JPH03505575A - stem cell inhibitors - Google Patents

stem cell inhibitors

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JPH03505575A
JPH03505575A JP1505127A JP50512789A JPH03505575A JP H03505575 A JPH03505575 A JP H03505575A JP 1505127 A JP1505127 A JP 1505127A JP 50512789 A JP50512789 A JP 50512789A JP H03505575 A JPH03505575 A JP H03505575A
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eluted
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JP1505127A
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プラグネル,イアン・バーナード
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キヤンサー・リサーチ・キヤンペーン・テクノロジー・リミテッド
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 幹細胞阻害剤 本発明は幹細胞(stem cell)阻害剤に関し、特に癌化学療法の管理の 改善に関する。[Detailed description of the invention] stem cell inhibitors The present invention relates to stem cell inhibitors, particularly for the management of cancer chemotherapy. Regarding improvement.

癌の化学療法の際の細胞周期(cell cycle)に活性である細胞毒性薬 物の臨床的使用には、骨髄の形成不全(aplasia)が制限因子を表すこと は周知である。化学療法の現在の方法は、細胞毒性薬物で処置する間に造血性幹 細胞を保護することが可能であれば改善できることが多年に亙って認められてい たが、この分野における広範な研究にも拘らず、制御し易い由来源からの適度に 特異的な阻害剤は従来見出されていない。この進歩の欠如の一つの理由は、幹細 胞の調節を制御する適当な試験管内(in vitro)アッセイの困難にある と考えられている。Cytotoxic drugs active in the cell cycle during cancer chemotherapy Bone marrow aplasia represents a limiting factor for clinical use. is well known. Current methods of chemotherapy target hematopoietic stem cells during treatment with cytotoxic drugs. It has been recognized for many years that if it is possible to protect cells, improvements can be made. However, despite extensive research in this field, only moderate amounts of No specific inhibitor has been found so far. One reason for this lack of progress is that There are difficulties with suitable in vitro assays to control cell regulation. It is believed that.

癌化学療法に使用される細胞周期特異性薬物に対して幹細胞を保護するように造 血幹細胞と作用する能力を有する、或種のマクロファージ細胞系統(cell  1ine)から得られる蛋白質様物質を単離し同定することが本発明者等により 新規に可能となった。Designed to protect stem cells against cell cycle-specific drugs used in cancer chemotherapy Certain macrophage cell lineages have the ability to interact with blood stem cells. The present inventors have been able to isolate and identify the protein-like substance obtained from 1ine). This is now possible.

従って本発明は下記の性質を有することを特徴とする造血性幹細胞阻害剤を提供 する:即ち; 1、阻害剤活性はトリプシンによる分解に感受性があり、従って阻害剤は蛋白質 様である。Therefore, the present invention provides a hematopoietic stem cell inhibitor characterized by having the following properties. do: i.e.; 1. Inhibitor activity is sensitive to degradation by trypsin, and therefore the inhibitor is proteinaceous. It's like that.

2、阻害剤は陰イオン交換体での処理により部分的に精製された時に、分子量分 析用樹脂上で45−60Kdの範囲の分子量を示す。2. When the inhibitor is partially purified by treatment with an anion exchanger, the molecular weight It exhibits a molecular weight in the range of 45-60 Kd on analytical resin.

3、阻害剤は還元性条件を用いたポリアクリルアミドゲル電気泳動上で単一のバ ンドとなるまで精製されると、8−10Kdの分子量範囲を示し、非還元条件下 では僅かに高い分子量を示す。3. Inhibitors were analyzed in a single batch on polyacrylamide gel electrophoresis using reducing conditions. When purified to a molecular weight range of 8-10 Kd, the shows a slightly higher molecular weight.

4、阻害剤は下記: (i)阻害剤活性は37℃、55℃及び75℃で1時間加熱後も保存される、 (if)阻害剤活性は100℃で10分間加熱後も保存される、のように熱−安 定性である。4. The inhibitors are as follows: (i) inhibitor activity is preserved after heating at 37°C, 55°C and 75°C for 1 hour; (if) the inhibitor activity is preserved after heating at 100°C for 10 min, as in It is qualitative.

5、阻害剤は陰イオン交換体と結合し、0.26及び0.28モルの間のNaC 1の塩類グラジェントで溶離される。5. The inhibitor is combined with an anion exchanger and contains between 0.26 and 0.28 mol NaC It is eluted with a salt gradient of 1.

6、阻害剤はヘパリン・セファロース・アフィニティークロマトグラフィー樹脂 に結合し、該樹脂から1モルの塩化ナトリウム緩衝液で溶離できる。6. Inhibitor is heparin/Sepharose/affinity chromatography resin and can be eluted from the resin with 1 molar sodium chloride buffer.

7、阻害剤はブルー・セファロース・アフィニティークロマトグラフィー樹脂に 強く結合し、5M塩化マグネシウムで樹脂から溶離できる。7. Inhibitor is added to Blue Sepharose affinity chromatography resin It binds strongly and can be eluted from the resin with 5M magnesium chloride.

