JPH11337551A - Non-specific reaction suppression agent, immunity measuring reagent, and immunity measuring method - Google Patents

Non-specific reaction suppression agent, immunity measuring reagent, and immunity measuring method

Info

Publication number
JPH11337551A
JPH11337551A JP14176298A JP14176298A JPH11337551A JP H11337551 A JPH11337551 A JP H11337551A JP 14176298 A JP14176298 A JP 14176298A JP 14176298 A JP14176298 A JP 14176298A JP H11337551 A JPH11337551 A JP H11337551A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
antibody
antigen
specific
hbs
measured
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP14176298A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP3623657B2 (en
Inventor
Ryoko Kono
良子 河野
Makoto Takahara
誠 高原
Yoshie Matsumoto
美枝 松本
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sekisui Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sekisui Chemical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sekisui Chemical Co Ltd filed Critical Sekisui Chemical Co Ltd
Priority to JP14176298A priority Critical patent/JP3623657B2/en
Publication of JPH11337551A publication Critical patent/JPH11337551A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3623657B2 publication Critical patent/JP3623657B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain non-specific reaction suppression agent capable of restraining non-specific reaction and highly sensitively detecting by immobilizing antibody not immulogically reacting with a substance to be measured or the fragment, or antigen not immulogically reacting to insoluble support. SOLUTION: By the reason of receiving various denaturation or mixing with side-reaction product, there is a case of generating reaction to non-specific reaction inducing substance in a subject. By immobilizing antibody or the fragment not immulogically reacting with a substance to be measured to an insoluble support and using it as a non-specific reaction suppression agent, the non-specific reaction inducing substance reacts to the non-specific reaction suppression agent in this invention, hence reaction between the support having immobilized specific antibody and the non-specific reaction inducing substance is obstructed (restrained), and the non-specific reaction is considered to be able to be restrained. Consequently, high detecting sensitivity can be obtained, the measured substance in a tested sample can be correctly qantatively measured, and this is useful for discovery of a disease, grasp of disease condition, decision of a curing method, and the like.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、不溶性担体を使用
し、抗原抗体反応を利用する免疫反応に基づいて被測定
物質を測定するために用いられ、高い検出感度を有し、
かつ、非特異反応の少ない非特異反応抑制剤、免疫測定
試薬、及び、免疫測定法に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention is used for measuring an analyte based on an immune reaction utilizing an antigen-antibody reaction using an insoluble carrier, and has a high detection sensitivity.
In addition, the present invention relates to a nonspecific reaction inhibitor having less nonspecific reaction, an immunoassay reagent, and an immunoassay method.

【0002】[0002]

【従来の技術】血液、尿等に含まれる微量物質の測定に
免疫測定方法が使われている。免疫測定方法は、抗原抗
体反応の特異的な強い結合に基づいており、種々の物質
が潜在する試料からでも、目的物質を特異的に感度良く
測定することが可能である。
2. Description of the Related Art Immunoassays have been used for measuring trace substances contained in blood, urine and the like. The immunoassay method is based on the specific strong binding of the antigen-antibody reaction, and it is possible to specifically measure the target substance with high sensitivity even from a sample in which various substances are latent.

【0003】しかし、このような測定法においては、血
清等の検体と反応させたとき、被測定物質である抗原を
含む陽性検体のみならず、これら抗原を含まない陰性検
体に対しても反応を起こすことがある。このような非特
異反応が起こる理由は明らかではないが、一つには血清
中に含まれる補体等の因子によるものと考えられてい
る。
However, in such a measuring method, when reacted with a sample such as serum, not only a positive sample containing an antigen which is a substance to be measured but also a negative sample not containing these antigens are reacted. May cause. The reason why such a non-specific reaction occurs is not clear, but it is thought to be at least in part due to factors such as complement contained in serum.

【0004】また、例えば、不溶性担体に測定物質に対
する抗原を固定化した場合、固定化時に変成した抗体の
Fc部分に、被検液中のリウマチ因子が反応し、非特異
凝集を惹起することもある。更に、不溶性担体を懸濁さ
せる緩衝液に、不活性なタンパク質(ウシ血清アルブミ
ン等)を安定剤として添加する場合があるが、使用する
試薬のグレードによって、不純物が多く含まれていた
り、ある種のタンパク質分解酵素が含まれていた場合に
は、正・負の誤差を含めて、正確な測定ができない場合
が多かった。
For example, when an antigen for a test substance is immobilized on an insoluble carrier, the rheumatoid factor in the test solution reacts with the Fc portion of the antibody denatured at the time of immobilization to cause non-specific aggregation. is there. Furthermore, in some cases, an inactive protein (such as bovine serum albumin) is added as a stabilizer to the buffer in which the insoluble carrier is suspended. However, depending on the grade of the reagent used, it may contain a large amount of impurities, In many cases, accurate measurement could not be performed, including positive / negative errors, when the protease was included.

【0005】上述のような非特異反応を減少することを
目的として、検体をグリシン等の緩衝液で希釈したり、
又は、血清中の補体を失活させる非動化処理が従来から
行われている。しかし、このような処理によっては、非
特異反応を充分に抑制することが困難であり、また、手
間がかかるという問題がある。また、動物の変成グロブ
リンを添加したり、タンパク質分解酵素阻害剤を添加す
る方法も報告されているが、これらはいずれも、変成条
件の設定が微妙で安定した変成グロプリンの製造が困難
であったり、コストが高くつく等の問題があり、いずれ
も非特異反応の抑制という点では不充分であった。
For the purpose of reducing the non-specific reaction as described above, a sample is diluted with a buffer such as glycine,
Alternatively, a deactivation treatment for inactivating complement in serum has been conventionally performed. However, there is a problem that it is difficult to sufficiently suppress the non-specific reaction by such a treatment, and it takes time and effort. In addition, methods of adding denatured globulin from animals or adding a protease inhibitor have been reported, but in any case, the setting of denaturation conditions is delicate, and it is difficult to produce stable denatured globin. However, there are problems such as high cost and the like, and all of them are insufficient in terms of suppressing non-specific reactions.

【0006】このような問題を解決するため、従来よ
り、抗原抗体反応にゼラチン、アルブミン等のタンパク
質や、ポリアニオン類等を添加する方法が知られてい
る。また、N,N−ジアルキルアミドや低級アルキルス
ルホキシド(特開昭55−6085号公報)、アルキル
セルロース(特開平2−173567号公報)、カルボ
キシアルキルセルロース(特開平2−238360号公
報)等を添加する方法が開示されているが、より優れた
方法の開発が望まれていた。
[0006] In order to solve such a problem, a method of adding a protein such as gelatin or albumin or a polyanion to an antigen-antibody reaction has been conventionally known. Further, N, N-dialkylamide, lower alkyl sulfoxide (Japanese Patent Application Laid-Open No. 55-6085), alkylcellulose (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-173567), carboxyalkylcellulose (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-238360) and the like are added. Although a method for performing the method is disclosed, development of a better method has been desired.

【0007】[0007]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記現状に
鑑み、血清の非動化等の煩雑な処理を行うことなく、非
特異反応が抑制され、かつ、検出感度が高い非特異反応
抑制剤、免疫測定試薬、及び、免疫測定方法を提供する
ことを目的とする。
DISCLOSURE OF THE INVENTION In view of the above situation, the present invention suppresses nonspecific reactions without performing complicated processing such as serum immobilization and suppresses nonspecific reactions with high detection sensitivity. It is intended to provide an agent, an immunoassay reagent, and an immunoassay method.

【0008】[0008]

【課題を解決するための手段】本発明は、被測定物質に
対する抗体又は抗原を固定化した担体を用いる免疫測定
方法において用いられ、上記被測定物質に対して免疫学
的に反応しない抗体若しくはその断片、又は、免疫学的
に反応しない抗原を固定化した不溶性担体からなる非特
異反応抑制剤である。以下に本発明を詳述する。
Means for Solving the Problems The present invention is used in an immunoassay method using a carrier on which an antibody or an antigen against a substance to be measured is immobilized, and the antibody or its antibody that does not immunologically react with the substance to be measured. It is a non-specific reaction inhibitor comprising a fragment or an insoluble carrier on which an immunologically unreactive antigen is immobilized. Hereinafter, the present invention will be described in detail.

【0009】本発明の非特異反応抑制剤は、被測定物質
に対して免疫学的に反応しない抗体若しくはその断片、
又は、免疫学的に反応しない抗原を固定化した不溶性担
体からなる。
The non-specific reaction inhibitor of the present invention comprises an antibody or a fragment thereof that does not immunologically react with a test substance,
Alternatively, it comprises an insoluble carrier on which an antigen that does not react immunologically is immobilized.

【0010】上記不溶性担体に固定化する抗体は、被測
定物質である抗原に特異的な反応性を持たない抗体であ
る。上記抗体としては、例えば、ヒト由来の血液や尿等
の検体を対象に免疫測定を行う場合であれば、ヒト以外
の正常動物血清由来の抗体等が挙げられる。上記抗体
と、被測定物質である抗原に特異的な反応性を持つ抗体
(以下、「特異抗体」ともいう)とは、動物種、抗体ク
ラスが同一の方が非特異抑制効果が高いので好ましい。
The antibody immobilized on the insoluble carrier is an antibody having no specific reactivity to the antigen to be measured. Examples of the above-mentioned antibodies include antibodies derived from serum of normal animals other than humans in the case where immunoassay is performed on samples of human blood or urine. The above-mentioned antibody and an antibody having specific reactivity to the antigen to be measured (hereinafter also referred to as “specific antibody”) are preferably of the same animal species and antibody class because of their higher nonspecific suppression effect. .

【0011】上記抗体は、正常動物血清から一般的に用
いられている方法で精製される。上記精製方法としては
例えば、塩析法、電気泳動法、ゲルろ過法、疎水性クロ
マトグラフィー法、アフィニティークロマトグラフィー
法等が挙げられる。
The above antibody is purified from serum of a normal animal by a method generally used. Examples of the purification method include a salting-out method, an electrophoresis method, a gel filtration method, a hydrophobic chromatography method, and an affinity chromatography method.

【0012】上記精製法については、数種の精製法を組
み合わせて用いる場合もあるが、好ましくは各精製段階
の中で、特異抗体と部分的に同じ方法を取り得る段階が
あれば、特異抗体と同様の方法を行ったほうが望まし
い。
The above-mentioned purification methods may be used in combination of several types of purification methods. However, it is preferable that, in each of the purification steps, if there is a step which can be partially the same as that of the specific antibody, the specific antibody It is desirable to carry out the same method as described above.

【0013】上記抗体は、一般的に用いられている方法
で断片化されてもよい。上記断片化の方法としては、通
常、各種酵素により抗体分子を分解する方法が挙げら
れ、例えば、パパイン等による分解ではFab断片が得
られ、またペプシン等による分解ではF(ab′)2
片が得られる。上記抗体と特異抗体とは、同じ酵素によ
る断片化を受けたものが好ましい。
[0013] The above antibody may be fragmented by a commonly used method. Examples of the fragmentation method include a method of decomposing an antibody molecule by various enzymes. For example, a Fab fragment is obtained by decomposition with papain or the like, and an F (ab ') 2 fragment is obtained by decomposition with pepsin or the like. can get. The antibody and the specific antibody are preferably those that have been fragmented by the same enzyme.

【0014】上記特異抗体として、例えば、被測定物質
に特異的反応性をもつ、家兎由来のサブクラスIgG抗
体をペプシン処理によって断片化し、カラムクロマトグ
ラフィー(ゲルろ過)及びアフィニティークロマトグラ
フィーによって精製したF(ab′)2 断片を用いる場
合、本発明の非特異反応抑制剤に用いる抗体としては、
被測定物質に特異的反応性をもたない、家兎由来のサブ
クラスIgGの抗体をペプシン処理によって断片化し、
カラムクロマトグラフィー(ゲルろ過)によって精製し
たF(ab′)2 断片が使用できる。
As the above specific antibody, for example, a rabbit subclass IgG antibody having specific reactivity to the substance to be measured is fragmented by pepsin treatment, and purified by column chromatography (gel filtration) and affinity chromatography. When the (ab ') 2 fragment is used, the antibody used for the non-specific reaction inhibitor of the present invention includes:
Rabbit-derived subclass IgG antibody having no specific reactivity to the test substance is fragmented by pepsin treatment,
F (ab ') 2 fragments purified by column chromatography (gel filtration) can be used.

【0015】上記免疫学的に反応しない抗原としては、
被測定物質である抗原又は抗体に特異的な活性を示すも
のでなければ特に限定されず、例えば、ウシ血清アルブ
ミン(BSA)、カゼイン、カザミノ酸等が挙げられ
る。上記免疫学的に反応しない抗原としては、また、被
測定物質に対する抗体又は抗原(以下、「特異抗体又は
特異抗原」ともいう)を固定化した担体に使用するブロ
ッキング剤や、免疫測定試薬に安定化剤として用いられ
ているものと同一でも異なるものであってもよい。
The antigens which do not react immunologically include:
There is no particular limitation as long as it does not show specific activity for the antigen or antibody to be measured, and examples include bovine serum albumin (BSA), casein, casamino acid and the like. Examples of the antigen that does not react immunologically include a blocking agent used for a carrier on which an antibody or an antigen to a substance to be measured (hereinafter, also referred to as “specific antibody or specific antigen”) is immobilized, or a stable reagent for immunoassay. It may be the same as or different from that used as the agent.

【0016】上記免疫学的に反応しない抗原としては、
担体に固定化した免疫学的に反応しない物質と同じ物質
が好ましい。上記担体に固定化した免疫学的に反応しな
い物質とは、通常、免疫測定法において使用されるブロ
ッキング剤をいう。上記ブロッキングは、特異抗体又は
特異抗原を担体に固定化した後、試料中のタンパク質等
が担体へ非特異的に吸着するのを防止するために、特異
抗体又は特異抗原に対して免疫学的に反応しないタンパ
ク質等を更に結合させることである。
The antigens that do not react immunologically include:
The same substance as the substance which does not react immunologically immobilized on the carrier is preferable. The immunologically unreactive substance immobilized on the carrier usually refers to a blocking agent used in an immunoassay. The blocking is performed after immobilizing the specific antibody or the specific antigen on the carrier, and immunologically reacting with the specific antibody or the specific antigen in order to prevent the protein or the like in the sample from non-specifically adsorbing to the carrier. The purpose is to further bind unreacted proteins and the like.

【0017】上記担体に固定化した免疫学的に反応しな
い物質としては、例えば、通常の免疫測定法において使
用されているウシ血清アルブミン、オボアルブミン、ラ
クトアルブミン、ゼラチン、カゼイン等が挙げられる。
[0017] Examples of the immunologically non-reactive substance immobilized on the carrier include bovine serum albumin, ovalbumin, lactalbumin, gelatin, casein and the like used in ordinary immunoassays.

【0018】上記不溶性担体としては、従来より免疫化
学的凝集反応及び凝集阻止反応において一般的に用いら
れている微粒子の担体等が挙げられ、工業的に大量生産
が可能な有機系微粒子が好ましいが、これに限定される
ものではない。
Examples of the insoluble carrier include fine particle carriers generally used in immunochemical agglutination reactions and agglutination inhibition reactions, and organic fine particles that can be industrially mass-produced are preferred. However, the present invention is not limited to this.

【0019】上記工業的に大量生産が可能な有機系微粒
子としては、例えば、スチレン、塩化ビニル、アクリロ
ニトリル、酢酸ビニル、アクリル酸エステル、メタクリ
ル酸エステル等のビニル系モノマーを重合させてなる単
一重合体及び共重合体(ポリスチレン、スチレン−スチ
レンスルホン酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アク
リル酸重合体、塩化ビニル−アクリル酸エステル共重合
体等)の微粒子;スチレン−ブタジエン共重合体、メチ
ルメタクリレート−ブタジエン共重合体、アクリロニト
リル−ブタジエン共重合体等のブタジエン系共重合体の
微粒子;不溶性アガロース、セルロース、不溶性デキス
トラン等の有機系高分子;官能基としてカルボキシル
基、1級アミノ基、カルバモイル基(−CONH2 )、
水酸基、アルデヒド基等を有し、かつ、基体が上記有機
系微粒子からなる反応性有機系微粒子等が挙げられる。
Examples of the organic fine particles which can be industrially mass-produced include, for example, homopolymers obtained by polymerizing vinyl monomers such as styrene, vinyl chloride, acrylonitrile, vinyl acetate, acrylates and methacrylates. And fine particles of copolymers (polystyrene, styrene-styrene sulfonate copolymer, methacrylic acid polymer, acrylic acid polymer, vinyl chloride-acrylate copolymer, etc.); styrene-butadiene copolymer, methyl methacrylate Butadiene copolymer fine particles such as butadiene copolymer and acrylonitrile-butadiene copolymer; organic polymers such as insoluble agarose, cellulose and insoluble dextran; carboxyl, primary amino and carbamoyl groups as functional groups ( —CONH 2 ),
Reactive organic fine particles having a hydroxyl group, an aldehyde group, and the like and having a substrate made of the above-mentioned organic fine particles are exemplified.

【0020】上記不溶性担体としては、そのほか、動物
の赤血球や細菌の細胞等の生物学的粒子;ベントナイ
ト、コロジオン、コレステロール結晶、シリカ、金、チ
タン、鉄、ニッケル、カオリン、炭素末等の非生物学的
粒子等が挙げられる。上記不溶性担体の形状としては、
球状粒子、粉末、片状等が挙げられる。
Other examples of the insoluble carrier include biological particles such as animal erythrocytes and bacterial cells; and non-biological particles such as bentonite, collodion, cholesterol crystals, silica, gold, titanium, iron, nickel, kaolin, and carbon powder. Particles. As the shape of the insoluble carrier,
Examples include spherical particles, powders, and flakes.

【0021】上記不溶性担体の種類、材質、形状は、使
用される測定原理、測定方法によって、その非特異反応
抑制効果、特異抗体又は特異抗原を固定化した不溶性担
体と被測定物質との反応に対する妨害の有無、調製のし
やすさ、使用簡便性等の観点から選択される。
The type, material and shape of the insoluble carrier depend on the measurement principle and the measurement method used to suppress the effect of the non-specific reaction and the reaction between the insoluble carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized and the substance to be measured. It is selected from the viewpoint of the presence or absence of interference, ease of preparation, ease of use, and the like.

【0022】上記不溶性担体の材質は、特異抗体又は特
異抗原を固定化する担体の材質と同じものが好ましい。
上記不溶性担体の形状は、その調製のしやすさや使用簡
便性から球状粒子が好ましい。
The material of the insoluble carrier is preferably the same as the material of the carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized.
The shape of the insoluble carrier is preferably spherical particles from the viewpoint of easy preparation and easy use.

【0023】本発明においては、抗体の吸着性に優れて
おり、かつ、生物学的活性を長期間安定に保持できる等
の理由から、ラテックスからなる不溶性担体が好まし
く、ポリスチレン系のラテックス粒子がより好ましい。
In the present invention, an insoluble carrier composed of latex is preferred, and polystyrene-based latex particles are more preferred because they have excellent antibody-adsorbing properties and can maintain biological activity stably for a long period of time. preferable.

