JPH05219950A - アースロバクター・プロトフォーミア（ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ）から入手可能な新規のタイプｉｉ制限エンドヌクレアーゼａｐｏ ｉ及び該エンドヌクレアーゼの製造方法 - Google Patents
アースロバクター・プロトフォーミア（ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ）から入手可能な新規のタイプｉｉ制限エンドヌクレアーゼａｐｏ ｉ及び該エンドヌクレアーゼの製造方法Info
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- JPH05219950A JPH05219950A JP4309473A JP30947392A JPH05219950A JP H05219950 A JPH05219950 A JP H05219950A JP 4309473 A JP4309473 A JP 4309473A JP 30947392 A JP30947392 A JP 30947392A JP H05219950 A JPH05219950 A JP H05219950A
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- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
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- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/10—Transferases (2.)
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈ
ｏｒｍｉａｅから入手可能な新規のタイプII制限エンド
ヌクレアーゼ。 【効果】 Ａｐｏ Ｉとして示すこのエンドヌクレアー
ゼはヌクレオチド配列： 【化１】 を認識し且つ矢印で示した切断箇所を有する。
ｏｒｍｉａｅから入手可能な新規のタイプII制限エンド
ヌクレアーゼ。 【効果】 Ａｐｏ Ｉとして示すこのエンドヌクレアー
ゼはヌクレオチド配列： 【化１】 を認識し且つ矢印で示した切断箇所を有する。
Description
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔ
ｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅから入手可能な新規
のタイプII制限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉ及び該エ
ンドヌクレアーゼを製造する方法に係わる。
ｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅから入手可能な新規
のタイプII制限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉ及び該エ
ンドヌクレアーゼを製造する方法に係わる。
【０００２】
【従来の技術】制限エンドヌクレアーゼは、細菌中に天
然に存在する酵素群である。制限エンドヌクレアーゼ
は、他の夾雑細菌成分から精製すると、実験室において
ＤＮＡ分子を正確なフラグメントに切断するのに使用す
ることができる。この特性によってＤＮＡ分子を固有に
同定し、構成遺伝子に分画化することができる。制限エ
ンドヌクレアーゼは現代遺伝子研究において不可欠なツ
ールであることが立証されている。制限エンドヌクレア
ーゼは、それによって遺伝子工学処理及び分析が実施さ
れる生化学的な“はさみ”である。
然に存在する酵素群である。制限エンドヌクレアーゼ
は、他の夾雑細菌成分から精製すると、実験室において
ＤＮＡ分子を正確なフラグメントに切断するのに使用す
ることができる。この特性によってＤＮＡ分子を固有に
同定し、構成遺伝子に分画化することができる。制限エ
ンドヌクレアーゼは現代遺伝子研究において不可欠なツ
ールであることが立証されている。制限エンドヌクレア
ーゼは、それによって遺伝子工学処理及び分析が実施さ
れる生化学的な“はさみ”である。
【０００３】制限エンドヌクレアーゼは、ＤＮＡ分子に
沿った特定のヌクレオチド配列（“認識配列”）を認識
し、それに結合することにより作用する。一旦結合する
と、制限エンドヌクレアーゼは分子を配列内またはその
片側で切断する。異なる制限エンドヌクレアーゼは異な
る認識配列に親和性を示す。制限エンドヌクレアーゼの
大部分はヌクレオチド４〜６個の長さの配列を認識する
が、最近、７〜８個の固有に特定されるヌクレオチドを
認識する制限エンドヌクレアーゼが幾つか単離された。
ほとんどの認識配列は二元対称軸を含み、ほとんどのケ
ースで全てのヌクレオチドは固有に特定される。しかし
ながら、縮退または緩和特異性を有しており、認識配列
内の１カ所以上にある複数塩基を認識する制限エンドヌ
クレアーゼもあるし、また非対称配列を認識する制限エ
ンドヌクレアーゼもある。配列５’ＧＧＣＣ３’を認識
するＨａｅIIIは、対称の非縮退認識配列を有する制限
エンドヌクレアーゼの例であり、５’（Ｐｕ）ＧＣＧＣ
（Ｐｙ）３’を認識するＨａｅIIは、縮退または緩和認
識配列を有する制限エンドヌクレアーゼの例である。対
称配列を認識するエンドヌクレアーゼは一般に、認識部
位の内部または隣で対称に切断し、非対称配列を認識す
る制限エンドヌクレアーゼは、認識部位から１〜１８ヌ
クレオチド離れたところで切断する傾向にある。これま
でに調査された数千の細菌種において１２５種以上の固
有制限エンドヌクレアーゼが同定されている。
沿った特定のヌクレオチド配列（“認識配列”）を認識
し、それに結合することにより作用する。一旦結合する
と、制限エンドヌクレアーゼは分子を配列内またはその
片側で切断する。異なる制限エンドヌクレアーゼは異な
る認識配列に親和性を示す。制限エンドヌクレアーゼの
大部分はヌクレオチド４〜６個の長さの配列を認識する
が、最近、７〜８個の固有に特定されるヌクレオチドを
認識する制限エンドヌクレアーゼが幾つか単離された。
ほとんどの認識配列は二元対称軸を含み、ほとんどのケ
ースで全てのヌクレオチドは固有に特定される。しかし
ながら、縮退または緩和特異性を有しており、認識配列
内の１カ所以上にある複数塩基を認識する制限エンドヌ
クレアーゼもあるし、また非対称配列を認識する制限エ
ンドヌクレアーゼもある。配列５’ＧＧＣＣ３’を認識
するＨａｅIIIは、対称の非縮退認識配列を有する制限
エンドヌクレアーゼの例であり、５’（Ｐｕ）ＧＣＧＣ
（Ｐｙ）３’を認識するＨａｅIIは、縮退または緩和認
識配列を有する制限エンドヌクレアーゼの例である。対
称配列を認識するエンドヌクレアーゼは一般に、認識部
位の内部または隣で対称に切断し、非対称配列を認識す
る制限エンドヌクレアーゼは、認識部位から１〜１８ヌ
クレオチド離れたところで切断する傾向にある。これま
でに調査された数千の細菌種において１２５種以上の固
有制限エンドヌクレアーゼが同定されている。
【０００４】細菌の種当たりの制限エンドヌクレアーゼ
の数は通常は少数である。エンドヌクレアーゼは、それ
らが誘導された細菌に従って名付けられる。例えば種Ｈ
ａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ａｅｇｙｐｔｉｕｓは、Ｈａｅ
Ｉ、ＨａｅII及びＨａｅIIIと名付けられた３種の制限
エンドヌクレアーゼを合成する。これらの酵素はそれぞ
れ配列（ＡＴ）ＧＧＣＣ（ＡＴ）、ＰｕＧＣＧＣＰｙ及
びＧＧＣＣを認識及び切断する。他方で、Ｅｓｃｈｅｒ
ｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＲＹ１３はただ１種の酵素Ｅｃ
ｏＲＩのみを合成し、この酵素は配列ＧＡＡＴＴＣを認
識する。
の数は通常は少数である。エンドヌクレアーゼは、それ
らが誘導された細菌に従って名付けられる。例えば種Ｈ
ａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ａｅｇｙｐｔｉｕｓは、Ｈａｅ
Ｉ、ＨａｅII及びＨａｅIIIと名付けられた３種の制限
エンドヌクレアーゼを合成する。これらの酵素はそれぞ
れ配列（ＡＴ）ＧＧＣＣ（ＡＴ）、ＰｕＧＣＧＣＰｙ及
びＧＧＣＣを認識及び切断する。他方で、Ｅｓｃｈｅｒ
ｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＲＹ１３はただ１種の酵素Ｅｃ
ｏＲＩのみを合成し、この酵素は配列ＧＡＡＴＴＣを認
識する。
【０００５】理論に制約されるつもりはないが、実際、
制限エンドヌクレアーゼは細菌細胞の安泰において保護
的な役割を果たしていると考えられる。制限エンドヌク
レアーゼがなければ細菌を破壊したりまたはそれらに寄
生するウイルス及びプラスミドのような外来ＤＮＡ分子
による感染に制限エンドヌクレアーゼによって細菌は抵
抗し得る。制限エンドヌクレアーゼは、感染性ＤＮＡ分
子に結合し且つそれらを認識配列が存在する各所で切断
することにより抵抗性を与える。結果的に分解して感染
性遺伝子の多くを不活性化し、ＤＮＡをエキソヌクレア
ーゼによる更なる分解に対して感受性にする。
制限エンドヌクレアーゼは細菌細胞の安泰において保護
的な役割を果たしていると考えられる。制限エンドヌク
レアーゼがなければ細菌を破壊したりまたはそれらに寄
生するウイルス及びプラスミドのような外来ＤＮＡ分子
による感染に制限エンドヌクレアーゼによって細菌は抵
抗し得る。制限エンドヌクレアーゼは、感染性ＤＮＡ分
子に結合し且つそれらを認識配列が存在する各所で切断
することにより抵抗性を与える。結果的に分解して感染
性遺伝子の多くを不活性化し、ＤＮＡをエキソヌクレア
ーゼによる更なる分解に対して感受性にする。
【０００６】細菌保護系の第２の成分は修飾メチラーゼ
である。かかる酵素は制限エンドヌクレアーゼと相補的
であり、細菌が自分のＤＮＡを保護し且つそれを外来の
感染性ＤＮＡと区別し得る手段を与える。修飾メチラー
ゼは、対応する制限エンドヌクレアーゼと同じヌクレオ
チド認識配列を認識し且つそれに結合するが、ＤＮＡを
切断する代わりに、配列内のどこかのヌクレオチドを、
メチル基を付加することにより化学的に修飾する。メチ
ル化されると、認識配列はもはや制限エンドヌクレアー
ゼによって結合も切断もされなくなる。細菌細胞のＤＮ
Ａは、修飾メチラーゼの活性によって常に十分に修飾さ
れており、従って、内在の制限エンドヌクレアーゼの存
在に対しては全く非感受性である。制限エンドヌクレア
ーゼの認識及び攻撃に対して感受性であるのは、未修飾
の、従って同定可能な外来ＤＮＡのみである。
である。かかる酵素は制限エンドヌクレアーゼと相補的
であり、細菌が自分のＤＮＡを保護し且つそれを外来の
感染性ＤＮＡと区別し得る手段を与える。修飾メチラー
ゼは、対応する制限エンドヌクレアーゼと同じヌクレオ
チド認識配列を認識し且つそれに結合するが、ＤＮＡを
切断する代わりに、配列内のどこかのヌクレオチドを、
メチル基を付加することにより化学的に修飾する。メチ
ル化されると、認識配列はもはや制限エンドヌクレアー
ゼによって結合も切断もされなくなる。細菌細胞のＤＮ
Ａは、修飾メチラーゼの活性によって常に十分に修飾さ
れており、従って、内在の制限エンドヌクレアーゼの存
在に対しては全く非感受性である。制限エンドヌクレア
ーゼの認識及び攻撃に対して感受性であるのは、未修飾
の、従って同定可能な外来ＤＮＡのみである。
【０００７】１０００種以上の制限エンドヌクレアーゼ
が細菌株から単離されている。これらのうち、１２５種
以上が固有の配列を認識し、残りは共通の認識特異性を
有する。同じヌクレオチド配列を認識する制限エンドヌ
クレアーゼは“アイソシゾマー”と称されている。アイ
ソシゾマーの認識配列は同じであるが、切断部位〔例え
ばＸｍａＩ ｖ．ＳｍａＩ，Ｅｎｄｏｗ，ｅｔ ａ
ｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１１２：５２１（１９７
７）；Ｗａａｌｗａｉｊｋ，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅ
ｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．５：３２３１（１９７
８）〕及び種々の部位での切断率〔ＸｈｏＩ ｖ．Ｐａ
ｅＲ７Ｉ，Ｇｉｎｇｅｒａｓ，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏ
ｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．８０：
４０２（１９８３）〕については変化し得る。
が細菌株から単離されている。これらのうち、１２５種
以上が固有の配列を認識し、残りは共通の認識特異性を
有する。同じヌクレオチド配列を認識する制限エンドヌ
クレアーゼは“アイソシゾマー”と称されている。アイ
ソシゾマーの認識配列は同じであるが、切断部位〔例え
ばＸｍａＩ ｖ．ＳｍａＩ，Ｅｎｄｏｗ，ｅｔ ａ
ｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１１２：５２１（１９７
７）；Ｗａａｌｗａｉｊｋ，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅ
ｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．５：３２３１（１９７
８）〕及び種々の部位での切断率〔ＸｈｏＩ ｖ．Ｐａ
ｅＲ７Ｉ，Ｇｉｎｇｅｒａｓ，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏ
ｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．８０：
４０２（１９８３）〕については変化し得る。
【０００８】新規のタイプII制限エンドヌクレアーゼは
継続的に必要とされている。多数の特定のヌクレオチド
配列を認識するタイプII制限エンドヌクレアーゼが現在
利用可能であるが、新規の配列を認識する新規の制限エ
ンドヌクレアーゼは遺伝子操作により多大な機会と可能
性を与える。新規の固有エンドヌクレアーゼの各々によ
って、科学者は、これが与える全ての機会を利用してＤ
ＮＡを新たな箇所で正確に切断することができる。
継続的に必要とされている。多数の特定のヌクレオチド
配列を認識するタイプII制限エンドヌクレアーゼが現在
利用可能であるが、新規の配列を認識する新規の制限エ
ンドヌクレアーゼは遺伝子操作により多大な機会と可能
性を与える。新規の固有エンドヌクレアーゼの各々によ
って、科学者は、これが与える全ての機会を利用してＤ
ＮＡを新たな箇所で正確に切断することができる。
【０００９】
【課題を解決するための手段】本発明は、本明細書にお
いては“Ａｐｏ Ｉ”と表記するＡｒｔｈｒｏｂａｃｔ
ｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ ＮＥＢ番号７２３
から入手可能な新規の制限エンドヌクレアーゼを提供
し、このエンドヌクレアーゼは、（１）下記のごとき二
重鎖ＤＮＡ分子中のヌクレオチド配列ＰｕＡＡＴＴＰｙ
を認識し、
いては“Ａｐｏ Ｉ”と表記するＡｒｔｈｒｏｂａｃｔ
ｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ ＮＥＢ番号７２３
から入手可能な新規の制限エンドヌクレアーゼを提供
し、このエンドヌクレアーゼは、（１）下記のごとき二
重鎖ＤＮＡ分子中のヌクレオチド配列ＰｕＡＡＴＴＰｙ
を認識し、
【００１０】
【化２】 〔ここで、Ｐｕはグアニンまたはアデニンを表してお
り、Ｐｙはシトシンまたはチミンを表わしており、Ａは
アデニンを表しており、Ｔはチミンを表している〕 （２）矢印で示したように５’側から１番目と２番目の
塩基の間のホスホジエステル結合において前記配列を切
断して、４つの塩基からなる５’延長部を生成し、
（３）Ａｐｏ Ｉは、次のＤＮＡにおいてかっこ内に示
す数の認識部位を有する：ｐＵＣ１９（１）、ｐＢＲ３
２２（１）、ｐｈｉＸ１７４（７）、Ｍ１３ｍｐ１８
（１１）、Ｔ７（１３）、λ（５８）及びＡｄｅｎｏ２
（２９）。
り、Ｐｙはシトシンまたはチミンを表わしており、Ａは
アデニンを表しており、Ｔはチミンを表している〕 （２）矢印で示したように５’側から１番目と２番目の
塩基の間のホスホジエステル結合において前記配列を切
断して、４つの塩基からなる５’延長部を生成し、
（３）Ａｐｏ Ｉは、次のＤＮＡにおいてかっこ内に示
す数の認識部位を有する：ｐＵＣ１９（１）、ｐＢＲ３
２２（１）、ｐｈｉＸ１７４（７）、Ｍ１３ｍｐ１８
（１１）、Ｔ７（１３）、λ（５８）及びＡｄｅｎｏ２
（２９）。
【００１１】本発明は更に、新規の制限エンドヌクレア
ーゼＡｐｏ Ｉの製造方法にも係わる。１つの方法は、
Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａ
ｅを、Ａｐｏ Ｉを発現させるのに適した条件下で培養
し、培養細胞を回収し、そこから無細胞抽出物を得、制
限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉを無細胞抽出物から単
離及び回収することからなる。もう１つの方法では、Ａ
ｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ
由来のＤＮＡを含むライブラリーを構築し、Ａｐｏ Ｉ
修飾メチラーゼをコードするＤＮＡを含むクローンを単
離し、それらをスクリーニングしてＡｐｏ Ｉ制限エン
ドヌクレアーゼ遺伝子をも含むクローンを同定すること
によって、Ａｐｏ Ｉ Ｒ−Ｍ系をクローン化する。Ａ
ｐｏ ＩエンドヌクレアーゼをコードするＤＮＡを含む
宿主細胞を、Ａｐｏ Ｉを発現させるのに適した条件下
で培養し、培養細胞を回収し、そこから無細胞抽出物を
得、制限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉを無細胞抽出物
から単離及び回収することにより、組換えＡｐｏ Ｉを
得ることもできる。
ーゼＡｐｏ Ｉの製造方法にも係わる。１つの方法は、
Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａ
ｅを、Ａｐｏ Ｉを発現させるのに適した条件下で培養
し、培養細胞を回収し、そこから無細胞抽出物を得、制
限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉを無細胞抽出物から単
離及び回収することからなる。もう１つの方法では、Ａ
ｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ
由来のＤＮＡを含むライブラリーを構築し、Ａｐｏ Ｉ
修飾メチラーゼをコードするＤＮＡを含むクローンを単
離し、それらをスクリーニングしてＡｐｏ Ｉ制限エン
ドヌクレアーゼ遺伝子をも含むクローンを同定すること
によって、Ａｐｏ Ｉ Ｒ−Ｍ系をクローン化する。Ａ
ｐｏ ＩエンドヌクレアーゼをコードするＤＮＡを含む
宿主細胞を、Ａｐｏ Ｉを発現させるのに適した条件下
で培養し、培養細胞を回収し、そこから無細胞抽出物を
得、制限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉを無細胞抽出物
から単離及び回収することにより、組換えＡｐｏ Ｉを
得ることもできる。
【００１２】本発明のエンドヌクレアーゼの認識配列
は、ｐｈｉＸ１７４をＡｐｏ Ｉを用いて完全消化する
ことにより決定した。得られたフラグメントのサイズは
アガロースゲル電気泳動によって決定した。実験で認め
られたフラグメントサイズは、２６８０、１３２５、５
５０、３２０、２２５及び１７０塩基対であった。５’
ＰｕＡＡＴＴＰｙ３’における切断によって生成される
であろうフラグメントのコンピューター計算〔Ｄｅｖｅ
ｒｅａｕｘ Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，（１９８４）ＮＡＲ
１２：３８７−３９５〕による数及びサイズは２６９
０、１２９０、５５４、３２６、２３９、１８５及び１
０２塩基対であり、認められたフラグメントと相関して
いる。認識配列を更に試験するため、他の６種のＤＮＡ
分子をＡｐｏ Ｉを用いて消化し、１．０％アガロース
ゲルを使用して電気泳動した。これらのＤＮＡ分子はｐ
ＵＣ１９、ｐＢＲ３２２、Ｍ１３ｍｐ１８、Ｔ７、λ及
びＡｄｅｎｏ−２であって、それぞれ１、１、１１、１
３、５８及び２９個のＰｕＡＡＴＴＰｙ配列を含んでい
た。得られたＤＮＡフラグメントの実験で認められた数
及びサイズは、５’ＰｕＡＡＴＴＰｙ３’における切断
により生成されるであろうコンピューター推定フラグメ
ントと一致した。このデータから本発明者らは、Ａｐｏ
Ｉは配列５’ＰｕＡＡＴＴＰｙ３’を認識すると結論
付けた。
は、ｐｈｉＸ１７４をＡｐｏ Ｉを用いて完全消化する
ことにより決定した。得られたフラグメントのサイズは
アガロースゲル電気泳動によって決定した。実験で認め
られたフラグメントサイズは、２６８０、１３２５、５
５０、３２０、２２５及び１７０塩基対であった。５’
ＰｕＡＡＴＴＰｙ３’における切断によって生成される
であろうフラグメントのコンピューター計算〔Ｄｅｖｅ
ｒｅａｕｘ Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，（１９８４）ＮＡＲ
１２：３８７−３９５〕による数及びサイズは２６９
０、１２９０、５５４、３２６、２３９、１８５及び１
０２塩基対であり、認められたフラグメントと相関して
いる。認識配列を更に試験するため、他の６種のＤＮＡ
分子をＡｐｏ Ｉを用いて消化し、１．０％アガロース
ゲルを使用して電気泳動した。これらのＤＮＡ分子はｐ
ＵＣ１９、ｐＢＲ３２２、Ｍ１３ｍｐ１８、Ｔ７、λ及
びＡｄｅｎｏ−２であって、それぞれ１、１、１１、１
３、５８及び２９個のＰｕＡＡＴＴＰｙ配列を含んでい
た。得られたＤＮＡフラグメントの実験で認められた数
及びサイズは、５’ＰｕＡＡＴＴＰｙ３’における切断
により生成されるであろうコンピューター推定フラグメ
ントと一致した。このデータから本発明者らは、Ａｐｏ
Ｉは配列５’ＰｕＡＡＴＴＰｙ３’を認識すると結論
付けた。
【００１３】Ａｐｏ Ｉ認識配列内の切断点は、Ａｐｏ
Ｉ切断から得られる末端塩基配列のジデオキシ配列分
析法（ｄｉｄｅｏｘｙ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ａｎａ
ｌｙｓｉｓ）〔Ｓａｎｇｅｒ，Ｆ．ｅｔ ａｌ．，（１
９７７） ＰＮＡＳ ７４：５４６３−５４６７，Ｂｒ
ｏｗｎ，Ｎ．Ｌ．，ｅｔ ａｌ．，（１９８０） Ｊ．
Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１４０：４３−１４８〕によって決
定した。適当なプライマーと一緒にＭ１３ｍｐ１８を鋳
型として使用し、４種の標準的なジデオキシＤＮＡ配列
化反応を実施し、ジデオキシ停止反応を含まない第５反
応はＡｐｏ Ｉ部位を通して伸長した。第５反応は、熱
処理によってクレノウＤＮＡポリメラーゼを不活性化す
ることにより停止させた。Ａｐｏ Ｉを第５反応に加え
た。切断産物は、配列５’ＧＡＡＴＴＣ３’内の５’Ｐ
ｕと一緒に移動する単一バンドをもたらした。Ａｐｏ
Ｉ消化に次いでクレノウを付加すると、最も３’側のＴ
残基と一緒に移動する４ヌクレオチド分だけ長いバンド
をもたらした。これらの結果から、Ａｐｏ Ｉは、矢印
で示したように、両ストランド上で５’から３’の方向
で最初のプリン残基の後ろで認識配列を切断し、５’に
突き出す４つの塩基を対称に作り出す。
Ｉ切断から得られる末端塩基配列のジデオキシ配列分
