JP2523171B2 - Immunoassay method and reagent kit used therefor - Google Patents

Immunoassay method and reagent kit used therefor

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JP2523171B2
JP2523171B2 JP63506700A JP50670088A JP2523171B2 JP 2523171 B2 JP2523171 B2 JP 2523171B2 JP 63506700 A JP63506700 A JP 63506700A JP 50670088 A JP50670088 A JP 50670088A JP 2523171 B2 JP2523171 B2 JP 2523171B2
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protein
solution
antigen
reaction
skim milk
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Japanese (ja)
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健治 細田
貴明 窪田
仁美 本田
英明 鈴木
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Teijin Ltd
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Teijin Ltd
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Description

【発明の詳細な説明】 技術分野 本発明は、溶液中での抗原抗体反応を利用して免疫学
的に物質の量を測定するに際し、特異的反応を低下させ
ることなく、非特異的反応を低下させる免疫測定方法と
それに用いる試薬キットに関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a non-specific reaction in an immunological method for measuring the amount of a substance by utilizing an antigen-antibody reaction in a solution without lowering the specific reaction. TECHNICAL FIELD The present invention relates to an immunoassay method for reducing and a reagent kit used therefor.

背景技術 抗体を用いた免疫測定法は、その特異性の高さや感度
の高さから広く用いられている方法であり、1975年モノ
クローナル抗体の発見とともに、ますます発展が期待さ
れる。
BACKGROUND ART Immunoassay methods using antibodies are widely used due to their high specificity and high sensitivity, and are expected to grow even further with the discovery of monoclonal antibodies in 1975.

この免疫測定法の検出手段に関しても、従来放射性物
質(I125)が用いられていたが、近年、酸素、蛍光物質
などが用いられるようになり、放射性物質の使用のため
の使用者の特殊な訓練が不要になったことも、この免疫
測定法の発展に拍車がかかった要因の1つであろう。
Regarding the detection means of this immunoassay, radioactive substances (I 125 ) have been used in the past, but in recent years, oxygen, fluorescent substances, etc. have come to be used, and the special substances of users for the use of radioactive substances have come to be used. The lack of training may also be one of the factors that have spurred the development of this immunoassay.

さて、この免疫測定法が高感度であるためには、抗原
−抗体反応のみに由来する特異的な反応は高く、それ以
外の非特異的反応は極力低いことが、必須条件である。
Now, in order for this immunoassay to be highly sensitive, it is an essential condition that the specific reaction derived only from the antigen-antibody reaction is high and the other nonspecific reaction is as low as possible.

この非特異的反応をおさえることが高感度免疫測定法
を完成するための重要な技術的ポイントである。それゆ
えに従来から種々の試みが行われている。その手段とし
て最も広く行われている手段は、免疫反応系に非特異的
反応を抑えるための添加剤を添加することであり、その
手段は大きく2つに分かれる。第1の方法は非タンパク
性の物質である界面活性剤等を用いるものであり、第2
の方法は、体液ないしはタンパク溶液を用いるものであ
る。第1の方法の例として、特開昭57−182169号公報に
おいては、免疫反応を行なう反応媒体に可溶なポリアニ
オンを用い、また特開昭58−187862号公報においては、
非イオン界面活性剤を用いて非特異的吸着除去を工夫し
ている。一方、第2の方法として、特開昭59−25184号
公報では疎水性蛋白の0.1%以上を塩類の存在下に用い
ることを特徴とするものや、特開昭61−65162号公報の
ようなマウス腹水等を用いることにより、非特異性吸着
の低減を見ている。
Suppressing this non-specific reaction is an important technical point for completing the highly sensitive immunoassay. Therefore, various attempts have been made conventionally. The most widely used method is to add an additive for suppressing nonspecific reaction to the immune reaction system, and the method is roughly divided into two. The first method uses a non-proteinaceous substance such as a surfactant, and the second method
This method uses a body fluid or protein solution. As an example of the first method, in JP-A-57-182169, a polyanion soluble in a reaction medium in which an immune reaction is performed is used, and in JP-A-58-187862,
Non-specific adsorption removal is devised by using a nonionic surfactant. On the other hand, as a second method, JP-A-59-25184 is characterized by using 0.1% or more of hydrophobic protein in the presence of salts, and JP-A-61-65162 is used. By using mouse ascites, etc., we are seeing a reduction in non-specific adsorption.

しかしながら、前記した従来の方法はそれぞれ欠点を
有しており決定的な非特異的吸着除去法になりえないの
が現状である。
However, each of the above-mentioned conventional methods has disadvantages and cannot be a definitive non-specific adsorption removal method at present.

すなわち第1の方法はしばしば特異的な反応も妨げて
しまい、結果として、低感度の測定系を導くことにな
る。また第2の方法として、疎水性蛋白の使用をあげて
いるが、本発明者らの検討によれば疎水性は非特異的吸
着除去にほとんど全く影響を及ぼさなかった。
That is, the first method often interferes with a specific reaction, resulting in a low-sensitivity measurement system. As a second method, the use of a hydrophobic protein is mentioned, but according to the study by the present inventors, the hydrophobicity had almost no effect on the nonspecific adsorption / removal.

また第2の方法としてマウスの腹水を用いた場合に
は、腹水の成分の再現性に問題があることや、この成分
によって特異的反応が低減し、免疫測定法本来の目的に
反するところとなる。
In addition, when ascites of mouse is used as the second method, there is a problem in reproducibility of the ascites component, and the specific reaction is reduced by this component, which is contrary to the original purpose of the immunoassay. .

一方、免疫反応を上記の溶液でなく、ニトロセルロー
スなどのメンブレインの上で行う反応も、抗原をメンブ
レイン上で濃縮することによって高感度化を達成しうる
という期待感も手伝い、好んで近年用いられるようにな
った。Brianらは、J.Biochem.Biophys.Methods 12,271
〜279(1986)に、スキムミルクの10%懸濁液を用いて
メンブレインをブロッキングすることにより、飛躍的な
非特異反応の低下を見たことを報告している。
On the other hand, the reaction of carrying out the immune reaction on a membrane such as nitrocellulose instead of the above solution also helped with the expectation that high sensitivity can be achieved by concentrating the antigen on the membrane. It came to be used. Brian et al. J. Biochem. Biophys. Methods 12 271
~ 279 (1986) reported that a dramatic reduction in non-specific reaction was observed by blocking the membrane with a 10% suspension of skim milk.

このような固相上の反応ブロッキング剤として、Ahma
dらも、スキムミルクを用いており、彼らはJ.Clin.Micr
obiol.23,3,563〜567(1986)の中で5%のスキムミル
ク溶液を用いpseudorabies virusの抗原を固定したニト
ロセルロースメンブレインをブロッキングすることによ
り、患者血清中の抗pseudorabies virus抗体を測定して
いる。
As a reaction blocking agent on such a solid phase, Ahma
d et al. also use skim milk and they use J.Clin.Micr
obiol. 23 , 3,563-567 (1986), anti-pseudorabies virus antibody in patient serum was measured by blocking nitrocellulose membrane immobilized with pseudorabies virus antigen using 5% skim milk solution. .

しかしながら、5%〜10%のスキムミルク懸濁液をブ
ロッキング剤として用いると、Brianらもその報告の中
で述べているように、特異的な反応をも大幅に低下させ
てしまい、前述の免疫測定方法が高感度であるための2
つの必須条件のうち、一方(抗原抗体反応に由来する特
異的な反応は高いこと)が欠如してしまい高感度測定が
達成できないことになる。
However, when 5% to 10% skim milk suspension is used as a blocking agent, as described in the report of Brian et al. 2 because the method is sensitive
One of the two essential conditions (high specific reaction derived from the antigen-antibody reaction) is lacking, and high-sensitivity measurement cannot be achieved.

その特異反応が妨害される理由としては、スキムミル
クは、かかる濃度では水に不溶であり、その懸濁液を用
いてブロッキングするため、ミクロ的に見れば、スキム
ミルクの大きな不溶物が抗原をおおうため、抗体が近づ
けなくなり、結果として抗原抗体反応が大きく阻害され
ることになる。
The reason why the specific reaction is disturbed is that skim milk is insoluble in water at such a concentration and blocking is performed by using the suspension, and therefore, in terms of microscopic view, a large insoluble matter in skim milk covers the antigen. , The antibodies do not come close to each other, and as a result, the antigen-antibody reaction is largely inhibited.

従来のブロッキング剤としてのスキムミルクの利用
は、ほとんど上記の固相の免疫反応を利用したものであ
り、溶液状態における免疫反応を利用したものではな
い。
The conventional use of skim milk as a blocking agent mostly utilizes the above-mentioned solid-phase immune reaction, not the solution-state immune reaction.

従来、スキムミルクを溶液状態における免疫反応の添
加剤として用いた報告は、1つを除いてない。その1つ
とは、KurokiらがPedialr.Res.19.1017(1985)の中で
2%のスキムミルク懸濁液を用い、羊水中の肺−サーフ
ァクタントアポプロテインの測定を行うに際し、添加剤
として2%のスキムミルクを用いている。しかしなが
ら、このような方法での利用は2つの大きな問題点があ
る。その問題点とは、第1に、スキムミルクが懸濁液で
あるため前述の理由により、特異的な免疫反応をおさえ
てしまうこと、そして第2として、非特異的反応を抑え
るのに必要な濃度である2%のスキムミルク懸濁液を使
用すると、冷蔵庫の保存により、2〜3週後に沈澱が生
じ、この沈澱はどのように再溶解を試みても不可能であ
り、非特異的反応の抑制効果も消失してしまう。すなわ
ち、調製後すぐに使用しなければ、非特異的反応の抑制
のための役割を果しえず、試薬として、まったく不十分
のものと言わざるをえない。
Conventionally, there is no report that skim milk has been used as an additive for an immune reaction in a solution state. One of them is that Kuroki et al. Used a 2% skim milk suspension in Pediarr. Res. 19 .1017 (1985) to measure lung-surfactant apoproteins in amniotic fluid and used 2% as an additive. I use skimmed milk. However, use in such a method has two major problems. The problems are that, firstly, skim milk is a suspension and thus suppresses a specific immune reaction for the above-mentioned reason, and secondly, the concentration required to suppress a non-specific reaction. Using a 2% skim milk suspension, which resulted in the following, caused a precipitate after 2-3 weeks of storage in the refrigerator, which precipitation was not possible no matter how re-dissolution was attempted and the inhibition of non-specific reactions. The effect also disappears. That is, unless it is used immediately after preparation, it cannot play the role of suppressing non-specific reaction, and it must be said that the reagent is completely inadequate.

発明の開示 従って、本発明は前記した従来技術の問題点を排除
し、溶液中における抗原−抗体反応を利用した免疫測定
を行なう際に、特異的反応を実質的に低下させることな
く、非特異的反応を抑えることによって免疫測定反応を
高感度で測定することのできる免疫測定方法及びそれに
用いる試薬キットを提供することを目的とする。
DISCLOSURE OF THE INVENTION Accordingly, the present invention eliminates the above-mentioned problems of the prior art, and when carrying out an immunoassay utilizing an antigen-antibody reaction in a solution, without specifically reducing the specific reaction, nonspecific It is an object of the present invention to provide an immunoassay method capable of measuring an immunoassay reaction with high sensitivity by suppressing a biological reaction and a reagent kit used therefor.