8、細胞周期中の幹細胞が部分的に精製された阻害剤で処理された時には、シト シンアラビノシドの作用に抵抗性となる。処理された幹細胞が次いで細胞毒性薬 物及び阻害剤を除去するために食塩緩衝液で洗浄されると、生存する幹細胞は培 養基中で正常な増殖を示す。8. When cycling stem cells are treated with a partially purified inhibitor, cytotoxic Becomes resistant to the action of synarabinoside. Treated stem cells are then treated with cytotoxic drugs Once washed with saline buffer to remove substances and inhibitors, the surviving stem cells remain in culture. It shows normal growth in the nutrient substrate.

阻害剤の単離及び同定は幹細胞調節体を制御する試験管内アッセイの開発により 初めて容易となった。細胞周期中の前駆体細胞(幹細胞ではなく、もっと成熟し た細胞)は阻害剤により影響を受けない。このアッセイに精製された阻害剤を直 接添加すると、巨視的なコロニーの発現の阻害をもたらすが、アッセイ中の他の コロニーには影響しない。Isolation and identification of inhibitors is facilitated by the development of in vitro assays that control stem cell regulators. It was easy for the first time. Progenitor cells in the cell cycle (not stem cells, but more mature cells) cells) are not affected by the inhibitor. Directly apply purified inhibitor to this assay. When added, it results in inhibition of macroscopic colony expression, but other Does not affect colonies.

試験管内幹細胞(CFU−A)アッセイ試験管内幹細胞の検出のために、25% の牛又は馬の胎児の血清及び0.3%の寒天を含む、補充されたアルファー変形 最小必須培地(MEM)4mA中の104の骨髄細胞を、5 cmのペトリ皿に 容れた、0.6%の寒天、10%のL929細胞順化(conditioned )培地(L929CM。In vitro stem cell (CFU-A) assay For detection of in vitro stem cells, 25% Supplemented alpha variant containing bovine or horse fetal serum and 0.3% agar 104 bone marrow cells in 4 mA of minimal essential medium (MEM) were placed in a 5 cm Petri dish. Conditioned L929 cells in 0.6% agar, 10% ) Medium (L929CM.

成長因子C3F−1の源)及び10%のAPI−19T細胞順化培地(API、 −1000MX成長因子GM−C3F及び他の未特定の幹細胞成長因子の源)を 含む同じ培地の下層の頂部に接種した。培養基を10%の002.5%の02. 85%のN2を含む充分に湿潤した雰囲気中で37℃でインキュベートした。コ ロニーをINT2−(p−ヨードフェニル)−3−(p−ニトロフェニル)−5 −フェニルテトラゾリウム塩化物の水和塩で一夜染色した。CFU−Aアッセイ において2菖翼よりも小さい直径を有するコロニーがあったが、我々はシトシン アラビノシドを用いて予備実験を行った後に、この値を有用な見切り点として選 択した。我々は、個々の皿中で、2富肩より小さい直径を有するコロニーは主と して周期中の細胞から誘導されるが、2翼雪より大きいコロニーは最小の増殖細 胞から誘導されることを見出した。2麗冨よりも大きいコロニーだけがこれらの アッセイで点数を算定された。source of growth factor C3F-1) and 10% API-19 T cell conditioned medium (API, -1000MX growth factor GM-C3F and other unspecified sources of stem cell growth factors) inoculated on top of a lower layer of the same medium containing The culture medium was 10% 002.5% 02. It was incubated at 37°C in a well-humidified atmosphere containing 85% N2. Ko INT2-(p-iodophenyl)-3-(p-nitrophenyl)-5 - Stained overnight with hydrated salt of phenyltetrazolium chloride. CFU-A assay Although there were colonies with diameters smaller than two irises in After performing preliminary experiments with arabinosides, this value was selected as a useful cut-off point. I chose. We found that in individual dishes, colonies with diameters smaller than two-fold shoulders were predominantly However, colonies larger than two wings are the smallest proliferating cells. It was found that it was induced from cells. Only colonies larger than 2 Reifumi have these The assay was scored.

本発明の阻害剤は数種のマクロファージ細胞系統から得ることができる。始めに 骨髄由来の各種の既知のマクロファージ細胞、典型的にはかようなマクロファー ジ細胞系統の主要な資源であるので、ネズミの骨髄が関心の的である。かような 細胞系統の集団をスクリーニングして本発明の阻害剤を生産できる少なくとも二 つの既知の細胞系統が特定された。Inhibitors of the invention can be obtained from several macrophage cell lines. At the beginning Various known macrophage cells derived from bone marrow, typically such macrophages Murine bone marrow is of interest because it is a major source of cell lineages. Like that At least two populations of cell lines can be screened to produce the inhibitors of the invention. Two known cell lineages were identified.

本発明を例示する実施例中において、こうした既知のマクロファーシュ細胞系統 からの単離が記載されている。In the examples illustrating the invention, such known macrophage cell lines Isolation from is described.