【0024】上記不溶性担体の大きさ(球状粒子の場合
は平均粒径)は、特異抗体又は特異抗原を固定化した担
体の形状、大きさ、検出方法、測定機器等によって、
0.005μm〜10mmのものが適宜選択される。
The size of the insoluble carrier (average particle size in the case of spherical particles) depends on the shape and size of the carrier on which the specific antibody or specific antigen is immobilized, the detection method, the measuring instrument, and the like.
One having a thickness of 0.005 μm to 10 mm is appropriately selected.

【0025】上記不溶性担体への固定化方法は、一般に
使用されている方法を採用することができ、例えば、不
溶性担体表面に物理的に吸着させる手法や、官能基を有
する不溶性担体表面に、既知の方法である化学結合法や
共有結合法により、効率的に結合する手法が挙げられ
る。好ましくは.特異抗体又は特異抗原の担体への固定
化方法と同じ方法、条件で固定化する方法である。
As the method for immobilization on the insoluble carrier, a commonly used method can be employed. For example, a method of physically adsorbing on the surface of the insoluble carrier or a method of immobilizing the compound on the surface of the insoluble carrier having a functional group can be used. And a method of efficiently bonding by a chemical bonding method or a covalent bonding method. Preferably. This is a method in which the specific antibody or the specific antigen is immobilized on the carrier under the same method and conditions.

【0026】上記不溶性担体への固定化量は、特異抗体
又は特異抗原の不溶性担体への固定化量、使用される測
定原理、測定方法によって、その非特異反応抑制効果、
特異抗体又は特異抗原を固定化した担体と被測定物質と
の反応への妨害の有無、調製のしやすさ等の観点から選
択される。
The amount of the specific antibody or the specific antigen immobilized on the insoluble carrier depends on the amount of the specific antibody or the specific antigen immobilized on the insoluble carrier, the measuring principle and the measuring method used, and the effect of suppressing the nonspecific reaction.
It is selected from the viewpoint of the presence or absence of interference with the reaction between the carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized and the analyte, the ease of preparation, and the like.

【0027】上記不溶性担体に被測定物質に対して免疫
学的に反応しない抗体又はその断片を固定化する場合、
その抗体の固定化量(不溶性担体の単位表面積当たりの
固定化量)が、特異抗体の固定化量(担体の単位表面積
当たりの固定化量)の20%〜500%であることが望
ましい。上記の場合、不溶性担体には、更にブロッキン
グ処理を施してもよい。上記ブロッキング剤としては、
上述したものを使用することができ、ブロッキング剤の
固定化方法は、一般に使用されている物理吸着又は化学
結合が採用できる。好ましくは、特異抗体を固定化した
担体に用いられているブロッキング剤と同一の物質を用
い、同一の固定化方法を実施することである。
When immobilizing an antibody or a fragment thereof which does not immunologically react with the substance to be measured on the insoluble carrier,
It is desirable that the amount of the antibody immobilized (the amount of the insoluble carrier immobilized per unit surface area) is 20% to 500% of the amount of the specific antibody immobilized (the amount of immobilized carrier per unit surface area). In the above case, the insoluble carrier may be further subjected to a blocking treatment. As the blocking agent,
The above-described ones can be used, and a generally used physical adsorption or chemical bond can be adopted as a method for immobilizing the blocking agent. Preferably, the same immobilization method is performed using the same substance as the blocking agent used in the carrier on which the specific antibody is immobilized.

【0028】上記不溶性担体に免疫学的に反応しない抗
原を固定化する場合には、好ましくは、特異抗体又は特
異抗原を固定化した担体に免疫学的に不活性な物質をブ
ロッキングする際の処理量の0.05〜50倍であるこ
とが好ましい。なお、処理量とは、担体1体積当たりの
総表面積に対する免疫学的に不活性な物質の重量であ
る。
When immobilizing an antigen that does not react immunologically on the insoluble carrier, treatment for blocking an immunologically inactive substance on the carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized is preferably performed. It is preferably 0.05 to 50 times the amount. The treatment amount is the weight of the immunologically inactive substance with respect to the total surface area per one volume of the carrier.

【0029】上記被測定物質に対して免疫学的に反応し
ない抗体若しくはその断片、又は、免疫学的に反応しな
い抗原を固定化した不溶性担体は、通常懸濁液の状態で
調製され、非特異反応抑制剤として使用される。
The antibody or fragment thereof which does not immunologically react with the substance to be measured or the insoluble carrier on which the antigen which does not immunologically react is immobilized is usually prepared in the form of a suspension, Used as a reaction inhibitor.

【0030】上記懸濁用媒体としては、被測定物質の種
類、使用される測定原理、測定方法に応じた各種緩衝液
が用いられる。上記緩衝液としては、測定物質を失活さ
せることがなく、かつ、抗原抗体反応を阻害しないよう
なイオン濃度やpHを有するものであればよく、例え
ば、リン酸緩衝液、トリス−塩酸緩衝液、グリシン緩衝
液等が挙げられる。好ましくは、グッド緩衝液群に属す
るものであり、例えば、トリス(ヒドロキシ)アミノメ
タン及びスルホン酸基を有するものである。より好まし
くは、2−ヒドロキシ−N−トリス(ヒドロキシメチ
ル)メチル−3−アミノプロパンスルホン酸(TAPS
O)、N−トリス(ヒドロキシメチル)メチル−3−ア
ミノプロパンスルホン酸(TAPS)、N−トリス(ヒ
ドロキシメチル)メチル−2−アミノプロパンスルホン
酸(TES)等である。
As the suspension medium, various buffers depending on the type of the substance to be measured, the measurement principle used, and the measurement method are used. The buffer may be any buffer that does not deactivate the substance to be measured and has an ion concentration or pH that does not inhibit the antigen-antibody reaction. For example, phosphate buffer, Tris-HCl buffer Glycine buffer and the like. Preferably, they belong to the group of good buffers, for example, those having tris (hydroxy) aminomethane and sulfonic acid groups. More preferably, 2-hydroxy-N-tris (hydroxymethyl) methyl-3-aminopropanesulfonic acid (TAPS
O), N-tris (hydroxymethyl) methyl-3-aminopropanesulfonic acid (TAPS), N-tris (hydroxymethyl) methyl-2-aminopropanesulfonic acid (TES) and the like.

【0031】上記pHは、好ましくは7.0〜8.5、
より好ましくは7.5〜8.0である。上記緩衝液に
は、特異性を高めるための塩化コリン等の第4級アンモ
ニウム塩;反応促進剤;アルブミン、ショ糖等の安定化
剤;感度を高める効果が期待されるポリエチレングリコ
ール、デキストラン等の水溶性多糖類;防腐剤としてア
ジ化ナトリウム;塩濃度調整のための塩化ナトリウム等
を適宜添加することもできる。上記添加物は、被測定物
質を失活させることなく、かつ、抗原抗体反応を阻害し
ないものであればいずれも利用できる。
The pH is preferably 7.0 to 8.5,
More preferably, it is 7.5 to 8.0. The buffer includes a quaternary ammonium salt such as choline chloride for enhancing specificity; a reaction accelerator; a stabilizer such as albumin and sucrose; a polyethylene glycol and dextran which are expected to have an effect of increasing sensitivity. Water-soluble polysaccharides; sodium azide as a preservative; sodium chloride for adjusting the salt concentration and the like can also be appropriately added. Any of the above additives can be used as long as they do not deactivate the substance to be measured and do not inhibit the antigen-antibody reaction.

【0032】本発明においては、上記の非特異反応抑制
剤を用いることによって、免疫反応における非特異反応
を抑制するものである。即ち、特異抗体の精製処理、そ
の酵素による断片化処理、及び、特異抗体を不溶性担体
に固定化する際に、試薬のpHやイオン強度等により特
異抗体が何らかの変性を受けてしまっている場合や、こ
れらの処理の際に、目的とする抗体又はその断片以外の
物質が混入したり生成する場合がある。これらの変性を
受けたり副反応生成物等が混入することが原因で、検体
中の非特異反応誘起物質と反応が起こってしまう場合が
ある。本発明は、被測定物質に対して免疫学的に反応し
ない抗体又はその断片を不溶性担体に固定化して非特異
反応抑制剤として用いることによって、検体中の非特異
反応誘起物質が本発明の非特異反応抑制剤と反応を起こ
すために、特異抗体を固定化した担体と非特異反応誘起
物質との反応が阻害(抑制)され、非特異反応を抑制で
きると考えられる。
In the present invention, a non-specific reaction in an immune reaction is suppressed by using the above-mentioned non-specific reaction inhibitor. That is, specific antibody purification, fragmentation with the enzyme, and, when immobilizing the specific antibody on an insoluble carrier, when the specific antibody has undergone some denaturation due to reagent pH, ionic strength, etc. During these treatments, substances other than the target antibody or its fragment may be mixed or produced. A reaction with a non-specific reaction inducing substance in a sample may occur due to the denaturation or the incorporation of a by-product or the like. The present invention provides a method for immobilizing a non-specific reaction-inducing substance in a sample by immobilizing an antibody or a fragment thereof which does not immunologically react with a test substance on an insoluble carrier and using the same as a non-specific reaction inhibitor. In order to cause a reaction with the specific reaction inhibitor, it is considered that the reaction between the carrier on which the specific antibody is immobilized and the non-specific reaction inducing substance is inhibited (suppressed), and the non-specific reaction can be suppressed.

【0033】上記ブロッキング剤として用いられる物質
は、また、免疫学的に不活性であり、被測定物質である
抗原又は抗体と特異的な反応性をもたないが、血清中の
非特異反応誘起物質と反応が起こる場合がある。また、
不溶性担体との相互作用や結合反応の副反応によって、
何らかの変性を受けている場合があり、このような変性
が原因で、血清中の非特異反応誘起物質と反応が起こっ
てしまう場合がある。本発明の非特異反応抑制剤は、ま
た、免疫学的に反応しない抗原、特に、ブロッキング剤
として使用した物質と同じ物質を固定化した不溶性担体
を使用することにより、それが血清中の非特異反応誘起
物質と反応を起こすために、非特異反応が阻害(抑制)
されると考えられる。
The substance used as the above-mentioned blocking agent is also immunologically inactive and has no specific reactivity with the antigen or antibody to be measured, but induces nonspecific reaction in serum. Reaction with substances may occur. Also,
Due to the interaction with the insoluble carrier and the side reaction of the binding reaction,
It may have undergone some kind of denaturation, and such denaturation may cause a reaction with a non-specific reaction inducing substance in serum. The non-specific reaction inhibitor of the present invention is also characterized by using an insoluble carrier in which the same substance as the substance used as the blocking agent is immobilized, which is not immunologically reactive. Non-specific reaction is inhibited (suppressed) to cause a reaction with the reaction-inducing substance
It is thought to be done.

【0034】本発明2は、被測定物質に対する抗体又は
抗原を固定化した担体を用いる免疫測定方法において用
いられ、上記被測定物質に対して免疫学的に反応する抗
体又は抗原を固定化した不溶性担体からなる非特異反応
抑制剤である。
The present invention 2 is used in an immunoassay method using a carrier on which an antibody or an antigen against a substance to be measured is immobilized, and an insoluble antibody or antigen immobilized on the above substance to be immunologically reacted is immobilized. It is a non-specific reaction inhibitor composed of a carrier.

【0035】上記被測定物質に対して免疫学的に反応す
る抗体又は抗原としては、担体に固定化されている特異
抗体又は特異抗原と同じものであってもよく、それらは
精製されていなくてもよい。上記特異抗体としては、1
種類若しくはそれ以上のモノクローナル抗体、又は、ポ
リクローナル抗体であってもよい。
The antibody or antigen that reacts immunologically with the substance to be measured may be the same as the specific antibody or the specific antigen immobilized on the carrier. Is also good. As the specific antibody, 1
One or more monoclonal antibodies or polyclonal antibodies may be used.

【0036】上記不溶性担体としては、本発明1におい
て挙げたものが使用できる。上記被測定物質に対して免
疫学的に反応する抗体又は抗原を固定化した不溶性担体
は、通常懸濁液の状態で調製され、非特異反応抑制剤と
して使用される。上記懸濁用媒体としては、本発明1で
挙げたものが使用できる。
As the insoluble carrier, those described in the present invention 1 can be used. The insoluble carrier on which the antibody or antigen that reacts immunologically with the substance to be measured is immobilized is usually prepared in the form of a suspension and used as a nonspecific reaction inhibitor. As the suspension medium, those described in the present invention 1 can be used.

【0037】本発明2は、免疫学的に反応する抗体又は
抗原の構成部分のうち、対応する抗体又は抗原と特異的
に反応する部分(エピトープ)以外の構成部分(Fc
等)に起因する非特異反応を抑制するために、免疫反応
を行う前に、予め免疫反応を行う試薬の一部又は量的、
濃度的に少ない状況で検体と試薬を接触させておいて、
非特異反応を吸収させるものである。
The present invention 2 relates to a component (Fc) other than a component (epitope) that specifically reacts with the corresponding antibody or antigen among the components of an immunologically reactive antibody or antigen.
In order to suppress the non-specific reaction caused by, for example, before performing an immune reaction, a part or quantitative
Keep the sample in contact with the reagent in a low concentration situation,
It absorbs non-specific reactions.

【0038】従って、固定化させる抗体又は抗原の量
は、本発明1の固定化条件と同じでよいが、使用する濃
度を最終的に使用する免疫試薬の1/50〜1/10と
することが好ましい。又は、最終的に使用する免疫試薬
で2種以上のモノクローナル抗体を固定化した試薬が用
いられている場合には、少なくとも1種以上を用いるこ
とが好ましい。
Therefore, the amount of the antibody or antigen to be immobilized may be the same as the immobilization conditions of the present invention 1, but the concentration to be used should be 1/50 to 1/10 of the finally used immunoreagent. Is preferred. Alternatively, when a reagent in which two or more types of monoclonal antibodies are immobilized is used as an immunoreagent to be finally used, it is preferable to use at least one type or more.

【0039】本発明3は、被測定物質に対する抗体又は
抗原を固定化した担体を用いる免疫測定方法において用
いられ、不溶性担体からなる非特異反応抑制剤である。
上記不溶性担体としては、本発明1において挙げたもの
が使用できる。上記不溶性担体は、何も固定化されてい
ないものを使用し、通常懸濁液の状態で調製され、非特
異反応抑制剤として使用される。上記懸濁用媒体として
は、本発明1で挙げたものが使用できる。
The present invention 3 is a non-specific reaction inhibitor which is used in an immunoassay using a carrier on which an antibody or an antigen against the substance to be measured is immobilized, and which comprises an insoluble carrier.
As the insoluble carrier, those described in the present invention 1 can be used. The insoluble carrier is used without immobilization, and is usually prepared in the form of a suspension, and used as a non-specific reaction inhibitor. As the suspension medium, those described in the present invention 1 can be used.

【0040】本発明の非特異反応抑制剤は、被測定物質
に対する抗体又は抗原(特異抗体又は特異抗原)を固定
化した担体を用いる免疫測定方法において用いられるも
のである。
The non-specific reaction inhibitor of the present invention is used in an immunoassay method using a carrier on which an antibody or an antigen (specific antibody or specific antigen) against a substance to be measured is immobilized.

【0041】上記被測定物質としては、生体試料中に含
まれる生理活性物質であり、抗原抗体反応を利用して測
定し得る物質であれば特に限定されず、例えば、タンパ
ク質、糖タンパク質、脂質タンパク質、レセプター、酵
素、ウイルス抗原・抗体等が挙げられ、具体的には、C
RP、ヒトフィブリノーゲン、リウマチ因子、アルファ
ーフェトプロティン(AFP)、HBs抗原、フェリチ
ン、抗ストレプトリジンO抗体、梅毒トレポネーマ抗
体、梅毒脂質抗原に対する抗体、HBs抗体、HBc抗
体、HBe抗体等が挙げられる。
The substance to be measured is a physiologically active substance contained in a biological sample and is not particularly limited as long as it can be measured by utilizing an antigen-antibody reaction. Examples thereof include proteins, glycoproteins and lipid proteins. , Receptors, enzymes, viral antigens / antibodies and the like.
Examples include RP, human fibrinogen, rheumatoid factor, alpha-fetoprotein (AFP), HBs antigen, ferritin, anti-streptolysin O antibody, syphilis treponemal antibody, antibody to syphilis lipid antigen, HBs antibody, HBc antibody, HBe antibody and the like.

【0042】上記被測定物質としては、また、臨床検査
上重要な項目であり、従来までラテックス凝集法では検
出感度が不足であるとされていた項目についても特に有
用であり、例えば、癌検診のスクリーニングにおいて測
定される、CEA、CA19−9等の1ng/mLまで
検出感度が要求される項目等が挙げられる。
The substance to be measured is also an important item in clinical examination, and is particularly useful for an item which has been conventionally considered to be insufficient in detection sensitivity by the latex agglutination method. Items requiring detection sensitivity up to 1 ng / mL, such as CEA and CA19-9, which are measured in the screening, are listed.

【0043】上記免疫測定方法において使用される特異
抗体としては、モノクローナル抗体であってもよいし、
免疫源を通常のウサギ、マウス、馬、ヤギ等の動物に接
種することによって得られるポリクローナル抗体であっ
てもよい。上記モノクローナル抗体は、細胞融合技術分
野において、それ自体公知の手法を適宜に選択し、また
それらを組み合わせてモノクローナル抗体産生融合細胞
株を形成し、該細胞株を利用して産生、取得できる
(「単クローン抗体・ハイブリドーマとELISA」岩
崎辰夫ら著、講談社)。
The specific antibody used in the above immunoassay may be a monoclonal antibody,
It may be a polyclonal antibody obtained by inoculating an immunogen into a normal animal such as a rabbit, a mouse, a horse, or a goat. The monoclonal antibody can be produced and obtained using the cell line by appropriately selecting a method known per se in the cell fusion technical field, and forming a monoclonal antibody-producing fusion cell line by combining them. Monoclonal antibodies, hybridomas and ELISA, written by Tatsuo Iwasaki et al., Kodansha).

【0044】上記免疫測定方法において使用される担体
としては、通常免疫測定方法において使用されるもので
あれば特に限定されず、例えば、上述した非特異反応抑
制剤に使用する不溶性担体や、プラスチックビーズ、プ
ラスチックプレート等を用いることができる。
The carrier used in the above-mentioned immunoassay is not particularly limited as long as it is usually used in the immunoassay, and examples thereof include an insoluble carrier used for the above-mentioned non-specific reaction inhibitor and plastic beads. , A plastic plate or the like can be used.