本発明のその他の目的及び有利な点は以下の記載から
明らかな通りである。
Other objects and advantages of the present invention will be apparent from the following description.

本発明に従えば、溶液中における抗原−抗体反応を利
用して免疫測定を行なうに際し、免疫反応溶液に平均分
子量が1.6〜5.0万で等電点が1.0〜5.0であるタンパク質
又はそれを含む混合物を完全溶解状態で含む溶液を抗原
−抗体反応調整剤として存在せしめ、抗原−抗体反応調
整剤の免疫反応溶液における最終濃度を0.02〜0.9重量
%に調整する免疫測定方法が提供される。
According to the present invention, when performing an immunoassay utilizing an antigen-antibody reaction in a solution, a protein having an average molecular weight of 16 to 50 thousand and an isoelectric point of 1.0 to 5.0 or a mixture containing the same in the immune reaction solution. There is provided an immunoassay method in which a solution containing the above is present as an antigen-antibody reaction regulator, and the final concentration of the antigen-antibody reaction regulator in the immune reaction solution is adjusted to 0.02 to 0.9% by weight.

本発明に従えば、更に、平均分子量が1.6〜5.0万で等
電点が1.0〜5.0であるタンパク質又はそれを含む混合物
を完全溶解状態で含む溶液を抗原−抗体反応調整剤とし
て抗原−抗体反応調整剤の免疫反応溶液における最終濃
度が0.02〜0.9重量%になるような量でその構成要素の
一部として含む免疫測定に用いる試薬キットが提供され
る。
According to the present invention, further, a solution containing a protein having an average molecular weight of 16 to 50,000 and an isoelectric point of 1.0 to 5.0 or a mixture containing the protein in a completely dissolved state is used as an antigen-antibody reaction modifier to perform an antigen-antibody reaction. There is provided a reagent kit for use in an immunoassay, which comprises an amount of a regulator in an immunoreaction solution in a final concentration of 0.02 to 0.9% by weight as a part of its components.

本発明において、タンパク質の「平均分子量」は浸透
圧法によって測定した分子量を意味し、具体的には高分
子溶液と純溶媒と溶媒分子は自由に透すが、溶出高分子
は透さない半透膜を境として接した際に両液の浸透圧差
が高分子の分子量のパラメータとなることを利用してタ
ンパク質の平均分子量を測定するもので、本発明では6.
66M尿素溶液を用いて4℃で測定した値である。また
「等電点」はタンパク質をその等電点に従って分離する
クロマトフォーカシング法によって測定した値をいい、
具体的にはPBE94(ファルマシア製)ゲルを充填したカ
ラム(0.5cmφ×45cm)を用い溶出液0.025Mイミダゾー
ル塩酸(pH7.4)で測定した値をいう。
In the present invention, the “average molecular weight” of a protein means a molecular weight measured by an osmotic pressure method, and specifically, a polymer solution, a pure solvent, and a solvent molecule are freely permeable, but an eluted polymer is not permeable. The average molecular weight of a protein is measured by utilizing the fact that the osmotic pressure difference between the two liquids becomes a parameter of the molecular weight of the polymer when the membranes are contacted with each other.
It is a value measured at 4 ° C. using a 66 M urea solution. Also, "isoelectric point" means a value measured by a chromatofocusing method in which proteins are separated according to their isoelectric points,
Specifically, it refers to the value measured with a column (0.5 cmφ × 45 cm) packed with PBE94 (Pharmacia) gel with an eluent of 0.025 M imidazole hydrochloric acid (pH 7.4).

図面の簡単な説明 第1図は、各濃度のスキムミルク水溶液の保存時の溶
解状態保持率を示し、 第2図は、αPI−プラスミン複合体測定系における
スキムミルク濃度とその添加効果を示しており、 第3図及び第4図は、夫々、αPI及びプロテインC
測定系におけるスキムミルク添加効果を、スキムミルク
無添加の場合と比較した検量線を示し、 第5図は、免疫反応溶液中にスキムミルク0.5重量%
を添加した場合の本測定法(実施例5)によるヒト・プ
ロテインSの免疫学的測定用の検量線を示し、 第6図は免疫反応系にスキムミルクを添加しなかった
場合のヒト・プロテインSの免疫学的測定用の検量線
(比較例2)を示し、 第7図はヒト・胎盤由来酸性GST測定系におけるスキ
ムミルク添加濃度による免疫反応への影響を示し、 第8図はコンドロカルシン測定系におけるスキムミル
ク添加濃度による免疫反応への影響を示し、 第9図はIC測定系におけるスキムミルク添加濃度によ
る免疫反応への影響を示し、 第10図は非特異反応率と各種タンパクの分子量の相関
を示し、 第11図は、非特異反応率と各種タンパクの等電点との
相関を示し、 第12図は、オロソムコイドの添加濃度による免疫反応
への影響を示し、 第13図はペプシンの添加濃度による免疫反応への影響
を示し、そして 第14図はヒト肺表面アポ蛋白の測定系におけるスキム
ミルクの添加濃度による免疫反応への影響を示す。
Brief Description of the Drawings Fig. 1 shows the retention rate of the dissolved state of skim milk aqueous solutions at various concentrations during storage, and Fig. 2 shows the skim milk concentration and its addition effect in the α 2 PI-plasmin complex measurement system. Fig. 3 and Fig. 4 show α 2 PI and protein C, respectively.
Fig. 5 shows a calibration curve comparing the effect of adding skim milk in the measurement system with that without adding skim milk. Fig. 5 shows 0.5% by weight of skim milk in the immune reaction solution.
Fig. 6 shows a calibration curve for the immunological measurement of human protein S by the present assay method (Example 5) in the case of adding sucrose, and Fig. 6 shows human protein S in the case where skim milk was not added to the immune reaction system. Fig. 7 shows a calibration curve for immunological measurement (comparative example 2), Fig. 7 shows the effect of skim milk addition concentration on the immune reaction in the human-placenta-derived acidic GST measurement system, and Fig. 8 shows chondrocalcin measurement. Fig. 9 shows the effect of skim milk addition concentration on the immune response in the system, Fig. 9 shows the effect of skim milk addition concentration on the immune reaction in the IC measurement system, and Fig. 10 shows the correlation between the non-specific reaction rate and the molecular weight of various proteins. Fig. 11 shows the correlation between the non-specific reaction rate and the isoelectric point of various proteins, Fig. 12 shows the effect of the addition concentration of orosomucoid on the immune reaction, and Fig. 13 shows the addition of pepsin. Shows the effect of the degree by immune reaction and Figure 14 shows the effect on the immune reaction by the addition concentration of the skimmed milk in the measurement system of a human pulmonary surfactant apoprotein.

発明を実施するための好ましい態様 本発明においては、溶液中における抗原−抗体反応を
利用して免疫測定を行なうに際し、免疫反応溶液に分子
量が1.6〜5.0万、好ましくは2.0〜4.6万で等電点が1.0
〜5.0、好ましくは1.2〜4.8であるタンパク質を抗原−
抗体反応調整剤として用いる。
Preferred embodiment for carrying out the invention In the present invention, when carrying out an immunoassay utilizing an antigen-antibody reaction in a solution, the immune reaction solution has a molecular weight of 16 to 50,000, preferably 20 to 46,000 and is isoelectric. Point is 1.0
-5.0, preferably 1.2-4.8 is a protein-
Used as an antibody reaction modifier.

本発明におけるかかるタンパクとしては、カゼイン、
ペプシン、オボグリコプロテイン、オロソムコイド等が
あげられる。分子量1.6万未満のタンパクを用いた場合
には、非特異的吸着が上昇する傾向にあり、また5.0万
を超えると分子量では免疫非特異的反応の低減が不充分
かつ特異的免疫反応の低下が見られる傾向にあり、従っ
て、本発明において使用するタンパク質の分子量は1.6
万〜5.0万、好ましくは2.0〜4.6万である。
Examples of such proteins in the present invention include casein,
Examples include pepsin, ovoglycoprotein, orosomucoid and the like. When a protein with a molecular weight of less than 16,000 is used, nonspecific adsorption tends to increase, and with a molecular weight of more than 50,000, a reduction in immune nonspecific reaction is insufficient and a reduction in specific immune reaction occurs. The protein used in the present invention has a molecular weight of 1.6
It is 10,000 to 50,000, preferably 2.0 to 46,000.

一方、等電点に関しては等電点5.0を超えるタンパク
質を添加した場合には、非特異的吸着が上昇し、また等
電点1.0未満では特異的反応がおさえられるために本発
明に使用するタンパクの等電点は1.0〜5.0、好ましくは
1.2〜4.8である。
On the other hand, regarding the isoelectric point, when a protein having an isoelectric point of more than 5.0 is added, non-specific adsorption is increased, and when the isoelectric point is less than 1.0, a specific reaction is suppressed. Has an isoelectric point of 1.0 to 5.0, preferably
It is 1.2 to 4.8.

本発明に従えば前記したタンパク質を含む混合物を抗
原−抗体反応調整剤として使用することができる。この
ような混合物としては、例えば主成分として前記タンパ
ク質10〜60重量%、好ましくは20〜50重量%、糖(例え
ば乳糖)30〜80重量%、好ましくは40〜60重量%、その
他脂肪(例えば0.5〜2重量%)、灰分(例えば5〜12
重量%)、水分(例えば2〜8重量%)などを含むこと
ができる。このような混合物として典型的なのはスキム
ミルクである。スキムミルクはタンパク質としてカゼイ
ンを含むものであるが、カゼインを単独で使用した場合
に比べて、スキムミルクは、免疫反応溶液中における分
散性が良く、タンパク質単位重量当りのNBS(Non−spec
ific binding)効果が高く、温度4℃における保存性が
良い(沈澱が生じにくい)という特長を有する。なお、
本発明に用いるスキムミルクとしては、脱脂したミルク
であれば、何の由来の乳であっても良い。一番典型的な
ものは、市販されているDifco社製のスキムミルクであ
る。
According to the present invention, a mixture containing the above-mentioned proteins can be used as an antigen-antibody reaction modifier. Such a mixture includes, for example, 10 to 60% by weight of the protein as a main component, preferably 20 to 50% by weight, sugar (e.g., lactose) 30 to 80% by weight, preferably 40 to 60% by weight, other fats (e.g., 0.5-2% by weight), ash (eg 5-12)
% By weight, water (for example, 2 to 8% by weight), and the like. A typical example of such a mixture is skim milk. Skim milk contains casein as a protein, but skim milk has better dispersibility in an immune reaction solution than NSA (Non-spec
It has the advantages of high ific binding effect and good storage stability at 4 ° C (precipitation does not easily occur). In addition,
The skim milk used in the present invention may be milk of any origin as long as it is defatted milk. The most typical is commercially available skim milk from Difco.

