JPH0379995B2 - - Google Patents

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JPH0379995B2
JPH0379995B2 JP62056050A JP5605087A JPH0379995B2 JP H0379995 B2 JPH0379995 B2 JP H0379995B2 JP 62056050 A JP62056050 A JP 62056050A JP 5605087 A JP5605087 A JP 5605087A JP H0379995 B2 JPH0379995 B2 JP H0379995B2
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JP
Japan
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monoclonal antibody
antibody
pseudourisin
culture supernatant
elisa
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Kunihiko Ito
Toshiro Majima
Nakao Ishida
Michinao Mizugaki
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SENDAI BISEIBUTSU KENKYUSHO
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SENDAI BISEIBUTSU KENKYUSHO
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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は単クローン性抗体に関し、更に詳細に
は進行癌のマーカーであるシユードウリジンψ
(psedouridine ψ)に対する単クローン性抗体に
関する。 〔従来の技術及びその問題点〕 近年癌関連抗原に対する単クローン性抗体を用
いた臨床検査診断が盛んに実施されてきている。
また、癌になると増加することが知られている物
質である癌胎児性抗原(CEA)、α−フエトプロ
テンなどに対する抗体を用いて同様なことが行わ
れている。 ところで、癌になると増加する物質、すなわち
腫瘍マーカーと呼ばれる物質の中で、進行癌患者
尿中に増加するものとしてシユードウリジンψが
知られている。この物質はトランスフアー・リボ
ヌクレイツクアシド(t‐RNA)の構成成分の
1つであり、その増加の原因は、癌組織における
t−RNAのブレークダウン(breakdown)が正
常組織に比較し、亢進しているためであるといわ
れているが、その増加のメカニズムの詳細につい
ては未解明である。 現在、このシユードウリジンψ(以下「ψ」の
略称することがある)の量を測定し、これから進
行癌の存在を判定する試みがなされているが、ψ
の定量は高速液体クロマトグラフイー(HPLC)
でおこなわれるため、サンプルの前処理等が煩雑
であり、多検体を測定するには非常に長時間を要
するという欠点があつた。 本発明者らは先に、簡敏なψの測定法を開発す
べく、種々検討をおこなつた結果、ψに対する単
クローン性抗体を新たに作成し、これを用いるこ
とにより、尿サンプルの前処理操作を行うことな
くELISA法を応用した多検体同時測定方法を実
施することができ、測定の迅速化、簡素化がはか
れることを見出し特許出願した〔特願昭61−
143484号(特開昭62−299765号)〕。 しかしながら、特願昭61−143484号に記載され
たψに対する単クローン性抗体は、ウリジンと95
〜99%、ウラシルと30〜40%の交叉反応性を有し
ているため、この単クローン性抗体を用いた
ELISAによるψの定量においては、ψのほかに
ウリジンやウラシルも含めて、測定していた可能
性があつた。そのため、進行癌患者においてさえ
もψの高値例が少ないという、これまでのHPLC
による定量のデータと矛盾する結果が得られると
いう欠点があつた。 そこで、本発明者らは更に、ψに対する反応特
異性の高い単クローン性抗体を得べく研究をおこ
なつた結果、遊離のψに対する阻害が強く、ウリ
ジン及びウラシルに対する阻害がないかあるいは
阻害の極めて弱い単クローン性抗体はψに対する
反応特異性が高く、しかもこれをψの測定法に用
いた場合、HPLC等による定量のデータとよく一
