JPH0552845A - Reagent for immunoassay - Google Patents

Reagent for immunoassay

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JPH0552845A
JPH0552845A JP21183191A JP21183191A JPH0552845A JP H0552845 A JPH0552845 A JP H0552845A JP 21183191 A JP21183191 A JP 21183191A JP 21183191 A JP21183191 A JP 21183191A JP H0552845 A JPH0552845 A JP H0552845A
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JP
Japan
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antibody
cross
antigen
sample
reagent
Prior art date
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Pending
Application number
JP21183191A
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Japanese (ja)
Inventor
Junichiro Shinoda
潤一郎 篠田
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Sekisui Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sekisui Chemical Co Ltd
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Publication date
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Publication of JPH0552845A publication Critical patent/JPH0552845A/en
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Abstract

PURPOSE:To accurately measure an antigen to be measured without receiving the effect of the cross reaction due to a cross-reactive substance even when a polyclonal antibody is used. CONSTITUTION:A reagent for immunoassay contains an insoluble carrier having an antibody supported thereon and a part of the antibody is preliminarily reacted with the cross-reactive substance crossing an antigen to be measured with respect to the antibody and estimated to be present in a specimen. By this method, the antigen bonded region bonding the cross-reactive substance of the antibody is blocked.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、不溶性担体に担持され
た抗体と測定対象抗原との免疫反応により生じた凝集の
増加を検出する免疫測定法に用いられる試薬に関し、特
に、交差反応を回避することにより測定対象抗原を高精
度に検出または定量することを可能とする免疫測定用試
薬に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a reagent used in an immunoassay for detecting an increase in aggregation caused by an immunoreaction between an antibody carried on an insoluble carrier and an antigen to be measured, and particularly to avoid cross-reaction. The present invention relates to an immunoassay reagent that enables highly accurate detection or quantification of an antigen to be measured.

【0002】[0002]

【従来の技術】従来、試料中の抗原の測定に際し、該抗
原に対応する抗体を不溶性担体に担持させて、該抗原と
の免疫反応により生じた凝集の増加を検出することによ
り、試料中に含まれる抗原を検出あるいは定量する免疫
測定法が多用されている。この種の測定法に用いられて
いる試薬は、抗原を動物に免疫し、得られた血清を硫安
塩析、イオン交換またはクロマトグラフィー等の方法に
より精製して抗体を得、該抗体を不溶性担体に担持させ
ることにより構成されていた。
2. Description of the Related Art Conventionally, when measuring an antigen in a sample, an antibody corresponding to the antigen is carried on an insoluble carrier, and an increase in agglutination caused by an immune reaction with the antigen is detected to detect the increase in the sample. Immunoassays for detecting or quantifying contained antigens are widely used. The reagent used in this type of assay is to immunize an animal with an antigen, purify the obtained serum by a method such as ammonium sulfate salting out, ion exchange or chromatography to obtain an antibody, which is an insoluble carrier. It was configured to be carried by.

【0003】ところが、上記抗体に対して測定対象抗原
と交差反応性を有する物質が試料中に存在すると、測定
対象抗原が正確に測定できなかった。一例を挙げると、
ヒト絨毛性ゴナドトロピン(HCG)を測定する場合
に、黄体形成ホルモン(LH)が存在する場合等であ
る。また、検査室等でルーチンの検査を行う場合には、
各検体に対して複数項目を同時に測定する場合が多い。
このような場合、例えば測定項目に尿中ヒトアルブミン
があり、他の同時測定項目用の測定試薬を構成する希釈
液等にウシ血清アルブミンが含まれていると、機械のキ
ャリーオーバー等により試料中にウシ血清アルブミンが
混入することがある。その結果、ウシ血清アルブミンの
混在により、ヒトアルブミンが正確に検出されないこと
になる。
However, when a substance having a cross-reactivity with the above-mentioned antibody against the antigen to be measured is present in the sample, the antigen to be measured cannot be measured accurately. To give an example,
For example, when luteinizing hormone (LH) is present when measuring human chorionic gonadotropin (HCG). Also, when performing routine inspections in an inspection room, etc.,
In many cases, multiple items are measured simultaneously for each sample.
In such a case, for example, if urinary human albumin is a measurement item and bovine serum albumin is included in a diluent or the like that constitutes a measurement reagent for another simultaneous measurement item, it will be contained in the sample due to carryover of the machine. May be mixed with bovine serum albumin. As a result, human albumin cannot be accurately detected due to the presence of bovine serum albumin.

【0004】他方、上記のような交差反応を起こさない
特異抗体を得るために、モノクローナル抗体を使用する
方法も行われている(例えば、特開平2−66458号
公報等)。しかしながら、モノクローナル抗体の作成に
は、多大の労力及び時間を必要とし、価格が大幅に高く
つくという問題があった。また、交差反応性物質をセル
ロース等に固定化したゲルを充填したアフィニティーク
ロマトグラフィーカラムに、前記抗体を通すことによ
り、交差反応する抗体を除去する方法も提案されてい
る。しかしながら、上記のような複雑な操作を必要と
し、しかも収率も十分でなかった。
On the other hand, in order to obtain a specific antibody which does not cause the above-mentioned cross-reaction, a method using a monoclonal antibody has been carried out (for example, JP-A-2-66458). However, the production of a monoclonal antibody requires a great deal of labor and time, and there is a problem that the price is significantly high. A method has also been proposed in which the antibody that cross-reacts is removed by passing the antibody through an affinity chromatography column packed with a gel in which a cross-reactive substance is immobilized on cellulose or the like. However, the complicated operation as described above is required, and the yield is not sufficient.