【0045】上記免疫測定方法において使用される担体
としてラテックスからなる不溶性担体を使用する場合、
その平均粒径は、担体上の特異抗体又は特異抗原と被測
定物質との抗原抗体反応により惹起される凝集反応の結
果生じた凝集塊が、肉眼又は光学的に検出できるに充分
な大きさを呈するものであればよく、好ましくは平均粒
径0.01〜1.0μm、より好ましくは平均粒径0.
05〜0.5μmのものである。上記担体の表面に特異
抗体又は特異抗原を感作させる手法としては、上述した
不溶性担体への固定化方法が採用できる。
When an insoluble carrier composed of latex is used as the carrier used in the above immunoassay method,
The average particle size is large enough that an aggregate formed as a result of an agglutination reaction caused by an antigen-antibody reaction between a specific antibody or a specific antigen on a carrier and an analyte can be detected visually or optically. The average particle diameter is preferably 0.01 to 1.0 μm, more preferably 0.1 to 1.0 μm.
It is from 0.5 to 0.5 μm. As a method for sensitizing the surface of the carrier with a specific antibody or a specific antigen, the above-described method for immobilizing the carrier on an insoluble carrier can be employed.

【0046】本発明4は、本発明1、本発明2又は本発
明3の非特異反応抑制剤を含有する免疫測定試薬であ
る。上記本発明1、本発明2又は本発明3の非特異反応
抑制剤は、その添加方法によって、非特異反応抑制効
果、使用簡便性等の観点からその剤型を選択し、免疫測
定試薬として使用される。上記免疫測定試薬は、例え
ば、上記非特異反応抑制剤を含み、特異抗体若しくは特
異抗原を固定化した担体を含まない液状試薬(懸濁液)
として、又は、上記固定化された不溶性担体及び特異抗
体若しくは特異抗原を固定化した担体を含む液状試薬
(懸濁液)として調製できる。ただし、本発明2の非特
異反応抑制剤を使用する場合は、非特異反応抑制剤を含
み、特異抗体若しくは特異抗原を固定化した担体を含ま
ない液状試薬(懸濁液)として調製される。
[0046] The present invention 4 is an immunoassay reagent containing the non-specific reaction inhibitor of the present invention 1, 2 or 3 of the present invention. The above-mentioned nonspecific reaction inhibitor of the present invention 1, 2 or 3 is used as an immunoassay reagent by selecting its dosage form from the viewpoint of nonspecific reaction inhibitory effect, ease of use, etc., depending on the method of addition. Is done. The immunoassay reagent is, for example, a liquid reagent (suspension) containing the nonspecific reaction inhibitor and not containing a carrier on which a specific antibody or a specific antigen is immobilized.
Or a liquid reagent (suspension) containing the immobilized insoluble carrier and the carrier on which the specific antibody or specific antigen is immobilized. However, when the non-specific reaction inhibitor of the present invention 2 is used, it is prepared as a liquid reagent (suspension) containing the non-specific reaction inhibitor and not containing the carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized.

【0047】本発明5は、被測定物質を含む試料を本発
明の非特異反応抑制剤によって予め処理した後免疫反応
させるか、又は、本発明の非特異反応抑制剤の存在下で
被測定物質を含む試料を免疫反応させる免疫測定方法で
ある。本発明5の免疫測定方法においては、被測定物質
を含む試料を本発明の非特異反応抑制剤で処理すること
からなるものである。
The present invention 5 relates to a method for treating a sample containing a substance to be measured in advance with the non-specific reaction inhibitor of the present invention, followed by immunoreaction, or in the presence of the non-specific reaction inhibitor of the present invention, This is an immunoassay method for immunoreacting a sample containing: The immunoassay according to the fifth aspect of the present invention comprises treating a sample containing the substance to be measured with the nonspecific reaction inhibitor of the present invention.

【0048】上記非特異反応抑制剤の処理方法として
は、例えば、(第1法)非特異反応抑制剤を含む液を被
測定物質を含む試料に予め添加し、試料中の非特異反応
誘起物質を吸収させ、非特異反応抑制剤を添加したま
ま、非特異反応抑制剤と試料の混合物を、特異抗体又は
特異抗原を固定化した担体に接触させ、被測定物質であ
る抗原又は抗体との特異的反応を起こす方法、(第2
法)非特異反応抑制剤を含む液を被測定物質を含む試料
に予め添加し、試料中の非特異反応誘起物質を吸収さ
せ、その後、非特異反応抑制剤である不溶性担体を取り
除き、その残液を、特異抗体又は特異抗原を固定化した
不溶性担体に接触させ、被測定物質である抗原又は抗体
との特異的反応を起こす方法、並びに、(第3法)非特
異反応抑制剤及び特異抗体を固定化した不溶性担体とを
含む反応系に、被測定物質を含む試料を添加し、試料中
の非特異反応誘起物質を吸収させる反応と、特異抗体と
被測定物質である抗原との特異的反応を同時に起こす方
法が挙げられる。
As a method for treating the non-specific reaction inhibitor, for example, (first method) a solution containing a non-specific reaction inhibitor is added in advance to a sample containing a substance to be measured, and the non-specific reaction-inducing substance in the sample is added. The mixture of the non-specific reaction inhibitor and the sample is brought into contact with the carrier on which the specific antibody or specific antigen is immobilized while the non-specific reaction inhibitor is added, and the specificity with the antigen or antibody as the analyte is measured. To cause a reactive reaction, (2nd
Method) A liquid containing a non-specific reaction inhibitor is added in advance to a sample containing a substance to be measured, a non-specific reaction-inducing substance in the sample is absorbed, and then the insoluble carrier, which is a non-specific reaction inhibitor, is removed. Contacting the solution with an insoluble carrier having a specific antibody or specific antigen immobilized thereon to cause a specific reaction with the antigen or antibody to be measured, and (Method 3) a non-specific reaction inhibitor and a specific antibody A sample containing a substance to be measured is added to a reaction system containing an insoluble carrier having immobilized thereon, and a reaction for absorbing a non-specific reaction inducing substance in the sample, and a specific reaction between a specific antibody and an antigen which is a substance to be measured. A method for causing the reaction to occur simultaneously is mentioned.

【0049】上記非特異反応抑制剤の処理方法として
は、被測定物質の種類、使用される測定原理、測定方法
によって、その非特異反応抑制効果、使用簡便性等の視
点から上記(第1法)、(第2法)又は(第3法)のな
かから選択できる。上記非特異反応抑制剤として本発明
2の被測定物質に対して免疫学的に反応する抗体又は抗
原を固定化した不溶性担体からなるものを使用する場合
には、上記(第1法)又は(第2法)のように、被測定
物質を含む試料を非特異反応抑制剤によって予め処理す
る方法のなかから選択できる。
The method of treating the above-mentioned non-specific reaction inhibitor is based on the above-mentioned (the first method) from the viewpoint of its non-specific reaction suppressing effect, simplicity of use, etc., depending on the type of the substance to be measured, the measuring principle used, and the measuring method. ), (Second method) or (third method). When the non-specific reaction inhibitor is composed of an insoluble carrier on which an antibody or antigen that immunologically reacts with the test substance of the present invention 2 is immobilized, the method (1) or ( As in the second method), the method can be selected from methods in which a sample containing the substance to be measured is previously treated with a nonspecific reaction inhibitor.

【0050】上記処理方法として(第1法)又は(第3
法)を採用する場合、非特異反応抑制剤に使用される不
溶性担体は、0.01〜20μmの平均粒径のものが好
ましい。0.01μm未満であると、非特異反応抑制剤
として調製する際、非常に手間がかかる場合がある。2
0μmを超えると、不溶性担体の単位重量当たりの表面
積が小さくなり、担体数を多くしないと非特異反応の抑
制効果が充分でなかったり、その不溶性担体が示すシグ
ナルに対して、被測定物質である抗原又は抗体と特異抗
体又は特異抗原を固定化した不溶性担体との特異的反応
を示すシグナルが小さくなり、結果として検出感度が悪
化することがある。
As the above processing method, the (first method) or the (third method)
Method), the insoluble carrier used for the non-specific reaction inhibitor preferably has an average particle size of 0.01 to 20 μm. When it is less than 0.01 μm, it may take a lot of trouble when preparing as a non-specific reaction inhibitor. 2
If it exceeds 0 μm, the surface area per unit weight of the insoluble carrier becomes small, and if the number of carriers is not increased, the effect of suppressing the nonspecific reaction is not sufficient or the signal shown by the insoluble carrier is a substance to be measured. A signal indicating a specific reaction between the antigen or the antibody and the insoluble carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized becomes small, and as a result, the detection sensitivity may be deteriorated.

【0051】上記処理方法として(第2法)を採用する
場合は、非特異反応抑制剤に使用される不溶性担体は、
0.01〜10μmの平均粒径のものが好ましい。0.
01μm未満であると、非特異反応抑制剤として調製す
る際、非常に手間がかかる場合がある。20μmを超え
ると、不溶性担体の単位重量当たりの表面積が小さくな
り、担体数を多くしないと非特異反応の抑制効果が充分
でない場合がある。
When the (method 2) is employed as the above treatment method, the insoluble carrier used for the non-specific reaction inhibitor comprises:
Those having an average particle size of 0.01 to 10 μm are preferred. 0.
When it is less than 01 μm, it may take a lot of trouble when preparing as a non-specific reaction inhibitor. If it exceeds 20 μm, the surface area per unit weight of the insoluble carrier becomes small, and if the number of carriers is not increased, the effect of suppressing the nonspecific reaction may not be sufficient.

【0052】本発明5の免疫測定方法において、非特異
抑制剤の添加濃度としては、その不溶性担体に固定化さ
れた非特異抑制用物質の量、不溶性担体の大きさ、種類
及び平均粒径、特異抗体又は特異抗原を固定化した担体
の濃度、種類及び平均粒径、検出方法、並びに、測定機
器によって、その非特異反応抑制効果、特異抗体又は特
異抗原を固定化した担体と抗原との反応への妨害の有
無、使用簡便性等の観点から適宜選ばれる。
In the immunoassay of the present invention 5, the concentration of the non-specific inhibitor added includes the amount of the non-specific inhibitor immobilized on the insoluble carrier, the size, type and average particle size of the insoluble carrier. The concentration, type and average particle size of the carrier on which the specific antibody or specific antigen is immobilized, the detection method, and the non-specific reaction suppressing effect, the reaction between the carrier and the carrier on which the specific antibody or specific antigen is immobilized. Is appropriately selected from the viewpoints of the presence or absence of interference with the device, ease of use, and the like.

【0053】具体的には、上記非特異反応抑制剤の処理
方法として(第1法)又は(第3法)を採用する場合、
不溶性担体の濃度は、好ましくは、抗原抗体反応液に対
して、0.001〜5重量%を添加する。0.001重
量%未満であると、非特異反応の抑制効果が充分でない
場合がある。5重量%を超えると、不溶性担体が示すシ
グナルに対して、被測定物質である抗原又は抗体と特異
抗体又は特異抗原を固定化した不溶性担体との特異的反
応を示すシグナルが小さくなり、結果として検出感度が
悪くなることがある。
Specifically, when the (method 1) or (method 3) is employed as a method for treating the above nonspecific reaction inhibitor,
The concentration of the insoluble carrier is preferably 0.001 to 5% by weight based on the antigen-antibody reaction solution. If the amount is less than 0.001% by weight, the effect of suppressing the nonspecific reaction may not be sufficient. If the content exceeds 5% by weight, the signal indicating the specific reaction between the antigen or antibody to be measured and the insoluble carrier having the specific antibody or the specific antigen immobilized thereon becomes smaller with respect to the signal shown by the insoluble carrier. Detection sensitivity may deteriorate.

【0054】上記非特異反応抑制剤の処理方法として
(第2法)を採用する場合、不溶性担体の濃度は、抗原
抗体反応液に対して、好ましくは、0.001〜10重
量%を添加する。0.001重量%未満であると、非特
異反応の抑制効果が充分でない場合がある。10重量%
を超えると、これを検体に添加した際、検体中の被測定
物質である抗原又は抗体が不溶性担体に非特異的に吸着
し、抗原と特異抗体を固定化した不溶性担体との特異的
反応を示すシグナルが小さくなり、結果として検出感度
が悪くなることがある。但し、この方法では、抗原抗体
反応の反応系には非特異反応抑制剤は存在せず、前もっ
て取り除かれた状態にあるので、非特異反応抑制剤の添
加量は、仮に非特異反応抑制剤を取り除かなかった場合
の濃度を表わすものとする。
When (Method 2) is employed as a method for treating the above nonspecific reaction inhibitor, the concentration of the insoluble carrier is preferably 0.001 to 10% by weight based on the antigen-antibody reaction solution. . If the amount is less than 0.001% by weight, the effect of suppressing the nonspecific reaction may not be sufficient. 10% by weight
When this is added to the sample, the antigen or antibody to be measured in the sample is non-specifically adsorbed to the insoluble carrier, and the specific reaction between the antigen and the insoluble carrier on which the specific antibody is immobilized is observed. The signal shown may be small, resulting in poor detection sensitivity. However, in this method, since the non-specific reaction inhibitor does not exist in the reaction system of the antigen-antibody reaction and has been removed in advance, the added amount of the non-specific reaction inhibitor is, It shall represent the concentration when not removed.

【0055】上記特異抗体又は特異抗原を固定化した担
体としてラテックス粒子を使用する場合には、上記非特
異抑制剤の不溶性担体の濃度は、後に抗原抗体反応を行
う際に添加されるそのラテックス液の濃度と併せて、検
出系の測定上限を越えない範囲であれば、特に限定され
ない。例えば、分光光度計による検出を行う際には、反
応終了後の吸光度が3.0を超えない範囲であればよ
い。プレート上で肉眼判定する場合では特に限定されな
い。
When latex particles are used as the carrier on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized, the concentration of the insoluble carrier of the non-specific inhibitor is determined by adjusting the concentration of the latex solution to be added later when performing the antigen-antibody reaction. The concentration is not particularly limited as long as it does not exceed the measurement upper limit of the detection system. For example, when performing detection with a spectrophotometer, the absorbance after the completion of the reaction may be within a range not exceeding 3.0. There is no particular limitation on the case where the naked eye determination is performed on the plate.

【0056】上記特異抗体又は特異抗原を担持させた担
体と、被測定物質である抗原又は抗体を含む試料との反
応は抗原抗体反応であり、この反応が起こりうる条件で
あれば、その条件は特に限定されない。上記反応は恒温
で行うのがよく、特に25℃〜37℃で行うのが好まし
い。上記反応時間についても特に限定されないが、5秒
から15分が好ましい。
The reaction between the above-mentioned carrier carrying the specific antibody or the specific antigen and the sample containing the antigen or the antibody to be measured is an antigen-antibody reaction. There is no particular limitation. The above reaction is preferably carried out at a constant temperature, particularly preferably at 25 ° C to 37 ° C. Although the reaction time is not particularly limited, it is preferably 5 seconds to 15 minutes.

【0057】上記反応において、最終的に抗原抗体反応
を行う反応液中にあって、非特異反応抑制剤以外の緩衝
液成分、即ち、検体の希釈用緩衝液等については、一般
的に生化学的な用途に用いられているリン酸、グリシ
ン、トリス等特に限定されず、上記不溶性担体の懸濁用
媒体として例示したものが挙げられる。
In the above reaction, the buffer components other than the non-specific reaction inhibitor, that is, the buffer for diluting the specimen, which are finally contained in the reaction solution for the antigen-antibody reaction, are generally biochemical There are no particular restrictions on phosphoric acid, glycine, Tris and the like used for typical applications, and those exemplified as the medium for suspending the insoluble carrier can be mentioned.

【0058】本発明5の免疫測定方法は、抗原抗体反応
を利用して抗原又は抗体を定量する方法であれば特に限
定されず、例えば、ラテックス凝集法、免疫クロマトグ
ラフィー等の免疫凝集反応測定法、EIA、RIA等が
挙げられる。
The immunoassay method of the present invention 5 is not particularly limited as long as it is a method for quantifying an antigen or an antibody utilizing an antigen-antibody reaction. For example, immunoassay methods such as latex agglutination method and immunochromatography , EIA, RIA and the like.

【0059】上記ラテックス凝集法の場合は、例えば、
以下のようにして行うことができる。上記ラテックス凝
集法において使用される試薬としては、検体の希釈及び
前処理用液状試薬(抗原抗体反応の特異性、感度等を向
上させる目的)である検体希釈液、並びに、特異抗体又
は特異抗原を固定化させた担体(ラテックス粒子)を含
む液状試薬であるラテックス液からなる。本発明の非特
異反応抑制剤を含む場合の試薬の構成としては、非特異
反応抑制剤を含むラテックス液のみの1試薬系、非特異
反応抑制剤を含む検体希釈液と非特異反応抑制剤を含ま
ないラテックス液との2試薬系、非特異反応抑制剤を含
まない検体希釈液と非特異反応抑制剤を含むラテックス
液との2試薬系、非特異反応抑制剤を含む検体希釈液と
非特異反応抑制剤を含むラテックス液との2試薬系が挙
げられる。
In the case of the latex aggregation method, for example,
It can be performed as follows. The reagent used in the latex agglutination method includes a sample diluent, which is a liquid reagent for diluting and pretreating the sample (for the purpose of improving the specificity and sensitivity of the antigen-antibody reaction), and a specific antibody or specific antigen. It consists of a latex liquid which is a liquid reagent containing an immobilized carrier (latex particles). The composition of the reagent in the case of containing the non-specific reaction inhibitor of the present invention includes a one-reagent system containing only a latex solution containing the non-specific reaction inhibitor, a sample diluent containing the non-specific reaction inhibitor, and the non-specific reaction inhibitor. Two-reagent system with latex solution not containing, two-reagent system with sample diluent without non-specific reaction inhibitor and latex solution with non-specific reaction inhibitor, sample diluent with non-specific reaction inhibitor and non-specific A two-reagent system with a latex liquid containing a reaction inhibitor may be used.

【0060】上記非特異抑制剤による処理方法は、(第
1法)〜(第3法)のいずれであってもよい。上記処理
方法としては、例えば、まず、検体と非特異反応抑制剤
を含む検体希釈液とを混合し、一定時間置く。その後、
非特異反応抑制剤を含まないラテックス液を上記混合液
に添加し、特異抗体を固定化したラテックス粒子の凝集
の度合を観察又は測定する。上記処理方法として他の例
を挙げると、まず、検体と非特異反応抑制剤を含まない
検体希釈液とを混合し、一定時間置く。その後、非特異
反応抑制剤を含むラテックス液を上記混合液に添加し、
特異抗体又は特異抗原を固定化したラテックス粒子の凝
集の度合を観察又は測定する。
The method of treatment with the non-specific inhibitor may be any of (Method 1) to (Method 3). As the above-mentioned processing method, for example, first, a sample and a sample diluent containing a non-specific reaction inhibitor are mixed and kept for a certain period of time. afterwards,
A latex solution containing no non-specific reaction inhibitor is added to the above mixture, and the degree of aggregation of the latex particles having the specific antibody immobilized thereon is observed or measured. As another example of the above-mentioned processing method, first, a sample and a sample diluent containing no nonspecific reaction inhibitor are mixed and left for a certain period of time. Thereafter, a latex solution containing a non-specific reaction inhibitor is added to the mixed solution,
The degree of aggregation of the latex particles having the specific antibody or specific antigen immobilized thereon is observed or measured.