本発明におけるかかるタンパク質溶液(又はスキムミ
ルク溶液)は次のように調整される。すなわち、リン酸
緩衝生理食塩水に適度な濃度のタンパク質又はその混合
物(例えばスキムミルク)を加えて約1時間攪拌する。
次いで超音波をかけて溶解させ、例えば0.45μミリポア
通過溶液といて用いる。種々の濃度のタンパク溶液(又
はスキムミルク溶液)を用いて、免疫測定方法を行なっ
たところ、0.02重量%未満のタンパク質溶液(又はスキ
ムミルク溶液)を用いると、抗原が0であるにもかかわ
らず非特異的反応が著しく増加したため、タンパクの濃
度の下限は0.02重量%である。また0.9重量%を越える
濃度では特異的免疫反応の低下が見られ、また冷蔵庫に
おける保存安定性が低下する傾向にあるので、タンパク
の濃度の上限は0.9重量%である。以上の2つの事実を
考慮し、試薬の安定性を満足し、かつ非特異的反応を効
果的に減ずるタンパク質濃度は、0.02〜0.9重量%の範
囲が適当であり、好ましくは0.05〜0.7重量%である。
The protein solution (or skim milk solution) in the present invention is prepared as follows. That is, a protein or a mixture thereof (for example, skim milk) having an appropriate concentration is added to phosphate buffered saline and stirred for about 1 hour.
Then, it is dissolved by applying ultrasonic waves and used as a 0.45 μmillipore passage solution, for example. When immunoassays were carried out using protein solutions (or skim milk solutions) of various concentrations, when protein solutions (or skim milk solutions) of less than 0.02% by weight were used, non-specificity was obtained even though the antigen was 0. The lower limit of the protein concentration is 0.02% by weight because the biological reaction was significantly increased. Further, when the concentration exceeds 0.9% by weight, the specific immune reaction is decreased, and the storage stability in the refrigerator tends to decrease, so the upper limit of the protein concentration is 0.9% by weight. Considering the above two facts, the protein concentration that satisfies the stability of the reagent and effectively reduces the non-specific reaction is appropriately 0.02 to 0.9% by weight, preferably 0.05 to 0.7% by weight. Is.

本発明に係る免疫測定に用いる試薬キットとは、公知
の試薬キット、例えば2つの抗体を用いるサンドイッチ
法による免疫測定に用いる試薬キットであって、(a)
酵素標識抗体、(b)抗体固定ビーズ、(c)アッセイ
緩衝液、(d)基質液、(e)発色剤、(f)発色停止
液、(g)スタンダード、(h)洗浄液等から構成され
るものであり、好ましくはこれらのいずれかに、前記タ
ンパク質の溶液を含有せしめたものである。なかでも
(a)酵素標識抗体又は(c)アッセイ緩衝液に含有せ
しめるのが、特に(c)アッセイ緩衝液に含有せしめる
のが好ましい。タンパク質溶液は凍結乾燥状態に保持さ
れ、使用時に水等で再溶解して復元させることにより、
所定の濃度範囲になるようにしても構わない。
The reagent kit used in the immunoassay according to the present invention is a known reagent kit, for example, a reagent kit used in the immunoassay by the sandwich method using two antibodies.
Consists of enzyme-labeled antibody, (b) antibody-immobilized beads, (c) assay buffer, (d) substrate solution, (e) color former, (f) color stop solution, (g) standard, (h) wash solution, etc. It is preferable that any one of these contains a solution of the protein. Among them, (a) the enzyme-labeled antibody or (c) the assay buffer, and particularly (c) the assay buffer, is preferable. The protein solution is kept in a freeze-dried state, and when it is reconstituted by reconstitution with water etc. at the time of use,
You may make it a predetermined density range.

本発明に従えば、本発明の条件を満足するタンパク質
又はそれを含む混合物(典型的にはスキムミルク)を免
疫測定系に添加することにより特異的反応をほとんど低
下させる事なしに、充分非特異的反応を低下させる作用
を有する事が確認され、高感度な免疫測定法が可能にな
った。
According to the present invention, a protein satisfying the conditions of the present invention or a mixture containing the protein (typically skimmed milk) is added to an immunoassay system so that the specific reaction is hardly reduced, and the reaction is sufficiently nonspecific. It was confirmed that it has the effect of lowering the reaction, and a highly sensitive immunoassay became possible.

従来のブロッキング作用を発現しうるスキムミルクの
水溶液は、短い放置時間でさえも、放置の間にスキムミ
ルクが凝集し、沈澱が出現し、再溶解しえないものにな
ってしまった。そしてその状態では、スキムミルクのブ
ロッキング作用もまったく消失してしまった。しかしな
がら、抗原−抗体反応調整剤として本発明のスキムミル
クを用いた場合には、すなわち、本発明において使用さ
れる0.02重量%〜0.9重量%のスキムミルク溶液は、1
年間水溶液の状態にて冷蔵庫に保存しても、凝集塊が発
生することは全くなく、免疫測定法についても利用可能
であり、測定試薬として、その保存安定性を満足しうる
ものになった。
A conventional aqueous solution of skim milk capable of exhibiting a blocking action has a problem that even after a short standing time, skimmed milk aggregates and precipitates during the standing and cannot be redissolved. And in that state, the blocking effect of skim milk was completely lost. However, when the skim milk of the present invention is used as the antigen-antibody reaction modifier, that is, the skim milk solution of 0.02 wt% to 0.9 wt% used in the present invention is
Even if it was stored in a refrigerator in the form of an aqueous solution for a year, no aggregates were generated, and it could be used for an immunoassay, and its storage stability could be satisfied as a measuring reagent.

しかも、このように作成したスキムミルク溶液を用い
て免疫反応を行なったところ、0.02重量%という、従来
ではブロッキングの作用が考えられなかった希薄なスキ
ムミルク溶液でも、十分非特異的反応を低下させうる作
用を有することがわかり、また、この範囲のスキムミル
ク濃度では、特異的な免疫反応性をほとんど低下させな
いことも確認され、高感度な免疫測定法が可能になっ
た。
Moreover, when an immunoreaction was carried out using the skim milk solution prepared in this way, it was possible to sufficiently reduce the nonspecific reaction even with a dilute skim milk solution, which had not been considered to have a blocking effect in the past, of 0.02% by weight. Moreover, it was confirmed that the skimmed milk concentration in this range did not significantly reduce the specific immunoreactivity, which enabled a highly sensitive immunoassay.

本発明による測定法が、特異的な免疫反応性をほとん
ど低下させない理由は次のごとく考えられる。
The reason why the assay method of the present invention hardly reduces specific immunoreactivity is considered as follows.

すなわち、従来は水溶姓のスキムミルクの粒子が抗原
や抗体の周りを囲んだため、抗体が近づけず、結果とし
て特異的な免疫反応を低下させたと考えられる。しかし
ながら、スキムミルクを希薄な水溶液にして、しかも超
音波等を用いることにより、完全な溶解状態のスキムミ
ルクが作製できる。このスキムミルク溶液を用い免疫反
応を行なっても、スキムミルクは完全な溶解状態のた
め、抗原−抗体の反応を阻害しないと考えられる。しか
もこの濃度で、十分、非特異的反応を阻害することも確
認された。
That is, it is considered that conventionally, the particles of the skimmed milk, which is water-soluble, surrounds the antigen and the antibody, so that the antibody cannot come close to each other, and as a result, the specific immune reaction is lowered. However, by making skim milk into a dilute aqueous solution and using ultrasonic waves or the like, skim milk in a completely dissolved state can be prepared. Even if an immune reaction is carried out using this skim milk solution, it is considered that skim milk does not inhibit the antigen-antibody reaction because the skim milk is in a completely dissolved state. Moreover, it was confirmed that this concentration sufficiently inhibits the non-specific reaction.

本発明の方法を用いることにより、種々の抗原を測定
することができる。そのような抗原としては例えばα
プラスミン・インヒビター(αPI)、αPI−プラス
ミン複合体、プロテインC、プロテインS等の凝固線溶
系因子、肺−サーファクタント・アポ蛋白及びAFP、CEA
等の腫瘍マーカー等が挙げられる。
By using the method of the present invention, various antigens can be measured. Examples of such an antigen include α 2
Plasmin inhibitor (α 2 PI), α 2 PI-plasmin complex, coagulation and fibrinolysis system factors such as protein C and protein S, lung-surfactant apoprotein and AFP, CEA
Tumor markers and the like.

また、上述のような種々の抗原を測定する際に使用す
る抗体としては、これら抗原に対するポリクローナル抗
体、モノクローナル抗体、それらのフラグメント、例え
ばF(ab′),Fab′,Fab,Facb等を標識または固定抗
体として用いることができる。なかでも抗体としてモノ
クローナル抗体を用いた場合には特異性の高い測定が可
能となること、またFab′を用いた場合にはより高感度
の測定が可能となるので好ましい。
The antibodies used when measuring various antigens as described above include polyclonal antibodies against these antigens, monoclonal antibodies, and their fragments such as F (ab ′) 2 , Fab ′, Fab, Facb and the like. Alternatively, it can be used as a fixed antibody. Of these, when a monoclonal antibody is used as the antibody, highly specific measurement is possible, and when Fab 'is used, higher sensitivity measurement is possible, which is preferable.

かかるポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、及
びそれらのフラグメントは公知の方法、例えば、それぞ
れ日本生化学会編、続生化学実験講座、5巻、1−10
頁、東京化学同人、1986年;ケーラーとミルシュタイン
による細胞融合法(G.Kohler and Milstein,Nature(Lo
ndon),256,495−497(1975));およびエー.ニソノ
フら、ピー.パーハムの方法(A.Nisonoff et al.,Arc
h.Biochem.Biophys.,89,23(1960);P.Parham,J.Immuno
l.,131,2895(1983)で得ることができる。
Such polyclonal antibodies, monoclonal antibodies, and fragments thereof can be prepared by known methods, for example, ed.
Page, Tokyo Kagaku Dojin, 1986; G.Kohler and Milstein, Nature (Lo
ndon), 256 , 495-497 (1975)); and A. Nisonov et al. Purham's method (A. Nisonoff et al., Arc
h.Biochem.Biophys., 89 , 23 (1960); P.Parham, J.Immuno
l., 131 , 2895 (1983).

また、かかるモノクローナル抗体のうち、抗ヒト・プ
ロテインSモノクローナル抗体としては、例えば先に出
願された特願昭61−296766号(昭和61年12月15日出願:
発明の名称“モノクローナル抗体、ハイブリドーマ、モ
ノクローナル抗体の製造方法及びヒト・プロテインSの
分離方法”)の特許出願明細書(特開昭63−148994号公
報)に詳細に説明されている(a)ヒト・プロテインS
とヒト補体系制御因子のc4b結合タンパクとの複合体を
特異的に認識し結合するヒト・プロテインSに対するモ
ノクローナル抗体、及び(b)フリーのヒト・プロテイ
ンSを選択的に認識し、ヒト・プロテインSとヒト補体
系制御因子のc4b結合タンパクとの複合体は認識しな
い、ヒト・プロテインSに対するモノクローナル抗体等
を挙げることができる。
Among such monoclonal antibodies, the anti-human protein S monoclonal antibody is, for example, Japanese Patent Application No. 61-296766 (filed Dec. 15, 1986:
The invention is described in detail in the patent application specification (Japanese Patent Laid-Open No. 63-148994) entitled "Monoclonal antibody, hybridoma, method for producing monoclonal antibody and method for separating human protein S" (a) Human・ Protein S
Monoclonal antibody against human protein S that specifically recognizes and binds to the complex of human and the c4b binding protein of human complement system regulatory factor, and (b) selectively recognizes free human protein S and A monoclonal antibody against human protein S, which does not recognize the complex between S and the c4b binding protein of the human complement system regulatory factor, can be mentioned.

