JPH0515371A - 新規セラミダーゼ - Google Patents
新規セラミダーゼInfo
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- JPH0515371A JPH0515371A JP3169816A JP16981691A JPH0515371A JP H0515371 A JPH0515371 A JP H0515371A JP 3169816 A JP3169816 A JP 3169816A JP 16981691 A JP16981691 A JP 16981691A JP H0515371 A JPH0515371 A JP H0515371A
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- sphingosine
- ceramide
- ceramidase
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 至適pHが９付近にあり、かつ、弱酸性域から
弱アルカリ性域（６〜１０）に活性を有し、更に合成セ
ラミドのみならず天然セラミド画分に対しても活性を有
するセラミダーゼＢ。 【効果】 種々の脂質代謝異常の疾患の治療・予防、皮
膚の機能維持・改善等を目的とする医薬品、診断薬、化
粧料等の成分として有用である。特に皮膚天然セラミド
に対する活性が高く、保湿効果、バリア補強効果を有す
る皮膚外用剤、化粧料の成分として有用である。
弱アルカリ性域（６〜１０）に活性を有し、更に合成セ
ラミドのみならず天然セラミド画分に対しても活性を有
するセラミダーゼＢ。 【効果】 種々の脂質代謝異常の疾患の治療・予防、皮
膚の機能維持・改善等を目的とする医薬品、診断薬、化
粧料等の成分として有用である。特に皮膚天然セラミド
に対する活性が高く、保湿効果、バリア補強効果を有す
る皮膚外用剤、化粧料の成分として有用である。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は新規なセラミダーゼに関
し、更に詳細にはセラミドを分解することによって、皮
膚に代表される生体組織中にセラミド及びスフィンゴシ
ン含量を調節する作用を有し、医薬、化粧料の配合成分
として有用な新規なセラミダーゼに関する。
し、更に詳細にはセラミドを分解することによって、皮
膚に代表される生体組織中にセラミド及びスフィンゴシ
ン含量を調節する作用を有し、医薬、化粧料の配合成分
として有用な新規なセラミダーゼに関する。
【０００２】
【従来の技術】セラミドはスフィンゴシン塩基のアミノ
基に脂肪酸が酸アミド結合したもので、脳をはじめとす
る生体組織中にスフィンゴ糖脂質やスフィンゴリン脂質
として、あるいはそのままで存在しているといわれてい
る。このセラミドはセラミダーゼ（アシルスフィンゴシ
ンデアシラーゼ；EC 3.5.1.23 ）によりスフィンゴシン
塩基と脂肪酸に加水分解される。従って、生体中のセラ
ミドはセラミダーゼの活性により調節されている。
基に脂肪酸が酸アミド結合したもので、脳をはじめとす
る生体組織中にスフィンゴ糖脂質やスフィンゴリン脂質
として、あるいはそのままで存在しているといわれてい
る。このセラミドはセラミダーゼ（アシルスフィンゴシ
ンデアシラーゼ；EC 3.5.1.23 ）によりスフィンゴシン
塩基と脂肪酸に加水分解される。従って、生体中のセラ
ミドはセラミダーゼの活性により調節されている。
【０００３】ところで、遺伝性脂質代謝病の一つである
スフィンゴリピドーシスはセラミドの蓄積による疾患で
あり、セラミダーゼの欠損に起因するものであることが
知られている。また、角質細胞間脂質としてのセラミド
は表皮の保湿機能やバリア機能において重要な役割を担
っていることが明らかとなっており、アトピー性皮膚炎
等に代表される多くの皮膚疾患患者の表皮においてセラ
ミド代謝の変動が見られる。更に、セラミダーゼによる
セラミドの加水分解物であるスフィンゴシンは表皮細胞
の増殖を抑制し、分化誘導活性をもつことが知られてお
り、セラミダーゼによって角化がコントロールできる可
能性がある。
スフィンゴリピドーシスはセラミドの蓄積による疾患で
あり、セラミダーゼの欠損に起因するものであることが
知られている。また、角質細胞間脂質としてのセラミド
は表皮の保湿機能やバリア機能において重要な役割を担
っていることが明らかとなっており、アトピー性皮膚炎
等に代表される多くの皮膚疾患患者の表皮においてセラ
ミド代謝の変動が見られる。更に、セラミダーゼによる
セラミドの加水分解物であるスフィンゴシンは表皮細胞
の増殖を抑制し、分化誘導活性をもつことが知られてお
り、セラミダーゼによって角化がコントロールできる可
能性がある。
【０００４】以上のように生体組織中のセラミド量を調
節する酵素であるセラミダーゼを提供することは、脂質
代謝異常疾患の治療・予防、皮膚の機能維持・改善等の
観点から極めて重要である。
節する酵素であるセラミダーゼを提供することは、脂質
代謝異常疾患の治療・予防、皮膚の機能維持・改善等の
観点から極めて重要である。
【０００５】従来、セラミダーゼとしてはラット脳、ヒ
ト腎及びヒト小脳等から採取できることが報告されてい
る〔蛋白質・核酸・酵素，Vol.32, No.2, 162(1987) 、
Catt, S.: J. Biol. Chem., 241, 3724(1966) 、Yavin.
