JPH05130885A - Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism - Google Patents

Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism

Info

Publication number
JPH05130885A
JPH05130885A JP9322191A JP9322191A JPH05130885A JP H05130885 A JPH05130885 A JP H05130885A JP 9322191 A JP9322191 A JP 9322191A JP 9322191 A JP9322191 A JP 9322191A JP H05130885 A JPH05130885 A JP H05130885A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
lactosylfructoside
lactose
glucose
sucrose
fructose
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP9322191A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Tadashi Kanematsu
正 兼松
Osamu Ozawa
修 小澤
Kotaro Otsuka
耕太郎 大塚
Takayuki Fukushima
孝之 福嶋
Yoshihiko Tsujita
良彦 辻田
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nisshin Seito KK
Original Assignee
Nisshin Seito KK
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nisshin Seito KK filed Critical Nisshin Seito KK
Priority to JP9322191A priority Critical patent/JPH05130885A/en
Publication of JPH05130885A publication Critical patent/JPH05130885A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

PURPOSE:To increase the content of lactosylfructoside in sugar syrup by adding a specific microorganism in the production of lactosylfructoside from sucrose and lactose, thereby consuming the by-produced glucose, etc. CONSTITUTION:A microbial strain belonging to genus Candida or Pichia, capable of assimilating glucose and fructose and incapable of assimilating lactosylfructoside, lactose and sucrose (e.g. Candida cantarellii IFO-1261) is added in the treatment of sucrose and lactose with beta-fructofuranosidase or levansucrase. The glucose and fructose are consumed and the content of lactosylfructoside in the reactional liquid is increased by this process. The reaction is preferably carried out at 30-40 deg.C and pH5-8 for 12-14hr.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、ビフィズス菌増殖物質
および抗う蝕性低カロリー甘味料として有用なラクトシ
ルフラクトシド(0−β−D−ガラクトピラノシル−
(1−4)−0−α−D−グルコピラノシル−(1−
2)−β−D−フラクトフラノシド、ラクトスクロー
ス)の製造方法に関し、より詳しくは、微生物を利用し
てラクトシルフラクトシド高含有糖液を製造する方法に
関する。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to lactosylfructoside (0-β- D -galactopyranosyl-), which is useful as a bifidobacterial growth substance and an anti-caries low-calorie sweetener.
(1-4) -0-α- D -glucopyranosyl- (1-
2) -β- D -fructofuranoside, lactosucrose), and more particularly to a method for producing a lactosylfructoside-rich sugar solution using a microorganism.

【0002】[0002]

【従来の技術】ラクトシルフラクトシドは、ラクトース
のグルコース残基にフラクトースが結合した三糖類で、
抗う蝕性の糖やヒトの有用腸内細菌であるビフィズス菌
増殖物質として有効である。
2. Description of the Related Art Lactosylfructoside is a trisaccharide in which fructose is bound to the glucose residue of lactose.
It is effective as an anti-cariogenic sugar and a growth substance for Bifidobacterium, which is a useful enteric bacterium for humans.

【0003】現在、バルチス・サブチリス(Bacil
lus subtilis)のレバンシュークラーゼ
(J.Biochem.,90,521−526(19
81))、(特開昭55−118369)や、アエロバ
クター(Aerobacter)属菌起源のレバンシュ
ークラーゼ(特開昭55−118369)を用いてラク
トースとスクロースからラクトシルフラクトシドを合成
する方法等が報告されている。
Presently, Baltis subtilis
L. subtilis levansucrase (J. Biochem., 90, 521-526 (19).
81)), (JP-A-55-118369) and a method for synthesizing lactosylfructoside from lactose and sucrose using Levansucrase derived from a bacterium belonging to the genus Aerobacterium (JP-A-55-118369). Has been reported.

【0004】またアースロバクター(Arthroba
cter sp. K−1)(Agric.Biol.
Chem., 54,913−919(1990))の
β−フラクトフラノシダーゼを用いラクトースとスクロ
ースからラクトシルフラクトシドを合成する方法等が報
告されている。
In addition, Arthrobacter
cter sp. K-1) (Agric. Biol.
Chem. , 54, 913-919 (1990)) and a method for synthesizing lactosylfructoside from lactose and sucrose using β-fructofuranosidase.