【0061】上記免疫測定方法がラテックス凝集法の場
合、上記非特異反応抑制剤である不溶性担体は、ラテッ
クス粒子であることが好ましく、特異抗体又は特異抗原
を固定化したラテックスの粒径に応じて、0.01〜5
0μmの粒径のものが適宜選択される。上記非特異反応
抑制剤である不溶性担体を比較的濃い濃度で使用すると
きは、特異性抗体を固定化したラテックス粒子の凝集の
度合を観察または測定する際、バックグラウンドが大き
くなってしまうので、特異抗体又は特異抗原が固定化さ
れたラテックス粒子よりも小さい粒径の粒子を用いると
よい。
When the immunoassay is a latex agglutination method, the insoluble carrier serving as the non-specific reaction inhibitor is preferably latex particles, depending on the particle size of the latex on which the specific antibody or specific antigen is immobilized. , 0.01-5
A particle having a particle size of 0 μm is appropriately selected. When using the insoluble carrier which is the non-specific reaction inhibitor at a relatively high concentration, the background becomes large when observing or measuring the degree of aggregation of the latex particles on which the specific antibody is immobilized, It is preferable to use particles having a particle size smaller than the latex particles to which the specific antibody or the specific antigen is immobilized.

【0062】上記ラテックスの凝集の程度を測定する方
法は、特に限定されない。上記凝集を定量的に測定する
場合、簡便性及び精度の点からは、例えば光学的に測定
することが好ましく、具体的には、上記測定は散乱光、
吸光度又は透過光強度を測定する光学機器で行う。上記
測定の波長としては、300〜1200nmが使用でき
る。上記測定方法については公知の方法に従い、用いる
不溶性担体の大きさ、その濃度の選択、反応時間の設定
により、散乱光強度、吸光度又は過光強度の増加若しく
は減少を測定することにより行われる。また、これらの
方法を併用することも可能である。
The method for measuring the degree of aggregation of the latex is not particularly limited. When quantitatively measuring the aggregation, it is preferable to measure, for example, optically from the viewpoint of simplicity and accuracy, specifically, the measurement is scattered light,
The measurement is performed with an optical instrument for measuring the absorbance or transmitted light intensity. As the wavelength for the above measurement, 300 to 1200 nm can be used. The above measuring method is carried out by measuring the increase or decrease of the scattered light intensity, the absorbance or the excess light intensity by selecting the size of the insoluble carrier to be used, its concentration, and setting the reaction time according to a known method. Also, these methods can be used in combination.

【0063】上記ラテックス凝集の光学的測定法として
は、公知の方法が利用可能であり、例えば、いわゆる比
濁法(凝集塊の形成を濁度の増加としてとらえる)、粒
度分布による測定法(凝集塊の形成を粒度分布ないし平
均粒径の変化としてとらえる)、積分球濁度法(凝集塊
の形成による前方散乱光の変化を積分球を用いて測定
し、透過光強度との比を比較する)等が挙げられる。
As the optical measurement method for the latex agglomeration, known methods can be used. For example, a so-called turbidity method (the formation of agglomerates is regarded as an increase in turbidity), a measurement method based on particle size distribution (aggregation) The formation of agglomerates is regarded as a change in the particle size distribution or average particle size), and the integrating sphere turbidity method (the change in forward scattered light due to the formation of agglomerates is measured using an integrating sphere, and the ratio with the transmitted light intensity is compared. ) And the like.

【0064】上記それぞれの測定法について、速度試験
(レートアッセイ;異なる時点で少なくとも2つの測定
値を得て、これらの時点間における該測定値の増加分
(すなわち増加速度)に基づき凝集の程度を求める)が
利用可能である。好ましくは、測定の簡便さ、迅速性の
点から、比濁法を用いた速度試験を行うことである。
For each of the above assays, a rate test (rate assay; taking at least two measurements at different time points) and determining the extent of aggregation based on the increment (ie the rate of increase) of the measurements between these time points. Ask) is available. Preferably, a speed test using a turbidimetric method is performed from the viewpoint of simplicity and quickness of measurement.

【0065】上記ラテックスの凝集反応においては、反
応開始後の凝集の度合を、定性的又は半定量的に測定す
る場合には、既知の試料の濁度の程度との比較から、上
記結合物の凝集の程度を目視によって判定することも可
能である。
In the above-mentioned latex agglutination reaction, when the degree of agglutination after the start of the reaction is qualitatively or semi-quantitatively measured, the degree of agglutination is determined by comparing the degree of agglutination with the turbidity of a known sample. It is also possible to visually determine the degree of aggregation.

【0066】上記不溶性担体の凝集の度合を肉眼で判定
する試薬においては、通常、試料と感作不溶性担体とを
含む溶液を判定板上で混合し、1〜5分間揺り動かした
後、凝集の有無を判定する。上記凝集判定には、単に肉
眼判定以外に、ビデオカメラで撮影し、画像処理を施す
ことも可能である。
In the reagent for visually determining the degree of aggregation of the insoluble carrier, a solution containing the sample and the sensitized insoluble carrier is usually mixed on a determination plate and shaken for 1 to 5 minutes. Is determined. In addition to the naked eye determination, the aggregation determination may be performed by photographing with a video camera and performing image processing.

【0067】上記免疫測定方法として、EIA法(2ス
テップサンドイッチ法)を採用する場合は、例えば、以
下のようにして行うことができる。上記EIA法には、
通常、検体の希釈及び前処理用液状試薬(抗原抗体反応
の特異性、感度等を向上させる目的)である検体希釈
液、液状試薬を添加できるようなくぼみ(ウェル)を持
ち、そのウェルの内面に特異抗体又は特異抗原が固定化
されている反応プレート、並びに、酵素等で修飾された
特異抗体又は特異抗原を含む液状試薬である特異抗体液
又は特異抗原液が用いられる。本発明の非特異反応抑制
剤を用いる場合、試薬の構成としては、非特異反応抑制
剤を含む検体希釈液、反応プレート、及び、非特異反応
抑制剤を含まない特異抗体液が例示できる。
When the EIA method (two-step sandwich method) is adopted as the above-mentioned immunoassay method, for example, it can be performed as follows. In the EIA method,
Normally, a well is provided to allow the addition of a sample diluent or liquid reagent, which is a liquid reagent for diluting and pretreating a sample (for the purpose of improving the specificity and sensitivity of the antigen-antibody reaction). A reaction plate on which a specific antibody or a specific antigen is immobilized, and a specific antibody solution or a specific antigen solution which is a liquid reagent containing the specific antibody or the specific antigen modified with an enzyme or the like are used. When the non-specific reaction inhibitor of the present invention is used, examples of the composition of the reagent include a sample diluent containing the non-specific reaction inhibitor, a reaction plate, and a specific antibody solution containing no non-specific reaction inhibitor.

【0068】上記非特異抑制剤の添加・反応方法は、
(第1法)〜(第3法)のどれでもよい。上記非特異抑
制剤の添加・反応方法としては、例えば、まず、検体と
非特異反応抑制剤を含む検体希釈液とを混合し、一定時
間置く。その後、特異抗体又は特異抗原が固定化された
反応プレートのウェルに上記混合液を加え、一定時間置
く。その後、混合液をウェルから取り除き、ウェル内を
洗浄し、ウェル内に特異抗体液又は特異抗原液を加えて
一定時間置く。再度、特異抗体液又は特異抗原液をウェ
ルから取り除き、ウェル内を洗浄し、この後、一般的に
用いられる方法で測定を行う。
The method of adding and reacting the above non-specific inhibitor is as follows.
Any of (first method) to (third method) may be used. As a method of adding and reacting the non-specific inhibitor, for example, first, a sample and a sample diluent containing the non-specific reaction inhibitor are mixed and kept for a certain period of time. Thereafter, the mixture is added to the well of the reaction plate on which the specific antibody or the specific antigen is immobilized, and the mixture is left for a certain period of time. Thereafter, the mixed solution is removed from the well, the inside of the well is washed, a specific antibody solution or a specific antigen solution is added to the well, and the well is kept for a certain period of time. Again, the specific antibody solution or the specific antigen solution is removed from the wells, the inside of the wells is washed, and then the measurement is performed by a generally used method.

【0069】上記測定方法としては、ウェルに、特異抗
体に修飾された酵素により反応が起こる基質を含む液を
加え、基質を反応させ、その結果生じる発色等を観察又
は測定する。上記EIA法の場合、非特異反応抑制剤で
ある不溶性担体は、球状又は片状の高分子であることが
好ましく、0.01〜10mmの大きさのいずれでも使
用可能である。
As the above-mentioned measurement method, a solution containing a substrate in which a reaction is caused by an enzyme modified with a specific antibody is added to a well, the substrate is allowed to react, and the resulting color development or the like is observed or measured. In the case of the EIA method, the insoluble carrier which is a non-specific reaction inhibitor is preferably a spherical or flaky polymer, and any size of 0.01 to 10 mm can be used.

【0070】[0070]

【発明の実施の形態】(実施例)以下に本発明の実施例
を掲げて更に詳しく説明するが、本発明はこれら実施例
のみに限定されるものではない。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS (Examples) The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to these examples.

【0071】実施例1 (1)非特異反応抑制剤用抗体の調製 正常家兎血清10mLを25℃で攪拌しながら硫酸ナト
リウム1.8gを加えた。30分放置した後、25℃、
7000Gで10分間遠心した。沈殿を採取し、これを
0.03Mリン酸緩衝液(0.1M−NaClを含む、
pH6.5、以下「PBS」という)10mLに溶解さ
せた。その後、PBSに対し24時間透析した後、10
00Gで10分間遠心した。上清をPBSで平衡化した
陽イオン交換樹脂であるDEAE−セルロースカラムに
通し、IgG画分液を採取した。得られたIgG画分液
を濃縮した。
Example 1 (1) Preparation of Antibody for Non-Specific Reaction Inhibitor 1.8 g of sodium sulfate was added to 10 mL of normal rabbit serum while stirring at 25 ° C. After leaving for 30 minutes, 25 ° C,
Centrifuged at 7000G for 10 minutes. The precipitate was collected and combined with a 0.03 M phosphate buffer (containing 0.1 M NaCl,
(pH 6.5, hereinafter referred to as “PBS”). Then, after dialysis against PBS for 24 hours, 10
Centrifuged at 00G for 10 minutes. The supernatant was passed through a DEAE-cellulose column, which is a cation exchange resin equilibrated with PBS, to collect an IgG fraction. The obtained IgG fraction was concentrated.

【0072】(2)特異抗体の調製 HBs抗原として、サブタイプAd、タンパク質濃度1
mg/mL、純度95%以上(ADVANCED BI
OTECHNOLOGIES INC.社製)のもの
を、兎1匹に対して8mg免疫し、免疫注射より3か月
後に採血した。HBs抗原を免疫感作した家兎抗血清1
0mLを25℃で攪拌しながら硫酸ナトリウム1.8g
を加えた。30分放置した後、25℃、7000Gで1
0分間遠心した。沈殿を採取し、これをPBS10mL
に溶解させた。PBSに対し24時間透析した後、10
00Gで10分間遠心した。上清をPBSで平衡化した
DEAE−セルロースカラムに通し、IgG画分液を採
取した。その後、得られたIgG画分液を、HBs抗原
を固定化したアガロースゲルを充填したカラムに通しア
フィニティー精製を行い、HBs抗原に特異性を持つI
gG成分のみを含む特異抗体液を得た。その後、得られ
た特異抗体液を濃縮した。
(2) Preparation of Specific Antibody Subtype Ad, protein concentration 1 as HBs antigen
mg / mL, purity 95% or more (ADVANCED BI
OTECHNOLOGIES INC. 8 mg was immunized to one rabbit, and blood was collected three months after the immunization injection. Rabbit antiserum 1 immunized with HBs antigen
While stirring 0 mL at 25 ° C., 1.8 g of sodium sulfate
Was added. After leaving it for 30 minutes,
Centrifuged for 0 minutes. Collect the precipitate and add 10 mL of PBS.
Was dissolved. After dialysis against PBS for 24 hours, 10
Centrifuged at 00G for 10 minutes. The supernatant was passed through a DEAE-cellulose column equilibrated with PBS to collect an IgG fraction. Thereafter, the obtained IgG fraction was passed through a column packed with agarose gel on which HBs antigen was immobilized, and affinity purification was performed to obtain an IB having specificity for HBs antigen.
A specific antibody solution containing only the gG component was obtained. Thereafter, the obtained specific antibody solution was concentrated.

【0073】(3)非特異反応抑制剤の懸濁液の作成 非特異反応抑制剤用抗体を1.0mg/mLの濃度でP
BSに溶解した液3.75mLに、平均粒径が0.1μ
mのポリスチレンラテックス(固形分10重量%、積水
化学社製)1.0mLとPBSを1.25mL添加し、
25℃にて60分間攪拌した。次いで、この液にBSA
を2.0重量%含有したPBSを6mL添加し、25℃
にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心分
離することにより洗浄した。洗浄操作は3回行った。得
られた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するPBSを
10mL添加し、ラテックスを懸濁させ、非特異反応抑
制剤の懸濁液を調製した。
(3) Preparation of non-specific reaction inhibitor suspension Antibody for non-specific reaction inhibitor was added at a concentration of 1.0 mg / mL to P
In 3.75 mL of a solution dissolved in BS, the average particle size is 0.1 μm.
m of polystyrene latex (solid content 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) 1.0 mL and PBS 1.25 mL were added,
Stirred at 25 ° C. for 60 minutes. Then add BSA to this solution
6 mL of PBS containing 2.0% by weight of
, And then washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. 10 mL of PBS containing 0.5% by weight of BSA was added to the obtained precipitate, and the latex was suspended to prepare a suspension of a nonspecific reaction inhibitor.

【0074】実施例2 (1)HBS抗体感作ラテックス液の調製 実施例1(2)の特異抗体を1.0mg/mLの濃度で
PBSに溶解した液1.25mLに、平均粒径が0.3
μmのポリスチレンラテックス(固形分10重量%、積
水化学社製)1.0mLとPBS3.75mL添加し、
25℃にて60分間攪拌した。次いで、この液にBSA
を2.0重量%含有するPBSを6mL添加し、25℃
にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心分
離することにより洗浄した。洗浄操作は3回行った。え
られた沈殿物に実施例1(3)の非特異反応抑制剤の懸
濁液を1mL、BSAを0.5重量%含有するPBSを
99mL添加し、ラテックスを懸濁させ.HBs抗体感
作ラテックス液を調製した。
Example 2 (1) Preparation of HBS antibody-sensitized latex solution The specific antibody of Example 1 (2) was dissolved in PBS at a concentration of 1.0 mg / mL in 1.25 mL of a solution, and the average particle size was 0%. .3
1.0 mL of μm polystyrene latex (solid content 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) and 3.75 mL of PBS were added,
Stirred at 25 ° C. for 60 minutes. Then add BSA to this solution
6 mL of PBS containing 2.0% by weight of
, And then washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. To the obtained precipitate, 1 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1 (3) and 99 mL of PBS containing 0.5% by weight of BSA were added to suspend the latex. An HBs antibody-sensitized latex solution was prepared.

【0075】(2)検体希釈液の調製 PBSにポリエチレングリコール(和光純薬製、平均分
子量;50万)を0.3重量%、及びBSAを0.5重
量%の濃度になるように溶解した。
(2) Preparation of Sample Diluent Polyethylene glycol (Wako Pure Chemical Industries, average molecular weight; 500,000) was dissolved in PBS at a concentration of 0.3% by weight and BSA at a concentration of 0.5% by weight. .

【0076】(3)HBs抗原測定用試薬 本実施例のHBs抗原測定用試薬は、上記(1)項のH
Bs抗体感作ラテックス液からなる第1試薬と、上記
(2)項の検体希釈液からなる第2試薬とから構成され
る2試薬系の試薬である。
(3) Reagent for measuring HBs antigen The reagent for measuring HBs antigen of this example is the same as the reagent for HBs described in the above (1).
This is a two-reagent system reagent composed of a first reagent composed of a Bs antibody-sensitized latex solution and a second reagent composed of the sample diluent of the above item (2).

【0077】(4)標準HBs抗原液 HBs抗原を0、50、100、300、500IU/
mL濃度で含むヒト血清を使用した。
(4) Standard HBs antigen solution The HBs antigen was added at 0, 50, 100, 300, 500 IU /
Human serum was used at a concentration of mL.

【0078】(5)HBs抗原陰性検体及びHBs抗原
陽性検体 HBS抗原陰性検体(健常人血清)10検体と、HBS
抗原陽性検体(B型肝炎感染者血清)5検体を使用し
た。
(5) HBs antigen-negative sample and HBs antigen-positive sample 10 samples of HBS antigen-negative sample (normal serum of a healthy person) and HBS
Five antigen-positive samples (serum of hepatitis B infected person) were used.

【0079】(6)測定方法 上記(4)の標準HBs抗原液20μLに、上記(2)
項の検体希釈液150μLを混合し、37℃で適時保持
した後、上記(1)のHBs抗体感作ラテックス液15
0μLを添加攪拌した。この後、1分後及び5分後の波
長750mnでの吸光度を測定し、この間の吸光度の変
化量を吸光度変化量(ΔO.D.)とした。測定は日立
自動分析装置7150形を使用した.標準HBS抗原液
を測定して、予め検量線を作成しておき.検体の吸光度
変化量と上記検量線から検体中のHBs抗原濃度を算出
した。
(6) Measuring method The above (2) was added to 20 μL of the standard HBs antigen solution of (4).
After mixing 150 μL of the sample diluent described in the above section and maintaining the mixture at 37 ° C. as appropriate, the HBs antibody-sensitized latex solution 15
0 μL was added and stirred. Thereafter, the absorbance at a wavelength of 750 mn after 1 minute and 5 minutes was measured, and the change in the absorbance during this time was taken as the change in absorbance (ΔOD). The measurement was performed using Hitachi automatic analyzer 7150 type. Measure a standard HBS antigen solution and prepare a calibration curve in advance. The HBs antigen concentration in the sample was calculated from the change in absorbance of the sample and the above calibration curve.

【0080】実施例3 ラテックス凝集法によるHBs
抗原の測定 実施例2における(1)HBS抗体感作ラテックス液の
調製及び(2)検体希釈液の調製の項を、次のようにし
て行ったことを除いては.実施例2と同様にしてHBs
抗原測定用試薬を作成した。 (1)HBs抗体感作ラテックス液の調製 実施例1(2)の特異抗体を1.0mg/mLの濃度で
PBSに溶解した液1.25mLに、平均粒径が0.3
μmのポリスチレンラテックス(固形分10重量%、積
水化学社製)1.0mLとPBSを3.75mL添加
し、25℃にて60分間攪拌した。次いで、この液にB
SAを2.0重量%含有するPBSを6mL添加し、2
5℃にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠
心分離することにより洗浄した。洗浄操作は3回行っ
た。えられた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するP
BSを100mL添加し、ラテックスを懸濁させ、HB
s抗体感作ラテックス液を調製した。
Example 3 HBs by Latex Coagulation Method
Measurement of Antigen Except that the procedures of (1) preparation of HBS antibody-sensitized latex solution and (2) preparation of sample diluent in Example 2 were performed as follows. HBs in the same manner as in Example 2.
An antigen measurement reagent was prepared. (1) Preparation of HBs antibody-sensitized latex solution The specific antibody of Example 1 (2) was dissolved in PBS at a concentration of 1.0 mg / mL in 1.25 mL, and the average particle size was 0.3.
1.0 mL of a μm polystyrene latex (solid content: 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) and 3.75 mL of PBS were added, and the mixture was stirred at 25 ° C. for 60 minutes. Next, B
6 mL of PBS containing 2.0% by weight of SA was added, and 2
After stirring at 5 ° C. for 60 minutes, the plate was washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. P containing 0.5% by weight of BSA in the obtained precipitate
100 mL of BS was added to suspend the latex, and HB was added.
An s antibody-sensitized latex solution was prepared.