E., Gatt, S.: Biochemistry,８，1692(1969)、Sugit
a, M., Williams, M., Dulaney, J. T.、Moser, H. W.:
Biochim. Biophys. Acta,398, 125(1975) 〕。
ト腎及びヒト小脳等から採取できることが報告されてい
る〔蛋白質・核酸・酵素，Vol.32, No.2, 162(1987) 、
Catt, S.: J. Biol. Chem., 241, 3724(1966) 、Yavin.
E., Gatt, S.: Biochemistry,８，1692(1969)、Sugit
a, M., Williams, M., Dulaney, J. T.、Moser, H. W.:
Biochim. Biophys. Acta,398, 125(1975) 〕。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、従来報
告されているセラミダーゼは、そのほとんどが至適pHが
４〜５と酸性側にあった。更に、皮膚、特に表皮由来の
ものは知られておらず、また天然セラミド画分に対する
分解活性が明らかにされていない粗精製物であるため、
医薬として投与したり、化粧料として皮膚に塗布するこ
とはできなかった。従って本発明は、医薬、化粧料等と
して使用可能な新規セラミダーゼを提供することを目的
とする。
告されているセラミダーゼは、そのほとんどが至適pHが
４〜５と酸性側にあった。更に、皮膚、特に表皮由来の
ものは知られておらず、また天然セラミド画分に対する
分解活性が明らかにされていない粗精製物であるため、
医薬として投与したり、化粧料として皮膚に塗布するこ
とはできなかった。従って本発明は、医薬、化粧料等と
して使用可能な新規セラミダーゼを提供することを目的
とする。
【０００７】
【課題を解決するための手段】かかる実状において、本
発明者らはヒトを含む種々の動物の組織を用いてセラミ
ダーゼを採取すべく鋭意研究したところ、哺乳類の表皮
及び大脳より全く新しいセラミダーゼを単離することに
成功し、本発明を完成した。
発明者らはヒトを含む種々の動物の組織を用いてセラミ
ダーゼを採取すべく鋭意研究したところ、哺乳類の表皮
及び大脳より全く新しいセラミダーゼを単離することに
成功し、本発明を完成した。
【０００８】すなわち、本発明は至適pHが弱アルカリ性
付近にあり、かつ弱酸性域から弱アルカリ性域（６〜１
０）に活性を有し、更に合成セラミドのみならず天然セ
ラミド画分に対しても活性を有する新規なセラミダーゼ
Ｂを提供するものである。
付近にあり、かつ弱酸性域から弱アルカリ性域（６〜１
０）に活性を有し、更に合成セラミドのみならず天然セ
ラミド画分に対しても活性を有する新規なセラミダーゼ
Ｂを提供するものである。
【０００９】本発明のセラミダーゼＢは、ヒトを含む哺
乳類の組織、例えばモルモット表皮、ラット大脳等より
分離することができる。より詳細には、例えばモルモッ
ト表皮に水性溶媒を加えて適当な時間、適当な温度に保
持して抽出を行い、抽出液を適当な時間と温度に保持
し、更に塩析、限外濾過、イオン交換カラムクロマトグ
ラフィー、疎水性カラムクロマトグラフィー、アフィニ
ティークロマトグラフィー、ゲル濾過、吸着カラムクロ
マトグラフィー、等電点電気泳動のいずれか又はそれら
の組み合わせで処理することにより得ることができる。
乳類の組織、例えばモルモット表皮、ラット大脳等より
分離することができる。より詳細には、例えばモルモッ
ト表皮に水性溶媒を加えて適当な時間、適当な温度に保
持して抽出を行い、抽出液を適当な時間と温度に保持
し、更に塩析、限外濾過、イオン交換カラムクロマトグ
ラフィー、疎水性カラムクロマトグラフィー、アフィニ
ティークロマトグラフィー、ゲル濾過、吸着カラムクロ
マトグラフィー、等電点電気泳動のいずれか又はそれら