既知のマクロファージ細胞系統の使用とは別な方法として、骨髄細胞をレトロウ ィルス形質転換剤を用いる骨髄細胞の形質転換により適当なマクロファージ細胞 系統を生産することも可能である。As an alternative to using known macrophage cell lines, bone marrow cells can be retrorowed. Transformation of bone marrow cells using virus transforming agents to generate suitable macrophage cells It is also possible to produce strains.

本発明の阻害剤は阻害剤生産マクロファージ細胞系統を慣用の条件、例えば37 ℃、で適当な増殖培地中で培養することにより極めて簡単に生産することができ る。細胞濃度が1mA’当たり約106になるまで、空気中で5%v/vの二酸 化炭素を用いる好気的条件の使用は、理想的な増殖環境を提供する。この段階で なお成長する細胞を増殖培地から例えば遠心又は好適には膜濾過により分離し、 次いで阻害剤を上澄液から回収できる。阻害剤の活性を示すために、最初上澄液 を例えば膜透析を用いて濃縮し、約20倍の濃度とすることが望ましい。次いで 阻害剤をクロマトグラフィー的手法により濃縮された上澄液から単離することが できる。The inhibitors of the invention can be prepared by culturing inhibitor-producing macrophage cell lines under conventional conditions, e.g. It can be produced extremely easily by culturing in an appropriate growth medium at ℃. Ru. 5% v/v diacid in air until the cell concentration is approximately 106 per mA'. The use of aerobic conditions with carbonized carbon provides an ideal growth environment. At this stage Note that the growing cells are separated from the growth medium, for example by centrifugation or preferably membrane filtration, The inhibitor can then be recovered from the supernatant. First supernatant to demonstrate inhibitor activity It is desirable to concentrate it using membrane dialysis, for example, to a concentration of about 20 times. then The inhibitor can be isolated from the concentrated supernatant by chromatographic techniques. can.

精製の最初の段階は、濃縮された上澄液を陰イオン交換樹脂に通し、そして0. 25−0.30MのNaCl溶液を用いて画分を溶離することを含んでいる。The first step in the purification is to pass the concentrated supernatant through an anion exchange resin and pass the concentrated supernatant through an anion exchange resin. 25 - eluting the fractions with a 0.30M NaCl solution.

精製の第二の段階は第一の段階からの生成物をセファロース−ヘパリンカラムに 通し、少な(ともIMのモル濃度のN a CI溶液を用いて画分を溶離するこ とを含む。The second step of purification is to transfer the product from the first step to a Sepharose-heparin column. Elute the fractions using a low (both IM and IM) molar NaCI solution. including.

精製の第三の段階は第二の段階からの生成物をセファロ−スーブルーに通し、少 なくとも3Mのモル濃度のMgCl2溶液を用いてフラグメントを溶離すること を含む。この溶離液は還元条件下でのポリアクリルアミドゲル電気泳動により単 一のバンドを示す生成物を与える。The third step of purification is to pass the product from the second step through Sepharose Blue to reduce the Elute the fragments using a MgCl2 solution with a molar concentration of at least 3M. including. This eluent was isolated by polyacrylamide gel electrophoresis under reducing conditions. It gives a product showing one band.

本発明の阻害剤の主な用途は、下記に一層詳細に記載されるように、臨床的診療 においてであるが、阻害剤又はその免疫原的に活性な画分は宿主動物を免疫化し 、宿主動物の抗体又は抗体生産細胞から回収することにより、一部又は総ての阻 害剤を認識する抗体を集める免疫原として使用することもできる。こうした抗体 は例えば兎の血清から多クローン性抗体を回収できる兎を用いて生産することが でき、又は慣用の技術により単クローン性抗体の生産のために免疫原としてネズ ミを使用することができる。The primary use of the inhibitors of the invention is in clinical practice, as described in more detail below. in which the inhibitor or immunogenically active fraction thereof immunizes the host animal. , some or all of the inhibition can be achieved by recovering antibodies from host animals or antibody-producing cells. It can also be used as an immunogen to collect antibodies that recognize harmful agents. These antibodies For example, it can be produced using rabbits that can collect polyclonal antibodies from rabbit serum. can be used as an immunogen for the production of monoclonal antibodies by conventional techniques. Mi can be used.