また抗原−抗体反応としては、抗原のそれぞれ異なる
抗原決定部位を認識する2種類の抗体を用いる、いわゆ
るサンドイッチ法、あるいは二抗体法など、従来知られ
ている免疫学的測定法を挙げることができるが、なかで
も、サンドイッチ法を好ましく挙げることができる。
Examples of the antigen-antibody reaction include conventionally known immunological measurement methods such as a so-called sandwich method or a two-antibody method using two kinds of antibodies that recognize different antigen determining sites of an antigen. However, the sandwich method is particularly preferable.

実施例 以下、実施例に従って本発明を更に詳しく説明する
が、本発明の技術的範囲をこれらの実施例に限定するも
のでないことはいうまでもない。以下の例において
「%」は特にことわらない限り重量基準である。
Examples Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but it goes without saying that the technical scope of the present invention is not limited to these Examples. In the following examples, "%" is based on weight unless otherwise specified.

実施例1:スキムミルクの溶解性および、溶解状態保持試
験 各濃度のスキムミルク水溶液(2.0,1.5,1.0,0.8,0.7,
0.6,0.5,0.4,0.3,0.2,0.1,0.05,0.02,0.01%)を室温で
スターラーバーを用いて攪拌し、その後、超音波を10分
間かけ、溶解させた。これらの各溶液にチメローサール
を0.01%になるように加え、冷蔵庫に12ケ月保存し、保
存開始時のタンパク質と12ケ月保存品のそれとを比較
し、Bradfordのタンパク測定キットを用いて各濃度にお
ける溶解状態保持の程度を検討した。第1図に、各濃度
における溶解状態保持率(%)を示す。第1図におい
て、 の式を用いた。第1図に示すごとく、スキムミルクが0.
8%以下であれば、充分にその溶液状態で安定に保存し
うることがわかる。
Example 1: Solubility of skim milk and dissolution state retention test Skim milk aqueous solution (2.0, 1.5, 1.0, 0.8, 0.7,
0.6, 0.5, 0.4, 0.3, 0.2, 0.1, 0.05, 0.02, 0.01%) was stirred at room temperature with a stirrer bar, and then ultrasonic waves were applied for 10 minutes to dissolve them. Add 0.01% thimerosal to each of these solutions, store it in the refrigerator for 12 months, compare the protein at the start of storage with that of the product stored for 12 months, and use the Bradford protein measurement kit to dissolve at each concentration. The degree of state retention was examined. FIG. 1 shows the dissolution state retention rate (%) at each concentration. In FIG. Was used. As shown in Fig. 1, there is no skimmed milk.
It can be seen that if the content is 8% or less, the solution can be sufficiently and stably stored.

実施例2:αPI−プラスミン複合体の免疫測定法におけ
る特異的反応性および非特異的反応性のスキムミルク濃
度依存性の検討 実施例1のスキムミルク溶液を用い、αPI−プラス
ミン複合体0,50,100,200ng/mlにおける免疫測定を行な
い、非特異的反応(Ag=0)と特異的反応(Ag=200ng/
ml)における測定値を、スキムミルク非添加系と比較し
た。
Example 2: α 2 PI- with specific reactivity and nonspecific reactivity of the skim milk concentration dependence skim milk solution study Example 1 of the immunoassay of plasmin complexes, alpha 2 PI- plasmin complexes 0 , 50,100,200ng / ml immunoassay, non-specific reaction (Ag = 0) and specific reaction (Ag = 200ng / ml)
ml) was compared with the system without skim milk.

その結果は、第2図に示したごとくであり、スキムミ
ルクが、0.02%より小さくなると、免疫に非特異的な反
応が上昇することがみとめられた。また、スキムミルク
が、0.8%をこえると、特異反応が阻害されはじめ、ス
キムミルク濃度は、0.02〜0.8が溶液中の免疫反応を高
感度に行なうのに最適であることが確認された。
The results are shown in Fig. 2, and it was found that when skim milk was smaller than 0.02%, non-specific reaction to immunity increased. It was also confirmed that when the skim milk content exceeds 0.8%, the specific reaction begins to be inhibited, and that the skim milk concentration of 0.02 to 0.8 is optimal for highly sensitive immune reaction in the solution.

実施例3:α−プラスミン・インヒビター(αPI)の
免疫測定法 ヒトαプラスミン・インヒブター(αPI)に対す
るモノクローナル抗体を固定したポリスチレン製ボール
(直径6mm)と、このモノクローナル抗体とはαPIに
対する反応部位が異なる抗ヒトαPI−モノクローナル
抗体のペルオキシダーゼ標識体とを用いて、0.5%BSA及
び0.1%スキムミルクを含有する0.01Mリン酸緩衝生理食
塩水(pH7.4)中において、ヒトαPI濃度0,200,400,8
00ng/mlの各水準について、37℃の温度で60分反応を行
なった後、ボールと反応液とを分離し、ポールを生理食
塩水でよく洗浄した。次に、これをテトラメチルベンジ
ジン−H2O2の発色系を含有する水溶液中において反応さ
せた後、反応停止剤を加えて酸素反応を停止させて、65
0nmの波長の吸収強度を測定し、濃度と吸収強度とをプ
ロットして検量線を得た。
Example 3: α 2 - plasmin inhibitor (alpha 2 PI) polystyrene balls with a fixed monoclonal antibody against immunoassay human alpha 2 plasmin-Inhibuta (alpha 2 PI) (diameter 6 mm), and the monoclonal antibodies A peroxidase-labeled anti-human α 2 PI-monoclonal antibody having different reaction sites for α 2 PI was used in 0.01 M phosphate buffered saline (pH 7.4) containing 0.5% BSA and 0.1% skim milk. , Human α 2 PI concentration 0,200,400,8
After reacting each level of 00 ng / ml for 60 minutes at a temperature of 37 ° C., the ball and the reaction solution were separated, and the pole was washed well with physiological saline. Next, this is reacted in an aqueous solution containing a color forming system of tetramethylbenzidine-H 2 O 2 , and then a reaction terminator is added to stop the oxygen reaction,
The absorption intensity at a wavelength of 0 nm was measured, and the concentration and the absorption intensity were plotted to obtain a calibration curve.

これを、0.1%スキムミルクが存在しない他は、上記
方法と全く同じ方法で反応させて作成した検量線と比較
したところ、第3図に示した如く、0.1%スキムミルク
を添加した測定系では、スキムミルク添加のない系に較
べて、ヒトαPI濃度0ng/mlの吸収強度が低く、非特異
的反応が少なく良好なことが認められた。
This was compared with a calibration curve prepared by reacting in exactly the same manner as above except that 0.1% skim milk was not present. As shown in FIG. It was confirmed that the human α 2 PI concentration of 0 ng / ml had a lower absorption intensity and less non-specific reaction, and was better than the system without addition.

実施例4:プロテインCの免疫測定法 ヒトプロテインCのGla領域に対する抗ヒトプロテイ
ンC−モノクローナル抗体を固定したポリスチレン製ポ
ール(直径6mm)と、このモノクローナル抗体と反応部
位が異なる抗ヒトプロテインC−モノクローナル抗体の
ペルオキシダーゼ標識体とを用いて、0.5%BSA、0.1%
スキムミルク、5mM塩化カルシウム、及び1U/mlへパリン
を含有する0.05Mトリス緩衝生理食塩水(pH7.4)中にお
いて、プロテインC濃度0,12.5,25,50ng/mlの各水準に
ついて、37℃において30分反応を行なった後、ボールと
反応液を分離してからポールをよく洗浄した。次に、こ
れをテトラメチルベンジジン−H2O2の発色系で発色させ
た後、反応停止剤を加えて酸素反応を停止させて、650n
mの波長の吸収強度を測定し、濃度と吸収強度とをプロ
ットして検量線を得た。これを、0.1%スキムミルクが
存在しない他は、上記方法と全く同じ方法で反応させた
検量線と比較したところ、第4図に示した如く、0.1%
スキムミルクを添加した測定系では、スキムミルク添加
のない系に較べて、プロテインC濃度0ng/mlの吸収強度
が低く、非特異的反応が少ないことが認められた。
Example 4: Immunoassay method for protein C Polystyrene pole (6 mm in diameter) to which an anti-human protein C-monoclonal antibody against the Gla region of human protein C is immobilized, and an anti-human protein C-monoclonal having a different reaction site from this monoclonal antibody 0.5% BSA, 0.1% with peroxidase-labeled antibody
In 0.05M Tris-buffered saline (pH7.4) containing skim milk, 5 mM calcium chloride, and 1 U / ml heparin, at 37 ° C, protein C concentrations of 0, 12.5, 25, and 50 ng / ml were obtained. After reacting for 30 minutes, the ball and the reaction solution were separated, and then the pole was thoroughly washed. Next, this was developed with a color-forming system of tetramethylbenzidine-H 2 O 2 , and then a reaction terminator was added to stop the oxygen reaction, and 650n
The absorption intensity at the wavelength of m was measured, and the concentration and the absorption intensity were plotted to obtain a calibration curve. When this was compared with a calibration curve which was reacted in exactly the same manner as above except that 0.1% skim milk was not present, as shown in FIG.
It was confirmed that the assay system with the addition of skim milk had a lower absorption intensity at a protein C concentration of 0 ng / ml and less non-specific reaction than the system without the addition of skim milk.

参考例1:抗ヒト・プロテインS(PS)モノクローナル抗
体の製造及び精製 精製したヒト・PSを雌のBalb/Cマウス(4周齢)2匹
に対して14日間隔で4回免疫した。初回の免疫はPBSに
溶解した。50μgのヒト・PSを当量のフロイントの完全
アジュバント(Complete Freund′s adjuvant)と混合
し、そのエマルジョンを、腹腔内に投与した(0.5mg/he
ad)、2回目、3回目は、同じく50μgのヒト・PSをフ
ロイントの不完全アジュバント(Freund′s imcomplete
adjuvant)と混合し、同じく腹腔内に投与した。最終
免疫は30μgのヒト・PSをPBS溶液のまま、マウス尾静
脈から追加投与した。最終免疫の3日後に免疫したマウ
スの膵臓細胞を細胞融合に用いた。
Reference Example 1: Production and purification of anti-human protein S (PS) monoclonal antibody Purified human PS was immunized four times at 14-day intervals to two female Balb / C mice (4 weeks old). The first immunization was dissolved in PBS. 50 μg of human PS was mixed with an equivalent amount of Freund's adjuvant and the emulsion was intraperitoneally administered (0.5 mg / he
ad) In the second and third times, 50 μg of human PS was also used in Freund's incomplete adjuvant (Freund's imcomplete).
adjuvant) and administered intraperitoneally. For the final immunization, 30 μg of human PS was additionally administered as a PBS solution through the tail vein of mice. Pancreatic cells of the immunized mouse were used for cell fusion 3 days after the final immunization.