の組み合わせで処理することにより得ることができる。
【００１０】このようにして得られる本発明セラミダー
ゼＢは以下の酵素学的性質を有する。なお、酵素活性の
測定は以下の方法に従って行った。 （ａ）合成基質を用いたセラミダーゼ活性測定 Science,178, 1100-1102(1972) にSugitaらが記載した
のと類似の方法で測定した。すなわち、２５μｌ14Ｃ標
識合成基質溶液（２０nmol; 14C-palmitoylsphingosine
0.1mgのTween ２０、２５mgのTriton X-100を混合し窒
素気流下で乾固した後、１６mg／mlのコール酸ナトリウ
ム溶液２５μｌを加え、超音波処理を行う）に1.0M Tri
s-HCl 緩衝液（pH9.0 ２５μｌ、酵素液150 μｌを添
加、混合し、３７℃で６０分間振とうしながら保温す
る。１％のキャリアーパルミチン酸５０μｌとDole試薬
（２−プロパノール−ヘプタン−1N NaOH, 40:10:1) ３
mlを加え反応停止後、1.8ml のヘプタンと1.6ml の純水
を加え、遠心分離し未反応の合成基質を除くため上層を
捨て、残った下層を2.0ml のヘプタンで二回洗浄し、更
に1N硫酸1.0ml と2.4ml のヘプタンを加え遠心分離した
後、得られた上層1.0mlの放射活性を液体シンチレーシ
ョンカウンターによって測定した。なお同測定系におい
て酵素水溶液の代わりに６７mMリン酸緩衝液（pH7.4 ）
を用いたものを対照とした。活性単位は上記測定法にお
いて、１分間に１nmolのパルミチン酸を遊離させる酵素
活性を１単位とした。
ゼＢは以下の酵素学的性質を有する。なお、酵素活性の
測定は以下の方法に従って行った。 （ａ）合成基質を用いたセラミダーゼ活性測定 Science,178, 1100-1102(1972) にSugitaらが記載した
のと類似の方法で測定した。すなわち、２５μｌ14Ｃ標
識合成基質溶液（２０nmol; 14C-palmitoylsphingosine
0.1mgのTween ２０、２５mgのTriton X-100を混合し窒
素気流下で乾固した後、１６mg／mlのコール酸ナトリウ
ム溶液２５μｌを加え、超音波処理を行う）に1.0M Tri
s-HCl 緩衝液（pH9.0 ２５μｌ、酵素液150 μｌを添
加、混合し、３７℃で６０分間振とうしながら保温す
る。１％のキャリアーパルミチン酸５０μｌとDole試薬
（２−プロパノール−ヘプタン−1N NaOH, 40:10:1) ３
mlを加え反応停止後、1.8ml のヘプタンと1.6ml の純水
を加え、遠心分離し未反応の合成基質を除くため上層を
捨て、残った下層を2.0ml のヘプタンで二回洗浄し、更
に1N硫酸1.0ml と2.4ml のヘプタンを加え遠心分離した
後、得られた上層1.0mlの放射活性を液体シンチレーシ
ョンカウンターによって測定した。なお同測定系におい
て酵素水溶液の代わりに６７mMリン酸緩衝液（pH7.4 ）
を用いたものを対照とした。活性単位は上記測定法にお
いて、１分間に１nmolのパルミチン酸を遊離させる酵素
活性を１単位とした。
【００１１】（ｂ）天然セラミドを用いたセラミダーゼ
活性測定 モルモット表皮より、天然脂質をBligh-Dyer法により抽
出し、常法に従いHPTLC （メルク社製）で展開して、全
セラミド画分を抽出し、窒素気流下で濃縮乾固し得られ
た天然セラミド（１０〜３０mgの天然セラミドと0.1mg
のTween ２０、２５mgのTriton X-100を混合し窒素気流
下で乾固した後、１６mg／mlのコール酸ナトリウム溶液
２５μｌを加え、超音波処理を行う）に1.0M Tris-HCl
緩衝液（pH9.0 ）２５μｌ、酵素液150 μｌを添加、混
合し、３７℃で０〜２４時間、振とうしながら保温す
る。Dole試薬（２−プロパノール−ヘプタン−1N NaOH,