致することを見出し、本発明を完成した。 すなわち、本発明は、次の性質 (1) 抗体のクラス:IgG1 (2) 抗体価(培養上清を2段階希釈し、それぞれ
とψ−BSAを反応させるELISAを行なつたと
き、最も高い吸光度を持続する希釈倍率):64
倍 (3) 交叉反応性:シユードウリジン 100% ウリジン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 2.8% を有するψに対する単クローン性抗体及びこれを
用いるψの測定法を提供するものである。 本発明のψに対する単クローン性抗体は、例え
ば次の如くして調製される。 すなわち、まず、ψを用いて動物を免疫し、そ
の動物の脾細胞を採取する。この工程において、
ψはそれ単独では免疫原となり得ないので、適当
なキヤリア・プロテイン(Carrier Protein)と
結合させたのち、免疫原として用いる。ψとして
は、例えば進行癌患者の尿中から公知の方法、例
えばシグマ(Sigma)社から販売されている標品
を用いることができ、キヤリア・プロテインとし
ては、ハプテン部分を免疫担当細胞が認識するこ
とを可能にする目的で用いられるプロテイン、例
えばキーホール・リンペツト・ヘモシアニン、牛
血清アルブミン等を用いることができる。また、
このψとキヤリア・プロテインを結合する方法と
しては、例えば、核酸塩基の糖部分を過ヨウ素酸
で酸化したのちにキヤリア・プロテインと結合さ
せる等の方法が挙げられる。更に、免疫動物とし
ては、マウス、ラツト等が挙げられる。 次に得られた免疫動物の脾細胞を骨髄腫細胞と
融合し、ハイブリドーマを得る。細胞融合におい
ては、公知のポリエチレングリコールを用いる方
法及びウイルスを用いる方法のいずれを用いても
良いが、ハイブリドーマのスクリーニングに当つ
ては、キヤリア・プロテインに対する抗体産生ハ
イブリドーマを除去するための留意が必要であ
る。このためには、免疫に用いたキヤリア・プロ
テインと異なつた種由来のプロテインとψを結合
させたものを抗原としてスクリーニングする等の
方法を用いることが望ましい。 斯しくして得られるハイブリドーマは、更に遊
離のψ、ウリジン及びウラシルで阻害されるか否
か検討し、ψにより強く阻害され、ウリジン及び
ウラシルで阻害されないか、あるいは極めて弱く
阻害されるものが選ばれ、以下常法によりクロー
ニングして目的の抗体を産生するハイブリドーマ
を得る。 このハイブリドーマにより産生される本発明の
単クローン性抗体は、前記した如き性質を有する
ものである。 叙上の如くして得られた単クローン性抗体を用
いてψを測定する場合の例を挙げれば次の通りで
ある。 すなわち、96ウエルプレートに、ψと牛血清ア
ルブミン(BSA)の結合物を0.2μg/穴で添加
したのち、4℃で、12〜24hr放置する。次に各ウ
エルに1%BSAを含むリン酸緩衝生理食塩水
(PBS)を100μずつ添加することにより、抗体
その他のタンパクを非特異的吸着を防止する。次
に試料(尿など)を各ウエルに50μ添加し、さ
らに、本発明の単クローン性抗体(20倍希釈液)
を各ウエルに50μ添加する。よくかくはんした
のちに、4℃で1時間放置する。反応混合物を
PBSでよく洗浄したのちに、アルカリホスフア
ターゼ標識ヤギ抗マウスIgG抗体の1000倍希釈液
を各ウエルに100μずつ添加する。室温で30分
間反応させたのちに、PBSでよく洗い、水分を
切つたのちに基質溶液(パラニトロフエニルフオ
スフエート1mg/ml、PH9.8ジエタノールアミン
バツフアー)を100μずつ加え、37℃で30分間
反応させる。各ウエルの405nmにおける吸光度
をEIAリーダーで測定することにより試料中に存
在するψ量の定量を行なう。 〔本発明の効果〕 以上のように本発明の単クローン性抗体を用い
れば、試料の前処理をおこなうことなくψの測定
をおこなうことができ、しかもHPLCの如き大が
かりな装置も必要としないので、簡便かつ迅速に
進行癌の有無を判定することができる。また、特
願昭61−143484号記載の単クローン性抗体を用い
るよりも、より特異的なψの定量が可能である。 〔実施例〕 次に実施例を挙げ、本発明を説明する。 実施例 1 (1) 免疫原の調製: 癌患者の尿中から常法により分離したψと、
キヤリアプロテインであるキーホール・リンペ
ツト・ヘモシアニン(Keyhole lympet
hemocyanine;KLH)をエルランガー
(Erlanger)とビーザー(Bieser)の方法(過
ヨウ素酸酸化法)により結合した。すなわちψ
を過ヨウ素酸で酸化し、過剰の過ヨウ素酸をエ
