JPH05502385A - Growth, production and composition of megakaryocytes and platelets - Google Patents

Growth, production and composition of megakaryocytes and platelets

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JPH05502385A
JPH05502385A JP3516807A JP51680791A JPH05502385A JP H05502385 A JPH05502385 A JP H05502385A JP 3516807 A JP3516807 A JP 3516807A JP 51680791 A JP51680791 A JP 51680791A JP H05502385 A JPH05502385 A JP H05502385A
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cells
megakaryocyte
proliferation
factor
heparin
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JP3516807A
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ティドマーシュ,ジョージ
ヤング,ジュディ シー.
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システミックス,インコーポレイティド
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 びハの 、 び 胆へのクロス1フアーレンス 本出願は、1990年10月5日に出願された出願番号第593.688号の一 部継続出願である。[Detailed description of the invention] bihano, biha Cross 1 relation to the gall This application is part of Application No. 593.688 filed on October 5, 1990. This is a continuation application.

ヱー論 1酉公立 本発明の分野は、造血細胞、より特定には巨核球及び血小板の増殖及び生成に関 する。theory 1 Tori Public The field of the invention relates to the proliferation and production of hematopoietic cells, more particularly megakaryocytes and platelets. do.

l−景 血小板新生は、巨核球及び血小板の分化及び成熟である。l-view Thrombocytogenesis is the differentiation and maturation of megakaryocytes and platelets.

血小板新生の工程及び血小板新生により包含される因子を理解するためになされ て来たばく大な努力にもかかわらず、その工程についての異常な量の混乱及び不 確定がまだ存在したままである。インビトロで効果を有すると思われる因子は、 インビボではほとんど又はまったく効果を有さないように思える。血小板新生と 呼ばれる活性は理解されに(く、そしてさらに純粋な形で単離され、そして特徴 づけられるべきである。血小板のそれらの成熟及び形成を提供する巨核球前駆体 の長期培養を提供するための努力はまた、不確実である。Research has been done to understand the process of thrombopoiesis and the factors involved in thrombopoiesis. Despite the tremendous effort that has been put into The confirmation still remains. Factors that appear to have effects in vitro are: It appears to have little or no effect in vivo. thrombocytogenesis and The activity is poorly understood and has been isolated in pure form and characterized. should be attached. megakaryocyte precursors that provide for their maturation and formation of platelets Efforts to provide long-term culture are also uncertain.

血小板新生は、個人の健康のためにひじょうに重要な工程である。血小板は、種 々の因子を供給し、血餅化に関与し、及び同様のことの多くの保護工程において 活力的な役割を演じる。従って、血小板新生の理解を助けるであろう方法を提供 し、そして治療方法として適用され得る巨咳球及び血小板の長期生成を提供する ことに実質的な興味が存在する。Thrombocytogenesis is a very important process for an individual's health. Platelets are seeds in many protective processes, supplying various factors, participating in clot formation, and the like. Play a vital role. thus providing a method that will aid in the understanding of thrombopoiesis. and provide long-term production of macroglobules and platelets that can be applied as a therapeutic method There is a real interest in that.

■逮文歓 Blood Ce1l、第15巻、第1号、1989は、巨核球新生を言及する 。Hill and Levin、Blood Ce1ls (1989)15 :141〜166は、血小板新生の調節を記載する。内皮細胞によるヘパリンの 役割の論議が、Thorntor3螢?、 、Sc 1ence (1983) 222 : 6’23〜5に見出され得る。WO90US1725は、巨核球増 殖促進活性化因子タンパク質を報告する。トロンビングリコサミノグリカンによ る巨核球分化の調節が報告されている。■Arbitration welcome Blood Ce1l, Volume 15, No. 1, 1989 refers to megakaryopoiesis . Hill and Levin, Blood Cells (1989) 15 :141-166 describe the regulation of thrombopoiesis. heparin by endothelial cells Is the discussion about the role of Thorntor 3? , Sc 1ence (1983) 222: can be found at 6'23-5. WO90US1725 describes megakaryocyte proliferation. We report a growth-promoting activator protein. Thrombin glycosaminoglycan Regulation of megakaryocyte differentiation has been reported.

遣二朋二Ω−要二許 巨核球前駆体及び巨核球増殖を促進する培地を用いることによって、長期間、巨 核球及び血小板を培地において増殖せしめるための方法が提供される。巨核球前 駆体細胞の種々の源が使用されろゆ巨核球増殖因子は、巨核球前駆体及び巨核球 増殖を増強するために提供される。アッセイシステムは、巨核球前駆体及び巨核 球の増殖及び成熟、並びに血小板の形成に対する因子の効果をアッセイするため に提供される。巨核球及び血小板は、血小板新生の処理、化合物又は組成物の巨 核球増殖活性の同定及び巨核球増殖の機構の理解のために使用される。Kenjiho 2ohm - required 2ho By using a medium that promotes megakaryocyte precursors and megakaryocyte proliferation, megakaryocyte growth can be achieved over a long period of time. Methods are provided for growing karyocytes and platelets in culture. premegakaryocyte Various sources of progenitor cells are used; megakaryocyte growth factor, megakaryocyte precursors and megakaryocytes Provided to enhance proliferation. The assay system uses megakaryocyte precursors and megakaryocytes. To assay the effects of factors on sphere proliferation and maturation and platelet formation provided to. Megakaryocytes and platelets are treated with thrombopoietic treatments, compounds or compositions. It is used to identify karyocyte proliferation activity and understand the mechanism of megakaryocyte proliferation.

待淀f」I[晃肛叔 巨核球前駆体、巨核球及び血小板の培養及びインビボでの増殖のための方法及び 組成物が提供される。巨核球は、ヘパリン及び巨核球増殖因子又はヒト血漿の存 在下で増殖せしめられ得る。培養においては、巨核球は、外因性源からの前駆体 細胞の補充なしに長期間維持され得る。Waiting f'I Methods and methods for culturing and in vivo proliferation of megakaryocyte precursors, megakaryocytes and platelets A composition is provided. Megakaryocytes are treated with heparin and megakaryocyte growth factor or the presence of human plasma. can be grown in the presence of In culture, megakaryocytes are progenitors from exogenous sources. Can be maintained for long periods without cell replenishment.

巨核球増殖及びそれに影響を及ぼす因子をモニターするためのパイオアンセイが 提供される。巨核球前駆体、巨核球及び血小板は、適切には、巨核球増殖のイン ヒビター、特に血小板により生成されるものを不活性化しながら、繊維芽細胞増 殖を支持しない、好ましくは阻害する条件下でヒト前駆体細胞を適切な栄養培地 中で培養増殖することによって生成され得る。前駆体細胞の源は、いづれか便利 な源、たとえば骨髄、胎児肝臓、骨髄からの非付着性細胞、分別された細胞、白 血球、たとえば赤血球を含まない軟膜、骨髄からのCD34+画分、低密度細胞 、クラスI[HL A陽性細胞又は同様のものであり得る。但し、巨核球の生成 を維持することができる初期前駆体が存在すべきである。A bioassay for monitoring megakaryocyte proliferation and factors that affect it. provided. Megakaryocyte precursors, megakaryocytes and platelets are suitably an indicator of megakaryocyte proliferation. Fibroblast proliferation while inactivating inhibitors, especially those produced by platelets. Human progenitor cells are grown in a suitable nutrient medium under conditions that do not support, preferably inhibit, proliferation. can be produced by growing it in culture. The source of progenitor cells can be any convenient sources such as bone marrow, fetal liver, non-adherent cells from bone marrow, sorted cells, white Blood cells, e.g. buffy coat without red blood cells, CD34+ fraction from bone marrow, low density cells , class I [HLA positive cells or the like. However, the generation of megakaryocytes There should be an initial precursor that can maintain the

長期の培養のためには、使用される細胞組成物は所望には、造血幹細胞を含むで あろう。その細胞組成物は、胎児、新生児又は成人からのものであり得る。主要 方法論は、幹細胞を含んで成るいづれか霊長類の造血細胞組成物に関して使用さ れ得るが、その方法論は所望には、ヒト細胞組成物に関しても使用される。For long-term culture, the cell composition used may desirably contain hematopoietic stem cells. Probably. The cell composition may be from a fetus, neonate or adult. major The methodology used with respect to any primate hematopoietic cell composition comprising stem cells. However, the methodology is also used with human cell compositions if desired.

多くの目的のために、巨核球、巨核球前駆体及び血小板の増殖が所望される。従 って、反核球系の細胞を増殖することができるシステムを有することは、巨核球 細胞及び血小板の源を供給することにおいてひじょうに重要である。次のことは 、反核球系及び血小板の細胞の培養での増殖のための方法を記載する。For many purposes, proliferation of megakaryocytes, megakaryocyte precursors and platelets is desired. subordinate Therefore, having a system that can proliferate antikaryocyte cells is important for megakaryocytes. It is very important in providing a source of cells and platelets. What's next , describes a method for propagation in culture of antikaryotic and platelet cells.

多くの場合、培養物の増殖のために使用される容器は、繊維芽細胞形成を増強す るために被覆される。本発明によれば、繊維芽細胞形成の促進を回避するために 被覆されていない又は処理された容器が使用される。被膜を含まない容器は、市 販されており、又はFalcon、Corning又は同様のものの源からその ような容器を要求することによって得られる。容器は、複数のウェルズl/ − 1−、、ローラーボトル、発酵器、べI・り皿又は同様のものを含む。In many cases, the containers used for culture growth are designed to enhance fibroblast formation. coated for protection. According to the invention, in order to avoid promoting fibroblast formation Uncoated or treated containers are used. Containers without coatings are commercially available or from Falcon, Corning or similar sources. Obtained by requesting such a container. The container has a plurality of wells l/- 1-, including roller bottles, fermenters, trays, or the like.