【0005】他方、特開昭63−16266号には、自
己免疫疾患を診断するための自己抗体測定用試薬とし
て、抗体を感作したラテックスまたは赤血球と、抗原と
の反応系にカゼイン加水分解物を含む構成が開示されて
おり、ここでは、カゼイン加水分解物を添加することに
より非特異的な凝集状態が防止されることが示されてい
る。
On the other hand, Japanese Patent Laid-Open No. 63-16266 discloses a casein hydrolyzate in a reaction system between an antibody-sensitized latex or red blood cells and an antigen as a reagent for measuring autoantibodies for diagnosing autoimmune diseases. Is disclosed, where it is shown that the addition of casein hydrolyzate prevents non-specific aggregation conditions.

【0006】さらに、特開昭63−266356号に
は、免疫反応系に交差反応性物質または交差反応性類似
物を添加することにより、交差反応の影響を抑制し得る
ことが開示されている。すなわち、交差反応率が、交差
反応性物質の濃度が低い程大きく、該交差反応性物質の
濃度が高い場合には比較的小さいことに着目し、上記の
ような反応系に交差反応性物質を添加することにより、
交差反応の影響を抑制している。
Further, Japanese Patent Laid-Open No. 63-266356 discloses that the effect of cross-reaction can be suppressed by adding a cross-reactive substance or a cross-reactive analogue to the immune reaction system. In other words, paying attention to the fact that the cross-reactivity rate is larger as the concentration of the cross-reactive substance is lower, and is relatively small when the concentration of the cross-reactive substance is higher, and the cross-reactive substance is added to the above reaction system. By adding
It suppresses the effects of cross-reactivity.

【0007】しかしながら、特開昭63−16266号
に記載の免疫測定試薬では、非特異反応を一応抑制し得
るものの、非特異反応の中でも、交差反応については抑
制することはできなかった。また、特開昭63−266
356号に記載の方法では、測定対象物質が低分子量物
質である場合には一応の効果を発揮するが、高分子量の
蛋白質を測定する場合には、この特許の方法では測定対
象物が低濃度の場合、吸光度変化を大きくとることが難
しいため、実際に使用することが難しかった。また、競
合反応によって交差反応を抑制するものであるため、測
定時間等の条件によっては、交差反応を完全に抑えられ
ない可能性があった。
However, although the immunoassay reagents described in JP-A-63-16266 can suppress the non-specific reaction, the cross-reaction cannot be suppressed among the non-specific reactions. In addition, JP-A-63-266
In the method described in No. 356, when the substance to be measured is a low molecular weight substance, a tentative effect is exhibited, but when measuring a high molecular weight protein, the substance to be measured has a low concentration in the method of this patent. In the case of, it was difficult to actually use it because it was difficult to obtain a large change in absorbance. Further, since the cross reaction is suppressed by the competitive reaction, there is a possibility that the cross reaction cannot be completely suppressed depending on the conditions such as the measurement time.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】よって、本発明の目的
は、ポリクローナル抗体を用いた場合であっても、低分
子量物質から蛋白質等の高分子量物質に至る広い範囲の
測定対象抗原を、交差反応の影響を回避しつつ反応条件
等を厳格にコントロールすることなく高精度に測定し得
る免疫測定用試薬を提供することにある。
Therefore, the object of the present invention is to cross-react with a wide range of antigens to be measured, from low molecular weight substances to high molecular weight substances such as proteins, even when polyclonal antibodies are used. Another object of the present invention is to provide an immunoassay reagent capable of performing highly accurate measurement while avoiding the influence of the above and without strictly controlling the reaction conditions and the like.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明の免疫測定試薬
は、不溶性担体に担持された抗体と、測定対象抗原との
免疫反応により生じた凝集の増加を検出することによ
り、試料中の測定対象抗原を検出または定量する方法に
用いられるものであり、抗体が担持された不溶性担体を
含み、かつ上記抗体の一部が、該抗体に対して測定対象
抗原と交差し、かつ試料中に混在することが予測される
交差反応性物質と予め反応されていることを特徴とする
ものである。
The immunoassay reagent of the present invention detects an increase in agglutination caused by an immune reaction between an antibody carried on an insoluble carrier and an antigen to be measured, thereby detecting an analyte in a sample. It is used for a method for detecting or quantifying an antigen, and includes an insoluble carrier carrying an antibody, and a part of the antibody crosses the antigen to be measured with respect to the antibody and is mixed in the sample. It is characterized in that it has been previously reacted with a cross-reactive substance which is predicted to be.