チレングリコールで分解したのち、アルカリ性
(PH9〜9.5)条件下でKLHと結合させ、シツ
フ塩基を形成させる。ついでNaBH4で還元し、
安定化合物を生成させる。この反応混合物を緩
衝液(リン酸緩衝生理食塩水、PH7.4)中で一
晩透析し、未反応のψを除き、このあと凍結乾
燥に付し−20℃の冷凍庫中に保存した。 (2) 単クローン性抗体の作成: () (1)で得たψとKLH結合物を、フロイン
トの完全アジユバント(Freund's Complete
Adjuvant)と等量混合し、エマルジヨンと
したのち、BALB/cマウスの腹腔内に一
匹当り50μg投与した。2回目以降は不完全
アジユバント(incomplete adjuvant)を用
いたエマルジヨンを、10日間隔で2回腹腔内
に投与した。最終免疫はψ−KLH100μg/
ml溶液を0.2ml静脈内投与した。 () 最終免疫の3日後に、過免疫マウスから
摘出した脾細胞(1.3×108個)とBALB/c
マウス由来ミエローマ細胞株SP2/0―
Ag14(1.2×107個)をポリエチレングリコー
ル(PEG)4000を用いて融合した。細胞は
96穴プレートに100μ/穴ずつ加え、24時
間後に培地の半量をハツト(HAT)培地に
交換し2日おきに培地交換した。7〜10日後
にハツト耐性のハイブリドーマの成長がみら
れてくる(288ウエル中、288)。この時期に
培地をHTに変え、約10日間培養したのちに
ハイブリドーマ生育培地に変えた。 () 抗体産生細胞のスクリーニングはψと牛
血清アルブミン(BSA)を結合させたもの
を抗原として用い2抗体エライザ(ELISA)
法により行つた。この方法により、キヤリア
プロテインに対する抗体を産生するハイブリ
ドーマの除外に成功した。次にψによる阻害
がかかるか否かを検討することによりψと特
異的に反応する単クローン性抗体を産生する
ハイブリドーマを選択した。このハイブリド
ーマについて、更にウリジン及びウラシルに
よる阻害がかかるか否かをANTICANCER
RESEARCH6:135−138(1986)、CANCER
RESEARCH46、3164−3167(1986)、
Journal of Immunological Methods.81
(1985)169−185等に開示の方法に準じて検
討し、これらに対する阻害が無いか、あるい
はあつても極めて弱いものを選択した。ここ
で選択された細胞株を限界希釈法によりクロ
ーン化し単クローン性抗体産生ハイブリドー
マクローン(3株)を樹立した。 (3) 単クローン性抗体の性質: ψに対する単クローン性抗体のクラス(サブ
クラス)はIgG1であつた。抗体価は64倍(培
養上清を2段階希釈し、それぞれとψ−BSA
を反応させるELISAを行つた時、最も高い吸
光度の持続する希釈倍率を抗体価とした)であ
つた。また、種々のプリン、ピリミジン、修
飾、非修飾ヌクレオシドおよび塩基類との交叉
反応性を検討したところ、ウリジンとは交叉せ
ず、ウラシルと7%、5−フルオロウラシルと
28%の交叉反応性を示したが他の化合物とは、
交叉反応性を示さなかつた。 実施例 2 ψの200、100、50、20、10、5、2、1、0.5
(μg/ml)溶液をあらかじめψ−BSA0.3μg/
穴でコートされた96穴プレートへ50μずつ加
え、実施例1で得られた単クローン性抗体の20倍
希釈液を50μずつ加え、競合阻害実験を行なつ
た。この結果、図1に示すように遊離のψの用量
に依存して抗体とψ−BSAの結合が阻害される
ことが明らかとなつた。本単クローン性抗体を用
いるψの定量範囲は1〜50μg/mlであつた。 実施例 3 実施例2のψ溶液にかえて試料として、正常人
および癌患者の尿を用い、同様に競合阻害試験を
おこなつた。実施例2の結果から得た検量線を用
い、試料中のψ量を測定した。特願昭61−143484
号に記載されたψに対する単クローン性抗体につ
いても同様の測定を行なうことにより、両単クロ
ー性抗体の比較を行なつたところ、ψ値が(平均
+2×標準偏差)値を越えた癌患者は新抗体では
5/6、旧抗体では1/6であつた。 この結果を表1に示した。 【表】
[Detailed Description of the Invention] [Industrial Application Field] The present invention relates to a monoclonal antibody, and more particularly to a monoclonal antibody, which is a marker for advanced cancer.