40:10:１）のみを加え反応を停止させた後、1.8ml のヘ
プタンと1.6ml の純水を加え、遠心分離し上層を分取
し、これと残った下層を2.0ml のヘプタンで二回洗浄し
遠心分離によって得られた上層を合わせ、窒素気流下で
乾固し未反応セラミドを回収し、この乾固物にクロロホ
ルム−メタノール（６：１，容量比）を加えた後、一定
量をHPTLC プレート（メルク社製）上にスポットし、薄
層クロマトグラフィーに供し、各セラミド画分の残存量
を二次元画像解析装置（島津製作所製）を用いて定量し
た。
活性測定 モルモット表皮より、天然脂質をBligh-Dyer法により抽
出し、常法に従いHPTLC （メルク社製）で展開して、全
セラミド画分を抽出し、窒素気流下で濃縮乾固し得られ
た天然セラミド（１０〜３０mgの天然セラミドと0.1mg
のTween ２０、２５mgのTriton X-100を混合し窒素気流
下で乾固した後、１６mg／mlのコール酸ナトリウム溶液
２５μｌを加え、超音波処理を行う）に1.0M Tris-HCl
緩衝液（pH9.0 ）２５μｌ、酵素液150 μｌを添加、混
合し、３７℃で０〜２４時間、振とうしながら保温す
る。Dole試薬（２−プロパノール−ヘプタン−1N NaOH,
40:10:１）のみを加え反応を停止させた後、1.8ml のヘ
プタンと1.6ml の純水を加え、遠心分離し上層を分取
し、これと残った下層を2.0ml のヘプタンで二回洗浄し
遠心分離によって得られた上層を合わせ、窒素気流下で
乾固し未反応セラミドを回収し、この乾固物にクロロホ
ルム−メタノール（６：１，容量比）を加えた後、一定
量をHPTLC プレート（メルク社製）上にスポットし、薄
層クロマトグラフィーに供し、各セラミド画分の残存量
を二次元画像解析装置（島津製作所製）を用いて定量し
た。
【００１２】（酵素学的性質） （１）作用 天然セラミド、パルミトイルスフィンゴシン、オレオイ
ルスフィンゴシン及びリノレイルスフィンゴシンに作用
し、これらを加水分解する。 （２）基質特異性 パルミトイルスフィンゴシン、オレオイルスフィンゴシ
ン及びリノレイルスフィンゴシンに対し活性を有し、ま
た全天然セラミド画分に対して活性を有するが、特にセ
ラミド・タイプＩ、ＩＩ、ＩＶ及びＶに対する活性が強
い。中でもセラミド・タイプＩＶ、Ｖに対する活性がセ
ラミド・タイプＩに対する活性よりも強い。
ルスフィンゴシン及びリノレイルスフィンゴシンに作用
し、これらを加水分解する。 （２）基質特異性 パルミトイルスフィンゴシン、オレオイルスフィンゴシ
ン及びリノレイルスフィンゴシンに対し活性を有し、ま
た全天然セラミド画分に対して活性を有するが、特にセ
ラミド・タイプＩ、ＩＩ、ＩＶ及びＶに対する活性が強
い。中でもセラミド・タイプＩＶ、Ｖに対する活性がセ
ラミド・タイプＩに対する活性よりも強い。
【００１３】（３）至適pH及び安定pH範囲 至適pHは９付近であり（図１）、安定pHの範囲は５〜１
０であった（図２）。なお、pH安定性は３７℃で６０分
間放置した後の残存活性を測定することにより判定し
た。 （４）作用適温の範囲 作用適温は１５〜４５℃の範囲であり、最適温度は約３
０〜４０℃であった（図３）。
０であった（図２）。なお、pH安定性は３７℃で６０分
間放置した後の残存活性を測定することにより判定し
た。 （４）作用適温の範囲 作用適温は１５〜４５℃の範囲であり、最適温度は約３
０〜４０℃であった（図３）。
【００１４】（５）温度による失活の条件 pH7.4 、６０℃で６０分間保温すると、ほぼ完全に失活
する（図４）。 （６）分子量 TSK-3000SWカラム（トーソー株式会社製）によるゲル濾
過法で測定した結果、分子量は140,000 ±25,000であっ
た。なお、分子量決定の標準物質としてカタラーゼ（分
子量：232,000 ）、牛血清アルブミン（分子量：67,00
0）、卵白アルブミン（分子量：43,000）及びキモトリ
