JPH0387172A - 細胞封入カプセル体及びその製造法 - Google Patents
細胞封入カプセル体及びその製造法Info
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- JPH0387172A JPH0387172A JP1224215A JP22421589A JPH0387172A JP H0387172 A JPH0387172 A JP H0387172A JP 1224215 A JP1224215 A JP 1224215A JP 22421589 A JP22421589 A JP 22421589A JP H0387172 A JPH0387172 A JP H0387172A
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Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業圭也剋推分立
本発明は、細胞を封入したカプセル体およびその製造方
法に関する。
法に関する。
本発明よるカプセル体は、細胞や微生物の培養に利用す
ることができる。
ることができる。
丈米産丑血
細胞や微生物を培養する際に、細胞や微生物を多孔質カ
プセル中に封入し、固定化して培養する、いわゆるエン
カプセル法とよばれている方法が最近注目されている。
プセル中に封入し、固定化して培養する、いわゆるエン
カプセル法とよばれている方法が最近注目されている。
この方法によって目的とする物質を生産する細胞や微生
物をカプセル中に封入固定化すると、カプセル中で増殖
し、高密度となり目的物質の生産効率を向上させること
が知られている。又カプセル内に細胞や微生物を封入す
ることで目的物質のみがカプセル外に出てゆくような条
件を設定することにより、分離、濃縮が容易にできるた
め、動物細胞の培養による物質生産に多用されている。
物をカプセル中に封入固定化すると、カプセル中で増殖
し、高密度となり目的物質の生産効率を向上させること
が知られている。又カプセル内に細胞や微生物を封入す
ることで目的物質のみがカプセル外に出てゆくような条
件を設定することにより、分離、濃縮が容易にできるた
め、動物細胞の培養による物質生産に多用されている。
カプセルの材料としては、塩化カルシウム水溶液にアル
ギン酸含有細胞懸濁液を滴下してカプセルを形成させる
方法が広く普及している。例えば特開昭57−2022
89号公報にはアルギン酸ナトリウムを用いたカプセル
や、ポリリジンを用いたカプセルによる細胞培養方法が
開示されている。又、−1mに、多糖類のゲルとイオン
とにより、膜を形成させ細胞封入カプセルとすることが
広く知られている。しかしこれらのカプセルは、主にゲ
ル形成に必要なイオンが長期間培養を継続することによ
り脱イオン化され、カプセルが脆弱化し、破損するなど
の欠点が指摘されている。
ギン酸含有細胞懸濁液を滴下してカプセルを形成させる
方法が広く普及している。例えば特開昭57−2022
89号公報にはアルギン酸ナトリウムを用いたカプセル
や、ポリリジンを用いたカプセルによる細胞培養方法が
開示されている。又、−1mに、多糖類のゲルとイオン
とにより、膜を形成させ細胞封入カプセルとすることが
広く知られている。しかしこれらのカプセルは、主にゲ
ル形成に必要なイオンが長期間培養を継続することによ
り脱イオン化され、カプセルが脆弱化し、破損するなど
の欠点が指摘されている。
このようなカプセルをさらにホスファゼン系ポリマーで
作成したカプセルで封入する方法(特開昭63−844
89号公報)やポリエチレンイミンによりコティングす
る方法(特開昭64−13986号公報)、ポリウレタ
ンポリマーでコーティングする方法(特開昭63−24
8391号公報)などが提案されている。
作成したカプセルで封入する方法(特開昭63−844
89号公報)やポリエチレンイミンによりコティングす
る方法(特開昭64−13986号公報)、ポリウレタ
ンポリマーでコーティングする方法(特開昭63−24
8391号公報)などが提案されている。
しかし、細胞封入カプセルをさらにこれらの合成樹脂体
で被覆すると耐久性は向上するものの細胞の増殖や物質