析法（ｄｉｄｅｏｘｙ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ａｎａ
ｌｙｓｉｓ）〔Ｓａｎｇｅｒ，Ｆ．ｅｔ ａｌ．，（１
９７７） ＰＮＡＳ ７４：５４６３−５４６７，Ｂｒ
ｏｗｎ，Ｎ．Ｌ．，ｅｔ ａｌ．，（１９８０） Ｊ．
Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１４０：４３−１４８〕によって決
定した。適当なプライマーと一緒にＭ１３ｍｐ１８を鋳
型として使用し、４種の標準的なジデオキシＤＮＡ配列
化反応を実施し、ジデオキシ停止反応を含まない第５反
応はＡｐｏ Ｉ部位を通して伸長した。第５反応は、熱
処理によってクレノウＤＮＡポリメラーゼを不活性化す
ることにより停止させた。Ａｐｏ Ｉを第５反応に加え
た。切断産物は、配列５’ＧＡＡＴＴＣ３’内の５’Ｐ
ｕと一緒に移動する単一バンドをもたらした。Ａｐｏ
Ｉ消化に次いでクレノウを付加すると、最も３’側のＴ
残基と一緒に移動する４ヌクレオチド分だけ長いバンド
をもたらした。これらの結果から、Ａｐｏ Ｉは、矢印
で示したように、両ストランド上で５’から３’の方向
で最初のプリン残基の後ろで認識配列を切断し、５’に
突き出す４つの塩基を対称に作り出す。
【００１４】
【化３】 本発明の酵素は更に下記の特性を有する： （ａ）ＮａＣｌ濃度：最適塩濃度は５０ｍＭ ＮａＣｌ
であり、相対活性は、０ｍＭ ＮａＣｌにおいては２５
％、１００ｍＭ ＮａＣｌにおいては５０％であった； （ｂ）温度：活性は、３７℃または６０℃より５０℃に
おいてより高かった； （ｃ）安定性：１ｍｇのλファージを５０℃で１６時間
で完全に切断するのに、０．１３単位（定義は後述す
る）のＡｐｏ Ｉが必要であった。６５℃で２０分間前
処理しても、４０単位のＡｐｏ Ｉを完全に不活性化す
ることはできなかった。
であり、相対活性は、０ｍＭ ＮａＣｌにおいては２５
％、１００ｍＭ ＮａＣｌにおいては５０％であった； （ｂ）温度：活性は、３７℃または６０℃より５０℃に
おいてより高かった； （ｃ）安定性：１ｍｇのλファージを５０℃で１６時間
で完全に切断するのに、０．１３単位（定義は後述す
る）のＡｐｏ Ｉが必要であった。６５℃で２０分間前
処理しても、４０単位のＡｐｏ Ｉを完全に不活性化す
ることはできなかった。
【００１５】本発明によれば、Ａｐｏ Ｉは、Ａｒｔｈ
ｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ株ＮＥ
Ｂ番号７２３を培養し、細胞からエンドヌクレアーゼを
回収することにより得られる。Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅ
ｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ ＮＥＢ番号７２３の
試料は１９９１年８月３０日付けでＡｍｅｒｉｃａｎＴ
ｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎに寄託
されており、寄託番号ＡＴＣＣ５５２２８を有する。
ｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ株ＮＥ
Ｂ番号７２３を培養し、細胞からエンドヌクレアーゼを
回収することにより得られる。Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅ
ｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ ＮＥＢ番号７２３の
試料は１９９１年８月３０日付けでＡｍｅｒｉｃａｎＴ
ｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎに寄託
されており、寄託番号ＡＴＣＣ５５２２８を有する。
【００１６】本発明の酵素を回収するために、Ａ．ｐｒ
ｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅを任意の適当な技術を使用して
増殖させることができる。例えばＡ．ｐｒｏｔｏｐｈｏ
ｒｍｉａｅは、１０ｇ／ｌのトリプトン、５ｇ／ｌの酵
母抽出物、１０ｇ／ｌのＮａＣｌ、１ｇ／ｌのデキスト
ロース、１ｇ／ｌのＭｇＣｌ2・６Ｈ2Ｏ（ｐＨ７．２）
からなる培地中で、振盪及び通気しながら３０℃でイン
キュベートすることにより増殖させ得る。対数増殖後期
の細胞を遠心分離によって回収し、即座に破壊するかま
たは−７０℃で凍結保管する。
ｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅを任意の適当な技術を使用して
増殖させることができる。例えばＡ．ｐｒｏｔｏｐｈｏ
ｒｍｉａｅは、１０ｇ／ｌのトリプトン、５ｇ／ｌの酵
母抽出物、１０ｇ／ｌのＮａＣｌ、１ｇ／ｌのデキスト
ロース、１ｇ／ｌのＭｇＣｌ2・６Ｈ2Ｏ（ｐＨ７．２）
からなる培地中で、振盪及び通気しながら３０℃でイン
キュベートすることにより増殖させ得る。対数増殖後期
の細胞を遠心分離によって回収し、即座に破壊するかま
たは−７０℃で凍結保管する。
【００１７】Ａｐｏ Ｉ酵素はＡ．ｐｒｏｔｏｐｈｏｒ
ｍｉａｅ細胞から次のように単離するのが好ましい。即
ち、細胞ペーストを緩衝液中に懸濁させ、超音波、高圧
分散または酵素消化によって処理して、緩衝液によって
エンドヌクレアーゼを抽出する。次いで無傷の細胞また
は細胞破片を遠心分離によって取り除き、Ａｐｏ Ｉを
含む無細胞抽出物を生成する。次いでＡｐｏ Ｉエンド
ヌクレアーゼを、イオン交換クロマトグラフィー、アフ
ィニティークロマトグラフィー、分子ふるいクロマトグ
ラフィーまたはこれらの方法の組合せによって無細胞抽
出物から精製し、本発明のエンドヌクレアーゼを得る。
ｍｉａｅ細胞から次のように単離するのが好ましい。即
ち、細胞ペーストを緩衝液中に懸濁させ、超音波、高圧
分散または酵素消化によって処理して、緩衝液によって
エンドヌクレアーゼを抽出する。次いで無傷の細胞また
は細胞破片を遠心分離によって取り除き、Ａｐｏ Ｉを
含む無細胞抽出物を生成する。次いでＡｐｏ Ｉエンド
ヌクレアーゼを、イオン交換クロマトグラフィー、アフ
ィニティークロマトグラフィー、分子ふるいクロマトグ
ラフィーまたはこれらの方法の組合せによって無細胞抽
出物から精製し、本発明のエンドヌクレアーゼを得る。
【００１８】本発明の酵素は、この酵素をコードする遺
伝子はＡｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒＰｒｏｔｏｐｈｏｒｍ
ｉａｅゲノムＤＮＡからクローニングされているので、
組換えＤＮＡ技術によって製造することもできる。Ａｐ
ｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ及びメチラーゼ遺伝子の
全コード配列はプラスミドｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６
から誘導することができる。このプラスミドは１９９１
年１０月７日付けでＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕ
ｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）に寄託
されており、ＡＴＣＣ番号７５１１９を有する。
伝子はＡｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒＰｒｏｔｏｐｈｏｒｍ
ｉａｅゲノムＤＮＡからクローニングされているので、
組換えＤＮＡ技術によって製造することもできる。Ａｐ
ｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ及びメチラーゼ遺伝子の
全コード配列はプラスミドｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６
から誘導することができる。このプラスミドは１９９１
年１０月７日付けでＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕ
ｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）に寄託
されており、ＡＴＣＣ番号７５１１９を有する。
【００１９】本発明は、Ａｐｏ Ｉ制限遺伝子及び修飾
遺伝子のクローン並びにかかるクローンから産生される
制限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉにも係わる。Ａｐｏ
Ｉ遺伝子は、Ａｐｏ Ｉ修飾またはメチラーゼ遺伝子
を含み且つそれを発現することを基準に選択された所定
のクローンがＡｐｏ Ｉ制限遺伝子をも含むことを利用
する方法によってクローン化される。このようなクロー
ンのＤＮＡは、ｉｎｖｉｔｒｏでＡｐｏ Ｉ制限エンド
ヌクレアーゼによる消化に耐性を示す。この消化耐性に
よって、Ａｐｏ Ｉメチラーゼ及び制限エンドヌクレア
ーゼをコードするクローンを選択的に単離する手段が得
られる。
遺伝子のクローン並びにかかるクローンから産生される
制限エンドヌクレアーゼＡｐｏ Ｉにも係わる。Ａｐｏ
Ｉ遺伝子は、Ａｐｏ Ｉ修飾またはメチラーゼ遺伝子
を含み且つそれを発現することを基準に選択された所定
のクローンがＡｐｏ Ｉ制限遺伝子をも含むことを利用
する方法によってクローン化される。このようなクロー
ンのＤＮＡは、ｉｎｖｉｔｒｏでＡｐｏ Ｉ制限エンド
ヌクレアーゼによる消化に耐性を示す。この消化耐性に
よって、Ａｐｏ Ｉメチラーゼ及び制限エンドヌクレア
ーゼをコードするクローンを選択的に単離する手段が得
られる。
【００２０】実用化するのに好ましい本発明の実現態様
を説明するために以下の実施例を与える。実施例は説明
のためのものであり、本発明は、特許請求の範囲に記載
の事項のほかには制限されないことを理解されたい。
を説明するために以下の実施例を与える。実施例は説明
のためのものであり、本発明は、特許請求の範囲に記載
の事項のほかには制限されないことを理解されたい。
【００２１】
【実施例】実施例１ Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａ
ｅ からのＡｐｏ Ｉの精製Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａ
ｅ 株ＮＥＢ番号７２３を、１０ｇ／ｌのトリプトン、５
ｇ／ｌの酵母抽出物、５ｇ／ｌのＮａＣｌからなる培地
（ｐＨ７．２に調整したもの）中で増殖させた。細胞
を、通気及び振盪しながら３０℃で対数増殖後期までイ
ンキュベートした。細胞を遠心分離によって回収し、得
られた細胞ペーストを−７０℃で凍結保存した。
ｅ からのＡｐｏ Ｉの精製Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａ
ｅ 株ＮＥＢ番号７２３を、１０ｇ／ｌのトリプトン、５
ｇ／ｌの酵母抽出物、５ｇ／ｌのＮａＣｌからなる培地
（ｐＨ７．２に調整したもの）中で増殖させた。細胞
を、通気及び振盪しながら３０℃で対数増殖後期までイ
ンキュベートした。細胞を遠心分離によって回収し、得
られた細胞ペーストを−７０℃で凍結保存した。
【００２２】上記で得られた細胞ペースト２６２ｇを溶
かし、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整した３培量の緩衝液
Ａ（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，０．１ｍＭ ＥＤＴ
Ａ，６ｍＭ ２−メルカプトエタノール，５％グリセロ
ール，ｐＨ８．０）中に懸濁させた。細胞懸濁液をＧａ
ｕｌｉｎプレスに１２，０００ＰＳＩで６回通した。細
胞１ｇ当たり約３１ｍｇのタンパク質が遊離した。溶解
物を４℃で４０分間遠心した。上清はｐＨ７．３で９０
０ｍｌあった。砕片重量は１６０ｇであった。上清は