【0081】(2)検体希釈液の調製 PBSに実施例1の非特異反応抑制剤の懸濁液を1体積
%、ポリエチレングリコール(和光純薬製、平均分子
量;50万)を0.3重量%、及びBSAを0.5重量
%の濃度になるように溶解した。
(2) Preparation of Sample Diluent 1% by volume of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1 in PBS and 0.3% by weight of polyethylene glycol (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, average molecular weight: 500,000) % And BSA were dissolved to a concentration of 0.5% by weight.

【0082】実施例4 ラテックス凝集法によるHBs
抗原の測定 実施例2における(1)HBs抗体感作ラテックス液の
調製、(4)標準HBs抗原液、及び、(5)検体の項
を、次のようにして行ったことを除いては、実施例2と
同様にしてHBs抗原測定用試薬を作成した。 (1)HBs抗体感作ラテックス液の調製 実施例1(2)の特異抗体を1.0mg/mLの濃度で
PBSに溶解した液1.25mLに、平均粒径が0.3
μmのポリスチレンラテックス(固形分10重量%、積
水化学杜製)1.0mLとPBS3.75mL添加し、
25℃にて60分間攪拌した。次いで、この液にBSA
を2.0重量%含有するPBSを6mL添加し、25℃
にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心分
離することにより洗浄した。洗浄操作は3回行った。え
られた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するPBSを
100mL添加し、ラテックスを懸濁させ、HBs抗体
感作ラテックス液を調製した。
Example 4 HBs by Latex Coagulation Method
Measurement of Antigen Except that (1) preparation of HBs antibody-sensitized latex solution, (4) standard HBs antigen solution, and (5) sample in Example 2 were performed as follows, A reagent for measuring HBs antigen was prepared in the same manner as in Example 2. (1) Preparation of HBs antibody-sensitized latex solution The specific antibody of Example 1 (2) was dissolved in PBS at a concentration of 1.0 mg / mL in 1.25 mL, and the average particle size was 0.3.
1.0 mL of polystyrene latex (solid content 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) and 3.75 mL of PBS were added,
Stirred at 25 ° C. for 60 minutes. Then add BSA to this solution
6 mL of PBS containing 2.0% by weight of
, And then washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. 100 mL of PBS containing 0.5% by weight of BSA was added to the obtained precipitate, and the latex was suspended to prepare an HBs antibody-sensitized latex solution.

【0083】(4)標準HBs抗原液 HBs抗原を0、50、100、300、500IU/
mL濃度で含むヒト血清1. 6mLに実施例1の非特異
反応抑制剤の懸濁液0. 12mLを添加混合して使用し
た。
(4) Standard HBs antigen solution The HBs antigen was added at 0, 50, 100, 300, 500 IU /
0.12 mL of the suspension of the non-specific reaction inhibitor of Example 1 was added to 1.6 mL of human serum containing a concentration of mL, and the mixture was used.

【0084】(5)HBS抗原陰性検体及びHBS抗原
陽性検体 HBs抗原陰性検体(健常人血清)10検体と、HBs
抗原陽性検体(B型肝炎感染者血清)5検体を1. 6m
Lに実施例1の非特異反応抑制剤の懸濁液0.12mL
を添加混合して使用した。
(5) HBS antigen-negative sample and HBS antigen-positive sample 10 samples of HBs antigen-negative sample (normal serum of a healthy person) and HBs
1.6 m of 5 antigen-positive samples (serum of hepatitis B infected person)
In L, 0.12 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1
Was added and used.

【0085】比較例1 ラテックス凝集法によるHBs
抗原の測定 実施例2における(1)HBs抗体感作ラテックス液の
調製の項を、次のようにして行ったことを除いては、実
施例2と同様にしてHBs抗原測定用試薬を作成した。
Comparative Example 1 HBs by Latex Coagulation Method
Measurement of Antigen A reagent for measuring HBs antigen was prepared in the same manner as in Example 2 except that (1) Preparation of HBs antibody-sensitized latex solution in Example 2 was performed as follows. .

【0086】(1)HBS抗体感作ラテックス液の調製 実施例1(2)の特異抗体を1. 0mg/mLの濃度で
PBSに溶解した液1. 25mLに、平均粒径が0. 3
μmのポリスチレンラテックス(固形分10重量%、積
水化学社製)1. 0mLとPBS3. 75mL添加し、
25℃にて60分間攪拌した。次いで、この液にBSA
を2. 0重量%含有するPBSを6mL添加し、25℃
にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心分
離することにより洗浄した。洗浄操作は3回行った。え
られた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するPBSを
100mL添加し、ラテックスを懸濁させ、HBs抗体
感作ラテックス液を調製した。
(1) Preparation of HBS antibody-sensitized latex solution The specific antibody of Example 1 (2) was dissolved in PBS at a concentration of 1.0 mg / mL in PBS (1.25 mL), and the average particle size was 0.3.
Add 1.0 mL of μm polystyrene latex (solid content 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) and 3.75 mL of PBS,
Stirred at 25 ° C. for 60 minutes. Then add BSA to this solution
6 mL of PBS containing 2.0% by weight of
, And then washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. 100 mL of PBS containing 0.5% by weight of BSA was added to the obtained precipitate, and the latex was suspended to prepare an HBs antibody-sensitized latex solution.

【0087】実施例2〜4及び比較例1の結果を表1に
示した。表1は、実施例2〜4及び比較例1の試薬によ
り、HBs抗原陽性検体及びHBs抗原陰性検体を測定
したときの測定値(IU/mL)を示したものである。
なお、実施例2〜4及び比較例1におけるカットオフポ
イントを8IU/mLに設定し、8IU/mL未満の検
体を陰性、8IU/mL以上の検体を陽性と判定した。
The results of Examples 2 to 4 and Comparative Example 1 are shown in Table 1. Table 1 shows measurement values (IU / mL) when HBs antigen-positive samples and HBs antigen-negative samples were measured using the reagents of Examples 2 to 4 and Comparative Example 1.
In addition, the cut-off point in Examples 2-4 and Comparative Example 1 was set to 8 IU / mL, and a sample of less than 8 IU / mL was determined as negative, and a sample of 8 IU / mL or more was determined as positive.

【0088】[0088]

【表1】 [Table 1]

【0089】表1から明らかなように、HBs抗原陰性
検体中の数例で実施例2〜4では陰性判定されているに
もかかわらず、比較例1では陽性と判定され、非特異凝
集反応が起こっていることが示唆される。
As is clear from Table 1, in some of the HBs antigen-negative specimens, in Examples 2 to 4, negative was determined, but in Comparative Example 1, it was determined to be positive. Suggests what is happening.

【0090】実施例5 ELISA法によるHBs抗原
の測定 (1)HBs抗体固定化プレートの作成 96穴マイクロタイタープレート(コーニング社製)の
各ウェルに、実施例1(2)の特異抗体を0. 1mg/
mLの濃度でPBSに溶解した液を100μLずつ分注
し、室温で2時間静置した。各ウェルのHBs抗体液を
吸引し、PBS300μLを各ウェルに入れ吸引した。
この洗浄操作を7回行った。次いで、BSAを1%含有
するPBSを各ウェル200μLずつ分注した。室温で
2時間静置した後、上記の洗浄操作を7回行い、HBs
抗体固定化プレートを作成した。
Example 5 Measurement of HBs Antigen by ELISA (1) Preparation of HBs Antibody-Immobilized Plate A specific antibody of Example 1 (2) was added to each well of a 96-well microtiter plate (manufactured by Corning). 1mg /
A solution dissolved in PBS at a concentration of mL was dispensed in 100 μL portions, and allowed to stand at room temperature for 2 hours. The HBs antibody solution in each well was aspirated, and 300 μL of PBS was placed in each well and aspirated.
This washing operation was performed seven times. Next, 200 μL of PBS containing 1% of BSA was dispensed to each well. After allowing to stand at room temperature for 2 hours, the above washing operation was performed seven times, and HBs
An antibody-immobilized plate was prepared.

【0091】(2)標準HBs抗原液 HBs抗原陰性コントロール血清及びHBs抗原陽性コ
ントロール血清のそれぞれ0. 8mLに実施例1の非特
異反応抑制剤の懸濁液0. 2mLを添加混合して使用し
た。
(2) Standard HBs antigen solution To 0.8 mL of each of the HBs antigen negative control serum and the HBs antigen positive control serum, 0.2 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1 was added and used. .

【0092】(3)HBs抗原陰性検体及びHBs抗原
陽性検体 HBs抗原陰性検体(健常人血清)10検体と、HBs
抗原陽性検体(B型肝炎感染者血清)5検体を0. 8m
Lに実施例1の非特異反応抑制剤の懸濁液0.2mLを
添加混合して使用した。
(3) HBs antigen-negative sample and HBs antigen-positive sample 10 samples of HBs antigen-negative sample (serum of a healthy person) and HBs antigen
0.8m of 5 antigen-positive samples (serum of hepatitis B infected person)
To L, 0.2 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1 was added and used.

【0093】(4)測定方法 マイクロタイタープレートの各ウェルに標準HBs抗原
液及び検体を100μLずつ分注し、室温で2時間静置
した。各ウェルの反応液を吸引した後、PBS300μ
Lを各ウェルに入れ吸引した。この洗浄操作を7回行っ
た。次いで、特異抗体を0. 1mg/mLの濃度でPB
Sに溶解した液を100μLずつ分注し、室温で2時間
静置した後、洗浄操作を7回行った。5μg/mLペル
オキシダーゼ標識抗ウサギIgG抗体を各ウェルに50
μLずつ分注し、室温で2時間静置した後、10mM
o−フェニレンジアミン50μL及び30%過酸化水素
水25μLを添加した。室温で2時間静置した後、1N
硫酸を100μLずつ添加し、測定波長492nmでの
吸光度を測定した。標準HBs抗原液の吸光度で検量線
を作成しておき、検体の吸光度と上記検量線から検体中
のHBs抗原濃度を算出した。
(4) Measurement Method 100 μL of the standard HBs antigen solution and the sample were dispensed into each well of the microtiter plate, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 2 hours. After aspirating the reaction solution in each well, PBS 300μ
L was placed in each well and aspirated. This washing operation was performed seven times. Then, specific antibody was added to PB at a concentration of 0.1 mg / mL.
100 μL of the solution dissolved in S was dispensed, and allowed to stand at room temperature for 2 hours, and then the washing operation was performed seven times. 5 μg / mL peroxidase-labeled anti-rabbit IgG antibody was added to each well at 50 μg / mL.
After dispensing each μL and leaving at room temperature for 2 hours, 10 mM
50 μL of o-phenylenediamine and 25 μL of 30% aqueous hydrogen peroxide were added. After standing at room temperature for 2 hours, 1N
Sulfuric acid was added in an amount of 100 μL each, and the absorbance at a measurement wavelength of 492 nm was measured. A calibration curve was prepared based on the absorbance of the standard HBs antigen solution, and the HBs antigen concentration in the sample was calculated from the absorbance of the sample and the above calibration curve.

【0094】比較例2 ELISA法によるHBs抗原
の測定 実施例5における(2)標準HBs抗原液及び(3)検
体の項を、次のようにして行ったことを除いては、実施
例5と同様にしてHBs抗原測定用試薬を作成した。
Comparative Example 2 Measurement of HBs Antigen by ELISA Method Example 5 was the same as Example 5 except that the sections of (2) standard HBs antigen solution and (3) specimen in Example 5 were performed as follows. Similarly, a reagent for measuring HBs antigen was prepared.

【0095】(2)標準HBS抗原液 HBs抗原陰性コントロール血清及びHBS抗原陽性コ
ントロール血清を使用した。
(2) Standard HBS antigen solution HBs antigen negative control serum and HBS antigen positive control serum were used.

【0096】(3)HBs抗原陰性検体及びHBs抗原
陽性検体 HBs抗原陰性検体(健常人血清)10検体と、HBs
抗原陽性検体(B型肝炎感染者血清)5検体を使用し
た。
(3) HBs antigen-negative sample and HBs antigen-positive sample 10 samples of HBs antigen-negative sample (serum of a healthy person) and HBs antigen
Five antigen-positive samples (serum of hepatitis B infected person) were used.

【0097】実施例5及び比較例2の結果を表2に示し
た。表2は、実施例5及び比較例2の試薬により、HB
s抗原陽性検体及びHBs抗原陰性検体を検出したとき
の判定結果を示す。なお、陰性コントロール血清の吸光
度に0. 07を加えた値をカットオフポイントとした。
Table 2 shows the results of Example 5 and Comparative Example 2. Table 2 shows that the reagents of Example 5 and Comparative Example 2
The determination result when the s antigen positive sample and the HBs antigen negative sample are detected is shown. The value obtained by adding 0.07 to the absorbance of the negative control serum was defined as the cutoff point.

【0098】[0098]

【表2】 [Table 2]

【0099】表2から明らかなように、HBs抗原陰性
検体中の数例で実施例5では陰性判定されているにもか
かわらず、比較例2では陽性と判定され、非特異凝集反
応が起こっていることが示唆される。
As is evident from Table 2, although several cases in the HBs antigen-negative samples were judged to be negative in Example 5, they were judged to be positive in Comparative Example 2 and a non-specific agglutination reaction occurred. It is suggested that

【0100】実施例6 非特異反応抑制剤の懸濁液の作
成 BSAを2重量%の濃度でPBSに溶解した液18mL
に、平均粒径が0.1μmのポリスチレンラテックス
(固形分10重量%、積水化学杜製)1mLを添加し、
25℃にて60分間攪拌した後、18,000rpmで
遠心分離した。洗浄操作は3回行った。得られた沈殿物
にBSAを0.5重量%含有するPBS10mLを添加
し、ラテックスを懸濁させ、非特異反応抑制剤の懸濁液
を作成した。
Example 6 Preparation of Non-Specific Reaction Inhibitor Suspension 18 mL of a solution containing 2% by weight of BSA dissolved in PBS
Was added with 1 mL of polystyrene latex having an average particle size of 0.1 μm (solid content: 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.),
After stirring at 25 ° C. for 60 minutes, the mixture was centrifuged at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. To the obtained precipitate, 10 mL of PBS containing 0.5% by weight of BSA was added, and the latex was suspended to prepare a suspension of a nonspecific reaction inhibitor.

【0101】実施例7 ラテックス凝集法によるHBS
抗体の測定 (1)HBs抗原感作ラテックス液の調製 HBs抗原を2.0mg/mLの濃度でPBSに溶解し
た液1.5mLに、平均粒径が0.3μmのポリスチレ
ンラテックス(固形分10重量%、積水化学社製)1.
0mLとPBS3.5mLを添加し、25℃にて60分
間攪拌した(この操作を感作と呼ぶ)。次いで、この液
にBSA2重量%含有するPBS6mLを添加し、25
℃にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心
分離することにより、洗浄した。洗浄操作は3回行っ
た。えられた沈殿物に実施例6の非特異反応抑制剤の懸
濁液を1mL、BSAを0.5重量%含有するPBSを
99mL添加し、ラテックスを懸濁させ、HBs抗原感
作ラテックス液を調製した。
Example 7 HBS by Latex Coagulation Method
Measurement of Antibody (1) Preparation of HBs Antigen-Sensitized Latex Solution To 1.5 mL of a solution of HBs antigen in PBS at a concentration of 2.0 mg / mL was added a polystyrene latex having an average particle size of 0.3 μm (solid content: 10 wt. %, Manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.)
0 mL and 3.5 mL of PBS were added, and the mixture was stirred at 25 ° C. for 60 minutes (this operation is called sensitization). Next, 6 mL of PBS containing 2% by weight of BSA was added to this solution,
After stirring at 60 ° C. for 60 minutes, the plate was washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. To the obtained precipitate, 1 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 6 and 99 mL of PBS containing 0.5% by weight of BSA were added to suspend the latex, and the HBs antigen-sensitized latex solution was added. Prepared.

【0102】(2)検体希釈液の調製 PBSにポリエチレングリコール(和光純薬製、平均分
子量;50万)を0.4重量%、及びBSAを1.0重
量%の濃度になるように溶解した。
(2) Preparation of Sample Diluent Polyethylene glycol (Wako Pure Chemical Industries, average molecular weight: 500,000) was dissolved in PBS at a concentration of 0.4% by weight and BSA at a concentration of 1.0% by weight. .

【0103】(3)HBs抗体測定用試薬 本実施例のHBs抗体測定用試薬は、上記(1)項のH
Bs抗原感作ラテックス液からなる第1試薬と、上記
(2)項の検体希釈液からなる第2試薬とから構成され
る2試薬系の試薬である。
(3) HBs Antibody Measurement Reagent The HBs antibody measurement reagent of the present example is the HBs antibody measurement reagent of the above item (1).
This is a two-reagent system reagent comprising a first reagent comprising a Bs antigen-sensitized latex solution and a second reagent comprising the sample diluent described in the above item (2).

【0104】(4)標準HBs抗体液 HBs抗体を0、150、300、600、1200m
IU/mL濃度で含むヒト血清を使用した。
(4) Standard HBs antibody solution The HBs antibody was added at 0, 150, 300, 600, 1200 m
Human serum containing IU / mL concentration was used.

【0105】(5)HBs抗体陰性検体及びHBS抗原
陽性検体 HBs抗体陰性検体(健常人血清)10検体と、HBS
抗体陽性検体(B型肝炎既往歴がある血清)5検体を使
用した。
(5) HBs antibody-negative sample and HBS antigen-positive sample 10 samples of HBs antibody-negative sample (serum of a healthy person) and HBS
Five antibody positive samples (serum with a history of hepatitis B) were used.

【0106】(6)測定方法 上記(4)の標準HBs抗体液20μLに、上記(2)
項の検体希釈液120μLを混合し、37℃で適時保持
した後、上記(1)のHBs抗原感作ラテックス液12
0μLを添加攪拌した。この後、1分後及び5分後の波
長750nmでの吸光度を測定し、この間の吸光度の変
化量を吸光度変化量(△O.D.)とする。測定は日立
自動分析装置7150形を使用した。標準HBs抗体液
を測定して、予め検量線を作成しておき、検体の吸光度
変化量と上記検量線から検体中のHBs抗体濃度を算出
した。
(6) Measurement method The above (2) was added to 20 μL of the standard HBs antibody solution of (4).
After mixing 120 μL of the sample diluent described in the above section and maintaining the mixture at 37 ° C. as appropriate, the HBs antigen-sensitized latex solution 12
0 μL was added and stirred. Thereafter, the absorbance at a wavelength of 750 nm after 1 minute and 5 minutes is measured, and the change in the absorbance during this time is defined as the change in absorbance (吸 光 OD). The measurement was performed using a Hitachi automatic analyzer 7150. A standard HBs antibody solution was measured and a calibration curve was prepared in advance, and the HBs antibody concentration in the sample was calculated from the change in absorbance of the sample and the above calibration curve.