使用される培地は、必要とされる塩、鉱物及び栄養補充物、たとえばアミノ酸、 グリコース及びビタミンを供給するいづれか便利な培地である。また、少量の生 理学的に許容できる還元剤、たとえば2−メルカプトエタノールが使用される。The medium used should contain the necessary salts, minerals and nutritional supplements, such as amino acids, Any convenient medium that provides glycose and vitamins. Also, a small amount of raw A physically acceptable reducing agent is used, such as 2-mercaptoethanol.

メルカプトエタノールは、約1.0−’〜10−6M、好ましくは約10−’M で一般的に存在するであろう。Mercaptoethanol is about 1.0-' to 10-6M, preferably about 10-'M will generally exist.

種ノンの添加剤が、繊維芽細胞形成及び増殖を促進せず又は阻害し、又は好まし くは巨核球増殖を促進するために使用され得る。Non-seed additives do not promote or inhibit fibroblast formation and proliferation, or are preferred. or may be used to promote megakaryocyte proliferation.

ウシ胎児血清の存在下で繊維芽細胞形成を促進しないように使用され得る添加剤 は、ヘパリン、シトレート又は血小板の凝集化及び脱粒状化を妨げる他の添加剤 を包含する。ヘパリンの量は、約50μg/d、好ましくは少なくとも約100 μg/−であり、そして通常4■/−を越えず、より通常には2■/dを越えず 、好ましくは約0.5〜1.5mg/−の範囲である。シトレートの量は、存在 する場合、一般的に約0゜1〜1%の範囲であろう。他の添加剤は、システムに 対するそれらの活性及びいづれかの悪影響に従って使用されるであろう。培地は 一般的に、また低レベルの血漿又は血清、ヒト血漿又は血清又はウシ胎児血清を 、好ましくは約10%又はそれ以下、より好ましくは約5%で有し、−C的には 定義された培地に特定のシトキンの不在下で少なくとも約1%である。Additives that may be used not to promote fibroblast formation in the presence of fetal bovine serum is heparin, citrate or other additives that interfere with platelet aggregation and degranulation. includes. The amount of heparin is about 50 μg/d, preferably at least about 100 μg/d. μg/-, and usually does not exceed 4 ■/-, more usually does not exceed 2 ■/d. , preferably in the range of about 0.5 to 1.5 mg/-. The amount of citrate present If so, it will generally be in the range of about 0.1 to 1%. Other additives in the system They will be used according to their activity against and any adverse effects. The medium is Generally, low levels of plasma or serum, human plasma or serum or fetal bovine serum are also used. , preferably about 10% or less, more preferably about 5%, and -C at least about 1% in the absence of a specific cytokin in a defined medium.

血清及び他の添加剤の量は最適化され得、ここで反核球系の細胞が増殖を促進さ れ、そして繊維芽細胞の増殖は阻害される。The amount of serum and other additives can be optimized where antikaryotic cells are stimulated to proliferate. and fibroblast proliferation is inhibited.

低レベルの血清により通常増強される、MCDB 107゜IMDM、RPMI 、EX−CEL、等を含む、いづれがの複雑な真核増殖培地が使用され得る。MCDB 107° IMDM, RPMI, usually enhanced by low levels of serum Any complex eukaryotic growth medium can be used, including , EX-CEL, etc.

所望には、血小板により生成され、そして巨核球増殖を阻害する因子が低I/ベ ルで維持されるであろう。その特定の因子は、血小板第4因子(PF−4)及び の分解生成物トロンポスボンジンを包含する。ヘパリンはPF−4に結合するこ とができ、そして巨核球増殖に対するその阻害活性を減じることができることが 見出された。従って、ヘパリンが培地に維持される場合、そのヘパリンは、PF −4及びその分解生成物が■害的影響を及ぼさないように防ぐ。ヘパリンの不在 下では、他の方法がPF−4のレベルを滅しるために使用され得る。これは、培 地を連続的に変え、そして培地からPF−4及びその分解生成物を除去すること によ、って、PF−4に対する抗体の添加、PF−4の除去のための透析、及び 同様のことにより達成され得る。Desirably, factors produced by platelets and that inhibit megakaryocyte proliferation are present at low I/vectors. will be maintained in the file. The specific factors are platelet factor 4 (PF-4) and including the decomposition product tromposbondin. Heparin binds to PF-4 and can reduce its inhibitory activity on megakaryocyte proliferation. discovered. Therefore, if heparin is maintained in the medium, the heparin -4 and its decomposition products ■Prevent them from having harmful effects. Absence of heparin Below, other methods can be used to reduce levels of PF-4. This is a culture Continuously changing the medium and removing PF-4 and its degradation products from the medium Accordingly, addition of an antibody against PF-4, dialysis to remove PF-4, and The same can be achieved.

培養物に形成される血小板の保存を高めるために、カルシウムレベル及びカルシ ウム/ホスフェート比を調節することができる。一般的に、カルシウムレベルは 約0〜10mMの範囲で存在し5そしてホスフェ−1−濃度は約0〜10dの範 囲で存在する。ADPのレベルはまた、ADPをATPに転換するシステムを供 給することによって調節され得る。便利なシステムは、他のシステムも使用され 得るが、クレアチニンジン酸及びクレアチニンリン酸キナーゼを包含する。クレ アチニンキナーゼ及びり1./アチニンキナーゼリン酸の濃度は、所望するAD P/ATPレベルを提供する範囲で維持されるであろう。これらの濃度は臨界で はなく、そして主にシステムの生産能力を貰める便利さのために向けられる。血 小板保存はまた、デキストロース酸シ1−レートにより達成され得る。To increase preservation of platelets formed in culture, calcium levels and um/phosphate ratio can be adjusted. Generally, calcium levels are present in the range of about 0-10mM5 and the phospho-1-concentration ranges from about 0-10mM. It exists within the surroundings. ADP levels also provide a system for converting ADP to ATP. It can be adjusted by supplying Useful system, other systems are also used creatinine phosphate and creatinine phosphate kinase. Cree Atinine kinase and 1. /atinine kinase phosphate concentration is determined according to the desired AD P/ATP levels will be maintained within the range that provides. These concentrations are critical There is no system, and it is primarily intended for the convenience of gaining production capacity in the system. blood Platelet preservation can also be achieved with dextrose acid sylate.

巨核球細胞培養物はまた、少なくとも1つの増殖因子を対象の巨核球増殖因子と 共に使用することによって、血清の実質的な不在下(51%)で増殖され得る。The megakaryocyte cell culture also comprises at least one growth factor as the megakaryocyte growth factor of interest. When used together, they can be grown in the substantial absence of serum (51%).

増殖因子は、比較的高濃度で、通常約25ng/d以上、好ましくは約50ng /−以上及び特に1100n/d又はそれ以上で、インターロイキンTL−1, −3,−6及びエリ)・ロボエチン、詩にIL−6及びエリトロボイエチンを包 含する。高レベルの補因子、たとえばビタミン及び他の成分、たとえばβ−カロ チン1、インスリン、等、たとえばx−vyv○及びEX−CEL(J。The growth factor is present at a relatively high concentration, usually about 25 ng/d or more, preferably about 50 ng/d. /- or more and especially 1100 n/d or more, interleukin TL-1, -3, -6 and Eri) Roboetin, including IL-6 and Erythroboietin in poetry. Contains. High levels of cofactors, such as vitamins and other components, such as β-carbohydrates Chin 1, insulin, etc., such as x-vyv○ and EX-CEL (J.

R,Sc 1ent f ic)を有する定義された富化培地が使用されるべき である。A defined enriched medium with R, Sc 1ent f ic) should be used It is.

培地に得られる細胞組成物は、巨核球前駆体、巨核球及び血小板のためにひじょ うに富化され、液体培養培地中の10数%以上、通常50数%以上が巨核球/血 小板付与系統である。少なくとも90重量%の巨核球幼芽細胞及び巨核球(重量 計数においては血小板を除く)、特に巨核球を有する、液体培養物における細胞 組成物が得られる。従って、巨核球/血小板系統に傾倒している細胞、因子を供 給することができる細胞の付着性集団、及び適切な増殖因子、血小板を安定化す るための物質及び適切な場合、繊維芽細胞増殖を阻害するための物質を含むこと によって巨核球増殖を支持するならし培地を含んで成る培養物が得られる。The cell composition obtained in the culture medium is highly concentrated for megakaryocyte precursors, megakaryocytes and platelets. More than 10%, usually more than 50%, of the liquid culture medium is megakaryocytes/blood. This is a platelet-bearing strain. At least 90% by weight of megakaryocyte blastoblasts and megakaryocytes (wt. cells in liquid culture, excluding platelets in counting), especially megakaryocytes A composition is obtained. Therefore, cells that are committed to the megakaryocyte/platelet lineage, provide factors. to stabilize adherent populations of cells and appropriate growth factors, platelets that can be fed containing substances to inhibit fibroblast proliferation and, where appropriate, substances to inhibit fibroblast proliferation. A culture comprising a conditioned medium that supports megakaryocyte proliferation is obtained.