の生産性などの面では必ずしも満足のゆく結果が得られ
ていなかった。
で被覆すると耐久性は向上するものの細胞の増殖や物質
の生産性などの面では必ずしも満足のゆく結果が得られ
ていなかった。
が しよ゛と る
本発明は、このような細胞封入カプセル体について鋭意
検討を進めた結果、細胞の封入に適しており、かつ、物
質生産に向いた長期培養可能な培養用カプセルを見出し
本発明を完成するに至った。
検討を進めた結果、細胞の封入に適しており、かつ、物
質生産に向いた長期培養可能な培養用カプセルを見出し
本発明を完成するに至った。
したがって、本発明は耐久性を有しかつ細胞培養による
物質生産に適したカプセル体、およびその製造方法を提
供することを課題とする。
物質生産に適したカプセル体、およびその製造方法を提
供することを課題とする。
禅 を”′ るための 叉
すなわち、本発明は、細胞をゲル化剤で固定化したゲル
をウレタンプレポリマーでコーティングした細胞封入カ
プセル体であって、ウレタンポリマーコーティング層内
に多数の空胞構造を有することを特徴とする細胞封入カ
プセル体および細胞をゲル化剤で固定したゲルを、含水
性微粉末を混入させたウレタンプレポリマーと反応させ
、ゲルの周囲をウレタンポリマー層で被覆するとともに
ウレタンポリマー層内に多数の空胞構造を形成させるこ
とを特徴とする細胞封入カプセル体の製造法に関する。
をウレタンプレポリマーでコーティングした細胞封入カ
プセル体であって、ウレタンポリマーコーティング層内
に多数の空胞構造を有することを特徴とする細胞封入カ
プセル体および細胞をゲル化剤で固定したゲルを、含水
性微粉末を混入させたウレタンプレポリマーと反応させ
、ゲルの周囲をウレタンポリマー層で被覆するとともに
ウレタンポリマー層内に多数の空胞構造を形成させるこ
とを特徴とする細胞封入カプセル体の製造法に関する。
本発明において細胞は、植物細胞、動物細胞のいずれで
も用いられ、また細胞には、特に限定がない限り微生物
をも包含するものである。
も用いられ、また細胞には、特に限定がない限り微生物
をも包含するものである。
また、ゲル化剤には通常多糖類が用いられるが、それ以
外にもゼラチンなどの蛋白質性ゲル化剤やボリアクリル
アごド、ポリリジンなどの合成高分子ゲル化剤も使用可
能である。
外にもゼラチンなどの蛋白質性ゲル化剤やボリアクリル
アごド、ポリリジンなどの合成高分子ゲル化剤も使用可
能である。
多$7!Iには、アルギン酸、アルギン酸ナトリウム等
の水溶性金属塩、グアガム、カラギーナン、ペクチンな
どの水溶性多糖類が用いられる。
の水溶性金属塩、グアガム、カラギーナン、ペクチンな
どの水溶性多糖類が用いられる。
これらのゲル中に細胞を固定化するには、特開昭57−
202289号公報に開示されているようにハーヘスト
した細胞を懸濁した多Ifや合成高分子等のゲル化剤の
溶液をノズルから多価金属イオンの水溶液、例えば塩化
カルシウム水溶液中に滴下させ、球形もしくは長球状の
ゲル化カプセルを形成させ、細胞を固定化する方法が一
般的に行われる。
202289号公報に開示されているようにハーヘスト
した細胞を懸濁した多Ifや合成高分子等のゲル化剤の
溶液をノズルから多価金属イオンの水溶液、例えば塩化
カルシウム水溶液中に滴下させ、球形もしくは長球状の
ゲル化カプセルを形成させ、細胞を固定化する方法が一
般的に行われる。
次いで、このようにして得られたカプセルの表面を含水
性の微粉末、例えば、ゼラチン、澱粉などを0.01〜
1%含有するウレタンプレポリマーと反応させてゲル表
面を被覆する。ウレタンプレポリマーは、ゲル表面の水
分、ゼラチンなどの含水性微粉末中の水分と反応し、重
合しプレポリマからポリマーへと架橋化され、耐久性の
ある被覆を形成する。また、反応の過程で発生ずるC○
2ガスがウレタン被覆層中に、多数の貫通孔や空胞を形
成する。含水性微粉末を混入させないウレタンプレポリ
マーによるゲルの被覆は特開昭63−248391号公
報に開示されている。この場合には、ウレタンプレポリ
マーの重合反応は、ゲル表面の水分とのみによってすす
むため、ゲルの状態によっては高い反応熱が発生し、ゲ
ル内に固定化された細胞の生育に悪影響をおよぼすこと
が観察されている。
性の微粉末、例えば、ゼラチン、澱粉などを0.01〜