(psedouridine ψ). [Prior art and its problems] In recent years, clinical diagnostic tests using monoclonal antibodies against cancer-related antigens have been actively carried out.
Similar efforts have also been made using antibodies against carcinoembryonic antigen (CEA), α-fetoproten, and other substances that are known to increase in cancer. By the way, among substances that increase when cancer develops, that is, substances called tumor markers, euduridine ψ is known to increase in the urine of patients with advanced cancer. This substance is one of the components of transfer ribonucleic acid (t-RNA), and its increase is due to the breakdown of t-RNA in cancer tissues compared to normal tissues. It is said that this is due to an increase in the number of children, but the details of the mechanism behind this increase have not been elucidated. Currently, attempts are being made to measure the amount of pseudourisine ψ (hereinafter sometimes abbreviated as "ψ") and determine the presence of advanced cancer from this.
Quantification is performed using high performance liquid chromatography (HPLC).
Since the method is carried out in a vacuum, pretreatment of the sample is complicated, and it takes a very long time to measure a large number of samples. The present inventors previously conducted various studies in order to develop a simple method for measuring ψ, and as a result, they created a new monoclonal antibody against ψ. We discovered that it was possible to carry out the simultaneous measurement of multiple samples using the ELISA method without performing any processing operations, and that the measurement could be made faster and simpler.
No. 143484 (Unexamined Japanese Patent Publication No. 62-299765)]. However, the monoclonal antibody against ψ described in Japanese Patent Application No. 143484/1984 has uridine and 95
This monoclonal antibody was used because it has ~99% and 30-40% cross-reactivity with uracil.
When quantifying ψ by ELISA, there was a possibility that uridine and uracil were also measured in addition to ψ. Therefore, conventional HPLC has shown that there are few cases of high values of ψ even in patients with advanced cancer.
The drawback was that results contradicting the quantitative data obtained by the method were obtained. Therefore, the present inventors further conducted research to obtain a monoclonal antibody with high reaction specificity for ψ. As a result, it was found that the inhibition was strong against free ψ, and there was no inhibition or very little inhibition against uridine and uracil. We have completed the present invention by discovering that a weak monoclonal antibody has high reaction specificity for ψ, and when used in a method for measuring ψ, it agrees well with quantitative data by HPLC or the like. That is, the present invention has the following characteristics (1) Antibody class: IgG 1 (2) Antibody titer (the highest value when performing ELISA in which the culture supernatant is diluted in two stages and each is reacted with ψ-BSA) Dilution factor that maintains absorbance): 64
The present invention provides a monoclonal antibody against ψ having cross-reactivity: 100% pseudouridine, 0% uridine, 7% uracil, 2.8% 5-fluorouracil, and a method for measuring ψ using the same. The monoclonal antibody against ψ of the present invention is prepared, for example, as follows. That is, first, an animal is immunized using ψ, and splenocytes from the animal are collected. In this process,
Since ψ cannot act as an immunogen by itself, it is used as an immunogen after being combined with an appropriate carrier protein. As ψ, for example, a known method can be used to extract urine from advanced cancer patients, such as a standard product sold by Sigma, and as a carrier protein, the hapten portion is recognized by immunocompetent cells. Proteins used for this purpose, such as keyhole limpet hemocyanin and bovine serum albumin, can be used. Also,
Examples of a method for binding this ψ to a carrier protein include oxidizing the sugar moiety of the nucleobase with periodic acid and then binding it to the carrier protein. Furthermore, examples of immunized animals include mice, rats, and the like. Next, the obtained splenocytes of the immunized animal are fused with myeloma cells to obtain hybridomas. For cell fusion, either a known method using polyethylene glycol or a method using a virus may be used, but when screening hybridomas, care must be taken to remove hybridomas that produce antibodies against carrier proteins. be. For this purpose, it is desirable to use a method such as screening as an antigen a protein derived from a different species than the carrier protein used for immunization, in which ψ is bound. The hybridoma thus obtained was further examined to see if it was inhibited by free ψ, uridine, and uracil, and those that were strongly inhibited by ψ and not or extremely weakly inhibited by uridine and uracil were selected. Then, a hybridoma producing the antibody of interest is obtained by cloning using a conventional method. The monoclonal antibody of the present invention produced by this hybridoma has the properties described above. An example of measuring ψ using the monoclonal antibody obtained as described above is as follows. That is, a conjugate of ψ and bovine serum albumin (BSA) is added at 0.2 μg/well to a 96-well plate, and then left at 4° C. for 12 to 24 hours. Next, 100 μl of phosphate buffered saline (PBS) containing 1% BSA is added to each well to prevent nonspecific adsorption of antibodies and other proteins. Next, 50μ of a sample (urine, etc.) was added to each well, and the monoclonal antibody of the present invention (20-fold dilution) was added to each well.