対象の細胞は、培養培地又は骨髄から単離され得る。対象の細胞はまた、表面膜 タンパク賀マーカーに関連する分離技法を用いることによって血液から単離され る軟膜から人手され得る。対象の細胞は、CD34+、−41+、−41−及び 通常−33+とじて分別するであろう。これらの細胞は、倍数体成熱巨核球から 区別できるので、二倍体である・う。従って、磁気ビーズ、陽性及び陰性選択、 FAC3、アフィニティーカラム及び同様のものを用いての分離により巨核球前 駆体の高く富化された細胞組成物をだれでも得ることができる。富化された巨核 球前駆体の集団を用いることによって、血小板のより急速な成熟及び生成が達成 され得る。Cells of interest can be isolated from culture media or bone marrow. Cells of interest also have surface membranes Isolated from blood by using separation techniques related to proteinaceous markers The pia mater can be manually removed. The cells of interest are CD34+, -41+, -41- and Normally, it would be classified as -33+. These cells are derived from polyploid adult megakaryocytes. Since they can be distinguished, they are diploid. Therefore, magnetic beads, positive and negative selection, Pre-megakaryocytes by separation using FAC3, affinity columns and similar Anyone can obtain cell compositions highly enriched in precursors. enriched meganucleus More rapid maturation and production of platelets is achieved by using a population of bulb precursors can be done.

巨核球に関連するならし培地に存在する因子は、41°C1通常周囲温度又はそ れ以上で2週間以上安定できることが見出された。Factors present in the conditioned medium associated with megakaryocytes are typically at ambient temperature of 41°C or below. It has been found that it can be stabilized for more than two weeks at a temperature higher than that.

巨核球及び血小板の生成を実施する場合、ld当たり通常約1×10s〜1×1 07個のヒト骨髄細胞、好ましくは1戚当たりlXl0’個の細胞、又は約2X 10B個の白血球(但し、赤血球を含まない)を含む、成人からの軟膜の単位が 、接種されるであろう。従来の生理学的条件、すなわち約5%の二酸化炭素を有 する空気を含む湿潤されたチャンバーにおける約37°Cが、培養物中のヒト細 胞を増殖するために使用され、ここで酸素は少なくとも約5%、通常少な(とも 約20%であろう。より高い酸素レベルが繊維芽細胞増殖を阻害すると報告され ているので、高い酸素ラベル、通常90%を越えないレベルが、細胞の増殖のた めに使用される他の条件に依存して使用され得る。便利には、6〜10cmのウ ェル又は96個のウェルプレートが使用され、そしてそれはその表面への付着性 細胞の増殖を可能にする。約7日以内に、巨核球細胞が観察され、そしてその培 養は6力月又はそれ以上の間続けられ得る。透析が使用されないなら、培地は、 規則的に、一般的に退歩なくとも約2回、好ましくは少なくとも2日ごとに変え られる。沈陣された付着性細胞を有する細胞島が観察され、そしてこれは、複数 小葉細胞として観察される成熟巨核球に分化する。巨核球及び付着性(間質)細 胞の組合せである付着層が観察される。細胞島は、巨核球前駆体(巨核球幼芽) である細胞を支持する、巨核球のための特徴的なCD41マーカーを有する(但 し、単核化されている)付着層上に現われる。前駆体細胞はまた、CD34マー カーも坦持するであろう。培地及び付着層に関連する培地において、血小板が存 在するであろう。巨核球細胞は、表面タンパク質マーカーCD41 (I[b/ IIIa)(インテグリン)及びCD42 (Ib)を有することが示されてお り、そして細胞がWright−Giemsaにより染色される場合、巨核球の 複数小葉又は倍数体特徴を示す。前駆体細胞は、比較すると、CD41及びCD 34マーカーを坦持し、そして単核化されるであろう。When performing megakaryocyte and platelet generation, it is usually about 1 x 10s to 1 x 1 per ld. 07 human bone marrow cells, preferably 1X10' cells per relative, or about 2X A buffy coat unit from an adult containing 10B white blood cells (but not including red blood cells) , will be inoculated. under conventional physiological conditions, i.e. with approximately 5% carbon dioxide. Approximately 37°C in a humidified chamber containing used to grow cells, where oxygen is at least about 5%, usually less It would be about 20%. Higher oxygen levels were reported to inhibit fibroblast proliferation. high oxygen labeling, usually no more than 90%, is necessary for cell proliferation. may be used depending on the other conditions used. Conveniently, a 6-10cm cork wells or 96-well plates are used, and it Allow cells to proliferate. Within about 7 days, megakaryocytic cells are observed and the culture Nutrition may continue for six months or more. If dialysis is not used, the medium is Change regularly, generally at least twice without regression, preferably at least every two days. It will be done. Cell islands with deposited adherent cells were observed, and this Differentiate into mature megakaryocytes observed as lobular cells. Megakaryocytes and adherent (interstitial) cells An adherent layer, which is a combination of cells, is observed. Cell islands are megakaryocyte precursors (megakaryocyte buds) It has the characteristic CD41 marker for megakaryocytes, supporting cells that are (and is mononucleated) appears on the adhesion layer. The progenitor cells also contain the CD34 marker. Carr will also support it. Platelets are present in the medium and in the medium associated with the adhesion layer. There will be. Megakaryocytic cells contain the surface protein marker CD41 (I[b/ IIIa) (integrin) and CD42 (Ib). and when the cells are stained by Wright-Giemsa, the megakaryocytes Displays multilobular or polyploid characteristics. Progenitor cells, by comparison, have CD41 and CD41 34 markers and will be mononucleated.

巨核球細胞は、Megacolor (Cytocolor。Megakaryocyte cells are Megacolor (Cytocolor).

Inc、、Hinckley、OH)による染色によりさらに区別され得る。巨 核球において、細胞質は濃い紫色に染色する。また、電子顕微鏡により明らかな ように、培養物における大部分の細胞は、活性的に増殖する血小板である。They can be further differentiated by staining with M.D., Inc., Hinckley, OH). Huge In karyocytes, the cytoplasm stains deep purple. Additionally, electron microscopy reveals As such, the majority of cells in culture are actively proliferating platelets.

他方、srcタンパク質発現及びそのキナーゼ活性のレベルは、巨核球前駆体、 巨核球及び血小板を測定する、巨核球細胞増殖の測定として使用され得る。アッ セイが、1又は複数のマーカーにより選択される比較的均質又は不均質の表現型 又は集団の細胞溶解物により行なわれ得、それは、たとえば特異的抗体によりs rcキナーゼを単離し、そして次に、1又は複数回の洗浄が行なわれ得る。ラベ ルされたヌクレオチドトリホスフェート、たとえばラベルされた複射性同位体を 用いることによって、巨核球増殖に関連する細胞の存在の表示としてリン酸化の レベルを測定することができる。他方、ウェスターンプロット又はSRCELI SAが、srcタンパク質を定量化するために使用され得る。On the other hand, the level of src protein expression and its kinase activity is significantly increased in megakaryocyte precursors, It can be used as a measure of megakaryocyte cell proliferation, measuring megakaryocytes and platelets. Ah relatively homogeneous or heterogeneous phenotype selected by one or more markers or by cell lysates of populations, which can be carried out, for example, by specific antibodies. The rc kinase can be isolated and then one or more washes performed. labe labeled nucleotide triphosphates, e.g. labeled double isotopes. By using phosphorylation as an indication of the presence of cells associated with megakaryocyte proliferation, level can be measured. On the other hand, Western plot or SRCELI SA can be used to quantify src protein.

培養物が成熟するにつれて、血小板の濃度は上昇し続け、その結果、約1週間後 、血小板の濃度は約10′1個の血小板/戚であり、そして約106〜109個 の血小板/dで維持され得る。血小板生成のレベルは、培養物の連続した増殖及 び適切な成分組成での培地の維持により維持され得、そして流体を除去するため の種々の技法を用いての血小板の濃縮により高められ得る。As the culture matures, the concentration of platelets continues to rise, so that after about a week , the concentration of platelets is about 10'1 platelets/relative, and about 106-109 of platelets/d. The level of platelet production is determined by continued growth and growth of the culture. can be maintained by maintaining the medium with appropriate composition of ingredients and removing fluids. can be enhanced by enrichment of platelets using a variety of techniques.

細胞は、キレート剤、たとえばEDTA、音波処理、酵素、たとえばプロテアー ゼ、たとえばトリプシン、コラゲナーゼ、プラスミン、等、又は同様の方法を用 いて、機械的に付着層を分離することによって収穫され得る。使用される特定の 態様は、本発明に臨界ではない。次に、巨核球幼芽及び巨核球は、種々の技法、 たとえば細胞回転(cytospin)、FAC3、アフィニティー分離、密度 分離、磁気ビーズ分離及び同様の方法を用いて単離され得る。結果として、実質 的に純粋な細胞組成物が、巨核球増殖を付与する、すなわち巨核球前駆体、巨核 球及び血小板を付与する細胞から得られる。Cells are treated with chelating agents such as EDTA, sonication, enzymes such as proteases, etc. using enzymes such as trypsin, collagenase, plasmin, etc., or similar methods. can be harvested by mechanically separating the adherent layer. specific used The embodiment is not critical to the invention. Next, megakaryocyte buds and megakaryocytes are extracted using various techniques, For example, cell rotation (cytospin), FAC3, affinity separation, density It can be isolated using separation, magnetic bead separation and similar methods. As a result, the real The essentially pure cell composition confers megakaryocyte proliferation, i.e. megakaryocyte precursors, megakaryocytes. Obtained from cells that give rise to spheres and platelets.