1%含有するウレタンプレポリマーと反応させてゲル表
面を被覆する。ウレタンプレポリマーは、ゲル表面の水
分、ゼラチンなどの含水性微粉末中の水分と反応し、重
合しプレポリマからポリマーへと架橋化され、耐久性の
ある被覆を形成する。また、反応の過程で発生ずるC○
2ガスがウレタン被覆層中に、多数の貫通孔や空胞を形
成する。含水性微粉末を混入させないウレタンプレポリ
マーによるゲルの被覆は特開昭63−248391号公
報に開示されている。この場合には、ウレタンプレポリ
マーの重合反応は、ゲル表面の水分とのみによってすす
むため、ゲルの状態によっては高い反応熱が発生し、ゲ
ル内に固定化された細胞の生育に悪影響をおよぼすこと
が観察されている。
しかし、ウレタンプレポリマー中に含水性の微粉末を含
有させることにより、反応を細胞に悪影響をおよぼさな
いように、被覆層内から開始させることができ、かつ、
被覆層内に多数の空胞を形成させ反応熱の散逸をはかる
ことができる。
有させることにより、反応を細胞に悪影響をおよぼさな
いように、被覆層内から開始させることができ、かつ、
被覆層内に多数の空胞を形成させ反応熱の散逸をはかる
ことができる。
ウレタンプレポリマーとしては公知のものを使用でき、
例えば上述の特開昭63−248391号公報に開示さ
れているポリオール化合物とイソシアネト化合物を反応
させて得られるようなものであればいずれでも使用可能
である。本発明において特に好ましいものは、1−ルエ
ンジイソシアネートとポリオキシエチレンポリオキシプ
ロピレンボリオルとから得られた親水性のNC○末端プ
レポリマーであるPU−6(東洋ゴム株式会社製)であ
る。
例えば上述の特開昭63−248391号公報に開示さ
れているポリオール化合物とイソシアネト化合物を反応
させて得られるようなものであればいずれでも使用可能
である。本発明において特に好ましいものは、1−ルエ
ンジイソシアネートとポリオキシエチレンポリオキシプ
ロピレンボリオルとから得られた親水性のNC○末端プ
レポリマーであるPU−6(東洋ゴム株式会社製)であ
る。
ウレタンプレポリマーをゲル表面で反応させ、被覆層を
形成するためには、細胞封入ゲルをウレタンプレポリマ
ーに浸漬する方法、あるいは、表面に塗布する方法、二
重管の内管中をゲルを流下させ、外管よりウレタンプレ
ポリマーを流下させ、表面に被覆する方法など一般的な
方法が採用し得る。
形成するためには、細胞封入ゲルをウレタンプレポリマ
ーに浸漬する方法、あるいは、表面に塗布する方法、二
重管の内管中をゲルを流下させ、外管よりウレタンプレ
ポリマーを流下させ、表面に被覆する方法など一般的な
方法が採用し得る。
以下に実施例を示し、さらに本発明の詳細な説明する。
実施例1(細胞封入カプセルの製造)
抗ヒトエリスロボエチン抗体を生産するハイプリドーマ
細胞epo2C細胞を10%牛脂児血清を含むダルベツ
コ改変イーグル培地とF12培地の等量混合培地で培養
した。培養後、細胞をハーヘストした後、4 Xl06
cells/成の濃度になるようにlO%牛脂児血清を
含むダルベツコ改変イーグル培地とF12培地の等量混
合培地に懸濁した。等量の2%アルギン酸Na水溶液と
混合し、次いで、0.1M CaC]z水溶液中に細管
より滴下し、細胞封入ゲルを作成した。そして、このゲ
ルを第1図に示す二重管ノズルの内管(2)より流下さ
せ、外管(1)より、0.1%粉末ゼラチン懸濁ウつタ
ンプレポリマーPU−6を流下させ、ゲル表面を被覆し
、フルオロカーボン中で重合反応を行わせ、ウレタンコ
〜ティング層内に多数の空胞構造を有する細胞封入カプ
セル体を得た。
細胞epo2C細胞を10%牛脂児血清を含むダルベツ
コ改変イーグル培地とF12培地の等量混合培地で培養
した。培養後、細胞をハーヘストした後、4 Xl06
cells/成の濃度になるようにlO%牛脂児血清を
含むダルベツコ改変イーグル培地とF12培地の等量混
合培地に懸濁した。等量の2%アルギン酸Na水溶液と
混合し、次いで、0.1M CaC]z水溶液中に細管
より滴下し、細胞封入ゲルを作成した。そして、このゲ
ルを第1図に示す二重管ノズルの内管(2)より流下さ
せ、外管(1)より、0.1%粉末ゼラチン懸濁ウつタ
ンプレポリマーPU−6を流下させ、ゲル表面を被覆し