【0010】担持される抗体としては、ポリクローナル
抗体が好適に用いられる。モノクローナル抗体の場合
は、ある特異的な抗原決定基に対応した抗体を得ること
ができるが、その作成には多大な時間と労力が必要にな
る。また、通常の免疫方法によってポリクローナル抗体
を得る場合は、その作成方法上、免疫物質の任意の抗原
決定基に対応した抗体ができる。従って、免疫物質が自
身の他に似通った物質を持つ場合(例えばヒトアルブミ
ンに対するウシアルブミンやヒト絨毛性ゴナドトロピン
(HCG)に対する黄体形成ホルモン(LH)等)、測
定対象抗原に特異的な抗体以外に、測定対象抗原とこれ
らの交差反応性物質とに共通した抗原決定基に対する抗
体もできる。この様な交差反応性物質の存在する試料を
測定する場合、例えばヒト尿中微量アルブミンの定量等
においてポリクローナル抗体をそのまま用いると、試料
希釈液として一般的に用いられているウシ血清アルブミ
ン(BSA)を含む溶液等に接触すると、交差反応を起
こすため正確な測定を行うことができない。
A polyclonal antibody is preferably used as the carried antibody. In the case of a monoclonal antibody, it is possible to obtain an antibody corresponding to a specific antigenic determinant, but it takes a lot of time and labor to prepare it. In addition, when a polyclonal antibody is obtained by an ordinary immunization method, an antibody corresponding to an arbitrary antigenic determinant of an immunizing substance can be produced due to its production method. Therefore, when the immunological substance has a substance similar to itself (for example, bovine albumin for human albumin or luteinizing hormone (LH) for human chorionic gonadotropin (HCG)), other than the antibody specific to the antigen to be measured. Also, an antibody against an antigenic determinant common to the antigen to be measured and these cross-reactive substances can be prepared. When measuring a sample in which such a cross-reactive substance is present, for example, when a polyclonal antibody is used as it is in the quantification of trace albumin in human urine, bovine serum albumin (BSA) is generally used as a sample diluent. If it comes into contact with a solution or the like containing, cross-reaction will occur and accurate measurement cannot be performed.

【0011】また、血中や尿中の微量物質の測定におい
ても、該抗体に対して測定対象と交差する物質を含む場
合、ポリクローナル抗体をそのまま用いると測定が困難
となる場合がある。ところが、本発明による試薬では、
ポリクローナル抗体を用いてもその試薬製造過程で不溶
性担体にポリクローナル抗体を担持させた後に、交差反
応性物質を加えて反応させることにより、担持されたポ
リクローナル抗体において交差反応性物質に対する抗体
が不活化される。従って、本発明の試薬では交差反応を
回避して特異的に微量物質を検出または定量することが
できる。試薬作成時に加える交差反応性物質の量は、効
果が発揮できればその濃度に制限はないが、不溶性担体
に担持されたポリクローナル抗体全量と同等もしくはそ
れ以上であることが好ましい。
Further, also in the measurement of a trace substance in blood or urine, when a substance that crosses the measurement target with respect to the antibody is contained, it may be difficult to use the polyclonal antibody as it is. However, in the reagent according to the present invention,
Even if a polyclonal antibody is used, by supporting the polyclonal antibody on an insoluble carrier in the process of producing the reagent and then adding a cross-reactive substance to react, the antibody against the cross-reactive substance is inactivated in the carried polyclonal antibody. It Therefore, the reagent of the present invention can specifically detect or quantify a trace substance while avoiding cross-reaction. The amount of the cross-reactive substance added at the time of preparation of the reagent is not limited as long as the effect can be exerted, but it is preferably equal to or more than the total amount of the polyclonal antibody supported on the insoluble carrier.

【0012】本発明において用いられるポリクローナル
抗体は、常法に従って抗原を物質に免疫することにより
産生されるものである。ポリクローナル抗体を得るため
に抗原を免疫する動物種は、特に限定されない。また、
抗原についても、特に限定されないが、多くの交差反応
が予想される物質、例えば薬物、ホルモン類、または血
中蛋白質等、より具体的には、例えばヘモグロビン、ア
ルブミンまたはHCG等が本発明に好適に用いられる。
The polyclonal antibody used in the present invention is produced by immunizing a substance with an antigen according to a conventional method. The animal species to be immunized with the antigen to obtain the polyclonal antibody is not particularly limited. Also,
The antigen is also not particularly limited, but substances that are expected to undergo many cross-reactions, such as drugs, hormones, blood proteins, and the like, more specifically, hemoglobin, albumin, HCG, and the like are suitable for the present invention. Used.