７，２００，０００単位のＡｐｏ Ｉを含んでいた。
かし、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整した３培量の緩衝液
Ａ（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，０．１ｍＭ ＥＤＴ
Ａ，６ｍＭ ２−メルカプトエタノール，５％グリセロ
ール，ｐＨ８．０）中に懸濁させた。細胞懸濁液をＧａ
ｕｌｉｎプレスに１２，０００ＰＳＩで６回通した。細
胞１ｇ当たり約３１ｍｇのタンパク質が遊離した。溶解
物を４℃で４０分間遠心した。上清はｐＨ７．３で９０
０ｍｌあった。砕片重量は１６０ｇであった。上清は
７，２００，０００単位のＡｐｏ Ｉを含んでいた。
【００２３】上清液を、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整し
た緩衝液Ａで平衡化しておいた３５３ｍｌのＤＥＡＥ−
セファロースカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）に添加し
た。流出液はバッチ回収した。カラムを、１００ｍＭ
ＮａＣｌに調整した緩衝液Ａ４００ｍｌで洗浄した。流
出液及び洗浄液を合わせた。合わせたＤＥＡＥ流出液及
び洗浄液プールは１３００ｍｌ中に２，６００，０００
単位のＡｐｏ Ｉを含んでいた。ＤＥＡＥカラムを、２
リットルの緩衝液Ａ中１００ｍＭ〜７００ｍＭＮａＣｌ
直線濃度勾配を用いて溶出した。追加Ａｐｏ Ｉ活性は
勾配の３４〜４１％に溶出した。１，６００，０００単
位のＡｐｏ Ｉ活性を含む２００ｍｌをプールし、１０
０ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ａで透析した。
た緩衝液Ａで平衡化しておいた３５３ｍｌのＤＥＡＥ−
セファロースカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）に添加し
た。流出液はバッチ回収した。カラムを、１００ｍＭ
ＮａＣｌに調整した緩衝液Ａ４００ｍｌで洗浄した。流
出液及び洗浄液を合わせた。合わせたＤＥＡＥ流出液及
び洗浄液プールは１３００ｍｌ中に２，６００，０００
単位のＡｐｏ Ｉを含んでいた。ＤＥＡＥカラムを、２
リットルの緩衝液Ａ中１００ｍＭ〜７００ｍＭＮａＣｌ
直線濃度勾配を用いて溶出した。追加Ａｐｏ Ｉ活性は
勾配の３４〜４１％に溶出した。１，６００，０００単
位のＡｐｏ Ｉ活性を含む２００ｍｌをプールし、１０
０ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ａで透析した。
【００２４】ＤＥＡＥ流出液及び洗浄液プールを、１０
０ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ａで平衡化しておい
た５９ｍｌのヘパリン−セファロースカラムに添加し
た。カラムを、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整した３００
ｍｌの緩衝液Ａを用いて洗浄した。酵素を、６００ｍｌ
の緩衝液Ａ中１００ｍＭ〜１Ｍ ＮａＣｌ直線濃度勾配
を用いて溶出させた。フラクションのＡｐｏ Ｉ及びエ
キソヌクレアーゼ活性について試験した。Ａｐｏ Ｉ活
性は勾配の５６〜６８％に溶出した。エキソヌクレアー
ゼ活性の大部分は勾配の０〜５８％に溶出した。ＤＥＡ
Ｅカラムに結合したプールを上述のごとく添加し、洗浄
し、ヘパリン−セファロースカラムから溶出させた。両
ヘパリン−セファロースカラム精製から得たＡｐｏ Ｉ
活性を含む画分をプールし、１００ｍＭ ＮａＣｌに調
整した緩衝液Ｂ（２０ｍＭ ＫＰＯ4，６ｍＭ ２−メ
ルカプトエタノール，０．１ｍＭ ＥＤＴＡ，５％グリ
セロール，ｐＨ６．７）で透析した。
０ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ａで平衡化しておい
た５９ｍｌのヘパリン−セファロースカラムに添加し
た。カラムを、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整した３００
ｍｌの緩衝液Ａを用いて洗浄した。酵素を、６００ｍｌ
の緩衝液Ａ中１００ｍＭ〜１Ｍ ＮａＣｌ直線濃度勾配
を用いて溶出させた。フラクションのＡｐｏ Ｉ及びエ
キソヌクレアーゼ活性について試験した。Ａｐｏ Ｉ活
性は勾配の５６〜６８％に溶出した。エキソヌクレアー
ゼ活性の大部分は勾配の０〜５８％に溶出した。ＤＥＡ
Ｅカラムに結合したプールを上述のごとく添加し、洗浄
し、ヘパリン−セファロースカラムから溶出させた。両
ヘパリン−セファロースカラム精製から得たＡｐｏ Ｉ
活性を含む画分をプールし、１００ｍＭ ＮａＣｌに調
整した緩衝液Ｂ（２０ｍＭ ＫＰＯ4，６ｍＭ ２−メ
ルカプトエタノール，０．１ｍＭ ＥＤＴＡ，５％グリ
セロール，ｐＨ６．７）で透析した。
【００２５】２００ｍｇのタンパク質を含む２００ｍｌ
の透析物を、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｂ
で平衡化しておいた１７ｍｌのＷｈａｔｍａｎホスホセ
ルロースカラムに添加した。カラムを、１００ｍＭ Ｎ
ａＣｌに調整した１００ｍｌの緩衝液Ｂで洗浄した。酵
素を、２００ｍｌの緩衝液Ｂ中１００ｍＭ〜１Ｍ Ｎａ
Ｃｌ直線濃度勾配を用いて溶出した。Ａｐｏ Ｉ活性は
勾配の３８〜５３％に溶出した。５０ｍｌ中に３，２０
０，０００単位のＡｐｏ Ｉを含むホスホセルロースプ
ールを、５０ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｃ（２０
ｍＭ ＫＰＯ4，６ｍＭ ２−メルカプトエタノール，
０．１ｍＭ ＥＤＴＡ，５％グリセロール，ｐＨ６．
３）で透析した。エキソヌクレアーゼ活性の大部分は勾
配の約３５％に溶出した。
の透析物を、１００ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｂ
で平衡化しておいた１７ｍｌのＷｈａｔｍａｎホスホセ
ルロースカラムに添加した。カラムを、１００ｍＭ Ｎ
ａＣｌに調整した１００ｍｌの緩衝液Ｂで洗浄した。酵
素を、２００ｍｌの緩衝液Ｂ中１００ｍＭ〜１Ｍ Ｎａ
Ｃｌ直線濃度勾配を用いて溶出した。Ａｐｏ Ｉ活性は
勾配の３８〜５３％に溶出した。５０ｍｌ中に３，２０
０，０００単位のＡｐｏ Ｉを含むホスホセルロースプ
ールを、５０ｍＭ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｃ（２０
ｍＭ ＫＰＯ4，６ｍＭ ２−メルカプトエタノール，
０．１ｍＭ ＥＤＴＡ，５％グリセロール，ｐＨ６．
３）で透析した。エキソヌクレアーゼ活性の大部分は勾
配の約３５％に溶出した。
【００２６】１００ｍｇのタンパク質を含む透析物を３
つの等量のアリコートに分け、３つの別個の７．５ＭＭ
ＩＤ ＴＳＫ−ＧＥＬ ヘパリン−５ＰＷ（ＴｏｓｏＨ
ａａｓ）カラムに添加した。これらのカラムは、５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｃで平衡化しておいた。
タンパク質溶液は、７０ｍｌの緩衝液Ｃ中の５０ｍＭ〜
０．７Ｍ ＮａＣｌ直線濃度勾配を用いて溶出させた。
Ａｐｏ Ｉ活性は０．６Ｍ ＮａＣｌに溶出した。エキ
ソヌクレアーゼ活性の大部分は０．４３Ｍ ＮａＣｌに
溶出した。３つのカラム実験から集めた４ｍｌのＡｐｏ
Ｉは１，６００，０００単位を含んでいた。このプー
ルを緩衝液Ｂで５０ｍＭ ＮａＣｌに希釈した。
つの等量のアリコートに分け、３つの別個の７．５ＭＭ
ＩＤ ＴＳＫ−ＧＥＬ ヘパリン−５ＰＷ（ＴｏｓｏＨ
ａａｓ）カラムに添加した。これらのカラムは、５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｃで平衡化しておいた。
タンパク質溶液は、７０ｍｌの緩衝液Ｃ中の５０ｍＭ〜
０．７Ｍ ＮａＣｌ直線濃度勾配を用いて溶出させた。
Ａｐｏ Ｉ活性は０．６Ｍ ＮａＣｌに溶出した。エキ
ソヌクレアーゼ活性の大部分は０．４３Ｍ ＮａＣｌに
溶出した。３つのカラム実験から集めた４ｍｌのＡｐｏ
Ｉは１，６００，０００単位を含んでいた。このプー
ルを緩衝液Ｂで５０ｍＭ ＮａＣｌに希釈した。
【００２７】希釈したヘパリン−５ＰＷを、５０ｍＭ
ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｂで平衡化しておいたＷＣＸ
７μｍ ＨＰＬＣカラム（Ｃｕｓｔｏｍ ＬＣ，Ｉｎ
ｃ）に添加した。タンパク質溶液を、５０ｍｌの緩衝液
Ｂ中５０ｍＭ〜０．６Ｍ ＮａＣｌ直線濃度勾配を用い
て溶出させた。Ａｐｏ Ｉ活性は０．４２Ｍ ＮａＣｌ
に溶出した。Ａｐｏ Ｉ活性をプールし、夾雑ＤＮＡ結
合タンパク質、エキソヌクレアーゼ及びエンドヌクレア
ーゼを実質的に含まないことが判った。安定剤としてウ
シ血清アルブミンを終濃度２００μｇ／ｍｌまで加え、
Ａｐｏ Ｉを保存緩衝液（５０ｍＭ ＮａＣｌ，２０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，０．１ｍＭ ＥＤＴＡ，１．０
ｍＭ ジチオトレイトール，５０％グリセロール，ｐＨ
７．５）に対して透析した。この最終的なＡｐｏ Ｉは
実質的に純粋であり、１，５００，０００単位を含んで
おり、２０％の回収率であった。
ＮａＣｌに調整した緩衝液Ｂで平衡化しておいたＷＣＸ
７μｍ ＨＰＬＣカラム（Ｃｕｓｔｏｍ ＬＣ，Ｉｎ
ｃ）に添加した。タンパク質溶液を、５０ｍｌの緩衝液
Ｂ中５０ｍＭ〜０．６Ｍ ＮａＣｌ直線濃度勾配を用い
て溶出させた。Ａｐｏ Ｉ活性は０．４２Ｍ ＮａＣｌ
に溶出した。Ａｐｏ Ｉ活性をプールし、夾雑ＤＮＡ結
合タンパク質、エキソヌクレアーゼ及びエンドヌクレア
ーゼを実質的に含まないことが判った。安定剤としてウ
シ血清アルブミンを終濃度２００μｇ／ｍｌまで加え、
Ａｐｏ Ｉを保存緩衝液（５０ｍＭ ＮａＣｌ，２０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，０．１ｍＭ ＥＤＴＡ，１．０
ｍＭ ジチオトレイトール，５０％グリセロール，ｐＨ
７．５）に対して透析した。この最終的なＡｐｏ Ｉは
実質的に純粋であり、１，５００，０００単位を含んで
おり、２０％の回収率であった。
【００２８】活性評価 Ａｐｏ Ｉ活性： アッセイすべき画分の試料１μｌ
を、１００μｇ／ｍｌのウシ血清アルブミンを補充した
２５μｌの基質反応緩衝液（０．５μｇのλファージＤ
ＮＡを含む、５０ｍＭ ＮａＣｌ，１０ｍＭ Ｔｒｉｓ
−ＨＣｌ，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，１ｍＭ ジチオトレ
オトール，ｐＨ７．９）に加えた。酵素反応物を５０℃
で５〜３０分間の表記した時間だけインキュベートし
た。７．０μｌの停止溶液（５０％グリセロール，５０
ｍＭ ＥＤＴＡ ｐＨ８．０，及び０．０２％ブロモフ
ェノールブルー）を加えることにより反応を停止させ
た。反応混合物を１．０％アガロースゲルに添加し、電
気泳動した。得られたバンドを標準ＤＮＡ長と比較して
同定した。
を、１００μｇ／ｍｌのウシ血清アルブミンを補充した
２５μｌの基質反応緩衝液（０．５μｇのλファージＤ
ＮＡを含む、５０ｍＭ ＮａＣｌ，１０ｍＭ Ｔｒｉｓ
−ＨＣｌ，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，１ｍＭ ジチオトレ
オトール，ｐＨ７．９）に加えた。酵素反応物を５０℃
で５〜３０分間の表記した時間だけインキュベートし
た。７．０μｌの停止溶液（５０％グリセロール，５０
ｍＭ ＥＤＴＡ ｐＨ８．０，及び０．０２％ブロモフ
ェノールブルー）を加えることにより反応を停止させ
た。反応混合物を１．０％アガロースゲルに添加し、電
気泳動した。得られたバンドを標準ＤＮＡ長と比較して
同定した。
【００２９】エキソヌクレアーゼ活性： ５μｌのタン
パク質溶液試料を、１００μｇ／ｍｌのウシ血清アルブ