免疫したマウスの膵臓細胞と、同系マウスの骨髄腫細
胞(P3U1)を約2:1〜約15:1の割合で混合し、50%ポリ
エチレングリコール1540(和光純薬(製))を融合促進
剤としてKohlerとMilsteinの方法に従い細胞融合を行な
った。融合後の細胞は、1×I06cells/mlの細胞濃度と
なるように10%FCS・−RPMI−1640倍地に懸濁し、96wel
lsマイクロプレート(Coster)に1ウエルあたり100μ
lずつ分注した。
Pancreatic cells of immunized mouse and myeloma cells of syngeneic mouse (P3U1) are mixed at a ratio of about 2: 1 to about 15: 1, and 50% polyethylene glycol 1540 (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) is used as a fusion accelerator. As a result, cell fusion was performed according to the method of Kohler and Milstein. After fusion, the cells were suspended in 10% FCS-RPMI-1640 medium at a cell concentration of 1 × 10 6 cells / ml and 96wel.
100μ per well in ls microplate (Coster)
1 was dispensed.

融合細胞は、CO2インキュベーター(5%CO2、37℃)
中で培養し、ヒポキサンチン、アミノプテリン;チミジ
ンを含む培地(HAT培地)で培地交換を行ない、HAT培地
中で増殖させて、膵臓細胞と、骨髄腫細胞から成るハイ
ブリドーマのスクリーニングを行なった。
Fused cells are CO 2 incubator (5% CO 2 , 37 ℃)
The cells were cultured in a medium, the medium was exchanged with a medium containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine (HAT medium), the medium was grown in HAT medium, and a hybridoma composed of pancreatic cells and myeloma cells was screened.

ハイブリドーマの培養上清中の抗体は抗原ヒト・PSを
コーティングしたマイクロタイタープレートを用いELIS
A法により検出した。第2抗体には、アルカリホスファ
ターゼ標識ウサギ抗マウスIgG抗体を用い、抗原PSに対
する結合性を調べた。融合細胞をまいた合計494のウエ
ルのうち、487のウエルにコロニーの形成が認められ、
このうち抗原PSに対して結合性を示す抗体産生陽性ウエ
ルは94ウエルであった。
The antibody in the culture supernatant of the hybridoma is ELIS using a microtiter plate coated with the antigen human PS.
It was detected by method A. As the second antibody, a rabbit anti-mouse IgG antibody labeled with alkaline phosphatase was used, and the binding property to the antigen PS was examined. Of the 494 wells in which the fused cells were seeded, formation of colonies was observed in 487 wells,
Among these, 94 wells were positive for antibody production that showed binding to the antigen PS.

これらの抗体産生陽性ウエルのうち4つのウエルにつ
いて限界希釈法によるクローニングを2回繰り返して行
ない、6個のクローンを得た。得られたクローンは、90
%FCS−10%DMSO中に懸濁させ液体窒素中に保存した。
Cloning by the limiting dilution method was repeated twice for 4 of these antibody production positive wells to obtain 6 clones. 90 clones were obtained.
Suspended in% FCS-10% DMSO and stored in liquid nitrogen.

各クローンの産生するモノクローナル抗体をクローン
をBalb/Cマウス腹腔内で増殖させ、その腹水からプロテ
インA−Sepharose 4Bカラムを用いて精製した。
The monoclonal antibody produced by each clone was grown in the abdominal cavity of the Balb / C mouse and purified from the ascites using a protein A-Sepharose 4B column.

参考例2:精製したモノクローナル抗体の性質 マウス腹水から精製した各クローンのIgGについてク
ラス及びヒト・プロテインSに対する結合性を調べた。
Reference Example 2: Properties of purified monoclonal antibody IgG of each clone purified from mouse ascites was examined for class and human protein S-binding properties.

マウスモノクローナル抗体のクラスは、各クラス特異
性の抗マウス抗血清を用いて、オクタロニー法により決
定した。
The class of mouse monoclonal antibody was determined by the Ouchterlony method using anti-mouse antiserum of each class specificity.

この結果を下記第2表に示した。 The results are shown in Table 2 below.

ヒト・プロテインSに対する結合性は、マイクロタイ
タープレートに固相化したヒト・プロテインSと適当な
濃度になるように希釈したモノクローナル抗体とを反応
させ、アルカリ性フォスファターゼ標識化したヤギ抗マ
ウスIgGで検出することにより評価した。
Binding to human protein S is detected with goat anti-mouse IgG labeled with alkaline phosphatase by reacting human protein S immobilized on a microtiter plate with a monoclonal antibody diluted to an appropriate concentration. It was evaluated by

その結果6種類のモノクローナル抗体のヒト・プロテ
インSに対する結合の強さは、2B9F122B9C10>3C3G8
>3C4G4>2B9G3>>2E12 C7であることが判明した。
As a result, the binding strength of the 6 types of monoclonal antibodies to human protein S was 2B9F122B9C10> 3C3G8.
>3C4G4> 2B9G3 >> 2E12 C7 was found.

参考例3:ヒトC4bpとプロテインS複合体に対する反応性 精製した前記6種類のモノクローナル抗体を10μg/ml
の濃度でマイクロタイタプレートにコーティングし、1
%BSAでBocking後、適当な濃度になるように希釈したヒ
ト健常人血漿を加え、血漿中のC4bp−プロテインS複合
体とモノクローナル抗体とを反応させた。次に、アルカ
リ性フォスファターゼ標識化した抗C4bp抗体を加え、6
種類のモノクローナル抗体のC4bp−プロテインS複合体
に対する結合性を検出し、調べた。
Reference Example 3: Reactivity to human C4bp and protein S complex 10 μg / ml of the purified 6 types of monoclonal antibodies
Coat microtiter plate at the concentration of 1
After Bocking with% BSA, human normal human plasma diluted to an appropriate concentration was added, and the C4bp-protein S complex in plasma was reacted with the monoclonal antibody. Next, add an alkaline phosphatase-labeled anti-C4bp antibody,
The binding properties of various types of monoclonal antibodies to the C4bp-protein S complex were detected and examined.

その結果、モノクローナル抗体2E12C7は、フリーのプ
ロテインSに対しては非常に結合性が弱いが、C4bp−プ
ロテインS複合体に対しては、高度に特異的に結合性を
示し、6種類のモノクローナル抗体のC4bp−プロテイン
S複合体に対する結合の強さは、2E12C7>>2B9F102B
9C12>3C3G8>3C4G4>2B9G3であることが判明した。
As a result, the monoclonal antibody 2E12C7 showed very weak binding to free protein S, but highly specific binding to C4bp-protein S complex. Binding strength to C4bp-protein S complex of 2E12C7 >> 2B9F102B
It was found that 9C12>3C3G8>3C4G4> 2B9G3.

参考例2及び3で示されるように、C4bpとプロテイン
Sとの複合体は認識せず、フリーのヒト・プロテインS
を特異的に認識して結合し得るモノクローナル抗体とし
て2B9F12及び2B9C10が得られた。
As shown in Reference Examples 2 and 3, the complex of C4bp and protein S was not recognized and free human protein S was not recognized.
2B9F12 and 2B9C10 were obtained as monoclonal antibodies capable of specifically recognizing and binding to.

実施例5 (1)抗体固定化ビーズの調製 ポリスチレン製ビーズ(直径6mm)を、山羊抗ヒト・
プロテインS抗体(ポリクローナル抗体;American Diag
nostica社製)の20μg/mlの濃度を有するpH7.4の0.01M
リン酸緩衝生理食塩水(PBS)溶液中に4℃の温度で1
昼夜放置した後、PBSで洗浄してから0.5%牛血清アルブ
ミン(BSA)水溶液中に4℃の温度で1昼夜放置してポ
ストコーティング処理を実施することにより抗体固定化
ビーズを得た。
Example 5 (1) Preparation of antibody-immobilized beads Polystyrene beads (diameter 6 mm) were used as goat anti-human
Protein S antibody (polyclonal antibody; American Diag
nostica) 0.01 M pH 7.4 with a concentration of 20 μg / ml
1 in phosphate buffered saline (PBS) solution at a temperature of 4 ° C
After leaving it for 24 hours, it was washed with PBS, and then left for 1 day in a 0.5% bovine serum albumin (BSA) aqueous solution at a temperature of 4 ° C. for post-coating treatment to obtain antibody-immobilized beads.

(2)ホースラディシュ・ペルオキシダーゼ標識モノク
ローナル抗体の調製 フリーのヒト・プロテインSを特異的に認識するモノ
クローナル抗体(2B9F12)の1.0mg/mlのPBS溶液1.0ml
に、N−(m−マレイミド安息香酸)−N−サクシンイ
ミドエステル(MBS)の10mg/mlのジメチルホルムアミド
溶液50μlを添加し、25℃の温度で30分間反応させた
後、セファデックスG−25を充填したカラムを用い、0.
1Mリン酸緩衝液(pH6.0)でゲル濾過を行ない、マレイ
ミド化モノクローナル抗体と未反応MBSとを分離した。
(2) Preparation of horseradish peroxidase-labeled monoclonal antibody 1.0 ml of 1.0 mg / ml PBS solution of free monoclonal antibody (2B9F12) that specifically recognizes human protein S 1.0 ml
50 μl of a 10 mg / ml dimethylformamide solution of N- (m-maleimidobenzoic acid) -N-succinimide ester (MBS) was added to the mixture, and the mixture was reacted at a temperature of 25 ° C. for 30 minutes, and then Sephadex G-25. Using a column packed with.
Gel filtration was performed with 1 M phosphate buffer (pH 6.0) to separate maleimidated monoclonal antibody and unreacted MBS.

一方、ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ(HR
P)の1.0mg/mlのPBS溶液2.0mlに、N−サクシンイミジ
ル−3−(2−ピリジルチオ)プロピオネート(SPDP)
の10mg/mlエタノール溶液を添加し、25℃で30分間反応
させた後、セファデックスG−25で充填したカラムを用
い、0.01M酢酸緩衝液(pH4.5)でゲル濾過して精製し、
ピリジルジスルフィド化HRPを含有する画分を採取して
コロジオンバック中で氷冷下に約10倍に濃縮した。次
に、これに0.85%NaClと0.1Mジチオスレイトールとを含
有する0.1M酢酸緩衝液(pH4.5)1mlを添加して、25℃で
30分間攪拌してHRP分子中に導入したピリジルジスルフ
ィド基を還元した後、セファデックスG−25カラムを用
い、0.1Mリン酸緩衝液(pH6.0)でゲル濾過して、チオ
ール化HRPを含有する画分を得た。
Meanwhile, horseradish peroxidase (HR
P) in 2.0 ml of 1.0 mg / ml PBS solution, N-succinimidyl-3- (2-pyridylthio) propionate (SPDP)
Of 10 mg / ml of ethanol was added and reacted at 25 ° C. for 30 minutes, and then purified by gel filtration with 0.01 M acetate buffer (pH 4.5) using a column packed with Sephadex G-25.
Fractions containing pyridyl disulfided HRP were collected and concentrated approximately 10 times under ice cooling in a collodion bag. Next, 1 ml of 0.1 M acetate buffer (pH 4.5) containing 0.85% NaCl and 0.1 M dithiothreitol was added thereto, and the mixture was added at 25 ° C.
After stirring for 30 minutes to reduce the pyridyl disulfide group introduced into the HRP molecule, gel filtration with 0.1M phosphate buffer (pH 6.0) using Sephadex G-25 column to contain thiolated HRP To obtain a fraction.