その組成物は、骨髄又は血液からのそのような細胞組成物の単離に関係しない末 梢血液の成分を含まないであろう。さらに、個々のタイプの細胞は、実質的に純 粋な形、すなわち巨核球幼芽、巨核球及び血小板の形で単離され得、それは一般 的に、少なくとも75数%の前記と同じ細胞型、通常少なくとも約90数%の同 じ細胞型及び100数%までの同じ細胞型を含んで成る。The composition may contain terminal materials that do not involve the isolation of such cell compositions from bone marrow or blood. It will not contain components of peripheral blood. Additionally, individual cell types are virtually pure. It can be isolated in the purest form, i.e. megakaryocyte blastema, megakaryocyte and platelet, which is commonly typically at least 75% of the same cell types, usually at least about 90% of the same cell types. It comprises the same cell type and up to several 100% of the same cell type.

ならし培地又はヒト血漿が、巨核球増殖に関与する因子の単離のために使用され 得る。分別硫酸アンモニウム沈殿法が増殖因子のためのタンパク質画分を富化す るために使用される。さらに、富化は、種々の大きさの両分を分離するためにゲ ル透過法を用いて、次にその富化された両分についてアッセイすることによって 達成される。次に、富化された画分は、n−プロパツール又はアセトニトリルに 対する水性酸性媒体、たとえば0.1%トリフルオロ酢酸、又はIMの酢酸によ り溶離するγP−HPLCを用いてさらに富化される。Conditioned medium or human plasma is used for isolation of factors involved in megakaryocyte proliferation. obtain. Fractional ammonium sulfate precipitation enriches the protein fraction for growth factors. used for In addition, enrichment can be performed using a gel to separate the two components of various sizes. by using a permeation method and then assaying for both enriched fractions. achieved. The enriched fraction is then treated with n-propanol or acetonitrile. with an aqueous acidic medium, such as 0.1% trifluoroacetic acid, or IM acetic acid. Further enrichment is performed using γP-HPLC, which is eluted with γP-HPLC.

匝核球活性の精製は、さらにカチオン性カラムを用いてHP L Cにより達成 され得、ここでカラム緩衝液は約7.5〜9のpt+で存在し、そしてサンプル は高イオン強度の溶離剤、たとえば2Mの無機塩、たとえばNaC1により、カ ラム緩衝液中線状グラジェントを用いて溶離される。その活性は、線状グラジェ ントを用いる場合、最高ピークの末端の両分に観察され、一般的に約1.25〜 1.6Mの塩の両分に溶出する画分に観察される。Purification of cartilage activity was further achieved by HPLC using a cationic column. where the column buffer is present at a pt+ of about 7.5-9 and the sample is eluted with a high ionic strength eluent, e.g. 2M inorganic salt, e.g. NaCl. It is eluted using a linear gradient in ram buffer. Its activity is linear gradient is observed at both ends of the highest peak and is generally about 1.25 to It is observed in the fractions eluting in both 1.6M salt fractions.

画分はバイオアッセイされ、そして富化された画分はゲル電気泳動又は他の分離 技法によりさらに精製され得る。Fractions are bioassayed and enriched fractions are subjected to gel electrophoresis or other separation. can be further purified by techniques.

巨核球増殖因子は、ヘパリンカラムを通して培養物又はと1〜血漿からの培地を 分別することによって得られる。その因子は、少なくとも約1■/厩、好ましく は少な(とも約3■/dの濃度及び4°Cでヘパリンを含む、従来の複合真核増 地培地中、ヘパリンにヘパリン−セファロースから移行され得る、ヘパリンへの 結合により特徴づけられる。ヘパリン−セファロースビーズ:培地の比は一般的 に、少なくとも約1g+2ml、好ましくは5戚であり、そして約1g+10d よりも高くない。因子は、その不在は巨核球系統の細胞の増殖及び成熟の実質的 な不在をもたらすが、上記のような培養システムにおける巨核球系統の細胞増殖 を支持することによってさらに特徴づけられる。Megakaryocyte growth factor is added to the medium from the culture or plasma through a heparin column. Obtained by sorting. The factor is at least about 1 /st, preferably Conventional complex eukaryotic enrichment containing heparin at a concentration of about 3 μ/d and at 4°C In the soil medium, heparin can be transferred from heparin-sepharose to heparin. Characterized by bonds. Heparin-Sepharose beads:medium ratio is common at least about 1 g + 2 ml, preferably about 5 ml, and about 1 g + 10 d No more expensive than. factor, the absence of which substantially inhibits the proliferation and maturation of cells of the megakaryocytic lineage. cell proliferation of megakaryocytic lineages in culture systems such as those described above. further characterized by supporting.

溶液において測定される場合、因子の分子量は約40Kt)よりも大きいように 思われる。それはまた、完全な血漿中において56°Cで安定している。それは また、種特異的であるように思われ、ヒト細胞に関して効果的である比較できる 条件下でマウス細胞に関しては効果的ではない。最後に、それはAffi−ゲル ブルーCMを結合しない。When measured in solution, the molecular weight of the factor is greater than approximately 40 Kt). Seem. It is also stable at 56°C in intact plasma. it is It also appears to be species-specific and is comparable to being effective on human cells. is not effective on mouse cells under these conditions. Finally, it is Affi-Gel Do not combine blue commercials.

対象の因子は、濃度及び比活性において1,000倍又はそれ以上の増強を提供 するために上記のような従来の技法によりさらに精製され得る。Factors of interest provide 1,000-fold or more enhancement in concentration and specific activity Further purification may be performed by conventional techniques such as those described above.

種々の因子に対する巨核球前駆体の応答を評価するために、因子は、標準の半固 体培地アッセイ組成物、たとえば巨核球増殖と支持する因子を含んで成るメチル セルロースアッセイ組成物を用いて評価され得る。使用されるメチルセルロース は、一般的に水中において少なくとも約1.5%であり、そして約3%(v/v )を越えないであろう。細胞源は、培養のために使用される細胞源と同じであり 得る。また、少なくとも約15%、好ましくは約20%のウシ胎児血清、又はし ト血漿が培養物に含まれるであろう。アッセイを実施するため便利な体積は、2 4ウエルプレートに約200μlを用いる体積である。To assess the response of megakaryocyte precursors to various factors, factors Body culture medium assay compositions, such as megakaryocyte proliferation and methyl comprising factors that support Cellulose assay compositions can be used to evaluate cellulose assay compositions. Methyl cellulose used is generally at least about 1.5% in water and about 3% (v/v ) will not exceed. The cell source is the same as that used for culture. obtain. Also, at least about 15%, preferably about 20% fetal bovine serum, or plasma will be included in the culture. A convenient volume for performing the assay is 2 Approximately 200 μl is the volume used for a 4-well plate.

巨核球の増殖を支持するためには、高濃度のサイトキンIL−1,−3及び−6 ,並びにエリi・ロボエチンが、一般的に、少なく七も約065倍又はそれ以上 の飽和で包含される。To support megakaryocyte proliferation, high concentrations of cytokines IL-1, -3 and -6 are required. , as well as Eri loboetin, are generally at least 7 to about 065 times or more It is encompassed by the saturation of .

他の因子、たとえば31又は金属因子が相当の濃度で含まれ得る。飽和とは、濃 度における追加の上昇が、生成される細胞のコロニーの数に対して有意な効果を 有さないことを意味する。便利には、約1100n/dの個々の因子が使用され 得る。Other factors, such as 31 or metal factors, may be included in significant concentrations. Saturation means dark An additional increase in temperature has a significant effect on the number of cell colonies produced. It means not having. Conveniently, individual factors of about 1100 n/d are used. obtain.

接種される細胞は、CD41+、CD34+細胞を包含し、そしてそれらの細胞 は巨核球前駆体として作用する。細胞は完全な骨髄又はCD41+、CD34+ 細胞を含んで成る富化された画分てあり得る。形成するコロニーにおける成熱細 胞は、大部分、CD34マーカーを含まず、そして通常、CD33マーカーを有 し、並びに成熟巨核球の形態を有する。The cells that are inoculated include CD41+, CD34+ cells, and acts as a megakaryocyte precursor. Cells are intact bone marrow or CD41+, CD34+ There may be an enriched fraction comprising cells. Growth pattern in forming colonies The cells largely do not contain the CD34 marker and usually have the CD33 marker. and has the morphology of mature megakaryocytes.

対象の因子又は組成物が、上記因子のすべてを含む、又は■又は複数の上記因子 が欠けている培地にそのような因子又は組成物を添加する二とによって研究され 得る。従って、巨核球の増殖又はそれを提供するために他の因子又はサイトキン と相互作用するその能力を刺激するためにウシ胎児血清と共に組成物の固有の能 力を決定することができる。そのアッセイは、少なくとも約5日間、通常少なく とも7日間〜v′J21日間、好ましくは約7日〜14日間行なわれる。アッセ イのための条件は、液体培地又はメチルセルロースが、湿潤チャンバーにおいて 37゛C及び5%のCO2で維持される条件である。The target factor or composition contains all of the above factors, or (1) or more than one of the above factors. studied by adding such factors or compositions to media lacking obtain. Therefore, megakaryocyte proliferation or other factors or cytokines to provide for it. The inherent ability of the composition along with fetal bovine serum to stimulate its ability to interact with power can be determined. The assay lasts for at least about 5 days, usually less than 5 days. Both are carried out for 7 days to v'J21 days, preferably for about 7 days to 14 days. Asse The conditions for this are that the liquid medium or methylcellulose is Conditions are maintained at 37°C and 5% CO2.