、フルオロカーボン中で重合反応を行わせ、ウレタンコ
〜ティング層内に多数の空胞構造を有する細胞封入カプ
セル体を得た。
実施例2 (細胞封入カプセルの培養)実施例1で得た
細胞封入カプセルを24cm1の容量を持つリアクター
中に100個充填し、リアクタ下部より25mR/mi
nで通気し、5%牛脂児血清含有ダルベツコ改変培地を
48 mfl 7日の流量で循環させた。6日間培養を
継続し、グルコース消費量、抗体産生量を測定した。第
2図に示すように、本発明に係るカプセル法で作成した
細胞封入カプセル体は高い抗体産生を示した。また、6
日目に″カプセル体をとり出し、細胞の生育状態を観察
した。
細胞封入カプセルを24cm1の容量を持つリアクター
中に100個充填し、リアクタ下部より25mR/mi
nで通気し、5%牛脂児血清含有ダルベツコ改変培地を
48 mfl 7日の流量で循環させた。6日間培養を
継続し、グルコース消費量、抗体産生量を測定した。第
2図に示すように、本発明に係るカプセル法で作成した
細胞封入カプセル体は高い抗体産生を示した。また、6
日目に″カプセル体をとり出し、細胞の生育状態を観察
した。
第3図に示すように、ウレタン被覆層に多数の空胞が生
し、空胞中にも細胞が生育し、良好な結果であった。
し、空胞中にも細胞が生育し、良好な結果であった。
そして、このカプセル体中で長期間培養が可能となった
発里少媚来
本発明による細胞封入カプセル体は、多数の空胞構造を
有するウレタンポリマーコーティング層が形成されてい
るので、このカプセル体を用いて細胞を培養すると、細
胞の死滅が少く、長期間耐久的に培養することができる
。また、細胞の生育も良く、目的とする物質の生産を向
上することができる。
有するウレタンポリマーコーティング層が形成されてい
るので、このカプセル体を用いて細胞を培養すると、細
胞の死滅が少く、長期間耐久的に培養することができる
。また、細胞の生育も良く、目的とする物質の生産を向
上することができる。
また、ウレタンポリマー形成反応がウレタンポリマーに
混入させたゼラチンに含まれる水分により開始するため
、反応により発生する熱がゲル内部まで伝わらないため
、ゲルに封入固定化した細胞の死滅が少ない。
混入させたゼラチンに含まれる水分により開始するため
、反応により発生する熱がゲル内部まで伝わらないため
、ゲルに封入固定化した細胞の死滅が少ない。
第1図は、本発明実施例1で使用するウレタンプレポリ
マーコーティング用二重管の構造を示す。 (1)は内管、(2)は外管を示す。 第2図は、本発明実施例2により培養を行って生産され
た抗体の生産量と糖の消費量との関係を示す。図中、O
はウレタンプレポリマー、テフロン膜を用いた場合(対
照)、・はウレタンプレポ0 リマー+ゼラチン、テフロン膜を用いた場合についての
上記関係をそれぞれ示す。 第3図は、本発明実施例2により細胞培養後6日を経過
したカプセル体の縦断面図を示す。 (1)は細胞、(2)はアルギン酸カルシウム、(3)
はアルギン酸カルシウム脱水層、(4)はウレタンポリ
マをそれぞれ示す。
マーコーティング用二重管の構造を示す。 (1)は内管、(2)は外管を示す。 第2図は、本発明実施例2により培養を行って生産され
た抗体の生産量と糖の消費量との関係を示す。図中、O
はウレタンプレポリマー、テフロン膜を用いた場合(対
照)、・はウレタンプレポ0 リマー+ゼラチン、テフロン膜を用いた場合についての
上記関係をそれぞれ示す。 第3図は、本発明実施例2により細胞培養後6日を経過
したカプセル体の縦断面図を示す。 (1)は細胞、(2)はアルギン酸カルシウム、(3)
はアルギン酸カルシウム脱水層、(4)はウレタンポリ
マをそれぞれ示す。
Claims (3)
- (1)細胞をゲル化剤で固定化したゲルをウレタンポリ
マーでコーティングした細胞封入カプセル体であって、
ウレタンポリマーコーティング層内に多数の空胞構造を
有することを特徴とする細胞封入カプセル体。 - (2)細胞をゲル化剤で固定化したゲルをウレタンプレ
ポリマーと反応させてゲルの周囲をウレタンポリマー層
でコーティングした細胞封入カプセル体を製造する方法
において、ウレタンプレポリマー中に含水性微粉末を混
入させてウレタンポリマーコーティング層内に多数の空