【0013】また、交差反応性物質についても、用いる
抗原に対応する抗体に対して交差反応を生じる物質であ
り、かつ測定試料中に存在が予想される物質が適宜用い
られる。この場合、ポリクローナル抗体と反応される交
差反応性物質は、一種に限定されるものではなく、必要
に応じ複数種であってもよい。本発明の免疫測定用試薬
に用いられる不溶性担体としては、無機物質粉末、合成
高分子粉末を含む有機物質粉末、微生物、血球、細胞膜
片等が挙げられる。無機物質粉末としては、シリカ、ア
ルミナ、または金、チタン、鉄もしくはニッケル等の金
属片が用いられる。有機物質粉末としては、不溶性アガ
ロース、セルロース、不溶性デキストランが考えられ
る。また、合成高分子粉末としては、ラテックスが用い
られ、通常ラテックス懸濁液の状態で使用される。ラテ
ックスを構成する重合体としては、ポリスチレン、スチ
レン−スチレンスルホン酸塩共重合体、(メタ)アクリ
ル酸重合体、アクリロニトリル−ブタジエン共重合体、
塩化ビニル−(メタ)アクリル酸エステル共重合体、酢
酸ビニル−(メタ)アクリル酸エステル共重合体等が挙
げられる。用いるラテックスの平均粒径は、測定対象物
質の検出濃度域あるいは測定機器によって適宜選択され
るものであるが、通常、0.05〜1.0μmのものが
用いられる。
As the cross-reactive substance, a substance which causes a cross-reactivity with the antibody corresponding to the antigen used and which is expected to be present in the measurement sample is appropriately used. In this case, the cross-reactive substance that reacts with the polyclonal antibody is not limited to one kind, and may be plural kinds as necessary. Examples of the insoluble carrier used in the immunoassay reagent of the present invention include inorganic substance powder, organic substance powder including synthetic polymer powder, microorganisms, blood cells, cell membrane pieces and the like. As the inorganic substance powder, silica, alumina, or a metal piece such as gold, titanium, iron, or nickel is used. As the organic substance powder, insoluble agarose, cellulose and insoluble dextran are considered. Further, latex is used as the synthetic polymer powder, and it is usually used in the state of a latex suspension. The polymer constituting the latex, polystyrene, styrene-styrene sulfonate copolymer, (meth) acrylic acid polymer, acrylonitrile-butadiene copolymer,
Examples thereof include vinyl chloride- (meth) acrylic acid ester copolymers and vinyl acetate- (meth) acrylic acid ester copolymers. The average particle size of the latex to be used is appropriately selected depending on the detection concentration range of the substance to be measured or the measuring device, but is usually 0.05 to 1.0 μm.

【0014】本発明の試薬は、一般に緩衝液中に懸濁さ
せて使用される。緩衝液としては、pHが5〜10、好
ましくは6〜8のものであり、リン酸緩衝液、トリス緩
衝液、グリシン緩衝液、アンモニア緩衝液等の任意の緩
衝液が使用される。緩衝液中に、ポリエチレングリコー
ルやデキストラン等の増感剤を含有させて使用すること
も可能である。
The reagent of the present invention is generally used by suspending it in a buffer. The buffer solution has a pH of 5 to 10, preferably 6 to 8, and any buffer solution such as a phosphate buffer solution, a Tris buffer solution, a glycine buffer solution, or an ammonia buffer solution is used. It is also possible to use a buffer solution containing a sensitizer such as polyethylene glycol or dextran.

【0015】本発明の免疫測定試薬は、上述したよう
に、不溶性担体に担持された抗体と測定対象抗原との免
疫反応により生じた凝集の増加を検出することにより、
試料中の測定対象抗原を検出または定量する方法に用い
られるものである。このような測定方法としては、凝集
の有無を肉眼で判定する方法と、反応液に光を照射して
散乱光あるいは透過光を測定する方法があるが、本発明
の測定試薬は、いずれの方法にも用いることができる。
肉眼で凝集状態を判定する方法は、一般に、不溶性担体
に担持された抗体と、試料中の測定対象抗原との凝集の
状態を肉眼で判定し、試料中の抗原の有無の判定あるい
は半定量法として用いられているものである。また、光
学的測定方法は、試料中の抗原の定量に用いられてい
る。
As described above, the immunoassay reagent of the present invention detects an increase in aggregation caused by an immune reaction between an antibody carried on an insoluble carrier and an antigen to be measured,
It is used for a method of detecting or quantifying an antigen to be measured in a sample. Such measurement methods include a method of visually determining the presence or absence of aggregation, and a method of irradiating the reaction solution with light to measure scattered light or transmitted light. Can also be used for
Generally, the method of determining the aggregation state by the naked eye, the antibody carried on an insoluble carrier, and the state of aggregation of the antigen to be measured in the sample is determined visually, the determination of the presence or absence of the antigen in the sample or semi-quantitative method Is used as. Further, the optical measurement method is used to quantify the antigen in the sample.

【0016】不溶性担体の凝集の程度を肉眼で判定する
方法においては、通常、試料と本発明の試薬を含む溶液
を判定板上で混合し、1〜5分間揺り動かした後、凝集
の有無を測定する。また、試料中に含まれる抗原を半定
量する場合には、試料をリン酸緩衝液等の適当な緩衝液
を含む溶液で希釈した本発明の試料と反応させて測定す
る。また、反応の溶液中にポリエチレングリコールやデ
キストラン等の増感剤を含有させて反応することも可能
である。
In the method for visually observing the degree of aggregation of the insoluble carrier, the sample and the solution containing the reagent of the present invention are usually mixed on a determination plate and shaken for 1 to 5 minutes, and then the presence or absence of aggregation is measured. To do. In the case of semi-quantifying the antigen contained in the sample, the sample is reacted with the sample of the present invention diluted with a solution containing an appropriate buffer solution such as a phosphate buffer solution. It is also possible to react by adding a sensitizer such as polyethylene glycol or dextran to the reaction solution.