【0107】実施例8 ラテックス凝集法によるHBS
抗体の測定 実施例6における(1)HBs抗原感作ラテックス液の
調製及び(2)検体希釈液の調製の項を、次のようにし
て行ったことを除いては、実施例6と同様にしてHBs
抗体測定用試薬を作成した。
Example 8 HBS by Latex Coagulation Method
Measurement of Antibodies The procedure of Example 6 was the same as Example 6, except that the steps of (1) preparation of HBs antigen-sensitized latex solution and (2) preparation of sample diluent were performed as follows. HBs
An antibody measurement reagent was prepared.

【0108】(1)HBs抗原感作ラテックス液の調製 HBs抗原を2.0mg/mLの濃度でPBSに溶解し
た液1.5mLに、平均粒径が0.3μmのポリスチレ
ンラテックス(固形分10重量%、積水化学社製)1.
0mLとPBS3.5mLを添加し、25℃にて60分
間攪拌した(この操作を感作と呼ぶ)。次いで、この液
にBSA2重量%含有するPBS6mLを添加し、25
℃にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心
分離することにより、洗浄した。洗浄操作は3回行っ
た。えられた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するP
BSを100mL添加し、ラテックスを懸濁させ.HB
s抗原感作ラテックス液を調製した。
(1) Preparation of HBs antigen-sensitized latex liquid A polystyrene latex having an average particle diameter of 0.3 μm (solid content: 10 wt. %, Manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.)
0 mL and 3.5 mL of PBS were added, and the mixture was stirred at 25 ° C. for 60 minutes (this operation is called sensitization). Next, 6 mL of PBS containing 2% by weight of BSA was added to this solution,
After stirring at 60 ° C. for 60 minutes, the plate was washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. P containing 0.5% by weight of BSA in the obtained precipitate
100 mL of BS was added to suspend the latex. HB
An s antigen-sensitized latex solution was prepared.

【0109】(2)検体希釈液の調製 PBSに実施例6の非特異反応抑制剤の懸濁液を1体積
%、ポリエチレングリコール(和光純薬製、平均分子
量;50万)を0.4重量%、及びBSAを1.0重量
%の濃度になるように溶解した。
(2) Preparation of Sample Diluent A 1% by volume suspension of the non-specific reaction inhibitor of Example 6 in PBS and 0.4% by weight of polyethylene glycol (manufactured by Wako Pure Chemical, average molecular weight: 500,000) % And BSA were dissolved to a concentration of 1.0% by weight.

【0110】実施例9 ラテックス凝集法によるHBs
抗体の測定 実施例7における(1)HBs抗原感作ラテックス液の
調製、(4)標準HBs抗体液及び(5)検体の項を、
次のようにして行ったことを除いては、実施例7と同様
にしてHBS抗体測定用試薬を作成した。
Example 9 HBs by latex coagulation method
Measurement of Antibodies In Example 7, (1) Preparation of HBs antigen-sensitized latex solution, (4) Standard HBs antibody solution and (5) Sample
A HBS antibody measurement reagent was prepared in the same manner as in Example 7, except that the following procedure was performed.

【0111】(1)HBs抗原感作ラテックス液の調製 HBs抗原を2.0mg/mLの濃度でPBSに溶解し
た液1.5mLに、平均粒径が0.3μmのポリスチレ
ンラテックス(固形分10重量%.積水化学杜製)1.
0mLとPBS3.5mLを添加し、25℃にて60分
間攪拌した(この操作を感作と呼ぶ)。次いで.この液
にBSA2重量%含有するPBS6mLを添加し、25
℃にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心
分離することにより、洗浄した。洗浄操作は3回行っ
た。えられた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するP
BSを100mL添加し、ラテックスを懸濁させ、HB
s抗原感作ラテックス液を調製した。
(1) Preparation of HBs antigen-sensitized latex solution In 1.5 mL of a solution of HBs antigen in PBS at a concentration of 2.0 mg / mL, a polystyrene latex having an average particle size of 0.3 μm (solid content: 10 wt. %. Sekisui Chemical Mori) 1.
0 mL and 3.5 mL of PBS were added, and the mixture was stirred at 25 ° C. for 60 minutes (this operation is called sensitization). Then. To this solution, 6 mL of PBS containing 2% by weight of BSA was added, and 25 mL of BSA was added.
After stirring at 60 ° C. for 60 minutes, the plate was washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. P containing 0.5% by weight of BSA in the obtained precipitate
100 mL of BS was added to suspend the latex, and HB was added.
An s antigen-sensitized latex solution was prepared.

【0112】(4)標準HBs抗体液 HBs抗体を0、150、300、600、1200m
IU/mL濃度で含むヒト血清1.6mLに実施例6の
非特異反応抑制剤の懸濁液0.12mLを添加混合して
使用した。
(4) Standard HBs antibody solution The HBs antibody was added at 0, 150, 300, 600, 1200 m
A suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 6 (0.12 mL) was added to 1.6 mL of human serum containing IU / mL concentration, and the mixture was used.

【0113】(5)HBs抗体陰性検体、およびHBs
抗体陽性検体 HBs抗体陰性検体(健常人血清)10
検体と、HBs抗体陽性検体(B型肝炎既往歴がある血
清)5検体1.6mLに実施例6の非特異反応抑制剤の
懸濁液0.12mLを添加混合して使用した。
(5) HBs antibody negative specimen and HBs
Antibody positive sample HBs antibody negative sample (Healthy human serum) 10
0.12 mL of the suspension of the non-specific reaction inhibitor of Example 6 was added to 1.6 mL of the sample and 5 samples of the HBs antibody-positive sample (serum with a history of hepatitis B), and the mixture was used.

【0114】比較例3 ラテックス凝集法によるHBs
抗体の測定 実施例7における(1)HBs抗原感作ラテックス液の
調製の項を、次のようにして行ったことを除いては、実
施例7と同様にしてHBs抗体測定用試薬を作成した。 (1)HBs抗原感作ラテックス液の調製 HBs抗原を2.0mg/mLの濃度でPBSに溶解し
た液1.5mLに、平均粒径が0.3μmのポリスチレ
ンラテックス(固形分10重量%、積水化学社製)1.
0mLとPBS3.5mLを添加し、25℃にて60分
間攪拌した(この操作を感作と呼ぶ)。次いで、この液
にBSA2重量%含有するPBS6mLを添加し、25
℃にて60分間攪拌した後、18,000rpmで遠心
分離することにより、洗浄した。洗浄操作は3回行っ
た。えられた沈殿物にBSAを0.5重量%含有するP
BSを100mL添加し、ラテックスを懸濁させ、HB
s抗原感作ラテックス液を調製した。
Comparative Example 3 HBs by Latex Coagulation Method
Measurement of Antibody A reagent for measuring HBs antibody was prepared in the same manner as in Example 7, except that the procedure of (1) Preparation of HBs antigen-sensitized latex solution in Example 7 was performed as follows. . (1) Preparation of HBs antigen-sensitized latex solution In 1.5 mL of a solution of HBs antigen dissolved in PBS at a concentration of 2.0 mg / mL, a polystyrene latex having an average particle size of 0.3 μm (solid content: 10% by weight, Chemical company) 1.
0 mL and 3.5 mL of PBS were added, and the mixture was stirred at 25 ° C. for 60 minutes (this operation is called sensitization). Next, 6 mL of PBS containing 2% by weight of BSA was added to this solution,
After stirring at 60 ° C. for 60 minutes, the plate was washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. P containing 0.5% by weight of BSA in the obtained precipitate
100 mL of BS was added to suspend the latex, and HB was added.
An s antigen-sensitized latex solution was prepared.

【0115】実施例7〜9及び比較例3の結果を表3に
示した。表3は、実施例7〜9及び比較例3の試薬によ
り、HBs抗体陰性検体及びHBs抗体陽性検体を測定
したときの測定値(mIU/mL)を示す。なお、実施
例7〜9及び比較例3におけるカットオフポイントを3
0mIU/mLに設定し、30mIU/mL未満を陰
性、30mIU/mL以上を陽性と判定した。
Table 3 shows the results of Examples 7 to 9 and Comparative Example 3. Table 3 shows measurement values (mIU / mL) when HBs antibody negative samples and HBs antibody positive samples were measured using the reagents of Examples 7 to 9 and Comparative Example 3. Note that the cut-off points in Examples 7 to 9 and Comparative Example 3 were 3
It was set to 0 mIU / mL, and less than 30 mIU / mL was judged as negative, and 30 mIU / mL or more was judged as positive.

【0116】[0116]

【表3】 [Table 3]

【0117】表3から明らかなように、HBs抗体陰性
検体中の数例で実施例7〜9では陰性判定されているに
もかかわらず、比較例1では陽性と判定され、非特異凝
集反応が起こっていることが示唆される。
As is evident from Table 3, several of the HBs antibody-negative specimens were judged to be positive in Comparative Example 1 in spite of negative judgments in Examples 7 to 9, and nonspecific agglutination was observed. Suggests what is happening.

【0118】実施例10 非特異反応抑制剤の懸濁液の
作成 BSAを2重量%の濃度でPBSに溶解した液10mL
に、平均粒径が0.1μmのポリスチレンラテックス
(固形分10重量%、積水化学社製)1.0mLとPB
S9mLを添加し、25℃にて60分間攪拌した。次い
で18,000rpmで遠心分離することにより洗浄し
た。洗浄操作は3回行った。得られた沈殿物にBSA
0.5重量%含有するPBSを10mL添加し、ラテッ
クスを懸濁させ、非特異反応抑制剤の懸濁液を作成し
た。
Example 10 Preparation of a suspension of a non-specific reaction inhibitor 10 mL of a solution prepared by dissolving BSA at a concentration of 2% by weight in PBS
1.0 mL of polystyrene latex having an average particle size of 0.1 μm (solid content: 10% by weight, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) and PB
S9mL was added and stirred at 25 ° C for 60 minutes. Then, it was washed by centrifugation at 18,000 rpm. The washing operation was performed three times. BSA is added to the resulting precipitate.
10 mL of PBS containing 0.5% by weight was added, and the latex was suspended to prepare a suspension of a nonspecific reaction inhibitor.

【0119】実施例11 ラテックス凝集法によるHB
s抗原の測定 実施例2(1)HBs抗体感作ラテックス液の調製にお
いて、実施例1(3)の非特異反応抑制剤の懸濁液の代
わりに、実施例10の非特異反応抑制剤の懸濁液を使用
し、実施例2(2)検体希釈液の調製において、BSA
の濃度を1.0重量%としたこと以外は、実施例2と同
様にして、HBs抗原の測定を行った。
Example 11 HB by Latex Coagulation Method
Measurement of s antigen Example 2 (1) In the preparation of the HBs antibody-sensitized latex solution, the suspension of the non-specific reaction inhibitor of Example 1 (3) was replaced with the non-specific reaction inhibitor of Example 10. The suspension was used to prepare BSA in Example 2 (2).
HBs antigen was measured in the same manner as in Example 2 except that the concentration of HBs antigen was changed to 1.0% by weight.

【0120】実施例12 ラテックス凝集法によるHB
s抗原の測定 実施例3(2)検体希釈液の調製において、実施例1の
非特異反応抑制剤の懸濁液の代わりに、実施例10の非
特異反応抑制剤の懸濁液を使用したこと以外は、実施例
3と同様にして、HBs抗原の測定を行った。
Example 12 HB by Latex Coagulation Method
Measurement of s Antigen Example 3 (2) In the preparation of the sample diluent, the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 10 was used instead of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1. Except for this, HBs antigen was measured in the same manner as in Example 3.

【0121】実施例13 ラテックス凝集法によるHB
s抗原の測定 実施例4(4)標準HBs抗原液の調製において、実施
例1の非特異反応抑制剤の懸濁液の代わりに、実施例1
0の非特異反応抑制剤の懸濁液を使用したこと以外は、
実施例4と同様にして、HBs抗原の測定を行った。
Example 13 HB by Latex Coagulation Method
Example 4 (4) In preparing a standard HBs antigen solution, Example 1 was replaced with the suspension of the non-specific reaction inhibitor of Example 1.
Except that a suspension of 0 non-specific reaction inhibitors was used.
HBs antigen was measured in the same manner as in Example 4.

【0122】比較例4 ラテックス凝集法によるHBs
抗原の測定 比較例1の検体希釈液の調製において、BSAの濃度を
1.0重量%としたこと以外は、比較例1と同様にし
て、HBs抗原の測定を行った。
Comparative Example 4 HBs by Latex Coagulation Method
Measurement of Antigen The HBs antigen was measured in the same manner as in Comparative Example 1 except that the concentration of BSA was changed to 1.0% by weight in preparing the sample diluent of Comparative Example 1.

【0123】実施例11〜13及び比較例4の結果を表
4に示した。表4は、実施例11〜13及び比較例4の
試薬により、HBs抗原陰性検体及びHBs抗原陽性検
体を測定したときの測定値(IU/mL)を示す。な
お、実施例11〜13及び比較例4におけるカットオフ
ポイントを8IU/mLに設定し、8IU/mL未満を
陰性、8IU/mL以上を陽性と判定した。
Table 4 shows the results of Examples 11 to 13 and Comparative Example 4. Table 4 shows measurement values (IU / mL) when HBs antigen-negative samples and HBs antigen-positive samples were measured using the reagents of Examples 11 to 13 and Comparative Example 4. The cut-off points in Examples 11 to 13 and Comparative Example 4 were set to 8 IU / mL, and it was determined that less than 8 IU / mL was negative and more than 8 IU / mL was positive.

【0124】[0124]

【表4】 [Table 4]

【0125】表4から明らかなように、HBs抗原陰性
検体中の数例で実施例11〜13では陰性判定されてい
るにもかかわらず、比較例4では陽性と判定され、非特
異凝集反応が起こっていることが示唆される。
As is evident from Table 4, several cases in the HBs antigen-negative samples were judged to be negative in Examples 11 to 13 but were judged to be positive in Comparative Example 4, and nonspecific agglutination was not observed. Suggests what is happening.

【0126】実施例14 ELISA法によるHBs抗
体の測定 (1)HBs抗原固定化プレートの作成 96穴マイクロタイタープレート(コーニング社製)の
各ウェルに、HBs抗原を0.2mg/mLの濃度で1
0mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)に溶解した液を
100μLずつ分注し、室温で2時間静置した。各ウェ
ルのHBs抗原液を吸引し、PBS300μLを各ウェ
ルに入れ吸引した。この洗浄操作を7回行った。次い
で、BSAを1%含有するPBSを各ウェル200μL
ずつ分注した。室温で2時間静置した後、上記の洗浄操
作を7回行い、HBs抗原固定化プレートを作成した。
Example 14 Measurement of HBs Antibody by ELISA (1) Preparation of HBs Antigen Immobilized Plate HBs antigen was added at a concentration of 0.2 mg / mL to each well of a 96-well microtiter plate (manufactured by Corning).
100 μL of a solution dissolved in 0 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) was dispensed and left at room temperature for 2 hours. The HBs antigen solution in each well was aspirated, and 300 μL of PBS was placed in each well and aspirated. This washing operation was performed seven times. Next, 200 μL of PBS containing 1% BSA was added to each well.
Was dispensed. After allowing to stand at room temperature for 2 hours, the above-mentioned washing operation was performed seven times to prepare an HBs antigen-immobilized plate.

【0127】(2)標準HBs抗体液 HBs抗体陰性コントロール血清及びHBs抗体陽性コ
ントロール血清のそれぞれ0.8mLに実施例6の非特
異反応抑制剤の懸濁液0.2mL添加混合して使用し
た。
(2) Standard HBs Antibody Solution 0.2 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 6 was added to 0.8 mL of each of the HBs antibody negative control serum and the HBs antibody positive control serum, and the mixture was used.

【0128】(3)HBs抗体陰性検体及びHBs抗体
陽性検体 HBs抗体陰性検体(健常人血清)10検体と、HBs
抗体陽性検体(B型肝炎既往歴がある血清)5検体0.
8mLに実施例6の非特異反応抑制剤の懸濁液0.2m
Lを添加混合して使用した。
(3) HBs Antibody Negative Sample and HBs Antibody Positive Sample HBs antibody negative sample (normal human serum)
5 antibody-positive samples (serum with a history of hepatitis B)
0.2 mL of the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 6 in 8 mL
L was added and used.

【0129】(4)測定方法 マイクロタイタープレートの各ウェルに標準HBs抗体
液及び検体を100μLずつ分注し、室温で2時間静置
した。各ウェルの反応液を吸引した後、PBS300μ
1を各ウェルに入れ吸引した。この洗浄操作を7回行っ
た。次いで、5μg/mLペルオキシダーゼ標識抗ヒト
IgG抗体を各ウェルに50μLずつ分注し、室温で2
時間静置した後、10mMo−フェニレンジアミン50
μL及び30%過酸化水素水25μLを添加した。室温
で2時間静置した後、1N硫酸を100μLずつ添加
し、測定波長492mnでの吸光度を測定した。
(4) Measurement method 100 μL of a standard HBs antibody solution and a sample were dispensed into each well of a microtiter plate and allowed to stand at room temperature for 2 hours. After aspirating the reaction solution in each well, PBS 300μ
1 was placed in each well and aspirated. This washing operation was performed seven times. Next, 50 μL of 5 μg / mL peroxidase-labeled anti-human IgG antibody was dispensed to each well, and 2 μl at room temperature.
After standing for 10 hours, 10 mMo-phenylenediamine 50
μL and 25 μL of 30% hydrogen peroxide solution were added. After allowing to stand at room temperature for 2 hours, 1N sulfuric acid was added in an amount of 100 μL each, and the absorbance at a measurement wavelength of 492 mn was measured.

【0130】比較例5 ELISA法によるHBs抗体
の測定 実施例14における(2)標準HBs抗体液及び(3)
検体の項を、次のようにして行ったことを除いては.実
施例14と同様にしてHBs抗体測定用試薬を作成し
た。
Comparative Example 5 Measurement of HBs Antibody by ELISA Method (2) Standard HBs antibody solution and (3) in Example 14
Except that the sample section was performed as follows. A reagent for measuring HBs antibody was prepared in the same manner as in Example 14.

【0131】(2)標準HBs抗体液 HBs抗体陰性コントロール血清及びHBs抗体陽性コ
ントロール血清を使用した。 (3)HBs抗体陰性検体及びHBs抗体陽性検体 HBs抗体陰性検体(健常人血清)10検体と、HBs
抗体陽性検体(B型肝炎既往歴がある血清)5検体を使
用した。
(2) Standard HBs antibody solution An HBs antibody negative control serum and an HBs antibody positive control serum were used. (3) HBs antibody-negative sample and HBs antibody-positive sample 10 samples of HBs antibody-negative sample (healthy human serum) and HBs
Five antibody positive samples (serum with a history of hepatitis B) were used.

