JPH044877A - エンドヌクレアーゼおよびアンチセンス活性を有するrna、その製造およびその使用 - Google Patents
エンドヌクレアーゼおよびアンチセンス活性を有するrna、その製造およびその使用Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の背景コ
適当な条件下で、RNA分子は、タンパク質の関与なし
で他のRNA分子上の反応を触媒することまたは自触媒
作用的にそれら自身の分子からフラグメントを切断する
ことができる。したがって、413個のヌクレオチドを
有するイントロンは、テトラヒメナ・サーモフィラ(T
etrahymenathermophi Ia)の2
3S rRNAの39末端から自触媒作用的に除去さ
れ、環型へ変換される。これは、グアノシン補因子が関
与する多くのフォスフオニステル転移反応によって起き
る(Cech、 T。
で他のRNA分子上の反応を触媒することまたは自触媒
作用的にそれら自身の分子からフラグメントを切断する
ことができる。したがって、413個のヌクレオチドを
有するイントロンは、テトラヒメナ・サーモフィラ(T
etrahymenathermophi Ia)の2
3S rRNAの39末端から自触媒作用的に除去さ
れ、環型へ変換される。これは、グアノシン補因子が関
与する多くのフォスフオニステル転移反応によって起き
る(Cech、 T。
R,: Nataure 3D、57B−583,19
83)。RNA基質または選択される反応条件によって
、イントロンは特異的リボヌクレアーゼ、ターミナルト
ランスフェラーゼ、フォスフオドランスフェラーゼまた
は酸フォスファターゼとして機能することができる。
83)。RNA基質または選択される反応条件によって
、イントロンは特異的リボヌクレアーゼ、ターミナルト
ランスフェラーゼ、フォスフオドランスフェラーゼまた
は酸フォスファターゼとして機能することができる。
これに関連して、RNA分子はそれ自身を変化させるこ
となくいくつかの反応を行うことができ、この点で、酵
素のように挙動する。この理由のために、これらの性質
を有するRNA分子にリボザイム(r i bozym
e)という用語が付された。
となくいくつかの反応を行うことができ、この点で、酵
素のように挙動する。この理由のために、これらの性質
を有するRNA分子にリボザイム(r i bozym
e)という用語が付された。
タンパク質の関与しない同様の反応は、いくつかのウィ
ロイドRNAおよびサテライトRNAて示すことも可能
である。したがって、自己プロセシング(self−p
rocessing)は、アボカド日シミ(5unbl
otch)ウィロイド(AS B V)(Hutchi
ns、 C,J、ら: Nucleic Ac1ds
Res、 11゜3627−3640.1986)、タ
バコ輪斑(r i ngspo t)ウイルスノサテラ
イトRNA (sTobRV)(Prody、 G、A
、ら: 5cienceΣ■、1577−1580.1
986)およびルセルネー時線条ウィルス(Iucer
netransient 5treak Virus)
のサテライトRNA(s L T S V ) (Fo
rster、 A、C,ら: Cel+ [,211−
220,1987)の増殖のために必須の反応のよって
ある。これらRNAの複製中に、鋳型として延長部分を
有するRNAの合成を導く環型がおそらく形成される。
ロイドRNAおよびサテライトRNAて示すことも可能
である。したがって、自己プロセシング(self−p
rocessing)は、アボカド日シミ(5unbl
otch)ウィロイド(AS B V)(Hutchi
ns、 C,J、ら: Nucleic Ac1ds
Res、 11゜3627−3640.1986)、タ
バコ輪斑(r i ngspo t)ウイルスノサテラ
イトRNA (sTobRV)(Prody、 G、A
、ら: 5cienceΣ■、1577−1580.1
986)およびルセルネー時線条ウィルス(Iucer
netransient 5treak Virus)
のサテライトRNA(s L T S V ) (Fo
rster、 A、C,ら: Cel+ [,211−
220,1987)の増殖のために必須の反応のよって
ある。これらRNAの複製中に、鋳型として延長部分を
有するRNAの合成を導く環型がおそらく形成される。
これら転写物は、自触媒作用的なエンドヌクレアーゼ的
(endonucleolytic)反応によって正し
いゲノムの長さに切断される。
(endonucleolytic)反応によって正し
いゲノムの長さに切断される。
これらの反応のためとおそらく考えられるRNAの構造
はハンマー頭(hammerheads)(Forst
er、 A、C,ら: Ce1l 1151.2+1−
220.1987、Haseloff、J、ら: Na
ture 3i1.585−591、+988)と記述
されている。
はハンマー頭(hammerheads)(Forst
er、 A、C,ら: Ce1l 1151.2+1−
220.1987、Haseloff、J、ら: Na
ture 3i1.585−591、+988)と記述
されている。
プロセシングが起こり得るために、これらRNA酵素の
切断部位は特異的で、ある構造的特徴を有していなけれ
はならない。
切断部位は特異的で、ある構造的特徴を有していなけれ
はならない。
アンチセンスRNAに連結されたりボサイムをコードす
るDNAを含むヘクターを用いて所望の任意の生物の宿
主細胞を形質転換することが可能で、それによって該R