【0017】不溶性担体の凝集の増加を光学的に検出す
る方法においては、通常、試料をリン酸緩衝液等の適当
な緩衝液を含む溶液で希釈した後、本発明の試薬を含む
溶液を混合する。この際、反応溶液中にポリエチレング
リコールやデキストラン等の増感剤を含有させて反応さ
せることも可能である。測定は、散乱光強度、吸光度、
または粒子数を測定する光学機器で行う。測定の波長は
300〜2400nmが使用できる。測光方法について
は公知の方法に従い、用いる不溶性担体の粒子の大きさ
あるいは濃度、反応時間の選択により散乱光強度あるい
は吸光度の増加を測定することが可能である。また、よ
り短時間で測定しようとする場合には、凝集反応度、吸
光度の絶対値を用いても定量可能である。また、反応時
間も適宜選択することができる。
In the method for optically detecting the increase in aggregation of the insoluble carrier, the sample is usually diluted with a solution containing an appropriate buffer such as a phosphate buffer, and then the solution containing the reagent of the present invention is mixed. To do. At this time, it is also possible to react by adding a sensitizer such as polyethylene glycol or dextran to the reaction solution. The measurement is scattered light intensity, absorbance,
Alternatively, use an optical instrument that measures the number of particles. The measurement wavelength may be 300 to 2400 nm. Regarding the photometric method, it is possible to measure the increase in scattered light intensity or absorbance by selecting the particle size or concentration of the insoluble carrier to be used and the reaction time according to a known method. Further, when it is desired to measure in a shorter time, it is possible to quantify by using the absolute values of the agglutination reactivity and the absorbance. Also, the reaction time can be appropriately selected.

【0018】反応の際のpHは5〜10、特に6〜8が
好ましい。また、反応時の緩衝液は、リン酸緩衝液、ト
リス緩衝液、グリシン緩衝液、アンモニア緩衝液等が使
用される。反応温度は4〜50℃、特に20〜40℃が
好ましい。
The pH during the reaction is preferably 5-10, particularly 6-8. As the buffer solution during the reaction, a phosphate buffer solution, a Tris buffer solution, a glycine buffer solution, an ammonia buffer solution or the like is used. The reaction temperature is preferably 4 to 50 ° C, particularly preferably 20 to 40 ° C.

【0019】[0019]

【作用】本発明の免疫測定試薬では、抗体の一部が、交
差反応性物質と予め反応されており、従って抗体の交差
反応性物質と反応する抗原結合部位がブロッキングされ
ているため、試料と接触された場合に、交差反応影響を
回避することができる。従って、試料中の測定対象抗原
を正確に検出することが可能となる。
In the immunoassay reagent of the present invention, a part of the antibody is pre-reacted with the cross-reactive substance, and therefore the antigen-binding site that reacts with the cross-reactive substance of the antibody is blocked, so When contacted, cross-reaction effects can be avoided. Therefore, it becomes possible to accurately detect the antigen to be measured in the sample.

【0020】[0020]

【実施例の説明】以下、本発明の実施例を挙げることに
より、本発明を明らかにする。実施例1 ヒトアルブミン(Miles Laboratorie
s社製、以下HSA)を定法に従ってウサギに免疫し
た。免疫により得られた抗血清を硫安塩析により精製
し、γ−グロブリン分画を得た。得られたγ−グロブリ
ン分画を濃度1mg/mlとなるように0.1Mグリシ
ン緩衝液(pH=9.0)により希釈した。
Description of Examples The present invention will be clarified by giving examples of the present invention. Example 1 Human albumin (Miles Laboratorie)
Rabbits were immunized with Ss (hereinafter referred to as HSA) according to a standard method. The antiserum obtained by immunization was purified by ammonium sulfate salting out to obtain a γ-globulin fraction. The obtained γ-globulin fraction was diluted with 0.1 M glycine buffer (pH = 9.0) to a concentration of 1 mg / ml.