次に、得られたマレイミド化モノクローナル抗体とチ
オール化HRPとを混合し、コロジオンバックを用いて氷
冷下に4mg/mlの蛋白質濃度まで濃縮し、4℃で1昼夜放
置した後、ウルトロゲルAcA44(仏LKB社製)を充填した
カラムを用いてPBSでゲル濾過することによりHRP標識モ
ノクローナル抗体を得た。
Next, the obtained maleimidated monoclonal antibody and thiolated HRP were mixed, concentrated to a protein concentration of 4 mg / ml under ice-cooling using a collodion bag, and allowed to stand at 4 ° C for 1 day, then Ultrogel AcA44 ( An HRP-labeled monoclonal antibody was obtained by gel filtration with PBS using a column packed with LKB (France).

(3)ヒト・プロテインSの測定 山羊抗ヒト・プロテインS抗体を固定化したビーズ各
1個と精製したヒト・プロテインSを0,50,100,200,400
ng/mlの各濃度で含有する0.1%BSA及び0.1%スキムミル
ク含有PBS溶液(pH7.4)200μlと、HRP標識モノクロー
ナル抗体を含有する0.1%BSA及び0.1%スキムミルク含
有PBS溶液(pH7.4)200μlとを各試験管(n=2)に
添加して37℃の温度で1時間インキュベートした。
(3) Measurement of human protein S 0, 50, 100, 200, 400 purified beads of goat anti-human protein S antibody immobilized on each 1 bead and purified human protein S
200 μl of 0.1% BSA and 0.1% skim milk-containing PBS solution (pH 7.4) containing each concentration of ng / ml and 0.1% BSA and 0.1% skim milk-containing PBS solution (pH 7.4) containing HRP-labeled monoclonal antibody 200 μl And were added to each test tube (n = 2) and incubated at a temperature of 37 ° C. for 1 hour.

次に、試験管内の溶液を吸引除去した後、PBSで2回
洗浄してから、テトラメチルベンジジン塩酸塩0.02%及
び過酸化水素0.005%を含有する0.1Mリン酸−クエン酸
緩衝液(pH4.0)を400μlずつ各試験管に加え、37℃の
温度で30分間インキュベートした後、反応停止剤として
0.1%NaF及び2%酢酸を含有する水溶液1mlを各試験管
に加えて酵素反応を停止させた。
Next, after the solution in the test tube was removed by suction, the tube was washed twice with PBS, and then 0.1 M phosphate-citrate buffer solution (pH 4.4) containing 0.02% tetramethylbenzidine hydrochloride and 0.005% hydrogen peroxide was added. 0) 400 μl each was added to each test tube and incubated at 37 ° C for 30 minutes.
1 ml of an aqueous solution containing 0.1% NaF and 2% acetic acid was added to each test tube to stop the enzymatic reaction.

次いで、この溶液を分光光度計を用いて650nmの波長
の吸収強度を測定し、これをヒト・プロテインS濃度と
プロットすることにより、濃度依存性を有するヒト・プ
ロテインS濃度測定用の検量線を得た(第5図参照)。
Then, the absorption intensity of this solution at a wavelength of 650 nm was measured using a spectrophotometer, and this was plotted with the concentration of human protein S to obtain a calibration curve for measuring concentration of human protein S, which has concentration dependence. Obtained (see FIG. 5).

血漿検体中のヒト・プロテインSの濃度測定として、
正常混合人血漿を0.1%BSA及び0.1%スキムミルク含有P
BS溶液(pH7.4)で50倍に希釈した溶液200μlを、抗体
固定ビーズ及びHRP標識モノクローナル抗体溶液200μl
と共に試験管に加え、検量線を作製した方法と同様にし
て免疫反応及び発色反応を行なった後、分光光度計にて
吸光光度を測定した。この値を検量線を用いて血漿中の
濃度に換算したヒト・プロテインS濃度を求めた結果、
血漿中濃度は10.4μg/mlであった。
For measuring the concentration of human protein S in plasma samples,
Normal mixed human plasma containing 0.1% BSA and 0.1% skim milk P
200 μl of solution diluted 50 times with BS solution (pH 7.4), 200 μl of antibody-immobilized beads and HRP-labeled monoclonal antibody solution
Then, the sample was added to a test tube, and an immunoreaction and a color reaction were carried out in the same manner as in the method of preparing a calibration curve, and then the absorptivity was measured with a spectrophotometer. The value of human protein S was calculated by converting this value into the plasma concentration using a calibration curve.
The plasma concentration was 10.4 μg / ml.

比較例1 実施例5と同様の方法で調製した山羊抗ヒト・プロテ
インS抗体を固定化したビーズ各1個と精製したヒト・
プロテインSを0,50,100,200,400ng/mlの各濃度で含有
する0.5%BSA含有PBS溶液(pH7.4)200μlと、同じく
実施例5と同様の方法で調製したHRP標識マウス抗ヒト
・プロテインS−モノクローナル抗体を含有する0.5%B
SA含有PBS溶液(pH7.4)200μlとを各試験管(n=
2)に添加して37℃の温度で1時間インキュベートし
た。
Comparative Example 1 One goat anti-human protein S antibody-immobilized bead prepared in the same manner as in Example 5 and purified human
200 μl of 0.5% BSA-containing PBS solution (pH 7.4) containing protein S at concentrations of 0, 50, 100, 200, 400 ng / ml and HRP-labeled mouse anti-human protein S-monoclonal prepared in the same manner as in Example 5 0.5% B containing antibody
200 μl of SA-containing PBS solution (pH 7.4) and each test tube (n =
2) and incubated for 1 hour at a temperature of 37 ° C.

次に、各試験管内の溶液を吸引除去した後、PBSで各
2回洗浄してから、テトラメチルベンジジン塩酸塩0.02
%及び過酸化水素0.005%を含有する0.1Mリン酸−クエ
ン酸緩衝液(pH4.0)を400μlずつ各試験管に加え、37
℃の温度で30分間インキュベートした後、反応停止剤と
して0.1%NaF及び2%酢酸を含有する水溶液1mlを各試
験管に加えて酵素反応を停止させた。
Next, after removing the solution in each test tube by suction, wash each with PBS twice and then add tetramethylbenzidine hydrochloride 0.02
% And 0.005% hydrogen peroxide in 0.1 M phosphate-citrate buffer (pH 4.0) 400 μl at a time, added to each tube 37
After incubating at a temperature of ° C for 30 minutes, 1 ml of an aqueous solution containing 0.1% NaF and 2% acetic acid as a reaction terminator was added to each test tube to stop the enzymatic reaction.

次いで、この溶液を分光光度計を用いて650nmの波長
の吸収強度を測定し、これをヒト・プロテインS濃度に
対してプロットすることにより検量線を作製した(第6
図参照)。
Then, the absorption intensity of this solution at a wavelength of 650 nm was measured using a spectrophotometer, and this was plotted against the concentration of human protein S to prepare a calibration curve (No. 6).
See figure).

この検量線は、非特異的反応のために基線が吸収強度
0.28と非常に高く良好な感度が得られず、測定系として
は不十分であった。
This calibration curve has a baseline absorption intensity due to non-specific reactions.
The sensitivity was very high at 0.28 and good sensitivity was not obtained, which was insufficient as a measurement system.

比較例2 実施例5と同様の方法で調製した山羊抗ヒト・プロテ
インS抗体を固定化したビーズ各1個と精製したヒト・
プロテインSを0,50,100,200,400ng/mlの各濃度で含有
する0.5%BSA及び2%スキムミルク含有PBS溶液(pH7.
4)200μlと、同じく実施例5と同様の方法で調製した
HRP標識マウス抗ヒト・プロテインS−モノクローナル
抗体を含有する0.5%BSA及び2%スキムミルク含有PBS
溶液(pH7.4)200μlとを各試験管(n=2)に添加し
て37℃の温度で1時間インキュベートした。
Comparative Example 2 One goat anti-human protein S antibody-immobilized bead prepared in the same manner as in Example 5 and purified human
PBS solution containing 0.5% BSA and 2% skim milk containing protein S at concentrations of 0, 50, 100, 200 and 400 ng / ml (pH 7.
4) 200 μl, prepared in the same manner as in Example 5
PBS containing 0.5% BSA and 2% skim milk containing HRP-labeled mouse anti-human protein S-monoclonal antibody
200 μl of the solution (pH 7.4) was added to each test tube (n = 2) and incubated at a temperature of 37 ° C. for 1 hour.

次に、実施例5と同様の方法で発色反応及び反応停止
を行なった後、この溶液を分光光度計を用いて650nmの
波長の吸光度を測定し、これをヒト・プロテインS濃度
とプロットすることにより、実施例5の場合と同様の濃
度依存性を有する良好な検量線が得られた。
Next, after carrying out a color reaction and a reaction termination in the same manner as in Example 5, the absorbance of this solution at a wavelength of 650 nm was measured using a spectrophotometer, and this was plotted with the human protein S concentration. Thus, a good calibration curve having the same concentration dependence as in Example 5 was obtained.

しかし、0.5%BSA及び2%スキムミルク含有PBS溶液
(pH7.4)からなる免疫反応用緩衝液及びHRP標識モノク
ローナル抗体を含有する0.5%BSA及び2%スキムミルク
含有PBS溶液(pH7.4)を無菌状態でバイアルに充填し、
冷蔵庫中に1ケ月間保存したところ、これらの溶液中の
スキムミルクが凝集塊を形成した。
However, an immune reaction buffer consisting of 0.5% BSA and 2% skim milk-containing PBS solution (pH 7.4) and a 0.5% BSA containing 2% skim milk-containing PBS solution (pH 7.4) containing HRP-labeled monoclonal antibody were sterilized. Fill the vial with
When stored in the refrigerator for 1 month, skim milk in these solutions formed aggregates.

この凝集塊を分離して免疫学的測定を実施したとこ
ろ、もはや濃度依存性を有する検量線を得ることができ
ず、測定不能であった。
When this aggregate was separated and subjected to immunological measurement, a concentration-dependent calibration curve could no longer be obtained, and measurement was impossible.