種々の用量の組成物又は因子を用いることによって、そのような組成物又は因子 の活性を決定できる。この態様においては、急速なスクリーニングが、特定の組 成物又は因子が巨核球の増殖又は血小板の生成のために有用であるかいづれかを 決定するために実施され得る。By using varying doses of such compositions or agents, activity can be determined. In this embodiment, rapid screening whether the product or factor is useful for megakaryocyte proliferation or platelet production; can be carried out to determine.

巨核球前駆体及び/又は巨核球は、単独で又は血小板の注入を伴って血小板減少 症の処置のために使用され得る。多くの場合、たとえば手術、化学療法、等の場 合、自己由来の巨核球細胞が、培養において拡張され、そして宿主に戻され、巨 核球及び/又は血小板が提供することができる処理の他の効果又は出血が最少に される。細胞は生理学的に許容できる培地、たとえば生理食塩水に含浸され、そ して一般的には、少なくとも約105個の細胞/−1通常約106〜10a個の 細胞/dの範囲の濃度で存在することができる。その用量は一般的には、約10 ’″〜108aの細胞/kg宿主の範囲で変化するであろう。通常、組成物は、 少なくとも25重量%、より通常には少なくとも50重量%及び時々、少な(と も90重量%の巨核球前駆体及び巨核球を含むであろう。必要により、1又は複 数回の注入が必要とされる。血小板は、従来の手段に従って収穫され、そして投 与され得る。Megakaryocyte precursors and/or megakaryocytes alone or with infusion of platelets can cause thrombocytopenia. It can be used for the treatment of diseases. In many cases, e.g. surgery, chemotherapy, etc. In this case, autologous megakaryocytic cells are expanded in culture and returned to the host to develop megakaryocytes. Other effects of treatment that nuclear cells and/or platelets can provide or minimize bleeding be done. The cells are impregnated with a physiologically acceptable medium, e.g. saline, and and generally at least about 105 cells/-1 usually about 106 to 10a cells/-1 It can be present in concentrations ranging from 100 cells/d. The dose is generally about 10 will vary between ''' and 108a cells/kg host. Typically, the composition will be at least 25% by weight, more usually at least 50% and sometimes less It will also contain 90% by weight megakaryocyte precursors and megakaryocytes. One or more as necessary. Several injections are required. Platelets are harvested according to conventional means and can be given.

巨核球細胞は遺伝子療法のために使用され得、ここで細胞は、正常な巨核球1胞 が悪影響を及ぼす条件で機能を維持し、又は巨核球細胞から通常利用できない機 能を提供するように作用することができる。たとえば、複数の薬物耐性(mdr )表現型が細胞中に導入され、ここでそれは化学療法剤に対して耐性にし、化学 療法処理の間、連続した正常な巨核球応答を可能にする。欠乏が、特定のエピソ ード又は巨核球又は他の巨核球細胞の増殖を高めることを所望するエピソードの 間に存在する場合、骨髄における増殖因子の高められた源を提供する、増殖因子 をコードする遺伝子が導入され得る。種々の方法が、細胞の形質転換を提供する ために知られており、安定した染色体外要素又は相同体又はランダム組込みを提 供する。復製できないウィルスベクターは、これまで文献に記載されており、そ れは怒染、1−ランスフエクション及び組込みのために使用され得る。培養にお いて巨核球細胞を増殖できることによって、だれでもそのような細胞を形質転換 する機会を有し、そして所望する形質転換体を拡張し、クローン化することがで きる。Megakaryocyte cells can be used for gene therapy, where the cells are one normal megakaryocyte cell. maintains function under adverse conditions or utilizes mechanisms normally unavailable to megakaryocyte cells. can act to provide functionality. For example, multiple drug resistance (mdr) ) a phenotype is introduced into the cell, where it makes it resistant to chemotherapeutic agents and Allows for continuous normal megakaryocyte response during therapy treatment. If the deficiency occurs in a particular episode or episodes in which it is desired to increase the proliferation of megakaryocytes or other megakaryocytic cells. Growth factors, which when present between them, provide an enhanced source of growth factors in the bone marrow A gene encoding can be introduced. Various methods provide for the transformation of cells. known for stable extrachromosomal elements or homologs or random integration. provide Viral vectors that cannot be reproduced have been previously described in the literature; This can be used for dyeing, 1-transfection and incorporation. For culture By being able to proliferate megakaryocytic cells in cells, anyone can transform such cells. have the opportunity to do so, and be able to expand and clone the desired transformants. Wear.

次の例は、例示的目的であって、本発明を限定するものではない。The following examples are for illustrative purposes and are not intended to limit the invention.

実−辰 ■土工へバリン含有ウシ胎児骨髄培養物。Fruit - Dragon ■Earthworks Hevalin-containing bovine fetal bone marrow culture.

A、細胞:に265胎児骨髄、2X。A, Cells: 265 fetal bone marrow, 2X.

培地: IMDM+5%Gibco FC3+10−’Mの2−メルカプトエタ ノール。Fe2及び2−メルカプトエタノールは、添加される新鮮な個々の培地 交換体であった。Medium: IMDM + 5% Gibco FC3 + 10-'M 2-mercaptoeta Nord. Fe2 and 2-mercaptoethanol are added to fresh individual media. It was an exchange body.

ヘパリン:Sigma 1781J/ng、原液200mg/d。Heparin: Sigma 1781J/ng, stock solution 200mg/d.

プレート:10011TllのFalconプレート。Plate: 10011Tll Falcon plate.

プレート1:ヘパリンは添加されなかった。Plate 1: No heparin was added.

プレート2:1000μg/iI!1のヘパリンSigma濃度。Plate 2: 1000μg/iI! Heparin Sigma concentration of 1.

両プレートを、はぼ毎日、時おり隔日での10−の培地の除去及び培地及びヘパ リンの添加により管理した。10日目土でに、卓越した細胞形質における著しい 差異が明きであった。その形態を明示する光顕微鏡写真を取った。プレート1は 、プレートからしばしば追い出された大きなボール状細胞を形成する繊維芽細胞 様細胞のシートを有した。プレート2は、種々の形態を有する丸型細胞の集密層 を有した。繊維芽細胞のシートは観察されなかった。Both plates were subjected to 10-day removal of medium and hydration of medium and heparin almost daily, and occasionally every other day. Controlled by the addition of phosphorus. By the 10th day of soil, there was a marked increase in cell quality. The difference was clear. A light micrograph was taken to clearly demonstrate its morphology. Plate 1 is , fibroblasts that form large ball-shaped cells that are often expelled from the plate. It had sheets of similar cells. Plate 2 is a confluent layer of round cells with various morphologies. It had No sheets of fibroblasts were observed.

B、上記研究をくり返した。但し、5%の正常なヒト血漿を、Fe12代わりに 使用した。両プレートにおいて、反核球タイプの細胞を示す卵形状の形態が観察 され、これは、正常なヒト血漿がFe2の代わりに使用され、そしてヘパリンの 効果がFe2に関連していることを示した。B. The above study was repeated. However, 5% normal human plasma was used instead of Fe12. used. Egg-shaped morphology indicative of antikaryocytic type cells was observed on both plates. , in which normal human plasma was used in place of Fe2, and heparin The effect was shown to be related to Fe2.

炎I:胎児骨髄培養物に対する高いヘパリン濃度効果。Inflammation I: High heparin concentration effect on fetal bone marrow cultures.

t : K 266及びに267サンプルを、長軸にそって半分にカントし、コ ラゲナーゼ又はトリプシンと共に37“Cでインキュベートし、そして0.5時 間ごとに3時闇混合し、次に培地により3度洗浄することによって、タンパク質 から剥離した。細胞濃度は2×105/−であった。t: K 266 and 267 samples were canted in half along the long axis, and the Incubate with lagenase or trypsin at 37"C and 0.5 h. Proteins were prepared by mixing in the dark for 3 hours at intervals and then washing three times with medium. It was peeled off from. Cell concentration was 2 x 105/-.

プレート:l100nのFalconプレート。Plate: I100n Falcon plate.

培地: IMDM+5% FC3+10−’Mの2−ME。Medium: IMDM + 5% FC3 + 10-'M 2-ME.

ヘパリン:使用される場合、1000μg/戚(Sigma)を無菌の水に希釈 した。Heparin: if used, 1000 μg/Sigma (Sigma) diluted in sterile water did.

4個のプレートを調製し、ここで2個のプレートはそれぞれに266及びに26 7を含み、他の1対のプレートはヘパリン及び対照を有するプレートを包含する 。Four plates were prepared, two plates each containing 266 and 26 7 and the other pair of plates contains plates with heparin and controls. .

前の実験において観察されるように、ヘパリンを含まないプレートは、10日〜 2週間で、拡張された細長い形状の細胞で過剰増殖した。添加されたヘパリを有 するプレートは、前記で見られる゛卵形状′°の細胞の増殖を示す。これらの培 養物は、はぼQODの培地の変更により前記のようにして管理された。As observed in previous experiments, plates without heparin were In two weeks, it became hyperproliferated with expanded and elongated shaped cells. Contains added heparin The plate shows the ``egg-shaped'' cell proliferation seen above. These cultures Nutrition was controlled as described above by changing the HaboQOD medium.

汎主:巨核球及び繊維芽細胞増殖に対する種々のプレートの効果。General: Effects of different plates on megakaryocyte and fibroblast proliferation.

例1及び2に記載される方法が、細胞調製物に275を用いて使用された。4個 のプレートが調製され、2個のプレートはCorningからのものであり、そ して他の2個のプレートはFalconからのものであり、ここで個々の対プレ ートは、対照及びヘパリン含有培地を包含した。The methods described in Examples 1 and 2 were used with 275 in the cell preparations. 4 pieces plates were prepared, two plates were from Corning; The other two plates are from Falcon, where the individual vs. The samples included control and heparin-containing media.