本発明は又本発明の阻害剤を符号化(encode)するDNA配列に拡張され る。こうしたDNAは組換えDNA技術による阻害剤の生産に興味がある。こう した技術は二種の異なるアプローチを含むことができる。両方のアプローチとも 第一段階として阻害剤を自然に生産する、マクロファージ細胞系統からのメツセ ンジャーRNAからの遺伝子ライブラリーの生産を必要とする。これは細菌又は 他の宿主細胞中に発現できる相補的DNAの生産を含んでいる。The invention also extends to DNA sequences encoding the inhibitors of the invention. Ru. Such DNA is of interest for the production of inhibitors by recombinant DNA technology. like this These techniques can include two different approaches. both approaches Messengers from macrophage cell lines that naturally produce inhibitors as a first step Requires the production of a gene library from ginger RNA. This is a bacteria or It involves the production of complementary DNA that can be expressed in other host cells.

cDNAライブラリーが生産されると、第一のアプローチはDNAプローブの生 産と使用を含んでいる。阻害剤の限定的な配列分析によって、プローブと雑種形 成するライブラリー中のこれらのcDNAを同定するためにDNAライブラリー を調べるのに使用できるオリゴヌクレオチドの合成が可能となり、全体の阻害剤 を符号化するメツセンジャーRNAの同定が可能となるであろう。マクロファー ジから由来した遺伝子ライブラリーを調べる別法として、ヒト起源の遺伝子ライ ブラリーが、現在周知の技術を用いて宿主細胞系統中で発現可能であるヒト起源 の阻害剤を符号化するDNAを同定し、且つ単離するために調べることができる 。Once the cDNA library has been produced, the first approach is to generate DNA probes. Includes production and use. Probes and hybrid forms by limited sequence analysis of inhibitors DNA library to identify these cDNAs in the resulting library. Enables the synthesis of oligonucleotides that can be used to investigate global inhibitors It will be possible to identify Messenger RNAs encoding . macropher An alternative method for examining gene libraries derived from humans is to examine gene libraries of human origin. of human origin, in which the library can be expressed in host cell lines using currently well-known techniques. can be examined to identify and isolate DNA encoding an inhibitor of .

阻害剤の生物学的性質の予備実験によれば、細胞周期中の幹細胞に及ぼす効果が 可逆的であることが指示されている。癌の化学療法に使用されている化学療法剤 の大部分は通常24時間以内の比較的低い生体内半減期を有しているから、本発 明の阻害剤の阻害効果は化学療法剤が生体内で活性である間に、少なくとも有効 時間の大部分に亙って維持される。Preliminary experiments on the biological properties of the inhibitor indicate that its effect on stem cells during the cell cycle is It is indicated that it is reversible. Chemotherapy agents used in cancer chemotherapy The majority of these drugs have relatively low in vivo half-lives, usually less than 24 hours; The inhibitory effect of light inhibitors is at least effective while the chemotherapeutic agent is active in vivo. maintained for most of the time.

本発明者の予想は体内の正常な生理学的機構が、細胞周期中の幹細胞に関する阻 害剤の有効活性持続期間を限定するであろうということである。The inventor's prediction is that the normal physiological mechanisms in the body will interfere with stem cells during the cell cycle. This would limit the duration of effective activity of the harmful agent.

臨床的用途において、造血組織に本発明の阻害剤の目標を定めることが望ましい 。この目標は通常は輸液又は静脈内ポーラス投与により阻害剤を注射することに より達成することができ、本発明は阻害剤及び適当な希釈剤又はこうした非経口 的投与に適当な担体を含む製薬学的な組成物に及んでいる。In clinical use, it is desirable to target the inhibitors of the invention to hematopoietic tissues. . This goal is usually achieved by injecting the inhibitor via infusion or intravenous porous administration. This invention can be achieved by combining the inhibitor and a suitable diluent or such parenteral The invention also includes pharmaceutical compositions containing carriers suitable for clinical administration.

本発明の阻害剤における関心は造血組織に特異的な幹細胞に限定されず、他の幹 細胞、例えば骨髄細胞に及ぼす細胞毒性の薬物治療の副作用を軽減することに関 するのみならず、固化した(solid)腫瘍の治療に関係ある阻害剤を生産す る、上皮幹細胞にまで広がっている。正常の幹細胞の増殖が防止され、それで増 殖する白血病の細胞が細胞毒薬剤で処置できるようになり、白血病の骨髄細胞が 阻害剤を用いて試験管内又は生体内で治療されるので、阻害剤は又白血病の治療 にも興味あるものである。The interest in the inhibitors of the present invention is not limited to hematopoietic tissue-specific stem cells, but also to other stem cells. related to reducing the side effects of cytotoxic drug treatments on cells, e.g. bone marrow cells. In addition to producing inhibitors that are relevant for the treatment of solid tumors. It has also spread to epithelial stem cells. Normal stem cell proliferation is prevented and therefore increased. Proliferating leukemia cells can now be treated with cytotoxic drugs, and leukemia bone marrow cells can be treated with cytotoxic drugs. Inhibitors can also be used to treat leukemia as they are treated in vitro or in vivo. It is also of interest.

本発明は下記の実施例において更に説明が加えられる。The invention is further illustrated in the Examples below.

広く利用されている1774.2が使用された。これはJ、 Immunol、 (1975) 114.898、及びCancer Res、  (1977)  37.546に記載された通りである。1774.2, which is widely available, was used. This is J, Immunol, (1975) 114.898, and Cancer Res, (1977) As described in 37.546.