実施例6:ヒト・胎盤由来酸性グルタチオンS−トランス
フェラーゼ測定系におけるスキムミルク添加試験 免疫測定用緩衝液(1%牛血清アルブミン0.01Mリン
酸0.85%NaCl緩衝液pH7.2)で、ヒト・胎盤由来酸性グ
ルタチオンS−トランスフェラーゼ(以後ヒト・胎盤由
来酸性GSTと記す)の0,25及び50μg/ml溶液を作製しそ
の100μlと、同上緩衝液で最終濃度が0,0.05,0.1,0.2
%となるよう調整したスキムミルク含有溶液100μl、
及びホースラディッシパーオキシダーゼ標識抗ヒト・胎
盤由来GSTモノクローナル抗体を含有する同上緩衝液200
μlを試験管に入れ、よく混和した。これに、兎抗ヒト
・胎盤由来酸性GSTポリクローナル抗体を固定したビー
ズ1個をそれぞれの試験管に入れて、37℃の温度で2時
間反応させた。次に試験管内の溶液を吸引除去した後、
生理食塩水2mlで3回洗浄してから、3,3′、5,5′テト
ラメチルベンジジン塩酸塩0.02%、H2O22.5mMを含有す
る0.1Mリン酸−クエン酸緩衝液(pH4.0)を0.4mlずつ各
試験管に加えて、37℃の温度で30分間反応させた後、反
応停止剤として、1N硫酸水溶液を1mlずつ加えて酸素反
応を停止させた。
Example 6: Skim milk addition test in human / placenta-derived acid glutathione S-transferase assay system Human / placenta-derived acid was measured with an immunoassay buffer (1% bovine serum albumin 0.01 M phosphate 0.85% NaCl buffer pH 7.2). Glutathione S-transferase (hereinafter referred to as human / placenta-derived acidic GST) solutions of 0, 25 and 50 µg / ml were prepared, and 100 µl of the solution was added to the above-mentioned buffer to give final concentrations of 0,0.05,0.1,0.2.
100 μl of skim milk-containing solution adjusted to
And the same buffer 200 containing an anti-human placenta-derived GST monoclonal antibody labeled with horseradish peroxidase
μl was placed in a test tube and mixed well. To each test tube, one bead on which the rabbit anti-human placenta-derived acidic GST polyclonal antibody was immobilized was placed in each test tube and reacted at a temperature of 37 ° C. for 2 hours. Next, after removing the solution in the test tube by suction,
After washing 3 times with 2 ml of physiological saline, 0.1M phosphate-citrate buffer solution (pH 4.3) containing 0.03% of 3,3 ′, 5,5′tetramethylbenzidine hydrochloride and 2.5 mM of H 2 O 2 (pH 4. 0) was added to each test tube in an amount of 0.4 ml and reacted at a temperature of 37 ° C for 30 minutes. Then, 1 ml of a 1N sulfuric acid aqueous solution was added as a reaction terminator to stop the oxygen reaction.

次いで、この溶液を分光光度計を用いて、精製水を対
照として450nmにおける吸収強度を測定し、得られた結
果を第7図に示した。
Next, this solution was measured for absorption intensity at 450 nm using purified water as a control using a spectrophotometer, and the obtained results are shown in FIG.

実施例7:コンドロカルシン測定系におけるスキムミルク
添加試験 免疫測定用緩衝液(1%牛血清アルブミン含有0.01M
リン酸、0.85%NaCl緩衝液pH=7.2以後1%BSA−PBSと
略記する)で、ウシコンドロカルシンを希釈し、0,2ng/
ml溶液を作成し、その50μlと同上緩衝液で終濃度0,0.
00625,0.0125,0.025,0.05,0.1,0.2,0.4及び0.8%となる
様に調整したスキムミルク含有溶液50μlを加えよく混
和し、ウサギ抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナ
ル抗体を固定したマイクロプレートに同上溶液100μl
を入れ、37℃で2時間反応させた(一次反応)。次い
で、PBS−0.05%Tween−20で洗浄後ペルオキシダーゼ標
識抗ウシ・コンドロカルシン・ポリクローナル抗体のFa
b′を免疫測定用緩衝液で希釈し、各ウエルに100μl入
れ37℃で1時間反応させた(二次反応)PBS−0.05%Twe
en−20にて洗浄後パーオキシダーゼ用基質液(2.5mM H2
O2、0.0225%3,3′、5,5′−テトラメチルベンジジンを
含む)を100μl加え、37℃で0.5時間発色させ、1N−硫
酸溶液25μlを加えて停止反応を行ない、450nmでプレ
ートリーダーにて吸収強度を測定した。その結果を第8
図に示した。この図から明らかな如く、スキムミルク濃
度0.00625%以上のスキムミルク濃度で非特異的吸着が
防止出来る。
Example 7: Skim milk addition test in chondrocalcin assay system Buffer for immunoassay (0.01% containing 1% bovine serum albumin
Bovine chondrocalcin was diluted with phosphoric acid and 0.85% NaCl buffer pH = 7.2 and thereafter abbreviated as 1% BSA-PBS to 0.2 ng /
Make a ml solution, and add 50 μl of it to the same buffer as above to give a final concentration of 0.0.
00625,0.0125,0.025,0.05,0.1,0.2,0.4 and 0.8% of skimmed milk-containing solution adjusted to 50 μl and mixed well, and then added to a microplate on which rabbit anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody was immobilized. 100 μl
Was charged and reacted at 37 ° C. for 2 hours (primary reaction). After washing with PBS-0.05% Tween-20, Fa of peroxidase-labeled anti-bovine chondrocalcin polyclonal antibody was used.
b ′ was diluted with an immunoassay buffer, 100 μl was added to each well, and the mixture was reacted at 37 ° C. for 1 hour (secondary reaction) PBS-0.05% Twe.
After washing with en-20, substrate solution for peroxidase (2.5 mM H 2
100 μl of O 2 , 0.0225% 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine) was added, color was developed for 0.5 hours at 37 ° C., 25 μl of 1N sulfuric acid solution was added to stop the reaction, and the plate was read at 450 nm. The absorption intensity was measured at. The result is No. 8
As shown in the figure. As is clear from this figure, non-specific adsorption can be prevented at a skim milk concentration of 0.00625% or more.

実施例8:IgA−IC(IgA型免疫複合体)測定系におけるス
キムミルク添加試験 免疫測定用緩衝液(0.5%牛血清アルブミン、0.01Mリ
ン酸、0.85%NaCl緩衝液pH7.2、以後0.5%BSA−PBSと略
記する)にて、標準物質(IgA−C3)の1,25及び50μg/m
lを100倍に希釈して、0.2mlを試験管に採取した。次に
0.5%BSA−PBSにて終濃度が0,0.05,0.1,0.2%となるよ
う調整したスキムミルク含有溶液を0.2ml加えよく混和
した。そこへ、兎抗ヒトC3Facbを固定したビーズを1個
ずつ入れ37℃で1時間反応させた(一次反応)。次い
で、この試験管内の溶液を吸引除去した後、生理食塩水
(以後生食と記す)2μlにて3回洗浄してから、ホー
スラディシュパーオキシダーゼ標識、山羊抗ヒトIgA抗
体(カッペル社製)の原液を、スキムミルク0,0.05,0.1
及び0.2%含有する0.5%BSA−PBS溶液にて、各々10,000
倍に希釈したものを一次反応時のスキムミルク含有量が
同一のチューブに0.4mlずつ加え37℃で1時間反応させ
た(二次反応)。次いで、試験管内の溶液を吸引除去し
た後、生食2mlで3回洗浄してから、2,2′−アジノビス
−(3−エチル−6−ベンズチアゾリンスルホン酸)ジ
アンモニウム塩(ABTS)0.05%、過酸化水素1mMを含
む、0.1Mリン酸−クエン酸緩衝液(pH4.5)を0.4mlずつ
試験管に加え37℃で30分間反応させた後、反応停止剤と
して0.1Mシュウ酸水溶液1mlずつを加えて酵素反応を停
止させた。
Example 8: Skim milk addition test in IgA-IC (IgA type immune complex) measuring system Immunoassay buffer (0.5% bovine serum albumin, 0.01 M phosphate, 0.85% NaCl buffer pH 7.2, 0.5% BSA thereafter) at abbreviated as -PBS), standard substance (IgA-C 3) 1,25 and 50 [mu] g / m
l was diluted 100-fold and 0.2 ml was collected in a test tube. next
0.2 ml of a skim milk-containing solution adjusted to a final concentration of 0, 0.05, 0.1, 0.2% with 0.5% BSA-PBS was added and mixed well. Rabbit anti-human C 3 Facb-immobilized beads were put therein one by one and reacted at 37 ° C. for 1 hour (primary reaction). Then, the solution in the test tube was removed by suction, followed by washing 3 times with 2 μl of physiological saline (hereinafter referred to as saline), and then a stock solution of horseradish peroxidase labeled goat anti-human IgA antibody (manufactured by Kappel). The skim milk 0,0.05,0.1
And 0.5% BSA-PBS solution containing 0.2% each 10,000
A double dilution was added to each of the tubes having the same skim milk content in the primary reaction in an amount of 0.4 ml and reacted at 37 ° C. for 1 hour (secondary reaction). Then, the solution in the test tube was removed by suction, washed with 2 ml of saline three times, and then 2,2'-azinobis- (3-ethyl-6-benzthiazolinesulfonic acid) diammonium salt (ABTS) 0.05%, 0.1M phosphoric acid-citrate buffer (pH 4.5) containing 0.4mM of hydrogen peroxide was added to each test tube at 0.4ml and reacted at 37 ° C for 30 minutes, then 1ml of 0.1M oxalic acid aqueous solution as a reaction terminator. Was added to stop the enzymatic reaction.

次いで、この溶液を分光光度計を用いて、波長420nm
における吸収強度を試薬ブランク(標準物質の代りに0.
5%BSA−PBSを使用したもの)を対照として測定し、結
果を第9図に示した。
The solution is then spectrophotometer at 420 nm.
The absorption intensity at the reagent blank (0.
5% BSA-PBS was used as a control, and the results are shown in FIG.

実施例9:免疫反応における非特異的反応(N)/特異的
反応(S)比に対する各種タンパク添加の影響 ヒトプラスミノーゲンに対するポリクローナル抗体を
固定したポリスチレン製ボール(直径6mm)と、抗ヒト
αPI−モノクローナル抗体のペルオキシダーゼ標識体
とを用いて、ウレアーゼ、ゼラチン、牛血清アルブミ
ン、卵アルブミン、ペプシン、α−カゼイン、β−カゼ
イン、カゼイン、スキムミルク、PFC(IgGの部分FC)、
NZ Case(カゼインのペプシン分解物)、ゼラチンハイ
ドロリゼートエンザイマティックアシッド(Hydrolysat
e Enzymatic−Acid)、オロソムコイド、オボグリコプ
ロテインの各種タンパク0.25%を含有する0.01Mリン酸
緩衝生理食塩水(pH7.4)中において、ヒトαPI−プ
ラスミン複合体濃度0,100ng/mlの各水準について、37℃
の温度で60分反応を行なった後、ボールと反応液とを分
離し、ボールを生理食塩水でよく洗浄した。次に、これ
をテトラメチルベンジジン−H2O2の発色系を含有する水
溶液中において反応させた後、反応停止剤を加えて酸素
反応を停止させて、650nmの波長の吸収強度を測定し
た。
Example 9: Effect of addition of various proteins on non-specific reaction (N) / specific reaction (S) ratio in immune reaction Polystyrene balls (diameter 6 mm) immobilized with polyclonal antibody against human plasminogen and anti-human α 2 PI-monoclonal antibody with peroxidase-labeled product, urease, gelatin, bovine serum albumin, egg albumin, pepsin, α-casein, β-casein, casein, skim milk, PFC (partial FC of IgG),
NZ Case (pepsin degradation product of casein), gelatin hydrolyzate enzymatic acid (Hydrolysat
e Enzymatic-Acid), orosomucoid, ovoglycoprotein in 0.01M phosphate buffered saline (pH7.4) containing 0.25% of various proteins, each of human α 2 PI-plasmin complex concentration 0,100 ng / ml About the level, 37 ℃
After the reaction was performed at the temperature of 60 minutes, the ball and the reaction solution were separated, and the ball was thoroughly washed with physiological saline. Next, this was reacted in an aqueous solution containing a color forming system of tetramethylbenzidine-H 2 O 2 , and then a reaction terminator was added to stop the oxygen reaction, and the absorption intensity at a wavelength of 650 nm was measured.

