサギ血清アルブ
ミンとAFの結合体で表面をコートした担体に結合させ、
(3) 該担体を洗浄した後、(4) ペルオキシダーゼを結合
した抗ウサギIgG ヤギIgG を該担体に反応させ、(5) 同
担体を洗浄した後、(6) 該標識酵素の基質との酵素反応
によって発色する発色試薬を含有する緩衝液を添加し、
反応させた後に吸光度を測定し、(7) その測定値からサ
ンプル中のAF濃度を算出することを特徴とする請求項1
の測定方法。
2. An indirect competitive inhibition method (EL) which is an immunological detection method for 5- {2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy} -2-nitrobenzoic acid (hereinafter referred to as AF).
ISA method), (1) reacting a solution containing a predetermined amount of anti-AF rabbit antibody with a sample solution containing AF in the range of 100 ng / ml to 10000 ng / ml, (2) The unreacted anti-AF rabbit antibody contained in the reaction solution was bound to a carrier whose surface was coated with a conjugate of rabbit serum albumin and AF,
(3) After washing the carrier, (4) peroxidase-conjugated anti-rabbit IgG goat IgG is reacted with the carrier, (5) after washing the carrier, (6) an enzyme with a substrate for the labeling enzyme A buffer solution containing a coloring reagent that develops color by the reaction is added,
The absorbance is measured after the reaction, and (7) the AF concentration in the sample is calculated from the measured value.
Measuring method.
【請求項3】請求項1の測定方法に使用するための試験
キットであって、(1)5−{2-クロロ-4-(トリフルオロメ
チル) フェノキシ}−2−ニトロ安息香酸( 以下、AFと
記す。) に対する哺乳動物抗体を産生する哺乳動物と同
一種の哺乳動物の血清アルブミンとAFの結合体で表面を
コートした担体( 固体支持剤) 、(2) 抗AF哺乳動物抗体
( 以下、第一抗体と記す。) を含有する試薬、(3) 標識
酵素を結合し、かつ、第一抗体を産する哺乳動物と異な
る種の哺乳動物に由来する第一抗体に対する( 第二抗
体)を含有する試薬を含有することを特徴とするAFの免
疫学的検出・分析用組成物。
3. A test kit for use in the measuring method according to claim 1, wherein (1) 5- {2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy} -2-nitrobenzoic acid (hereinafter, A carrier (solid support) whose surface is coated with a conjugate of serum albumin and AF of a mammal of the same species as the mammal that produces a mammalian antibody against (AF), (2) anti-AF mammalian antibody
(Hereinafter, referred to as a first antibody), (3) a first antibody that binds a labeling enzyme and is derived from a mammal of a species different from the mammal producing the first antibody (second A composition for immunological detection / analysis of AF, which comprises a reagent containing an antibody).
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2016223900A (en) * 2015-05-29 2016-12-28 公益財団法人科学技術交流財団 Pretreatment method for inspecting residual pesticide using immunoassay method and method for inspecting residual pesticide

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