NAを発現することができることが、いま見出された。
るDNAを含むヘクターを用いて所望の任意の生物の宿
主細胞を形質転換することが可能で、それによって該R
NAを発現することができることが、いま見出された。
アンチセンスRNAが、多くの原核および真核細胞、と
りわけ植物細胞、においても遺伝子発現を阻害すること
が知られている(Green、 P、ら:Ann、 R
es、 Biochem、 55.569.1986)
。阻害の機序のほとんどはまだ明かではない。真核生物
系ではm RN Aの細胞質への輸送を妨げる二本鎖R
NAが形成されることが考えられる。
りわけ植物細胞、においても遺伝子発現を阻害すること
が知られている(Green、 P、ら:Ann、 R
es、 Biochem、 55.569.1986)
。阻害の機序のほとんどはまだ明かではない。真核生物
系ではm RN Aの細胞質への輸送を妨げる二本鎖R
NAが形成されることが考えられる。
Rezaianら(Rezaian、 M、 ら:
Plant Mo1. B+ol。
Plant Mo1. B+ol。
■、463.198B)は、例えは、アンチセンスRN
Aのキュウリモザイクウィルス(CMV)に対する抗ウ
ィルス剤としての使用の可能性を調べた。しかし、著者
らは、アンチセンスRNAの抗ウィルス活性は不十分で
あったことを観察した。
Aのキュウリモザイクウィルス(CMV)に対する抗ウ
ィルス剤としての使用の可能性を調べた。しかし、著者
らは、アンチセンスRNAの抗ウィルス活性は不十分で
あったことを観察した。
[発明の概要]
しかしながら、ループ(後記の図式を参照されたい)中
の適当なりボザイムRNAの適当なアンチセンスRNA
との連結は、いま、Rezaianが示し得たよりもよ
り効果的なウィルス抵抗性をもたらす。RNA分子のそ
のような連結は、したがって、形質転換された生物にお
いて、基質に向けられた高められた活性を植物における
抗ウィルス剤としての活性に関してだけてなく一般にも
もたらす。
の適当なりボザイムRNAの適当なアンチセンスRNA
との連結は、いま、Rezaianが示し得たよりもよ
り効果的なウィルス抵抗性をもたらす。RNA分子のそ
のような連結は、したがって、形質転換された生物にお
いて、基質に向けられた高められた活性を植物における
抗ウィルス剤としての活性に関してだけてなく一般にも
もたらす。
したがって、本発明は次のことに関する。
1、 アンチセンスRNA配列と連結させたループ中の
リボザイムRNA配列をコートする遺伝子。
リボザイムRNA配列をコートする遺伝子。
2、 1で定義した遺伝子を含む宿主細胞。
3、 宿主細胞における、基質に向けられた作用物とし
ての、1て定義した遺伝子によってコートされるRNA
の使用。
ての、1て定義した遺伝子によってコートされるRNA
の使用。
[発明の詳細な説明コ
本発明は、特にその好ましい態様において、以下に詳細
に記述される。本発明はまた特許請求の範囲に定義され
る通りである。
に記述される。本発明はまた特許請求の範囲に定義され
る通りである。
リボザイム/アンチセンスRNAは、基質、例えば、選
択可能マーカー遺伝子(抗生物質耐性)をコードするR
NAまたは所望の任意の細胞機能、例えばジヒドロフオ
レートレダクターゼ、チミシンキナーセ、成熟酵素ポリ
力うクツロナーゼ、ペクチンエステラーゼ等、分化およ
び発達に関与するタンパク質またはホルモン受容体なと
を、コー卜するRNAのような基質に対して向けること
ができる。特に、植物に有害な型のウィルスに対して、
本発明による系によって有利に抵抗することができる。
択可能マーカー遺伝子(抗生物質耐性)をコードするR
NAまたは所望の任意の細胞機能、例えばジヒドロフオ
レートレダクターゼ、チミシンキナーセ、成熟酵素ポリ
力うクツロナーゼ、ペクチンエステラーゼ等、分化およ
び発達に関与するタンパク質またはホルモン受容体なと
を、コー卜するRNAのような基質に対して向けること
ができる。特に、植物に有害な型のウィルスに対して、
本発明による系によって有利に抵抗することができる。
この目的のために、例えは、次に記述するような方法が
用いられる。他の基質に向けられたリボザイム/アンチ
センスRNAもまた同様の方法で構築され得る。
用いられる。他の基質に向けられたリボザイム/アンチ
センスRNAもまた同様の方法で構築され得る。
リボザイム部分を、阻害されるべき基質のRNA配列を
基にして合成することができる。基質がウィルスである
場合には、このRNA配列はRNAウィルスのゲノムか
DNAウィルスのDNA配列に由来するRNA配列であ
る。したがって、基本として、植物に有害ないかなるウ
ィルスをも用いることができる。好ましい型のウィルス
としては、病原性ウィルス、特に、キュウリモザイクウ
ィルス、ブロウム(brome)モザイクウィルス、ア
ルファルファモザイクウィルス、タバコモザイクウィル
ス、ポテトウィルスXまたはY、トマト軸回ウィルス、
トマトアスペルミ(aspermy)ウィルスまたはタ
バコラドル(rattle)ウィルスがあけられる。特
に、Rezaianら(Rezaian、門、ら:
Eur、 J、 Bioc)+em、 1卸、33
11985、Eur、 J、 Biochem、113
.277.1984)およびGou I dら(Gou
ld、 J、ら: Eur、 J。
基にして合成することができる。基質がウィルスである
場合には、このRNA配列はRNAウィルスのゲノムか
DNAウィルスのDNA配列に由来するRNA配列であ
る。したがって、基本として、植物に有害ないかなるウ