プシノーゲンＡ（分子量：25,000）を使用した。
する（図４）。 （６）分子量 TSK-3000SWカラム（トーソー株式会社製）によるゲル濾
過法で測定した結果、分子量は140,000 ±25,000であっ
た。なお、分子量決定の標準物質としてカタラーゼ（分
子量：232,000 ）、牛血清アルブミン（分子量：67,00
0）、卵白アルブミン（分子量：43,000）及びキモトリ
プシノーゲンＡ（分子量：25,000）を使用した。
【００１５】（７）等電点 5.9 ±0.6 である（図５）。 （８）阻害剤の影響 各種のサンプル水溶液（最終濃度１〜100 μM ）を含む
緩衝液（pH9.0 ）２５μｌをセラミダーゼＢ水溶液150
μｌと混合し、３７℃で６０分間保温した後、セラミダ
ーゼＢの合成基質加水分解活性を測定した。その結果、
セラミドの加水分解物であるスフィンゴシンと脂肪酸
（それぞれ100 μM ）で３０〜４０％阻害された。
緩衝液（pH9.0 ）２５μｌをセラミダーゼＢ水溶液150
μｌと混合し、３７℃で６０分間保温した後、セラミダ
ーゼＢの合成基質加水分解活性を測定した。その結果、
セラミドの加水分解物であるスフィンゴシンと脂肪酸
（それぞれ100 μM ）で３０〜４０％阻害された。
【００１６】
【発明の効果】本発明のセラミダーゼＢは、至適pHを弱
アルカリ域に有し、かつ、弱酸性域から弱アルカリ性域
（６〜１０）に活性を有し、更に合成セラミドのみなら
ず天然セラミド画分に対しても活性を有するため、種々
の脂質代謝異常の疾患の治療・予防、皮膚の機能維持・
改善等を目的とする医薬品、診断薬、化粧料等の成分と
して有用である。特に皮膚天然セラミドに対する活性が
高く、保湿効果、バリア補強効果を有する皮膚外用剤、
化粧料の成分として有用である。
アルカリ域に有し、かつ、弱酸性域から弱アルカリ性域
（６〜１０）に活性を有し、更に合成セラミドのみなら
ず天然セラミド画分に対しても活性を有するため、種々
の脂質代謝異常の疾患の治療・予防、皮膚の機能維持・
改善等を目的とする医薬品、診断薬、化粧料等の成分と
して有用である。特に皮膚天然セラミドに対する活性が
高く、保湿効果、バリア補強効果を有する皮膚外用剤、
化粧料の成分として有用である。
【００１７】
【実施例】次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明する
が、本発明はこれに限定されるものではない。
が、本発明はこれに限定されるものではない。
【００１８】実施例１ ラット大脳100gに300ml の１mM EDTA 、1mM EGTA、0.5m
M PMSF 0.25Mショ糖を含む６７mMリン酸緩衝液（pH7.4
）（以下Buffer Aと表示する。）を加え、テフロンホ
モジナイザーによって組織を破壊し遠心分離（800×
ｇ、１０分間）し、上清を得る。更に残った沈渣を200m
l のBuffer Aで再抽出し、再び遠心分離を行い、その上
清を合わせる（このものの合成基質に対するセラミド分
解活性は4.2×１０4 dpm/mgであった。）。これを更に1
0,000×ｇで３０分間の遠心操作を行い、得られた沈渣
にBuffer Aを１５ml添加し懸濁する。この懸濁液に300m
l の１mM EDTA 、１mM EGTA 、0.5mM PMSF、0.5 ％コー
ル酸ナトリウムを含む６７mMリン酸緩衝液（pH7.4 ）
（以下Buffer Bと表示する。）を加え、４℃にて２時間
攪拌した後、更に遠心分離（10,000×ｇ, ３０分間）
し、上清を粗酵素液とする（このものの合成基質に対す
るセラミド分解活性は2.9 ×１０5 dpm/mgであっ
た。）。この粗酵素液をBuffer Bで平衡したDEAE−セル
ロース（Whatman 株式会社製）カラムクロマトグラフィ
ーに通液し、樹脂に吸着しない活性画分（セラミダーゼ
Ａ）を回収した。また同緩衝液で塩化ナトリウム０〜1.