撹拌培養における無血清増殖のための選択J774.2細胞は始め10%の牛脂 児血清を補充した変形イーグル培地中で増殖された。細胞は下記培地中で継代培 養(subculture)されたダルべ・ソコXIO50冨! 5F12X10                          50諺 !グルタミン 200翼M           10菖!ピルビン酸ナトリウ ム 10(bM       5寓!蒸留水                 840m1ヌードリド−v(nptridoma) S P       10  ml炭酸水素ナトリウム7.5%       41m1ヌードリド−vsP はサセックス(Sussex)、ルーウエス(Lewes)のべ−リンジャ−( 306hringer)社製、カタログ番号1011375であり:他の試薬は フロー・ラボラトリーズ(Flow Laboratories)UK及びギブ コーパイオカルト(Gibco−Biokult)LIK製である。Selection for serum-free growth in spinner culture J774.2 cells were initially grown in 10% beef tallow. were grown in modified Eagle's medium supplemented with infant serum. Cells were subcultured in the following medium. Darube Soko XIO50 has been cultivated! 5F12X10 50 proverbs ! Glutamine 200 wings M 10 irises! Sodium pyruvate M10 (bM) 5! Distilled water 840m1 Nutridoma-v (nptridoma) SP 10 ml Sodium Bicarbonate 7.5% 41ml Nudride vsP Behringer (Sussex, Lewes) 306hringer), catalog number 1011375; other reagents are Flow Laboratories UK and Give Manufactured by Gibco-Biokult LIK.

774.2細胞は一週間の間牛脂児血清(5%)を上記の培地中で継代培養され 、更に同じ培地中で三日継代培養された。細胞は更に一週間2.5%の牛脂児血 清を加えた培地中で継代培養され、次いで血清を総て除去するまで更に一週間1 %の牛脂児血清を加えた培地中で継代培養された。この段階において二日毎に継 代培養され、8X10’/肩lの濃度まで増殖し、そして継代培養基中で2X1 0’/mA’まで希釈された。774.2 cells were subcultured in the above medium with tallow serum (5%) for one week. , and was further subcultured for three days in the same medium. The cells are further treated with 2.5% tallow blood for one week. subcultured in medium supplemented with serum and then incubated for an additional week until all serum was removed. The cells were subcultured in a medium supplemented with % tallow serum. Repeat every two days at this stage. subcultured and grown to a concentration of 8X10'/l, and 2X1 in subculture medium. Diluted to 0'/mA'.

次いで細胞を撹拌培養基に移し、上記のように二日毎に継代培養して懸濁液中で の増殖に順化させた。J774.2(S)と呼称され、無血清懸濁培養基中で増 殖可能なこの細胞系統を1次いで阻害剤の生産に使用した。The cells were then transferred to a stirred culture medium and subcultured in suspension every two days as described above. acclimatized to the growth of It is called J774.2(S) and is grown in serum-free suspension culture medium. This fertile cell line was then used for the production of inhibitors.

500ml (8X 10’/ml)のJ774.2 (S)を1500mA’ の培地を含む大きい発酵槽(テクネ[Tecbne]、7/)中に接種した。空 気中に5%のCO2を含む気体を供給し、37℃で2日間2Orpmで撹拌し、 次いで61の培地を補充し、3日間続けて増殖させた。500ml (8X 10'/ml) of J774.2 (S) at 1500mA' The culture medium was inoculated into a large fermenter (Tecbne, 7/). Sky A gas containing 5% CO2 was supplied, and the mixture was stirred at 2 Orpm for 2 days at 37°C. 61 medium was then replenished and allowed to grow for 3 consecutive days.

8X10’の細胞からの未希釈の培地を0.45μ調の微多孔質の膜を持ったミ リポア・ペリコン−カセット(Milipore Pe1licon−Case tte)装置を用いて細胞から分離する。細胞を除いた培地を次いでIOKカッ トオフ(cut−off)膜を用いて同じ装置中で濃縮し、最終容積を約400 1Aとする。この濃縮物を生化学的に精製するために次いで下記のように処G− 25HR16150(ファルマシア)により脱塩し、陰イオン交換モノQHRI O/10カラム(ファルマシア、FPLC装置)にかけ、及び最終的に塩グラン エンド(0ないし1MNacI)で溶離する。The undiluted medium from 8 x 10' cells was transferred to a microporous microporous membrane with a 0.45 micron scale. Milipore Pellicon-Case tte) is separated from the cells using a device. The medium from which the cells were removed was then placed in an IOK cup. Concentrate in the same apparatus using a cut-off membrane to a final volume of approximately 400 1A. To biochemically purify this concentrate, G- 25HR16150 (Pharmacia) and anion exchange monoQHRI. O/10 column (Pharmacia, FPLC equipment) and finally salt gran Elute with Endo (0 to 1M NacI).

阻害剤の活性画分は領26ないし0.28NaCIの間で溶離する。The active fraction of the inhibitor elutes between the range 26 and 0.28 NaCI.