【0021】得られたγ−グロブリン分画希釈液10m
lに、平均粒径0.13μmのポリスチレンラテックス
(積水化学社製、固形物10重量%)1mlを加え、3
7℃で60分間攪拌し、次に4℃で遠心分離(18,0
00rpm×60分)を行った。遠心後、上澄みを捨て
た沈澱物に、濃度1重量%となるように交差反応性物質
であるウシ血清アルブミン(BSA)を含有した0.1
Mグリシン緩衝液(pH=9.0)80mlを添加し、
37℃で60分間攪拌した。さらに、攪拌後、4℃で遠
心分離(18,000rpm×60分)を行い、遠心
後、上澄みを捨てた沈澱物に、0.1Mグリシン緩衝液
(pH=9.0)80mlを加えてラテックスを懸濁さ
せて、ラテックス試薬を作成した。
10 g of the obtained γ-globulin fraction dilution solution
1 ml of polystyrene latex having an average particle diameter of 0.13 μm (manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd., solid content: 10% by weight) was added to 3 l.
Stir at 7 ° C for 60 minutes, then centrifuge at 4 ° C (18,0).
00 rpm × 60 minutes). After centrifugation, the supernatant was discarded, and the precipitate contained 0.1% of bovine serum albumin (BSA), which is a cross-reactive substance, at a concentration of 1% by weight.
80 ml of M glycine buffer (pH = 9.0) was added,
The mixture was stirred at 37 ° C for 60 minutes. After stirring, centrifugation (18,000 rpm × 60 minutes) was performed at 4 ° C. After centrifugation, 80 ml of 0.1 M glycine buffer solution (pH = 9.0) was added to the precipitate containing the supernatant to remove latex. Was suspended to prepare a latex reagent.

【0022】正常ヒト尿、及び正常ヒト尿に5、10、
50、100、500μg/mlとなるようにHSAを
添加したものを試料とした。また、特異性の検定のため
に、BSAを濃度100μg/mlとなるように加えた
ものも試料とした。さらに、測定対象物質及び交差反応
性物質としての類似物質を含む試料として、正常ヒト尿
に、BSAを濃度100μg/ml、HSAを50μg
/mlとなるように加えた試料を作成した。
Normal human urine, and normal human urine 5, 10,
Samples were prepared by adding HSA at 50, 100 and 500 μg / ml. For the specificity assay, BSA was added at a concentration of 100 μg / ml as a sample. Further, as a sample containing a substance to be measured and a similar substance as a cross-reactive substance, BSA concentration of 100 μg / ml and HSA of 50 μg were added to normal human urine.
A sample was added so that the concentration would be / ml.

【0023】上述した各試料を、50mMリン酸緩衝液
(pH=7.0)でガラス試験管を用いて10倍に希釈
し、希釈試料10μlと上述したラテックス試薬120
0μlとを混合し、光路長5mmのガラスセルを用いて
570nmの波長で5分間の吸光度変化を求めた。結果
を下記の表1に示す。比較例1 実施例1と同様にしてγ−グロブリン分画(抗ヒトアル
ブミン抗体(ウサギ由来))の0.1Mグリシン緩衝液
による希釈液を得た。得られたγ−グロブリン分画希釈
液10mlに、実施例1と同様に、平均粒径が0.13
μmのポリスチレンラテックス(積水化学社製、固形分
10重量%)1mlを加え、37℃で60分間攪拌し、
次に4℃で遠心分離(18,000rpm×60分)を
行った。遠心後、上澄みを捨てた沈澱物に、0.1Mグ
リシン緩衝液(pH=9.0)80mlを加えてラテッ
クスを懸濁させ、ラテックス試薬を作成した。
Each of the above-mentioned samples was diluted 10-fold with a 50 mM phosphate buffer solution (pH = 7.0) using a glass test tube, and 10 μl of the diluted sample and the above-mentioned latex reagent 120 were diluted.
0 μl was mixed, and the change in absorbance at a wavelength of 570 nm for 5 minutes was determined using a glass cell having an optical path length of 5 mm. The results are shown in Table 1 below. Comparative Example 1 In the same manner as in Example 1, a dilution of the γ-globulin fraction (anti-human albumin antibody (derived from rabbit)) with 0.1 M glycine buffer was obtained. 10 ml of the obtained γ-globulin fraction diluted solution had an average particle size of 0.13 as in Example 1.
1 ml of polystyrene latex (manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd., solid content 10% by weight) of μm was added, and the mixture was stirred at 37 ° C. for 60 minutes,
Next, centrifugation (18,000 rpm × 60 minutes) was performed at 4 ° C. After centrifugation, 80 ml of 0.1 M glycine buffer solution (pH = 9.0) was added to the precipitate obtained by discarding the supernatant, and the latex was suspended to prepare a latex reagent.

【0024】他方、各試料については、実施例1と同様
にして作成した。各試料を、1重量%カゼイン加水分解
物を含有する50mMリン酸緩衝液(pH=7.0)で
ガラス試験管を用いて10倍に希釈した。希釈試料10
μlと、ラテックス試薬1200μlとを混合し、実施
例1と同様にして570nmの波長における5分間の吸
光度変化を求めた。結果を表1に示す。
On the other hand, each sample was prepared in the same manner as in Example 1. Each sample was diluted 10-fold using a glass test tube with 50 mM phosphate buffer (pH = 7.0) containing 1 wt% casein hydrolyzate. Diluted sample 10
μl and 1200 μl of the latex reagent were mixed, and the change in absorbance at a wavelength of 570 nm for 5 minutes was obtained in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 1.