以下の計算式を用いて、非特異反応率を算出し、分子
量又は等電点との相関を各々第10図及び第11図に示し
た。
The non-specific reaction rate was calculated using the following formula, and the correlation with the molecular weight or the isoelectric point is shown in FIG. 10 and FIG. 11, respectively.

第10図より分子量1.6万〜5.0万、第11図より等電点1.
0〜5.0の範囲のタンパクの添加が非特異的反応の著しい
低下を導くことは明白である。また第11図より、等電点
1.0〜5.0のタンパクの添加が非特異的反応を低減する効
果が良好であることがわかる。
From Fig. 10, the molecular weight is 16,000-50,000, and from Fig. 11, the isoelectric point is 1.
It is clear that the addition of proteins in the range 0-5.0 leads to a significant reduction in non-specific reactions. From Fig. 11, the isoelectric point
It can be seen that the addition of 1.0 to 5.0 protein has a good effect of reducing non-specific reactions.

実施例10:オロソムコイド、ペプシンの添加濃度による
免疫反応への影響 ヒトプラスミノーゲンに対するポリクローナル抗体を
固定したポリスチレンボールと、抗ヒトαPIモノクロ
ーナル抗体のペルオキシダーゼ標識体とを用いてオロソ
ムコイド、ペプシンの各種濃度を含有する0.1Mリン酸緩
衝液(pH7.2)中において、ヒトαPI−プラスミン複
合体濃度0,50,100ng/mlの各水準について37℃の温度で6
0分反応を行なった後、ボールと反応液とを分離し、ボ
ールを生理食塩水でよく洗浄した。次に、これをテトラ
メチルベンジジン−H2O2の発色系を含有する水溶液中に
おいて反応させた後、反応停止剤を加えて酵素反応を停
止させて、650nmの波長の吸収強度を測定した。
Example 10: Effect of added concentration of orosomucoid and pepsin on immune response Using polystyrene balls on which a polyclonal antibody against human plasminogen was immobilized and peroxidase-labeled anti-human α 2 PI monoclonal antibody, various types of orosomucoid and pepsin were used. Concentration of human α 2 PI-plasmin complex in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.2) containing 0, 50, 100 ng / ml of human α 2 PI at 6 ° C at a temperature of 37 ° C.
After reacting for 0 minutes, the ball and the reaction solution were separated, and the ball was thoroughly washed with physiological saline. Next, this was reacted in an aqueous solution containing a tetramethylbenzidine-H 2 O 2 color-developing system, then a reaction terminator was added to stop the enzymatic reaction, and the absorption intensity at a wavelength of 650 nm was measured.

結果をそれぞれ第12図(オロソムコイド)と第13図
(ペプシン)に示した。第12図および第13図から、低タ
ンパク濃度では非特異的反応が著しく増加すること、高
タンパク濃度では特異的反応が低下していることが明ら
かである。
The results are shown in Fig. 12 (orosomucoid) and Fig. 13 (pepsin), respectively. From FIGS. 12 and 13, it is clear that at low protein concentrations, non-specific reactions significantly increase, and at high protein concentrations, specific reactions decrease.

実施例11:肺−サーファクトタント−アポタンパク測定
系におけるスキムミルク添加試験 免疫測定用緩衝液(1%牛血清アルブミン0.01Mリン
酸0.85%NaCl緩衝液pH7.2)で、ヒト肺表面アポタンパ
ク(以下LSP)の、0,50ng/ml溶液を作製し、その100μ
lと同上緩衝液で最終濃度が0,0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.
6,0.7%となるよう調整したスキムミルク含有溶液100μ
l、及びホースラディッシパーオキシダーゼ標識抗ヒト
LSPモノクローナル抗体を含有する同上緩衝液200μlを
試験管に入れ、よく混和した。これに、抗LSPモノクロ
ーナル抗体を固定したビーズ1個をそれぞれの試験管に
入れて、45℃の温度で30分反応させた。次に試験管内の
溶液を吸引除去した後、生理食塩水2mlで3回洗浄して
から、3,3′,5,5′テトラメチルベンジジン塩酸塩0.02
%、H2O22.5mMを含有する0.1Mリン酸−クエン酸緩衝液
(pH4.0)を0.4mlずつ各試験管に加えて、45℃の温度で
15分間反応させた後、反応停止剤として、1N硫酸水溶液
を1mlずつ加えて酸素反応を停止させた。
Example 11: Skim milk addition test in lung-surfactant-apoprotein assay system Human lung surface apoprotein (apoprotein) was tested using an immunoassay buffer (1% bovine serum albumin 0.01M phosphate 0.85% NaCl buffer pH 7.2). (LSP), 0,50 ng / ml solution was prepared and
1 and same as above, but with final concentration of 0,0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.
100 μm of skim milk-containing solution adjusted to 6,0.7%
l, and horseradish peroxidase-labeled anti-human
200 μl of the same buffer containing LSP monoclonal antibody was placed in a test tube and mixed well. One bead on which the anti-LSP monoclonal antibody was immobilized was placed in each test tube and reacted at a temperature of 45 ° C for 30 minutes. Next, the solution in the test tube was removed by suction, and then washed with 2 ml of physiological saline three times, and then 3,3 ', 5,5' tetramethylbenzidine hydrochloride 0.02
%, 0.1 M phosphate-citrate buffer (pH 4.0) containing H 2 O 2 2.5 mM, 0.4 ml, was added to each test tube at the temperature of 45 ° C.
After reacting for 15 minutes, 1 ml of a 1N sulfuric acid aqueous solution was added as a reaction terminator to stop the oxygen reaction.

次いで、この溶液を分光光度計を用いて、精製水を対
照として450nmにおける吸収強度(O.D.)を測定し、得
られた結果を第14図に示した。
Next, the absorption intensity (OD) at 450 nm of this solution was measured using a spectrophotometer with purified water as a control, and the obtained results are shown in FIG.

フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭61−275654(JP,A) Journal of Clinic al Microbiology,25 (3)P.509−515,(1987) Padiatric Researc h,19(10),P.1017−1020, (1985) Journal of Bioche mical & Biophysica l Methods,12,P.271−279 (1986)Continuation of front page (56) Reference JP-A-61-275654 (JP, A) Journal of Clinical Microbiology, 25 (3) P. 509-515, (1987) Padiatric Research, 19 (10), P.P. 1017-1020, (1985) Journal of Biochemical & Biophysical Methods, 12, P. 271-279 (1986)

Claims (10)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】溶液中における抗原−抗体反応を利用して
免疫測定を行なうに際し、免疫反応溶液に平均分子量が
1.6〜5.0万で等電点が1.0〜5.0であるタンパク質又はそ
れを含む混合物を完全溶解状態で含む溶液を抗原−抗体
反応調整剤として存在せしめ、抗原−抗体反応調整剤の
免疫反応溶液における最終濃度を0.02〜0.9重量%に調
整することを特徴とする免疫測定方法。
1. When performing an immunoassay utilizing an antigen-antibody reaction in a solution, the immune reaction solution has an average molecular weight of
A solution containing a protein having a isoelectric point of 1.0 to 5.0 and having an isoelectric point of 1.0 to 5.0 or a mixture containing the protein in a completely dissolved state is allowed to exist as an antigen-antibody reaction modifier, and the final solution of the antigen-antibody reaction modifier in the immune reaction solution. An immunoassay method comprising adjusting the concentration to 0.02 to 0.9% by weight.
【請求項2】前記抗原−抗体反応調整剤がカゼイン、及
びオロソムコイドの群から選ばれた少なくとも一種のタ
ンパク質である請求の範囲第1項記載の方法。
2. The method according to claim 1, wherein the antigen-antibody reaction regulator is at least one protein selected from the group of casein and orosomucoid.
【請求項3】前記抗原−抗体反応調整剤が主要成分とし
てタンパク質10〜60重量%及び糖30〜80重量%を含む請
求の範囲第1項記載の方法。
3. The method according to claim 1, wherein the antigen-antibody reaction regulator contains 10 to 60% by weight of protein and 30 to 80% by weight of sugar as main components.
【請求項4】前記抗原−抗体反応調整剤がスキムミルク
である請求の範囲第3項記載の方法。
4. The method according to claim 3, wherein the antigen-antibody reaction regulator is skim milk.
【請求項5】測定対象がαプラスミン・インヒビタ
ー、αプラスミン・インヒビター−プラスミン複合
体、プロテインC、プロテインS、ヒト・胎盤由来酸性
グルタチオンS−トランスフェラーゼ、コンドロカルシ
ン、IgA型免疫複合体、肺−サーファクタント・アポタ
ンパク、AFP又はCEAである請求の範囲第1項記載の方
法。
5. The subject to be measured is α 2 plasmin inhibitor, α 2 plasmin inhibitor-plasmin complex, protein C, protein S, human placenta-derived acid glutathione S-transferase, chondrocalcin, IgA type immune complex, The method according to claim 1, which is lung-surfactant apoprotein, AFP or CEA.
【請求項6】平均分子量が1.6〜5.0万で等電点が1.0〜
5.0であるタンパク質又はそれを含む混合物を完全溶解
状態で含む溶液を抗原−抗体反応調整剤として抗原−抗
体反応調整剤の免疫反応溶液における最終濃度が0.02〜
0.9重量%になるような量でその構成要素の一部として
含む免疫測定に用いる試薬キット。
6. An average molecular weight of 16-50,000 and an isoelectric point of 1.0-
The final concentration in the immunoreaction solution of the antigen-antibody reaction modifier is 0.02 ~ as a solution containing the protein of 5.0 or a mixture containing it in a completely dissolved state as an antigen-antibody reaction modifier.
A reagent kit used for immunoassay, which contains 0.9% by weight as a part of its components.
【請求項7】前記抗原−抗体反応調整剤がカゼイン、及
びオロソムコイドの群から選ばれた少なくとも一種のタ
ンパク質である請求の範囲第1項記載の試薬キット。
7. The reagent kit according to claim 1, wherein the antigen-antibody reaction regulator is at least one protein selected from the group of casein and orosomucoid.
【請求項8】前記抗原−抗体反応調整剤が主要成分とし
てタンパク質10〜60重量%及び糖30〜80重量%を含む請
求の範囲第1項記載の試薬キット。
8. The reagent kit according to claim 1, wherein the antigen-antibody reaction regulator contains 10 to 60% by weight of protein and 30 to 80% by weight of sugar as main components.
【請求項9】前記抗原−抗体反応調整剤がスキムミルク
である請求の範囲第8項記載の試薬キット。
9. The reagent kit according to claim 8, wherein the antigen-antibody reaction regulator is skim milk.
【請求項10】測定対象がαプラスミン・インヒビタ
ー、αプラスミン・インヒビター−プラスミン複合
体、プロテインC、プロテインS、ヒト・胎盤由来酸性
グルタチオンS−トランスフェラーゼ、コンドロカルシ
ン、IgA型免疫複合体、肺−サーファクタント・アポタ
ンパク、AFP又はCEAである請求の範囲第6項記載の試薬
キット。
10. The subject to be measured is α 2 plasmin inhibitor, α 2 plasmin inhibitor-plasmin complex, protein C, protein S, human placenta-derived acid glutathione S-transferase, chondrocalcin, IgA type immune complex, The reagent kit according to claim 6, which is lung-surfactant apoprotein, AFP or CEA.
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