培養物は、前記と同し手段で管理された。Cultures were managed in the same manner as described above.

Corningの対照プレートは、繊維芽細胞形態を有する付着性細胞の急速な 増殖を示した。7〜10日・以内で、培養物は表面上に過剰増殖され、そして細 胞はプレートから剥離された。しばしば、ボール状のこれらの細胞は、培地に浮 遊することが見出された。培地は、時々の交換にもかかわらず、急速に黄色に変 化した。Corningのヘパリン含有培地においては、混合されたパターンの 増殖が、繊維芽細胞様細胞及び“卵形状”の形態を有する細胞の両者に関して観 察された。繊維芽細胞様細胞の増殖はひじょうに有意に減じられ、そして培養物 の全体の細胞性は対照プレートに比べて減じられた。約2〜3週間で、繊維芽細 胞様細胞は培養物において卓越し、そして卵形状の細胞の数は減じられた。全体 的に、非付着性細胞数は最少であった。Corning's control plates provide rapid growth of adherent cells with fibroblastic morphology. It showed proliferation. Within 7-10 days, the culture is overgrown on the surface and the cells are The cells were detached from the plate. These cells, often ball-shaped, float in the medium. It was found to be playable. The medium turns yellow rapidly despite occasional changes. It became. In Corning's heparin-containing media, a mixed pattern of Proliferation was observed for both fibroblast-like cells and cells with an “ovoid” morphology. It was noticed. The proliferation of fibroblast-like cells was very significantly reduced and the culture The overall cellularity of was reduced compared to control plates. In about 2 to 3 weeks, fibroblasts Anticular cells predominated in the culture and the number of oval shaped cells was reduced. whole Generally speaking, the number of non-adherent cells was minimal.

Falconプレート及び対照プレートにおいては、繊維芽細胞様細胞の急速な 過剰増殖が存在した。これらの細胞は、Corningの対照プレートにおける ほど急速に集密性に達せず、そしてCorningのプレートのいずれにおいて よりも多くの“卵形状”細胞が存在した。これらの細胞は、繊維芽細胞様細胞を 除外するように見える表面上でクラスターを形成する。最後に、ヘパリン含有培 地を含むFalc。In Falcon plates and control plates, rapid growth of fibroblast-like cells Overgrowth was present. These cells were found in Corning's control plates. confluency is not reached as quickly and in any of the Corning plates. There were more "egg-shaped" cells. These cells are fibroblast-like cells Form clusters on surfaces that appear to exclude. Finally, heparin-containing medium Falc including ground.

nプレートにおいて、卵形状細胞の集密性への増殖が、複数核化された細胞の結 果的な形成を伴って観察された。反核球及び間質細胞の付着層が、反核繊維芽細 胞を有する支持コロニーを形成した。In the n-plate, the growth of oval cells to confluence was replaced by clumps of multinucleated cells. observed with fruit formation. The adhesion layer of antikaryocytes and stromal cells is formed by antikaryotic fibroblasts. A supporting colony with cells was formed.

±±:螢光活性化された細胞ソーター走査。±±: Fluorescence-activated cell sorter scanning.

K266及びに267培養物からの細胞を、ピベ、トで静かに吸い取ることによ って集め、それは約105個の細胞/−を含んだ。使用される抗体は、0. I  P B S及び2%FC3中、抗−CD7及び抗−CD42であった。細胞を 氷上で抗体20μ2と共に20分間インキュベートし、そして次にFe2により 洗浄した。1 : 100に希釈されたFITCラヘル化ヤギ抗−マウスIg( 20μl/サンプル)を、氷上で上記混合物と共に20分間インキュベートし、 続いてFe2により細胞を洗浄した。次に、細胞を、FAC3c a n上で分 析した。走査は、ゲートのない標準限界52(任意の単位)であり、そして増幅 は1であった。培養物に266は鋭いピークを示し、ここでCD7ビークはCD 42ビークから実質的に転置された。類似する結果かに267に関して得られた 。Cells from K266 and Ni267 cultures were removed by gently sucking them up with a pipette. were collected and contained approximately 105 cells/-. The antibodies used were 0. I Anti-CD7 and anti-CD42 in PBS and 2% FC3. cells Incubate with antibody 20 μ2 on ice for 20 min and then with Fe2 Washed. 1: FITC Rahelized goat anti-mouse Ig diluted 100 ( 20 μl/sample) was incubated with the above mixture on ice for 20 minutes, Cells were subsequently washed with Fe2. Next, cells were separated on FAC3c an analyzed. The scan is ungated standard limit 52 (arbitrary units) and amplified was 1. 266 showed a sharp peak in the culture, where the CD7 peak was 42 was substantially displaced from Beak. Similar results were obtained for Crab 267. .

比較すれば、対照は、添加されていない抗体上で得られた螢光強度(自己螢光) の有意な上昇を示さなかった。By comparison, the control is the fluorescence intensity obtained on unadded antibody (self-fluorescence). showed no significant increase.

五旦:メチルセルロースアッセイ。Godan: Methylcellulose assay.

次の研究においては、メチルセルロースアッセイを、20%ウシ胎児血清及びそ れぞれ1100n/dのIL−1,−3゜及び−6及びエリトロポエチンを用い て、従来の条件により行なった。完全な骨髄が、種々の接種レベルで使用され、 そして選択された細胞はCD34及びCD41に基づいた。CD34+、CD4 1+は、完全な骨髄集団の0.5〜0.9%であった。In the next study, the methylcellulose assay was performed using 20% fetal bovine serum and Using IL-1, -3° and -6 and erythropoietin at 1100 n/d, respectively. The test was carried out under conventional conditions. Complete bone marrow is used at various inoculum levels; And the selected cells were based on CD34 and CD41. CD34+, CD4 1+ was 0.5-0.9% of the complete bone marrow population.

次の表は、結果を示す: 細胞 細胞 コロニー クラスター WBM CD34 C1)41 濃度 No、 ” /10’± −lXl0” d 0−1−3 − + −1xlO’d 1−2−0 − ± + 1xlo’ d 10−7−19 4−5〜7− − − lX1 0’d 0−0−1− − + lX10’m 0−1−0+ −2xlO’  d 0−1−5 2−3−2〜 + −2xlO’ d 1−2−1 1−1− 1− 十 + 2X10’ d 34−40〜40 9−8−12− − −  2X10’ag Q−0−0ヘ − + 2xlO’ d 0−0−3± −l Xl05d 15−16−15 3−9−7*これらの同型コロニーは50個以 上の細胞を含み5、そしてクラスターは20個以上の細胞を含む。The following table shows the results: cell cell colony cluster WBM CD34 C1) 41 Concentration No,”/10’±-lXl0” d 0-1-3 - + -1xlO'd 1-2-0 - ± + 1xlo' d 10-7-19 4-5~7- - - lX1 0'd 0-0-1- - + lX10'm 0-1-0+ -2xlO' d 0-1-5 2-3-2 ~ + -2xlO' d 1-2-1 1-1- 1-10 + 2X10' d 34-40~40 9-8-12- - - 2X10'ag Q-0-0 - + 2xlO' d 0-0-3± -l Xl05d 15-16-15 3-9-7 *These homotypic colonies are more than 50 5, and the cluster contains 20 or more cells.

コロニーは、形態学的に同定可能な反核球から成った。従って、コロニーは、反 核球に成熟するCD34+、CD41+細胞から低濃度で観察された。さらに、 完全な骨髄が105個の細胞/−の接種度で使用される場合、反核球を供給する 有意な数のコロニーが観察された。さらに、CD34+、CD41+集団は指摘 された因子に対して敏怒であることが見出され、その結果、1つの因子を除去し 、そしてそのような因子を試験組成物と置換するごとによって、だれでも、反核 球の形成に対するそのような試験因子の効果を決定することができる。Colonies consisted of morphologically identifiable antikaryocytes. Therefore, the colony Low concentrations were observed in CD34+ and CD41+ cells maturing into karyocytes. moreover, If complete bone marrow is used at a seeding level of 105 cells/-, it will provide antikaryocytes. A significant number of colonies were observed. Furthermore, the CD34+ and CD41+ populations were was found to be sensitive to the factors identified, and as a result, removing one factor , and by substituting such factors into the test composition, anyone can The effect of such test factors on the formation of spheres can be determined.

五旦:軟膜からの反核球の増殖。Godan: Proliferation of antikaryocytes from the pia mater.

成人からの白血球(軟膜)1単位は、約2×10+1個の白血球を含む。その単 位における赤血球を、トリス−MCIによす緩衝された塩化アンモニウム溶液に おいて37°Cで10分間インキュベーI・することによって破壊した。次に、 白血球を、例Iに記載されるような標準のヘパリン培養条件下で、107個の細 胞/ 10 cmmブレー−,5X10’個の細胞/61プレート又は105個 の細胞/10d、5d又は100μ2の体積でのマイクロタイタープレートにお けるウェルでプレートし、約20個のl0CIプレートが調製され得る。One unit of white blood cells (buffy coat) from an adult contains approximately 2×10+1 white blood cells. That single The red blood cells in the position were placed in a buffered ammonium chloride solution in Tris-MCI. The cells were disrupted by incubation at 37°C for 10 minutes. next, Leukocytes were cultured under standard heparin culture conditions as described in Example I. Cells/10 cm Bras, 5 x 10' cells/61 plates or 105 cells cells/microtiter plate at a volume of 10 d, 5 d or 100 μ2. Approximately 20 10CI plates can be prepared.