胞構造を形成させることを特徴とする細胞封入カプセル
体の製造方法。 - (3)含水性微粉末がゼラチン粉末であることを特徴と
する請求項(2)に記載の細胞封入カプセル体の製造方
法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1224215A JPH0387172A (ja) | 1989-08-30 | 1989-08-30 | 細胞封入カプセル体及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1224215A JPH0387172A (ja) | 1989-08-30 | 1989-08-30 | 細胞封入カプセル体及びその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0387172A true JPH0387172A (ja) | 1991-04-11 |
Family
ID=16810319
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1224215A Pending JPH0387172A (ja) | 1989-08-30 | 1989-08-30 | 細胞封入カプセル体及びその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0387172A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0513803A2 (en) * | 1991-05-17 | 1992-11-19 | Japan Vilene Company, Ltd. | Carrier for immobilization of animal cells, process for manufacture thereof, and methods for cultivation |
WO2003102123A3 (de) * | 2002-05-31 | 2004-02-26 | Probiogen Ag | Kultursysteme zur sterilen kontinuierlichen kultivierung von zellen |
JP2019083794A (ja) * | 2017-11-10 | 2019-06-06 | 永嶋 良一 | 担体の製造方法、および担体 |
WO2022239810A1 (ja) * | 2021-05-11 | 2022-11-17 | 大日本印刷株式会社 | 乾燥マイクロキャリアおよびその製造方法 |
-
1989
- 1989-08-30 JP JP1224215A patent/JPH0387172A/ja active Pending
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0513803A2 (en) * | 1991-05-17 | 1992-11-19 | Japan Vilene Company, Ltd. | Carrier for immobilization of animal cells, process for manufacture thereof, and methods for cultivation |
WO2003102123A3 (de) * | 2002-05-31 | 2004-02-26 | Probiogen Ag | Kultursysteme zur sterilen kontinuierlichen kultivierung von zellen |
JP2019083794A (ja) * | 2017-11-10 | 2019-06-06 | 永嶋 良一 | 担体の製造方法、および担体 |
WO2022239810A1 (ja) * | 2021-05-11 | 2022-11-17 | 大日本印刷株式会社 | 乾燥マイクロキャリアおよびその製造方法 |
JPWO2022239810A1 (ja) * | 2021-05-11 | 2022-11-17 |
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