【0005】しかし、これらの方法ではラクトシルフラ
クトシド以外に数種類以上のオリゴ糖が生成し、収率も
低いためラクトシルフラクトシドのみを分離することは
極めて難しく、実用性に乏しい。
However, in these methods, several kinds of oligosaccharides other than lactosylfructoside are produced, and the yield is low, so that it is extremely difficult to separate only lactosylfructoside and it is not practical.

【0006】[0006]

【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、微生物
によるラクトシルフラクトシドの製造を目的として微生
物の検索を行ったところ、バチルス属の微生物が生成す
るβ−フラクトフラノシダーゼが高いフラクトース残基
転移能を有し、ラクトシルフラクトシドを大量に生成す
ることを見いだした(特願平2−332716)。
The present inventors have conducted a search for microorganisms for the purpose of producing lactosylfructoside by the microorganisms, and found that the β-fructofuranosidase produced by Bacillus microorganisms has a high fructose residue. It has been found that it has group transfer ability and produces a large amount of lactosylfructoside (Japanese Patent Application No. 2-332716).

【0007】しかしながら、上記の方法を用いてもラク
トシルフラクトシドの収率は約35%程度であり、反応
液中には原料であるスクロースとラクトースやスクロー
スの分解物であるグルコースやフラクトースが残存して
いる。また反応液中にスクロースの分解物であるグルコ
ースが蓄積するとラクトシルフラクトシドの生成速度も
減少してくる。
However, the yield of lactosylfructoside is about 35% even when the above method is used, and sucrose and lactose which are raw materials and glucose and fructose which are decomposition products of sucrose remain in the reaction solution. is doing. Further, when glucose, which is a decomposition product of sucrose, accumulates in the reaction solution, the production rate of lactosylfructoside also decreases.

【0008】ラクトシルフラクトシド以外の反応液中の
糖類を除去する方法としては、活性炭による吸着作用や
ゲル濾過など、分子ふるいを利用したカラムクロマトグ
ラフィーなどによる方法が知られている。しかし、これ
らのカラムクロマトグラフィーによる方法は、高価なエ
タノールを大量に使用したり、大量に処理できないなど
工業的生産には適していない。
As a method for removing saccharides other than lactosylfructoside in the reaction solution, there are known methods such as column chromatography using molecular sieve such as adsorption by activated carbon and gel filtration. However, these methods by column chromatography are not suitable for industrial production because expensive ethanol is used in a large amount or cannot be processed in a large amount.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、スクロー
スとラクトースを原料として発酵法、あるいは酵素法に
よりラクトシルフラクトシドを製造する際に、微生物を
作用させてラクトシルフラクトシドの含有率を高める方
法を確立するため、グルコースおよびフラクトースを資
化できるが、生成物であるラクトシルフラクトシドと原
料のラクトースおよびスクロースを資化できない微生物
の検索を行った。その結果、キャンディダ(Candi
da)属あるいはフィチア(Pichia)属に属する
微生物が有効であることを見いだし、本発明にいたっ
た。
[Means for Solving the Problems] When the lactosylfructoside is produced by a fermentation method or an enzymatic method using sucrose and lactose as raw materials, the inventors of the present invention acted on a microorganism so that the content rate of the lactosylfructoside was In order to establish a method for increasing the glucose content, we searched for microorganisms that can utilize glucose and fructose but not the products lactosylfructoside and the raw materials lactose and sucrose. As a result, Candida
The inventors have found that microorganisms belonging to the genus da) or the genus Pichia are effective, and have reached the present invention.

【0010】すなわち、本発明にかかるラクトシルフラ
クトシドの製造方法は、ラクトシルフラクトシドの製造
を行うにあたり、キャンディダ(Candida)属あ
るいはフィチア(Pichia)属に属する微生物を作
用させ、グルコース、フラクトースを資化させることに
よりラクトシルフラクトシドの含有率を安価に高めるこ
とを特徴とするものである。
That is, in the method for producing lactosylfructoside according to the present invention, when the lactosylfructoside is produced, a microorganism belonging to the genus Candida or the genus Pichia is allowed to act on glucose and fructose. It is characterized in that the content rate of lactosylfructoside can be increased at low cost by assimilating.