例1に記載される態様に従って1%2遇間後、反核球及び前駆体の集密単層を得 る。大部分の他の細胞型はもはや存在しない。元の植え込みが0.1%の反核球 前駆体を含むと仮定する場合、この調製物は、集密性10cm皿が107個の細 胞を含むので、103倍に拡張されたことになる。Obtain a confluent monolayer of antinuclear spheres and precursors after 1% bipolar interval according to the embodiment described in Example 1. Ru. Most other cell types no longer exist. The original implant was 0.1% antikaryon. Assuming that the precursors are included, this preparation will allow a confluent 10 cm dish to contain 107 strips. Since it contains cells, it has been expanded 103 times.

他方、1〜2X107個の新鮮な白血球のアリコートを、lO%DMSO及び2 0%FC3中、液体窒素で凍結することができる。それらのバイアルは、上記の ようにしてヘパリン培養に使用するために後で融解され得る。On the other hand, an aliquot of 1-2X107 fresh white blood cells was added to 10% DMSO and 2 Can be frozen in liquid nitrogen in 0% FC3. Those vials are It can then be thawed for use in heparin culture.

[7: E L X S Aによりsrcタンパク質を測定することによる反核 球アッセイ。[7: Anti-nuclei by measuring src protein by E L X S A Sphere assay.

反核球培養を、96個のウェルブレーI・における8X10’個の細胞により確 立する。個々の増殖因子源を4重反復試験(4個のウェル)で試験する。増殖の 10日後、培地をつエルから除き、そして培養物を一晩空気乾燥せしめる。Antikaryocyte cultures were established with 8 x 10' cells in 96 well plates I. stand up Each growth factor source is tested in quadruplicate (4 wells). of proliferation After 10 days, the medium is removed from the wells and the culture is allowed to air dry overnight.

src ELISAは、細胞をPBS中において5分間再水和化することによっ て行なわれる。src抗体(2〜17)(マウスモノクローナル)を、PBS+ 1%BSA中でに800に希釈する。、40μ℃を個々のウェルに添加し、そし て30分間インキュベー1〜する。ウェルをPBSにより3度洗浄する。第2抗 体、すなわちヤギαマウスIg(アルカリホスファターゼ接合の)(Calt、 ag)を、PBS+1%BSA中で1:250に希釈する。40μlを個々のウ ェルに添加し、そして30分間インキュベートする。ウェルをPBSにヨリ3  度洗浄する。P−ニトロフェニルホスフェートの1錠を、ジエタボラミン緩衝液 (Sigma)51dに溶解し、そして100u4を個々のウェルに添加する。src ELISA was performed by rehydrating cells in PBS for 5 minutes. It is done. src antibody (2-17) (mouse monoclonal) in PBS+ Dilute 800 in 1% BSA. , 40 μC to individual wells, and and incubate for 30 minutes. Wash wells three times with PBS. 2nd anti goat alpha mouse Ig (alkaline phosphatase conjugated) (Calt, ag) 1:250 in PBS+1% BSA. Add 40 μl to each and incubate for 30 minutes. Transfer the well to PBS 3 Wash frequently. One tablet of P-nitrophenyl phosphate was added to dietaboramine buffer. (Sigma) 51d and add 100u4 to individual wells.

プレートを、暗室で30分間静置し、そして405nmで読み取る。The plate is left in the dark for 30 minutes and read at 405 nm.

五主:巨核球増殖因子の単離。Five main points: Isolation of megakaryocyte growth factor.

ヘパリン−セファロースCL−6B (P h a rrna c i a)5 gを、PBS中で膨潤し、最終体積を25−にし、)丈にPBSIJ2により洗 浄した。3人のドナーからのプールされた新鮮なヒト血漿(25d)を、50− の管における膨潤されたビーズに添加し、そして4°Cで一晩混合した。血漿を 除去し、そして濾過したじ消耗された″として言及される)。Heparin-Sepharose CL-6B (P h a rrna c i a) 5 g was swollen in PBS to a final volume of 25-g, and washed lengthwise with PBSIJ2. Purified. Pooled fresh human plasma (25d) from three donors was collected at 50- to the swollen beads in a tube and mixed overnight at 4°C. plasma removed and filtered (referred to as "consumed").

次に、ビーズを、3■/dのヘパリンを含むIMDM25dと共に4 ”Cで5 時間混合した。培地をデカントし、そして濾過した(“溶出液”として言及され る)。The beads were then incubated at 4"C with IMDM25d containing 3"/d of heparin. Mixed for an hour. The medium was decanted and filtered (referred to as “eluate”). ).

次に、ヘパリン培養物を、骨髄又は軟膜のいづれかを用いて、例り及び6に記載 されているようにして調製し、ここで種々の形の血漿; (1)処理なしに使用 される血漿(10%);(2)消耗された血漿;又は(3)消耗された血漿+溶 出液(30%の最終体積)が、例1に記載されるウシ胎児血清の代わりに使用さ れた。srcキナーゼアンセイを、2週間増殖された培養物に対して行なった。Heparin cultures were then grown using either bone marrow or buffy coats as described in Example and 6. plasma in various forms; (1) used without treatment; (10%); (2) depleted plasma; or (3) depleted plasma + lysate. The exudate (30% final volume) was used in place of fetal bovine serum as described in Example 1. It was. A src kinase assay was performed on cultures grown for two weeks.

皿における合計のタンパク質を測定した:SrCバンドにおけるCPMを、ゲル からバンドを切り出し、そしてシンチレーション計数の後に決定した。結果は次 の通りである: 1) I(L−60600,801% 2)FIEL 837 1.1)O13%3))lc、10% 4,860 0 .73 100%P 4) HC,10% 316 0.25 19%HeSε 5) HC,10% 3,090 0.50 93%HeSe+F *FIL−60対照系:骨髄性白血症 HEL ヒト赤白血病系 HCヘパリン培養物 HP ヒト血漿 He S E ヘパリン−セファロースカラムかの消耗された血漿F ヘパリン −セファロースカラムから溶出された反核球増殖因子(溶出液) +培養物#3の%とじて表わされる。The total protein in the dish was measured: CPM in the SrC band was Bands were excised from and determined after scintillation counting. The result is It is as follows: 1) I (L-60600, 801% 2) FIEL 837 1.1) O13% 3)) lc, 10% 4,860 0 .. 73 100%P 4) HC, 10% 316 0.25 19% HeSε 5) HC, 10% 3,090 0.50 93% HeSe+F *FIL-60 control line: myeloid leukemia HEL human erythroleukemia type HC heparin culture HP human plasma He S E Heparin-Sepharose column depleted plasma F Heparin -Anti-karyocyte growth factor eluted from the Sepharose column (eluate) +expressed as % of culture #3.

■工:巨核球増殖因子の精製。■ Engineering: Purification of megakaryocyte growth factor.

ヒト血漿タンパク質(0,65g)を、緩衝液A、(IOIIMのトリス−HC l、pH8,0,0,1iMのEDTA)により調製された5 0sX 150 nlIのDEAE−セロファンカラム上に配置し、そして緩衝液A及び緩衝液A 中、2MのNaC1の線状グラジェントにより溶出した。流速は2M1/分であ り、そして5−の両分を集めた。生物活性は、塩グラジェントによる溶出の間よ り高い塩濃度に又は、主要ピークの下方側に存在することが見出され、その活性 の主要部分は、約1.25〜1.6MのNaC1からの画分に存在した。Human plasma protein (0.65 g) was added to buffer A, (Tris-HC in IOIIM). l, pH 8, 0, 0, 1 iM EDTA) Place on DEAE-cellophane column of nlI and add buffer A and buffer A. It was eluted with a linear gradient of 2M NaCl. The flow rate was 2M1/min. and collected both parts of 5-. Biological activity was determined during salt gradient elution. Its activity is found to be present at higher salt concentrations or below the main peak. The major portion of was present in the fraction from about 1.25-1.6M NaCl.

両分を、4回の反復を伴って、96個のタイターウェルプレートにおいてアッセ イすることができる。両分を、PBSに対して透析する。X−Vivo (Wh ittaker)でアッセイされるべき両分5〜10%及び1■/−のヘパリン を含む培地を、5xio’個の細胞/ウェルにより接種し、そして3日ごとに供 給する。2週間後、細胞を、反核球形態について詳しく調べ、そしてMegac olorにより染色する。Both portions were assayed in 96 titer well plates with 4 replicates. can be done. Both aliquots are dialyzed against PBS. X-Vivo (Wh 5-10% and 1/- heparin to be assayed with were seeded with 5xio' cells/well and fed every 3 days. supply. Two weeks later, cells were examined for antikaryotic morphology and Megac. Stain with olor.

ヒト巨核球を培養により生成するための効果的経済的な方法が提供されたことは 、上記結果から明らかである。従って、連続した血小板源が、処置及び血小板の 機能の研究、並びにそれらの形成のために供給される。また、反核球増殖が研究 され得る。さらに、反核球増殖に関連する因子が供給され、そして他の因子が同 様にして単離され得る。An effective and economical method for producing human megakaryocytes in culture has been provided. , it is clear from the above results. Therefore, a continuous source of platelets is required for treatment and platelet production. Supplied for the study of functions as well as their formation. In addition, antikaryocyte proliferation has been studied. can be done. In addition, factors associated with antikaryocyte proliferation are supplied, and other factors are It can be isolated in several ways.