第2段階。第1段階からの不純な阻害剤を直接セファロース−ヘパリン(ファル マシア)カラム、HRIO/10にかける。阻害剤は樹脂に結合し、蛋白質の大 部分(90%以上)はpH7,6の領IMNaC]−0,02M )リスHCI を用いて樹脂から洗い出すことができる。次いで阻害剤はpH7,6のLM N aCl−0,02MトリスHCI中で樹脂から溶離される。Second stage. The impure inhibitor from the first step was directly removed from Sepharose-heparin Macia) column, HRIO/10. The inhibitor binds to the resin and binds to the protein. Part (more than 90%) of pH 7.6 area IMNaC]-0.02M) Lith HCI can be washed out of the resin using The inhibitor was then added to LMN at pH 7.6. aCl-eluted from the resin in 0,02M Tris HCI.

第3段階。第2段階からの部分的に精製された阻害剤を脱塩せずに直接ブルー・ セファロース(ファルマシア)カラムにかける。次いでカラムを第2段階で阻害 剤を溶離するのに用いた緩衝液で洗浄し、他の蛋白質を除去する。強く結合して いる精製された阻害剤はpH7,6の5MMgc12−0.02M  )リスH CIで溶離される。Third stage. The partially purified inhibitor from the second step is directly blue-coated without desalting. Apply to Sepharose (Pharmacia) column. The column is then inhibited in a second step. Wash with the buffer used to elute the agent to remove other proteins. strongly connected The purified inhibitor is 5MMgc12-0.02M) at pH 7.6) Eluted with CI.

阻害剤の他の生化学的特性は a)熱安定性、 b)37℃、55℃75℃で1時間安定である、ことを含んでいる。Other biochemical properties of the inhibitor are a) thermal stability; b) Stable for 1 hour at 37°C, 55°C and 75°C.

分子の大きさ 精製された阻害剤は還元条件下でポリアクリルアミドゲル上に分子量8−10に 、dの単一なバンドとして見ることができる。阻害剤を非還元的条件下でポリア クリルアミドゲル電気泳動にかけると、それは僅かに高い分子量でのものあるこ とが分かる。これらの観察は阻害剤が電気泳動的移動度に影響する内部的ジスル フィド結合を有する単鎖ポリペプチドであることを示唆する。molecule size The purified inhibitor was deposited on a polyacrylamide gel under reducing conditions to a molecular weight of 8-10. , d can be seen as a single band. Inhibitors are added to polyamines under non-reducing conditions. When subjected to acrylamide gel electrophoresis, it appears that it has a slightly higher molecular weight. I understand. These observations suggest that the inhibitor may have internal disulfide effects that affect electrophoretic mobility. This suggests that it is a single chain polypeptide with fido bonds.

阻害剤の生物学的特質 多能性幹細胞の細胞周期外への可逆的誘発(trigger) (試験管内アッ セイにおいて述べたようなCFU−A)骨髄細胞を20%の馬血清が補充された IKlのフッシャー(Fischer)の培地中に5X10’の細胞を含む一対 の試験管中でインキュベートした。阻害剤又はアルファーMEMが各試験管に添 加され、フッシャーの培地が対照試験管に添加された。混合物を37℃で5時間 インキュベートした(阻害アッセイ)。インキュベーションの最後の60分間に 10−3Mのシトシンアラビノシドを一つの試験管に添加し、等容積の培地を他 の試験管に添加した。次いで上記のようなCFU−Aア・ソセイにより分析する 前に細胞を二度洗浄した。阻害剤は周期中の幹細胞の数を平均30%から平均的 3%まで減少させることが見出された。未処理の細胞は阻害剤で処理された幹細 胞と対照的に細胞毒性薬物処理により殺害された。阻害剤の不純な製剤も、文献 中に記載されたCFU−Aア1./セイを用いて生体内でアッセイすると、多能 性幹細胞を可逆的に周期外に誘発する。Biological properties of inhibitors Reversible triggering of pluripotent stem cells outside the cell cycle (in vitro assay) CFU-A) Bone marrow cells as described in Sei were supplemented with 20% horse serum. Pairs containing 5X10' cells in IKl's Fischer's medium were incubated in test tubes. Inhibitor or alpha MEM is added to each tube. and Fuscher's medium was added to control tubes. Mixture at 37°C for 5 hours incubated (inhibition assay). during the last 60 minutes of incubation. Add 10-3M cytosine arabinoside to one tube and add an equal volume of medium to the other tube. was added to the test tube. Then analyzed by CFU-A assay as described above. Cells were washed twice before. Inhibitors reduce the number of cycling stem cells by an average of 30% to an average It was found that the reduction was up to 3%. Untreated cells are treated with inhibitors In contrast to cells, they were killed by cytotoxic drug treatment. Impure preparations of inhibitors have also been reported in the literature. CFU-A described in 1. When assayed in vivo using Reversibly induces sexual stem cells out of cycle.