5Mの直線的濃度勾配法にて別の活性画分（セラミダーゼ
Ｂ）を集め、図６に示すように新規のセラミダーゼＡ及
びＢを含む二画分を得た。得られたセラミダーゼＢは前
記の酵素学的性質を有し、分子量（ゲル濾過法）は150,
000 であった。
M PMSF 0.25Mショ糖を含む６７mMリン酸緩衝液（pH7.4
）（以下Buffer Aと表示する。）を加え、テフロンホ
モジナイザーによって組織を破壊し遠心分離（800×
ｇ、１０分間）し、上清を得る。更に残った沈渣を200m
l のBuffer Aで再抽出し、再び遠心分離を行い、その上
清を合わせる（このものの合成基質に対するセラミド分
解活性は4.2×１０4 dpm/mgであった。）。これを更に1
0,000×ｇで３０分間の遠心操作を行い、得られた沈渣
にBuffer Aを１５ml添加し懸濁する。この懸濁液に300m
l の１mM EDTA 、１mM EGTA 、0.5mM PMSF、0.5 ％コー
ル酸ナトリウムを含む６７mMリン酸緩衝液（pH7.4 ）
（以下Buffer Bと表示する。）を加え、４℃にて２時間
攪拌した後、更に遠心分離（10,000×ｇ, ３０分間）
し、上清を粗酵素液とする（このものの合成基質に対す
るセラミド分解活性は2.9 ×１０5 dpm/mgであっ
た。）。この粗酵素液をBuffer Bで平衡したDEAE−セル
ロース（Whatman 株式会社製）カラムクロマトグラフィ
ーに通液し、樹脂に吸着しない活性画分（セラミダーゼ
Ａ）を回収した。また同緩衝液で塩化ナトリウム０〜1.
5Mの直線的濃度勾配法にて別の活性画分（セラミダーゼ
Ｂ）を集め、図６に示すように新規のセラミダーゼＡ及
びＢを含む二画分を得た。得られたセラミダーゼＢは前
記の酵素学的性質を有し、分子量（ゲル濾過法）は150,
000 であった。
【００１９】実施例２ モルモット背部皮膚を細断し、ディスパーゼ（1,000PU/
PBS(+), 合同酒精株式会社製）で４℃、一昼夜処理し、
表皮シートを得る。得られた表皮100gに300mlのBuffer
Aを加え、ポリトロンを用いてホモジナイズし、実施例
１と同様な方法でモルモット表皮より、図７に示すよう
に二種の新規セラミダーゼＡ及びＢを抽出した。このよ
うにして抽出したそれぞれのセラミダーゼＡ及びＢを疎
水性カラムクロマトグラフィー、アフィニティークロマ
トグラフィー、ゲル濾過、吸着カラムクロマトグラフィ
ー、等電点電気泳動などを用い部分精製した。得られた
セラミダーゼＢは、前記の酵素学的性質を有し、分子量
（ゲル濾過法）は150,000 であった。
PBS(+), 合同酒精株式会社製）で４℃、一昼夜処理し、
表皮シートを得る。得られた表皮100gに300mlのBuffer
Aを加え、ポリトロンを用いてホモジナイズし、実施例
１と同様な方法でモルモット表皮より、図７に示すよう
に二種の新規セラミダーゼＡ及びＢを抽出した。このよ
うにして抽出したそれぞれのセラミダーゼＡ及びＢを疎
水性カラムクロマトグラフィー、アフィニティークロマ
トグラフィー、ゲル濾過、吸着カラムクロマトグラフィ
ー、等電点電気泳動などを用い部分精製した。得られた
セラミダーゼＢは、前記の酵素学的性質を有し、分子量
（ゲル濾過法）は150,000 であった。
【図１】セラミダーゼＢの至適pHを示す図である。
【図２】セラミダーゼＢのpH安定性を示す図である（基
質として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使用）。
質として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使用）。
【図３】セラミダーゼＢの作用適温の範囲を示す図であ
る（基質として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使
用）。
る（基質として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使
用）。
【図４】セラミダーゼＢの温度安定性を示す図である
（基質として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使
用）。
（基質として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使
用）。
【図５】セラミダーゼＢの等電点を示す図である（基質
として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使用）。