【0011】以下本発明について詳述する。The present invention will be described in detail below.

【0012】使用する微生物 使用する微生物はキャンディダ(Candida)属あ
るいはフィチア(Pichia)属に属する微生物でグ
ルコースおよびフラクトースを資化できるが、生成物で
あるラクトシルフラクトシドと原料のラクトースおよび
スクロースを資化できない微生物であれば特に限定され
ないが、キャンディダ・キャンタレリー(Candid
a cantarellii)IFO−1261株、キ
ャンディダ・カラワイエウイー(Candida ka
rawaiewii)IFO−10286株、フィチア
・アカシアエ(Pichia acashiae)IF
O−1681株、フィチア・ディスポーラ(Pichi
a dispora)IFO−0035株などグルコー
スとフラクトースは資化するがラクトース、スクロー
ス、ラクトシルフラクトシドを資化しない微生物を利用
する。
Microorganisms to be used Microorganisms to be used are microorganisms belonging to the genus Candida or the genus Pichia and are capable of assimilating glucose and fructose. There is no particular limitation as long as it is a microorganism that cannot be assimilated, but Candida canterary (Candid)
a cantarellii) IFO-1261 strain, Candida ka
rawawiii) IFO-10286 strain, Pichia acaciae IF
O-1681 strain, Pichia Dispora (Pichi
a dispora) IFO-0035 strain, which utilizes glucose and fructose but does not assimilate lactose, sucrose and lactosylfructoside.

【0013】これらの微生物自体は公知のものである
が、これらの微生物の本発明における作用は本発明者ら
が初めて見いだしたものである。
These microorganisms are known per se, but the action of these microorganisms in the present invention was first discovered by the present inventors.

【0014】本発明で用いる上記微生物の培養方法とし
ては、公知の微生物培養方法が採用できる。例えば、培
地のpHは4〜8、培養温度は20〜40℃、培養期間
1〜4日間の範囲で、攪拌培養、静置培養のどちらでも
培養できる。
As a method for culturing the above-mentioned microorganism used in the present invention, a known method for culturing a microorganism can be adopted. For example, the pH of the medium is 4 to 8, the culturing temperature is 20 to 40 ° C., and the culturing period is 1 to 4 days. Either stirring culture or static culturing can be performed.

【0015】微生物を作用させる方法 本発明において微生物を作用させる方法としては、スク
ロースとラクトースにバチルス・メガテリウム(Bac
hillus megaterium)IFO−134
98株のβ−フラクトフラノシダーゼを作用させてラク
トシルフラクトシドを生産する際に、前記微生物の内、
少なくとも1株の生菌体を同時に加え、副生するグルコ
ースを消費させながら反応を行ってラクトシルフラクト
シドを高収率で生産する。反応は30〜40℃、PH5
〜8で、12〜14時間行う。
Method for Acting on Microorganisms In the present invention, a method for effecting microorganisms is to use sucrose and lactose with Bacillus megaterium (Bac).
Hillus megaterium) IFO-134
Among the above microorganisms, when β-fructofuranosidase of 98 strain is allowed to act to produce lactosylfructoside,
At least one strain of viable cells is added at the same time, and the reaction is performed while consuming glucose as a by-product to produce lactosylfructoside in high yield. The reaction is 30-40 ° C, PH5
~ 8, 12-12 hours.

【0016】この方法では、反応液中からラクトースを
除去することはできないが、スクロースのフラクトース
残基がラクトースに転移する際に副生するグルコース
が、反応系よりただちに除去されるため、フラクトース
残基がラクトースだけに転移し、生成物であるラクトシ
ルフラクトシドの収率が向上する。また、ラクトシルフ
ラクトシド以外の転移生成物が少なく、効率よくラクト
シルフラクトシドが生成される。
[0016] According to this method, lactose cannot be removed from the reaction solution, but glucose by-produced when the fructose residue of sucrose is transferred to lactose is immediately removed from the reaction system. Is transferred only to lactose, and the yield of the product lactosylfructoside is improved. In addition, there are few transfer products other than lactosylfructoside, and lactosylfructoside is efficiently produced.