補正書の写しく翻訳文)提出書 (特許法第184条の8)平成2年10月19 日 特許庁長官 植 松   敏 殿 1、特許出願の表示 PCT/GB89100396 2、発明の名称 幹細胞阻害剤 3、特許出願人 住 所 イギリス国ロンドンニスダブリュー1ワイ 5エイアール・カールトン テラスハウス2 名 称 キャンサー・リサーチ・キャンペーン・テクノロジー・リミテッド 代表者 フオーデン、スーザン 4、代理人 〒107 住 所 東京都港区赤坂1丁目9番15号5、補正書の提出年月日 1990年6月18日 6、添付書類の目録 10行の補正であります。Copy and translation of written amendment) Submission (Article 184-8 of the Patent Law) October 19, 1990 Day Commissioner of the Patent Office Toshi Ue Matsu 1. Display of patent application PCT/GB89100396 2. Name of the invention stem cell inhibitors 3. Patent applicant Address: 5RA Carlton, 1WY, London, United Kingdom terrace house 2 Name Cancer Research Campaign Technology Limited Representative: Foden, Susan 4. Agent〒107 Address: 1-9-15-5 Akasaka, Minato-ku, Tokyo, Date of submission of amendment June 18, 1990 6. List of attached documents This is a 10-line correction.

阻害剤の生物学的性質の予備実験によれば、細胞周期中の幹細胞に及ぼす効果が 可逆的であることが指示されている。癌の化学療法に使用されている化学療法剤 の大部分は通常24時間以内の比較的低い生体内半減期を有しているから、本発 明の阻害剤の阻害効果は化学療法剤が生体内で活性である間に少なくとも有効時 間の大部分に亙って維持される。Preliminary experiments on the biological properties of the inhibitor indicate that its effect on stem cells during the cell cycle is It is indicated that it is reversible. Chemotherapy agents used in cancer chemotherapy The majority of these drugs have relatively low in vivo half-lives, usually less than 24 hours; The inhibitory effect of the chemotherapeutic agent is at least effective while the chemotherapeutic agent is active in vivo. maintained for most of the time.

本発明者の予想は体内の正常な生理学的機構が細胞周期中の幹細胞に関する阻害 剤の有効活性持続期間を限定するであろうということである。The inventor's prediction is that normal physiological mechanisms within the body inhibit stem cells during the cell cycle. This would limit the duration of effective activity of the agent.

臨床的用途において、造血組織に本発明の阻害剤の目標を定めることが望ましい 。この目標は通常は輸液又は静脈内ポーラス投与により阻害剤を注射することに より達成することができ、本発明は阻害剤及び製薬学的に許容し得る希釈剤又は 担体、好適には非経口的投与に適当した希釈剤又は担体を含む製薬学的な組成物 に及んでいる。In clinical use, it is desirable to target the inhibitors of the invention to hematopoietic tissues. . This goal is usually achieved by injecting the inhibitor via infusion or intravenous porous administration. The present invention can be achieved by combining an inhibitor and a pharmaceutically acceptable diluent or Pharmaceutical compositions comprising a carrier, preferably a diluent or carrier suitable for parenteral administration It extends to

国際調査報告 Iww+a+、a+a+ Am&”+IU6M 1+e、  PCT /G己9 910029ら1+l#+沖aAjl^ea1.tjl、aANa、s(mT/ G”  a9/GO396international search report Iww+a+, a+a+ Am&”+IU6M 1+e, PCT/Gself9 910029 et al.1+l#+OkiaAjl^ea1. tjl,aANa,s(mT/ G”  a9/GO396