ミンを補充した５０μｌの緩衝液（２５μｇ／ｍｌの3
ＨＤＮＡを含む、５０ｍＭ ＮａＣｌ，１０ｍＭ Ｔｒ
ｉｓ−ＨＣｌ，１０ｍＭＭｇＣｌ2，１ｍＭ ジチオト
レイトール，ｐＨ７．９）に加えた。酵素反応物を５０
℃で１〜４時間の表記した時間だけインキュベートし
た。
パク質溶液試料を、１００μｇ／ｍｌのウシ血清アルブ
ミンを補充した５０μｌの緩衝液（２５μｇ／ｍｌの3
ＨＤＮＡを含む、５０ｍＭ ＮａＣｌ，１０ｍＭ Ｔｒ
ｉｓ−ＨＣｌ，１０ｍＭＭｇＣｌ2，１ｍＭ ジチオト
レイトール，ｐＨ７．９）に加えた。酵素反応物を５０
℃で１〜４時間の表記した時間だけインキュベートし
た。
【００３０】単位の定義： １単位のＡｐｏ Ｉは１μ
ｇのλファージＤＮＡを５０℃、１時間で完全に切断す
る。
ｇのλファージＤＮＡを５０℃、１時間で完全に切断す
る。
【００３１】最適緩衝液条件： 最適Ａｐｏ Ｉ活性に
対して次の緩衝液を使用した：１００μｇ／ｍｌのウシ
血清アルブミンを補充した、０．５μｇのλファージＤ
ＮＡを含む５０ｍＭ ＮａＣｌ，１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−
ＨＣｌ，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，１ｍＭ ジチオトレイ
トール，ｐＨ７．９。
対して次の緩衝液を使用した：１００μｇ／ｍｌのウシ
血清アルブミンを補充した、０．５μｇのλファージＤ
ＮＡを含む５０ｍＭ ＮａＣｌ，１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−
ＨＣｌ，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，１ｍＭ ジチオトレイ
トール，ｐＨ７．９。
【００３２】実施例II Ａｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ及びメチラーゼ遺伝
子のクローニング １．ＤＮＡ精製： Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏ
ｔｏｐｈｏｒｍｉａｅのＤＮＡを調製するため、５ｇの
細胞ペーストを、１０ｍｌの２５％スクロース，５０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８．０中に懸濁させ、５ｍ
ｌの０．２５ＭＥＤＴＡ ｐＨ８．０と、３ｍｌの０．
２５Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０中の１０ｍｇ／ｍｌリゾ
チームとを加えた。懸濁液を氷上に１時間維持し、１２
ｍｌの１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００，５０ｍＭ Ｔ
ｒｉｓ ｐＨ８．０，６７ｍＭＥＤＴＡを溶液に加え、
２時間３７℃に維持した。細胞溶解は不完全であり、Ｄ
ＮＡ溶液を６４時間４℃に維持した。ＳＤＳを０．１％
まで加え、溶液を３０ｍｌのフェノールで抽出し、（予
め０．５Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０を用いて平衡化して
おき）、３０ｍｌのクロロホルムで抽出した。エマルジ
ョンを１５，０００ｒｐｍで１０分間遠心して固体砕片
を除去した。清澄上清を透析チューブに入れ、ＤＮＡ緩
衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０，１ｍＭ ＥＤ
ＴＡ ｐＨ８．０）を４回替えて透析した。透析した溶
液を、終濃度１００ｍｇ／ｍｌのＲＮａｓｅを用いて３
７℃で１時間消化した。次いで５Ｍ ＮａＣｌを終濃度
０．４Ｍまで加え且つ０．５５容量のイソプロピルアル
コールを加えることによりＤＮＡを沈澱させた。沈澱し
たＤＮＡをガラス棒上に巻き付け、空気乾燥し、次いで
ＤＮＡ緩衝液中に終濃度約１００μｇ／ｍｌまで再溶解
し、４℃で保管した。
子のクローニング １．ＤＮＡ精製： Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏ
ｔｏｐｈｏｒｍｉａｅのＤＮＡを調製するため、５ｇの
細胞ペーストを、１０ｍｌの２５％スクロース，５０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８．０中に懸濁させ、５ｍ
ｌの０．２５ＭＥＤＴＡ ｐＨ８．０と、３ｍｌの０．
２５Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０中の１０ｍｇ／ｍｌリゾ
チームとを加えた。懸濁液を氷上に１時間維持し、１２
ｍｌの１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００，５０ｍＭ Ｔ
ｒｉｓ ｐＨ８．０，６７ｍＭＥＤＴＡを溶液に加え、
２時間３７℃に維持した。細胞溶解は不完全であり、Ｄ
ＮＡ溶液を６４時間４℃に維持した。ＳＤＳを０．１％
まで加え、溶液を３０ｍｌのフェノールで抽出し、（予
め０．５Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０を用いて平衡化して
おき）、３０ｍｌのクロロホルムで抽出した。エマルジ
ョンを１５，０００ｒｐｍで１０分間遠心して固体砕片
を除去した。清澄上清を透析チューブに入れ、ＤＮＡ緩
衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０，１ｍＭ ＥＤ
ＴＡ ｐＨ８．０）を４回替えて透析した。透析した溶
液を、終濃度１００ｍｇ／ｍｌのＲＮａｓｅを用いて３
７℃で１時間消化した。次いで５Ｍ ＮａＣｌを終濃度
０．４Ｍまで加え且つ０．５５容量のイソプロピルアル
コールを加えることによりＤＮＡを沈澱させた。沈澱し
たＤＮＡをガラス棒上に巻き付け、空気乾燥し、次いで
ＤＮＡ緩衝液中に終濃度約１００μｇ／ｍｌまで再溶解
し、４℃で保管した。
【００３３】２．部分消化： 以下のように精製ＤＮＡ
をＢｇｌIIを用いて切断して部分消化した：５０ｍＭ
Ｔｒｉｓ ｐＨ７．９，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，１００
ｍＭＮａＣｌ及び１ｍＭ ＤＴＴ中にＤＮＡを５０μｇ
／ｍｌで含む溶液０．４５ｍｌを１つの１００μｌアリ
コートと７つの５０μｌアリコートとに分けた。１００
μｌ試験管に４０単位のＢｇｌIIを入れ、ＤＮＡ１μｇ
当たり８．０単位の酵素を与えた。第１の試験管から５
０μｌを取り出して第２の試験管に移し、４単位Ｂｇｌ
II／μｇし、同様にして次の試験管には一つ前の試験管
の半分の量のＢｇｌIIを与えた。試験管を３７℃で１時
間インキュベートし、次いで７２℃で１０分間熱処理
し、それぞれから１０μｌずつ採取してアガロースゲル
電気泳動によって分析した。中程度の、不完全な消化を
示す試験管を、完全な消化を示す試験とは別々に、クロ
ーニング源としてプールした。
をＢｇｌIIを用いて切断して部分消化した：５０ｍＭ
Ｔｒｉｓ ｐＨ７．９，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，１００
ｍＭＮａＣｌ及び１ｍＭ ＤＴＴ中にＤＮＡを５０μｇ
／ｍｌで含む溶液０．４５ｍｌを１つの１００μｌアリ
コートと７つの５０μｌアリコートとに分けた。１００
μｌ試験管に４０単位のＢｇｌIIを入れ、ＤＮＡ１μｇ
当たり８．０単位の酵素を与えた。第１の試験管から５
０μｌを取り出して第２の試験管に移し、４単位Ｂｇｌ
II／μｇし、同様にして次の試験管には一つ前の試験管
の半分の量のＢｇｌIIを与えた。試験管を３７℃で１時
間インキュベートし、次いで７２℃で１０分間熱処理
し、それぞれから１０μｌずつ採取してアガロースゲル
電気泳動によって分析した。中程度の、不完全な消化を
示す試験管を、完全な消化を示す試験とは別々に、クロ
ーニング源としてプールした。
【００３４】３．連結： フラグメント化したＤＮＡを
ｐＢＲ３２２に以下のように連結した：２．０μｇのＢ
ｇｌII完全または部分消化Ａ．ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉ
ａｅＤＮＡ（４０μｌ）を１．０μｇのＢａｍＨＩ切断
及び脱リン酸化ｐＢＲ３２２（１０μｌ）と混合した。
１０μｌの１０倍濃連結ミックス（５００ｍＭ Ｔｒｉ
ｓ，ｐＨ７．８，１００ｍＭ ＭｇＣｌ2，２００ｍＭ
ＤＴＴ，１０ｍＭＡＴＰ，５００ｍｇ／ｍｌ ウシ血
清アルブミン）を加え、更に４４μｌの無菌蒸留水を終
容積１００μｌまで加えた。３．７５μｌのＴ４ ＤＮ
Ａリガーゼを加え、混合物を１７℃で一晩インキュベー
トし、次いで１０μｌのクロロホルムを加えることによ
り殺菌した。ＢｇｌII完全及び部分消化プールの各々か
ら得た約３２μｌの連結ＤＮＡを使用してＥ．ｃｏｌｉ
株ＲＲ１を次のように形質転換した：６４μｌのＤＮＡ
（３２μｌのＢｇｌII完全連結プール＋３２μｌのＢｇ
ｌII部分連結プール）を０．５ｍｌのＳＳＣ／ＣａＣｌ
2（５０ｍＭ ＮａＣｌ，５ｍＭ クエン酸ナトリウ
ム，６７ｍＭ ＣａＣｌ2）と氷上で混合し、１．０ｍ
ｌの氷冷コンピテントＥ．ｃｏｌｉ ＲＲ１（ｈｓｄ
Ｒ-Ｍ-，ＡＴＣＣ番号３１３４３）細胞を加えた。４３
℃で６分間インキュベートした後、８ｍｌのＬｕｒｉａ
ブロス（Ｌブロス）を加えることにより細胞を希釈し、
３７℃で４時間インキュベートした。
ｐＢＲ３２２に以下のように連結した：２．０μｇのＢ
ｇｌII完全または部分消化Ａ．ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉ
ａｅＤＮＡ（４０μｌ）を１．０μｇのＢａｍＨＩ切断
及び脱リン酸化ｐＢＲ３２２（１０μｌ）と混合した。
１０μｌの１０倍濃連結ミックス（５００ｍＭ Ｔｒｉ
ｓ，ｐＨ７．８，１００ｍＭ ＭｇＣｌ2，２００ｍＭ
ＤＴＴ，１０ｍＭＡＴＰ，５００ｍｇ／ｍｌ ウシ血
清アルブミン）を加え、更に４４μｌの無菌蒸留水を終
容積１００μｌまで加えた。３．７５μｌのＴ４ ＤＮ
Ａリガーゼを加え、混合物を１７℃で一晩インキュベー
トし、次いで１０μｌのクロロホルムを加えることによ
り殺菌した。ＢｇｌII完全及び部分消化プールの各々か
ら得た約３２μｌの連結ＤＮＡを使用してＥ．ｃｏｌｉ
株ＲＲ１を次のように形質転換した：６４μｌのＤＮＡ
（３２μｌのＢｇｌII完全連結プール＋３２μｌのＢｇ
ｌII部分連結プール）を０．５ｍｌのＳＳＣ／ＣａＣｌ
2（５０ｍＭ ＮａＣｌ，５ｍＭ クエン酸ナトリウ
ム，６７ｍＭ ＣａＣｌ2）と氷上で混合し、１．０ｍ
ｌの氷冷コンピテントＥ．ｃｏｌｉ ＲＲ１（ｈｓｄ
Ｒ-Ｍ-，ＡＴＣＣ番号３１３４３）細胞を加えた。４３
℃で６分間インキュベートした後、８ｍｌのＬｕｒｉａ
ブロス（Ｌブロス）を加えることにより細胞を希釈し、
３７℃で４時間インキュベートした。
【００３５】４．一次細胞ライブラリー： 形質転換細
胞培養液を軽く遠心し、上清は捨て、細胞を１．０ｍｌ
のＬブロス中に再懸濁させた。２００μｌ分を、１００
μｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬｕｒｉａ寒天（Ｌ寒
天）プレート上に塗り付けた。３７℃で一晩インキュベ
ートした後、各プレートを２．５ｍｌの１０ｍＭ Ｔｒ
ｉｓ ｐＨ７．５，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2で浸し、形質
転換コロニーをまとめて掻き取り、それをプールして一
次細胞ライブラリーを形成した。
胞培養液を軽く遠心し、上清は捨て、細胞を１．０ｍｌ
のＬブロス中に再懸濁させた。２００μｌ分を、１００
μｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬｕｒｉａ寒天（Ｌ寒
天）プレート上に塗り付けた。３７℃で一晩インキュベ
ートした後、各プレートを２．５ｍｌの１０ｍＭ Ｔｒ