【0017】[0017]

【実施例】【Example】

〈実施例 1〉 菌体の製造 (MY培地) 麦芽エキス 3g 酵母エキス 3g ペプトン 5g ブドウ糖 10 g 水 1000 ml 上記組成の培地21(2リットル)を小型ジャーファー
メンターに入れ、あらかじめ同培地で前培地しておいた
キャンディダ・キャンタレリー(Candidacan
tarellii)IFO−1261株または、キャン
ディダ・カラワイエウイー(Candida kara
waiewii)IFO−10286株、フィチア・ア
カシアエ(Pichia acashiae)IFO−
1681株、フィチア・ディスポーラ(Pichia
dispora)IFO−0035株の培養液50ml
を接種し、30℃で16時間通気培養をおこなった。培
養終了後、21(2リットル)の培養液から遠心分離
(8000rpm、10分間)して菌体を回収した。回
収した菌体を蒸留水で2回洗浄後、それぞれ湿重量3
5.4g、47.2g、48.5g、53.5gの菌体
を得た。 〈実施例 2〉 酵素反応によるラクトシルフラクト
シドの生成(1) スクロース200gとラクトース200gを30mMリ
ン酸緩衝液(pH6.0)に溶解して11(1リット
ル)とした。これにバチルス・メガテリウムIFO−1
3498株の精製β−フラクトフラノシダーゼ100ユ
ニットとキャンディダ・キャンタレリー(Candid
a cantarellii)IFO−1261株の湿
菌体25gを加えて30℃で16時間反応させた。反応
終了後、遠心分離(8000rpm、10分間)により
菌体を除去し、上澄み液を得た。
<Example 1> Production of bacterial cells (MY medium) Malt extract 3 g Yeast extract 3 g Peptone 5 g Glucose 10 g Water 1000 ml Medium 21 (2 liters) having the above composition was put in a small jar fermenter and pre-cultured in the same medium in advance. Candida Canterary
tarellii) IFO-1261 strain or Candida kara
waiwii) IFO-10286 strain, Pichia acaciae IFO-
1681 strain, Pichia Dispora
dispora) IFO-0035 strain culture medium 50 ml
Was inoculated and aerobically cultured at 30 ° C. for 16 hours. After the culture was completed, the cells were collected from 21 (2 liters) of the culture solution by centrifugation (8000 rpm, 10 minutes). The collected cells were washed twice with distilled water and then wet weight 3
5.4 g, 47.2 g, 48.5 g and 53.5 g of bacterial cells were obtained. Example 2 Production of Lactosylfructoside by Enzymatic Reaction (1) 200 g of sucrose and 200 g of lactose were dissolved in a 30 mM phosphate buffer (pH 6.0) to give 11 (1 liter). Bacillus megaterium IFO-1
100 units of purified β-fructofuranosidase from strain 3498 and Candida canary
a cantarellii) 25 g of wet cells of IFO-1261 strain was added and reacted at 30 ° C. for 16 hours. After completion of the reaction, cells were removed by centrifugation (8000 rpm, 10 minutes) to obtain a supernatant.

【0018】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たラクトシルフラクトシドを測定したところ、201g
のラクトシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の74%を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
When lactosylfructoside produced by high performance liquid chromatography was measured, it was 201 g.
Of lactosyl fructoside was produced, accounting for 74% of the total amount of sugar in the reaction solution, and glucose and fructose were scarcely observed.

【0019】〈実施例 3〉 酵素反応によるラクト
シルフラクトシドの生成(2) スクロース200gとラクトース200gを30mMリ
ン酸緩衝液(pH6.0)に溶解して11(1リット
ル)とした。これにバチルス・メガテリウムIFO−1
3498株の精製β−フラクトフラノシダーゼ100ユ
ニットとフィチア・アカシアエ(Pichia aca
siae)IFO−1681株の湿菌体25gを加えて
30℃で16時間反応させた。反応終了後、遠心分離
(8000rpm、10分間)により菌体を除去し、上
澄み液を得た。
Example 3 Production of Lactosylfructoside by Enzymatic Reaction (2) 200 g of sucrose and 200 g of lactose were dissolved in 30 mM phosphate buffer (pH 6.0) to make 11 (1 liter). Bacillus megaterium IFO-1
100 units of purified β-fructofuranosidase of strain 3498 and Pichia acaciae.
siae) 25 g of wet cells of IFO-1681 strain was added and reacted at 30 ° C. for 16 hours. After completion of the reaction, cells were removed by centrifugation (8000 rpm, 10 minutes) to obtain a supernatant.