ィルスをも用いることができる。好ましい型のウィルス
としては、病原性ウィルス、特に、キュウリモザイクウ
ィルス、ブロウム(brome)モザイクウィルス、ア
ルファルファモザイクウィルス、タバコモザイクウィル
ス、ポテトウィルスXまたはY、トマト軸回ウィルス、
トマトアスペルミ(aspermy)ウィルスまたはタ
バコラドル(rattle)ウィルスがあけられる。特
に、Rezaianら(Rezaian、門、ら:
Eur、 J、 Bioc)+em、 1卸、33
11985、Eur、 J、 Biochem、113
.277.1984)およびGou I dら(Gou
ld、 J、ら: Eur、 J。
Biochem、 12fi、217.1’ 982
)によって公表されている配列に対応する、キュウリモ
ザイクウィルスのRNA配列RNAI、RNA2および
/またはRNA3またはそれらの一部を鋳型として用い
る。
)によって公表されている配列に対応する、キュウリモ
ザイクウィルスのRNA配列RNAI、RNA2および
/またはRNA3またはそれらの一部を鋳型として用い
る。
合成のためには、少なくとも10個の連続したヌクレオ
チド、特に14〜20個のヌクレオチド、有利には適当
なウィルスのRNA配列の中間部から選択したものが好
ましい。
チド、特に14〜20個のヌクレオチド、有利には適当
なウィルスのRNA配列の中間部から選択したものが好
ましい。
リホザイムをコートするオリゴヌクレオチドは、各々少
なくとも5ヌクレオチド、有利には7〜10個のヌクレ
オチFからなる最初のおよび末端の配列が、阻害される
べきウィルスのRNAに相補的になるように合成される
。中間配列は、一部はりボザイムの機能性のために予め
決定した特定のヌクレオチドからなり、また一部は可変
的ヌクレオチドからなる。
なくとも5ヌクレオチド、有利には7〜10個のヌクレ
オチFからなる最初のおよび末端の配列が、阻害される
べきウィルスのRNAに相補的になるように合成される
。中間配列は、一部はりボザイムの機能性のために予め
決定した特定のヌクレオチドからなり、また一部は可変
的ヌクレオチドからなる。
対応する方法は、アンチセンスRNAの調整に用いられ
るが、オリゴヌクレオチドは適当なアンチセンスの位置
方向においてRNAをコートするように合成される。
るが、オリゴヌクレオチドは適当なアンチセンスの位置
方向においてRNAをコートするように合成される。
リボザイムオリゴヌクレオチドは、ループ中の適当なリ
ンカ−とともに提供される。この種のリンカ−は、例え
ば、EcoRI、5ail、BamHL Hi ndm
、EcoRV、Smal。
ンカ−とともに提供される。この種のリンカ−は、例え
ば、EcoRI、5ail、BamHL Hi ndm
、EcoRV、Smal。
Xho I、K p n I、好ましくはXbalまた
はPstI、の切断部位を有する。次いで、合成された
りボザイムオリゴヌクレオチドを、これらリンカ−を介
してリボザイムルーブ中のアンチセンスRNAをコード
するオリゴヌクレオチドに連結させる。
はPstI、の切断部位を有する。次いで、合成された
りボザイムオリゴヌクレオチドを、これらリンカ−を介
してリボザイムルーブ中のアンチセンスRNAをコード
するオリゴヌクレオチドに連結させる。
基質RNAとハイブリダイズさせたりホブイム/アンチ
センスRNA系は、次のように図式的に示すことができ
る。
センスRNA系は、次のように図式的に示すことができ
る。
基質RNA
ここで、
Nは、基質RNAのヌクレオチド、A、C,CまたはT
てあり、 Kは、リボザイム中のNに相補的なヌクレオチドであり
、 ■は、リボザイム中の可変的なヌクレオチドであり、 ■Lは、リボザイムのループ中の可変的なヌクレオチド
である。vLヌクレオチドの数は、0〜550でよい。
てあり、 Kは、リボザイム中のNに相補的なヌクレオチドであり
、 ■は、リボザイム中の可変的なヌクレオチドであり、 ■Lは、リボザイムのループ中の可変的なヌクレオチド
である。vLヌクレオチドの数は、0〜550でよい。
vLヌクレオチドは、その配列を挿入し得る切断部位が
DNAレベルで生産されるように選択される。
DNAレベルで生産されるように選択される。
組み立てられたオリゴヌクレオチドを、ベクタ−p U
C19、pUc18またはp Bluescript(
Stratagene、 )leidelberg、
Product Information)を用いてク
ローニングしてから、配列決定をする。
C19、pUc18またはp Bluescript(
Stratagene、 )leidelberg、
Product Information)を用いてク
ローニングしてから、配列決定をする。
確認されたオリゴヌクレオチドを、植物プロモーターを
有する介在ベクターにクローニングする。
有する介在ベクターにクローニングする。
このタイプのベクターの例としては、プラスミド゛p
P CV 701 (Velten、 J−ら: EM
BOj、 3.2723−2730.1984)、p
N CN (Fromm、 H,l”l :PNAS
a2.5824−5826.1985)マタはpNOs
(An、 G、 ら: EMBO、J、 4.277−
276.1985)なと力Sあげられる。35Sプロモ
ーターを有するベクタ−p D H51(Pietrz
ak、 M、ら: NAR14,5857,1986)
が好ましく用いられる。
P CV 701 (Velten、 J−ら: EM
BOj、 3.2723−2730.1984)、p
N CN (Fromm、 H,l”l :PNAS
a2.5824−5826.1985)マタはpNOs