Add 50 μl of to each well. After stirring well, leave at 4°C for 1 hour. reaction mixture
After thorough washing with PBS, add 100 μl of a 1000-fold dilution of alkaline phosphatase-labeled goat anti-mouse IgG antibody to each well. After reacting at room temperature for 30 minutes, washing thoroughly with PBS and draining water, add 100μ of substrate solution (para-nitrophenyl phosphate 1mg/ml, PH9.8 diethanolamine buffer) and incubate at 37℃. Incubate for 30 minutes. The amount of ψ present in the sample is quantified by measuring the absorbance of each well at 405 nm using an EIA reader. [Effects of the present invention] As described above, by using the monoclonal antibody of the present invention, ψ can be measured without pre-treating the sample, and also does not require large-scale equipment such as HPLC. , the presence or absence of advanced cancer can be determined simply and quickly. Furthermore, it is possible to quantify ψ more specifically than by using the monoclonal antibody described in Japanese Patent Application No. 143484/1984. [Example] Next, the present invention will be explained with reference to Examples. Example 1 (1) Preparation of immunogen: ψ isolated from the urine of cancer patients by a conventional method,
Keyhole lympet hemocyanin, a carrier protein
hemocyanine (KLH) was combined by the method of Erlanger and Bieser (periodate oxidation method). That is, ψ
After oxidizing with periodic acid and decomposing excess periodic acid with ethylene glycol, it is combined with KLH under alkaline (PH9-9.5) conditions to form Schiff's base. Then reduced with NaBH4 ,
Generate stable compounds. The reaction mixture was dialyzed overnight in a buffer solution (phosphate buffered saline, pH 7.4) to remove unreacted ψ, and then freeze-dried and stored in a -20°C freezer. (2) Creation of monoclonal antibody: () The ψ and KLH conjugate obtained in (1) was added to Freund's Complete Adjuvant (Freund's Complete Adjuvant).
Adjuvant) was mixed in equal amounts to form an emulsion, and then 50 μg per BALB/c mouse was administered intraperitoneally. From the second time onward, the emulsion using an incomplete adjuvant was intraperitoneally administered twice at 10-day intervals. Final immunization is ψ-KLH100μg/
ml solution was administered intravenously. () Three days after the final immunization, splenocytes (1.3 × 10 8 cells) and BALB/c were excised from hyperimmunized mice.
Mouse-derived myeloma cell line SP2/0-
Ag14 (1.2 × 10 7 pieces) was fused using polyethylene glycol (PEG) 4000. The cells are
100μ/well was added to a 96-well plate, half of the medium was replaced with HAT medium after 24 hours, and the medium was replaced every two days. After 7 to 10 days, growth of pigeon-resistant hybridomas is observed (288 out of 288 wells). At this time, the medium was changed to HT, and after culturing for about 10 days, the medium was changed to hybridoma growth medium. () Screening for antibody-producing cells is carried out using a two-antibody ELISA using a combination of ψ and bovine serum albumin (BSA) as an antigen.
It was done according to the law. Using this method, we succeeded in excluding hybridomas that produce antibodies against carrier proteins. Next, we selected hybridomas that produced monoclonal antibodies that specifically reacted with ψ by examining whether they were inhibited by ψ. For this hybridoma, ANTICANCER further investigated whether or not it is inhibited by uridine and uracil.