ｉｓ ｐＨ７．５，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2で浸し、形質
転換コロニーをまとめて掻き取り、それをプールして一
次細胞ライブラリーを形成した。
【００３６】５．一次プラスミドライブラリー： 以下
のように一次プラスミドライブラリーを調製した：
２．５ｍｌの一次細胞ライブラリーを、１００μｇ／ｍ
ｌのアンピシリンを含む５００ｍｌのＬブロス中に接種
した。培養液を３７℃で一晩振盪し、４０００ｒｐｍで
５分間遠心した。上清は捨て、細胞ペレットを、１０ｍ
ｌの２５％スクロース，５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．
０中に室温で再懸濁させた。５ｍｌの０．２５Ｍ ＥＤ
ＴＡ，ｐＨ８．０を加え、更に０．２５Ｍ Ｔｒｉｓ，
ｐＨ８．０中に１０ｍｇ／ｍｌリゾチームを含む溶液３
ｍｌを加えた。溶液を氷上に１時間放置し、次いで１２
ｍｌの溶菌ミックス（１％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００，
５０ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０，６７ｍＭ ＥＤＴ
Ａ）をピペットで強く入れ、細胞懸濁液を静かにかきま
わして溶解させた。溶解後、混合液を５０ｍｌのプラス
チック遠心管に移し、１７０００ｒｐｍ、４℃で４５分
間遠心した。上清をピペットで取り出した。２０．０ｇ
の固体ＣｓＣｌを計って５０ｍｌのねじ蓋付きプラスチ
ック試験管に入れ、２２．０ｇの上清をピペットで試験
管に入れ、混合した。１．０ｍｌのエチジウムブロミド
溶液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０，１ｍＭ ＥＤ
ＴＡ，１００ｍＭ ＮａＣｌ中の５ｍｇ／ｍｌエチジウ
ムブロミド）を混合物に加えた。溶液を２つの５／８イ
ンチ×３インチポリアロマー（ｐｏｌｙａｌｌｏｍｅ
ｒ）遠心管に移し、封止した。これらの遠心管をＢｅｃ
ｋｍａｎ Ｔｉ７０ローターにおいて４４０００ｒｐ
ｍ、１７℃で４２時間遠心した。プラスミドを回収する
ため、遠心管の頂部にメスで孔を空け、２つのＤＮＡ蛍
光バンドのうちの下方を紫外光下にシリンジによって回
収した。両管から得た下方バンドをねじ蓋付きガラス試
験管内に集め、同量の水飽和氷冷Ｎ−ブタノールを用い
て４回抽出することによりエチジウムブロミドを除去し
た。
のように一次プラスミドライブラリーを調製した：
２．５ｍｌの一次細胞ライブラリーを、１００μｇ／ｍ
ｌのアンピシリンを含む５００ｍｌのＬブロス中に接種
した。培養液を３７℃で一晩振盪し、４０００ｒｐｍで
５分間遠心した。上清は捨て、細胞ペレットを、１０ｍ
ｌの２５％スクロース，５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．
０中に室温で再懸濁させた。５ｍｌの０．２５Ｍ ＥＤ
ＴＡ，ｐＨ８．０を加え、更に０．２５Ｍ Ｔｒｉｓ，
ｐＨ８．０中に１０ｍｇ／ｍｌリゾチームを含む溶液３
ｍｌを加えた。溶液を氷上に１時間放置し、次いで１２
ｍｌの溶菌ミックス（１％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００，
５０ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０，６７ｍＭ ＥＤＴ
Ａ）をピペットで強く入れ、細胞懸濁液を静かにかきま
わして溶解させた。溶解後、混合液を５０ｍｌのプラス
チック遠心管に移し、１７０００ｒｐｍ、４℃で４５分
間遠心した。上清をピペットで取り出した。２０．０ｇ
の固体ＣｓＣｌを計って５０ｍｌのねじ蓋付きプラスチ
ック試験管に入れ、２２．０ｇの上清をピペットで試験
管に入れ、混合した。１．０ｍｌのエチジウムブロミド
溶液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０，１ｍＭ ＥＤ
ＴＡ，１００ｍＭ ＮａＣｌ中の５ｍｇ／ｍｌエチジウ
ムブロミド）を混合物に加えた。溶液を２つの５／８イ
ンチ×３インチポリアロマー（ｐｏｌｙａｌｌｏｍｅ
ｒ）遠心管に移し、封止した。これらの遠心管をＢｅｃ
ｋｍａｎ Ｔｉ７０ローターにおいて４４０００ｒｐ
ｍ、１７℃で４２時間遠心した。プラスミドを回収する
ため、遠心管の頂部にメスで孔を空け、２つのＤＮＡ蛍
光バンドのうちの下方を紫外光下にシリンジによって回
収した。両管から得た下方バンドをねじ蓋付きガラス試
験管内に集め、同量の水飽和氷冷Ｎ−ブタノールを用い
て４回抽出することによりエチジウムブロミドを除去し
た。
【００３７】抽出後の溶液を透析チューブに移し、ＤＮ
Ａ緩衝液を４回替えて２４時間透析した。次いで、透析
したＤＮＡ溶液を計量済みの５０ｍｌ無菌遠心管に移
し、その容積を測定した。５Ｍ ＮａＣｌを終濃度０．
４Ｍまで加え、２容量のイソプロパノールを加えて混合
した。溶液を−２０℃で一晩置くとＤＮＡが沈澱した。
沈澱後、溶液を１５０００ｒｐｍ、４℃で１５分間遠心
し、上清を捨てた。試験管を試験管台に放置して１５分
間空気乾燥し、次いでＤＮＡペレットを５００μｌのＤ
ＮＡ緩衝液中に溶解し、−２０℃で保管した。このよう
に調製したプラスミドのＤＮＡ濃度は約３０μｇ／ｍｌ
であることが判った。
Ａ緩衝液を４回替えて２４時間透析した。次いで、透析
したＤＮＡ溶液を計量済みの５０ｍｌ無菌遠心管に移
し、その容積を測定した。５Ｍ ＮａＣｌを終濃度０．
４Ｍまで加え、２容量のイソプロパノールを加えて混合
した。溶液を−２０℃で一晩置くとＤＮＡが沈澱した。
沈澱後、溶液を１５０００ｒｐｍ、４℃で１５分間遠心
し、上清を捨てた。試験管を試験管台に放置して１５分
間空気乾燥し、次いでＤＮＡペレットを５００μｌのＤ
ＮＡ緩衝液中に溶解し、−２０℃で保管した。このよう
に調製したプラスミドのＤＮＡ濃度は約３０μｇ／ｍｌ
であることが判った。
【００３８】６．プラスミドプールの消化： 以下のよ
うにＢｇｌII一次プラスミドプールを消化して非Ａｐｏ
Ｉメチラーゼクローンを破壊した： １．０μｇ（３
５μｌ）のプラスミドＤＮＡを、容積４５μｌ中の５０
ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ７．９，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，
１ｍＭ ＤＴＴ，１００ｍＭ ＮａＣｌ，１００μｇ／
ｍｌ ＢＳＡと混合し、Ａｐｏ ＩをＤＮＡ１μｇ当た
り１６ｕ／μｇまで加えた。試験管を３７℃で２時間イ
ンキュベートした。１０分間で７２℃まで加熱すること
により反応物を不活性化させ、次いで氷上に５分間置い
た。１μｌ（１０単位）のＣＩＡＰ（仔ウシ腸アルカリ
性ホスファターゼ）を加え、試験管を３７℃に１時間維
持した。
うにＢｇｌII一次プラスミドプールを消化して非Ａｐｏ
Ｉメチラーゼクローンを破壊した： １．０μｇ（３
５μｌ）のプラスミドＤＮＡを、容積４５μｌ中の５０
ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ７．９，１０ｍＭ ＭｇＣｌ2，
１ｍＭ ＤＴＴ，１００ｍＭ ＮａＣｌ，１００μｇ／
ｍｌ ＢＳＡと混合し、Ａｐｏ ＩをＤＮＡ１μｇ当た
り１６ｕ／μｇまで加えた。試験管を３７℃で２時間イ
ンキュベートした。１０分間で７２℃まで加熱すること
により反応物を不活性化させ、次いで氷上に５分間置い
た。１μｌ（１０単位）のＣＩＡＰ（仔ウシ腸アルカリ
性ホスファターゼ）を加え、試験管を３７℃に１時間維
持した。
【００３９】７．形質転換： 試験管から得た１２．５
μｌの試料を使用してＥ．ｃｏｌｉＲＲ１を形質転換し
た。中間的な希釈及び増殖処理はせずに熱処理の直後
に、細胞／ＤＮＡ混合物を、１００μｇ／ｍｌアンピシ
リンを含むＬ寒天プレート上に置いた。３７℃で一晩イ
ンキュベートした後、プレートを調査した。プラスミド
ライブラリーをＡｐｏ Ｉを用いて消化し、次いでＣＩ
ＡＰを用いて処理すると、形質転換体の数は１０3分の
１以下に低下したことが判った。１４個の別個のコロニ
ーをプレートからピックアップし、アンピシリンを含む
Ｌブロス１０ｍｌ中に各コロニーを接種してミニ培養液
を調製し、更に、アンピシリンを含むＬ寒天プレート上
に線状接種してマスターストックを調製した。
μｌの試料を使用してＥ．ｃｏｌｉＲＲ１を形質転換し
た。中間的な希釈及び増殖処理はせずに熱処理の直後
に、細胞／ＤＮＡ混合物を、１００μｇ／ｍｌアンピシ
リンを含むＬ寒天プレート上に置いた。３７℃で一晩イ
ンキュベートした後、プレートを調査した。プラスミド
ライブラリーをＡｐｏ Ｉを用いて消化し、次いでＣＩ
ＡＰを用いて処理すると、形質転換体の数は１０3分の
１以下に低下したことが判った。１４個の別個のコロニ
ーをプレートからピックアップし、アンピシリンを含む
Ｌブロス１０ｍｌ中に各コロニーを接種してミニ培養液
を調製し、更に、アンピシリンを含むＬ寒天プレート上
に線状接種してマスターストックを調製した。
【００４０】８．生存個体の分析： セクション７で得
られた約１４個の生存コロニーを１０ｍｌの培養液中で
増殖させ（セクション７）、それらが保有するプラスミ
ドを、Ｂｉｒｎｂｏｉｎ及びＤｏｌｙ〔Ｎｕｃｌｅｉｃ
Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．７：１５１３（１９７９）〕の
方法を適合させた以下のミニプレップ精製方法によって
調製した。
られた約１４個の生存コロニーを１０ｍｌの培養液中で
増殖させ（セクション７）、それらが保有するプラスミ
ドを、Ｂｉｒｎｂｏｉｎ及びＤｏｌｙ〔Ｎｕｃｌｅｉｃ
Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．７：１５１３（１９７９）〕の
方法を適合させた以下のミニプレップ精製方法によって
調製した。
【００４１】ミニプレップ方法：各培養液を５０００ｒ
ｐｍで５分間遠心し、上清は捨て、細胞ペレットを、１
ｍｇ／ｍｌのリゾチームを含む１．０ｍｌの２５ｍＭ
Ｔｒｉｓ，１０ｍＭ ＥＤＴＡ，５０ｍＭ グルコー
ス，ｐＨ８．０中に再懸濁させた。室温で１分後、２．
０ｍｌの０．２Ｍ ＮａＯＨ，１％ ＳＤＳを各試験管
に加え、試験管を振盪して細胞を溶解した。一旦溶液が
透明になったなら、１．５ｍｌの３Ｍ 酢酸ナトリウ
ム，ｐＨ４．８を各々に加えて振盪した。形成された沈
澱物を１５０００ｒｐｍ、４℃で１０分間遠心分離し
た。各上清を、３ｍｌのイソプロパノールを含む遠心管
に入れ、混合した。室温で１０分後、遠心管を１５００
０ｒｐｍで１０分間遠心し、沈澱した核酸をペレット化
した。上清は捨て、ペレットを室温で３０分間空気乾燥
した。一旦乾燥したら、ペレットを８５０μｌの１０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０中に再懸
濁させた。７５μｌの５Ｍ ＮａＣｌを各々に加え、溶
液を、５７５μｌの氷冷イソプロパノールを含むエッペ
ンドルフ試験管に移し、再び室温で１０分間沈澱させ
た。試験管をマイクロ遠心機内で４５秒間遠心し、上清
は捨て、ペレットを空気乾燥した。次いでペレットを、
１００μｇ／ｍｌのＲＮａｓｅを含む５００μｌの１０
ｍＭ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０中に溶
解し、３７℃で１時間インキュベートしてＲＮＡを消化
した。まず５０μｌの５Ｍ ＮａＣｌ、次いで３５０μ
ｌのイソプロパノールを加えることによりＤＮＡをもう
一度沈澱させた。室温で１分後、４５秒間遠心すること
によりＤＮＡを遠心分離し、上清は捨て、ペレットを、
１０ｍＭ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０の
最終溶液１５０μｌ中に再溶解した。次いで、Ａｐｏ
Ｉを用いて消化することによりプラスミドミニプレップ
を分析した。
ｐｍで５分間遠心し、上清は捨て、細胞ペレットを、１