(An、 G、 ら: EMBO、J、 4.277−
276.1985)なと力Sあげられる。35Sプロモ
ーターを有するベクタ−p D H51(Pietrz
ak、 M、ら: NAR14,5857,1986)
が好ましく用いられる。
続いての、例えば大腸菌MC1061、DHI、DKI
、0M48またハX L −1すどの、大腸菌の形質転
換の後、陽性のクローンを、プラスミドミニ調製および
適当な制限酵素による切断なとの既知の方法(Mani
atisら: Lab、 Manual)によって同定
する。
、0M48またハX L −1すどの、大腸菌の形質転
換の後、陽性のクローンを、プラスミドミニ調製および
適当な制限酵素による切断なとの既知の方法(Mani
atisら: Lab、 Manual)によって同定
する。
これら陽性クローンを、次いて、バイナリ−植物ベクタ
ーにサブクローニングする。植物ベクターとして、p
G V 3850 (Zambrysk、 P、 ら
:EMBOJ、 2.2143−2150.1983)
またはp 0CA1 B (Olszewski、N、
: ’JARlfi、10765−10782.198
8 )を用いることができる。pOcAlBが有利に用
いられる。
ーにサブクローニングする。植物ベクターとして、p
G V 3850 (Zambrysk、 P、 ら
:EMBOJ、 2.2143−2150.1983)
またはp 0CA1 B (Olszewski、N、
: ’JARlfi、10765−10782.198
8 )を用いることができる。pOcAlBが有利に用
いられる。
T −D N Aにおけるリホサイム生産のための付加
したDNAフラグメントを有している植物プロモーター
を含んでなる得られたバイナリ−植物ベクターを、植物
の形質転換に用いる。これはエレクトロポレーションま
たはマイクロインジェクション等の技術を用いて行うこ
とができる。
したDNAフラグメントを有している植物プロモーター
を含んでなる得られたバイナリ−植物ベクターを、植物
の形質転換に用いる。これはエレクトロポレーションま
たはマイクロインジェクション等の技術を用いて行うこ
とができる。
好ましくは、プロトプラストの共培tj(c。
cultivation)またはアクロバクテリアを用
いての葉片の形質転換を用いる。この目的のために、植
物ベクター構築物を、精製DNAによるまたは大腸菌S
M 10 (Simon R,ら: Biotech
nology l。
いての葉片の形質転換を用いる。この目的のために、植
物ベクター構築物を、精製DNAによるまたは大腸菌S
M 10 (Simon R,ら: Biotech
nology l。
784−791.1983)なとのヘルパー株を介して
の形質転換によって、Tiプラスミドを有するA 28
2のようなアグロバクテリウム・ツメファシェンス(A
grobakterium tumefaciens)
中にトリペアレント交配(triparental m
at、ing)を介して転移させる。直接的形質転換お
よびトリペアレント交配を、rPIant Mo1ec
ular Biology ManualJ (Kl
uwerAcademic Publishers、
Dordrecht、 1988)に記載のようにして
行った。
の形質転換によって、Tiプラスミドを有するA 28
2のようなアグロバクテリウム・ツメファシェンス(A
grobakterium tumefaciens)
中にトリペアレント交配(triparental m
at、ing)を介して転移させる。直接的形質転換お
よびトリペアレント交配を、rPIant Mo1ec
ular Biology ManualJ (Kl
uwerAcademic Publishers、
Dordrecht、 1988)に記載のようにして
行った。
基本的に、本発明によって構築されるDNAを有するバ
イナリ−植物ベクターによって全ての植物を形質転換さ
せることが可能である。双子葉植物、特に有用植物、例
えば澱粉、その他の炭水化物、タンパク質または脂質を
それらの器官に有用量に産生または貯蔵するもの、また
は果実および野菜を産生ずるもの、または香辛料、繊維
および実用的に有用な産生物または薬物、染料または蝋
を提供するもの、およびさらに家畜用植物などがあげら
れる。トマト、イチゴ、アボカド、および、例えばパパ
イヤ、マンゴ−などの熱帯産果実、さらにナシ、リンゴ
、ネクタリン、アンスまたはモモなどを例にあげること
ができよう。さらに、形質転換さるべき植物の例として
、全てのタイプの穀物、カブラ(turnip rap
e) 、西、洋アブラナ(rape)、イモ類、大豆、
綿花、トウモロコシ、甜菜またはヒマワリなどをあげる
ことができよう。
イナリ−植物ベクターによって全ての植物を形質転換さ
せることが可能である。双子葉植物、特に有用植物、例
えば澱粉、その他の炭水化物、タンパク質または脂質を
それらの器官に有用量に産生または貯蔵するもの、また
は果実および野菜を産生ずるもの、または香辛料、繊維
および実用的に有用な産生物または薬物、染料または蝋
を提供するもの、およびさらに家畜用植物などがあげら
れる。トマト、イチゴ、アボカド、および、例えばパパ
イヤ、マンゴ−などの熱帯産果実、さらにナシ、リンゴ
、ネクタリン、アンスまたはモモなどを例にあげること
ができよう。さらに、形質転換さるべき植物の例として
、全てのタイプの穀物、カブラ(turnip rap
e) 、西、洋アブラナ(rape)、イモ類、大豆、
綿花、トウモロコシ、甜菜またはヒマワリなどをあげる
ことができよう。