RESEARCH6:135-138 (1986), CANCER
RESEARCH46, 3164−3167 (1986),
Journal of Immunological Methods.81
(1985) 169-185, etc., and selected those that had no or very weak inhibition against these. The cell lines selected here were cloned by the limiting dilution method to establish monoclonal antibody-producing hybridoma clones (3 strains). (3) Properties of monoclonal antibody: The class (subclass) of the monoclonal antibody against ψ was IgG 1 . The antibody titer was 64 times (the culture supernatant was diluted in two stages, and
When performing ELISA to react with the antibody, the dilution ratio at which the highest absorbance persisted was taken as the antibody titer). In addition, when we examined cross-reactivity with various purines, pyrimidines, modified and unmodified nucleosides, and bases, we found that there was no cross-reactivity with uridine, 7% with uracil, and 5-fluorouracil.
It showed 28% cross-reactivity with other compounds.
No cross-reactivity was shown. Example 2 ψ of 200, 100, 50, 20, 10, 5, 2, 1, 0.5
(μg/ml) solution in advance with ψ-BSA0.3μg/
A competitive inhibition experiment was performed by adding 50 μl each of the 20-fold dilution of the monoclonal antibody obtained in Example 1 to a 96-well plate coated with holes. As a result, as shown in FIG. 1, it was revealed that the binding between the antibody and ψ-BSA was inhibited depending on the dose of free ψ. The quantification range of ψ using this monoclonal antibody was 1 to 50 μg/ml. Example 3 A competitive inhibition test was conducted in the same manner as in Example 2, using urine from a normal person and a cancer patient as samples instead of the ψ solution in Example 2. Using the calibration curve obtained from the results of Example 2, the amount of ψ in the sample was measured. Patent application 1986-143484
When comparing both monoclonal antibodies by performing the same measurement for the monoclonal antibody against ψ described in the issue, it was found that cancer patients whose ψ value exceeded the (average + 2 x standard deviation) value was 5/6 for the new antibody and 1/6 for the old antibody. The results are shown in Table 1. 【table】

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

図1は、本発明の単クローン性抗体の、ψに対
する検量線である。
FIG. 1 is a calibration curve for ψ of the monoclonal antibody of the present invention.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 次の性質、 (1) 抗体のクラス:IgG1 (2) 抗体価(培養上清を2段階希釈し、それぞれ
とシユードウリジンψ−牛血清アルブミン結合
体を反応させるELISAを行なつたとき、最も
高い吸光度を持続する希釈倍率):64倍 (3) 交叉反応性:シユードウリジン 100% ウリジン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 2.8% を有するシユードウリジンψに対する単クローン
性抗体。 2 被検体に、下に示す性質を有するシユードウ
リジンψに対する単クローン性抗体を加え、生じ
たシユードウリジンψ−単クローン性抗体複合物
量を測定することを特徴とするシユードウリジン
ψの測定法。 (1) 抗体のクラス:IgG1 (2) 抗体価(培養上清を2段階希釈し、それぞれ
とシユードウリジンψ−牛血清アルブミン結合
体を反応させるELISAを行なつたとき、最も
高い吸光度を持続する希釈倍率):64倍 (3) 交叉反応性:シユードウリジン 100% ウリジン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 2.8%
[Claims] 1. The following properties: (1) Antibody class: IgG 1 (2) Antibody titer (ELISA in which the culture supernatant is diluted in two stages and each is reacted with the conjugate of pseudouridine ψ and bovine serum albumin). Monoclonal antibody against pseudouridine ψ having the following dilution ratio: 64 times (3) to maintain the highest absorbance when tested. 2. A method for measuring pseudourisin ψ, which comprises adding a monoclonal antibody against pseudourisin ψ having the properties shown below to a specimen and measuring the amount of the resulting pseudourisin ψ-monoclonal antibody complex. (1) Antibody class: IgG 1 (2) Antibody titer (when the culture supernatant is diluted in two stages and an ELISA is performed in which the culture supernatant is reacted with the conjugate of seuduridine ψ and bovine serum albumin, the highest absorbance is maintained) Dilution ratio): 64 times (3) Cross-reactivity: Euridine 100% Uridine 0% Uracil 7% 5-Fluorouracil 2.8%
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