【0132】実施例14及び比較例5の結果を表5に示
した。表5は、実施例14及び比較例5の試薬により、
HBs抗体陰性検体及びHBS抗体陽性検体を検出した
ときの判定結果を示す。なお、陰性コントロール血清の
吸光度に0.07を加えた値をカットオフポイントとし
た。
Table 5 shows the results of Example 14 and Comparative Example 5. Table 5 shows that the reagents of Example 14 and Comparative Example 5
4 shows the results of determination when a HBs antibody negative sample and an HBS antibody positive sample were detected. The value obtained by adding 0.07 to the absorbance of the negative control serum was defined as the cutoff point.

【0133】[0133]

【表5】 [Table 5]

【0134】表5から明らかなように、HBs抗体陰性
検体中の数例で実施例14では陰性判定されているにも
かかわらず、比較例5では陽性と判定され、非特異凝集
反応が起こっていることが示唆される。
As is evident from Table 5, several cases in the HBs antibody-negative samples were determined to be negative in Comparative Example 5 in spite of the negative determination in Example 14, and a non-specific agglutination reaction occurred. It is suggested that

【0135】実施例15 ELISA法によるHBs抗
原の測定 実施例5(2)標準HBs抗原液及び(3)HBs抗原
陰性検体及びHBs抗原陽性検体において、実施例1の
非特異反応抑制剤の懸濁液の代わりに、実施例10の非
特異反応抑制剤の懸濁液を使用したこと以外は、実施例
5と同様にして、HBs抗原の測定を行った。
Example 15 Measurement of HBs antigen by ELISA Example 5 Suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 1 in (2) standard HBs antigen solution and (3) HBs antigen negative sample and HBs antigen positive sample The measurement of HBs antigen was carried out in the same manner as in Example 5, except that the suspension of the nonspecific reaction inhibitor of Example 10 was used instead of the liquid.

【0136】実施例15、及び、比較のために比較例2
の結果を表6に示した。表6は、実施例15及び比較例
2の試薬により、HBs抗原陰性検体及びHBs抗原陽
性検体を検出したときの判定結果を示す。なお、陰性コ
ントロール血清の吸光度に0.07を加えた値をカット
オフポイントとした。
Example 15 and Comparative Example 2 for comparison
Table 6 shows the results. Table 6 shows the determination results when HBs antigen-negative samples and HBs antigen-positive samples were detected by the reagents of Example 15 and Comparative Example 2. The value obtained by adding 0.07 to the absorbance of the negative control serum was defined as the cutoff point.

【0137】[0137]

【表6】 [Table 6]

【0138】表6から明らかなように、HBs抗原陰性
検体中の数例で実施例15では陰性判定されているにも
かかわらず、比較例2では陽性と判定され、非特異凝集
反応が起こっていることが示唆される。
As is evident from Table 6, several cases in the HBs antigen-negative samples were judged to be negative in Comparative Example 2 in spite of the negative judgment in Example 15, and the non-specific agglutination reaction occurred. It is suggested that

【0139】実施例16 本実施例で使用した試薬及び材料は以下の通りである。 抗ヒトCEAモノクローナル抗体:2種類の抗ヒトCE
Aモノクローナル抗体(Clone No.CEA 4
−G67、IgG−1、及び、Clone No.CE
A 4−G11、IgG−1;DAKO社製)を用い
た。 ラテックス:0. 40μm、0. 30μmのポリスチレ
ンラテックス(いずれも固形分10%(W/V)、積水
化学工業社製)を用いた。 ラテックス懸濁用緩衝液:1mM Hepes(和光純
薬社製)水溶液を0.1N NaOHを加えてpHが
7. 50になるように調整したものに、ウシ血清アルブ
ミン(Bovine serum albumin、F
ractionV、Reagent Grade、Mi
les Corp社製)を1%(W/V)になるよう
に、またNaN3 (試薬特級、ナカライテスク社製)を
0. 1%(W/V)になるように添加したものを、ラテ
ックス懸濁用緩衝液として用いた。 ブロッキング用緩衝液:100mM Na2 HPO4
100mM NaH2PO4 をpH7. 40になるよう
に混合し、BSAを1%(W/V)になるように、また
NaN3 を0. 1%(W/V)になるように添加したも
のを、プロッキング用緩衝液として用いた。 CEA標準品:CEA標準品(ダイナボット社、CEA
・リアビーズキット添付品)の0、5、20、100、
500ng/mLをそのまま用いた。 CEA陽性検体:ダイナボット社、CEA・リアビーズ
キット添付品を用いてCEA濃度を測定したヒト血清2
0検体を用いた。
Example 16 The reagents and materials used in this example are as follows. Anti-human CEA monoclonal antibody: two types of anti-human CE
A monoclonal antibody (Clone No. CEA 4)
-G67, IgG-1, and Clone No. CE
A4-G11, IgG-1; manufactured by DAKO) was used. Latex: Polystyrene latex of 0.40 μm and 0.30 μm (both solids content 10% (W / V), manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) was used. Latex suspension buffer: 1 mM Hepes (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) aqueous solution adjusted to pH 7.50 by adding 0.1 N NaOH to bovine serum albumin (F).
fractionV, Reagent Grade, Mi
les Corp.) and NaN 3 (reagent grade, Nacalai Tesque) at 0.1% (W / V), and latex. Used as a suspension buffer. Blocking buffer: 100 mM Na 2 HPO 4 and 100 mM NaH 2 PO 4 are mixed to a pH of 7.40, BSA is adjusted to 1% (W / V), and NaN 3 is adjusted to 0.1% ( (W / V) was used as a buffer for blocking. CEA standard products: CEA standard products (Dynabot, CEA
・ 0, 5, 20, 100,
500 ng / mL was used as it was. CEA-positive specimen: human serum 2 whose CEA concentration was measured using the accessory of CEA / Rear beads kit, Dynabot
0 samples were used.

【0140】(1)CEA測定用試薬の調製 平均粒径0. 3μmのポリスチレンラテックス(固形分
10%(W/V))1容に、ラテックス懸濁用緩衝液9
容を添加希釈し、1. 0%ラテックス液とした。抗CE
A抗体(Clone No.CEA 4−G67)は、
タンパク濃度が12. 5μg/mLになるように抗体希
釈用緩衝液で希釈し、感作抗体液とした。1. 0%(W
/V)ラテックス液600μLを25℃のインキュベー
ター中でマグネチックスターラーで攪拌しながら、抗体
感作液1200μLを素早く添加し、25℃にて1時間
攪拌した。その後、ブロッキング用緩衝液を3. 0mL
添加し、25℃にて続けて2時間攪拌した。その後、1
5℃、15,000rpmにて15分間遠心分離した。
得られた沈殿にラテックス懸濁用緩衝液4. 0mLを添
加し、同様に遠心分離することにより、沈殿を洗浄し
た。洗浄操作は3回行った。この沈殿にブロッキング用
緩衝液を1. 8mL添加し、よく攪拌した後、超音波破
砕機にて分散処理を行った。これにブロッキング用緩衝
液を1. 8mL添加し、固形分0. 17%(W/V)の
CEA測定用試薬〔1〕とした。このようにして調製し
たCEA測定用試薬〔1〕は4℃にて保存した。Clo
ne No.CEA 4−G11についても同様の方法
でラテックスに固定化し、固形分0. 17%(W/V)
のCEA測定用試薬〔2〕とした。
(1) Preparation of Reagent for CEA Measurement A polystyrene latex (average particle size: 0.3 μm, solid content: 10% (W / V)) was mixed with a latex suspension buffer
The solution was added and diluted to obtain a 1.0% latex solution. Anti-CE
Antibody A (Clone No. CEA 4-G67)
The antibody was diluted with an antibody dilution buffer to a protein concentration of 12.5 μg / mL to obtain a sensitized antibody solution. 1.0% (W
/ V) While stirring 600 μL of the latex solution in a 25 ° C. incubator with a magnetic stirrer, 1200 μL of the antibody sensitizing solution was quickly added, followed by stirring at 25 ° C. for 1 hour. Thereafter, 3.0 mL of the blocking buffer was added.
The mixture was stirred at 25 ° C. for 2 hours. Then 1
The mixture was centrifuged at 15,000 rpm at 5 ° C. for 15 minutes.
4.0 mL of a latex suspension buffer was added to the obtained precipitate, and the precipitate was washed by centrifugation in the same manner. The washing operation was performed three times. 1.8 mL of a blocking buffer was added to the precipitate, and the mixture was stirred well, and then subjected to a dispersion treatment with an ultrasonic crusher. To this, 1.8 mL of a blocking buffer was added to obtain a CEA measuring reagent [1] having a solid content of 0.17% (W / V). The CEA measuring reagent [1] thus prepared was stored at 4 ° C. Clo
ne No. CEA 4-G11 was immobilized on latex in the same manner, and the solid content was 0.17% (W / V).
Was used as a CEA measurement reagent [2].

【0141】(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調製 上記(1)において、抗CEA抗体を固定化する代わり
に1%BSA9容を添加したこと以外は、上記(1)と
同様の操作によりラテックス懸濁液(固形分0. 17%
(W/V))を得、BSAが固定化された非特異反応抑
制剤とした。ブロッキング用緩衝液に、ポリエチレング
リコール6000(平均分子量7,500、和光純薬工
業社製)を3%(W/V)になるように添加し、更に、
上記非特異反応抑制剤を0.0001%になるように懸
濁して、検体希釈用希釈液(R1液)として用いた。
(2) Preparation of Dilution Solution for Sample Dilution (R1 Solution) The same procedure as in (1) above except that 9 volumes of 1% BSA was added instead of immobilizing the anti-CEA antibody. Latex suspension (solid content 0.17%)
(W / V)) to obtain a non-specific reaction inhibitor to which BSA was immobilized. To the blocking buffer, polyethylene glycol 6000 (average molecular weight 7,500, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added to 3% (W / V), and further,
The non-specific reaction inhibitor was suspended at 0.0001%, and used as a diluent for diluting a sample (R1 solution).

【0142】(3)CEA量の測定 CEA量の測定は、生化学用自動分析装置7150形
(日立製作所社製)を用いて行った。上記(1)で得ら
れた固形分0. 17%(W/V)のCEA測定用試薬
〔1〕及び〔2〕を等量混合したものをR2液(固形分
0. 17%(W/V))とした。測定条件は以下の通り
である。 検体容量 20μL 検体希釈液(R1液)180μL 試薬(R2液) 90μL 測定波長 700nm 測定温度 37℃ 試薬(R2液)を添加してから約80秒後の吸光度と約
320秒後の吸光度の差(△OD570)を測定し、こ
の吸光度の差を10,000倍したものを吸光度変化量
とした。既知濃度の上記CEA標準品を用いて、吸光度
変化量を測定し、検量線を作成した。CEA標準品の測
定結果を、表7に示した。
(3) Measurement of CEA Amount The CEA amount was measured using an automatic analyzer for biochemistry Model 7150 (manufactured by Hitachi, Ltd.). An R2 solution (0.17% (W / V) solid content) obtained by mixing equal amounts of the CEA measurement reagents [1] and [2] with a solid content of 0.17% (W / V) obtained in (1) above was mixed. V)). The measurement conditions are as follows. Sample volume 20 μL Sample diluent (R1 solution) 180 μL Reagent (R2 solution) 90 μL Measurement wavelength 700 nm Measurement temperature 37 ° C. Difference between absorbance approximately 80 seconds and 320 seconds after addition of reagent (R2 solution) ( ΔOD570), and the difference in absorbance multiplied by 10,000 was defined as the change in absorbance. The amount of change in absorbance was measured using a known concentration of the CEA standard, and a calibration curve was prepared. Table 7 shows the measurement results of the CEA standard product.

【0143】(4)患者血清中のCEA量測定 CEA陽性血清を検体として、上記(3)CEA量の測
定に従って吸光度変化量を測定し、上記(3)で得られ
た検量線を用いてCEA濃度を求めた。これらの測定結
果を表8に示した。CEA・リアビーズキット(ダイナ
ボット社)を用いて、RIA法によりCEA陽性血清中
のCEA量を測定した結果も合わせて表8に示した。R
IA法により測定したCEA陽性血清中のCEA量測定
値と、実施例16により得られたCEA量測定結果の相
関関係を示すグラフを図1に示した。
(4) Measurement of CEA Amount in Patient Serum Using CEA-positive serum as a sample, the amount of change in absorbance was measured in accordance with the above (3) Measurement of CEA amount, and CEA was determined using the calibration curve obtained in (3) above. The concentration was determined. Table 8 shows the results of these measurements. Table 8 also shows the results of measuring the amount of CEA in CEA-positive serum by the RIA method using a CEA-Rear beads kit (Dynabot). R
FIG. 1 is a graph showing the correlation between the measured value of the amount of CEA in CEA-positive serum measured by the IA method and the result of measuring the amount of CEA obtained in Example 16.

【0144】実施例17 実施例16の(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調製
において、1%BSA9容を添加する代わりに1%カゼ
イン9容を添加して、カゼインが固定化された非特異反
応抑制剤を調製したこと以外は、実施例16と同様の操
作を行い、CEA量の測定を行った。結果を、表7、表
8及び図2に示した。
Example 17 In the preparation of (2) diluent for sample dilution (R1 solution) in Example 16, 9 volume of 1% casein was added instead of 9 volume of 1% BSA to immobilize casein. The same operation as in Example 16 was performed, except that the nonspecific reaction inhibitor was prepared, and the CEA amount was measured. The results are shown in Tables 7 and 8 and FIG.

【0145】実施例18 実施例16の(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調製
において、1%BSA9容を添加する代わりに1%カザ
ミノ酸9容を添加して、カザミノ酸が固定化された非特
異反応抑制剤を調製したこと以外は、実施例16と同様
の操作を行い、CEA量の測定を行った。結果を表7、
表8及び図3に示した。
Example 18 In Example 16, (2) Preparation of a diluent for diluting a sample (solution R1), 9% of 1% casamino acid was added instead of 9% of 1% BSA to fix casamino acid. The same operation as in Example 16 was performed, except that the non-specific reaction inhibitor was prepared, and the CEA amount was measured. Table 7 shows the results.
The results are shown in Table 8 and FIG.

【0146】実施例19 実施例16中の(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調
製、及び、(3)CEA量の測定におけるR2液の調製
を下記にように行ったこと以外は、実施例16と同様の
操作を行い、CEA量の測定を行った。結果を表7、表
8及び図4に示した。
Example 19 The procedure of Example 16 was repeated except that (2) the preparation of the diluent for diluting the sample (R1 solution) and (3) the preparation of the R2 solution in the measurement of the CEA amount were carried out as follows. The same operation as in Example 16 was performed to measure the CEA amount. The results are shown in Tables 7 and 8 and FIG.

【0147】(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調製 ブロッキング用緩衝液に、ポリエチレングリコール60
00(平均分子量7,500、和光純薬工業社製)を3
%(W/V)になるように添加したものを検体希釈用希
釈液(R1液)として用いた。
(2) Preparation of diluent for sample dilution (R1 solution) Polyethylene glycol 60 was added to the blocking buffer.
00 (average molecular weight 7,500, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
% (W / V) was used as a diluent for sample dilution (R1 solution).

【0148】(3)CEA量の測定 実施例16(1)において、抗CEA抗体を固定化する
代わりに1%BSAを添加したこと以外は、上記(1)
と同様の操作によりラテックス懸濁液(固形分0. 17
%(W/V))を得、BSAが固定化された非特異反応
抑制剤とした。実施例16(1)で得られた固形分0.
17%(W/V)のCEA測定用試薬〔1〕及び〔2〕
を等量混合し、更に、上記非特異反応抑制剤を0.00
01%になるように懸濁させたものをR2液とした。
(3) Measurement of CEA Amount (1) The procedure of Example 16 (1) was repeated except that 1% BSA was added instead of immobilizing the anti-CEA antibody.
Latex suspension (solid content 0.17)
% (W / V)) to obtain a non-specific reaction inhibitor having BSA immobilized thereon. The solid content obtained in Example 16 (1) was 0.1%.
17% (W / V) CEA measuring reagents [1] and [2]
Are mixed in equal amounts, and the above-mentioned non-specific reaction inhibitor is further added to 0.00
What was suspended so that it might become 01% was used as R2 liquid.

【0149】実施例20 実施例19(3)CEA量の測定のR2液の調製におい
て、1%BSAを添加する代わりに1%カゼインを添加
して、カゼインが固定化された非特異反応抑制剤を調製
したこと以外は、実施例19と同様の操作を行い、CE
A量の測定を行った。結果を、表7、表8及び図5に示
した。
Example 20 Example 19 (3) In the preparation of R2 solution for measuring the CEA amount, 1% casein was added instead of 1% BSA, and the non-specific reaction inhibitor having immobilized casein was added. Was prepared in the same manner as in Example 19, except that
The amount of A was measured. The results are shown in Tables 7, 8 and FIG.

【0150】実施例21 実施例19(3)CEA量の測定のR2液の調製におい
て、1%BSAを添加する代わりに1%カザミノ酸を添
加して、カザミノ酸が固定化された非特異反応抑制剤を
調製したこと以外は、実施例19と同様の操作を行い、
CEA量の測定を行った。結果を表7、表8及び図6に
示した。
Example 21 Example 19 (3) Nonspecific reaction in which casamino acid was immobilized by adding 1% casamino acid instead of 1% BSA in preparation of R2 solution for measuring CEA amount Except for preparing the inhibitor, the same operation as in Example 19 was performed,
The amount of CEA was measured. The results are shown in Tables 7, 8 and FIG.

【0151】比較例6 非特異反応抑制剤を使用せずに、ブロッキング用緩衝液
にポリエチレングリコール6000(平均分子量7,5
00、和光純薬工業社製)を3%(W/V)になるよう
に添加したものを検体希釈用希釈液(R1液)として用
いたこと以外は、実施例16と同様の操作を行い、CE
A量の測定を行った。結果を表7、表8及び図7に示し
た。
Comparative Example 6 Polyethylene glycol 6000 (average molecular weight 7.5, 5) was used in a blocking buffer without using a nonspecific reaction inhibitor.
00, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was used in the same manner as in Example 16, except that a diluent for diluting the sample (R1 solution) was used in an amount of 3% (W / V). , CE
The amount of A was measured. The results are shown in Tables 7 and 8 and FIG.

【0152】[0152]

【表7】 [Table 7]

【0153】[0153]

【表8】 [Table 8]

【0154】実施例22 実施例16(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調製を
下記のように行ったこと以外は、実施例16と同様の操
作を行い、CEA量の測定を行った。結果を表9、表1
0及び図8に示した。
Example 22 Example 16 (2) The CEA amount was measured in the same manner as in Example 16, except that a diluent for sample dilution (R1 solution) was prepared as described below. Was. Table 9 and Table 1 show the results.
0 and FIG.