ｍｇ／ｍｌのリゾチームを含む１．０ｍｌの２５ｍＭ
Ｔｒｉｓ，１０ｍＭ ＥＤＴＡ，５０ｍＭ グルコー
ス，ｐＨ８．０中に再懸濁させた。室温で１分後、２．
０ｍｌの０．２Ｍ ＮａＯＨ，１％ ＳＤＳを各試験管
に加え、試験管を振盪して細胞を溶解した。一旦溶液が
透明になったなら、１．５ｍｌの３Ｍ 酢酸ナトリウ
ム，ｐＨ４．８を各々に加えて振盪した。形成された沈
澱物を１５０００ｒｐｍ、４℃で１０分間遠心分離し
た。各上清を、３ｍｌのイソプロパノールを含む遠心管
に入れ、混合した。室温で１０分後、遠心管を１５００
０ｒｐｍで１０分間遠心し、沈澱した核酸をペレット化
した。上清は捨て、ペレットを室温で３０分間空気乾燥
した。一旦乾燥したら、ペレットを８５０μｌの１０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０中に再懸
濁させた。７５μｌの５Ｍ ＮａＣｌを各々に加え、溶
液を、５７５μｌの氷冷イソプロパノールを含むエッペ
ンドルフ試験管に移し、再び室温で１０分間沈澱させ
た。試験管をマイクロ遠心機内で４５秒間遠心し、上清
は捨て、ペレットを空気乾燥した。次いでペレットを、
１００μｇ／ｍｌのＲＮａｓｅを含む５００μｌの１０
ｍＭ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０中に溶
解し、３７℃で１時間インキュベートしてＲＮＡを消化
した。まず５０μｌの５Ｍ ＮａＣｌ、次いで３５０μ
ｌのイソプロパノールを加えることによりＤＮＡをもう
一度沈澱させた。室温で１分後、４５秒間遠心すること
によりＤＮＡを遠心分離し、上清は捨て、ペレットを、
１０ｍＭ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０の
最終溶液１５０μｌ中に再溶解した。次いで、Ａｐｏ
Ｉを用いて消化することによりプラスミドミニプレップ
を分析した。
【００４２】９．メチラーゼ遺伝子クローン： 分析し
たプラスミドの大部分はＡｐｏ Ｉによる消化に感受性
であり、Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏ
ｒｍｉａｅ ＤＮＡのランダムなフラグメントを保有し
ていることが判った。かかるプラスミドは疑似生存体で
あり、重要ではないので捨てた。１４のうち４つがＡｐ
ｏ Ｉ消化に対して耐性であった。ｐＢＲ３２２ Ｂｇ
ｌIIライブラリー由来のこれら４つのプラスミドのうち
の１つは、Ａｐｏ Ｉに耐性であるだけでなく、約４．
８ｋｂのＢｇｌIIフラグメント（図１参照）も保有して
おり、従ってＡｐｏ Ｉ修飾メチラーゼ遺伝子のみなら
ず制限エンドヌクレアーゼ遺伝子をも保有していること
が判った。
たプラスミドの大部分はＡｐｏ Ｉによる消化に感受性
であり、Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏ
ｒｍｉａｅ ＤＮＡのランダムなフラグメントを保有し
ていることが判った。かかるプラスミドは疑似生存体で
あり、重要ではないので捨てた。１４のうち４つがＡｐ
ｏ Ｉ消化に対して耐性であった。ｐＢＲ３２２ Ｂｇ
ｌIIライブラリー由来のこれら４つのプラスミドのうち
の１つは、Ａｐｏ Ｉに耐性であるだけでなく、約４．
８ｋｂのＢｇｌIIフラグメント（図１参照）も保有して
おり、従ってＡｐｏ Ｉ修飾メチラーゼ遺伝子のみなら
ず制限エンドヌクレアーゼ遺伝子をも保有していること
が判った。
【００４３】１０．制限遺伝子クローン：Ａｐｏ Ｉ修
飾メチラーゼ遺伝子を保有していると同定された上記Ｂ
ｇｌIIクローン（セクション９）をＥ．ｃｏｌｉ株ＭＭ
２９４（ＡＴＣＣ ３３６２５）に移入した。ＢｇｌII
クローンは、ｉｎ ｖｉｔｒｏ制限エンドヌクレアーゼ
アッセイによってＡｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ遺
伝子を保有していることが判った。
飾メチラーゼ遺伝子を保有していると同定された上記Ｂ
ｇｌIIクローン（セクション９）をＥ．ｃｏｌｉ株ＭＭ
２９４（ＡＴＣＣ ３３６２５）に移入した。ＢｇｌII
クローンは、ｉｎ ｖｉｔｒｏ制限エンドヌクレアーゼ
アッセイによってＡｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ遺
伝子を保有していることが判った。
【００４４】エンドヌクレアーゼアッセイ： エンドヌ
クレアーゼ活性を評価するため、２種の溶液を調製し
た： （ｉ）１０倍濃制限エンドヌクレアーゼ緩衝液：５００
ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ７．９，１００ｍＭ ＭｇＣ
ｌ2，１０ｍＭ ＤＴＴ，１０００ｍＭ ＮａＣｌ，及
び（ii）消化反応ミックス：４０μｌのファージＴ７
ＤＮＡ（２５０μｇ／ｍｌ），４５μｌ １０倍濃制限
エンドヌクレアーゼ緩衝液，２５μｇ／ｍｌＤＮＡとな
るまでの３６１μｌの蒸留水。
クレアーゼ活性を評価するため、２種の溶液を調製し
た： （ｉ）１０倍濃制限エンドヌクレアーゼ緩衝液：５００
ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ７．９，１００ｍＭ ＭｇＣ
ｌ2，１０ｍＭ ＤＴＴ，１０００ｍＭ ＮａＣｌ，及
び（ii）消化反応ミックス：４０μｌのファージＴ７
ＤＮＡ（２５０μｇ／ｍｌ），４５μｌ １０倍濃制限
エンドヌクレアーゼ緩衝液，２５μｇ／ｍｌＤＮＡとな
るまでの３６１μｌの蒸留水。
【００４５】細胞抽出物を以下のように調製した：試験
すべきクローンの培養液１００ｍｌを、１００μｇ／ｍ
ｌのアンピシリンを含むＬブロス中で３７℃で一晩増殖
させ、４０００ｒｐｍで５分間遠心することにより細胞
をペレット化した。上清は捨て、ペレットを、３ｍｌの
超音波処理用緩衝液（７５ｍＭ ＫＰＯ4 ｐＨ７．
０，１０ｍＭ ＢＭＥ，０．１ｍＭ ＥＤＴＡ）中に再
懸濁させた。一旦再懸濁したら、１０ｍｇ／ｍｌのリゾ
チームを含む超音波処理用緩衝液０．３ｍｌを加えた。
懸濁液をかきまわし、氷上に１時間放置した。１ｍｌの
試料をエッペンドルフ試験管に移し、２回の２０秒間バ
ーストで静かに超音波処理して細胞を破壊した。試験管
をマイクロ遠心機において５分間遠心し、上清を細胞抽
出物として使用した。抽出物を分析するため、消化反応
ミックスを４つの試験管に、第１試験管には７５μｌ、
残りの３つの試験管にはそれぞれ５０μｌずつ分配し
た。３μｌの抽出物を第１試験管に加え、混合した。第
１試験管から２５μｌを取り出し、第２試験管に移して
混合する等とした。第１試験管は、ＤＮＡ１μｇ当たり
約１．５μｌの抽出物を受取り、第２試験管は０．５μ
ｌ／μｇ、第３試験管は０．１５μｌ／μｇ、及び第４
試験管は０．０５μｌ／μｇを受け取ったことになる。
それぞれ５０μｌを含む試験管を５０℃で１時間インキ
ュベートし、次いで各試料２０μｌをゲル電気泳動によ
って分析した。抽出物の力価は、湿潤細胞ペースト１ｇ
当たり１×１０3単位以上のＡｐｏ Ｉ制限エンドヌク
レアーゼであることが判った。
すべきクローンの培養液１００ｍｌを、１００μｇ／ｍ
ｌのアンピシリンを含むＬブロス中で３７℃で一晩増殖
させ、４０００ｒｐｍで５分間遠心することにより細胞
をペレット化した。上清は捨て、ペレットを、３ｍｌの
超音波処理用緩衝液（７５ｍＭ ＫＰＯ4 ｐＨ７．
０，１０ｍＭ ＢＭＥ，０．１ｍＭ ＥＤＴＡ）中に再
懸濁させた。一旦再懸濁したら、１０ｍｇ／ｍｌのリゾ
チームを含む超音波処理用緩衝液０．３ｍｌを加えた。
懸濁液をかきまわし、氷上に１時間放置した。１ｍｌの
試料をエッペンドルフ試験管に移し、２回の２０秒間バ
ーストで静かに超音波処理して細胞を破壊した。試験管
をマイクロ遠心機において５分間遠心し、上清を細胞抽
出物として使用した。抽出物を分析するため、消化反応
ミックスを４つの試験管に、第１試験管には７５μｌ、
残りの３つの試験管にはそれぞれ５０μｌずつ分配し
た。３μｌの抽出物を第１試験管に加え、混合した。第
１試験管から２５μｌを取り出し、第２試験管に移して
混合する等とした。第１試験管は、ＤＮＡ１μｇ当たり
約１．５μｌの抽出物を受取り、第２試験管は０．５μ
ｌ／μｇ、第３試験管は０．１５μｌ／μｇ、及び第４
試験管は０．０５μｌ／μｇを受け取ったことになる。
それぞれ５０μｌを含む試験管を５０℃で１時間インキ
ュベートし、次いで各試料２０μｌをゲル電気泳動によ
って分析した。抽出物の力価は、湿潤細胞ペースト１ｇ
当たり１×１０3単位以上のＡｐｏ Ｉ制限エンドヌク
レアーゼであることが判った。
【００４６】１１．Ａｐｏ Ｉエンドヌクレアーゼは、
Ａｐｏ Ｉ修飾遺伝子及びエンドヌクレアーゼ遺伝子を
保有する組換えプラスミドｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６
から、発酵器においてアンピシリンを含むリッチ培地中
で増殖させることにより製造することができる。そして
細胞を遠心分離によって回収し、超音波処理によって破
壊して、Ａｐｏ Ｉエンドヌクレアーゼ活性を含む粗細
胞抽出物を得る。
Ａｐｏ Ｉ修飾遺伝子及びエンドヌクレアーゼ遺伝子を
保有する組換えプラスミドｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６
から、発酵器においてアンピシリンを含むリッチ培地中
で増殖させることにより製造することができる。そして
細胞を遠心分離によって回収し、超音波処理によって破
壊して、Ａｐｏ Ｉエンドヌクレアーゼ活性を含む粗細
胞抽出物を得る。
【００４７】Ａｐｏ Ｉエンドヌクレアーゼを含む粗細
胞抽出物は、アフィニティークロマトグラフィーまたは
イオン交換クロマトグラフィーのような標準的な生成物
精製技術によって精製する。
胞抽出物は、アフィニティークロマトグラフィーまたは
イオン交換クロマトグラフィーのような標準的な生成物
精製技術によって精製する。
【図１】Ａｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ及び修飾メ
チラーゼをコードするＡｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ由来の
４．８ｋｂ ＢｇｌIIフラグメントの制限マップであ
る。
チラーゼをコードするＡｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ由来の
４．８ｋｂ ＢｇｌIIフラグメントの制限マップであ
る。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 //(Ｃ１２Ｎ 9/16 Ｃ１２Ｒ 1:06） (Ｃ１２Ｎ 9/12 Ｃ１２Ｒ 1:06） (72)発明者 デレク・ロビンソン アメリカ合衆国、マサチユーセツツ・ 01921、ボツクスフオード、ヒルサイド・ ロード・25 (72)発明者 キース・ランネン アメリカ合衆国、マサチユーセツツ・ 01929、エセツクス、ウインスロツプ・ス トリート・20 (54)【発明の名称】 アースロバクター・プロトフォーミア（ＡＲＴＨＲＯＢＡＣＴＥＲ ＰＲＯＴＯＰＨＯＲＭＩＡ Ｅ）から入手可能な新規のタイプＩＩ制限エンドヌクレアーゼＡＰＯ Ｉ及び該エンドヌクレア ーゼの製造方法
Claims (12)
- 【請求項１】 二重鎖デオキシリボ核酸分子中の塩基配
列： 【化１】 を認識し且つ矢印で示された切断部位を示す、Ａｒｔｈ
ｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ（ＡＴ
ＣＣ番号５５２２８）から入手可能な実質的に純粋なタ
イプII制限エンドヌクレアーゼ。 - 【請求項２】 二重鎖デオキシリボ核酸λｃＩ８５７を
５８カ所で、ａｄｅｎｏ−２を２９カ所で、及びｐＢＲ
３２２を１カ所で切断する請求項１に記載のタイプII制
限エンドヌクレアーゼ。 - 【請求項３】 Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏ
ｐｈｏｒｍｉａｅの試料を、前記エンドヌクレアーゼの
産生に好ましい条件下で培養し、前記エンドヌクレアー
ゼをそこから単離することからなる、請求項１に記載の
タイプII制限エンドヌクレアーゼを得る方法。 - 【請求項４】 前記制限エンドヌクレアーゼがＡｒｔｈ
ｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ(ＡＴ
ＣＣ番号５５２２８)から精製されている請求項１に記
載のタイプII制限エンドヌクレアーゼ。 - 【請求項５】 前記制限エンドヌクレアーゼが、該制限
エンドヌクレアーゼをコードするＤＮＡ配列を含む形質
転換宿主から精製されている請求項１に記載のタイプII
制限エンドヌクレアーゼ。 - 【請求項６】 ベクターｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６か
ら入手可能である、Ａｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ
をコードする単離ＤＮＡ。 - 【請求項７】 Ａｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼをコ
ードするＤＮＡセグメントが挿入されたベクターを含む
組換えＤＮＡベクター。 - 【請求項８】 ベクターｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６か
ら入手可能である、Ａｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ
及びメチラーゼをコードする単離ＤＮＡ。 - 【請求項９】 請求項８に記載の単離ＤＮＡを含むクロ
ーニングベクター。 - 【請求項１０】 ｐＫＬＡｐｏＩＲＭ１１−６を含む請
求項９に記載のクローニングベクター。 - 【請求項１１】 請求項７、９または１０のいずれか一
項に記載のクローニングベクターによって形質転換され
た宿主細胞。 - 【請求項１２】 請求項７、９または１０のいずれか一
項に記載のベクターを用いて形質転換された宿主細胞
を、該エンドヌクレアーゼの発現に適した条件下で培養
することからなる、Ａｐｏ Ｉ制限エンドヌクレアーゼ
を生産する方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US782515 | 1991-10-25 | ||
| US07/782,515 US5200337A (en) | 1991-10-25 | 1991-10-25 | Type ii restriction endonuclease, apo i, obtainable from arthrobacter protophormiae and a process for producing the same |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05219950A true JPH05219950A (ja) | 1993-08-31 |
Family
ID=25126295
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4309473A Pending JPH05219950A (ja) | 1991-10-25 | 1992-10-23 | アースロバクター・プロトフォーミア（ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ ｐｒｏｔｏｐｈｏｒｍｉａｅ）から入手可能な新規のタイプｉｉ制限エンドヌクレアーゼａｐｏ ｉ及び該エンドヌクレアーゼの製造方法 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5200337A (ja) |
| EP (1) | EP0539160B1 (ja) |
| JP (1) | JPH05219950A (ja) |
| DE (2) | DE539160T1 (ja) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CA2187386C (en) * | 1995-10-27 | 2007-01-23 | Kaoru Takegawa | Gene encoding endo-.beta.-n-acetylglucosaminidase a |
| US8182986B1 (en) * | 2001-07-12 | 2012-05-22 | Discoverx | Assays for nucleic acid modifying enzymes |
| EP2568040A1 (en) | 2005-08-04 | 2013-03-13 | New England Biolabs, Inc. | Novel restriction endonucleases, DNA encoding these endonucleases and methods for identyfing new endonucleases with the same or varied specificity |
Family Cites Families (15)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| IN166864B (ja) * | 1985-03-01 | 1990-07-28 | New England Biolabs Inc | |
| US5030569A (en) * | 1987-10-15 | 1991-07-09 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the AFL II restriction endonuclease and methylase |
| US4987074A (en) * | 1987-12-17 | 1991-01-22 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the HgiAI restriction endonuclease and methylase |
| US4988620A (en) * | 1987-12-17 | 1991-01-29 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the FnuDI restriction endonuclease and methylase |
| US4983522A (en) * | 1987-12-17 | 1991-01-08 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the HinPI restriction endonuclease and methylase |
| US5004691A (en) * | 1987-12-17 | 1991-04-02 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the ACCI restriction endonuclease and methylase |
| US4999293A (en) * | 1987-12-17 | 1991-03-12 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the HhaI restriction endonuclease and methylase |
| US4999294A (en) * | 1987-12-17 | 1991-03-12 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the FokI restriction endonuclease and methylase |
| US4983542A (en) * | 1987-12-21 | 1991-01-08 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the XbaI restriction endonuclease and methylase |
| US4996151A (en) * | 1988-05-19 | 1991-02-26 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the Eag I restriction endonuclease and methylase |
| US5075232A (en) * | 1988-07-28 | 1991-12-24 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the nlavi restriction endonuclease and methylase |
| US5053330A (en) * | 1989-03-13 | 1991-10-01 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the mwoi restriction endonuclease and methylase |
| US5015581A (en) * | 1989-03-15 | 1991-05-14 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the Hinc II restriction endonuclease and methylase |
| US5002882A (en) * | 1989-04-27 | 1991-03-26 | New England Biolabs, Inc. | Method for producing the XmaI restriction endonuclease and methylase |
| US5192676A (en) * | 1991-02-05 | 1993-03-09 | New England Biolabs, Inc. | Type ii restriction endonuclease, asci, obtainable from arthrobacter species and a process for producing the same |
-
1991
- 1991-10-25 US US07/782,515 patent/US5200337A/en not_active Expired - Lifetime
-
1992
- 1992-10-20 DE DE92309575T patent/DE539160T1/de active Pending
- 1992-10-20 EP EP92309575A patent/EP0539160B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1992-10-20 DE DE69201045T patent/DE69201045T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1992-10-23 JP JP4309473A patent/JPH05219950A/ja active Pending
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE69201045T2 (de) | 1995-08-10 |
| US5200337A (en) | 1993-04-06 |
| EP0539160A1 (en) | 1993-04-28 |
| DE539160T1 (de) | 1994-02-03 |
| DE69201045D1 (de) | 1995-02-09 |
| EP0539160B1 (en) | 1994-12-28 |
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