本明細書に言及されるすべての出版物及び特許出願は、本発明が関与する当業者 のレベルの表示である。すべての出版物及び特許出願は、それぞれ個々の出版物 又は特許出願が特別に且つ個々に引例によりあたかも組込まれているように、引 例により本明細書に組込まれる。All publications and patent applications mentioned herein will be fully acknowledged by those skilled in the art to which this invention pertains. This is an indication of the level of All publications and patent applications are separate publications. or as if the patent application were specifically and individually incorporated by reference. Incorporated herein by way of example.

本発明は、十分に記載されて来たが2.多くの変更及び修飾が本発明の範囲内で 行なわれ得る。Although the invention has been fully described, 2. Many changes and modifications are within the scope of this invention. It can be done.

要 約 書 反核球及び血小板は、繊維芽細胞の形成を妨害しながら、反核球増殖を促進する 条件を用いることによって培養で生成される。特に、ウシ胎児血清と共にヒト血 漿又はヘパリンは、繊維芽細胞支持被膜を欠く容器において反核球形成を支持す ることが見出された。反核球増殖に関連する因子が供給される。Summary book Antikaryocytes and platelets promote antikaryocyte proliferation while interfering with fibroblast formation produced in culture by using conditions. In particular, human blood along with fetal bovine serum Plasma or heparin supports antikaryosphere formation in vessels lacking a fibroblast-supporting coat. It was found that Factors related to antikaryocyte proliferation are supplied.

補正書の翻訳文提出書 (特許法第184条の7第1項) 平成千年6月3日 反核球及び血小板の増殖、生成及び岨盛3 特許出願人 住 所 アメリカ合衆国、カリフォルニア 94303.バロアルト ウェスト  ベイショアー ロード 3400名 称 システミンクス、インコーボレイテ イド5 補正書の提出年月日 1992年3月13日(受理日) 6 添付書類の目録 (1)補正書の翻訳文 1通 れた7の /背2 年3月 /3引二1.ヱD 75¥$ ?□(トオク1ユJ−ンで14 、反核球増殖を支持できる因子であって、血漿に存在し; 少なくとも2週間、血漿において50゛Cで安定し;ヘパリン−セファ0−スに 結合し、そしてヘパリン含有IMDM培地により溶離され得; 反核球増殖を支持し;そして 反核球増殖が前記増殖因子の不在下で減じられることを特徴とする因子。Submission of translation of written amendment (Article 184-7, Paragraph 1 of the Patent Act) June 3, 1998 Antikaryocytes and platelets proliferation, production, and Amori 3 Patent applicant Address: California, USA 94303. Baro Alto West Bayshore Road 3,400 people Name: Systeminx, Inc. Id 5 Date of submission of written amendment March 13, 1992 (reception date) 6 List of attached documents (1) One translation of the written amendment 7 / March 2nd / 3rd edition 1.ヱD 75¥$ ? □(Took 1 Yun J-un for 14 , a factor capable of supporting antikaryocyte proliferation, present in plasma; Stable at 50°C in plasma for at least 2 weeks; binds and can be eluted by heparin-containing IMDM medium; supports antikaryotic proliferation; and A factor characterized in that antikaryocyte proliferation is reduced in the absence of said growth factor.

15、 前記因子がヒI−因子である請求の範囲第14項記載の因子。15. The factor according to claim 14, wherein the factor is a Hi-factor.

16、液体培養で増殖され、そしてCD34及び41を有し、そしてCD14を 欠(細胞のために富化された造血細胞組成物。16, grown in liquid culture and harboring CD34 and 41, and CD14. A hematopoietic cell composition enriched for cells lacking.

17、前記細胞が、CD33を存する細胞のために富化される請求の範囲第16 項記載の細胞組成物。17. Claim 16, wherein said cells are enriched for cells containing CD33. Cell compositions described in Section.

18、液体培養で増殖され、そして反核球増殖を付与する細胞少なくとも50数 %(ここで少なくとも10%の細胞は反核球前駆体細胞である)を含んで成るヒ ト細胞の細胞組成物。18. At least 50 cells grown in liquid culture and conferring antikaryotic proliferation % (wherein at least 10% of the cells are antikaryocyte precursor cells) Cellular composition of cells.

国際調査報告 11.、l 4−6−11* 、 PCテ/US911071.5(+international search report 11. , l 4-6-11* PCTE/US911071.5(+

Claims (15)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.巨核球増殖の生成方法であって、ヒト造血前駆体細胞又はその巨核球前駆体 冨化画分を、ヒト血漿を含んで成る栄養培地において、巨核球増殖支持条件下で 、及び/又は繊維芽細胞増殖阻害条件下で、培養することを含んで成る方法。1. A method for producing megakaryocyte proliferation, the method comprising: human hematopoietic progenitor cells or their megakaryocyte precursors; The enriched fraction was incubated in a nutrient medium comprising human plasma under conditions supporting megakaryocyte proliferation. , and/or culturing under fibroblast proliferation inhibiting conditions. 2.前記培養が被膜支持性繊維芽細胞増殖を欠く容器において存在する請求の範 囲第1項記載の方法。2. Claims wherein said culture is in a container devoid of capsule-supported fibroblast proliferation. The method described in box 1. 3.前記培地がヘパリン及びウシ胎児血清を含んで依る請求の範囲第1項記載の 方法。3. 2. The method according to claim 1, wherein the medium contains heparin and fetal bovine serum. Method. 4.前記栄養培地が約20%までのヒト血漿又はウシ胎児血清を含んで成る請求 の範囲第1項記載の方法。4. A claim wherein said nutrient medium comprises up to about 20% human plasma or fetal bovine serum. The method described in item 1. 5.前記培地が追加の巨核球増殖因子を含んで成る請求の範囲第1項記載の方法 。5. The method of claim 1, wherein the medium comprises additional megakaryocyte growth factor. . 6.前記ヒト造血前駆体細胞が富化されたCD34+,−41+,−14−画分 造血細胞面分である請求の範囲第1項記載の方法。6. CD34+, -41+, -14- fraction enriched with the human hematopoietic precursor cells The method according to claim 1, wherein the method is a hematopoietic cell fraction. 7.CD34及び41を有し、そしてCD14を欠く細胞のために冨化された造 血細胞組成物。7. Enriched structures for cells that have CD34 and 41 and lack CD14 Blood cell composition. 8.前記細胞がCD33を有する細胞のために富化される請求の範囲第7項記載 の細胞組成物。8. Claim 7, wherein said cells are enriched for cells having CD33. Cellular composition of. 9.巨核球増殖に寄与される細胞少なくとも50数%(前記細胞の少なくとも5 0%が巨核球前駆体細胞である)を含んで成るヒト細胞の細胞組成物。9. At least 50% of the cells contributing to megakaryocyte proliferation (at least 5% of the cells) A cell composition of human cells comprising 0% megakaryocyte precursor cells. 10.前記細胞が少なくとも90%の巨核球前駆体細胞である請求の範囲第9項 記載の細胞組成物。10. Claim 9, wherein said cells are at least 90% megakaryocyte precursor cells. Cell compositions as described. 11.血小板以外の細胞少なくとも50重量%が巨核球を付与する前躯体又は巨 核球である、液体培地における細胞組成物。11. At least 50% by weight of cells other than platelets are precursors or megakaryocytes that give rise to megakaryocytes. A composition of cells in liquid medium that are karyocytes. 12.巨核球増殖を調節する因子をアッセイするための方法であって、 血清、対象の因子及びIL−1,−3,−6又はエリトロポエチンである少なく とも1つのシトキンを含んで成る液体又は半固体栄養培地に骨髄細胞又は軟膜か らの白血球を接種し;そして 前記対象の因子の不在下で同じ条件下で増殖する細胞の数に比べて、約5日間以 上増殖する巨核球細胞の数を決定することを含んで成る方法。12. 1. A method for assaying factors that regulate megakaryocyte proliferation, the method comprising: Serum, factors of interest and IL-1, -3, -6 or erythropoietin. Both bone marrow cells or buffy coats are placed in a liquid or semi-solid nutrient medium comprising one cytokin. inoculated with white blood cells; and The number of cells growing under the same conditions in the absence of the factor of interest is approximately 5 days or longer. A method comprising determining the number of superproliferating megakaryocyte cells. 13.細胞集団における巨核球増殖のレベルを決定するための方法であって、 上清液を生成するために前記細胞を溶解し;前記上清液における他のタンパク質 からsrcキナーゼを半離し;そして 前記細胞集団中の巨核球集団の測定としてsrcキナーゼ活性の量を検出するこ とを含んで成る方法。13. 1. A method for determining the level of megakaryocyte proliferation in a cell population, the method comprising: lysing the cells to produce a supernatant; other proteins in the supernatant; semi-releasing the src kinase from; and Detecting the amount of src kinase activity as a measure of the megakaryocyte population in the cell population. A method comprising: 14.巨核球増殖を支持できる因子であって、血漿に存在し; 少なくとも2週間、血漿において50℃で安定し;ヘパリン−セファロースに結 合し、そしてヘパリン含有IMDM培地により溶離され得; 巨核球増殖を支持し;そして 巨核球増殖が前記増殖因子の不在下で減じられることを特徴とする因子。14. A factor that can support megakaryocyte proliferation and is present in plasma; Stable at 50°C in plasma for at least 2 weeks; binds to heparin-Sepharose. combined and eluted with heparin-containing IMDM medium; supports megakaryocyte proliferation; and A factor characterized in that megakaryocyte proliferation is reduced in the absence of said growth factor. 15.前記因子がヒト因子である請求の範囲第14項記載の因子。15. 15. The factor of claim 14, wherein said factor is a human factor.
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