Claims (10)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.下記の特性: 1)阻害剤活性はトリプシンによる分解に感受性があり、従って阻害剤は蛋白質 様である。 2)阻害剤は陰イオン交換体での処理により部分的に精製された時に、分子量分 析用樹脂上で45−60Kdの範囲の分子量酸を示す。 3)阻害剤は還元性条件下でポリアクリルアミドゲル電気泳動により単一のバン ドとなるまで精製されると、8−10Kdの分子量範囲を示し、非還元条件下で は僅かに高い分子量を示す。 4)阻害剤は下記: (i)阻害剤活性は37℃、55℃及び75℃で1時間加熱後も保存される、 (ii)阻害剤活性は100℃で10分間加熱後も保存される、のように熱一安 定性である。 5)阻害剤は陰イオン交換体と結合し、0.26及び0.28モルの間のNaC 1の塩類グラジエントで溶離できる。 6)阻害剤はヘパリン・セファロース・アフィニティークロマトグラフィー樹脂 に結合し、該樹脂から1モルの塩化ナトリウム緩衝液で溶離できる。 7)阻害剤はブルー・セファロース・アフィニティークロマトグラフィー樹脂に 強く結合し、5M塩化マグネシウムで樹脂から溶離できる。 8)細胞周期中の幹細胞が部分的に精製された阻害剤で処理された時には、シト シンアラビノシドの作用に抵抗性となる。処理された幹細胞が次いで細胞毒性薬 物及び阻害剤を除去するために食塩緩衝液で洗浄されると、生存する幹細胞は培 養基中で正常な増殖を示す。 を有することを特徴とする、造血性幹細胞阻害剤。1. Characteristics below: 1) Inhibitor activity is sensitive to degradation by trypsin, therefore the inhibitor is a protein It's like that. 2) When the inhibitor is partially purified by treatment with an anion exchanger, the molecular weight It exhibits molecular weight acids in the range of 45-60 Kd on analytical resins. 3) Inhibitors were isolated in single bands by polyacrylamide gel electrophoresis under reducing conditions. When purified to a shows a slightly higher molecular weight. 4) The inhibitors are as follows: (i) inhibitor activity is preserved after heating at 37°C, 55°C and 75°C for 1 hour; (ii) Inhibitor activity is preserved after heating at 100°C for 10 min, as shown in It is qualitative. 5) The inhibitor is combined with an anion exchanger and contains between 0.26 and 0.28 molar NaC It can be eluted with a salt gradient of 1. 6) Inhibitor is heparin/Sepharose/affinity chromatography resin and can be eluted from the resin with 1 molar sodium chloride buffer. 7) Inhibitor is added to Blue Sepharose affinity chromatography resin It binds strongly and can be eluted from the resin with 5M magnesium chloride. 8) When cycling stem cells are treated with a partially purified inhibitor, cytotoxic Becomes resistant to the action of synarabinoside. Treated stem cells are then treated with cytotoxic drugs Once washed with saline buffer to remove substances and inhibitors, the surviving stem cells remain in culture. It shows normal growth in the nutrient substrate. A hematopoietic stem cell inhibitor characterized by having the following. 2.マクロファージJ774.2細胞から得られる、上記1に記載の阻害剤。2. The inhibitor according to 1 above, which is obtained from macrophage J774.2 cells. 3.上記1又は2に記載の阻害剤を製薬学的に許容し得る担体又は希釈剤と共に 含有して成る製薬学的組成物。3. The inhibitor according to 1 or 2 above together with a pharmaceutically acceptable carrier or diluent A pharmaceutical composition comprising: 4.非経口的投与のための上記3に記載の組成物。4. 3. The composition according to 3 above for parenteral administration. 5.上記1又は2に記載の阻害剤に対する抗体。5. An antibody against the inhibitor described in 1 or 2 above. 6.上記1又は2に記載の阻害剤又は阻害剤の免疫原的に活性なフラグメントで 宿主動物を免疫化し、及び宿主動物から抗体又は抗体生産細胞を回収することを 含んで成る、抗体を高める方法。6. an inhibitor or an immunogenically active fragment of an inhibitor according to 1 or 2 above; immunizing a host animal and recovering antibodies or antibody-producing cells from the host animal. A method for increasing antibodies, comprising: 7.宿主細胞中に発現可能な上記1又は2に記載の阻害剤を符号化するDNAを 含む合成DNA。7. A DNA encoding the inhibitor according to 1 or 2 above that can be expressed in a host cell. Synthetic DNA containing. 8.下記段階: 1)増殖培地中で骨髄起源の阻害剤生産マクロファージ細胞系統を増殖して阻害 剤を含む上澄液を生産すること;2)上澄液を陰イオン交換体と接触させ、及び 陰イオン交換体を0.25−0.30MNaClで溶離して阻害剤を含む第一の 溶離液を得ること; 3)第一の溶離液をセファロースーヘパリンと接触させて、セファロースーヘパ リンを少なくとも1Mのモル濃度のNaC1の溶液で溶離して、阻害剤を含む第 二の溶離液を得ること;4)第二の溶離液をセファロースープルーと接触させ、 及びセファロースープルーを少なくとも3Mのモル濃度のMgC12の溶液で溶 離して阻害剤を含む第三の溶離液を得ること;を含んで成る上記1に記載の阻害 剤を単離し且つ精製する方法。8. The following stages: 1) Proliferate and inhibit myeloid-derived inhibitor-producing macrophage cell line in growth medium 2) contacting the supernatant with an anion exchanger; and The anion exchanger was eluted with 0.25-0.30M NaCl to remove the first phase containing the inhibitor. obtaining an eluent; 3) Contact the first eluent with Sepharose-heparin to The phosphorus is eluted with a solution of at least 1M molar NaCl and the obtaining a second eluent; 4) contacting the second eluent with Sepharose blue; and Sepharose blue in a solution of MgC12 with a molar concentration of at least 3M. The inhibition according to 1 above, comprising: separating the eluent to obtain a third eluent containing the inhibitor. Methods of isolating and purifying agents. 9.治療のためにヒト又は動物体の処置方法中で使用するための上記1又は2に 記載の阻害剤。9. 1 or 2 above for use in a method of treating a human or animal body for therapy. Inhibitors as described. 10.患者の造血性幹細胞を細胞毒性薬物による損傷から保護するように上記1 又は2に記載の阻害剤を投与することを含む、細胞周期特異性細胞毒性薬物を受 ける患者を治療する方法。10. 1 above to protect a patient's hematopoietic stem cells from damage caused by cytotoxic drugs. or receiving a cell cycle-specific cytotoxic drug, including administering an inhibitor according to 2. how to treat patients who
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