【0025】[0025]

【表1】 [Table 1]

【0026】表1から明らかなように、比較例1では、
カゼイン加水分解物を含有する希釈液を用いて試料を希
釈したが、抗体由来の交差反応を除くことができず、B
SAと反応していることがわかる。これに対して、実施
例1の試薬では、交差反応を起こすことなく試料濃度を
正確に測定し得ることがわかる。実施例2 ヒト絨毛性ゴナドトロピン(コスモバイオ社製、以下H
CG)を定法に従ってウサギに免疫した。免疫により得
られた抗血清を硫安塩析により精製し、γ−グロブリン
分画を得た。このγ−グロブリン分画(抗HCG抗体)
を濃度1mg/mlとなるように0.2Mリン酸緩衝液
(pH=7.2)で希釈した。得られたγ−グロブリン
分画の希釈液10mlに、平均粒径が0.26μlのポ
リスチレンラテックス(積水化学社製、固形分10重量
%)1mlを加え、37℃で60分間攪拌し、次に4℃
で遠心分離(18,000rpm×60分)を行った。
遠心後、上澄みを捨てた沈澱物に、濃度0.05重量%
となるように黄体形成ホルモン(LH)を含む0.2M
リン酸緩衝液(pH=7.2)10mlを加え、30℃
で60分間攪拌した。次に、4℃で遠心分離(18,0
00rpm×60分)を行った後、上澄みを捨てた沈澱
物に1.2重量%のウシ血清アルブミンを含む0.2M
リン酸緩衝液(pH=7.2)10mlを加えてラテッ
クスを懸濁させ、ラテックス試薬を作成した。
As is clear from Table 1, in Comparative Example 1,
The sample was diluted with a diluent containing casein hydrolyzate, but the antibody-derived cross-reaction could not be removed and B
It can be seen that it is reacting with SA. On the other hand, it can be seen that the reagent of Example 1 can accurately measure the sample concentration without causing cross-reaction. Example 2 Human chorionic gonadotropin (manufactured by Cosmo Bio Inc., hereinafter referred to as H
Rabbits were immunized with CG) according to a standard method. The antiserum obtained by immunization was purified by ammonium sulfate salting out to obtain a γ-globulin fraction. This γ-globulin fraction (anti-HCG antibody)
Was diluted with 0.2 M phosphate buffer (pH = 7.2) to a concentration of 1 mg / ml. To 10 ml of the obtained γ-globulin fraction diluted solution, 1 ml of polystyrene latex having an average particle size of 0.26 μl (Sekisui Chemical Co., Ltd., solid content 10% by weight) was added, and the mixture was stirred at 37 ° C. for 60 minutes, then 4 ° C
Was centrifuged (18,000 rpm × 60 minutes).
After centrifugation, the supernatant was discarded, and the precipitate contained a concentration of 0.05% by weight.
0.2M containing luteinizing hormone (LH)
Add 10 ml of phosphate buffer (pH = 7.2), 30 ℃
And stirred for 60 minutes. Then centrifuge at 4 ° C (18,0
(00 rpm x 60 minutes), the supernatant was discarded, and the precipitate was added with 0.2 M bovine serum albumin at 0.2 M.
A latex reagent was prepared by adding 10 ml of a phosphate buffer solution (pH = 7.2) to suspend the latex.

【0027】正常ヒト尿、及び正常ヒト尿に5,10,
50,100IU/mlとなるようにHCGを添加した
ものを試料とした。また、特異性の検定のために、LH
を100mIU/mlとなるように加えたものも試料と
して用意した。さらに、測定対象物質及び交差反応性物
質を含む試料として、正常ヒト尿にHCGを5IU/m
l並びにLHを100mIU/mlとなるように添加し
たものも試料とした。
Normal human urine, and normal human urine
A sample was prepared by adding HCG to 50,100 IU / ml. Also, for the test of specificity, LH
Was also added as a sample. Furthermore, as a sample containing the substance to be measured and the cross-reactive substance, 5 IU / m of HCG was added to normal human urine.
Samples were prepared by adding 1 and LH to 100 mIU / ml.

【0028】各試料をBSAを1重量%含有する50m
Mリン酸緩衝液(pH=7.0)でガラス試験管を用い
て10倍に希釈した。希釈された試料50μlと、上記
ラテックス試薬50μlとを混合し、3分間揺動した
後、凝集の有無を肉眼で判定した。結果を下記の表2に
示す。比較例2 実施例2と同様にして得られたγ−グロブリン分画(抗
HCG抗体)希釈液10mlに、平均粒径が0.26μ
lのポリスチレンラテックス(積水化学社製、固形分1
0重量%)1mlを加え、37℃で60分間攪拌し、次
に4℃で遠心分離(18,000rpm×60分)を行
った。遠心後、上澄みを捨てた沈澱物に、LHを含有し
ない0.2Mリン酸緩衝液(pH=7.2)10mlを
加え、30℃で60分間攪拌した。しかる後、4℃で遠
心分離(18,000rpm×60分)を行った後、
1.2重量%のBSAを含有する0.2Mリン酸緩衝液
(pH=7.2)10mlを加えてラテックスを懸濁さ
せ、ラテックス試薬を作成した。
Each sample is 50 m containing 1% by weight of BSA.
Diluted 10 times with M phosphate buffer (pH = 7.0) using a glass test tube. 50 μl of the diluted sample was mixed with 50 μl of the above latex reagent, and after shaking for 3 minutes, the presence or absence of aggregation was visually determined. The results are shown in Table 2 below. Comparative Example 2 In 10 ml of the γ-globulin fraction (anti-HCG antibody) diluted solution obtained in the same manner as in Example 2, the average particle size was 0.26 μm.
l polystyrene latex (Sekisui Chemical Co., Ltd., solid content 1
0% by weight) (1 ml) was added, the mixture was stirred at 37 ° C. for 60 minutes, and then centrifuged (18,000 rpm × 60 minutes) at 4 ° C. After the centrifugation, 10 ml of 0.2 M phosphate buffer (pH = 7.2) containing no LH was added to the precipitate containing the supernatant, and the mixture was stirred at 30 ° C. for 60 minutes. Then, after centrifugation (18,000 rpm × 60 minutes) at 4 ° C.,
A latex reagent was prepared by adding 10 ml of 0.2 M phosphate buffer (pH = 7.2) containing 1.2% by weight of BSA to suspend the latex.