形質転換された細胞を、選択培地を用いて選択して、カ
ルスにまで培養して、適当な培地(Shainら: T
heor、 Appl、 Genet、 Q、?70−
770.1986、Masson、 J−ら: Pla
nt 5cience 52、+67−176.198
7、Zhanら: Plant Mo1. Biol、
kl、551−559.1988、McGranah
amら: Bio/Technology el、80
〇−804,1988、Novrateら: Bio/
Technology 1.154−159.1989
)上で植物体に再生させる。
ルスにまで培養して、適当な培地(Shainら: T
heor、 Appl、 Genet、 Q、?70−
770.1986、Masson、 J−ら: Pla
nt 5cience 52、+67−176.198
7、Zhanら: Plant Mo1. Biol、
kl、551−559.1988、McGranah
amら: Bio/Technology el、80
〇−804,1988、Novrateら: Bio/
Technology 1.154−159.1989
)上で植物体に再生させる。
得られる植物体は、構築されたオリゴヌクレオチドを用
いて、対応するRNAが細胞中で発現されるように形質
転換させることによって変えられ、リボザイムRNAを
[アンチセンスJ RNAとともにウィルスRNAに対
して活性にすることか可能である。
いて、対応するRNAが細胞中で発現されるように形質
転換させることによって変えられ、リボザイムRNAを
[アンチセンスJ RNAとともにウィルスRNAに対
して活性にすることか可能である。
以下の諸例によって、本発明はさらに説明される。
特に記載がなけれは、百分率は重量パーセントである。
1、 RNAの発現のためのDNAの合成リボザイム
のためのヌクレオチドの合成を、CMV RNAI配列
、5′末端にXbaIリンカ−をおよび3′末端にPs
tIリンカ−を備えた位置324B−3264(Rez
aian M、ら: Eur。
のためのヌクレオチドの合成を、CMV RNAI配列
、5′末端にXbaIリンカ−をおよび3′末端にPs
tIリンカ−を備えた位置324B−3264(Rez
aian M、ら: Eur。
J、 Biochem、 liQ、 331−339.
1985)に基づいて行った。定常領域はりボザイムの
ために付記した図式から明かである。
1985)に基づいて行った。定常領域はりボザイムの
ために付記した図式から明かである。
ループの可変部分に5alI部位を有するリボザイムの
発現のためのDNA: 5’−CTAGAGGTAGCTCCTGATGAGT
CGTCGACGACGAAACAACCTTCTCC
A−3TCCATCGAGGACTACTCAGCAG
CTGCTGCTTTGTTGGAAGまたは、 5’−CTAC;ATττCAACC;GTAC;CT
CCTGATGAC;TCGTC3’ TAA
AにTTCCCATGGAGGACTACTCAGGA
GGACC,ACG八八へへAACCTTGTAC;G
ATGTCTGCA−3’CTC;CTGCTTTGT
TGG八八CATCCTACAへへ −5’アン
チセンスRNAのためのヌクレオチドの合成を、5′末
端にXba Iリンカ−を有し、3′末端にPstlリ
ンカ−を有し、クローニングのための5a11部位を作
出するためにこれらを埋填した、位置2179から21
93までのCM ■RNA4配列(Gould 1.ら
: Eur、 J、 Biochem−皿、21?−2
6,19B2)に基づいて行った。
発現のためのDNA: 5’−CTAGAGGTAGCTCCTGATGAGT
CGTCGACGACGAAACAACCTTCTCC
A−3TCCATCGAGGACTACTCAGCAG
CTGCTGCTTTGTTGGAAGまたは、 5’−CTAC;ATττCAACC;GTAC;CT
CCTGATGAC;TCGTC3’ TAA
AにTTCCCATGGAGGACTACTCAGGA
GGACC,ACG八八へへAACCTTGTAC;G
ATGTCTGCA−3’CTC;CTGCTTTGT
TGG八八CATCCTACAへへ −5’アン
チセンスRNAのためのヌクレオチドの合成を、5′末
端にXba Iリンカ−を有し、3′末端にPstlリ
ンカ−を有し、クローニングのための5a11部位を作
出するためにこれらを埋填した、位置2179から21
93までのCM ■RNA4配列(Gould 1.ら
: Eur、 J、 Biochem−皿、21?−2
6,19B2)に基づいて行った。
アンチセンスRNAの生産のためのDNA:S’−CT
ACATCC;TCTCCTTATfl;C;AにAA
CCTGTcCAAAAcCACAC;CTにCA−3
’TACCAGAGGAATACCTCTTC;GAC
ACCTTTTC;C;TC;TCGまたは 5′−丁CGACAT(1;C;TCTCCTrATG
C;AGAACCTC;TにGAAAACCACAにC
G−3’RG CT GTACCAGAGGAATAC
CTCTTC;GACACCTTTTにGTC;TC(
1;CAにC丁−5′2 、 pBIuescrip
ts K十におけるクローニングおよび配列決定 プラスミドpBIuescripts K +(Str
atagene。
ACATCC;TCTCCTTATfl;C;AにAA
CCTGTcCAAAAcCACAC;CTにCA−3
’TACCAGAGGAATACCTCTTC;GAC
ACCTTTTC;C;TC;TCGまたは 5′−丁CGACAT(1;C;TCTCCTrATG
C;AGAACCTC;TにGAAAACCACAにC