【0155】(2)検体希釈用希釈液(R1液)の調製 ブロッキング用緩衝液に、ポリエチレングリコール60
00(平均分子量7,500、和光純薬工業社製)を3
%(W/V)になるように添加し、更に、平均粒径0.
4μmのポリスチレンラテックスを0.0001%にな
るように懸濁して、検体希釈用希釈液(R1液)として
用いた。
(2) Preparation of Diluent for Sample Dilution (R1 Solution) Polyethylene glycol 60 was added to the blocking buffer.
00 (average molecular weight 7,500, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
% (W / V).
4 μm of polystyrene latex was suspended to 0.0001% and used as a sample diluent (R1 solution).

【0156】実施例23 実施例22において、平均粒径0.4μmのポリスチレ
ンラテックスを添加する代わりに、実施例16(1)C
EA測定用試薬の調製で得られたCEA測定用試薬
〔1〕を添加したこと以外は、実施例22と同様にし
て、CEA量の測定を行った。結果を表9、表10及び
図9に示した。
Example 23 Example 16 (1) C was prepared in the same manner as in Example 22 except that polystyrene latex having an average particle diameter of 0.4 μm was added.
The amount of CEA was measured in the same manner as in Example 22 except that the reagent [1] for CEA measurement obtained in the preparation of the reagent for EA measurement was added. The results are shown in Table 9, Table 10, and FIG.

【0157】実施例24 実施例22において、平均粒径0.4μmのポリスチレ
ンラテックスを添加する代わりに、実施例16(1)C
EA測定用試薬の調製で得られたCEA測定用試薬
〔2〕を添加したこと以外は、実施例22と同様にし
て、CEA量の測定を行った。結果を表9、表10及び
図10に示した。
Example 24 The procedure of Example 22 was repeated, except that polystyrene latex having an average particle size of 0.4 μm was added.
The amount of CEA was measured in the same manner as in Example 22, except that the reagent for CEA measurement [2] obtained in the preparation of the reagent for EA measurement was added. The results are shown in Table 9, Table 10, and FIG.

【0158】[0158]

【表9】 [Table 9]

【0159】[0159]

【表10】 [Table 10]

【0160】表7〜表10及び図1〜図10から明らか
なように、純度の高い標準品を用いて測定した検量線
は、実施例、比較例とも大きな差は見られなかったが、
実検体において、比較例では検体中の共存物質に起因す
ると思われる非特異反応による正誤差が多く見られたの
に対し、本発明では、RIA法の結果と良く一致する正
確な結果が得られた。これは、使用する材料や、検体中
の共存物質による非特異凝集を、あらかじめ加えておい
た非特異反応抑制剤であるラテックス液が吸収し、本来
の抗原抗体反応を正確に測定できた結果と推察される。
以上の結果から、本発明によるCEA定量法は、従来の
ラテックス凝集免疫試薬よりも高感度かつ安定で優れた
定量法であることが確認された。
As is clear from Tables 7 to 10 and FIGS. 1 to 10, the calibration curves measured using the high-purity standard products did not show a large difference between the examples and comparative examples.
In the actual sample, in the comparative example, many positive errors due to non-specific reactions considered to be caused by the coexisting substance in the sample were observed, whereas in the present invention, an accurate result which was in good agreement with the result of the RIA method was obtained. Was. This is due to the fact that the latex solution, which is a non-specific reaction inhibitor added in advance, absorbs non-specific agglutination due to the materials used and coexisting substances in the sample, and accurately measures the original antigen-antibody reaction. Inferred.
From the above results, it was confirmed that the CEA quantification method according to the present invention is a more sensitive, stable and superior quantification method than the conventional latex agglutination immunoreagent.

【0161】[0161]

【発明の効果】本発明の非特異反応抑制剤、並びに、そ
れを使用した免疫測定試薬及び免疫測定方法は、上述の
構成よりなるので、免疫学的反応に基づく被測定物質の
測定において、非特異反応が抑制され、かつ、高い検出
感度を得ることができる。これにより被検試料中の被測
定物質を正確に定量することが可能になり、疾患の発
見、病態の把握、治療方法の決定などに有用である。
The non-specific reaction inhibitor of the present invention, and the immunoassay reagent and immunoassay method using the same have the above-mentioned constitutions. Specific reaction can be suppressed, and high detection sensitivity can be obtained. This makes it possible to accurately quantify the substance to be measured in the test sample, which is useful for finding a disease, grasping a disease state, and determining a treatment method.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例16における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例16における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例16の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 1 is a correlation diagram showing the results of measurement of the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 16. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 16.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 16 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図2】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例17における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例17における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例17の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 2 is a correlation diagram of the results of measuring the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 17. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 17.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 17 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図3】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例18における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例18における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例18の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 3 is a correlation diagram of the results of measuring the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 18. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 18.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 18 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図4】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例19における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例19における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例19の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 4 is a correlation diagram showing the results of measurement of the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 19. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 19.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 19 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図5】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例20における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例20における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例20の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 5 is a correlation diagram showing the results of measurement of the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 20. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 20.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 20 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図6】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例21における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例21における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例21の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 6 is a correlation diagram of the results of measuring the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 21. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 21.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 21 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図7】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び比較例6における試薬によって測定した結果の相関
図である。縦軸は、比較例6における試薬によるCEA
濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RIA法
によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。図中
に、RIA法の結果に対する比較例6の結果の一次回帰
式及び相関係数を示す。
FIG. 7 is a correlation diagram of the results of measuring the CEA concentration in 20 human serum samples by the RIA method and the reagent in Comparative Example 6. The vertical axis represents CEA with the reagent in Comparative Example 6.
The concentration measurement result (ng / mL) is shown, and the horizontal axis is the CEA concentration measurement result (ng / mL) by the RIA method. The figure shows the linear regression equation and the correlation coefficient of the result of Comparative Example 6 with respect to the result of the RIA method.

【図8】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例22における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例22における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例22の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 8 is a correlation diagram of the results of measuring the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 22. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 22.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
The figure shows a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 22 with respect to the result of the RIA method.

【図9】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA法
及び実施例23における試薬によって測定した結果の相
関図である。縦軸は、実施例23における試薬によるC
EA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、RI
A法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)である。
図中に、RIA法の結果に対する実施例23の結果の一
次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 9 is a correlation diagram of the results of measuring the CEA concentration in 20 human serum samples using the RIA method and the reagent in Example 23. The vertical axis indicates C by the reagent in Example 23.
The EA concentration measurement result (ng / mL), and the horizontal axis is RI
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by Method A.
In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 23 with respect to the result of the RIA method are shown.

【図10】ヒト血清20検体中のCEA濃度を、RIA
法及び実施例24における試薬によって測定した結果の
相関図である。縦軸は、実施例24における試薬による
CEA濃度測定結果(ng/mL)であり、横軸は、R
IA法によるCEA濃度測定結果(ng/mL)であ
る。図中に、RIA法の結果に対する実施例24の結果
の一次回帰式及び相関係数を示す。
FIG. 10. RIA was used to measure the CEA concentration in 20 human serum samples.
FIG. 19 is a correlation diagram of the results measured by the method and the reagent in Example 24. The vertical axis is the CEA concentration measurement result (ng / mL) using the reagent in Example 24, and the horizontal axis is R
It is a CEA concentration measurement result (ng / mL) by the IA method. In the figure, a linear regression equation and a correlation coefficient of the result of Example 24 with respect to the result of the RIA method are shown.

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 被測定物質に対する抗体又は抗原を固定
化した担体を用いる免疫測定方法において用いられ、前
記被測定物質に対して免疫学的に反応しない抗体若しく
はその断片、又は、免疫学的に反応しない抗原を固定化
した不溶性担体からなることを特徴とする非特異反応抑
制剤。
1. An antibody or a fragment thereof which is used in an immunoassay using a carrier on which an antibody or an antigen against a substance to be measured has been immobilized and does not react immunologically with the substance to be measured, or A non-specific reaction inhibitor comprising an insoluble carrier to which an antigen that does not react is immobilized.
【請求項2】 免疫学的に反応しない抗原は、担体に固
定化した免疫学的に反応しない物質と同じ物質である請
求項1記載の非特異反応抑制剤。
2. The non-specific reaction inhibitor according to claim 1, wherein the immunologically non-reactive antigen is the same substance as the immunologically non-reactive substance immobilized on a carrier.
【請求項3】 被測定物質に対する抗体又は抗原を固定
化した担体を用いる免疫測定方法において用いられ、前
記被測定物質に対して免疫学的に反応する抗体又は抗原
を固定化した不溶性担体からなることを特徴とする非特
異反応抑制剤。
3. An immunoassay method using a carrier on which an antibody or an antigen against a substance to be measured is immobilized, comprising an insoluble carrier on which an antibody or antigen immunologically reactive with the substance to be measured is immobilized. Non-specific reaction inhibitor characterized by the above-mentioned.
【請求項4】 被測定物質に対する抗体又は抗原を固定
化した担体を用いる免疫測定方法において用いられ、不
溶性担体からなることを特徴とする非特異反応抑制剤。
4. A non-specific reaction inhibitor which is used in an immunoassay using a carrier on which an antibody or an antigen against a substance to be measured is immobilized, and which comprises an insoluble carrier.
【請求項5】 不溶性担体は、ラテックスである請求項
1、2、3又は4記載の非特異反応抑制剤。
5. The non-specific reaction inhibitor according to claim 1, wherein the insoluble carrier is a latex.
【請求項6】 請求項1、2、3、4又は5記載の非特
異反応抑制剤を含有することを特徴とする免疫測定試
薬。
6. An immunoassay reagent comprising the non-specific reaction inhibitor according to claim 1, 2, 3, 4, or 5.
【請求項7】 被測定物質を含む試料を請求項1、2、
3、4若しくは5記載の非特異反応抑制剤によって予め
処理した後免疫反応させるか、又は、請求項1、2、
3、4若しくは5記載の非特異反応抑制剤の存在下で被
測定物質を含む試料を免疫反応させることを特徴とする
免疫測定方法。
7. The method according to claim 1, wherein a sample containing the substance to be measured is provided.
The immunoreaction after pre-treatment with the non-specific reaction inhibitor according to 3, 4, or 5, or an immunoreaction, or
An immunoassay method comprising immunoreacting a sample containing the substance to be measured in the presence of the nonspecific reaction inhibitor according to 3, 4, or 5.
JP14176298A 1998-05-22 1998-05-22 Nonspecific reaction inhibitor, immunoassay reagent and immunoassay method Expired - Lifetime JP3623657B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP14176298A JP3623657B2 (en) 1998-05-22 1998-05-22 Nonspecific reaction inhibitor, immunoassay reagent and immunoassay method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP14176298A JP3623657B2 (en) 1998-05-22 1998-05-22 Nonspecific reaction inhibitor, immunoassay reagent and immunoassay method

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2004264170A Division JP2004347614A (en) 2004-09-10 2004-09-10 Non-specific reaction inhibitor, immunoassay reagent, and immunoassay method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH11337551A true JPH11337551A (en) 1999-12-10
JP3623657B2 JP3623657B2 (en) 2005-02-23

Family

ID=15299602

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP14176298A Expired - Lifetime JP3623657B2 (en) 1998-05-22 1998-05-22 Nonspecific reaction inhibitor, immunoassay reagent and immunoassay method

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3623657B2 (en)

Cited By (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008014752A (en) * 2006-07-05 2008-01-24 Denka Seiken Co Ltd Specimen suspension liquid for simplified immunoassay, and assay method
WO2014051144A1 (en) * 2012-09-28 2014-04-03 積水メディカル株式会社 Immunological detection process and reagent for immunological detection process
JP2015072249A (en) * 2013-03-29 2015-04-16 富士フイルム株式会社 Test substance assay method, test substance assay kit, and test substance assay reagent
EP2952880A1 (en) 2014-06-05 2015-12-09 Fujifilm Corporation Test substance measurement kit and test substance measurement method
JP2017026591A (en) * 2015-07-22 2017-02-02 積水メディカル株式会社 Immunological detection method
WO2017090721A1 (en) * 2015-11-26 2017-06-01 オーソ・クリニカル・ダイアグノスティックス株式会社 Method of determining quantity of objects to be detected in specimen
WO2018181798A1 (en) 2017-03-30 2018-10-04 富士フイルム株式会社 Kit, method and reagent for measuring measurement target substance
WO2018181799A1 (en) 2017-03-30 2018-10-04 富士フイルム株式会社 Kit, method and reagent for measuring measurement target substance
WO2019163929A1 (en) 2018-02-22 2019-08-29 富士フイルム株式会社 Progesterone measurement kit, progesterone measurement method, and progesterone measurement reagent
JP2020076668A (en) * 2018-11-08 2020-05-21 富士レビオ株式会社 Ca19-9 measurement method and ca19-9 measurement kit, antibody fixing carrier for use in the method and kit, and its production method
US11486879B2 (en) 2017-03-30 2022-11-01 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
US11674954B2 (en) 2017-03-30 2023-06-13 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
US11674966B2 (en) 2017-03-30 2023-06-13 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
WO2023190003A1 (en) * 2022-03-29 2023-10-05 ミナリスメディカル株式会社 Method for measuring sialyl-lewis antigen, reagent for measurement, and kit for measurement
US11821896B2 (en) 2017-03-30 2023-11-21 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4668768B2 (en) * 2005-11-01 2011-04-13 積水化学工業株式会社 Immunoassay method and non-specific reaction suppression method

Cited By (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008014752A (en) * 2006-07-05 2008-01-24 Denka Seiken Co Ltd Specimen suspension liquid for simplified immunoassay, and assay method
WO2014051144A1 (en) * 2012-09-28 2014-04-03 積水メディカル株式会社 Immunological detection process and reagent for immunological detection process
CN105102981A (en) * 2012-09-28 2015-11-25 积水医疗株式会社 Immunological detection process and reagent for immunological detection process
CN105102981B (en) * 2012-09-28 2017-10-20 积水医疗株式会社 Immunological detection method and immunology detection reagent
US10067127B2 (en) 2012-09-28 2018-09-04 Sekisui Medical Co., Ltd. Immunological detection method and immunological detection reagent
JP2015072249A (en) * 2013-03-29 2015-04-16 富士フイルム株式会社 Test substance assay method, test substance assay kit, and test substance assay reagent
EP2952880A1 (en) 2014-06-05 2015-12-09 Fujifilm Corporation Test substance measurement kit and test substance measurement method
JP2015230248A (en) * 2014-06-05 2015-12-21 富士フイルム株式会社 Test object measuring kit and measuring method of test object
US10161935B2 (en) 2014-06-05 2018-12-25 Fujifilm Corporation Test substance measurement kit and test substance measurement method
JP2017026591A (en) * 2015-07-22 2017-02-02 積水メディカル株式会社 Immunological detection method
JPWO2017090721A1 (en) * 2015-11-26 2018-11-15 オーソ・クリニカル・ダイアグノスティックス株式会社 Method of quantifying detection target in sample
WO2017090721A1 (en) * 2015-11-26 2017-06-01 オーソ・クリニカル・ダイアグノスティックス株式会社 Method of determining quantity of objects to be detected in specimen
US11733244B2 (en) 2017-03-30 2023-08-22 Fujifilm Corporation Kit, method, and reagent for measuring measurement target substance
WO2018181798A1 (en) 2017-03-30 2018-10-04 富士フイルム株式会社 Kit, method and reagent for measuring measurement target substance
WO2018181799A1 (en) 2017-03-30 2018-10-04 富士フイルム株式会社 Kit, method and reagent for measuring measurement target substance
KR20190120328A (en) 2017-03-30 2019-10-23 후지필름 가부시키가이샤 Kits, Methods and Reagents for Measuring the Subject Material
KR20190120330A (en) 2017-03-30 2019-10-23 후지필름 가부시키가이샤 Kits, Methods and Reagents for Measuring the Subject Material
US11821896B2 (en) 2017-03-30 2023-11-21 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
US11486879B2 (en) 2017-03-30 2022-11-01 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
US11519860B2 (en) 2017-03-30 2022-12-06 Fujifilm Corporation Kit, method and reagent for measuring measurement target substance
US11674954B2 (en) 2017-03-30 2023-06-13 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
US11674966B2 (en) 2017-03-30 2023-06-13 Fujifilm Corporation Kit and method for measuring measurement target substance in biological sample
WO2019163929A1 (en) 2018-02-22 2019-08-29 富士フイルム株式会社 Progesterone measurement kit, progesterone measurement method, and progesterone measurement reagent
JP2020076668A (en) * 2018-11-08 2020-05-21 富士レビオ株式会社 Ca19-9 measurement method and ca19-9 measurement kit, antibody fixing carrier for use in the method and kit, and its production method
WO2023190003A1 (en) * 2022-03-29 2023-10-05 ミナリスメディカル株式会社 Method for measuring sialyl-lewis antigen, reagent for measurement, and kit for measurement

Also Published As

Publication number Publication date
JP3623657B2 (en) 2005-02-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4668768B2 (en) Immunoassay method and non-specific reaction suppression method
JPS60256057A (en) Immunological measurement
JP3623657B2 (en) Nonspecific reaction inhibitor, immunoassay reagent and immunoassay method
EP1416277A1 (en) Carrier particle latex for assay reagent and assay reagent
JP3899029B2 (en) Immunological analysis method
US6210975B1 (en) Process for determining a bindable analyte via immune precipitation and reagent therefor
JP4086266B2 (en) Immunoassay method
JP2682697B2 (en) Immunoassay reagents and immunoassays
US6927071B2 (en) Method for reducing non-specific aggregation of latex microparticles in the presence of serum or plasma
JPH0712818A (en) Immunological detection
JP2004191332A (en) Immunological analysis reagent and immunological analysis method
JP2004347614A (en) Non-specific reaction inhibitor, immunoassay reagent, and immunoassay method
JP2000146974A (en) Immunoassay
JPH09304386A (en) Manufacture of immunity diagnostic drug and immunity diagnostic drug obtained
JP4616516B2 (en) Immunological assay
JPH1026622A (en) Determination method for human alpha-fetoproteins and measuring kit
JP3598701B2 (en) Immunochemical assay using an insoluble carrier
JP2004117068A (en) Immunoassay reagent and immunoassay method
JP3692055B2 (en) Determination method of antigen-antibody reaction
JP2000346844A (en) Immunity measuring method and measuring kit
JPH02259569A (en) Method for measuring rheumatism factor
JP2001330611A (en) Immunoassay reagent
JPH09304388A (en) Quantitative method for human immunoglobulin e and measuring kit
JPH10282101A (en) Method and kit for measurement
JP2000258415A (en) QUANTITATIVE METHOD OF HUMAN alpha2-PLASMIN INHIBITOR AND MEASURING KIT

Legal Events

Date Code Title Description
A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20040714

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20040913

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20041104

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20041125

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20081203

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091203

Year of fee payment: 5

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091203

Year of fee payment: 5

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20101203

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20111203

Year of fee payment: 7

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20111203

Year of fee payment: 7

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121203

Year of fee payment: 8

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121203

Year of fee payment: 8

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131203

Year of fee payment: 9

EXPY Cancellation because of completion of term