【0020】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たラクトシルフラクトシドを測定したところ、204g
のラクトシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の75%を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
The lactosylfructoside produced by high performance liquid chromatography was measured to be 204 g.
Lactosyl fructoside was produced, occupying 75% of the total amount of sugar in the reaction solution, and glucose and fructose were hardly found.

【0021】〈実施例 4〉 菌体反応によるラクト
シルフラクトシドの生成 スクロース150gとラクトース150gを30mMリ
ン酸緩衝液(pH6.0)に溶解して11(1リット
ル)とした。これにβ−フラクトフラノシダーゼを有す
るバチルス・メガテリウムIFO−13498株の湿菌
体29gとキャンディダ・カラワイエウイー(Cand
ida karawaiewii)IFO−10286
株の湿菌体25gを加えて30℃で16時間反応させ
た。反応終了後、遠心分離(8000rpm、10分
間)により菌体を除去し、上澄み液を得た。
Example 4 Production of lactosylfructoside by cell reaction 150 g of sucrose and 150 g of lactose were dissolved in 30 mM phosphate buffer (pH 6.0) to give 11 (1 liter). 29 g of wet bacterium of Bacillus megaterium IFO-13498 strain having β-fructofuranosidase and Candida karawaiie (Cand)
ida karawaiwii) IFO-10286
25 g of wet bacterial cells of the strain was added and reacted at 30 ° C. for 16 hours. After completion of the reaction, cells were removed by centrifugation (8000 rpm, 10 minutes) to obtain a supernatant.

【0022】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たラクトシルフラクトシドを測定したところ、148g
のラクトシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の73%を占めグルコースとフラクトースはほとんど認
められなかった。
The amount of lactosylfructoside produced by high performance liquid chromatography was measured to be 148 g.
Lactosyl fructoside was produced and accounted for 73% of the total sugar amount in the reaction solution, and glucose and fructose were scarcely observed.

【0023】〈実施例 5〉 培養によるラクトシルフ
ラクトシドの生成 ラクトース 100 g スクロース 100 g 酵母エキス 1 g KH2PO4 1.5g Na2HPO4・12H2O 8 g 水 1000 ml pH 7.0 上記組成の培地21(2リットル)を小型ジャーファー
メンターに入れ、別に前培養しておいたバチルス・メガ
テリウムIFO−13498株の培養液50mlとフィ
チア・ディスポーラ(pichia dispora)
IFO−0035株の湿菌体35gを加え、30℃で1
8時間通気培養を行った。培養液21(2リットル)を
遠心分離(15000rpm)により菌体を除去し、上
澄み液を得た。
Example 5 Production of Lactosylfructoside by Culture Lactose 100 g Sucrose 100 g Yeast Extract 1 g KH 2 PO 4 1.5 g Na 2 HPO 4 · 12H 2 O 8 g Water 1000 ml pH 7.0 The medium 21 (2 liters) having the above composition was placed in a small jar fermenter and separately precultured, 50 ml of a culture solution of Bacillus megaterium IFO-13498 strain and Pichia dispora.
Add 35 g of wet cells of the IFO-0035 strain, and add 1 at 30 ° C.
Aeration culture was performed for 8 hours. The culture solution 21 (2 liters) was centrifuged (15000 rpm) to remove the cells, and a supernatant was obtained.