G−3’RG CT GTACCAGAGGAATAC
CTCTTC;GACACCTTTTにGTC;TC(
1;CAにC丁−5′2 、 pBIuescrip
ts K十におけるクローニングおよび配列決定 プラスミドpBIuescripts K +(Str
atagene。
Product Information)を、特定の
酵素で開環し、仔つシ腸管ホスファターセ(CIP)で
処理した後に、5倍過剰の二本鎖燐酸化オリゴヌクレオ
チドと連結した。イソプロピルチオガラクトシド(IP
TC;)を用いての誘導の後、XL−ブルー株(Str
atagene)中の陽性クローンを、5−ブロモ−4
−クロロ−3−インドリル−β−D−ガラクトシド(X
−gal)を含むプレート上で白色コロニーとして同定
することが可能であった。
酵素で開環し、仔つシ腸管ホスファターセ(CIP)で
処理した後に、5倍過剰の二本鎖燐酸化オリゴヌクレオ
チドと連結した。イソプロピルチオガラクトシド(IP
TC;)を用いての誘導の後、XL−ブルー株(Str
atagene)中の陽性クローンを、5−ブロモ−4
−クロロ−3−インドリル−β−D−ガラクトシド(X
−gal)を含むプレート上で白色コロニーとして同定
することが可能であった。
各々の場合、5個のコロニーを単離して、挿入されたオ
リゴヌクレオチドの位置方向を決定するためにジデオキ
シ法(Boehringer、 Sequencing
Kit)によって配列決定した。
リゴヌクレオチドの位置方向を決定するためにジデオキ
シ法(Boehringer、 Sequencing
Kit)によって配列決定した。
3、 pDH51におけるクローニングプラスミド
pDH51は、Pietrzakら(Pietrzak
、 M、ら: NARLA、 5857−5868.1
986)によって再現できるように記述されている。
pDH51は、Pietrzakら(Pietrzak
、 M、ら: NARLA、 5857−5868.1
986)によって再現できるように記述されている。
1%低融解アガロースゲル中での断片分画の後にオリゴ
ヌクレオチF’ D N Aを単離し得るために、オリ
ゴヌクレオチドを含むプラスミド pBluescript、s K+をXba Iおよび
Pstlで消化した。
ヌクレオチF’ D N Aを単離し得るために、オリ
ゴヌクレオチドを含むプラスミド pBluescript、s K+をXba Iおよび
Pstlで消化した。
単離したオリゴヌクレオチドをp、DH51のXba/
Pst部位に5倍過剰にして鞘み込んだ。
Pst部位に5倍過剰にして鞘み込んだ。
陽性クローンを、大腸菌M01061細胞を形質転換さ
せてコロニーをニトロセルロースフィルターに移した後
に32 p−標識オリゴヌクレオチドDNAとハイブリ
ダイズさせてからフィルターをS SC(1)I XS
5C12)0.lX5SC13)0、lX5SC2各
:30分間)で65℃で洗浄することによって、検出す
ることが可能であった。
せてコロニーをニトロセルロースフィルターに移した後
に32 p−標識オリゴヌクレオチドDNAとハイブリ
ダイズさせてからフィルターをS SC(1)I XS
5C12)0.lX5SC13)0、lX5SC2各
:30分間)で65℃で洗浄することによって、検出す
ることが可能であった。
アンチセンスオリゴヌクレオチドDNAの合成のための
DNA配列を、ヘクターにクローニングし・て新たに作
出した5all切断部位を介して、このようにして作成
した。
DNA配列を、ヘクターにクローニングし・て新たに作
出した5all切断部位を介して、このようにして作成
した。
大腸菌MC106]細胞の形質転換の後に、コロニーを
ニトロセルロースフィルターに画線して、適当なpBI
uescripts K十から単離した32 p−標識
オリゴヌクレオチ):’ D N Aとともに一晩ハイ
フリダイスさせた。上記のようにフィルターを洗浄した
。陽性クローンをオートラジオクラフィーによって同定
した。
ニトロセルロースフィルターに画線して、適当なpBI
uescripts K十から単離した32 p−標識
オリゴヌクレオチ):’ D N Aとともに一晩ハイ
フリダイスさせた。上記のようにフィルターを洗浄した
。陽性クローンをオートラジオクラフィーによって同定
した。
4、 pOcA18におけるクローニングプラスミ
ドpOcA18は、Olszewskiら(Olsze
wski、N、ら: ’JAR16,10765−10
782,1988)によって再現できるように記述され
ている。
ドpOcA18は、Olszewskiら(Olsze
wski、N、ら: ’JAR16,10765−10
782,1988)によって再現できるように記述され
ている。
35Sプロモーターの後にオリゴヌクレオチドを有する
pDH51からの約i、okbの長さのEcoRI断片
を、CsC1勾配上で単離して、EcoRI消化から得
られた0、8kbの断片をpOcAlBのEcoRI切
断部位に組み入れた。
pDH51からの約i、okbの長さのEcoRI断片
を、CsC1勾配上で単離して、EcoRI消化から得
られた0、8kbの断片をpOcAlBのEcoRI切
断部位に組み入れた。
陽性クローンを、DNA調製および続いてのEcoRI
工程によって同定した。
工程によって同定した。
5、7グロバクテリアの形質転換
35Sプロモーター/オリゴヌクレオチド挿入物を含む
ベクターpOcA1Bを、アゲロバクチリアA282株
(Pharmacia、 Freiburg、 西ドイ
ツまたはATCC37349、IJsA )中りこ移し