【0029】他方、実施例2と同様にして各試料を作成
した。試料の希釈は、実施例2のBSAを1重量%含む
50mMリン酸緩衝液に、さらにカゼイン加水分解物を
1重量%加えたもので行った。このようにして希釈され
た各検体50μlと上記ラテックス試薬50μlとを混
合し、3分間揺動した後、凝集の有無を肉眼で判定し
た。結果を表2に示す。
On the other hand, each sample was prepared in the same manner as in Example 2. The sample was diluted with 50 mM phosphate buffer containing 1% by weight of BSA of Example 2 and 1% by weight of casein hydrolyzate. 50 μl of each sample diluted in this way and 50 μl of the above latex reagent were mixed and shaken for 3 minutes, and then the presence or absence of aggregation was visually determined. The results are shown in Table 2.

【0030】[0030]

【表2】 [Table 2]

【0031】なお、表2において、−は、ラテックスが
凝集しない状態を示し、+はラテックスが凝集した状態
を示す。表2から明らかなように、カゼイン加水分解物
を含む希釈液を用いた比較例2の試薬では、交差反応を
除くことができず、LHと反応していることがわかる。
これに対して、実施例2の試薬では、交差反応を起こす
ことなく試料を正確に測定し得ることがわかる。
In Table 2, "-" indicates that the latex does not aggregate, and "+" indicates that the latex aggregates. As is clear from Table 2, the reagent of Comparative Example 2 using the diluted solution containing the casein hydrolyzate cannot remove the cross-reaction and reacts with LH.
On the other hand, with the reagent of Example 2, it can be seen that the sample can be accurately measured without causing a cross reaction.

【0032】[0032]

【発明の効果】以上のように、本発明によれば、抗体の
一部が交差反応性物質と予め反応されて、該抗体の交差
反応性物質を結合する抗原結合部位がブロッキングされ
ているため、交差反応を確実に抑制することができる。
よって、本発明の試薬を用いることにより、測定対象抗
原を免疫測定法により高精度に検出することができる。
As described above, according to the present invention, a part of the antibody is pre-reacted with the cross-reactive substance, and the antigen-binding site of the antibody that binds the cross-reactive substance is blocked. The cross reaction can be surely suppressed.
Therefore, by using the reagent of the present invention, the antigen to be measured can be detected with high accuracy by the immunoassay method.

【0033】しかも、本発明の免疫測定用試薬では、上
記のように抗体の一部を交差反応性物質と反応させるこ
とにより該抗体の交差反応性物質を結合する抗原決定部
位をブロッキングするものであるため、安価でかつ簡便
に入手し得るポリクローナル抗体を用いて試薬を作成す
ることができるため、免疫測定用試薬のコストを高める
こともない。
Moreover, in the immunoassay reagent of the present invention, a part of the antibody is reacted with the cross-reactive substance to block the antigen-determining site which binds the cross-reactive substance of the antibody as described above. Therefore, since the reagent can be prepared using a polyclonal antibody which is inexpensive and can be easily obtained, the cost of the immunoassay reagent is not increased.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 不溶性担体に担持された抗体と、測定対
象抗原との免疫反応により生じた凝集の増加を検出する
ことにより、試料中の測定対象抗原を検出または定量す
る方法に用いられる試薬であって、 抗体が担持された不溶性担体を含み、かつ前記抗体の一
部が、該抗体に対して測定対象抗原と交差し、かつ試料
中に混在することが予測される交差反応性物質と予め反
応されていることを特徴とする、免疫測定用試薬。
1. A reagent used in a method for detecting or quantifying an antigen to be measured in a sample by detecting an increase in aggregation caused by an immune reaction between an antibody carried on an insoluble carrier and the antigen to be measured. And a cross-reactive substance that includes an insoluble carrier carrying an antibody, and a part of the antibody crosses the antigen to be measured with respect to the antibody and is expected to be mixed in the sample in advance. An immunoassay reagent characterized by being reacted.
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