【0024】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たラクトシルフラクトシドを測定したところ、192g
のラクトシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の70%を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
The amount of lactosylfructoside produced by high performance liquid chromatography was measured to be 192 g.
Of lactosyl fructoside was produced, accounting for 70% of the total sugar amount in the reaction solution, and glucose and fructose were scarcely observed.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 福嶋 孝之 東京都江東区豊洲4−9−11 日新製糖株 式会社研究部内 (72)発明者 辻田 良彦 東京都江東区豊洲4−9−11 日新製糖株 式会社研究部内 ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Inventor Takayuki Fukushima 4-9-11 Toyosu, Koto-ku, Tokyo Nisshin Sugar Co., Ltd. (72) Inventor Yoshihiko Tsujita 4-9-11 Toyosu, Koto-ku, Tokyo Research department of new sugar stock company

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】スクロースとラクトースにβーフラクトフ
ラノシダーゼあるいはレバンシュークラ−ゼを作用させ
てラクトシルフラクトシドを生産する際に、グルコース
およびフラクトースは資化できるが、ラクトシルフラク
トシドおよびラクトース、スクロースは資化できないキ
ャンディダ(Candida)属あるいはフィチア(P
ichia)属に属する微生物のうち、少なくとも1株
を作用させ、副生するグルコースとフラクトースを消費
させて反応液中のラクトシルフラクトシドの含有率を高
めることを特徴とする微生物によるラクトシルフラクト
シド高含有糖液の製造方法。
1. When lactosylfructoside is produced by reacting sucrose and lactose with β-fructofuranosidase or levansucrose, glucose and fructose can be assimilated, but lactosylfructoside and lactose, Sucrose cannot be assimilated but can belong to the genus Candida or Phichia (P.
Lactosylfructoside by a microorganism characterized in that at least one strain among the microorganisms belonging to the genus ichia) is allowed to act and the glucose and fructose produced as by-products are consumed to increase the content of lactosylfructoside in the reaction solution. Method for producing high content sugar liquid.
JP9322191A 1991-03-30 1991-03-30 Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism Pending JPH05130885A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP9322191A JPH05130885A (en) 1991-03-30 1991-03-30 Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP9322191A JPH05130885A (en) 1991-03-30 1991-03-30 Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH05130885A true JPH05130885A (en) 1993-05-28

Family

ID=14076508

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP9322191A Pending JPH05130885A (en) 1991-03-30 1991-03-30 Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH05130885A (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005103276A1 (en) * 2004-04-22 2005-11-03 Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo Sugar with high content of lactosucrose, process for producing the same and use thereof

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005103276A1 (en) * 2004-04-22 2005-11-03 Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo Sugar with high content of lactosucrose, process for producing the same and use thereof
JPWO2005103276A1 (en) * 2004-04-22 2008-03-13 株式会社林原生物化学研究所 Lactosucrose-rich carbohydrate, production method and use thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8530222B2 (en) Microorganism with ability to produce deoxy polyol dehydrogenase and use thereof
JPH05130885A (en) Production of sugar syrup having high lactosylfructoside content by microorganism
FR2549853A1 (en) PROCESS FOR PRODUCING S-ADENOSYL-L-HOMOCYSTEINE HYDROLASE
JPH05137590A (en) Purification of lactosyl fructoside by microorganism
JPH05276970A (en) Production of saccharide solution having high content of xylosylfructoside by microorganism
JPH09154589A (en) Production of erythritol
JPH05252971A (en) Purification of xylosyl fructoside by microorganism
JPS61268179A (en) Novel extracellular fructosyl transferase and production thereof
JP2731100B2 (en) Dextran sucrase-producing novel microorganism and method for producing dextran sucrase using the novel microorganism
JP2768473B2 (en) Method for producing NADH oxidase
JP4259642B2 (en) Method for producing L-ribulose
WO1992018637A1 (en) Method for the production of d-gluconic acid
JPH08140691A (en) Production of high purity oligosaccharides from highly concentrated mixed saccharide solution
JPH04200386A (en) Beta-fructofuranosidase and production thereof
US4086138A (en) Process for producing glucose isomerase
JP3840538B2 (en) Method for producing D-tagatose
JP3100196B2 (en) Process for producing starch sugar
JP2901458B2 (en) Method for producing gentianose
JP2973669B2 (en) Process for producing (S)-(-)-2,3-dihalo-1-propanol
JP2000201690A (en) Production of xylitol
JPS5953838B2 (en) Method for producing β-hydroxyvaleric acid
JPH072116B2 (en) Method for producing difructose and dianhydride III
JPH062071B2 (en) Saccharide manufacturing method
JP3626084B2 (en) Endo-β-1,3-mannanase and method for producing the same
JP3148342B2 (en) Novel bacteria suitable for the production of levan fructan