た。これは、大HMSMIO株(Simon、R9ら:
Bio/TechnologY L、784−791
.1983)を用いるトリペアレント交配によって行っ
た。この目的のために、等量のIIMをともにフィルタ
ー上に一装置いて、28℃でインキュへ−1−L、て、
フィルターを2mlの10 mM M g S Oaで
すすいて、陽性りa−ンを選択するためにその等分部分
をテトラサイクリンおよびリファンピシンを含む酵母抽
出物(YEB:1%酵母エキス、1%ペプトン、0.5
%N a C1)上に置いた。続いて、ニトロセルロー
ス膜上に移しておいたコロニーを放射性標識したオリゴ
ヌクレオチドDNAとハイプリダイスさせることによっ
て、陽性クローンの存在か再び示された。
ベクターpOcA1Bを、アゲロバクチリアA282株
(Pharmacia、 Freiburg、 西ドイ
ツまたはATCC37349、IJsA )中りこ移し
た。これは、大HMSMIO株(Simon、R9ら:
Bio/TechnologY L、784−791
.1983)を用いるトリペアレント交配によって行っ
た。この目的のために、等量のIIMをともにフィルタ
ー上に一装置いて、28℃でインキュへ−1−L、て、
フィルターを2mlの10 mM M g S Oaで
すすいて、陽性りa−ンを選択するためにその等分部分
をテトラサイクリンおよびリファンピシンを含む酵母抽
出物(YEB:1%酵母エキス、1%ペプトン、0.5
%N a C1)上に置いた。続いて、ニトロセルロー
ス膜上に移しておいたコロニーを放射性標識したオリゴ
ヌクレオチドDNAとハイプリダイスさせることによっ
て、陽性クローンの存在か再び示された。
6、 タバコの形質転換
アクロバクテリアを、テトラサイクリンおよびリファン
ピシンを含むYEB培地中で増殖させて、20m1の細
菌を遠心分離して、YEB培地中で1回洗浄して、20
m1の10 mM M g S Oを中に懸濁させて、
ペトリ皿に置いた。植物材料は、タバコ、ライスコンシ
ン(Nicot、1ana tabacumSWisc
onsin)38を用いた。植物体を滅菌条件下で2M
S培地(Muras++i3e、、T、ら: Phys
iol、 Plant L5.473−497.196
2)上で25℃で1日16時間光を当てて4週間培養し
ておいた。これら植物体からIC+T12の葉片を切り
出して、滅菌したエメリーペーパーて傷つけて、−吟*
菌培養物中に30秒間浸漬させた。
ピシンを含むYEB培地中で増殖させて、20m1の細
菌を遠心分離して、YEB培地中で1回洗浄して、20
m1の10 mM M g S Oを中に懸濁させて、
ペトリ皿に置いた。植物材料は、タバコ、ライスコンシ
ン(Nicot、1ana tabacumSWisc
onsin)38を用いた。植物体を滅菌条件下で2M
S培地(Muras++i3e、、T、ら: Phys
iol、 Plant L5.473−497.196
2)上で25℃で1日16時間光を当てて4週間培養し
ておいた。これら植物体からIC+T12の葉片を切り
出して、滅菌したエメリーペーパーて傷つけて、−吟*
菌培養物中に30秒間浸漬させた。
葉片を、上記の2MSの場合と同様にしてMS培地上に
25℃で2日間保持して、次いて液体2MS培地を用い
て洗浄した。葉片を、次いて、カナマイシンを含むMS
C10プレート(1,5%の寒天を含むMS培地)上に
置いた。5〜6週間後、再生した植物体をより大きな容
器に移植することが可能であって、そこでそれらは2〜
3週間後に根を形成した。
25℃で2日間保持して、次いて液体2MS培地を用い
て洗浄した。葉片を、次いて、カナマイシンを含むMS
C10プレート(1,5%の寒天を含むMS培地)上に
置いた。5〜6週間後、再生した植物体をより大きな容
器に移植することが可能であって、そこでそれらは2〜
3週間後に根を形成した。
トランスジェニック(transgen i c)植物
対における所望のRNAの発現を、ゲル(2,2Mホル
ムアルデヒドを含む1%アガロースゲル)中で分画して
おいた全RNA(10μg)のニトロセルロースフィル
ターへの移動および続いての放射性活性オリゴヌクレオ
チドDNAとのハイブリダイゼーションによって検出し
た。
対における所望のRNAの発現を、ゲル(2,2Mホル
ムアルデヒドを含む1%アガロースゲル)中で分画して
おいた全RNA(10μg)のニトロセルロースフィル
ターへの移動および続いての放射性活性オリゴヌクレオ
チドDNAとのハイブリダイゼーションによって検出し
た。
7、 形質転換の検出
DNAを約8週経過の形質転換タバコ植物体から標準法
(Maniatisら: Lab、 Journal)
によって?I/L離して、EcoRIで切断して、10
μ8のDNAをニトロセルロース膜に各々、移して、3
2 p−標識したオリゴヌクレオチドDNAとハイブリ
ダイズさせた。トランスジェニック植物体のDNAにお
ける所望の配列の組み込みは、特徴的なEcoRIDN
Aとのハイブリダイゼーションによって検出可能であっ
た。
(Maniatisら: Lab、 Journal)
によって?I/L離して、EcoRIで切断して、10
μ8のDNAをニトロセルロース膜に各々、移して、3
2 p−標識したオリゴヌクレオチドDNAとハイブリ
ダイズさせた。トランスジェニック植物体のDNAにお
ける所望の配列の組み込みは、特徴的なEcoRIDN
Aとのハイブリダイゼーションによって検出可能であっ
た。
8、 RNA発現の検出
上記のタバコ植物体からの第二の葉片試料からRNAを
単離して、ホルムアルデヒドゲルからニトロセルロース