として14Ｃ−パルミトイルスフィンゴシンを使用）。
【図６】ラット大脳より得られた粗酵素液をDEAE−セル
ロースカラムクロマトグラフィーに供したときの分画パ
ターンを示す図である（基質として14Ｃ−パルミトイル
スフィンゴシンを使用）。
ロースカラムクロマトグラフィーに供したときの分画パ
ターンを示す図である（基質として14Ｃ−パルミトイル
スフィンゴシンを使用）。
【図７】モルモット表皮より得られた粗酵素液をDEAE−
セルロースカラムクロマトグラフィーに供したときの分
画パターンを示す図である（基質として14Ｃ−パルミト
イルスフィンゴシンを使用）。
セルロースカラムクロマトグラフィーに供したときの分
画パターンを示す図である（基質として14Ｃ−パルミト
イルスフィンゴシンを使用）。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 【請求項１】 次の酵素学的性質を有するセラミダーゼ
Ｂ。 （１）作用 天然セラミド、パルミトイルスフィンゴシン、オレオイ
ルスフィンゴシン及びリノレイルスフィンゴシンに作用
し、これらを加水分解する。 （２）基質特異性 パルミトイルスフィンゴシン、オレオイルスフィンゴシ
ン及びリノレイルスフィンゴシンに対して活性を有し、
また全天然セラミド画分に対して活性を有するが、特に
セラミド・タイプＩ、ＩＩ、ＩＶ及びＶに対する活性が
強い。 （３）至適pH及び安定pH範囲 至適pHは９付近であり、安定pH範囲は５〜１０である。 （４）作用適温の範囲 作用適温は１５〜４５℃の範囲であり、最適温度は約３
０〜４０℃である。 （５）温度による失活の条件 pH7.4 、６０℃で６０分間保温すると、ほぼ完全に失活
する。 （６）分子量（ゲル濾過法） 140,000 ±25,000
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3169816A JPH0515371A (ja) | 1991-07-10 | 1991-07-10 | 新規セラミダーゼ |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3169816A JPH0515371A (ja) | 1991-07-10 | 1991-07-10 | 新規セラミダーゼ |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0515371A true JPH0515371A (ja) | 1993-01-26 |
Family
ID=15893437
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3169816A Pending JPH0515371A (ja) | 1991-07-10 | 1991-07-10 | 新規セラミダーゼ |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0515371A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1172436A1 (en) * | 1999-03-26 | 2002-01-16 | Takara Shuzo Co, Ltd. | Ceramidase gene |
-
1991
- 1991-07-10 JP JP3169816A patent/JPH0515371A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1172436A1 (en) * | 1999-03-26 | 2002-01-16 | Takara Shuzo Co, Ltd. | Ceramidase gene |
| EP1172436A4 (en) * | 1999-03-26 | 2002-07-17 | Takara Shuzo Co | CERAMIDASE GENE |
| US6830919B1 (en) | 1999-03-26 | 2004-12-14 | Takara Bio Inc. | Ceramidase gene |
| US7449553B2 (en) | 1999-03-26 | 2008-11-11 | Takara Bio Inc. | Antibody that binds ceramidase |
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