へ移して、上記のようにハイブリダイズさせた。期待さ
れる大きさを示すハントを検出することが可能であった
。
単離して、ホルムアルデヒドゲルからニトロセルロース
へ移して、上記のようにハイブリダイズさせた。期待さ
れる大きさを示すハントを検出することが可能であった
。
9、多機能性RN Aのインビトロ活性の検出反応混合
物(Strata3ene、 Productnfor
mation for SK+)においてT3またはT
7ボリメラーセを加えることによって、挿入した全オリ
ゴを含むpBIuescripts K+クローンから
RNAを産生させて、単離した。このRN Aと32
p−標識CMV RNAとのハイブリダイゼーシ、i
シここよって、ウィルスRN Aの切断が4くされた。
物(Strata3ene、 Productnfor
mation for SK+)においてT3またはT
7ボリメラーセを加えることによって、挿入した全オリ
ゴを含むpBIuescripts K+クローンから
RNAを産生させて、単離した。このRN Aと32
p−標識CMV RNAとのハイブリダイゼーシ、i
シここよって、ウィルスRN Aの切断が4くされた。
10. CMVQ株むJよる感染
約8A経過のタバコ植物体を、カーボランダムを用いて
、CM VO2株(Rezaian、 M、ら: Eu
r。
、CM VO2株(Rezaian、 M、ら: Eu
r。
j、 R+ochem、 L5ffl、331.198
5および〕]、3.277.1 !、184、Goul
dJ、ら: Eur、 j。Bioehem、 12f
i、217、+982)て感染さゼ、た。月曜植物体は
、12=15日後ζこ顕著な症状を呈した。これら植物
体からウィルス粒子を検出することが可能であった。ト
ランスジェニック植物体は、種々の程度にウィルスζこ
対して抵抗性であることが証明された。
5および〕]、3.277.1 !、184、Goul
dJ、ら: Eur、 j。Bioehem、 12f
i、217、+982)て感染さゼ、た。月曜植物体は
、12=15日後ζこ顕著な症状を呈した。これら植物
体からウィルス粒子を検出することが可能であった。ト
ランスジェニック植物体は、種々の程度にウィルスζこ
対して抵抗性であることが証明された。
表二表記日数経過後に顕著な症状を呈する感染植物体の
百分率(各クローンそれぞれ10個の植物体を一緒ζこ
感染させて評価1)た) 12日 201]
百分率(各クローンそれぞれ10個の植物体を一緒ζこ
感染させて評価1)た) 12日 201]
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、アンチセンスRNA配列に連結された ループ中のリボザイムRNA配列をコードする遺伝子。 2、コードされるRNAがウィルスRNA に相補的である、請求項1に記載の遺伝子。 3、請求項1または2に記載の遺伝子によ ってコードされる、RNA。 4、請求項1または2に記載の遺伝子を含 む、宿主細胞。 5、請求項3に記載のRNAを含む、宿主 細胞。 6、請求項1または2に記載の遺伝子を含 む、植物体、植物細胞および植物体の部分または種子。 7、請求項3に記載のRNAを含む、植物 体、植物細胞および植物体の部分または種子。 8、請求項1に記載の遺伝子によつてコー ドされるRNAの、宿主細胞における、基質に対する作
用物としての使用。 9、請求項2に記載の遺伝子によってコー ドされるRNAの、抗ウィルス剤としての使用。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3935473A DE3935473A1 (de) | 1989-10-25 | 1989-10-25 | Rna mit endonuclease- und antisense-aktivitaet, ihre herstellung und ihre verwendung |
DE3935473.3 | 1989-10-25 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH044877A true JPH044877A (ja) | 1992-01-09 |
Family
ID=6392144
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2288280A Pending JPH044877A (ja) | 1989-10-25 | 1990-10-25 | エンドヌクレアーゼおよびアンチセンス活性を有するrna、その製造およびその使用 |
Country Status (10)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0428881B1 (ja) |
JP (1) | JPH044877A (ja) |
KR (1) | KR910008136A (ja) |
AT (1) | ATE124450T1 (ja) |
DE (2) | DE3935473A1 (ja) |
DK (1) | DK0428881T3 (ja) |
ES (1) | ES2076275T3 (ja) |
HU (1) | HUT58794A (ja) |
IE (1) | IE67653B1 (ja) |
NZ (1) | NZ235789A (ja) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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